SU454736A3 - Способ получени пептидов - Google Patents

Способ получени пептидов

Info

Publication number
SU454736A3
SU454736A3 SU1700240A SU1700240A SU454736A3 SU 454736 A3 SU454736 A3 SU 454736A3 SU 1700240 A SU1700240 A SU 1700240A SU 1700240 A SU1700240 A SU 1700240A SU 454736 A3 SU454736 A3 SU 454736A3
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
valyl
peg
glycyl
residue
amino acid
Prior art date
Application number
SU1700240A
Other languages
English (en)
Inventor
Дитер Гиллессен
Ханс Кюнци
Рольф Штудер
Эрнст Байер
Манфред Муттер
Original Assignee
Ф.Гоффманн-Ля Рош И Ко Аг (Фирма Швейцария)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ф.Гоффманн-Ля Рош И Ко Аг (Фирма Швейцария) filed Critical Ф.Гоффманн-Ля Рош И Ко Аг (Фирма Швейцария)
Application granted granted Critical
Publication of SU454736A3 publication Critical patent/SU454736A3/ru

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K1/00General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/04General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length on carriers
    • C07K1/042General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length on carriers characterised by the nature of the carrier
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K5/00Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K5/04Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof containing only normal peptide links
    • C07K5/10Tetrapeptides
    • C07K5/1002Tetrapeptides with the first amino acid being neutral
    • C07K5/1005Tetrapeptides with the first amino acid being neutral and aliphatic

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Separation Using Semi-Permeable Membranes (AREA)

