SU348010A1 - Способ получения литического фермента - Google Patents

Способ получения литического фермента

Info

Publication number
SU348010A1
SU348010A1 SU1412761A SU1412761A SU348010A1 SU 348010 A1 SU348010 A1 SU 348010A1 SU 1412761 A SU1412761 A SU 1412761A SU 1412761 A SU1412761 A SU 1412761A SU 348010 A1 SU348010 A1 SU 348010A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
enzyme
solution
growth
cells
hours
Prior art date
Application number
SU1412761A
Other languages
English (en)
Inventor
Хироси Оказаки Иностранец
Иностранна фирма Чугай Сей Кабусики Кайша
Иизука Хироси
Publication of SU348010A1 publication Critical patent/SU348010A1/ru

Links

Description

Изобретение относитс  к области микробиологической промышленности, а именно к получению ферментов, способных лизировать оболочку клеток Chlorella, дрожжей н т. п.
Известен способ получени  литического фермента путем выращивани  его продуцентов на питательной среде, содержащей источники углерода и азота, в присутствии минеральных солей с последующим выделением фермента из культуральной жидкости.
Иредложенный снособ отличаетс  от известного тем, что в качестве продуцента используют микроорганизм Micropolys рога 434. Ири этом выращивание последнего желательно производить при температуре 40-60° С в течение 16-24 час.
Микрооргапиз.м Micropolys рога 434 имеет следующую характеристику.
Морфологи . Воздушный мицелий диаметром около 0,7-1,0 мк, разветвленный, умеренно прилипщий -к среде, белый.
Субстратпый мпцелий немного тоньще, чем воздушный; диаметр около 0,5-0,7 мк, имеет тенденцию проникать в агаровую среду.
Иа поверхности агаровой среды, часто наблюдаетс  скопление из куполообразиых образований .
отдельные споры, но главным образом цепочкп из 2-10 спор. Цепочки пр мые, сравнительно легко раздел ютс  на отдельные споры и при выращивании со встр хиванием не наблюдаетс  цепочек длпнпее, чем из 2-3 спор. Спиральные не образуютс .
Ир1 прорастанни спор наблюдаетс  1 - 2 трубчатых зародыша.
Фрагментов мнцелн  в чашках Иетри не наблюдаетс , но часто встречаютс  фрагменты в 5-20 мк при намазывании на стекло.
Как показывает хроматографический анализ на бумаге после гидролиза клеточной оболочки 611-НС клеточна  оболочка состоит из мезо-сх, е-диаминоиомелиновой кислоты, арабинозы , галактозы и т. д.
Физиологические признаки. Иа сахарозонитратном агаре не растет.
Иа глюкозо-аснарагиновом агаре не растст .
Иа глицерин-асиарагиновом агаре рост умеренный. Иа новерхности среды образуютс  тесные слои. Субстратный мицелий светло-коричневый . Воздушный -мицелий белый. Иа жидком агаре рост хороший. Воздушный мицелий белый. Субстратный мицелий свегло-коричневый . Растворимого пигмента пег. Среда имеет порошковатую поверхность.
сти среды. Иа второй день разжижени  студн  не наблюдаетс , но на четвертый день наблюдаетс  умеренное разжижение.
Среда Беннета. Хороший рост. Воздушный .1Нцелий белый. Субстратный .мицелий светло-корнчневый . Растворимый нпгмснт сиетло коричневого цвета.
Агар с кра.хмалом н неорган.ичсскимн с(.о1м .M1I. Через чет1)1ре прн 50 С роста нег. Разжнжен 1  К15а.мала нет.
Лгар с кра.х.малом н .м сным нентоно.м. Хо ) рост. Воздунпчый мнцелнй бельп. Субстратный мнне.пн сБ(ЛЛ())нч 1еиы| 1. Растворимы HHiMCHi, ciiei;i()-i(.)pH4Hc-Bbii i. -1ере,ч два дн  Hpii 50 С крахмал нолностыо гидро:1нзуетс ,
Декстрнно-казе1П оиый агар. Хороший pi;cT. Воздуншый .пIнeлий желтовато-белый. Растворимый н HIмен т светло-желто-кор1 ЧневыГ|.
