SU786853A3 - Способ определени активности х-пролилдипептидиламинопептидазы - Google Patents

Способ определени активности х-пролилдипептидиламинопептидазы Download PDF

Info

Publication number
SU786853A3
SU786853A3 SU762415363A SU2415363A SU786853A3 SU 786853 A3 SU786853 A3 SU 786853A3 SU 762415363 A SU762415363 A SU 762415363A SU 2415363 A SU2415363 A SU 2415363A SU 786853 A3 SU786853 A3 SU 786853A3
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
proline
acid
nitroanilide
solution
enzyme
Prior art date
Application number
SU762415363A
Other languages
English (en)
Inventor
Нагацу Тосихару
Сакакибара Сумпеи
Original Assignee
Адзиномото Ко, Инк (Фирма)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Адзиномото Ко, Инк (Фирма) filed Critical Адзиномото Ко, Инк (Фирма)
Application granted granted Critical
Publication of SU786853A3 publication Critical patent/SU786853A3/ru

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/34Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving hydrolase
    • C12Q1/37Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving hydrolase involving peptidase or proteinase
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07DHETEROCYCLIC COMPOUNDS
    • C07D207/00Heterocyclic compounds containing five-membered rings not condensed with other rings, with one nitrogen atom as the only ring hetero atom
    • C07D207/02Heterocyclic compounds containing five-membered rings not condensed with other rings, with one nitrogen atom as the only ring hetero atom with only hydrogen or carbon atoms directly attached to the ring nitrogen atom
    • C07D207/04Heterocyclic compounds containing five-membered rings not condensed with other rings, with one nitrogen atom as the only ring hetero atom with only hydrogen or carbon atoms directly attached to the ring nitrogen atom having no double bonds between ring members or between ring members and non-ring members
    • C07D207/10Heterocyclic compounds containing five-membered rings not condensed with other rings, with one nitrogen atom as the only ring hetero atom with only hydrogen or carbon atoms directly attached to the ring nitrogen atom having no double bonds between ring members or between ring members and non-ring members with hetero atoms or with carbon atoms having three bonds to hetero atoms with at the most one bond to halogen, e.g. ester or nitrile radicals, directly attached to ring carbon atoms
    • C07D207/16Carbon atoms having three bonds to hetero atoms with at the most one bond to halogen, e.g. ester or nitrile radicals
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K5/00Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K5/04Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof containing only normal peptide links
    • C07K5/06Dipeptides
    • C07K5/06008Dipeptides with the first amino acid being neutral
    • C07K5/06017Dipeptides with the first amino acid being neutral and aliphatic
    • C07K5/06026Dipeptides with the first amino acid being neutral and aliphatic the side chain containing 0 or 1 carbon atom, i.e. Gly or Ala
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K5/00Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K5/04Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof containing only normal peptide links
    • C07K5/06Dipeptides
    • C07K5/06086Dipeptides with the first amino acid being basic
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K5/00Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K5/04Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof containing only normal peptide links
    • C07K5/06Dipeptides
    • C07K5/06086Dipeptides with the first amino acid being basic
    • C07K5/06095Arg-amino acid
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K5/00Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K5/04Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof containing only normal peptide links
    • C07K5/06Dipeptides
    • C07K5/06104Dipeptides with the first amino acid being acidic
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K5/00Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K5/04Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof containing only normal peptide links
    • C07K5/06Dipeptides
    • C07K5/06104Dipeptides with the first amino acid being acidic
    • C07K5/06113Asp- or Asn-amino acid
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2337/00N-linked chromogens for determinations of peptidases and proteinases
    • C12Q2337/10Anilides
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2337/00N-linked chromogens for determinations of peptidases and proteinases
    • C12Q2337/10Anilides
    • C12Q2337/12Para-Nitroanilides p-NA
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q2337/00N-linked chromogens for determinations of peptidases and proteinases
    • C12Q2337/30Naphthyl amides, e.g. beta-NA, 2-NA, 4-methoxy-beta-naphthylamine, i.e. 4MNA
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S530/00Chemistry: natural resins or derivatives; peptides or proteins; lignins or reaction products thereof
    • Y10S530/802Chromogenic or luminescent peptides

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Pyrrole Compounds (AREA)

