TW202319534A - 易於萃取細胞中之油的新穎裂殖壺菌屬物種（Schizochytrium sp.）品系及使用其生產含ω-3之油的方法 - Google Patents

易於萃取細胞中之油的新穎裂殖壺菌屬物種（Schizochytrium sp.）品系及使用其生產含ω-3之油的方法 Download PDF

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Abstract

本申請案係關於一種易於萃取細胞中之油的新穎裂殖壺菌屬物種品系及一種使用其生產含ω3之油的方法，且本發明之新穎破囊壺菌系列微藻在生物質中具有高脂肪含量且其中具有高含量之不飽和脂肪酸，諸如二十二碳六烯酸及二十碳五烯酸，且極易於自生物質萃取藉由自身或藉由培養及醱酵所產生之生物質及包括不飽和脂肪酸之脂肪組分。因此，該微藻、生物質乾燥產物及自其產生之生物油可有效地用作用於飼料之組成物或用於食品之組成物或其類似物。

Description

易於萃取細胞中之油的新穎裂殖壺菌屬物種（Schizochytrium　sp.）品系及使用其生產含ω-3之油的方法
與相關申請案之交叉參考
本申請案主張基於2021年11月08日申請之韓國專利申請案第10-2021-0152560號的優先權，且揭示於對應韓國專利申請案之文件中的全部內容作為本說明書之一部分以引用之方式併入。
本發明係關於一種易於萃取細胞中之油的新穎裂殖壺菌屬物種（ Schizochytriumsp.）品系及一種使用其生產含ω3之油的方法。
破囊壺菌（Thraustochytrid）在自然界之各種環境中存活及分佈。其藉由附著至生物體而以共生關係生存，漂浮於海洋環境或淡水或半鹹水環境中，且分佈於各種沈積層中存活。此等破囊壺菌屬於海洋生態食物鏈之最低層，且亦歸類為作為浮游植物之有機異養原生生物微藻（microalgae）。自然環境中之破囊壺菌在功能上負責自然循環元素（諸如硫、氮、磷、鉀及其類似物）之循環及純化。此外，其含有高濃度之多不飽和脂肪酸（polyunsaturated fatty acid，PUFA）以充當海洋生態系統之來源，該多不飽和脂肪酸包括歸類為ω-3之二十二碳六烯酸（docosahexaenoic acid，DHA）及二十碳五烯酸（eicosapentaenoic acid，EPA）。
包括人類之大部分高級生物體本身無法合成包括二十二碳六烯酸及二十碳五烯酸之多不飽和脂肪酸，因此必須將其作為必需養分食用。多不飽和脂肪酸當中的二十二碳六烯酸及二十碳五烯酸為腦、眼組織及神經系統所必需的脂肪酸，且特定言之，已知其在嬰兒之神經系統（諸如視力及運動神經能力）發育及預防心血管疾病方面起重要作用，且其為腦結構脂質中最豐富的組分。
迄今為止，多不飽和脂肪酸之主要來源為自鯵魚類之油中萃取的魚油，該鯵魚類諸如鯖魚、秋刀魚、鮪魚、鯵魚、沙丁魚、鯡魚及其類似物，且此極適用作用於海水魚之魚類養殖飼料，諸如開口餌料（initial feed）。儘管已在工業上研發自魚油萃取及攝入多不飽和脂肪酸，但亦存在缺點。魚油之品質視魚類物種、季節及捕魚地點而變化，且魚油係經由捕魚產生的，因此其難以連續供應。另外，由於魚油中所包含之重金屬及有機化學物質之污染問題、在加工過程期間雙鍵氧化之問題以及魚油所特有之魚腥味及其類似問題，在製造過程及生產中存在侷限性。
為解決此等問題，近來，正進行關於藉由微生物培養生產包括二十二碳六烯酸及二十碳五烯酸之多不飽和脂肪酸之方法的研究。特定言之，除能夠天然地新合成脂肪酸之外，微藻亦可提供優於魚油之若干優勢。其可經由以工業規模進行培養來穩定地供應，且其使得能夠產生具有相對恆定生化組成之生物質。不同於魚油，由微藻產生之脂質不會具有任何令人不適的氣味。此外，其具有與魚油相比更簡單的脂肪酸組成，此有助於分離主要脂肪酸之步驟。
基於此等優勢，近來，關於多不飽和脂肪酸之生產的研究及工業化正極其快速地推進，該多不飽和脂肪酸包含ω-3不飽和脂肪酸（ω不飽和脂肪酸），諸如二十二碳六烯酸（DHA）、二十碳五烯酸（EPA）、二十碳四烯酸（arachidonic acid，ARA）、二十二碳五烯酸（docosapentaenoic acid，DPA）及α-次亞麻油酸及其類似物，且該等研究及工業化主要係由破囊壺菌屬物種（ Thraustochytriumsp.）及裂殖壺菌屬物種微生物生產多不飽和脂肪酸，該等微生物為一種海洋微藻。舉例而言，揭示了一種用於使用裂殖壺菌屬物種ATCC20888及裂殖壺菌屬物種PTA10208（其為裂殖壺菌屬物種微生物）生產ω-3多不飽和脂肪酸之方法（美國專利第5,130,242號）及另外，一種用於使用破囊壺菌屬物種ATCC10212（破囊壺菌屬物種PTA10212）（其為破囊壺菌系列破囊壺菌屬物種微生物）生產二十二碳六烯酸及二十碳五烯酸之方法。
[技術難題]
本發明之一個具體實例提供一種新穎裂殖壺菌屬物種微藻。在一個特定具體實例中，新穎裂殖壺菌屬物種微藻可為裂殖壺菌屬物種CD01-2147微藻（寄存編號KCTC14661BP）。
本發明之另一具體實例提供衍生自裂殖壺菌屬物種微藻之生物質或生物油。
本發明之其他具體實例提供一種飼料組成物，其包含裂殖壺菌屬物種微藻衍生之生物質、生物油或其組合。
本發明之其他具體實例提供一種食品組成物，其包含裂殖壺菌屬物種微藻衍生之生物質、生物油或其組合。
本發明之其他具體實例提供一種用於生產衍生自裂殖壺菌屬物種微藻之生物質或生物油的方法。
本發明之其他具體實例提供一種用於生產裂殖壺菌屬物種微藻之生物質或生物油的用途。
本發明之其他具體實例提供一種用於生產裂殖壺菌屬物種微藻之飼料組成物或食品組成物的用途。 [技術解決方案]
本申請案中所揭示之各描述及具體實例可應用於其他描述及具體實例中之各者。換言之，本申請案中所揭示之各種要素的所有組合均屬於本發明之範圍內。另外，可發現本發明之範圍不受下文所描述的詳細描述限制。此外，所屬技術領域中具有通常知識者將僅使用常見實驗識別或確認本申請案中所描述之本發明之特定態樣的許多等效物。另外，此類等效物意欲包括於本發明中。
本發明之一個具體實例提供一種新穎裂殖壺菌屬物種微藻。