1 нтратиа  среда. Тонкий нлснкообразшл рост. Воздушный М1 нс;1нй бе.лый.
Ьгграт не восстанавливает.
Па .laK.M coBOM молоке )астет с образо1(аинем колец. Через два-дн  н)и 50 С иаб.тюдаетс  нег|тоннза1дн . /
Па 1.:артофельно1 1 массе роста нет.
11,е.1люлозо-аснарагн110Ба  С1)еда. Роста нет. Целлюлоза не разла1аетс .
1.,е, люлозо-декстрш-10-казеиио1 а среда.
Умереиный рост в внде колоний. Возду Н1Н 1| 1 мнцелнй белв1Й. Почти не наблюдаетс  раз.тоженн  неллю;10зы.
Па нитггге.ииюГ агаровой с)еде Hei роста нрн 30, слаб1,1Й рост нрн о7, ме1)енный нри 40-45 и ,) рост нри 40 - 45С. .Умс|)снН1 ) рост, но слабое сцсн,тение воздушного мицелн  нрн 55--60 С н нло.хой рост нрн 65° С.
Споры не по1 1бают нри тенловси: обрабоп;с в теченне 10 мин нрн 100 С. При экстракщш гор чим 80%-ным этаноло.м наб.тюдастс  нрнсутхтвнс 2,6-днноколеииовой кнс,К)Т1). Этот факт не наблюдаетс  дл  нзвеспюго )ода.
Г1итател1Л1а  ереда, иримен е.ма  .нрн предложенном стюсобе, соде1)Ж1гг источники у1лерода , азота, HeojiraiiiniccKHx солсм : и opraiiHMcски .х нитательн1 гх вен1еств. Источником углс л )да можег быт1) нолн.мер, и.мею1цнй с|)авннтельно высокую стенень но.;1И.мери:;ацн11, нанример крахмал, декстран, декстрнн, ннулнн II т. н., но са.хара, имсюшие ннзкую степень но,тимернзацнн, наиример, .моноса.ха)1ды, днса .харнды н т. н. непригодны. Псгочииками азота .может бвггь сульфат ал1монн , х.торн.ц аммони , фосфат а.м.моии , нитрат аммони  н т. II. Меорганнческие соли добавл ютс  к среде в качестве источников разлнчны.х э.те.ментов , существенных дл  роста мнкроорганизма II . нредетавл ть нодход шую комбинацию различных фое11)атов, 1 алийиых, ма1незиальных , цинковых, медных, железных, марганцевых и т. и.солей. В качестве ор аи 1ческнх ннтате; ьиых веществ добавл ют такнс вещества, как витамннв, аминокислоты, дрож}кевой н солодовы) .экстракты н т. д,.
Среда может также состо ть нз сущесгвенно важных неорганических солей и живых клеток некоторых дрожжей, хлореллы, грибков, бактерий и т. д., которые иодвергаюте  действню (рерме гга насто щего изобретени . В последнем случае живые клетки служат в качестве источника углерода, азота и нитательных вендеств, но лучшие результаты могут быть ;.;остигнугы, если к среде добавл ют
дрожжевой н солс довый экстракт и т. д.
Вырашивание обычно начинают суспендированием Micropolys рога 434 в стерилизованной воде нутс.м Hepeiifica нетле11 и.татиновой 11ГЛ1л чисто11 ку;|ьтурв1 и дсгЗавлеии  нолучаюшейс  суснензнн к нитательной среде онисацного выше тина. Выращивание обычно заканчивают за период 1( -48 час с аэрированием нри температуре 40--60°С.
Фер.меит накапливаетс  во врем  выращивани  в ку,тьтуральной жидкости и верхний слой носле удалени  мицели , ианример, центрифугироваиием , .может примен тьс  как таковой дл  лпзир( клеточной оболочки или может высушиватьс  ири темнературе ниже 0°С дл  получени  его в виде порошка.