Description

анилина, n-фенилаэоанилина и 4-фени азо-1-нафтиламина. Предпочтительным  вл етс  остаток п-нитроанилина, та как содержащее его дипептидное производное лучше всего раствор етс  в воде, наиболее стабильно и синтезировать его проще всего. Активность фермента по отношению к новым дипептидным производным Х-1-пролин-У различна в зависимости от того, какбва круппа N-конечной аминокислоты (X). Дипептидные производные , - содержащие нейтральную ил основную аминогруппу в качестве X, наиболее легко гидролизуютс  фермен том, а те, которые содержат кислотную аминогруппу, наиболее слабо. Дипептидные производные, содержащие нейтральную или основную аминокислотную группу, или их соли, таких кислот как п-толуолсульфонова  кис лота, подход т в качестве субстрато но производные основных аминокислот гигроскопичны. Дипептидные производ ные, содержащие группу глицина, отличаютс  самой большой скоростью гидролиза при рН 8,7 из различных дипептидных производных X-Ь-пролина-Y; в темноте они обладают высоко стабильностью и легко раствор ютс  в воде. Производные глицина, особен его соль такой кислоты, как хлорист водородна  и п-толуолсульфонова , н гигроскопичны по сравнению с производными основных С1МИНОКИСЛОТ и удоб при анализе. П-нитроанилид глицил-L -пролина или его соли, особенно п-т луолсульфонат (тозилат),  вл ютс  наилучшими субстратами. Если используема  аминокислота содержит боковые функциональные гру пы, то они могут быть использованы после того, как функциональные тру пы будут защищены. Например, в случае кислых аминокислот, их использу ют после того, как боковые карбокси ные группы превращают в сложные эфи ры, такие как бензиловый эфир. Аргинин используют после того, как группу гуанидина защищают обычной защитной группой, такой как тозил, нитро-, п-нитро-бензил-карбонил и 2-(изопропилоксикарбонил)3,4,5,6-тетрахлор-бензоил , и особенно двум  первыми группами, тогда как N-аминогруппу лизина обычно защищаю известными аминозащищающими группам предпочтительно теми же защитными группами, как и те, что используют дл  защиты N-аминогруппы. Защитную группу N-защищенного-Х-L-пролина-У , полученного таким образом , затем отщепл ют с помощью известного способа, завис щего от природы N-защитной группы/ и, если она есть, защитной группы боковых функциональных групп. Очень важно от щепить только защитную группу, не затронув остальные, в этой реакции .элиминировани . Можно также синтезировать необходимые Дипептидные производные соединением вначале N-защищенного X-L-пролина с частью V-II, а затем отщепить защитную группу от полученного Х-1-пролина-У. Если нужно получить соли кислот дипепг-идных производных, то их получают при -взаимодействии дипептидных производных с кислотами в такой среде, как вода, этанол. Соли также получают из N-защищенных производных при взаимодействии их с кислотс1Ми, если защитна  группа  вл етс  т-бутилоксикарбонилом или аналогом, который может быть отщеплен под действием кислоты. Среди различных солей кислот тозилат  вл етс  наиболее предпочтительным , так как он образует твердые кристаллы, которые не включают примесей , присутствующих в маточном растворе , и который может быть поэтому получен с высокой степенью чистоты . простой перекристаллизацией. Активность фермента легко измер етс , если в качестве субстратов используют Дипептидные производные или их соли. Вначале приготавливают водный раствор Х-1-пролина-У или его соли подход щей концентрации. Если дл  растворени  субстрата в воде требуетс  слишком мало времени, то предпочтительно использовать подход щие вещества дл  ускорени  скорости растворени; , такие как неионные детергенты , кислоты или спирты, или использовать субстрат в пористой форме, чего MoXiCHo достичь замораживанием. Пористый субстрат наиболее удобен дл  рутинного анализа фермента; рН раствора субстрата мен етс  в зависимости от того, какой субстрат используют . рН обычно расположен в интервале от 6 до 9, и предпочтительно от 7,5 до 8,9. Субстраты спонтанно гидролизуютс  при рН свЕлие 9,5, но расторы .субстрата, особенно раствор п-нитроанилида глицил-1-пролина, стабилен при вышеупом нутом оптимуме рН и может хранитьс  при свыше недели без заметного разложени  Активность фермента измер ют при контакте субстрата с Х-пролил-диаминопептидазой или образцом, содержащим ее, в водной среде, предпочтительно в буферном растворе, таком как трималеат буфер, глицин-NaOH буфер и амидиол буфер при температуре от 30 до в течение определенного промежутка времени, определ   фермент обычным способом, и затем определ ют освобожденные Y-H. Инкубационный период определ ют в со ответствии с количеством субстрата и фермента. Даже если сырой фермент, такой как сыворотка человек, исполь зуют в качестве источника фермента, то активность измер ют достаточно точно, так как субстрат практически не гидролизуетс  другими ферментами, сопровождающими сырой фермент. Количество освобожденных Y-H легко определ5пот, измер   поглощение фе ментной, реакционной смеси непосредственно на длине волны, соответствую щей индивидуальной группе Y-H а именно при 385 нм дл  п-нитроанилина 493 нм дл  п-фенилазоанилина и 532 н дл  4-фенилазо-1-нафтиламина. Пр мой фотометрический метод прост, удобен точен и, таким образом, подходит дл  рутинного анализа активности фермента . Когда У-Н группой  вл етс  п-нитроанилин , активность фермента можно определ ть диазотизицией п-нитроанилина , осуществл емой за счет избытка нитрата натри  в кислой среде. При этом измерении количество п-нитроанилина , который образовалс , может быть рассчитано измерением непро реагировавшего нитрата натри ; однако обычно определ етс  так назьшаемым способом азосоединени , разлага  непрореагировавший нитрит натри  сул фаминовой кислотой сульфатом аммони , мочевиной и т.