Description

1
Изобретение относитс  к получению пептидов на иолимерных носител х в гомогенной фазе.
Известный способ получени  пептидов на полимерном носителе в органическом растворителе состоит в том, что N-защищенную аминокислоту в виде соли конденсируют при нагревании в органическом растворителе с хлорметилированным полистиролом. N-защиту удал ют известными методами и необходимую аминокислотную последовательность создают конденсацией полимер - аминокислоты с соответствуюш ,ими М-запдищенными аминокислотами в растворе. Иосле каждой стадии полимер - пептид отдел ют от низкомолекул рных веществ осаждением. После постройки аминокислотной последовательности пептид отдел ют от полимера. Применение известного способа св зано с некоторыми трудност ми. Вопервых , присоединение первой аминокислоты к полимеру требует относительно жестких условий реакции (нагревание в присутствии триэтиламина ). Во-вторых, осаждение полимерпептида после каждой стадии происходит не полностью, вызывает его фракционирование и
увлечение в осадок низкомолекул рных примесей . Это ириводит к потер м целевого пептида и его загр знению.
Предлагаемый способ получени  позвол ет
избежать указанных трудностей. N-защищенпую С-концевую аминокислоту создаваемого пептида св зывают в м гких услови х в растворе сложноэфирной св зью с гидроксилсодержащим полимером - носителем с мол. в.
10000-100000. В качестве полимера - носител  могут быть исиользованы полиэтиленгликоли , их сложные эфиры с лимонной кислотой, сополимеры полиэтиленгликол  с  нтарной кислотой и т. д. Образование сложной
эфирной св зи можно проводить, например , с помощью дициклогексилкарбодиимида . Можно также предварительно вводить С-концевую аминокислоту в мономер, а затем получать полимер-носитель с присоединенной
аминокислотой. N-защиту с полимер - аминокислоты удал ют, например, ацидолизом или гидрированием. Полимер отдел ют от низкомолекул рных веществ диализом, ультрафильтрацией , колоночной хроматографией или противоточным распреде пением, а не осаждением , как в известном способе. Дальнейшее ступенчатое наращивание пептидной цепи ведут как обычно, примен   дл  образовани  амидной св зи дициклогексилкарбодиимид, алкилхлорформиат , азиды пли активированные эфиры N-защищенных аминокислот. Реакцию провод т в растворе в органических растворител х . Дл  водорастворимых полимеров-носителей возможно образование амидной св зи в водной среде. В этом случае как конденсирующее средство иримен ют водорастворимый карбодиимид . После каледой стадии конденсации N-защиту отщепл ют подход щим способом и полимер отдел ют от иизкомолекул рных веществ . Разрушение св зи готового пептида с полимером-носителем провод т известными методами, наиример щелочным гидролизом или аммонолизом. Пептид отдел ют от полимера одним из указанных методов.
Пример 1. Этерификаци  БОК -валил-ОН с ПЭТ (мол. в. 20000).
20 г ПЭГ 4,34 г БОК-валил-ОН и 4,12 г ДЦК раствор ют в 200 мл CH2CI2 и перемешивают при комнатной температуре без доступа влаги в течение 5,5 суток. Реакционную смесь выпаривают в вакууме досуха, прибавл ют 100 мл 4 н. НС1/диоксана, перемешивают при комнатной температуре в течение 30 мин и выпаривают досуха в вакууме. Остаток раствор ют иримерно в 1 л воды. Образующийс  при этом осадок выдел ют при помощи фильтровального вспомогательного вещества . Фильтрат довод т до рН 6 при помощи NaOn или триэтиламина и ультрафильтруют через Диафло ультрафильтр УМ 10 пока в фильтрате можно обнаружить свободный валин . Фильтрат выпаривают в вакууме досуха, остаток высушивают смесью бензола с абсолютным этанолом (80/20)до посто нного веса. Выход Н-валил-ПЭГ 19,35г. Содержание аминокислоты 80%, или 0,08 ммоль/г (аминокислотный анализ).
