RU2531236C1 - Method of detecting microorganism of species vibrio parahaemolyticus - Google Patents
Method of detecting microorganism of species vibrio parahaemolyticus Download PDFInfo
- Publication number
- RU2531236C1 RU2531236C1 RU2013112417/10A RU2013112417A RU2531236C1 RU 2531236 C1 RU2531236 C1 RU 2531236C1 RU 2013112417/10 A RU2013112417/10 A RU 2013112417/10A RU 2013112417 A RU2013112417 A RU 2013112417A RU 2531236 C1 RU2531236 C1 RU 2531236C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- phage
- parahaemolyticus
- culture
- strain
- vibrio parahaemolyticus
- Prior art date
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Description
Предлагаемое изобретение относится к медицинской микробиологии, в частности, лабораторной диагностике острых кишечных заболеваний, вызываемых Vibrio parahaemolyticus.The present invention relates to medical microbiology, in particular, laboratory diagnosis of acute intestinal diseases caused by Vibrio parahaemolyticus.
В настоящее время в лабораторной диагностике большинства бактериальных кишечных инфекций используются специфические бактериофаги, позволяющие идентифицировать выделенные микробные штаммы с высокой степенью достоверности.Currently, in the laboratory diagnosis of most bacterial intestinal infections, specific bacteriophages are used to identify isolated microbial strains with a high degree of certainty.
В связи с возрастающей заболеваемостью пищевыми отравлениями, обусловленными Vibrio parahaemolyticus, значение фагодиагностики галофильных микроорганизмов усиливается и актуально в осуществлении поиска новых, простых и эффективных методов их детекции, так как позволяет выделить специфические свойства определенного вида вибрионов при взаимодействии с фагами, осуществить дифференциацию от микроорганизмов близкородственных родов, семейств, а отсутствие специфического препарата фага для диагностики Vibrio parahaemolyticus снижает эффективность противоэпидемических и лечебно-профилактических мероприятий. Известны способы диагностики заболеваний, вызываемых парагемолитическими и другими патогенными для человека вибрионами (см. Методические указания МУК 4.2.1793-03, Москва, 2004 г. стр.23), заключающиеся в серологическом типировании парагемолитических вибрионов, которое проводят по схеме. Набор агглютинирующих О и К-сывороток для серологического типирования на стекле выпускает японская фирма Toschiba Kazaki Co. Ltd.Due to the increasing incidence of food poisoning caused by Vibrio parahaemolyticus, the importance of phagodiagnostics of halophilic microorganisms is enhanced and relevant in the search for new, simple and effective methods for their detection, since it allows one to identify the specific properties of a certain type of vibrios when interacting with phages, to differentiate from closely related microorganisms childbirth, families, and the absence of a specific phage preparation for the diagnosis of Vibrio parahaemolyticus reduces the effectiveness of the counter idemicheskih and preventive measures. Known methods for diagnosing diseases caused by parahemolytic and other vibrioes pathogenic for humans (see Guidelines MUK 4.2.1793-03, Moscow, 2004, p. 23), which consist in serological typing of parahemolytic vibrios, which is carried out according to the scheme. A set of agglutinating O and K serums for serological typing on glass is produced by the Japanese company Toschiba Kazaki Co. Ltd.
Недостатком такого способа является то, что проведение серологического типирования является трудоемким процессом, так как для каждого серотипируемого штамма необходима индивидуальная агглютинирующая сыворотка, а это обстоятельство значительно увеличивает время проведения одного лабораторного анализа и, кроме того, агглютинирующие сыворотки (Япония), недоступны и дорогостоящи.The disadvantage of this method is that serological typing is a time-consuming process, as each serotyped strain requires an individual agglutinating serum, and this circumstance significantly increases the time of one laboratory analysis and, in addition, agglutinating serums (Japan) are not available and expensive.