本說明書中所用之術語「破囊壺菌（Thraustochytrid）」意謂破囊壺菌目（order Thraustochytriales）微藻。另外，本說明書中所用之術語「裂殖壺菌屬物種（ Schizochytriumsp.）」為屬於破囊壺菌目之破囊壺菌科（family Thraustochytriaceae）的屬名稱中之一者，且可與術語「裂殖壺菌屬物種（裂殖壺菌屬）（ Schizochytriumsp. (genus Schizochytrium)）」互換使用。此外，術語「微藻（microalgae）」意謂無法用裸眼看到且僅可經由顯微鏡在具有葉綠素之光合植物中看到且在水中以自由浮動方式生存的生物體，且亦稱為浮游植物。存在各種類型之微藻，且由於光合成係不可能的，因此甚至包括僅經由異養生長之品系。
作為本申請案中之一個具體實例，將伽瑪射線照射至野生型裂殖壺菌屬物種CD01-1821品系以引起突變，且在突變型品系當中選擇具有增強的生產含多不飽和脂肪酸之油的能力的品系，且將此命名為裂殖壺菌屬物種CD01-2147，且於2021年8月23日寄存至韓國生物科學與生物技術研究所（Korea Research Institute of Bioscience and Biotechnology）之韓國菌種保藏中心（Korea Collection for Type Culture，KCTC）（其為布達佩斯條約下之國際寄存機構）且被指定為寄存編號KCTC14661BP。
因此，在本說明書中，新穎裂殖壺菌屬物種微藻可為裂殖壺菌屬物種CD01-2147微藻（寄存編號KCTC14661BP）。
另外，野生型裂殖壺菌屬物種品系可具有SEQ ID NO: 1之18s rRNA核苷酸序列，但不限於此。舉例而言，裂殖壺菌屬物種微藻可具有18S rRNA，其由展示與SEQ ID NO: 1之核苷酸序列具有80%或更高、85%或更高、90%或更高、95%或更高、98%或更高或99%或更高之序列一致性的核苷酸序列組成，但不限於此。
本說明書中所用之術語「二十二碳六烯酸（docosahexaenoic acid，DHA）」為具有C 22H 32O 2之化學式的多不飽和脂肪酸中之一者，且對應於ω-3脂肪酸以及α-次亞麻油酸（α-次亞麻油酸（α-linolenic acid）：ALA）及二十碳五烯酸（eicosapentaenoic acid，EPA），且常見名稱為二十二碳六烯酸（cervonic acid），且其亦可表達為呈縮寫形式之22:6 n-3。
本說明書中所用之術語「二十碳五烯酸（eicosapentaenoic acid，EPA）」為具有C 20H 30O 2之化學式的多不飽和脂肪酸中之一者，且對應於ω-3脂肪酸以及ALA及DHA，且其亦可表達為呈縮寫形式之20:5 n-3。
按脂肪酸之總重量計，裂殖壺菌屬物種微藻可生產及/或包含35重量%至60重量%之DHA。舉例而言，以脂肪酸之總重量計，裂殖壺菌屬物種微藻可生產40重量%至60重量%、45重量%至60重量%、50重量%至60重量%、35重量%至58重量%、40重量%至58重量%、45重量%至58重量%或48重量%至52重量%之DHA。
按脂肪酸之總重量計，裂殖壺菌屬物種微藻可生產及/或包含0.1重量%至2重量%之EPA。舉例而言，以脂肪酸之總重量計，裂殖壺菌屬物種微藻可產生0.2重量%至2重量%、0.2重量%至1.5重量%、0.2重量%至1重量%、0.3重量%至2重量%、0.3重量%至1.5重量%、0.3重量%至1重量%、0.4重量%至2重量%、0.4重量%至1.5重量%、0.4重量%至1重量%或0.4重量%至0.7重量%之EPA。
裂殖壺菌屬物種CD01-2147微藻可由麩胺酸、苯丙胺酸、離胺酸、丙胺酸、纈胺酸、精胺酸、甲硫胺酸、天冬胺酸、甘胺酸、白胺酸、異白胺酸及絲胺酸構成。
本發明之另一態樣提供衍生自裂殖壺菌屬物種微藻之生物質或生物油，其包含裂殖壺菌屬物種微藻、微藻之培養物、培養物之乾燥產物或乾燥產物之溶胞產物。
裂殖壺菌屬物種微藻之描述如上文所描述。
本說明書中所使用之術語「生物質（biomass）」意謂生質能之能量來源，亦即活機體，諸如植物、動物、微生物及其類似者，且亦意謂生態學上單位時間及空間中存在之特定活機體之重量或能量的量。另外，生物質包含細胞所分泌之化合物，但不限於此，且可含有細胞及/或細胞中之內含物以及細胞外材料。在本申請案中，生物質可為裂殖壺菌屬物種微藻本身、其培養物、其乾燥產物、其溶胞產物或藉由培養或醱酵微藻產生之產物，或可為生物質之濃縮物或乾燥產物，但不限於此。
裂殖壺菌屬物種微藻之「培養物」係指藉由培養微藻產生之產物，且具體言之，其可為包含微藻之培養溶液或自培養溶液移除微藻之培養物濾液，但不限於此。裂殖壺菌屬物種微藻（microalgal）培養物之「乾燥產物」自微藻培養物移除水分，且例如其可呈微藻之乾燥微生物細胞形式，但不限於此。此外，乾燥產物之「溶胞產物（lysate）」統稱為對自微藻培養物移除水分之乾燥產物進行裂解的結果，且例如其可為乾燥微生物細胞粉末，但不限於此。可根據所屬技術領域中已知之培養方法，藉由將微藻接種至微藻培養基來製備裂殖壺菌屬物種微藻之培養物，且培養物之乾燥產物及其溶胞產物亦可根據所屬技術領域中已知之用於加工或乾燥微藻或培養溶液之方法來製備。
衍生自裂殖壺菌屬物種微藻之生物質可包含以生物質之總重量計40重量%至85重量%、45重量%至80重量%、50重量%至75重量%、50重量%至70重量%、54重量%至66重量%之粗脂肪。
衍生自裂殖壺菌屬物種微藻之生物質可包含按生物質之總重量計1重量%至20重量%、3重量%至17重量%、5重量%至15重量%或7重量%至13重量%之粗蛋白質。
衍生自裂殖壺菌屬物種微藻之生物質可包含以脂肪酸之總重量計35重量%或更多或35重量%至60重量%之DHA，且可包含以脂肪酸之總重量計0.1重量%或更多或0.1重量%至2重量%之EPA，且可包含以脂肪酸之總重量計30重量%至40重量%或更多之棕櫚酸。
衍生自裂殖壺菌屬物種微藻之生物質可具有以生物質之總重量計55%至95%、55%至90%、57%至88%或59%至88%之油回收率，但不限於此。
油回收率可藉由處理蛋白酶、纖維素酶、果膠酶或殼質酶來量測，且較佳可藉由處理鹼性蛋白酶來量測，但不限於此。
在本說明書中，油回收率意謂在胞內油含量（亦即，粗脂肪含量）中經由實驗萃取油時可萃取之油的量。
「粗脂肪含量」可與「粗脂肪量」或「總脂質」或「總脂肪酸」或「TFA」或「油含量」互換使用。
生物質可藉由根據一個態樣之衍生自裂殖壺菌屬物種微藻之生物質的製備方法製備。
本申請案之其他態樣提供一種組成物，其包含裂殖壺菌屬物種CD01-2147微藻、微藻之培養物、培養物之乾燥產物或乾燥產物之溶胞產物。
組成物可包含裂殖壺菌屬物種微藻衍生之生物質、生物油或其組合。