Б. Синтез пептида. 5 г Н-валпл-ПЭГ раствор ют в 50 мл СН2С12 и прибавл ют 0,1 мл триэтиламина. После прибавлени  0,44 г БОКглицил-ОН (2,5 ммол ) и 0,515 г ДЦК (2,5 ммол ) перемешивают 2 часа при комнатной температуре, выпаривают досуха в вакууме , в течение 30 мин обрабатывают при комнатной температуре 40 мл 4 н. ПС1/диоксана и снова выпаривают досуха в вакууме. Масл нистый остаток раствор ют в 500-700 мл воды , осадок отдел ют, фильтрат довод т до рН 6 при помощи NaOH или триэтиламина п подвергают ультрафильтрацпп через Диафло ультрафильтр УМ 2. Фильтрат обрабатывают. Выход Н-глицил-валил-ПЭГ 4,85 г.
Указанным образом к Н-глицил-валпл-ПЭГ прибавл ют триэтилампн и привод т в реакцию с 2,5 мм БОК-аланил-ОН и 2,5 ммоль
БОК - трет-бутоксикарбонил
ПЭГ - полиэтргленгликоль
ДЦК - дициклогексилкарбодиимид
464736
ДЦК. После отщеплени  защитной группы и ультрафильтрации получают 4,75 г П-аланилглицил-валил-ПЭГ . Соответствующим взаимодействием П-аланил-глицил-валил-ПЭГ с БОК-лейцил-ОП и ДЦК иолучают Н-лейцилаланил-глицил-валил-ПЭГ (4,5 г). Аминокислотный анализ гидролизованной пробы этого вещества показывает следующее соотношение аминокислот : валил : глицил : аланил : лейцпл 1,08: 1,00:0,90: 1,04.
В. Отщепление тетрапеитида от носител . Раствор 4,0 г Ц-лейцил-аланил-глицил-валилПЭГ в 75 м воды и 1,5 мл 1 н. КОН перемешивают в течение 2 час при комнатной температуре , точно нейтрализуют 1,5 мл 1 н. ЦС1 и ультрафильтруют через Диафло ультрафильтр УМ iO до тех пор, пока не будет собрано 3,5 л фильтрата. Он дает после выпаривани  в вакууме 280 мг сырого продукта, который частично освобождают от NaCl дигерированием абсолютным метанолом. Метанольный раствор обеспечивают углем, фильтруют и выпаривают досуха. Остаток раствор ют в воде и лиофилизуют . Получают 191,5 мг сырого тетрапептида , аминокислотный анализ которого показывает следующее соотношение аминокислот : валил : глицил : аланил : лейцил 1,03 : : 1,00:0,85: 1,07. Дол  пептида в сыром веи;естве составл ет 35% (аминокислотный анализ ), т. е. рассчитанный на первую аминокислоту (валин) общий выход составл ет 45%. Вещество идентично заведомому образцу, полученному по методу Меррифилда. Пример 2.
А. К 4,34 г БОК-валил-ОП и 2,8 мл триэтиламина в 80 мл СН2С12 прикапывают при перемешивании при -5°С 1,91 мл этилового эфира хлоругольной кислоты в 20 мл СНзС, через 30 мин при -5°С прибавл ют охлажденный (-5°С) раствор 20 г ПЭГ (мол. в. 20 000) и 2,4 г (20 ммоль) диметиламинопиридина в 100 мл СН2С12. Реакционную смесь перемешивают в течение часа при -5°С и 65 час при комнатной температуре. Дл  блокировки
не прореагировавших гидроксильных групп перемешивают реакционную смесь 4 часа с 10 ммол ми уксусного ангидрида и 10 ммоль триэтиламина при комнатной температуре и выпаривают в вакууме досуха. Остаток обрабатывают 30 мин при комнатной температуре 100 мл 4 н. HCl в диоксане, выпаривают досуха в вакууме и раствор ют примерно в 1 л воды. После фильтрации и установки рП ультрафильтруют и обрабатывают как описано
выше. Выход 19 г П-валил-ПЭГ. Содержание аминокислоты 607о, или 0,06 ммоль/г (аминокислотный анализ).
Б. Псход  из 12,7 г П-валил-ПЭГ, синтезируют описанный в примере 1Б тетрапептид
тем же образом. Реагенты: 1 ммоль триэтиламина , 4,0 ммол  БОК-аминокислоты, 4,0 ммол  ДЦК. Получают 11,5 г П-лейцил-аланилглицил-валил-ПЭГ со следующим соотношением аминокислот: валил : глицил : аланил : лейцпл 0,88: 0,86: 1,11 : 1,00.
В. Как описано в примере 1В, гидролизуют 10 г Н-лейцил-аланил-глицил-валил-ПЭГ в 100 мл воды и 3 мл 1 н. КОН. После нейтрализации , ультрафильтрации и обработки получают 300 мг сырого тетрапептида, который имеет следующее соотношение аминокислот: валил : глицил : аланил : лейцил 0,96 : 0,91 : : 1,24: 1,00. Дл  пептида в сыром продукте составл ет 41% (аминокислотный анализ), т. е., счита  на первую аминокислоту (валил), общий выход составл ет 57% от теопетического.