За прототип выбран способ фагодиагностики парагемолитических вибрионов серотипа O5:К15 (см. а.с. СССР №1671690, кл. С12 №7/00, 23.08.91 г.), заключающийся в том, что используют штамм фага V. parahaemolytici Ф-139, который размножают с помощью метода Грациа на щелочных средах, содержащих 3% NaCl, и индикаторной культуре, внесенной в агар.For the prototype, a method for the phagodiagnostics of parahemolytic vibrios of serotype O5: K15 (see AS of the USSR No. 1671690, class C12 No. 7/00, August 23, 91) was selected, which consists in the use of the phage strain V. parahaemolytici F. 139, which is propagated using the Grazia method on alkaline media containing 3% NaCl and an indicator culture added to agar.
Однако использовать фаг Ф-139 для идентификации V. parahaemolyticus других О и К-сероваров не представляется возможным из-за ограниченных литических свойств фага в пределах штаммов серогруппы O5:К15 V. parahaemolyticus.However, using phage F-139 to identify V. parahaemolyticus of other O and K serovars is not possible due to the limited lytic properties of the phage within the serogroup O5: K15 strains of V. parahaemolyticus.
Техническая задача предлагаемого изобретения состояла в разработке эффективного способа, позволяющего ускорять идентификацию штаммов V. parahaemolyticus различных сероваров, расширяя спектр его действия.The technical task of the invention was to develop an effective method that allows to accelerate the identification of strains of V. parahaemolyticus of various serovars, expanding its spectrum of action.
Поставленная задача достигается тем, что в способе обнаружения микроорганизмов вида Vibrio parahaemolyticus, включающем использование индикаторного штамма с последующим лизированием исследуемой культуры фагом, в качестве индикаторного штамма используют Vibrio parahaemolyticus KM-97, из которого перед применением готовят путем смешивания 1,0 мл фага ФК-44 и 1,0 мл фага ФК-46 в соотношении 1:1, в титре n·108 БОЕ/мл, затем проводят посев исследуемого штамма на газон культуры и наносят каплю полученного диагностического препарата фага в центр чашки, посевы выдерживают при температуре 37°C в течение 20-24 часов и по присутствию лизиса фагом исследуемого штамма подтверждают его принадлежность к микроорганизмам вида V. parahaemolyticus.This object is achieved in that in the method for detecting microorganisms of the species Vibrio parahaemolyticus, including the use of an indicator strain followed by lysing the test culture with phage, Vibrio parahaemolyticus KM-97 is used as an indicator strain, from which 1.0 ml of FC- phage is prepared before use 44 and 1.0 ml of phage FC-46 in a ratio of 1: 1, in a titer of n · 10 8 PFU / ml, then the test strain is inoculated onto the culture lawn and a drop of the obtained diagnostic phage preparation is applied to the center of the plate, the crops are kept at at a temperature of 37 ° C for 20-24 hours and the presence of phage lysis of the studied strain confirms its belonging to microorganisms of the species V. parahaemolyticus.
При этом газон культуры исследуемого штамма готовят с предварительным выращиванием последнего в термостате в течение 4-х часов при 37°C после посева в бульон Мартена с 3% NaCl, затем 0,3 мл выросшей культуры вносят в 4,5 мл расплавленного и охлажденного до 45°C 0,7% агара Мартена с 3% NaCl и выливают его вторым слоем на пластинку агара Мартена с 3% NaCl в чашки Петри, посев подсушивают с последующим нанесением препарата фага.In this case, the lawn of the culture of the studied strain is prepared by pre-growing the latter in an incubator for 4 hours at 37 ° C after plating in Marten broth with 3% NaCl, then 0.3 ml of the grown culture is added to 4.5 ml of molten and cooled to 45 ° C 0.7% Marten agar with 3% NaCl and the second layer is poured onto a plate of Marten agar with 3% NaCl in Petri dishes, plated, dried, followed by application of the phage preparation.
Способ осуществляется следующим образом.The method is as follows.