Дл  нолучени  более очищенного ирепарата раствор неочищенного фермента высаливают сульфатом аммони  или обрабатывают
ацетоном дл  оеаждени  фермента. Высаливание производ т цуте.м добавлени  сульфата а.м.мслш  к расгвору фермента до етенени насыщени  0,4, удалени  образова;вшегос  оеадка , да.1вне1 1шего дс,баво1еии  до стеиени наеы|цс1111  0,G и собнрани  осевшего фермента. Добавл ть сульфат аммони  можно за один прием. Лучшие результаты в этом случае по .чучают, если сульфат аммони  добав 1 ют до етенени насыидеии  0,8. С другой стороны дл 
осаждени  фермента .можно обрабатывать раство) ацетслю.м. Панлучшнй результат получают нрн .медленном добавлении ацетона до концентрации 60% н отделении оеадка после ие1)емещнванн  в течение 1 час. Полученный
фер.меит раство|з ют зате.м в подход щем буферном растворе, например в 0,01 п. растворе КНгРО., (,0) и диализируют в тот же буферный раствор. Внутренний раствор (расiBop , остаюнипк  в .мешке из мембраны после
диализа) иредставл ет высоко чистый раствор фермс1гга, его можно высушить нри темлературе ииже 0° С аналогнчно неочищенному раствору фермента.
Г1)едложенньи1 литический фермент имеет
следующие характеристики.
Устойчив в пределах рП 5,0-9,0. Оптимальный предел рП 7,0-8,0.
УХктивеи ири температуре 40-70° С, в особенности :нрн 50-60° С.
Будучи сюйкнм нри низкой температуре, он не дезактивн)устс  нрн 0 С и тер ет активноеть нри 100°С за 10 мин.
Hg++, Fe++, Zn++, Cd++, Ni++ и умеренно Mn++, Co++, HO активируетс  и Mg++.
Полученный литический фермент пригоден дл  экстрагировани  многих полезных внутриклеточных веществ, например протеина, нуклеиновой кислоты, аминокислот, витамина и др.
П р и м е р 1. В среду А производ т посев Micropolys рога 434. Среда сОхТ,ержит 5 г живых клеток Candida rugosa IF-101; 1 г KsHPO ; 0,5 г MgSO.,. УНаО и 1000 мл дистиллированной водЕл; рН 7,4. Выращивают со встр хиванием 24 час три 50-55° С, после чего живые клетки Candida rugosa IF-101 полиостыо раствор ютс . Полученную культуральную жидкость затем центрифугируют при 5000 об/мин iB течение 10 мин, клетки и споры Micropolys рога 434 удал ют. Получают неочищенный раствор фермепта, обладающий большой активностью но растворению клеточной оболочки.
Готов т суспензию живых клеток каждого вида дрожжей, перечисленных в табл. 1, с концентрацией 10 мл, содержащую 0,1% K2lIP04 и 0,05% MgSO.|-7H20 в дистиллированной воде и рН довод т до 7,4. Примен вшиес  дрожжи , содержащие живые клетки, получают посевом этих дрожжей в среду, содержащую глюкозу, (NH4)2SO.,, КЫгРО.,, MgSO4, сололювый и дрожжевой экстракты, и.1еющую рП 5,4. Выращивают их встр хиванием 24 час при 30° С.
Затем после доведени  неочищенного раствора до рН 7,4 к каждым 3 мл этого раствора добавл ют 0,2 мл суснензии живых клеток и смесь слегка встр хивают 4 час при 50° С, Результаты, приведенные в табл. 1, показывают , что больша  часть дрожжевых клеток разрушепа и растворена.
Уменьшение мутности реакционной смеси, указанное в табл. 1, определ етс  визуальио. Три :плюса обозиачают полное растворение клеток, два плюса - умеренное растворение и один плюс - слабый лизис клеток.