д., подверга  взаимодействию образовавшийс  п-нитрофенилдиазониум с соедин ющим компо нентом, таким как (- 1-нафтил) этилендиамин , и затем измер   поглощение образовавшегос  азосоединени  на длине волны, характеризующей это азосоединение. Этот косвенный метод определени  более сложен, чем предыдущий пр мой фотометрический способ, но более чувствителен. Приведенные далее примеры иллюстрируют изобретение более подробно. Пример 1. п-Нитроанилид М-бензилоксикарбонил-1- пролииа. Треххлористый фосфорил (50,6 г) медленно размещают в растворе N-бензилоксикарбонил-1-пролина (74,8 г) и п-нитроанилина (41,4 г) в тетрагидрофуране (400 мл) при . В смесь по капл м добавл ют триэтилами ( 92,4 мл), причем температуру внутри поддерживают при -15°С. Триэтиламин добавл ют до рН 7, после чего температуру реакционной смеси повышают до комнатной и перемешивают смесь, в течение 3 ч. Растворитель замен ют этилацетатом (1,2 л), раствор последовательно промывают водой (100 мл), 1 н. сол ной кислотой (300 мл X 5), водой (400 мл), 5%-ным раствором гидрокарбоната (300 мл X 3) и насыщенным раствором хлористого натри  (300 мл и сушат над сульфатом магни . Высушенный рас тпор концентрируют при пониженном давлении, остаток кристаллизуют , добавл   этиловый эфир, и полученный продукт перекристаллизовывают из смеси этилацетата (300мл) и метанола (50 мл), выход 56 г, т. пл. 159-161 С, ,60(,0 метанол). Найдено, %: С 62,07; Н 5,20; N 11,62. Ci,H,,05Nj Вычислено, %: С 61,77; Н 5,19; N 11,38. Пример 2. Бромгидрат п-нитроанилида L-пролина. п-Нитроанилин N-бензилоксикарбонил-1-пролина (55,4 г), раствор ют в 26%-ном растворе безводного бромистого водорода в уксусной кислоте (200 мл) при 0°С, и смесь перемешивают при комнатной температуре в течение 2 ч. Раствор примешивают в сухой этиловый эфир (2 л) дл  кристаллизации продукта, который выдел ют декантацией, отмывеиот этиловым эфиром и сушат, выход 47 г. Неоч(военный продукт используют в следующих примерах без дальнейшей очистки. Пробу дл  анализа получают перекристаллизацией из смеси метанола с этиловьм эфиром. Т.пл. 225-226°С, 22 35,бО(,0, CHjOH). Найдено, %: С 41,75; Н 4,34; Н 13,30. .Br Вычислено, %: С 41,79; Н 4,46; N 13,29. Пример 3. п-Нитроанилид N-бензилоксикарбонил-глицил-L-пролина . N-бензилоксикарбонил-глициновый оксисукцинимидный сложный эфир (48 г, 0,16 моль) перемешивают в охлажденную смесь бромгидрата п-нитроанилида L-пролина (47 г, 0,15 моль) i триэтиламина (22 мл) и N-оксибензтриазола (1 г) в диметилформамиде (100 мл). Всю смесь перемеишвают при ксмиатной температуре в течение 1 ч, поддержива  в течение этого времени рН раствора 6 с помощью триэтиламина, а затем раствор перемешивают еще в течение 19 ч при комнатной температуре. Растворитель удал ют испаренн л при понижение давлении, в остаток добавл ют .воду (350 мл), а зате14 продукт двгикды экстрагируют этилащетатом (500 мл, 200 мл), Экстракты смешивсиот, последовательно отмывают водой (200 мл), 1 н. сол ной кислотой (200 мл X 2), водой (200 мл) и 5%-иьм раствором гидрокарбоната натри  (200 мл X 4) и водой (200 мл) и сушат над сульфатом магни , выход 67 г. Гомогенность этого продукта была подтверждена методом тонкослойной газовой хроматографии на силикг еле с использованием в качестве растворител  смеси хлорофо1 1а, метанола и уксусной кислоты объемное отноше|1 е (95:5:3) . П р и м е р 4. п-Нитроанилид гли цил-L-пролнна. п-Нитроанилид N-бензилоксикарбонил-глицин-L-пролина (61 г) подвергают взаимодействию с 26%-иым раств ром безводного бромистого водорода . уксусной кислоте (250 мл) и реакцио ную смесь обрабатывают так же,как в примере 2, в результате чего получаю бромгидрат п-нитроанилида глицил-L-пролина , выход 9 г. БрОмгидрат (20 г) смешивают с 1 М раствором карбоната натри  (100 мл) и суспензию экстрагируют хлороформом 8 раз (по 100 мл каждьй раз) после насыщени  хлористым на.трием. Экстракты смешивают, пробивают насы щенным раствором хлористого натри  (100 мл) и сушат над сульфатом магни . Высушенный раствор концентриру ют, а остаток кристаллизируют из смеси этилацетата с этиловьв эфиром выход 12,7 г, т.пл. 118-120с,ГЛ 115, (, метанол) ,д llStJO (0,1 н. хлористоводородна  кислота) П р.и м е р 5. Тозилат-п-нитроанилида глицил-L-пролина. п-Нитроанилид-глицил-L-пролина (584 мг) нейтрализуют раствором моно гидрата п-толуолсульфоновой кислоты в этаноле (380 мг в 10 мл). Продукт кристаллизуют путем помещени  раствора в холодильник. Неочищенный про дукт перекристаллизовывают из смеси метанола с этиловым эфиром, выход 312 мг, т.пл. 223-225°С (с разложени ем), frf. - 81,00 (,0, метанол Найдено, %: С 51,82; Н 5,19; N 12,24. Вычислено, %: С 51,72; Н 5,21; N 12,06. Пример 6.. п-Нитроанилид т-бyтилoкcикapбoнил-L-aлaнил-L-пролина . т-Бyтилoкcикapбoнил-L-aлaнин (5,7 г) и бромгидрат п-нитроанилида L-пролина (9,5 г) раствор ют в хлороформе (40 мл) с триэтиламином (4,2 мл, 0,03 моль) и в этот раствор добавл ют раствор N.М-дициклогексилкарбодиимида (6,2 г) в хлороформе (5 мл) Всю смесь перемешивают при комнатной температуре в течение 44 ч и после добавлени  нескольких капель уксусной кислоты перемешивание -продолжают еще 2 ч. Осевшие продукты отфильтровывают, фильтраты концентри руют при пониженном давлении. Остаток смешивают с водой и продукт экстрагируют этилацетатом. Экстракт последовательно отмывают 1 н. сол ной кислотой, водой, 5%-ным раствором гидрокарбоната, водой и .насыщенным раствором хлористого натри  и с-ушат над сульфатом магни  Высушенный раствор концентрируют до получени  остатка, который раствор ют в этиловом эфире. Некоторое коли чество нерастворившихс  материалов отфильтровывают, фильтрат концентрируют и остаток отверждают титрованием н-гексаном, выход 12,9 г. На тонкослойной хроматограмме этот продукт дает одиночное п тно. Пример 7. Хлоргидрат п-нитроанилида L-аланид L-пролина. Расувор п-нитроанилида т-бутилоксикарбонил-L-аланил-L-пролина (12,9г) в диоксане (20 мл) обрабатывают 6N растворсал безводного хлористого водорода в диоксане (45 мл) в течение 55 мин при комнатной температуре. Реакционную смесь концентрируют при пониженном давлении, а остаток растирают дл  отверждени  в этиловом эфире, затем отвержденный продукт кристаллизуют из этанола, выход 6,4 г, т.,пл. 130-14. (с разложением ) , oLj - 103,4 (,0, метанол ) . Найдено , %: С 46,12; Н 6,09; N 15,50 . А4Нл904НдС«. 