SU665635A1 - Способ иммобилизации нуклеиновых кислот - Google Patents

Способ иммобилизации нуклеиновых кислот Download PDF

Info

Publication number
SU665635A1
SU665635A1 SU772499202A SU2499202A SU665635A1 SU 665635 A1 SU665635 A1 SU 665635A1 SU 772499202 A SU772499202 A SU 772499202A SU 2499202 A SU2499202 A SU 2499202A SU 665635 A1 SU665635 A1 SU 665635A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
nucleic acids
cellulose
increase
dna
mixture
Prior art date
Application number
SU772499202A
Other languages
English (en)
Inventor
В.В. Романов
В.К. Старостина
Original Assignee
Специальное Конструкторско-Технологическое Бюро Биологически Активных Веществ
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Специальное Конструкторско-Технологическое Бюро Биологически Активных Веществ filed Critical Специальное Конструкторско-Технологическое Бюро Биологически Активных Веществ
Priority to SU772499202A priority Critical patent/SU665635A1/ru
Application granted granted Critical
Publication of SU665635A1 publication Critical patent/SU665635A1/ru

Links

Landscapes

  • Saccharide Compounds (AREA)
  • Solid-Sorbent Or Filter-Aiding Compositions (AREA)

Abstract

СПОСОБ ИММОБИЛИЗАЦИИ НУ]КЛЁ. ИНОВЫХ КИСЛОТ, включающий сорбцию нуклеиновых кислот из водных растворов на целлюлозу, обр^абот'ку, привод щую к ковалентнс»1у св зывани  нуклеиновой кислоты с целлюлозой, и отмывку продукта водными растворами Had и. водой, отличаю?* . щ и и с   тем, что, с целью упрощени  процесса, увеличени  содержа- н^  нуклеиновых кислот в готовом продукте, увеличени  выхода по св зы ванию РНК и повышени  устойчивости продукта к действию нуклеаз, сорбцию нуклеиновых' кислот провод т, на аминоэтилцеллюлозе при 60-100°С в течение 15-40 мин с последующим введением в' реакционную смесь глута- рового альдегида до содержани  его;в смеси, равного 0,25-4%, и выдерживанием смеси при 20-100''с в те-.чение 120-10 мин.'(/)с сО)at) елСП)со ел

