SU355807A1 - Способ получения биомассы - Google Patents

Способ получения биомассы

Info

Publication number
SU355807A1
SU355807A1 SU1461270A SU1461270A SU355807A1 SU 355807 A1 SU355807 A1 SU 355807A1 SU 1461270 A SU1461270 A SU 1461270A SU 1461270 A SU1461270 A SU 1461270A SU 355807 A1 SU355807 A1 SU 355807A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
cultivation
paraffins
paraffin
medium
yeast
Prior art date
Application number
SU1461270A
Other languages
English (en)
Inventor
Йосио Симада Хадзиме Кавахарада Кендзи Сузуки Фумио Танака Кийоси Ватанабе
ирма Канегафучи Кагаку Когио Кабусики Кайс Иностранна
Publication of SU355807A1 publication Critical patent/SU355807A1/ru

Links

Description

Изобретение относитс  к микробиологической промышленности, a именно к способам получени  биомассы.
Известен способ получеии  биомассы путем выращивани  углеводородокисл ющих дрожжей на водной питательной среде, содержапгей в качестве источника углерода н-парафины и н-парафинсодерж щие углеводороды , минеральные соли, стимул торы роста, в присутствии пеногасител  и при аэрации среды воздухом. Однако выход биомассы при этом способе иедостаточно высокий .
Предлагаемый способ нозвол ет увеличить выход биомассы благодар  тому, что в качестве углеводородокисл ющнх дрожжей используют штамм Candi.d.a novellus.
Штамм Candida novellus имеет следующую характеристику. После трехдпевного выдерживани  в солодовом экстракте при 25°С форма клеток видоизмен лась от круглой до овальной, онн были размером 3-6X4-6 f.i. Воспроизводство осуществл лось с помощью многосторонней окулировки.
Псевдомицелми хоропю развиваютс  на косом картофельном агаре, хорошо образуютс  бластоспоры и бл стоконидин.
Оптимальные услови  роста при рН 5,0, температуре 30°С, при аэрации.
Услови  роста: рН 2,5-9,0, температура 2-39°С.
Нитраты не ассимилируют.
Реакци  на лакмусовое молоко: коагул Ц1Щ пет, цвет измен етс  до синего.
Желатину разжижает.
Потребл ет биотип.
Каротиноидных пигментов не образует.
Утнлизаци  этанола положнтельна .
Расщепл ет арбутин.
Сложные эфиры, крахмалоподобные вещества и кислоты не образует.
Потребл ет пептон, сульфат аммони , мочевину и аспарагин.
После выдерживани  в течент1е одного мес ца в солодовом экстракте прн 17°С образуете  кольцо.
Ферментирует глюкозу, сахарозу. Слабо ферментирует галактозу, мальтозу. Лактозу и рафинозу не ферментнрует.
Потребл ет глюкозу, маннозу, галактозу,
фруктозу, сахарозу, мальтозу, трагалозу,
Способ получени  биомассы с использованием штамма дрожжей Candida novellus заключаетс  в следующем.
Культивируют дрожжи Caridida novellus в аэробиых услови х иа водной питательной среде, содержаодей н-парафины и н-парафинсодержащие углеводороды в качестве главного источника углерода.
н-Парафины представл ют собой парафины , имеющие 9-30 атомов углерода в молекуле , которые получают с использованием молекул рных сит, метода аддукта мочевины .
н-Парафинами, например,  вл ютс  керосин , газойль или неочищенные парафины, которые перерабатываютс  в процессе получени  нефт ных фракций и содержат более 50% н-парафинов. Концентраци  «-иарафинов при непрерывном культивировании обычно составл ет 0,01 - 1%.
Темиература культивировани  колеблетс  от 25 до 40С, предпочтительно 27-35°С. рН культуральной среды составл ет 3,5-6,0, предпочтительно 4,0-5,0.
В культуральную среду добавл ют незначительные количества фактора роста, например биотин или гомолог, имеющий такую же физиологическую активность, как и биотин, например дестиобиотин, или 0,02-0,5% биотинсодержащего вещества, такого как меласса , дрожжевые экстракты или кукурузна  жидкость.
В качестве вспомогательных сырьевых веществ используют: источник кали , магни , цинка или железа, например хлористый калий , сульфат магни , сульфат цинка, сульфат железа; источник азота, например аммиак, сульфат аммони  или мочевину, и источник фосфора, например фосфорную кислоту, первичный кислый фосфат натри , вторичный кислый фосфат натри , первичный кислый фосфат кали  или вторичный фосфат кали .
В зависимости от условий культивировани  могут добавл ть противопен щий агент, папример соевое масло, селиконовые смолы или производные жирных кислот.
В процессе культивировани  в культуральную среду пропускают газ, содержащий свободный кислород.
Пример 1. 200 мл культуральной среды, состо щей из 2% н-парафинов (чистота 98%, Cio-2i), 0,2% фосфорной кислоты, 0,2% КС1, 0,06% сульфата аммони , 0,2% мочевины, 0,06% MgSO4-7H2O, 30 частей на млн. ZnSO.r7H2O, 50 частей на млн. FeSO4-7H20, 100 частей на млн. CaCl2-2H2O, 0,1% мелассы И водопроводной воды, нейтрализованной до рН 6,0 с помощью NaOH, выливают в двухлитровую встр хиваемую колбу, автоклавируют и довод т рЫ среды до 6,0. Культуральную среду шшкулируют штаммом Candida novellus.
20 л питательной жидкости, имеющей тОт же состав, что и культуральна  среда, но не содержащей мочевины, заливают в М-л фермеи-1ационныи сосуд и стерилизуют в течение It мин при . После того как рИ довод т до 0,0, Ьии мл посевной культуры иаок}лируюг в питательную жидкость, доиавл юг о/о-ныи водный аммиак дл  поддержани  пигачельнои среды при рН 4-5. чульгивирование провод т при jU-С и перемешивании /ии об/мин, после прекращени  иотреолеии  аммиака получсаные клетки огдел юг и промывают водой. Ьыход клеток в расчете на «-парафин сосгавл ет lUo.oVo, содержание неочищенного
протеина Ь/,Ь%, а скорость роста равна 0,2У.
Пример 2. Используют те же иосевпые
культуры, питательную жидкость дл  OCIIOBного культивировани  (за исключением того,
что вместо мелассы используют дрожжевой экстракт) и щтамм Caudid,a noveUus. посевную культуру перенос т в ферментатор, па ло1-арифмической фазе роста культивироьание провод т непрерывно.
В течение культивировани  к питательной жидкости того же состава, что и в примере 1, но не содержащей «-парафин, непрерывно добавл ют «-парафин (чистота , Cis-zs), при этом концентрацию клеток поддерживают при 1,7-1,9%, а концентрацию н-парафина при 0,1-0,3%.
Культивирование провод т при и перемешивании 1000 об/мин, при скорости аэрировани  30 м/мин и рН 4-5.
Гемпературу регулируют автоматически. Прекращают культивирование через 200 час. Выход клеток в расчете на н-парафин составл ет 106,5%, содержание неочищенного «-протеина 58,1%, продуктивность клеток
4,2 г/л-час.
Размножение прекращалость после 32 час непрерывного культивировани .
Пример 3. Посевное культивирование и непрерывное культивирование провод т в тех же услови х, что в примере 2. Однако в качестве основной жидкости дл  непрерывного культивировани  используют среду, как в примере 2, за исключением дрожжевого экстракта. К среде добавл ют биотин, кукуS6
рузную жидкость, дрожжевой экстракт иводной питательной среде, содержащей в камелассу соответственно.честве источника углерода н-парафин и
Культивирование провод т в течениеи-парафинсодержащие углеводороды, мппе120 час. Результаты культивировани  сведе-ральпые соли, стимул торы роста, в присутны в таблицу.5 ствии пеиогасител  и при аэрации среды возП род мет изобретени личенп  выхода биомассы, в качестве углеСпособ получени  биомассы путем выра-водородокисл ющйх дрожжей используют
щивани  углеводородокисл ющих дрожжей наштамм Candida novellus.
Ssa&o7 духом, отличающийс  тем, что, с целью уве
SU1461270A Способ получения биомассы SU355807A1 (ru)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU355807A1 true SU355807A1 (ru)