Для проведения способа используют: индикаторный штамм Р-14706, депонированный в ГКПБ «Микроб» г. Саратов, под номером КМ-97, фаг 1154 Vibrio parahaemolyticus, фаг 3256 Vibrio parahaemolyticus.To carry out the method use: indicator strain R-14706, deposited in the Clinical Hospital "Microbe", Saratov, under the number KM-97, phage 1154 Vibrio parahaemolyticus, phage 3256 Vibrio parahaemolyticus.
Фаг 1154 Vibrio parahaemolyticus депонирован и хранится под номером ФК-44 (1154) в коллекции лаборатории бактериофагов ФКУЗ Рост НИПЧИ. При электронно-микроскопическом изучении фаг характеризуется III морфогруппой по классификации А.С. Тихоненко. По серологическим свойствам фаг ФК-44 принадлежит к III серотипу. Диапазон литической активности распространяется на 80,4% штаммов Vibrio parahaemolyticus различных О-сероваров.Phage 1154 Vibrio parahaemolyticus is deposited and stored under the number FK-44 (1154) in the collection of the laboratory of bacteriophages FKUZ Growing NIPS. In electron microscopic studies, the phage is characterized by a III morphogroup according to the classification of A.S. Tikhonenko. By serological properties, phage FC-44 belongs to the III serotype. The range of lytic activity extends to 80.4% of Vibrio parahaemolyticus strains of various O-serovars.
Фаг 3256 Vibrio parahaemolyticus депонирован под номером ФК-46 (3256) и хранится в коллекции лаборатории бактериофагов ФКУЗ Рост НИПЧИ. При электронно-микроскопическом изучении установлено, что фаг относится к IV морфологической группе по классификации А.С. Тихоненко. Результаты изучения серологических свойств показали его принадлежность к IV серотипу фагов парагемолитических вибрионов. Важной особенностью фага является специфичность логического действия в отношении 60,1% штаммов V. parahaemolyticus различных О-сероваров.Phage 3256 Vibrio parahaemolyticus is deposited under the number FK-46 (3256) and is stored in the collection of the laboratory of bacteriophages FKUZ Growing NIPS. An electron microscopic study found that the phage belongs to the IV morphological group according to the classification of A.S. Tikhonenko. The results of the study of serological properties showed its belonging to the IV serotype of phages of parahemolytic vibrios. An important feature of the phage is the specificity of the logical action against 60.1% of V. parahaemolyticus strains of various O-serovars.
Для размножения бактериофагов ФК-44 (1154) и ФК-46 (3256) используют индикаторный штамм Vibrio parahaemolyticus КМ-97 (Р-14706). Фаги ФК-44 и ФК-46 сохраняют в ампулах, срок хранения 1 год. Титр фагов составляет n·108-109 БОЕ/мл.To propagate the bacteriophages FC-44 (1154) and FC-46 (3256), the indicator strain Vibrio parahaemolyticus KM-97 (P-14706) is used. Phages FK-44 and FK-46 are stored in ampoules, the shelf life is 1 year. The titer of phages is n · 10 8 -10 9 PFU / ml.
Препарат фага (ДИФ) получают перед непосредственным его использованием для высокой сохранности активных частиц фагов. Готовят бивалентную смесь фагов ФК-44 и ФК-46 в соотношении 1:1 в титре n·108 БОЕ/мл, берут 1,0 мл фага ФК-44 и 1,0 мл фага ФК-46, которые соединяют в пробирке и препарат ДИФ готов к использованию.The phage preparation (DIF) is obtained before its direct use for high preservation of active phage particles. A bivalent mixture of phages FC-44 and FC-46 is prepared in a ratio of 1: 1 in a titer of n · 10 8 PFU / ml, 1.0 ml of phage FC-44 and 1.0 ml of phage FC-46 are taken, which are connected in a test tube and DIF is ready for use.