Примерз. К 6г Н-валил-ПЭГ (80%, 0,5 ммол  валина и 0,09 мл триэтиламина (0,6 ммол ), растворенным в 600 мл СПоС. прибавл ют 1,05 г БОК-глицил-ОПФ (3.5 ммол ) и перемещивают 24 часа при комнатной температуре. После выпаривани  в вакууме остаток перемешивают 30 мин при комнатной температуре с 60 мл трифторуксусной кислоТЫ/СН9С12 (1:1) и вновь выпаривают досуха в вакууме. Остаток раствор ют примерно в 700 мл воды, фильтруют и фильтрат довод т до рН 6 при ПОМОШ.И NaOH.
После ультрафильтрации (диафло ультрафильтр УМ 10) обрабатывают как описано в примере 1Б. Выход Н-глицил-валил-ПЭГ 5,88 г.
Аналогично примеру 1Б Н-глицил-валилПЭГ обрабатывают БОК-лейцил-ОНП. Получают 5,6 г Н-лейцил-аланил-глицил-валилПЭГ со следующим соотношением аминокислот : валил : глицил : аланил : лейцил 1,00: :0,70 : 0,78 : 0,71. 5,6 г Н-лейцил-аланил-глицил-валил-ПЭГ гидролизуют по принтеру 1В и отщепленный тетрапептид обрабатывают соответственно . Получают 250 мг сырого тетрапептида со следующим соотноптением аминокислот: валил : глииил : аланил : лейцил 1.00: : 0,83 : 0,93 : 0,88. Дол  пептида в сыпом тетрапептиде составл ет 32%, т. е., счита  на первую аминокислоту (валин), общий выход составл ет 50% от теоретического.
Пример 4.
А. 10 г ПЭГ (мол. в. 20000), 1,75 г БОКглицил-ОН и 2,06 г ДЦК раствор ют в 100 мл СНдСЬ и перемешивают в течение 6 суток при комнатной температуре. Реакционную смесь выпаривают в вакууме досуха, прибавл ют 100 мл 1,2 н. НС1 в лед ной укс сной кислоте и перемешивают 20 мин при комнатной температуре .
Растворитель отгон ют в вакууме, а к остатку прибавл ют 100 мл воды. Полученный осадок отдел ют центрифугированием. Прозрачный верхний слой декантируют, довод т до рН 6 триэтиламином и ультрафильтруют через Диафло ультрафильтр УМ 10 до тех пор, пока ультра фильтрат еще содержит глицил-ОН. Остаток выпаривают в вакууме и следы воды дважды азеотропно отгон ют с бензолом. Продукт сушат в экссикаторе до посто нного веса. Выход Н-глицил-ПЭГ 9,8 г, содержание аминокислоты 0,06 ммоль/г.
Б. 9,8 г Н-глицил-ПЭГ раствор ют в 60 мл СН2С12 и нейтрализуют 0,7 ммол  М-мети,-;
морфолина. В отдельном сосуде раствор ют 3 ммол  БОК-лейцил-ОН в 5 мл и 1 мл .-пшетилбормамида, нейтпализуют 3 ммол  Х-метилмопфолина, охлаждают до -20°С, прибавл ют 2.6 ммол  изобутилхлопоформиата и перемешивают 10 мин при -20°. Смешанный ангидрид прибавл ют при -20°С к раствору Н-глицил-ПЭГ и перементивают в течение часа при -20° и 2 часа при 4°С. Растворитель отгон ют, остаток обрабатывают 15 мин ПРИ комнатной тнмпературе 50 мл 1.2 н. НС1 в лел иой уксусной кислоте и оп ть выпаривают в вакууме досуха. Остаток раствор ют в 100 мл воды, довод т до рН 6 водНЫА1 паствором аиетата натри  и ультпаЛпльтруют через Диафло ультрафильтр УМ 10. Остаток выпаривают в вакууме досуха, дважды азеотропно высушивают с бензолом н сушат в экссикаторе. Выход Н-лейцил-глицттлПЭГ 9.5 г.
Аналогично сочетают другие аминокислоты в виде следуюитих пооизводных: БОК-аланилОН , БОК-Ю-бензил)-твеонил-ОН, БОК-лейцил-ОН . БОК-валил-ОН, БОКЮ-бензил)-тпеоиил-ОН , БОК-валил-ОН. После последнего сочетани  получают 8,0 г,
Н-валил-тоеонил - валил - лейцил - треонилбензил
30бензил
алант1л-лейцпл-глицил-О-ПЭГ
Анализ аминокислот гидролизиоованной пробы этого BeniecTBa дал следующий результат:
глицил : лейцил : аланил : треонил j валил 1,0 : 1,89 : 1,67 : 1,0, Значени  дл  отдельных аминокислот получпли из результатов анализов амииокислот на промежуточных ступен х .
Пример 5.