Family

ID=

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Caylak et al. Comparison of different production processes for bioethanol
Shipman et al. Single‐cell protein production by photosynthetic bacteria cultivation in agricultural by‐products
SU695565A3 (ru) Способ получени клавулановой кислоты и ее солей
NO146331B (no) Fremgangsmaate til fremstilling av et enecellet proteinmateriale ved dyrking av termofile bakterier
GB2130240A (en) Continuous production of ethanol by use of respiration-deficient mutant yeast
Maister et al. Formation of extracellular sphingolipids by microorganisms: IV. Pilot-plant production of tetraacetylphytosphingosine by Hansenula ciferrii
US3622455A (en) Process for the production of citric acid by fermentation
Heinrich et al. Growth of Fusarium moniliforme on n-alkanes: comparison of an immobilization method with conventional processes
SU355807A1 (ru) Способ получения биомассы
CN106544293A (zh) 一种使用毕赤酵母发酵菌泥生产丁酸梭菌的方法
US4731329A (en) Ethanol production by high performance bacterial fermentation
EP0047641B1 (en) Ethanol production by high performance bacterial fermentation
SU521849A3 (ru) Способ получени цефалоспорина с
RU2096461C1 (ru) Штамм дрожжей yarrowia lipolytica - продуцент лимонной кислоты и способ получения лимонной кислоты
US4048013A (en) Process for producing single-cell protein from methanol using methylomonas sp. DSM 580
CN109136116A (zh) 一种培养二型性微生物的方法
US4647534A (en) Ethanol production by high performance bacterial fermentation
KR0148042B1 (ko) 내열성 효모 및 그를 이용한 알코올 발효법
RU2180689C2 (ru) Консорциум штаммов бактерий rhodococcus erythropolis и дрожжей saccharomycopsis fibuligera - продуцент белка на питательной среде, содержащей спиртовую барду и зерносырье
SU513075A1 (ru) Способ получени гиалуронидазы
SU493978A3 (ru) Способ получени биомассы
SU1440921A1 (ru) Штамм бактерий BacILLUS меGатеRIUм-продуцент металлопротеиназы
SU958498A1 (ru) Способ получени @ -маннаназы
CN111718919A (zh) 一种酯化酶生产用培养基及酯化酶粗酶制剂的制备方法
Oezbas Microbial production of vitamin B2