Следующим этапом готовят газон культуры исследуемого штамма, который может быть выделен от больного, из пищевых продуктов, пробы воды, рыбы, гидробионтов. По методу Грациа газон выполняют двухслойным. Нижний слой представляет агаровую среду pH 7,6 с добавлением 3% NaCl. Верхний слой получают из 4,0 мл исследуемой пробы, которую выращивают в бульоне Мартена с 3% NaCl при 37°C в течение четырех часов, затем 0,3 мл выросшей культуры вносят в 4,5 мл расплавленного и охлажденного до 45°C 0,7% агара Мартена с 3% NaCl и выливают вторым слоем на пластинки агара в чашках Петри. После застывания агар подсушивают. Затем препарат ДИФ наносят каплей в виде дорожки на газон исследуемой культуры и инкубируют при 37°C в течение 20-24 часов.The next step is to prepare the lawn of the culture of the studied strain, which can be isolated from the patient, from food products, water samples, fish, hydrobionts. According to the Grazia method, the lawn is bilayer. The bottom layer represents an agar medium pH 7.6 with the addition of 3% NaCl. The top layer is obtained from 4.0 ml of the test sample, which is grown in Marten broth with 3% NaCl at 37 ° C for four hours, then 0.3 ml of the grown culture is added to 4.5 ml of molten and cooled to 45 ° C 0 , 7% Marten agar with 3% NaCl and poured in a second layer onto agar plates in Petri dishes. After solidification, the agar is dried. Then, the DIF preparation is applied drop in the form of a track to the lawn of the studied culture and incubated at 37 ° C for 20-24 hours.
Учет результатов, а именно идентификацию Vibrio parahaemolyticus, проводят по наличию зоны фаголизиса на выросшей культуре. Прозрачная зона лизиса подтверждает присутствие V. parahaemolyticus, а его отсутствие исключает принадлежность к этому виду микроба.Analysis of the results, namely the identification of Vibrio parahaemolyticus, is carried out by the presence of a phagolysis zone in the grown culture. A transparent lysis zone confirms the presence of V. parahaemolyticus, and its absence precludes belonging to this type of microbe.
Пример 1, подтверждающий специфичность действия фага ДИФ в отношении вибрионов и других близкородственных организмов.Example 1, confirming the specificity of the action of the DPh phage against vibrios and other closely related organisms.
При создании препарата ДИФ были выбраны 9 различных типов фагов с учетом их биологических особенностей (фаги 109, 123, 154, 616, 124, 175, 227, 1154, 3256). Диапазон действия этих фагов (по лизису штаммов) составил от 7,0 до 34,7%. Затем комбинируют 3 варианта смесей: 1) 1154+3256; 2) 1154+227; 3) 3256+154. Проводят испытания этих смесей на 184 штаммах парагемолитических вибрионов различных серотипов (см. таблицу 1). Первая смесь лизировала 92,5% изученных штаммов, вторая - 72,09%; третья - 41,39%. Из таблицы видно, что первый вариант смеси, препарат фага ДИФ, обладает высоким специфическим действием в отношении вибрионов и других близкородственных организмов. Титр фага составил n·108 БОЕ/мл.When creating the drug DIF, 9 different types of phages were selected taking into account their biological characteristics (phages 109, 123, 154, 616, 124, 175, 227, 1154, 3256). The range of action of these phages (by lysis of strains) ranged from 7.0 to 34.7%. Then 3 variants of mixtures are combined: 1) 1154 + 3256; 2) 1154 + 227; 3) 3256 + 154. Test these mixtures on 184 strains of parahemolytic vibrios of various serotypes (see table 1). The first mixture lysed 92.5% of the studied strains, the second - 72.09%; the third - 41.39%. The table shows that the first version of the mixture, the preparation of the DIF phage, has a high specific effect on vibrios and other closely related organisms. The phage titer was n · 10 8 PFU / ml.