5/4На-0 вычислено, %: С 46,03; Н 5,93; N 15,34. Пример 8. п-Нитроанилид т-бyтилoкcикapбoнил-0-бeнзил-L-acпapтил-L-пролина . т-Бyтилoкcикapбoнил-ft-бeнзил-Lracпаргиловую кислоту (9,7 г 0,03 моль) и бромгидрат п-нитроанилида L-пролина (9,5 г, 0,03 моль) присоедин ют друг к другу так же, как в примере 6. Неочищенный продукт хроматографируют на колонке силикагел  (3,6см X 19 см), причем в качестве растворител  используют смесь хлороформа и этилацетата (объемное отношение 5:1), Фракции, содержащие основной пик, собирают и концентрируют до получени  аморфного твердого вещества, выход 10,3 г. Гомогенность этого продукта была подтверждена тонкослойной хроматографией . Пример 9. п-Нитроанилид L-аспартил-L-пролина. п-Нитроанилид т-бутилоксикарбонил- -бeнзил-L-acпapтил-L-пpoлинa (10,3 г) хорошо смешивают с аназолом (8 мл) и раствор обрабатывают безвЪдным фтористым водородом (около 50 мл) в течение 1 ч при . Фтористый водород отгон ют и продукт осаждают, добавл   этиловый эфир. Осажденное вещество дважды отмывают этиловым эфиром, детактируют и сушат. Неочищенный продукт раствор ют в 0,1 М уксусной кислоты и раствор хорошо промывают этиловым эфиром, а затем пропускают через колонку с сильноосновной ионообменной смолой (Амберлит ИР-400, ацетатна  форма, 200 мл), которую промывают 0,1 М уксусной кислоты. Элюат и промывки смешивают и концентрируют при пониженном давлении. Остаток кристаллизуют из небольшого количества воды, вькод 5,2 г, . 144-145 С (с разложением ) , - 100,3(,0 1NНС1 ),Е 12170 (0,1N-HC1).
Найдено, %: С 48,03; Н 5,63; N 14,16.
C.,s4ie9bN4 3/2НЗ.О
Вычидлено, %: С 47,74; Н 5,61; N 14,85.
и м е р 10. п-Нитроанилид т-буТилоксикарбонил- -бензил-1-глутамил-L-пролина .
Бромгидрат п-нитроанилида L-пролина (9,5 г) и т-бутилоксикарбонил-у -бензил-1 ,-глютаминовую кислоту, вьаделенную из дициклогексиламиновой соли (17,1 г), присоедин ют с помощью N,N -дициклогексилкарбодинмида, как в примере 6. Сырой продукт очищают на хроматографической колонке до получени  аморфного твердого вещества, выход 12j7 г.
Гемогенность твердого вещества была подтверждена с псвлсш1ью тонкослойной хроматографии.
Пример 11. п-Нитроанилид L-глутамил-L-пролина.
п-Нитроанилид т-бутилоксикарбонил- бeнзил-L-глютaмил-L-пpoлинa (10 г 0,018 моль) обрабатывгиот фтористым водородом (около 50 мл) и реакционную смесь обрабатывают как в примере 9. Конечный продукт получен в виде кристаллов, выход 4,7, т. пл. 1171260С (с разложением), - 82,8 ( ,0, вода) .
Найдено, %: С 49,73; Н 5,91; N 14,54
Ь 5/4Н2.0
Вычислено, %: С 49,66; Н 5,87; N 14,88.
. П-р и м е р 12. п-Нитроанилид N ,N -дибeнзилoкcикapбoнил-L-лнзил-L-пролина .
Бромгидрат п-нитроанилида L-пролина (9,5 г) соедин ют с Н,К -дибензи oкcикapбoнил-L-лизинoм (12,4 г) и реакционную смесь обрабатывают, как в примере 6. Конечнь продукт получают в виде аморфного твердого вещества , выход 15,8 г.
Гемогеиность продукта была подтверждена с помсхцью тонкослойной хроматографии.
П р и м е р 13. Дитолизат п-нитроанилида L-лизил-L-пролина.
п-Нитроанилид .И-дибензилоксикapбoнил-L-лизил-L-пpoлинa (9,5 г) обрабатывают 26%-Hfcw раствором безводного бромистого водорода в уксусной кислоте (35 мл) и реакционную смесь обрабатывают по методике примера 2. Таким образом получают дибромгидрат п-нитроанилида L-лизил-L-пролина , выход 7,8г.. :
Бромгидрат раствор ют в 0,1 М уксусной кислоте, раствор пропускают через колонку Амберлита 1 R-400 (в форме эцетата,,200 мл),которую промывсши 0,1 м уксусной кислотой. Элюат и промывки соедин ют и выпаривают до остатка при пониженном давлении; затем остаток раствор ют в смеси этанола с моногидратом п-толуолсульфоновой кислоты (5,5 г). Концентрирование раствора при пониженном давлении дает остаток, который кристаллизуют, растира  его с этиловым эфиром, выход 10,1 г, т. пл. 92-130 С (с разложением ), UJ - 32, (,1, вода-)
0
Найдено, %; С 49,76; Н 6,02; N 9,26
Ci%H4 O oM, ftj
Вычислено, %: С 50,05; Н 6,11; N 9,42
s
. П р и м е р 14. п-Нитроанилид N -бeнзилoкcикapбoнил-N -тoзил-L-apгинид-L-пролина .
Бромгидрат п-нитр(оанилида L-пролина (12,0 г) и N-бензилоксикарбонилrN -тoзил-L-apгинин , который вьщел ют
0 из соли циклогексйламида (23 г), раствор ют в хлорофО Ж е (60 мл) и в раствор примешивают 1-этил-З-(3-диметиламинопропил )-карбодиимид (6,8 мл) при . Смесь перемешивают еще в
5 течение 17 ч при комнатной температуре и далее обрабатывеиот, как в .примере 3, выход 22,3 г.
Гомогенность этого продукта под0 тверждена с помощью тонкослойной хроматографии.
П р и м е р 15. дитозилат п-нитроанилида L-аргинин-L-пролина.
п-Нитроанилид N-бензилоксикарбо-.
5 нил-N -тoзил-L-apгинил-L-пролина (8,2 г) обрабатывают безводньм фтористым водородсм, как в примере 9. После удалени  избытка Фтористого водорода остаток обрабатывают, как в примере 13. Конечный продукт
0 получен в виде кристалла, выход 7,3, т. пл. 125-138 с- (с разложением) , W -31,4«С (,0, вода).
Найдено, %: С 47,79; Н N 12,53
5
CMH4-fO-fo Sa.-5/2H2,0
Вычислено, %: С 47,67; Н 5,85; N 12,56.
Пример 16. п-Фенилазоанилид N-бензилоксикарбоиил- L- пролииа.
0
п-Фенилазоанилин (7,9 г) и Н-бен3 илоксикарбонил- L-пролин (10,0г.) соедин ют и реакционную смесь обрабатывают , как в примере 6. В результате получают твердый продукт, вы5 ход 10,8.
Этот продукт используют в следую цен примере 17 без дгшьнейней очистки . Образец дл  ангшиза получают рекристгшлизацией из н-гексанэтилацетата .,о А
0
Т. пл. 141-143 C,Wt - 87,0С (С«1,О, диметилформамид).
Найдено, %: С 70,27; N 5,61; N 12,93 5CAsHx40iN-v
Вычислено, %: С 70,07; Н 5,65; N 13,08
Пример 17. п-Фенилазоанилид
Ы-т-бутилоксикарбонил-глйцил-1-пролина . .
п-Фенилазоанилид N-бензилокси ,карбонил-1-пролина (4,3 г 0,01 моль) обрабатывают 25%-ным раствором безводного бромистого водорода в уксусной кислоте (35 мл) и реакционную смесь обрабатыва |рт, как в примере 2.