Description

Изобретение относитс  к области биохимии, а именно к способам ШФюбилизации нуклеиновых кислот. Способ может быть применен дл  полу.чени  эффективных сорбентов дл  аффинной хроматографии белков.
Известен способ иммобилизации нуклеиновых кислот путем включени  их в гранулы полиакриламидного гел  tlj.
Недостатками этого способа  вл йтс  низкое содержание нуклеиновой кислоты в препаратах, неустойчи .вость препаратов к действию нуклеаз невозможность иммобилизации низкомолекул рных нуклеиновых кислот и плохие гидродинамические свойства hperiapaTOB.
Известен р д способов иммобилизации нуклеиновых кислот посредством св зывани  их с активированной матрицей С2-4 . Эти Способы свод тс  к |следую1цему:: гидрофильную матрицу, чаще всего агарозу, обрабатывают бромистым цианом с целью активации, затем промывают водными растворами солей (NaCl или.КС1) и водой. К активированной матрице приливают раствор нуклеиновой кислоты (ДНК или РНК) и Инкубируют смесь. Затем промывают препараты водными растворами солей (NaCl .С) дл  удалени  несв завшихс  нуклеиновых кислот.
Таким образом, получают препараты иммобилизованных нуклеиновых кислот с содержанием ДНК или РНК 0,3-0,6 мг/г матрицы (0,050 ,1 мг/мЛ гел }. Полученные преhapaTH подвержены действию нуклеаз и период их полужизнй составл ет 5-10 дней натийную ДНК таким способом иммобилизовать невозможно.
Недостатками этих способов  вл ютс  использование токсичного вещества, бромистого циана, низкое содержание нуклеиновых кислот в продукте, нестабильность препаратбв Ьри взаимодействии с нуклеазами , невозможность иммобилизации натизвной ДНК.
Р1звестен также способ иммобилизации нуклеиновых кислот, ДНК и РНК С5 , заключающийс  в той, что порошок целлюлозы пропитывают растворами нуклеиновых Кислот, смесь размазывают тонким слоем и сушат в токе вОзду са в течение 16-24 ч. Затем сухой продукт суспендирует в спирте и суспензию облучают ртутной лампой мощностью 100000 эрг/г в течение l5-ЗО МИН. Спирт отфильтровывают , готовьй продукт промывают водным раствором NaCl и водой. Выход по св зыванию ДНК 90%, по св зыванию РНК 23-25%. Этим способом получают препараты, содержащие
13 мг ДНК/г матрицы и 1 мг РНК/г матрицы.
Недостатками этого способа  вл ютс  длительность получени  препарата (2 сут), низкое содержание нуклеиновых кислот в готовом продукте, низкий выход по св зыва- , нию РНК и низка  устойчивость продукта к воздействию . нуклеаз. Цель изобретени  - упрощение
0 процесса иммобилизации, увеличение содержани  нуклеиновых кислот в готовом продукте, увеличение выхода по св зыванию РНК и повышение устойчивости продукта к действию
5 нуклеаз.
Цель достигаетс  за счет того, что сорбцию нуклеиновых кислот производ т на аминоэтилцеллюлозе при 60--100°С в течение 15-40 мин с поQ следующим введением в реакционную смесь глутарового альдегида до содержани  его в смеси, равного 0,254% , и выдерживанием смеси при 20ЮО С в течение 120-10 мин.
5 Процесс провод т следующим образом .
В качестве носител  берут АЭ-целлюлозу отечественного производства (Биохимпрепарат, г.Олайне) или производства Реанал (Венгри ),
0 Иммобилизации подвергают ДНК из тимуса и молок лососевых рыб (СКТБ БАБ и Koch-Light и РНК из печени и E.coli MRE-600 (СКТБ ВДВ).
Способ включает следующие стадии.
5 1. Нуклеиновые кислоты (ДНК или РНК) собирают из водного раствора на ЛЭ-целлюлозе в течение 15-40 мин. Содержание нуклеиновых кислот в водном растворе составл ет до 60 мг/мл;
0 Увеличение времени сорбции от 15 до 40 мин позвол ет получить препарат с более высоким содержанием нуклеиновых кислот. Дальнейшее увеличение времени сорбции практически не приводит к увеличению св зывани  нуклеиновых кислот. Уменьшение времени (менее 15 мин) приводит к получению препарата с низким содержанием нуклеиновых кислот, что нежелательно.
2, Обрабатывают получаенную суспензию нерастворимого комплекса АЭ-целлюлоза - нуклеинова  кислота водным раствором глутарового альдегида при 20-100°С в течение 12010 мин. Концентрацию глутарового аль дегида в реакционной смеси поддерживают равной объемным 0,25-4,0%. Указанные концентрации глутарового альде гида оптимальны и свойства полученных препаратов идентичны. Уменьшение
0 концентраций приводит к увеличению рабочих объемов, а увеличение концентрации создает неудобства при перемешивании массы. Перемешивание необходимо Дл  равномерного распреде5 .лени  глутарового альдегида по
объему. Увеличение температуры nr iMOбилиэации приводит к сокращению времени обработки.
3, Полученную суспензию отфильтро Бывают на фильтре водным раствором ЫаС1 и водой дл  удалени  несв завшихс  нуклеиновых кислот,