А. Лтпюнную КИСЛОТУ этерифицируют в сложный эфир с ПЭГ (мол. в. 6000) с помощью эквимол рного количества ДЦК (пассчитано на ПЭГ) в метпленхлориде (10%-ный раствор) в течение 3 суток. Растворитель отгон ют , остаток раствор ют в воде н полученный осадок отпеитрифугипуют. Раствор ультрафильтруют (Амикон, УМ-2-фильтр) упаривают Е вакууме и остаток сушат до иосто нного веса. Выход 80% от теоретттческого. Высушенный полимер этерифицируют БОК-валил-ОН и ДНК (оба компонента в 5-кратном избытке, счита  на 0,2 ммоль/г функциональных групп на полимепе) в 10%-ном растворе в СНоСЬ в течение 3 суток при комнатной температуре. Содержание аминокислоты в полимере после прин той обработки и отщеплени  БОК-группы с 4 н. НС1/диоксан:
: 0.2 тмоль/г.
Б, По ДНК-методу получают следующтге активированные сложные эфиры:
) 3-кратный избыток ПЗГ, счита  на функциональ65 iii.ie группы лимонной кислоты БОК-лейцил-ПХФ БОК-глицил-ОНФ, БОК-глутаминил-ОНФ. Сочетани  провод т следующим образом. 1 ммоль (5 г) Н-валил-полимера раствор ют в 50 мл СН2С12/диметилформамид (1:1), нейтрализуют 1,2 ммол  N-метил-морфолина и прибавл ют 3 ммол  активированного эфира БОК-аминокислоты. Через 5 мин к раствору прибавл ют еще 1,2 ммол  N-метил-морфолина и перемещивают 2 часа при комнатной температуре . Растворитель отгон ют в вакууме, к остатку прибавл ют 50 мл 4 и. НС1/диоксана и оставл ют сто ть на 30 мин при комнатной температуре. После повторной отгонки растворител  раствор ют остаток в смеси воды/этанола (3:1) и ультрафильтруют при помощи Диафло ультрафильтра УМ-2. Остаток суилат. Выход Н-глицил-лейцил-валил-полимера 4 г. Результат аминокислотного анализа гидролизованной пробы: валил : лейпил : глицил : глутаминил: 1,0 : 0,9 : 1,0 : 0,98. 2,0 г Н-глутаминил-глицил-лейцил-валил-полимера перемещивают 4 час в 0,2 н. КОН (50 мл) при комнатной температуре, нейтрализуют 2 н. НС1 и пропускают через колонну (2,5X100 см) с Сефадексом G-25. Сырой иептид н-глутаминил - глицил - лейцпл-валилОН получают с выходом примерно 50%Аминокислотный анализ дает следующие значени : валил : лейцил : глицил : глутамиНИЛ 1,0 : 0,88 : 1,05 : 0,98. Пример 6. А. ПЭГ (мол. в. 4000) этерифпцируют 10кратным избытком БОК-глипил-ОН и ДЦК в 10%-ном растворе СН2С12 в течение 5 суток при .домнатной температуре. После этого отщепл ют защитную группу, растворитель отгон ют , остаток раствор ют в воде и полученный осадок отдел ют центрифугированием. Раствор ультрафильтруют с Диафло ультрафильтром УМ-2, растворитель отгон ют и остаток сушат. Содержание аминокислоты найдено аминокислотным анализом как 100%-ное. Малеиновую кислоту подвергают взаимодействию с «-нитрофенолом и ДЦК, получа  диОНФ-эфир малеиновой кислоты. Выход примерно 80% от теоретического, температура плавлени  185-190°С. На двойную св зь полученного таким образом сложного эфира малеиновой кислоты присоедин ют йодоводород. Полученный ди-п-нитрофениловый эфир монойод нтарной кислоты подвергают взаимодействию с Ag-солью БОК-валил-ОН, получа  ди-ОНФ-эфир БОК-валил-О- нтарной кислоты . Эквимол рные количества ПЭГ-глицил-Н (нейтрализованный N-метил-морфолином) и ди-ОНФ-эфира БОК-валил-О- нтарной кислоты раствор ют в СНаСЬ диметилформампдс (I : 1; 10-ный раствор) и перемешивают при комнатной температуре 24 часа. После этого отгон ют растворитель, остаток раствор ют в воде и ультрафильтруют (Диафло ультра ) , -. |11:ит  :лорфени,1