本發明之其他態樣提供一種飼料組成物，其包含衍生自裂殖壺菌屬物種CD01-2147微藻之生物質、或該生物質之濃縮物或乾燥產物。
裂殖壺菌屬物種微藻、生物質、微藻之培養物、培養物之乾燥產物及乾燥產物之溶胞產物之描述如上文所描述。
生物質之濃縮物或乾燥產物可根據所屬技術領域中已知之用於微生物生物質之處理、濃縮或乾燥的方法製備。
本說明書中所用之術語「生物油（bio-oil）」意謂藉由生物、熱化學及物理化學萃取方法自生物質獲得之油，且在本申請案中，所製備之生物油可含有多不飽和脂肪酸，且特定言之，可含有DHA及EPA，但不限於此。
在本說明書中，生物油可包含生物質萃取物。
作為用於製備生物油萃取物之方法，可使用根據用於裂解或溶解細胞膜或細胞壁組分之方法利用酶（諸如蛋白酶、纖維素酶、果膠酶或殼質酶或其類似物）之方法；用於使用均質機、超音波處理器、珠粒處理及其類似物以物理方式裂解細胞膜或細胞壁組分之方法；用於藉由直接添加溶劑藉由胞內滲透萃取之方法；在各種裂解過程之後經由離心過程進行分離之無溶劑萃取方法及其類似方法，但不限於此。
組成物可呈溶液、粉末或懸浮液之形式，但不限於此。組成物可為例如食品組成物、飼料組成物或飼料添加劑組成物。
本說明書中所用之術語「飼料組成物（feed composition）」係指飼餵至動物之食物。飼料組成物係指供應用於維持動物壽命或產生肉、牛奶及其類似物所需之有機或無機養分的物質。飼料組成物可進一步包含用於維持動物壽命或產生肉、牛奶及其類似物所需之營養組分。飼料組成物可製備為所屬技術領域中已知之各種類型的飼料，且特定言之，可包含濃縮飼料、粗飼料及/或專用飼料。
本說明書中所用之術語「飼料添加劑（feed additive）」包括出於各種效應之目的添加至飼料中的物質，該等效應諸如養分補充及防止體重減輕、增加飼料中纖維之可消化性、改良油品質、預防生殖病症及提高生育率、預防夏季高溫應激及其類似效應。本申請案之飼料添加劑對應於飼料管理法案（Feed Management Act）下之補充飼料，且可進一步包含礦物質製劑，諸如碳氫化鈉（sodium hydrocarbon）、膨土、氧化鎂、複合礦物及其類似物；作為痕量礦物質之礦物製劑，諸如鋅、銅、鈷、硒及其類似物；維生素製劑，諸如角蛋白、維生素E，維生素A、D及E，菸鹼酸、維生素B複合物及其類似物；保護性胺基酸製劑，諸如甲硫胺酸、離胺酸及其類似物；保護性脂肪酸製劑，諸如脂肪酸鈣鹽及其類似物；活細胞；及酵母劑，諸如益生菌（細菌製劑）、酵母培養物、模具醱酵產物及其類似物。
本說明書中所用之術語「食品組成物」包括功能性食品、營養補充劑、健康食品及食品添加劑及其類似物之所有形式，且以上類型之食品組成物可根據所屬技術領域中已知之常見方法以各種形式製備。
本申請案之組成物可進一步包含：穀粒，諸如經研磨或壓碎之小麥、燕麥、大麥、玉米及稻米；植物蛋白質飼料，例如具有大豆及向日葵作為主要組分之飼料；動物蛋白質飼料，例如血粉、肉粉、骨粉及魚粉；糖及乳製品，例如由各種粉末狀奶粉及乳清粉末組成之乾燥組分，且除此之外，可進一步包含營養補充劑、消化及吸收增強劑、生長促進劑及其類似物。
本申請案之組成物可單獨投予或與可食用載劑當中之其他飼料添加劑組合投予。另外，組成物可直接混合作為追肥（top dressing）或飼餵或易於以分開的口服調配物形式投予以飼餵至動物中。當組成物分開投予以飼餵時，其可作為中間釋放或持續釋放調配物，以同樣所屬技術領域中已知之醫藥學上可接受之可食用載劑的組合形式來製備。此可食用載劑可為固體或液體，例如玉米澱粉、乳糖、蔗糖、大豆片、花生油、橄欖油、芝麻油以及丙二醇。當使用固體載劑時，組成物可為呈錠劑、膠囊、散劑、糖衣錠或口含錠或不可分散形式之追肥。當使用液體載劑時，組成物可為明膠軟膠囊或糖漿或懸浮液、乳液或溶液之調配物。
本申請案之組成物可含有例如防腐劑、穩定劑、潤濕劑或乳化劑、低溫保護劑或賦形劑或其類似物。低溫保護劑可為選自由以下者組成之群的一或多者：甘油、海藻糖、麥芽糊精、脫脂乳粉及澱粉。
防腐劑、穩定劑或賦形劑可以足以降低組成物中所包含之裂殖壺菌屬物種微藻之劣化的有效劑量包含於組成物中。另外，當組成物呈乾燥狀態時，低溫保護劑可以足以降低組成物中所包含之裂殖壺菌屬物種微藻之劣化的有效劑量包含於組成物中。
組成物可藉由沈積、噴塗或混合添加至動物飼料中來使用。
本發明之組成物可施加至各種動物飲食，包括哺乳動物、鳥類、魚類、甲殼動物、頭足類動物、爬行動物及兩棲動物，但不限於此。舉例而言，哺乳動物可包括豬、母牛、綿羊、山羊、實驗嚙齒動物或寵物，且鳥類可包括家禽，且家禽可包括雞、火雞、鴨、鵝、野雞或鵪鶉或其類似物，但不限於此。此外，魚類可包括商業家畜魚及其魚苗、觀賞魚及其類似物，且甲殼動物可包括蝦、藤壺及其類似物，但不限於此。此外，組成物可施加至浮游動物輪蟲之飲食。
本發明之其他態樣提供一種用於生產衍生自裂殖壺菌屬物種微藻之生物質的方法，其包含培養裂殖壺菌屬物種CD01-2147微藻；及自微藻、其乾燥產物或其溶胞產物回收含有二十二碳六烯酸之生物質。
裂殖壺菌屬物種微藻、生物質、微藻之培養物、培養物之乾燥產物及乾燥產物之溶胞產物之描述如上文所描述。
本說明書中所用之術語「培養物（culture）」意謂使微藻在經適當控制之環境條件下生長。本申請案之培養方法可根據所屬技術領域中已知之合適的培養基及培養條件進行。此培養方法可易於由所屬技術領域中具有通常知識者根據所選擇之微藻來調整及使用。
特定言之，本申請案之裂殖壺菌屬物種微藻之培養可在異養條件（但不限於此）下進行。
本說明書中所用之術語「異養（heterotrophic）」為視獲自體外能量來源或養分來源的有機物而定的營養方法，且為與自養對應的術語，且其可與術語『暗培養（dark culture）』互換使用。
培養裂殖壺菌屬物種微藻不特定限於此，但可藉由已知分批培養方法、連續培養方法、分批進料培養方法以及其類似方法進行。本申請案之微藻的培養中所用的任何培養基及其他培養條件可在無特定限制之情況下使用，只要其為用於培養常見微藻之培養基即可。特定言之，本申請案之微藻可藉由在好氧條件下在含有適合碳源、氮源、磷源、無機化合物、胺基酸及/或維生素及其類似物之常見培養基中調節溫度、pH及其類似者來培養。
特定言之，可使用鹼性化合物（例如：氫氧化鈉、氫氧化鉀或氨）或酸性化合物（例如：磷酸酯或硫酸酯）調節適當pH（例如，pH 5至9，特定言之，pH 6至8，最特定言之，pH 6.8），但不限於此。
另外，為了維持培養之好氧條件，可將氧氣或含氧氣體注入培養物中，或為了維持厭氧及微好氧條件，可在不注入氣體的情況下注入氮氣、氫氣或二氧化碳，但不限於此。