Бромгидрат п-фенилазоанилида L-пролина, полученный таким образом, и т-бутилоксикарбонилглицин (2,5 г) соедин ют, как в примере 6. Сырой продукт полученный при этом, очищают на хроматографической колонке; после очистки получают конечный продукт в виде кристаллов, выход 3,4 г, т. пл. 172-176°С, fo( 110, (,0,  иметилформамид).
Найдено, %: С 64,08; Н 6,73; N 15,18
QZAHigO Ng
вычислено, %: С 63,84; Н 6,47; N 15,51.
П р и м е р 18. Тозилат п-фенилазоанилнда глицин L-пролина п-Фенилазоанилид т-бутилоксикарбонил-глицил-L-пролина (2,5 г) раствор ют в уксусной кислоте (8 мл) вместе с моногидратом п-толуолсульфоновой кислоты (2,3 г). Смесь перемешивают при комнатной температуре в течение 2 ч. ПРОДУК.Т оса одают, добавл   в реак ционную смесь этиловый эфир, выдел ют фильтрованием и отмывают этиловым эфиром. Полученный твердый продукт дважды перекристаллизовывают из смеси этанола с этиловым эфиром, выход 1,6 г, т. пл. 141-155 С (с разложением) , Го.}; ..68,7°С (, диметилформамид),6 2 25000(0,1 н. сол на  кислота).
Найдено, %: С 57,53; Н 5,60;: N 12,99
OgNjj
Вычислено, %: С 57,65; Н 5,77; N 12,93.
Пример19. 4-Фенилазо-1-нафтиламид Ы-бензилоксикарбонил-1-про-лина .
4-Фенилазо-1-нафтиламин (4,9 г) и Ы-бензилоксикарбонил-1-пролин (5,0 г) соедин ют и затем реакционную смесь обрабатывают,как в примере 6. Конечный продукт получают в виде кристаллов, выход 3,5 г. т.пл. 136-138°С, -75,9°С (,0, диметилформамид ) ,
Найдено, %: С 72,68; Н 5,57; ,93
С,9 Нjq Оа N ,
вычислено, %: С 72,78; Н 5,48; N 11,71.
П р и м е р 20. 4-Фенилазо-1-нафТиламид-т-бутилоксикарбонил-глицил- , -L-пролина.
4-Фенилазо-1-нафтиламид-М-бензилoкcикapбoнил-L-пpoлинa (2,5 г) обрабатывают- 25%-ным раствором безводного бромистого водорода и уксусной кислоте (25 мл) и реакционную смесь 5 обрабатывают,как в примере 2.
Бромгидрат 4-фенилазо-1-нафтиламида t-пролина, полученный таким обра , зом, и т-бутилоксикарбон L-глицин (1,36 г) соедин ют с N, }-дициклоIQ гексилкарбодимидом и реакционную
смесь обрабатывают, как в примере 6. Сырой продукт очищают затем на хроматографической колонке, после чего конечный продукт получают в кристаллическом виде, выход 1,1 г.
5 На тонкослойной хроматограмме этот продукт про вилс  в виде одиночного п тна.
П р и м е р 21. 4-Фенилазо-1-нафтиламид глицил-L-пролина.
0 4-Фенилазо-1-нафтиламид т-бутилокси-глицил-L-пролина С1,0 г) обрабатывают моногидратом н-толуолсульфоновой кислоты (0,76 г) и реакционную смесь обрабатывают, как в примере 17.
5 Тозилат 4-фенилазо-1-нафтиламида глицилпролина, полученный таким образом , раствор ют в метаноле и нейтрализуют 5%-ным раствором гидрокарбоната натри  дл  высаждени  продукта.
« Высаженный из раствора продукт ввдел ют фильтрованием, отмывают водой, сушат   перекристаллизовывеиот из смеси метанола с водой, выход 0,67 г, т. пл. 127-138 С (с разложением), М , , диметилформа мидГ. t(KC 14.400 (0,1 н. сол на  кислота).
Найдено, %: С 66,45; Н 5,81; N 16,69
Cji H- iOjN -3/4H.
0 вычислено. %: С 66,56; Н 5,95; N 16,88
П р и м е р 22. Изучают св зь между инкубационным периодом и количеством гидролизованного субстрае та, использу  п-нитроанилид глицил-L-пролина и сыворотку человека в качестве субстрата и источника фермента соответственно, и пробу гйдролизованного субстрата отбирают дл 
последующего пр мого фотометрического измерени .
Тозилат п-нитроанилида глицил-L-пролина раствор ют в 2%-ном водном растворе неполного детергента (Nikkol NP-10, Nikko, Chemical, Osaca, Japan)
5 в концентрации 3 мм дл  получени  раствора субстрата. Затем приготовл ют следующие 4 пробирки:
экспериментальна  пробирка, содержаща  0,5 мл 0,15 М глицин-NaOH0 в качестве буфера (рН 8,7) О,5 мл
раствора субстрата и 0,5 мл человечес кой сыворотки;
пробирка,содержаща  0,5 мл 0,15 г-. глицин-NaOH в качестве буфера 0,5 wj:
5 раствора субстрата и 0,05 мл воды; эталонна  пробирка, содержаща  0,6 мл буфера, 0,5 мл субстрата и 0,5 мл водного раствора п-нитроанили на; контрольна  пробирка, содержаща  0,5 мл буфера и 0,5 мл субстрата. Все пробирки инкубируют при 37°С в течение времени, указанного в табл.1,и затем реакцию останавли;вают добавлением 3,О мл 1 М ацетата в качестве буфера (рН 4,2) в каждую пробирку. В контрольную пробирку добавл ют 0,05мл человеческой сыворотки после остановки реакции. Фотометр устанавливают на нуль с помощью холостой пробирки, а затем измер ют поглощение экспериментальной (э), контрольной (к) и стандартной (С) пробирок на длине волны 385 мл в кю вете толщиной 1 см. Количество п-ни роанилина, освобожденного в реакции с ферментом, рассчитывают по уравне -Ц. 150 (н моль) . Результаты приведены в табл.1. Таблица 1 Результаты этих испытаний подтверждают , что реакци  ферментации линейно зависит от времени. Ту же самую процедуру повтор ют той разницей, что вместо человеческ сыворотки используют гомогенный фер мент, выделенный препаративно из по челюстной железы человека. Пример23. Зависимость межд количеством фермента и количеством гидролизованного субстрата изучают тозилате п-нитроанилида глицил-L-пролина и человеческой сыворотке, которые используют в качестве субстрата и источника фермента соответственно , и пробу на гидролизуемость субстрата осуществл ют по сле дующим азосочетани м. Приготовл ют следующие пробирки: экспериментальна  пробирка,- содержаща  1,0 мл 0,15 М глицин-NaOH в качестве буфера (рН 8,7), 1,0 мл раствора субстрата, приготовленного в примере 21, и человеческую сыворотку в объеме, указанном в табл.2. контрольна  пробирка, содержаща  1,0 мл глицин-NaOH в качестве буфера и 1,0 мл раствора субстрата. Обе пробирки, как экспериментальную , так и контрольную, инкубируют при.37с в течение 30 мин, а затем добавл ют 0,1 мл человеческой сыворотки в контрольную пробирку. Реакцию останавливают добавл   0,4 мл 30%-ного водного раствора хлорной кислоты. После центрифугировани  со скоростью 3000 об/мин в течение 10 мин каждые 0,5 мл надосадочной жидкости перенос т в другую пробирку, Кроме того 0,1 мл водного раствора