ОНФ - -нитрофенил фильтр УМ-10), пока толпдинова  проба в ультрафильтрате не станет отрицательной. Фильтрат упаривают в вакууме и остаток сущат . Аминогруппы Н-глицил-ПЭГ после этого подвергают взаимодействию с ангидридом 3сульфопропионовой кислоты. Из полученного продукта отщепл ют БОК-группу при помощи 4 н. НС1/диоксана. Полученный полимер 1гмсет мол. в. выще 20000 (согласно удержан1по). Б. 2 г полученного полимера и 6 ммолей БОК-лейцил-ПХФ перемещивают в 20 мл СН2С12/диметилформамида (1 : 1) 3 час при комнатной температуре (через 5 мин прибавл ют к реакционной смеси 2 ммол  N-метилморфолина ). После этого отгон ют растворитель в вакууме, остаток обрабатывают 20 мин 40 мл 4 н. НС1/диоксана и растворитель оп ть отгон ют. Остаток раствор ют в 100 мл воды п ультрафильтруют (УМ-10). Воду выпаривают и остаток сущат. Выход 1,9 г. Анализ: валил : лейцил 1,0: : 0,95. В. 1,9 г дипептид-полимера перемешивают в течение 3 час при комнатной температуре в 0,2 н. водного КОН, нейтрализуют 2 н. НС1 и ультрафильтруют через УМ-10-фильтр. Фильтрат выпаривают в вакууме. Выход сырого продукта 350 мг. Содержание пептида составл ет 70%. Аминокислотный анализ: валил: : лейцил 1,0 : 0,97. Пример 7. Сначала этерифицируют БОКглицил-ОН с ПЭГ (мол. в. 200) согласно примеру 6А. Удаление избыточных компонентов провод т ультрафильтрацией с Диафло фильтром УМ-2 или хроматографией на Сефадексе . Полученный продукт конденсируют аналогично примеру 6 с ди-ОНФ -эфиром малеиновой кислоты. К продукту конденсации присоедин ют йодоводород и йодированный продукт подвергают взаимодействию с Ag-солью БОК-аланил-ОН. В качестве растворител  примен ют вместо эфира диоксан. После этерификации растворитель отгон ют, остаток раствор ют в воде п ультрафильтруют (УМ-10-фильтр). После сущки остатка получают 95% этерифицированного полимера. После отп1еплеии  защитной группы сочетают с БОК-лейнил-ПХФ. Выход Д111:ептидполимера 1,95 г (93% от теоретического). Аминокислотный анализ: аланил : лейцил 1,0: 1,01. Отщепление пептида от полимерного носител  дает 300 мг сырого продукта. Выход по данным аминокислотного анализа 80% от теоретического: аланил : лейц1 л 1,0 : 1,0. Пептид однороден при тонкослойной хроматографии в системе лед на  уксусна  кислота (бутанол) вода (3:1:1). Пример 8. А. Ю г ПЭГ (моль. D. 20000), 1,16 г БОКизолейцил-ОН и 1,03 г ДЦК раствор ют в 9 100 мл СНгСЬ и перемешивают 6 суток при комнатной температуре без доступа влаги. Реакционную смесь выпаривают досуха в вакууме , прибавл ют 50 мл 4 и. HCl/диоксана п перемешивают 30 мин при комнатной температуре . После отгонки растворител  остаток раствор ют в 100 мл воды и выпавший осадок отдел ют центрифугированием. ОтдеКантированный раствор довод т до рН 6 при помош,п 2н. NaOH и ультрафильтруют через Диафло ультрафильтр УМ-10. Фильтрат выпаривают досуха в вакууме и сушат. Выход Н-изолейцил-ПЭГ 9,8 г. Содержание изолейцила, согласно аминокислотному анализу, 0,07 ммоль/ /г (70% от теоретического). Б. Получеппый продукт сочетают по очереди с БОК производными аланина, валина и фенилаланина ио следуюшей схеме. 10%-ный водный раствор полимера довод т до рН 3,9 при помощи 4 н. NaOH или 5 н. H2SO4 и охлаждают до 4°С. В отдельном сосу.п,е раствор ют БОК-ампнокислоту (5-кратный избыток по сравнению с аминокомпонентной) в 2- 3мл диметилформамида и прибавл ют к водному раствору полимера, поддержива  рН 3,9 посто пным. При тех же рН и температуре при перемешивании прибавл ют эквимол рное БОК-аминокислоте количество д-толуолсульфоната Ы-циклогексил-К- р-(Ы-метил-морфолино )-этил - карбодиимид-п - толуолсульфонат , поддержива  рН 3,9 при помощи 5 н. H2SO4. Примерно через 15 мин, когда рН больше не измен етс , довод т рН до 7,0 при помощи 4 н. NaOH и перемешивают 30 мин при комнатной температуре. Затем рН оп ть довод т до 3,9 и сиова прибавл ют эквимол рное количество конденсирующего средства. Раствор оставл ют на 3- 4часа при рН 7,0 и комнатной температуре и ультрафильтруют. Выпариванием в вакууме получают тетрапептпд-полимер. в