此外，培養溫度可維持在20至45℃或25至40℃，且可培養約10至160小時，但不限於此。另外，在培養期間，可使用諸如脂肪酸聚乙二醇酯之消泡劑以抑制氣泡形成，但不限於此。
用於培養裂殖壺菌屬物種微藻之培養基中所包含的碳源可為選自由以下者組成之群中之任何一或多者：葡萄糖、果糖、麥芽糖、半乳糖、甘露糖、蔗糖、阿拉伯糖、木糖及甘油，但用於培養微藻之任何碳源不限於此。
用於培養裂殖壺菌屬物種微藻之培養基中所包含的氮源可為：（i）選自由酵母萃取物、牛肉萃取物、蛋白腖（peptone）及胰腖（tryptone）組成之群的任何一或多種有機氮源，或ii）選自由乙酸銨、硝酸銨、氯化銨、硫酸銨、硝酸鈉、尿素及麩胺酸單鈉（Monosodium glutamate，MSG）組成之群的任何一或多種無機氮源，但任何用於培養微藻之氮源不限於此。
用於培養裂殖壺菌屬物種微藻之培養基可分別包含或混合且包含磷酸二氫鉀、磷酸氫二鉀作為磷源及其對應之含鈉鹽及類似物，但不限於此。
使用所屬技術領域中已知之適當方法自微藻、微藻培養物、培養物之乾燥產物或乾燥產物之溶胞產物回收生物質可收集目標生物質。舉例而言，可使用離心、過濾、陰離子交換層析、結晶及HPLC及其類似者，且其可進一步包含純化方法。
本發明之其他態樣提供一種用於生產衍生自裂殖壺菌屬物種微藻之生物油的方法，其包含培養裂殖壺菌屬物種CD01-2147微藻；及自微藻、其乾燥產物或其溶胞產物回收含有二十二碳六烯酸之生物質。
裂殖壺菌屬物種微藻、生物油、微藻之培養物、培養物之乾燥產物及乾燥產物之溶胞產物以及培養微藻之描述如上文所描述。
使用所屬技術領域中已知之適當方法自微藻、微藻培養物、培養物之乾燥產物或乾燥產物之溶胞產物回收脂質可收集目標脂質。舉例而言，可使用離心、過濾、陰離子交換層析、結晶及HPLC及其類似者，且其可進一步包含純化方法。
舉例而言，脂質及脂質衍生物，諸如脂肪醛、脂肪醇及烴（例如烷烴）可用疏水性溶劑，諸如己烷萃取。亦可使用液化、油液化及超臨界CO 2萃取之方法及其類似方法萃取脂質及脂質衍生物。另外，已知的微藻脂質回收方法包括例如以下方法：i）藉由離心收穫細胞及用蒸餾水洗滌，且接著藉由冷凍乾燥進行乾燥，及ii）粉碎所得細胞粉末，且接著用正己烷萃取脂質（Miao, X及Wu, Q, Biosource Technology (2006) 97:841-846）。
本發明之其他態樣提供一種用途，其用於自裂殖壺菌屬物種CD01-2147微藻、微藻之培養物、培養物之乾燥產物或乾燥產物之溶胞產物中生產生物質或生物油。
裂殖壺菌屬物種微藻、生物質、微藻培養物、培養物之乾燥產物及乾燥產物之溶胞產物如上文所描述。
本發明之其他具體實例提供一種用途，其用於自裂殖壺菌屬物種CD01-2147微藻、微藻培養物、培養物之乾燥產物或乾燥產物之溶胞產物中生產飼料組成物或食品組成物。
裂殖壺菌屬物種微藻、生物質、微藻培養物、培養物之乾燥產物及乾燥產物之溶胞產物如上文所描述。 [有利功效]
本發明之新穎破囊壺菌系列微藻在生物質中具有高脂肪含量且其中具有高含量之不飽和脂肪酸，諸如二十二碳六烯酸及二十碳五烯酸，且極易於自生物質萃取藉由自身或藉由培養及醱酵所產生之生物質及包括不飽和脂肪酸之脂肪組分。因此，該微藻、生物質乾燥產物及自其產生之生物油可有效地用作用於飼料之組成物或用於食品之組成物或其類似物。
在下文中，將藉由實施例更詳細地描述本發明。然而，此等實施例意欲說明性地描述一或多個特定具體實例，且本發明之範圍不受此等實施例限制。 實施例 1. 破囊壺菌系列微藻之分離
為分離破囊壺菌系列微藻，自沿著韓國西海岸區域、Seocheon、Gunsan、Buan及Yeonggwang-gun區域之總共40個區域收集呈海水、葉子及沈積物形式之環境樣品。以產生及觀測到有機沈積物之特定區域為中心進行取樣，且將所收集之環境樣品在7天內輸送至實驗室環境，且進行用於移除除破囊壺菌系列微藻以外之其他污染源（諸如細菌微生物及真菌及原生生物）的操作。經由連續顯微鏡檢查，聚焦於顯示出特徵形態且在生命週期內形成可觀測到之游走孢子或構成在發育階段期間所產生之外質網狀結構的樣品，來分離出破囊壺菌系列微藻細胞（圖1）。作為分離製程中可使用之分離及培養培養基，利用經改良之YEP培養基（酵母萃取物0.1 g/L、蛋白腖0.5 g/L、MgSO 4·7H 2O 2 g/L、海鹽50 g/L、H 3BO 35.0 mg/L、MnCl 23.0 mg/L、CuSO 40.2 mg/L、NaMo 4·2H 2O 0.05 mg/L、CoSO 40.05 mg/L、ZnSO 4·7H 2O 0.7 mg/L、瓊脂15 g/L）。可獲得經由若干次分離及繼代培養過程移除污染源之純的經分離群落，且將經分離群落再次在包括抗生素調配混合溶液（硫酸鏈黴素0-50 mg/L、安比西林（Ampicillin）0-30 mg/L、青黴素G 0-30 mg/L、硫酸康黴素（Kanamycin sulfate）0-30 mg/L）之固體培養基中進行污染源控制及移除過程，且藉此獲得純的可分離群落。 實施例 2. 經分離微藻之培養評估及優異品系選擇
針對實施例1中之純的經分離群落進行培養評估，且經由此選擇優異品系。
特定言之，使用經改良之GGYEP培養基（葡萄糖5 g/L、甘油5 g/L、酵母萃取物0.1 g/L、蛋白腖0.5 g/L、MgSO 4·7H 2O 2 g/L、海鹽50 g/L、H 3BO 35.0 mg/L、MnCl 23.0 mg/L、CuSO 40.2 mg/L、NaMo 4·2H 2O 0.05 mg/L、CoSO 40.05 mg/L、ZnSO 4·7H 2O 0.7 mg/L）在250 mL燒瓶中在10-35℃、100-200 rpm之條件下培養實施例1中之純的經分離群落約2天。基於已進行的培養的結果，選擇29種可在30℃或更高的溫度下生長，且具有極佳生長速率且可確保微生物細胞量之微藻。對於所選擇之微藻品系，在經改良GYEP培養基中以500 mL燒瓶規模培養2天，該培養基包括30 g/L葡萄糖作為碳源，且培養條件為30℃、150rpm。在確認所有輸入碳源在培養環境中被消耗2天後，回收全部培養溶液且在60℃之乾燥烘箱中乾燥隔夜以獲得生物質。