Фаг ДИФ лизирует 92,5% штаммов Vibrio parahaemolyticus и не оказывает литического действия в отношении бактерий семейств Vibrionaceae, Pseudomonadaceae, Enterobacteriaceae.Phage DIF lyses 92.5% of Vibrio parahaemolyticus strains and does not exert a lytic effect against bacteria of the families Vibrionaceae, Pseudomonadaceae, Enterobacteriaceae.
Пример 2. Использование препарата фага ДИФ для идентификации V. parahaemolyticus.Example 2. The use of the preparation of phage DIF to identify V. parahaemolyticus.
Из испражнений больного (48 лет) с признаками пищевой токсикоинфекции выделяют культуру, подозрительную по морфологическим признакам на V. parahaemolyticus. Фагодиагностику этой культуры проводят следующим образом: первоначально исследуемую культуру в количестве 4,0 мл выращивают в бульоне Мартена с 3% NaCl в течение 4-х часов при 37°C. После этого 0,3 мл выросшей культуры смешивают с 4,5 мл расплавленного и охлажденного до 45°C 0,7% агара Мартена с 3% NaCl и выливают вторым слоем на пластину застывшего 1,5% агара Мартена (pH 7,6) с 3% NaCl в чашки Петри. После застывания агар подсушивают и в центр чашки наносят пипеткой каплю фага ДИФ. Посевы оставляют при 37°C на 20-24 часа и на месте нанесения фага ДИФ обнаруживают зону просветления. В результате исследуемую культуру классифицируют как V. parahaemolyticus.From the feces of the patient (48 years old) with signs of foodborne toxicosis, a culture suspicious of morphological signs on V. parahaemolyticus is isolated. The phagodiagnostics of this culture is carried out as follows: the initially studied culture in the amount of 4.0 ml is grown in Marten broth with 3% NaCl for 4 hours at 37 ° C. After that, 0.3 ml of the grown culture is mixed with 4.5 ml of 0.7% marten agar molten and cooled to 45 ° C with 3% NaCl and the second layer is poured onto a plate of frozen 1.5% marten agar (pH 7.6) with 3% NaCl in Petri dishes. After solidification, the agar is dried and a drop of DIF phage is pipetted into the center of the plate. Crops are left at 37 ° C for 20-24 hours and a clear zone is detected at the site of application of the DIF phage. As a result, the test culture is classified as V. parahaemolyticus.
Пример 3. Культуру, выделенную из проб морской воды (проба из воды Черного моря по мониторингу на вибриофлору, август 2012 года), подозрительную на V. parahaemolyticus, изучали по методике, описанной в примере 1. После лизирования исследуемой культуры фагом ДИФ в течение суток диагностировали присутствие в пробах галофильных вибрионов V. parahaemolyticus.Example 3. The culture isolated from samples of sea water (a sample from the Black Sea water for monitoring vibrioflora, August 2012), suspicious of V. parahaemolyticus, was studied according to the method described in example 1. After lysing the test culture with the DIF phage for 24 hours diagnosed the presence of halophilic vibrios of V. parahaemolyticus in the samples.