Тетрапеитпд-полимер (9 г) обрабатывают 24 час 2 п. КОН в смеси воды/диоксана (9 г в 50 мл) нейтрализуют и подвергают гель-фильтрации через колонну (2,5X80 см) с Сефадексом G-15 в водном растворе. Воду отгон ют (при 40° С). Остаток раствор ют в метаноле, растворитель отгон ют и пептид сушат . Выход сырого Н-алапил-валпл-фенплизолейцпл-ОН: примерно 300 мг (не совсем свободен от солей). Аминокислотный анализ дает выход примерно 0,5 ммол  (75% от теоретического , счита  па содержание аминокислоты в полимере). Результат анализа после хроматографии на колонне: изолейцил : фенил : валил : алаНил 1 ,0 : 0,99 : 0,90 : 0,97. Пример 9. А. 20 г ПЭГ (мол. ,в. 20000), 5,0 г Ц -валил-ОН и 4,2 г ДЦК раствор ют в 200 мл СН2С12 и перемешивают 10 суток при комнатной тем пературе без доступа влажности. К реакционной смеси прибавл ют 1,2 мл ле ) Ц - бензилоксикарбонил 454 дЯНой уксусной кислоты, перемешивают еще 20 час и выпаривают в вакууме досуха. Остаток раствор ют в 300 мл МеОН, прибавл ют 5 мл 4 н. НС1/МеОН и гидрируют .над Pd/C npjt комнатной температуре и нормальном давлении, пока поглощаетс  водород. Катализатор отфильтровывают, фильтрат выпаривают в вакууме досуха, остаток раствор ют примерио в 1 л воды и образующийс  осадок отдел ют. Фильтрат yльтpaiфильтpyют через Диафло ультрафильтр УМ-40 и его обрабатьсвают дальше, как описано в примере 1А. Выход 18,8 г Н-валИл-ПЭГ-НС1. Содержание аминокислоты 88%, или 0,088 ммоль/г (амииоки-слотный анализ). Б. 10 г Н-валил-ПЭГ-НС1 раствор ют в 50 мл СН2С12, охлаждают до -20° и раствор довод т до рН 8-9 прибавлением 0,11 мл N-метилморфолина. 1,05 г Ц-глицил-ОН раствор ют в 10 мл тетрашдрофурана, охлаждают до -20°, прибавл ют 0,55 Мл N-метилморфолина и 0,65 мл изобутиловото эфира хлормуравьиной кислоты и перемешивают 5 ми.н при -20°. Эту смесь прибавл ют к охлал-сденному до -20° раствору НчвалилПЭГ и перемешивают 30 мин ниже -10°, 30 мин ниже 0° и 3 час при комнатной температуре . Реакционную смесь выпаривают в вакууме досуха, остаток раствор ют в 200 мл МеОН, прибавл ют 1,25 мл 4 н. НС1/МеОН и Pd/C и гидрируют ,при комнатной температуре и нормальном давлении до окончани  поглощенп  водорода. Катализатор отфильт1ровывают , фильтрат выпаривают в вакууме досуха , остаток раствор ют примерно в 1 л воды , фильтруют и ультрафч льтруют через Диафло ультрафильтр УМ-10. Фильтрат от ультрафильтрации вьипаривают досуха в вакууме , сушат при помощи бензола/абсолютного этанола (80/20) и ночь в экссикаторе до посто нного веса. Выход Н-глицил-валил-ПЭГ-НС1 8,0 г. Аналогично довод т 4,0 г Н-глицил-валилПЭГ-НС1 до рН 8-9 при помощи 0,05 мл N-метилморфолина и иодвергают взаимодействию с раствором смешанного ангидрида, изготовленным из 500 мг Ц-аланил-ОН, 0,22 мл N-метилморфолина и 0,26 мл изобутилового эфира хлормуравьиной кислоты в 5 мл тетрагидрофурана . После отщеплени  защитной группы и ультрафильтрации получают 3,8 г Н-аланил-гл1ЩИЛ-валил-ПЭГ- НС1. Соответствующим взаимодействием этого продукта с Ц-лейцил-ОН. N-метилморфолином и изобутиловым эфиром хлормуравыиной кислоты получают после отщеплени  защитной гру.пиы и ультрафильтрацип 3,5 г Н-лейцил-аланилглидил-валил-ПЭГ НС1. Анализ аминокислот гидролизированной пробы этого вещества показывает следующее соотношение аминокислот: валил : глицил : : аланил : лейцпл 1,00 : 0,89 : 0,92 : О 94. В. 3,4 г Н - лейцил - аланил - глицил - валилПЭГ-НС1 гидролизуют аналогично примеру В в 62 мл воды при помощи 1,25 мл J н,
SU1700240A 1970-09-26 1971-09-24 Способ получени пептидов SU454736A3 (ru)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE2047413A DE2047413C3 (de) 1970-09-26 1970-09-26 Verfahren zur Herstellung von Peptiden in homogener Phase