為了分析經培養微藻微生物細胞之脂質及多不飽和脂肪酸含量，使用如下方法，且微藻衍生之利用經乾燥微生物細胞之含脂肪酸油係藉由以下方法來量測。方法為，將8.3 M鹽酸溶液（HCl）添加至5 g乾燥微生物細胞，且接著在80℃下水解微藻微生物細胞之細胞壁，且接著添加乙基醚30 mL及石油醚20 mL且混合30秒，且接著重複離心3次或更多次。回收經分離之溶劑層，且轉移至預稱重之圓底燒瓶中，且接著經由氮氣吹掃移除溶劑，且在乾燥器中冷卻為恆重。藉由在乾燥之後藉由自燒瓶之重量減去空燒瓶之重量來量測經乾燥油之重量，計算總油含量。藉由用甲醇0.5N NaOH及14%三氟硼烷甲醇（BF 3）預處理且藉由氣相層析法量測展示油中所包含之二十二碳六烯酸（DHA）之含量。 [計算公式1] 總油含量（%）=（*油g/經乾燥微生物細胞量g）×100 *油g：在酸水解及溶劑移除之後的燒瓶重量-球形燒瓶重量
下表1之「生物質」意指培養溶液中微生物細胞之濃度，且其可與下表2之細胞乾重（dry cell weight，DCW）互換使用。 [表1]
   總油（%/生物質） 脂肪酸含量（%/TFA）
DHA EPA
1811 40.01 19.46 1.72
1812 36.03 17.90 1.80
1813 34.21 19.40 2.10
1814 38.67 18.90 1.98
1815 28.89 17.90 2.92
1816 23.84 17.64 3.38
1821 31.53 57.25 0.71
1822 43.18 58.68 0.53
1831 29.80 29.38 1.98
1832 31.50 33.35 1.61
1833 22.36 37.26 2.83
1834 23.44 36.12 2.22
1835 39.03 29.85 0.70
1836 21.73 35.77 2.76
1837 18.39 33.30 2.96
1838 19.81 38.77 2.76
1839 20.76 37.91 3.06
18310 20.65 39.93 2.85
18311 22.96 40.17 2.70
18312 18.26 39.27 3.31
18313 21.99 36.68 2.69
1841 26.33 19.40 1.06
1842 35.53 21.75 1.38
1843 34.83 18.67 1.02
1844 29.74 23.92 1.65
1845 33.23 19.89 0.89
1846 28.23 20.63 1.13
1847 31.37 18.56 0.91
1848 30.51 42.74 1.06
1849 29.19 20.46 1.50
18410 24.63 25.17 1.84
18411 21.93 25.75 1.96
（在該表中，TFA意謂總脂肪酸，且可與「粗脂肪含量」或「粗脂肪量」或「總脂質」互換使用。）
因此，如表1及圖2中所示，展示2種CD01-1821及CD01-1822品系中的胞內DNA含量極高。
作為脂肪酸分析之結果，在5L規模培養基中針對具有極佳胞內DNA含量之2種CD01-1821、CD01-1822品系進行培養評估。對於種菌培養，將其在500 mL燒瓶中在30℃、150 rpm之條件下使用滅菌MJW02培養基（葡萄糖30 g/L、MgSO 4·7H 2O 3.0 g/L、Na 2SO 415 g/L、NaCl 0.8 g/L、酵母萃取物1.0 g/L、MSG ·1H 2O 1.0 g/L、NaNO 31.0 g/L、KH 2PO 40.8 g/L、K 2HPO 41.5 g/L、CaCl 20.5 g/L、維生素混合溶液10 ml/L）培養約24小時。將種菌培養之燒瓶等分且接種於5L培養基中。供應與總培養溶液相比28%之葡萄糖碳源且進行培養約72小時，且在滅菌MJW02培養基中在30℃、500 rpm、1.5 vvm、pH 5-8之培養環境條件下進行培養。 [表2]
   裂殖壺菌屬物種 CD01-1821 裂殖壺菌屬物種 CD01-1822
培養時間（小時） 71.5 71.5
O.D （ 680nm ） 154.2 103
DCW （ g/L ） 139.5 103
粗脂肪含量 （ % ） 58.6 49.7
因此，如表2中所示，證實CD01-1821品系更適用於按比例擴大方法（scale-up process），因為該品系在相同醱酵條件下具有高於CD01-1822品系之總生物質產量及粗脂肪量。因此，選擇CD01-1821品系且將其用於品系序列鑑別及額外品系研發。使用光學顯微鏡觀測所選擇之CD01-1821品系之類型且展示於圖3中。 實施例 3. 複合碳源條件下 CD01-1821 品系之培養特徵的確認
在基於異養微生物之醱酵中，葡萄糖組分主要用作碳源之原料。此時，葡萄糖為呈90%或更高之精製形式的單醣，且在工業規模醱酵期間產生的成本高於其他碳源原料組分。為了利用廉價碳源原料且經由其獲得價格競爭力，重要的是發現一種可用於藉由微生物醱酵且可通常自廉價碳源組分而非純化葡萄糖培養的品系。
因此，針對實施例2中所選擇之CD01-1821品系及CJM01（KR 10-2100650 B1）品系在具有葡萄糖、果糖或蔗糖作為主要組分之粗糖中進行醱酵培養評估以確認培養特徵。在30L培養基中進行培養，且基於經改良之MJW02培養基，分別用包含以下者之粗糖溶胞產物進行實驗：葡萄糖450 g/L；葡萄糖225 g/L及果糖225 g/L之混合物；葡萄糖225 g/L、果糖220 g/L及硫酸鹽1.51 g/L。培養條件設定為與30℃、500 rpm、1.5 vvm、pH 5-8之條件相同，且分別供應總培養溶液之35%的碳源。 [表3]
   裂殖壺菌屬物種 CD01-1821 破囊壺菌屬物種 CJM01
碳源 葡萄糖 葡萄糖 + 果糖混合物 粗糖 （ 蔗糖 ） 溶胞產物 葡萄糖 葡萄糖 + 果糖混合物 粗糖（蔗糖）溶胞產物
培養時間（小時） 54.7 56.1 7.3 60 66.83 83.3
O.D （ 680nm ） 169.3 143.7 177.9 152.7 180.4 155.7
DCW （ g/L ） 163 160 161 130 150 138
粗脂肪量 （ % ） 60.7 60.1 60.3 61.2 61.7 59.3
因此，如表3中所示，CD01-1821品系展示在醱酵中在果糖混合物或粗糖溶胞產物培養基條件而非葡萄糖單組分下在等同或更高含量下之總生物質產量及粗脂肪量。另一方面，當培養基中添加除葡萄糖組分以外之糖組分時，CJM01品系展示雙重碳源消耗及細胞生長模式之雙期生長形式，且展示總培養時間延長之現象。經由對應的實驗結果，可確認CD01-1821品系在複合碳源條件下具有按比例擴大醱酵之可能性。 實施例 4. 新穎裂殖壺菌屬物種品系 CD01-1821 之鑑別