п-нитроанилина и 2,4 мл 30%-ного раствора хлорной кислоты добавл ют в эталонную пробирку, а 2,5 мл раствора хлорной кислоты - в холостую пробирку . Во все четыре пробирки добавл ют по 0,5 мл 0,2%-ного водного раствора нитрита натри  при и при этой температуре их выдерживают в течение 10 мин. Затем добавл ют 0,5 мл свежеприготовленного 0,5%-ного водного раствора сульфата аммони . Через 2 мин добавл ют 1,0 мл 0,05%ного раствора N-(1-нафтил)-этилендиамина и пробирки инкубируют при в течение 30 мин в темноте. Фотометр устанавливают на нуль с помощью холостой пробирки, измер ют поглощение экспериментальной (Э), контрольной (К) и стандартной (с) пробирок при 548 нм. Количество п-нитроанилина, образовавшегос  с помощью фермента, рассчитывают по уравнению ( Е - с) X 500 А 2,5 1 ОТЗ где А есть объем 0,5 мМ водного раствора п-нитроанилина, использованного в стандартной пробирке (мл). Результаты приведены в табл. 2. Таблица 2 Результаты этих испытаний подтверждают , что реакци  ферментации линейно зависит от количества фермента .
Пример 24, ЗмМ раствора суОстратов приготавливают, как в примере 2, причем в качестве субстратов используют различные дипептидные производные или их соли. Активности фермента по отношению к раэличньм субстратам , скорости гидролиза и оптимальные значени  рН различных субстратов с помощью фермента измер ют, как в примере 22.
Результаты приведены в табл. 3. Таблица 3
п-Нитроанилид-1-лиИзмер ют активности очищенного фермента подчелюстной железы человека в 0,15 М трисмалеат буфере с рН 5,6-8,8 и в 0,15 М глицин-NaOH буфере с рН 8,2-0,4. Дл  п-нитроан лида 1-аланил-1-пролина в качестве буфера вместо глицина используют индол, так как глицин затрудн ет фотометрирование при значени х рН 9-10. Значени  К измер ют дл  трисмал ат буфера с рН 7,0 с применением фермента подчелюстной железы человека . Приведенные значени   вл ютс  средними из повторных экспериментов Измер ют активности при рН 7,0 в 0,15 М трисмалеат буфере или при рН в 0,15 М глицин-NaOH буфере. При веденные значени   вл ютс  средними из повторных экспериментов. Очищенный фермент получают следующим способом. Фермент перевод т в растворимое состо ние..из микросоматической фракции автодигерировани и последовательно очищают фракциони рованием с помощью (NH4) с последующей очисткой Sephadex G-200 хроматографией. Субстрат используют в виде дитозилата . Субстрат используют в виде хлоргидрата . Пример 25. Продукты, полученные после инкубировани  в течение 30 мин различных п-нитроанилидов X-L-пролинов с очищенным ферментом подчелюстной железы человека или с .человеческой сывороткой, как в примере 22, используют с помснцью бумажной хроматографии, причем в качестве N-кЬнечных аминокислот (X) используют остатки глицина, L-аланина, L-глутаминовой кислоты, L-аспаргиловой кислоты, L-лизина и L-аргинина. В этом случае, когда используют очищенный фермент, на хроматограмме идентифицируют кроме субстрата только X-L-пролин и п-нитроанилид, а Х-ОН, L-пролин или п-нитроанилид L-пролина не наблюдались. . В этом случае, когда в качестве фермента используют человеческую сыворотку, а в качестве субстрата п-нитроанилид - глицил-пролина, на хроматограмме идентифицируют глицил-L-пролин-глицин , L-ПЕЮЛИН и п:-нитроанилид , а п-нитроанилид L-пролина обнаружен не был. При исследовании скорости гидролиза п-нитроанилида L-пролина человеческой сывороткой обнаружено, что гидролизу подверглось всего лишь 0,7% п-нитроанилида глицил-L-пролина . Было показано, что человеческа  сыворотка гидролизует глицин-L-пролин из глицина и L-npoпина . Эти результаты показывгиот, чт глицил-L-пролин может быть гидролиэован предпочтительно Х-пролилдипептидиламинопептидазой , содержащей в сыворотке человека, с получением вначале п-нитроанилида и глицил-L-пролина , который далее гидролизуэтс  до глицина и L-пролива другим ферментом в человеческой сыворотке. Пример 26. ЗмМ раствора су зтрата приготавливают, как в примере 22, причем в качестве субстрата используют тозилат п-фенилазоанилида глицил-L-пролина и 4-фенилазо-1-нафгаламид глицил-1-пролина. Испытание активности фермента осуществл ют, добавл   0,05 мл чело веческой сыворо ки в смесь 0,5 мл 1,5 мм буфера глицин-NaOH (рН 8,7) и О,5 мл субстрата раствора в экспериментальной пробирке, выдержива  полученный раствор в течение 30 мин при 37°С и останавлива  затем реакцию добавлением 3,0 мл 1 н. сол ной кислоты. Поглощение п-фенилазоанилиЗначени  активности у молодых лужчин (не старше 40 лет) были значительно выше, чем у молодых женщин, э 0,001.
Значени  активности у пожилых женщин были значительно выше, чем у . молодых женщин, р 0,05.
Normal (control)
88 54,9+1,5 23 75,8+28,5 Мераt i tus
П р и м е р 29, Была измерена активность Х-пролилдипептидиламинопептидазы , как в примере 22, с использованием п-нитроанилида глицил-L-пролина и человеческой сыворотки в качестве субстрата и фермента соответ ,ственно.
Результаты приведены в табл. 5.
Таблица 5
Р . 0,01 да глицил-L-пролива А 493 нм 0,18 и дл  4 фенилазо-1-нафтиламида П 532 мм 0,80. Эти значени  сопоставимы с теMKj которые были получены дл  п-нитроанилида глицил-L-пролина. П р и м е р 27. Была измерена скорость гидролиза п-фенилазоанилида глицил-1-пролина по методике примера 26 с применением человеческой сыворотки в качестве фермента. Однако холоста  пробирка содержала воду вместо раствора фермента, как это было в экспериментальной пробирке, а стандартна ; пробирка содержала 3 мМ раствор п-фенилазо-анилина вместо раствора фермента в экспериментальной пробирке. В результате скорость составила 18,7 г моль/мин/1 сыв. П р и м е р 28. По методике примера 22 была измерена активность Х-пропилдипептидиламинопептидазы , в качестве фермента использовали 88 и человеческую сыворотку и п-нитроанилид глицил-1-пролина в качестве субстрата . Результаты приведены в табл.4. Таблица 4
- 19
x4i c--,, ., ,
,. ,., .4 .-..
Early essential nyper tens ion Fixed essential
78685320
. Продолжение табл, 5
20
80,94+3,87
P 0,001