Таким образом, иммобилизуетс  80-90% нуклеиновы5 кислот, внесенных в реакционную смесь. Содержание нуклеиновых кислот в препаратах составл ет до 130 мг/г сорбента. Способ позвол ет получать rtjJenapaTbi, содержавшие заданное коли 1ество нуклеиновых кислот. Длительность процесса тгоЛу 1ений иммйбйлизованных иуклёиновь х кислот составл ет 0,53 ч в зависимости от условий реакЦии , .. ,,..,. -; Препараты йммобилиэованнйх нуклей Новйх кйслот на Аэ-целлюлозе устойчивй к действию нуклеаз как в услови х хроматйграфии, так и в жёстких УСЛОВИЯХ, при йсчерпывакедём гйдролйЭе йз« Му1{Леаэой Serratia marcescens (20 ч при температуре ). В услови х хроматографии сродства на колонке иммббилйзбванной ДНК препаратов терйииальной дезоксинуклеотидйлтрнасфераэы КЗ тимуса, содержащий принеси нуклеаз, иммобилизованмай ДНК пбЛйЪстьй стабильна и получаемый прёпарйт феЕмента не содержит примесей иуклейновых кислот,
При ис ерпыёагощем Гидролизе иммобилизованных ДНК и РНК нуклеазой Serratla marcescens от препаратов, срдер сащйх денатурировайные ДНК и РНК б.тщёпл етс  10-18% нуклеЬтидного материала, а от препаратов,содержащих активную ДНК - 41%. В то же , аналогична  обработка нуклеазой препаратов, не обработанных глу таровым альдегидом, приводит к отщеплению 65% нуклеотидного материала . Препараты иммобилизованных нуклеиновых кислот на АЭ-целлюлозе стабильны в. течение года при многократном использовании и хранении, Использование им юбилизoвaннoй ДНК в качейтйе сорбента дл  хроматографии средства терминальной дезоксинуклеотидилтрансфераэы из тимуса позвол ет провести очистку фермента по белку в 3-5 раз с выходом активности 6075% , очистку от нуклеаз в 15-30 раз, очистку от фосфодиэстераз в 50200 раз.
Пример 1, 25 мл водного раствора денатурированной ДНК или РНК с концентрацией 10 мг/мл (200 об, е,/мл, измеренные при 260 им на приборе СФ-16), погружают в воду, имеющую температуру кип щей вод ной бани, на 10 мин и всыпают в нее 10 г влажной АЭ-целлюлозы (4 г суЗсого веса). Смесь выдерживают в течение 15 мин на кип щей вод ной
бане при посто нном перемемиваНий, Затем добавл ют 6Мп3%-ного водного раствора глутарового альдегида до концентрации его в реакционной смеси 0,5 Об,% и инкубируют смесь еще в течение 10 мин на кип щей вод ной ёане. Полученный осадок, представл ющий сОбоЙ иммобилизованную нуклеиновую кислоту (ДНК или РНК), перенос т на стекл нный порис0 тый фильтр, промывают водным раствором 1м NaCl до Отсутстви  оптиШской плотности ДНк в промывных водах и водой,
Св зывание нуклеиновых кислот с
5 ДЭ-целлюлозой 80-90%, содержание нуклеиновых кйслОт 50-60 мг/г матрицы .
Иммобилизованна  РНК стабильна в услови х хрОйатрграфйи ферментных препаратов, содержащих нуклеазы.
0 При исчерпывающем гидролизе эндонук-, лeaзoйSerratia/merc.ecsceйs (20 ч При ) от матрицы отщепл етс  не более 18% нуклеотидного материала , Св занного с матрицей. Препара5 ты стабильны в течение года при ЛерирдНЧёском использовании и хранении при 4°С.
П р и м е р 2, №1Мо(ЗйЛизат ;йю нуклеиновых кислОт провод т как в
0 примере 1, за исключением того, что дл  и fr1oбилизaции берут ВО мл водного раствора денатурированной нуклеиновой кислоты и инкубируют с :АЭ-целлюлозой в течение 30-мин. При
5 9ТОМ получают препараты иг««1обилизованных нуклеиновых кислот (ДНК или РНК) с содержанием ДНК или РНК 100120 мг/г матрицы.
Пример 3, Иммобилизаци 
0 нативной ДНК,
К 2 г влажной АЭ-цёллюлозы (0,66 г сухого веса приливают 11 мЛ раствора ДНК с концентрацией 2,3 мг/мл. Инкубируют смесь в течение 20 мин при 60°С при непрерывном перемешивании.
5 Затем в смесь вливают 1 мл 3% глутарового альдегида до концентрации его в реакционной смеси 0,25 об,% и инкубируют в течение 2 ч при 25с при непрерывном перемешивании. После
0 окончани  выдержки смесь перенос т на стекл нный фильтр, промь вают водным раствором 1М NaCl до отсутстви  оптической плотности ДНК в элюате и водой, .
5
Получают препарат, содержащий 30 мг (ДНК) г сухого веса препарата. Выход по иммобилизации ДНК составил 80%, При проведении исчерпывающего гидролиза энденуклеаэой от мат0 рицы отщепл етс  40% иммобилизованной ДНК, При аналогичной ,обработке образца, необработанного альдегидом, отщепл ют 65% ДНК.
Пример 4. Иммобилйзаци нуклеиновых ки.слот провод т как в при5 мере I, за исключением того, что в смесъ 1обавл ют 5 мл 25%-ного йодйо )адтёо|зй глута ового альдегида (концентраци  глутарового альг егида й реакционной сйеЪи сосгйвл е 4,0 O6.I). тСй эвгоаНиё нуклеиновых кислот с АЭ-целлюлоэой 80-90%, сидержание нуклеиновых кислот 50 ,60 мг/г. При исчертывающем г идролизе эндонуклеазой Sefratla marcecscena от препарате отщепл етс  не 5 более 20% содержащейс  в нем ДНК.