對於實施例1及實施例2中之經分離及選擇之微藻品系CD01-1821之生物分子鑑別，分析18S rRNA基因序列。
特定言之，在自純的經分離微藻CD01-1821之群落萃取及分離gDNA之後，使用引子18s-Fwd、LABY-ARev進行PCR擴增反應以用於表4中所述之18s rRNA區域之基因擴增。 [表4]
SEQ ID NO: 引子 序列（ 5' - 3' ）
2 18S-Fwd AAC CTG GTT GAT CCT GCC AGT
3 LABY-ARev GGG ATC GAA GAT Are TAG
對於PCR反應，使用含有taq聚合酶之反應溶液，在95℃下進行變性5分鐘；且接著在95℃下變性30秒、在50℃下黏合30秒且在72℃下聚合2分鐘，重複35次；且接著在72℃下進行聚合反應5分鐘。經由PCR方法擴增之反應溶液在1%瓊脂糖凝膠中進行電泳，且藉此，確認約1000 bp大小之DNA片段經擴增，且進行核苷酸序列定序分析。作為分析之結果，經確認，經由NCBI BLAST搜尋，所獲得之對應序列展示與屬於破囊壺菌科（family）系列微藻之蛞蝓形裂殖壺菌（ Schizochytrium limacinum）品系OUC109之18S rRNA基因序列的95.11%同源性，且展示與裂殖壺菌屬物種之裂殖壺菌屬物種品系LY-2012之18S rRNA基因序列的95.0%同源性。經由此，確認經分離之微藻CD01-1821為新穎裂殖壺菌屬物種品系，且命名為裂殖壺菌屬物種CD01-1821品系，且於2021年8月23日寄存於韓國生物科學與生物技術研究所之韓國菌種保藏中心（KCTC）且指定為寄存編號KCTC14660BP。 實施例 5. 突變型微藻品系之研發 實施例 5-1. 量測根據伽瑪射線照射之死亡率
為自實施例4中所分離之野生型微藻品系（裂殖壺菌屬物種CD01-1821）產生人工突變型品系，選擇根據伽瑪射線劑量及伽瑪射線照射條件之死亡率。
特定言之，將新穎微藻CD01-1821在分別包含葡萄糖及甘油（5 g/L）之經改良GGYEP培養基中培養約10小時。將當前時段確定為早期指數期，在該早期指數期中主要出現且分佈破囊壺菌系列微藻之獨特生命週期中所觀測到的游走孢子，且為進行更高效的基因突變，獲得且使用對應時段之細胞培養溶液。將培養溶液樣品離心（4000 rpm，20分鐘）且僅獲得其中移除培養基之微生物細胞，且將其懸浮於包含NaCl 1.5%之0.1M磷酸鹽緩衝溶液中以便達10 9個細胞/毫升。懸浮於NaCl 1.5%-0.1M磷酸鹽緩衝溶液中之微藻微生物細胞樣品用於研發伽瑪射線衍生之人工突變型品系的實驗。伽瑪射線照射實驗係在韓國原子能研究院先進輻射技術研究所（Korea Atomic Energy Research Institute, Advanced Radiation Technology Institute）中執行，且其係藉由照射5至8 kGY之伽瑪射線劑量來進行。使經伽瑪射線照射之懸浮液樣品經歷恢復處理隔夜，且接著將其接種且塗抹於包含瓊脂20 g/L之GYEP培養基中且在30℃下培養約5天，且接著計算生長群落之數目且量測對於各伽瑪射線劑量之死亡率。 [計算公式2] 死亡率（%）=[{（未經處理組之群落數目）-（經處理組之群落數目）}/（未經處理組之群落數目）]×100 [表5]
伽瑪射線劑量（ kGY ） 生長群落之數目（ EA ） 死亡率 （ % ）
6.0 ≥ 190 -
6.5 ≥ 17 91.1
7.0 ≥ 9 95.3
7.5 0 100
8.0 0 100
照射未經處理組 ≥ 90 0
因此，如表2中所示，確認了其中根據伽瑪射線照射劑量的生長群落數目及活細胞數目的CFU值減小95%或更多的適當劑量。特定言之，展示了分別在6.5、7.0、7.5、8.0 kGY之伽瑪射線照射劑量下，91.1%、95.3%、100%、100%死亡的結果。在7.5 GY或更高之伽瑪射線劑量條件下，所有均死亡且無法獲得微藻群落，且選擇展示95.3%死亡率之7.0 kGY伽瑪射線劑量條件。 實施例 5-2. 突變型微藻品系之分離
在藉由實施例5-1中所描述之相同方法將7.0 kGY劑量伽瑪射線照射至新穎微藻品系CD01-1821中之後，將微藻培養溶液樣品在包含瓊脂20 g/L及抑制脂肪酸合成之環草敵（cycloate）的GYEP培養基中培養。藉由選擇在培養約4週期間生長之微藻群落，在同一培養基及培養環境條件下進行繼代培養。較佳選擇能夠在繼代之間連續生長且群落生長極佳的品系。另外，選擇形態為白色且光滑的群落。 實施例 5-3. 極佳突變型微藻品系之選擇
經由在燒瓶規模中培養實施例5-2中所選擇之突變型品系，分析糖消耗率，且經由粗脂肪及脂肪酸分析，選擇極佳突變型品系。
特定言之，為了在燒瓶規模中培養實施例4中確認之新穎野生型微藻CD01-1821及實施例5-2中所選擇之突變型微藻，藉由在500 mL燒瓶中在30℃、180 rpm之條件下在包含葡萄糖30 g/L之GYEP培養基（最終體積（工作體積）為50 mL）中培養20小時，獲得可經分析之一定量的微生物細胞。經由培養物之間的取樣分析剩餘葡萄糖之量及680 nm下之吸光度（光學密度），且經由此量測糖消耗率。
因此，如圖4中所示，在所評估之突變型品系當中選擇4種具有極佳糖消耗率及生長的品系。
對所選擇之4種品系的再評估在容量為5L之醱酵槽中進行。將在包含30 g/L之GYEP培養基中之培養用作種菌培養，且將其等分至含有滅菌MJW02培養基之5L醱酵槽中且在30℃、500 rpm、1.5 vvm、pH 5-8之條件下進行培養。量測且評估在培養15小時期間葡萄糖（主要碳源）之消耗率及確認為生長指數的吸光度（光學密度）及幹細胞重量（g/L），且由此最終選擇具有最佳生長之品系CD01-2147。裂殖壺菌屬物種CD01-2147於2021年8月23日經寄存至一寄存機構，亦即韓國生物科學與生物技術研究所之韓國菌種保藏中心（KCTC），且指定為寄存編號KCTC14661BP。 實施例 6. 野生型裂殖壺菌屬物種品系 CD01-1821 及突變型裂殖壺菌屬物種品系 CD01-2147 之培養特徵的確認 實施例 6-1. CD01-1821 品系及 CD01-2147 品系之培養