Claims (2)

  1. Формула изобретения г
    1. Способ определения активности Х-пролилдипептидиламинопептидазы, отличающийся тем, что фермент инкубируют с субстратом общей формулы X-L-nponHH-J или его кислой солью при температуре от 30 до
    45еС в водной среде при pH 6-9 и определяют количество высвободившегося вещества формулы Υ-н, где X — остаток глицина, L-алацина, L-глутаминовой кислоты, L-аспарагиновой кислоты, L-лизина, L-аргинина, У - остаток п-нитроанилина, п-фенилазоанилина, или 4-фенилазо-1-нафтиламина.
  2. 2. Способ поп.1, отличающийся тем, что в качестве кислой 'соли используют соль соляной кислоты, бромистоводородной кислоты или η-толуолсульфокислоты .
    ВНИИПИ Заказ 8872/63 Тираж 673 Подписное
    Филиал ППП ’’Патент·', г. Ужгород, ул. Проектная, 4
SU762415363A 1975-10-30 1976-10-29 Способ определени активности х-пролилдипептидиламинопептидазы SU786853A3 (ru)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP50130809A JPS5255593A (en) 1975-10-30 1975-10-30 Measuring method of enzyme activity

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU786853A3 true SU786853A3 (ru) 1980-12-07

Family

ID=15043202

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU762415363A SU786853A3 (ru) 1975-10-30 1976-10-29 Способ определени активности х-пролилдипептидиламинопептидазы

Country Status (9)