Использование предложенного способа позволяет эффективно применять его в лабораторной диагностике, так как выраженная чувствительность к фагу ДИФ у Vibrio parahaemolyticus, условия выращивания в присутствии NaCl в среде позволяет использовать его в качестве дополнительного теста дифференциации возбудителей пищевой токсикоинфекции, гастроэнтеритов, который может быть применен в лабораторной диагностике для того, чтобы:Using the proposed method makes it possible to effectively use it in laboratory diagnostics, since the expressed sensitivity to the DPh phage in Vibrio parahaemolyticus, the growing conditions in the presence of NaCl in the medium allows it to be used as an additional test for differentiation of foodborne toxicoinfection pathogens, gastroenteritis, which can be used in laboratory diagnostics in order to:
- использовать при проведении эпиданализа острых кишечных заболеваний с пищевыми токсикоинфекциями;- to use during the epidanalysis of acute intestinal diseases with foodborne toxicoinfections;
- применять в лабораторной диагностике штаммов V. parahaemolyticus, выделенных от больных и из внешней среды (из морской воды, гидробионтов и др.);- used in laboratory diagnosis of strains of V. parahaemolyticus isolated from patients and from the environment (from sea water, aquatic organisms, etc.);
- проводить типирование фагом ДИФ штаммов V. parahaemolyticus различных К и О-сероваров;- to carry out typing with the phage of the differentiated strains of V. parahaemolyticus of various K and O-serovars;
- дифференцировать фагочувствительные штаммы V. parahaemolyticus от резистентных к фагу бактерий;- differentiate phagosensitive strains of V. parahaemolyticus from phage-resistant bacteria;
- экономичность и простота выполнения анализа, ускоренное получение результатов, доступность любой лаборатории позволяют рекомендовать ДИФ для широкого применения, особенно при массовых исследованиях и чрезвычайных эпидемиологических обстоятельствах. При этом эффективность диагностических мероприятий может быть существенно повышена за счет использования диагностического фага.- the cost-effectiveness and ease of analysis, accelerated results, the availability of any laboratory make it possible to recommend the WPPT for widespread use, especially in mass studies and emergency epidemiological circumstances. Moreover, the effectiveness of diagnostic measures can be significantly increased through the use of diagnostic phage.
Claims (2)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2013112417/10A RU2531236C1 (en) | 2013-03-19 | 2013-03-19 | Method of detecting microorganism of species vibrio parahaemolyticus |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2013112417/10A RU2531236C1 (en) | 2013-03-19 | 2013-03-19 | Method of detecting microorganism of species vibrio parahaemolyticus |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2013112417A RU2013112417A (en) | 2014-09-27 |
RU2531236C1 true RU2531236C1 (en) | 2014-10-20 |
Family
ID=51656275
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2013112417/10A RU2531236C1 (en) | 2013-03-19 | 2013-03-19 | Method of detecting microorganism of species vibrio parahaemolyticus |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2531236C1 (en) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN108699532A (en) * | 2015-12-21 | 2018-10-23 | 尹特荣生物科技株式会社 | Novel vibrio parahaemolyticus phage Vib-PAP-2 and its for inhibit vibrio parahaemolytious be proliferated purposes |
RU2729575C1 (en) * | 2019-12-12 | 2020-08-07 | Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Method for identification of cholera vibrio o1 serogroups of biovars classical and el tor |
Families Citing this family (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN110468110B (en) * | 2019-09-11 | 2022-08-19 | 大连理工大学 | Vibrio parahaemolyticus bacteriophage and application thereof in disease prevention of stichopus japonicus |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
SU543260A1 (en) * | 1975-07-25 | 1984-04-15 | Всесоюзный Ордена Трудового Красного Знамени Научно-Исследовательский Противочумный Институт "Микроб" | Method for preparing cholera bacteriophages for differentiating el-tor vibrios into virulent and avirulent |
SU1671690A1 (en) * | 1989-08-16 | 1991-08-23 | Ростовский-На-Дону Государственный Научно-Исследовательский Противочумный Институт | Strain of phase vibrionis parahaemolitici for phagodiagnosis of parahemolytic vibrios serotype 05:k15 |
-
2013
- 2013-03-19 RU RU2013112417/10A patent/RU2531236C1/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