為確認野生型裂殖壺菌屬物種品系CD01-1821及突變型裂殖壺菌屬物種品系CD01-2147之培養特徵，將實施例2中所選擇之野生型裂殖壺菌屬物種品系CD01-1821及實施例5-3中研發之突變型裂殖壺菌屬物種品系CD01-2147藉由供應相比於總培養溶液35%之葡萄糖碳源在5L醱酵槽中培養60小時。出於種菌培養之目的，將其在500 mL燒瓶中在30℃、150 rpm之條件下使用滅菌MJW02培養基培養約20小時。將種菌培養之燒瓶等分且接種於5L醱酵槽中，且在滅菌MJW02培養基及培養環境中，在30℃、500 rpm、1.5 vvm、pH 5-8之條件下進行培養。完成培養之後，將移除上清液之微生物細胞用於量測粗脂肪及脂肪酸以及粗蛋白質含量以及萃取及回收胞內油之實驗。 實施例 6-2. CD01-1821 品系及 CD01-2147 品系培養溶液樣品之粗脂肪及脂肪酸含量之分析
為分析裂殖壺菌屬物種CD01-1821品系及裂殖壺菌屬物種CD01-2147品系培養溶液樣品之粗脂肪及脂肪酸含量，使用如下方法。
特定言之，藉由實施例2中所描述之相同方法使用實施例6-1中所獲得之CD01-1821及CD01-2147品系培養溶液樣品分析胞內粗脂肪及脂肪酸含量。 [表6]
   裂殖壺菌屬物種 CD01-1821 裂殖壺菌屬物種 CD01-2147
培養時間（小時） 34 29
O.D （ 680nm ） 248.7 208.1
DCW （ g/L ） 148.3 141.7
粗脂肪量 （ % ） 58.3 61.8
粗脂肪中之脂肪酸 （ % ）   
- C16:0 33.3 36.1
- ω -3 脂肪酸 45.8 49.6
（在該表中，C16:0意謂棕櫚酸，且ω-3脂肪酸意謂二十二碳六烯酸與二十碳五烯酸之總和）
因此，如表6中所示，確認CD01-1821及CD01-2147品系展示類似的生物質生長且在粗脂肪中具有極佳含量之脂肪酸。另外，經確認，CD01-2147品系之粗脂肪量及粗脂肪中之脂肪酸含量高於CD01-1821品系。 實施例 6-3. CD01-1821 及 CD01-2147 品系培養溶液樣品之粗蛋白質含量之分析
為分析裂殖壺菌屬物種CD01-1821及裂殖壺菌屬物種CD01-2147品系培養溶液樣品之粗蛋白質含量，使用如下方法。
特定言之，精確量測相當於約20至30 mg之乾燥微生物細胞，亦即各醱酵溶液乾燥產物（試樣）且置於分解管中，且添加兩種分解促進劑。當硫酸（H 2SO 4）與硫酸鉀（K 2SO 4）之比率為1.4至2.0:1.0時，分解促進劑被有效地分解。接著，將濃硫酸（H 2SO 4）12至15 mL添加至分解管，且當藉由在420℃下在分解裝置中分解45至60分鐘，分解溶液之顏色呈透明淺綠色（使用銅促進劑）或透明黃色（使用硒催化劑）時，將其冷卻至室溫。冷卻後，將80 mL蒸餾水添加至經分解測試溶液中。在將與混合指示物混合之25 mL收集溶液添加至錐形瓶（Erlenmeyer flask）中之後，將其置於蒸餾設備上，且抬升錐形瓶支架以使得蒸餾溶液在蒸餾期間進入收集溶液。將50 mL氫氧化鈉溶液（NaOH）（量對應於在分解期間所使用之硫酸的4倍）添加至分解管，且將其在蒸餾設備中蒸餾3至4分鐘。經確認，蒸餾設備的錐形瓶中的收集溶液變成綠色同時收集蒸餾溶液中所包含的氨（NH 3）。使用鹽酸溶液（通常0.1N或0.2N）滴定蒸餾溶液直至終點達到淡粉色，且記錄用於滴定之酸的量。在自動裝置之情況下，蒸餾、滴定及計算均自動進行。使用實驗結果，藉由以下計算公式2推導出氮%。藉由將先前推導出之氮%乘以6.25之平均氮係數來表達蛋白質定量。 [計算公式2] 氮（%）={（HCl量mL-空白測試mL）×M×14.01/試樣量mg}×100 *14.01：氮之原子量 *M：HCl之體積莫耳濃度 *降解促進劑：Kjeltabs或其等效者 *硼酸溶液：藉由添加H 3BO 3100 g（或400 g）、0.1%溴甲酚綠色溶液100 mL及0.1%甲基紅溶液100 mL製備之恆定體積為10 L之1%（或4%）硼酸溶液
對於胺基酸含量分析，自CD01-1821及CD01-2147品系之培養溶液收集約1g之醱酵的溶液乾燥產物（試樣）樣品。在利用6N濃度之HCl溶液對胞內蛋白質進行酸水解之後，將其稀釋且用蒸餾水過濾，且進行液相層析。 [表7]
   裂殖壺菌屬物種 CD01-1821 裂殖壺菌屬物種 CD01-2147
粗蛋白質量（ % ） 17 10
胺基酸量 （ mg/L ）   
天冬胺酸 78.44 67.03
蘇胺酸 0.00 0.00
絲胺酸 108.65 43.80
麩胺酸 790.80 343.28
甘胺酸 165.08 53.74
丙胺酸 172.72 113.90
半胱胺酸 0.00 0.00
纈胺酸 96.35 108.29
甲硫胺酸 46.54 74.13
異白胺酸 16.88 45.65
白胺酸 13.17 51.95
酪胺酸 229.64 0.00
苯丙胺酸 166.55 302.06
離胺酸 85.83 174.62
組胺酸 0.00 0.00
精胺酸 114.15 94.51
因此，如表7中所示，經確認，CD01-2147乾燥微生物細胞中之粗蛋白質含量為10%。另外，在乾燥微生物細胞中之胺基酸含量中，麩胺酸最高，且其次為苯丙胺酸、離胺酸、丙胺酸、纈胺酸、精胺酸、甲硫胺酸、天冬胺酸、甘胺酸、白胺酸、異白胺酸及絲胺酸。經由此，確認CD01-2147乾燥微生物細胞中之胺基酸係由麩胺酸、苯丙胺酸、離胺酸、丙胺酸、纈胺酸、精胺酸、甲硫胺酸、天冬胺酸、甘胺酸、白胺酸、異白胺酸及絲胺酸構成。 實施例 6-4. CD01-1821 品系及 CD01-2147 品系醱酵溶液之油回收量之分析
為了比較裂殖壺菌屬物種CD01-1821品系及裂殖壺菌屬物種CD01-2147品系之培養溶液樣品的油回收量，進行以下實驗。
特定言之，對於其中完成培養之微藻醱酵溶液，進行油萃取實驗。在將培養溶液加熱至60℃之後，使用NaOH 50%溶液將pH調節至7。與醱酵溶液之重量相比，添加0.2%（w/w）之鹼性蛋白酶（Alcalase）（鹼性蛋白酶2.4FG，Novozymes）且在60℃下在攪拌下反應3小時。使經酶反應的醱酵溶液以3800g離心，且比較自上清液中回收油的回收率。在本說明書中，油回收率意謂細胞中所含之油的量，亦即，在粗脂肪含量中經由實驗萃取油時可萃取之油的量。 [表8]
   DCW 粗脂肪含量 粗蛋白質含量 油回收率
（g/L） （%，/生物質） （%，/生物質） （%，/粗脂肪量）