Country Link
US (1) US4119620A (ru)
JP (1) JPS5255593A (ru)
CA (1) CA1080216A (ru)
DE (1) DE2649171A1 (ru)
FR (1) FR2329646A1 (ru)
GB (1) GB1518207A (ru)
NL (1) NL7612030A (ru)
SE (1) SE7612064L (ru)
SU (1) SU786853A3 (ru)

Families Citing this family (18)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4176009A (en) * 1976-01-24 1979-11-27 Ajinomoto Co., Inc. Method of measuring collagenase activity
CH626872A5 (ru) * 1976-06-21 1981-12-15 Hoffmann La Roche
PH14141A (en) * 1976-06-25 1981-03-05 Hoffmann La Roche Pharmaceutical composition containing dipeptide derivatives
JPS53105477A (en) * 1977-02-26 1978-09-13 Ajinomoto Co Inc 7-glycylprolylamono-4-methylcoumarine
DE2921216A1 (de) * 1979-05-25 1980-12-04 Teschemacher Hansjoerg Pharmakologisch aktive peptide
DE2936543A1 (de) * 1979-09-10 1981-04-09 Behringwerke Ag, 3550 Marburg Chromogene verbindungen
US4309342A (en) * 1980-07-03 1982-01-05 Abbott Laboratories Antibacterial peptides
US4448715A (en) * 1981-11-02 1984-05-15 University Of Miami Tagged pyroglu-L-Phe-L-Arg derivatives, substrates and assays for kallikrein
DK201084A (da) * 1983-04-28 1984-10-29 Kimberly Clark Co Fremgangsmaade til bestemmelse af cathepsin b i naervaerelse af andre proteolytiske enzymer, og forbindelser til anvendelse ved fremgangsmaaden
EP0490379A3 (de) * 1990-12-13 1992-06-24 BERLIN-CHEMIE Aktiengesellschaft Diaminosäurederivate und pharmazeutische Zusammensetzungen
US6297024B1 (en) 1998-10-15 2001-10-02 Cell Activation, Inc. Methods for assessing complement activation
US6235494B1 (en) 1999-02-08 2001-05-22 The Scripps Research Institute Substrates for assessing mannan-binding protein-associated serine protease activity and methods using the substrates
US6261794B1 (en) 1999-10-14 2001-07-17 Saint Louis University Methods for identifying inhibitors of methionine aminopeptidases
US8414543B2 (en) 1999-10-22 2013-04-09 Rex Medical, L.P. Rotational thrombectomy wire with blocking device
US20020182701A1 (en) * 2001-08-30 2002-12-05 Saint Louis University Dominant negative variants of methionine aminopeptidase 2 (MetAP2) and clinical uses thereof
WO2005082109A2 (en) * 2004-02-26 2005-09-09 Massachusetts Institute Of Technology Solution additives for the attenuation of protein aggregation
US9023070B2 (en) 2010-05-13 2015-05-05 Rex Medical, L.P. Rotational thrombectomy wire coupler
US8663259B2 (en) 2010-05-13 2014-03-04 Rex Medical L.P. Rotational thrombectomy wire

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SE407405B (sv) * 1975-07-11 1979-03-26 Kabi Ab Nya kromogena trombinsubstrat
PH14141A (en) * 1976-06-25 1981-03-05 Hoffmann La Roche Pharmaceutical composition containing dipeptide derivatives

Also Published As

Publication number Publication date
CA1080216A (en) 1980-06-24
DE2649171A1 (de) 1977-05-18
GB1518207A (en) 1978-07-19
SE7612064L (sv) 1977-05-01
JPS5620839B2 (ru) 1981-05-15
US4119620A (en) 1978-10-10
FR2329646B1 (ru) 1981-07-10
NL7612030A (nl) 1977-05-03
JPS5255593A (en) 1977-05-07
FR2329646A1 (fr) 1977-05-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
SU786853A3 (ru) Способ определени активности х-пролилдипептидиламинопептидазы
US5035999A (en) Aminoluciferin derivatives, processes for the production thereof and their application in the determination of enzyme activities
SU1277904A3 (ru) Способ получени трипептидов
PL89227B1 (ru)
PL90746B1 (ru)
US4167449A (en) Composition and method for determining transferase and protease activity
IL43735A (en) Derivatives of gamma-glutamyl-4-nitroanilide and process for the preparation thereof
US4056519A (en) Substrate for assay of plasmin
US4191808A (en) Method of measuring dipeptidyl-amino-peptidase activity
DK145799B (da) Tripeptider eller salte deraf til anvendelse som diagnostisk kromogent substrat med hoej specificitet overfor thrombin og thrombinlignende enzymer
JPS585674B2 (ja) アルファヒドロオキシジペプチド受媒質類
US4176009A (en) Method of measuring collagenase activity
EP0224254B1 (en) a novel substrate for plasma kallikrein and a method for measuring biological components using the same
Shalitin et al. Cooperative Effects of Functional Groups in Peptides. II. Elimination Reactions in Aspartyl-(O-acyl)-serine Derivatives1
US4507232A (en) Peptide derivatives
CA1087075A (en) Composition and method for determining transferase and protease activity
US4234477A (en) α-N-Acetyl-L-phenylalanyl-L-arginine ethyl ester
US4260681A (en) Reagent system and method for assaying peptidase enzymes
JP4043535B2 (ja) ペプチド基質並びにこれを用いるプロテイナーゼa活性およびビールの泡安定性の測定方法
JPS60208999A (ja) チオペプトライド、およびそれを基質とするコラゲナ−ゼの測定法
JP2660864B2 (ja) アミノアセトフェノン誘導体及びそれを用いた酵素活性測定法
KR910004208B1 (ko) 효소활성을 측정키 위한 신규의 아미노산 치환된 4-아미노페나존
JPS58177951A (ja) 発色性ペプチドおよびその製法
JP3667470B2 (ja) 酸性カルボキシペプチダーゼ活性の測定法及び測定試薬
JP2583440B2 (ja) 酵素活性測定用の基質及びそれを用いる酵素活性測定方法