SU543260A1 (en) * | 1975-07-25 | 1984-04-15 | Всесоюзный Ордена Трудового Красного Знамени Научно-Исследовательский Противочумный Институт "Микроб" | Method for preparing cholera bacteriophages for differentiating el-tor vibrios into virulent and avirulent |
SU1671690A1 (en) * | 1989-08-16 | 1991-08-23 | Ростовский-На-Дону Государственный Научно-Исследовательский Противочумный Институт | Strain of phase vibrionis parahaemolitici for phagodiagnosis of parahemolytic vibrios serotype 05:k15 |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
JOHN A. BAROSS et al, Incidence of Vibrio parahaemolyticus Bacteriophages and Other Vibrio Bacteriophages in Marine Samples, APPLIED AND ENVIRONMENTAL MICROBIOLOGY, Sept. 1978, Vol. 36, No. 3, p. 492-499 * |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN108699532A (en) * | 2015-12-21 | 2018-10-23 | 尹特荣生物科技株式会社 | Novel vibrio parahaemolyticus phage Vib-PAP-2 and its for inhibit vibrio parahaemolytious be proliferated purposes |
CN108699532B (en) * | 2015-12-21 | 2022-08-23 | 尹特荣生物科技株式会社 | Vibrio parahaemolyticus bacteriophage Vib-PAP-2 and use thereof for inhibiting proliferation of Vibrio parahaemolyticus |
RU2729575C1 (en) * | 2019-12-12 | 2020-08-07 | Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Method for identification of cholera vibrio o1 serogroups of biovars classical and el tor |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2013112417A (en) | 2014-09-27 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Greenwood et al. | Rapid and definitive detection of Salmonella in foods by PCR | |
Odumeru et al. | Salmonella detection methods for food and food ingredients | |
CN104105795B (en) | The method for detecting Salmonella microorganisms | |
BRPI0517957B1 (en) | enrichment method, composition and kit for detecting a target microorganism in a sample | |
Blood et al. | Media for ‘total’Enterobacteriaceae, coliforms and Escherichia coli | |
RU2573934C2 (en) | Method for obtaining bacteriophage strain, specific strains of bacteriophages and their application | |
Zadernowska et al. | Detection of Salmonella spp. presence in food | |
Rodrigues et al. | Rapid detection of salmonellas in raw meats using a fluorescent antibody‐microcolony technique | |
RU2531236C1 (en) | Method of detecting microorganism of species vibrio parahaemolyticus | |
Harvey et al. | The examination of samples infected with multiple salmonella serotypes | |
Çelebi et al. | A comparative study of detecting Chlamydophila psittaci in pet birds using isolation in embryonated egg and polymerase chain reaction | |
Akhlaghi et al. | Development of a novel and specialized cultivation method for isolating Helicobacter pullorum from chicken meat | |
Shen et al. | An invasive species red-eared slider (Trachemys scripta elegans) carrying Salmonella pathogens in Hainan Island | |
Wang | Nucleic acid-based rapid methods for the detection of foodborne pathogens | |
Parvej et al. | Isolation and characterization of Salmonella enterica serovar typhimurium circulating among healthy chickens of Bangladesh | |
Whittemore | Research note: a modified most probable number technique to enumerate total aerobes, enterobacteriaceae, and Salmonella on poultry carcasses after the whole carcass rinse procedure | |
Shalaby et al. | Evaluating Flinders Technology Associates card for transporting bacterial isolates and retrieval of bacterial DNA after various storage conditions | |
RU2425877C1 (en) | BACTERIOPHAGE Escherichia coli V32 STRAIN FOR IDENTIFICATION OF Escherichia coli BACTERIA SEROGROUP O157 | |
Michael et al. | Evaluation of prevalence and antimicrobial resistance of Salmonella spp isolated from chicken eggs sold in Ilorin, Nigeria | |
Thong et al. | Development and evaluation of a Multiplex Polymerase Chain Reaction for the detection of Salmonella species. | |
Arachchillaya | Development and evaluation of a paper based biochemical sensor for realtime detection of food pathogen | |
RU2702707C2 (en) | Bacteriophage bacillus anthracis f112pre strain used for specific indication of anthrax agent | |
RU2460802C1 (en) | Method for identifying yersinia enterocolitica | |
Al-Rubaey et al. | Isolation and Molecular Detection of Salmonella Infantis from Milk and Children with Gastroenteritis in Babylon Province, Iraq | |
Renu et al. | Salmonella occurrence in chicken eggs and environmental samples and their sero-prevalence in laying hens |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20180320 |