Claims (1)

  1. СПОСОБ ИММОБИЛИЗАЦИИ НУКЛЕ. ИНОВЫХ КИСЛОТ, включающий сорбцию нуклеиновых кислот из водных растворов на целлюлозу, обработку, приводящую к ковалентному связыванию нуклеиновой кислоты с целлюлозой, и Отмывку продукта водными растворами ЯаС1 и. Водой, отличаю?* . щ ий с я тем, что, с целью упрощения процесса, увеличения содержания нуклеиновых кислот в готовом продукте, увеличения выхода по связыванию РНК и повышения устойчивости продукта к действию нуклеаз, сорбцию нуклеиновых' кислот проводят, на аминоэтилцеллюлозе при 60-100°С в течение 15-40 мин с последующим введением в' реакционную смесь глутарового альдегида до содержания его в смеси, равного 0,25-4%, й выдерживанием смеси при 20-100°С в те.чение 120-10 мин. ' е
SU772499202A 1977-06-13 1977-06-13 Способ иммобилизации нуклеиновых кислот SU665635A1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU772499202A SU665635A1 (ru) 1977-06-13 1977-06-13 Способ иммобилизации нуклеиновых кислот

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU772499202A SU665635A1 (ru) 1977-06-13 1977-06-13 Способ иммобилизации нуклеиновых кислот

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU665635A1 true SU665635A1 (ru) 1984-02-23

Family

ID=20714515

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU772499202A SU665635A1 (ru) 1977-06-13 1977-06-13 Способ иммобилизации нуклеиновых кислот

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU665635A1 (ru)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
1. Cavalieri Е., Carrol Е., •А DNA-acrylamide gel column foranalyzing proteins that bind to 'DNA.I DNA-polymerase. Proc. Nat.AcadSci. iTsA, 67, 807-812, 1970.2. Poonian M.S., Schlabach . J.^Weissbach A, , Covalent attac^.ment of. ;пйс1еГс acids to agftrose for affinitychromatography Biochemistry,10,424-427^ 1971..3.Roberson D.L., Davidson N.,Covalent coupTing of ribonucleicacid to agarose. Biochemistry, 11,533I9t2. ;^ 4, Berridge M..U. Aronson A.J.,An ad8ay,for the endonucleolyticcieavafee of DNA to lagre oligoniic-leotides, Anal. Bioch. 53, 603-612,-1973.:: 5. Smith J., Smith H., Pifcp S., iPreparation and use of RNA-cellu-loseiColumnlB . Anal. Bioch. 48, 27-32,ad72. -<54) *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DE2905671C2 (de) Immobilisiertes Enzympräparat und Verfahren zu seiner Herstellung
JP3217286B2 (ja) Dna固定化複合体
DE69133521T2 (de) Verwendung von vernetzten Kristallen als neue Form von Immobilisierung von Enzymen
GB2034242A (en) Enzyme-containing membrane for use in electrochemical analysis cell
FI85284C (fi) Foerfarande foer framstaellning av ett immobiliserat enzympreparat med hjaelp av ett tvaerbindningsmedel.
JPS6261600B2 (ru)
US4522724A (en) Diazonium affinity matrixes
US4950600A (en) Method of immobilizing enzymes or microbes with alginate having a low mannuronic acid to guluronic acid ratio
SU499813A3 (ru) Способ получени водонерастворимого ферментного препарата
JPS6356501A (ja) アフイニテイークロマトグラフイー用カラム充填剤及びその製造方法
Sakai A ribonucleoprotein which catalyzes thiol-disulfide exchange in the sea urchin egg
FR2500009A1 (fr) Procede et systeme de necessaire experimental diagnostique pour determiner quantitativement la presence de la forme isoenzymatique mb de la creatine kinase
SU665635A1 (ru) Способ иммобилизации нуклеиновых кислот
JPS6331538A (ja) 固定化用担体
US4069106A (en) Immobilization of enzymes on keratin
US6136925A (en) Hydroxyl group-containing covalently bound polymer separating materials and processes for their preparation
JPH066601B2 (ja) ゲル又は固定化ゲルの製造法
BUXBAUM et al. Binding of ATP and ATP analogues to the uncoating ATPase Hsc70 (70 kDa heat-shock cognate protein)
SU1326616A1 (ru) Способ получени иммобилизованной рибозофосфатизомеразы
SU1090715A1 (ru) Способ получени иммобилизованной уреазы
RU2068703C1 (ru) Способ получения магноиммуносорбентов
RU1836957C (ru) Способ получени трофобластического бета @ -гликопротеина
SU586182A1 (ru) Способ получени иммобилизованной амилазы
Saudek et al. Immobilization of DNA on poly (glycidyl methacrylate-co-ethylene dimethacrylate), bead cellulose and sepharose
JPH0655141B2 (ja) 固定化酵素およびその製法