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU454736A3 true SU454736A3 (ru) 1974-12-25

Family

ID=5783460

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU1700240A SU454736A3 (ru) 1970-09-26 1971-09-24 Способ получени пептидов

Country Status (11)

Country Link
US (1) US3772264A (ru)
BE (1) BE773013A (ru)
CA (1) CA1000271A (ru)
CH (1) CH567458A5 (ru)
DE (1) DE2047413C3 (ru)
FR (1) FR2108520A5 (ru)
GB (1) GB1310656A (ru)
IL (1) IL37698A (ru)
NL (1) NL7113179A (ru)
SE (1) SE398347B (ru)
SU (1) SU454736A3 (ru)

Families Citing this family (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS5183B2 (ru) * 1973-03-07 1976-01-05
FR2419278A1 (fr) * 1978-03-10 1979-10-05 Pierce Chemical Co Procede de synthese de chaines peptidiques
DE2930542A1 (de) * 1979-07-27 1981-02-12 Hoechst Ag Neue insulinderivate und verfahren zu ihrer herstellung
DK608589D0 (da) * 1989-12-01 1989-12-01 Holm Arne Kemisk fremgangsmaade
US5824784A (en) * 1994-10-12 1998-10-20 Amgen Inc. N-terminally chemically modified protein compositions and methods
GB0814519D0 (en) 2008-08-08 2008-09-17 Imp Innovations Ltd Process
GB0820865D0 (en) * 2008-11-14 2008-12-24 Membrane Extraction Tech Ltd Degradable supports for tide synthesis
GB201413954D0 (en) 2014-08-06 2014-09-17 Imp Innovations Ltd Process for preparing polymers

Also Published As

Publication number Publication date
NL7113179A (ru) 1972-03-28
IL37698A (en) 1975-04-25
FR2108520A5 (ru) 1972-05-19
SE398347B (sv) 1977-12-19
CA1000271A (en) 1976-11-23
DE2047413A1 (de) 1972-03-30
GB1310656A (en) 1973-03-21
BE773013A (fr) 1972-03-24
US3772264A (en) 1973-11-13
DE2047413B2 (de) 1979-09-06
DE2047413C3 (de) 1980-05-29
CH567458A5 (ru) 1975-10-15
IL37698A0 (en) 1971-11-29

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US3960830A (en) Polyalkylene glycols used for the preparation of peptides
Fridkin et al. Use of polymers as chemical reagents. I. Preparation of peptides
KR860000526B1 (ko) 아미노-기능이 부여된 아크릴 공중합체의 제조방법
US4420424A (en) New peptides and a process for their preparation
EP0503301A2 (en) Peptide derivatives and application thereof
CN113150075B (zh) 一种环状聚精氨酸穿膜肽分子及其合成方法和应用
SU454736A3 (ru) Способ получени пептидов
CN113444150B (zh) 一种普卡那肽的固相制备方法
RU2107691C1 (ru) Пептид и способ его получения
Nissen et al. Polydepsipeptides, 4 Synthesis of the alternating Polydepsipeptides Poly (Ala‐Lac) and Poly (Val‐Lac)
GB2028342A (en) Peptides derivatives of 4-methylcoumarin
NO165549B (no) Fremgangsmaate for poding av en vinylaromatisk monomer og en akrylmonomer paa polybutadien ved hjelp av emulsjonspolymerisering.
Stewart Synthesis of polydepsipeptides with regularly repeating unit sequences
Arad et al. Depsipeptide analogues of elastin repeating sequences: synthesis
DK172398B1 (da) Fremgangsmåde til fremstilling af beskyttede argininholdige peptider
Narita et al. Syntheses and properties of tertiary peptide bond containing‐polypeptides, 3. Syntheses of monodisperse‐sequential polypeptides having the sequence of l‐leucyl‐l‐leucyl‐l‐leucyl‐l‐prolyl‐l‐prolylglycine
CN114380887A (zh) 一种类蛇毒三肽的液相片段合成方法
US3247180A (en) Nonadecapeptides and intermediates for the preparation thereof
D'Alagni et al. Sequence peptide polymers: Part 1. Poly (leucyl-leucyl-aspartic acid-β-benzyl ester)—synthesis and some conformational aspects in solutions
Fukushima Secondary structural analysis in the solid state for analogous sequential polypeptides of glycine-rich sequence of spider dragline silk
Katakai et al. A Novel Synthesis of Sequential Polypeptides
JP2620727B2 (ja) ペプチド脂質
Takahashi The Synthesis of Regular Copolymers of Glycine and Alanine
CN114933634B (zh) 一种乙酰基十六肽的合成方法
JP3418693B2 (ja) ポリ−ε−置換−L−リジンのD−ガラクトピラノシル−グルコン酸誘導体