CD01-1821 119 57 17 38
CD01-2147 148 65 10 87
'
因此，如表8中所示，經確認，具有低粗蛋白質含量之CD01-2147品系之醱酵溶液的回收率為具有高粗蛋白質含量之CD01-1821品系之醱酵溶液的回收率的兩倍或更高。 實施例 7. 裂殖壺菌屬物種 SR21 品系及突變型裂殖壺菌屬物種品系 CD01-2147 之培養特徵的確認 實施例 7-1. SR21 品系及 CD01-2147 品系之培養
為評估當在裂殖壺菌屬物種SR21品系及所研發之品系CD01-2147品系之醱酵槽中添加碳源時的生產力，供應相比於總培養溶液41%之葡萄糖碳源，且在5L醱酵槽中進行培養60小時。出於種菌培養之目的，使用滅菌MJWO2培養基在500 mL燒瓶中在30℃及150 rpm之條件下進行培養約20小時。分配種菌培養之燒瓶且用5L醱酵槽接種，且在滅菌MJW02培養基中在28℃、400 rpm、1.0 vvm、pH 5-9之培養環境條件下培養。在完成培養之後，將移除上清液之微生物細胞用於量測粗蛋白質、粗脂肪及脂肪酸含量。另外，將其用於胞內油萃取及回收之實驗中。 實施例 7-2. SR21 品系及 CD01-2147 品系醱酵溶液之油回收量之分析
為了比較裂殖壺菌屬物種SR21品系及裂殖壺菌屬物種CD01-2147品系培養溶液樣品之油回收量，進行以下實驗。
特定言之，在完成培養之後，對微藻醱酵溶液進行油萃取實驗。將培養溶液加熱至60℃，且接著使用NaOH 50%溶液將pH調節至7。針對醱酵溶液中之細胞濃度，以15%（w/w）添加鹼性蛋白酶（鹼性蛋白酶2.4FG，Novozymes）且在60℃下在攪拌下反應3.5小時。使經酶反應的醱酵溶液以3800g離心以回收上清液之油。經確認，經回收之上清液為其中混合油與乳化材料之層。將相應上清液在75℃下攪拌且經熱處理30分鐘，且接著以3800g離心以回收上清液之油。 [表9]
   DCW 粗脂肪含量 粗蛋白質含量 油回收率
（g/L） （%，/生物質） （%，/生物質） （%，/粗脂肪量）
CD01-2147 167 55 12 60
SR21 159 56 27 23
因此，如表9中所示，經確認，CD01-2147品系之醱酵溶液的回收率為SR21品系之醱酵溶液的回收率的兩倍或更高。
根據以上描述，本申請案所屬技術領域中具有通常知識者將能夠理解，本申請案可以其他特定形式實施而不改變其技術精神或基本特徵。就此而言，應理解，上文所描述之實施例在所有態樣中為例示性的而非限制性的。本申請案之範圍應解釋為包括由稍後將描述之申請專利範圍的含義及範圍衍生的所有變化或修改形式以及其等效概念而非以上詳細描述。
無
[圖1]為一示意圖，其展示分離破囊壺菌系列微藻品系之方法。
[圖2]為一圖式，其展示分析總脂質含量及29種經分離的破囊壺菌系列微藻之ω-3當中的二十二碳六烯酸（DHA）及二十碳五烯酸（EPA）之含量的結果。
[圖3]為用光學顯微鏡觀測野生型裂殖壺菌屬物種品系CD01-1821之相片。
[圖4]為一圖式，其展示野生型裂殖壺菌屬物種品系CD01-1821及4種所選突變型品系之葡萄糖消耗率及在680 nm處之光學密度。
[寄存編號]
寄存機構之名稱：韓國生物科學與生物技術研究所（Korea Research Institute of Bioscience and Biotechnology）之韓國菌種保藏中心（Korea Collection for Type Culture，KCTC） 寄存編號：KCTC14660BP 寄存日期：20210823
寄存機構之名稱：韓國生物科學與生物技術研究所之韓國菌種保藏中心（KCTC） 寄存編號：KCTC14661BP 寄存日期：20210823
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Claims (14)

  1. 一種新穎裂殖壺菌屬物種（ Schizochytriumsp.）CD01-2147微藻（寄存編號KCTC14661BP）。
  2. 如請求項1之裂殖壺菌屬物種微藻，其中該裂殖壺菌屬物種CD01-2147微藻具有生產ω-3不飽和脂肪酸之能力。
  3. 如請求項2之裂殖壺菌屬物種微藻，其中該ω-3不飽和脂肪酸為二十二碳六烯酸（docosahexaenoic acid，DHA）及二十碳五烯酸（eicosapentaenoic acid，EPA）。
  4. 如請求項3之裂殖壺菌屬物種微藻，其中該微藻產生以該脂肪酸之總重量計35重量%至60重量%的二十二碳六烯酸。
  5. 如請求項3之裂殖壺菌屬物種微藻，其中該微藻產生以該脂肪酸之總重量計0.1重量%至2重量%之二十碳五烯酸。
  6. 一種衍生自裂殖壺菌屬物種微藻之生物質，其包含如請求項1之裂殖壺菌屬物種微藻、該微藻之培養物、該培養物之乾燥產物或該乾燥產物之溶胞產物。
  7. 一種組成物，其包含如請求項6之衍生自裂殖壺菌屬物種微藻之生物質、該生物質之濃縮物或乾燥產物或該生物質之萃取物。
  8. 如請求項7之組成物，其中該組成物為飼料組成物或食品組成物。
  9. 一種用於生產衍生自裂殖壺菌屬物種微藻之生物質的方法，其包含： 1）培養如請求項1之裂殖壺菌屬物種CD01-2147微藻；及2）自該微藻、其乾燥產物或其溶胞產物回收含有二十二碳六烯酸之生物質。
  10. 如請求項9之用於生產衍生自裂殖壺菌屬物種微藻之生物質的方法，其中該培養係在異養條件下進行。
  11. 如請求項9之用於生產生物質的方法，其中該培養係使用包含碳源及氮源之培養基進行。
  12. 如請求項11之用於生產生物質的方法，其中該碳源為選自由以下者組成之群的一或多種類別：葡萄糖、果糖、麥芽糖、半乳糖、甘露糖、蔗糖、阿拉伯糖、木糖及甘油。
  13. 如請求項11之用於生產生物質的方法，其中該氮源為：i）選自由酵母萃取物、牛肉萃取物、蛋白腖及胰腖組成之群的任何一或多種有機氮源，或ii）選自由乙酸銨、硝酸銨、氯化銨、硫酸銨、硝酸鈉、尿素及麩胺酸單鈉（Monosodium glutamate，MSG）組成之群的任何一或多種無機氮源。
  14. 一種用於生產衍生自裂殖壺菌屬物種微藻之生物油的方法，其包含： 1）培養如請求項1之裂殖壺菌屬物種CD01-2147微藻；及 2）自該微藻、其乾燥產物或其溶胞產物回收含有二十二碳六烯酸之生物質。
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