Степень лизиса клеток вычисл ют по следующей формуле: где Si - исходное число клеток; Sa - ЧИСЛО иелизироваппых клеток, тающихс  в реакционной смеси. Пример 2. В стерилизованную при 120°С в течение 3 мин среду Б, содержащую около 10 г увлажненных клеток Chlorella ellipso idella tamiga; 1 г K2HPO4; 0,5 г MgS04X7H,O и 1 г дрожжевого экстракта в 1000 мл дистиллированной воды с рН 7,4 засевают мицелий Micropolys рога 434 и выращивают при 50° С 24 час. Нелизированные клетки Chlorella удал ют центрифугированием дл  получени  неочищенного раствора фермента, который имеег большую активность по лизированию живых
Таб.)1нца 1
К 3,0 мл нолучепного таким образом раствора добавл ют 6,2 мл суснензии клеток Chlorel1а (3x10 мл) и смесь выдерживают при 50°С в течение 18 час прп легком встр хивании. Полученные результаты показап1л в табл. 2, где мутность даиа в велпчипах оптической плотности , измеренной при длине .волны 530 ммк. Стандартный раствор готов т путем добавлени  к суснепзии Clilorella фосфатного буферного раствора (рП 7,4) вместо раствора фермента в количестве равном раствору фермента.
Таблица 2 П р и м ер 3. К неочищениому раствору фермента , полученному как в примере 1, добавл ют сульфат аммоии  до степенн насыщени  0,4. Образовавшиес  осадки удал юг и сульфат аммони  добавл ют до стенеии иасыщени  0,6. Полученные осадки собирают центрифугированием и суспенднруют в днстиллированной воде. Суснензию диализировали через целлофановый .мешок дл  получени  очищенного фермента. Полученный очищенный фермент добавл ют к жидкому образцу, содержащему мицелий Aspergillusorizal IAM 2024. После выдерживани  смеси при 50° С в течение 4 час больша  часть клеточных оболочек мицели  была разрушена.
3 мин, добавл ют 2,0 мл раствора фермента, полученного в нримере 3.
После доведени  рН до 7,4 смесь выдерживают 4 час при 50°С. Около 70% клеток было разрушено.
Пример 4. В среду В (содержан1ую 20 ; крахмала; 2 г (МП,),SO.,; 2 г КНаРО,; 5 г К2НРО.,; 2 г MgSO., 7Н2О; 0,006 г CuSO,,бНгО; 0,001 г FeSO4-7H2O; 0,008 г МпСЬ 4Н2О; 0,002 г ZnSO.,-71-120 и 10 г дрожжезого экстракта в 1000 мл дистиллированной воды -при рП 7,4) засевают Micropolys рога 434 и вырааитвают при встр .хиваини при 50° С в течение 24 час.
Культуральиую жидкость центрифугируют при 5000 об:мин 10 мин. Мицелий и споры удал ют и получают раствор неочищенного фермента , обладающий большой активностью но лизироваиию клеточиых оболочек.
К получеиному раствору иеочнп;енпого фермента добавл ют сульфат аммонн  до степени наеыщепи  0,8 и смесь :перемешивают 4 5 час при 5°С, при это.м 1получа1от коричненып осадок. Последний отдел ют центрифугированием при 10000 обIмин, раствор ют в 90 мл 0,01 М раствора фосфатного буфера (рП 7,0) н днализируют в тот же буферный раетвор при 5° С. Получают раствор очищенного фер .мента, который высущивают при низкой температуре . Получают 195 г чистого фермента в виде порощка.
П р и м е р 5. К раствору неочищенного фермента , полученного как в примере 4, поддерживаемому ири 5° С, добавл ют ацетон при перемещиваиии до достижени  ацетоном 60%-ной концентрации и продолжают перемешивание 5 час. Образовавшийс  осадок отдел ют центрифугированием при 10000 об лшн 10 мин и раствор ют в 90 мл 0,01 М раствора фосфорного буфера (рП 7,0). Полученпый расччюр днализируют в тот же буферный рас1В (зр ири 5° С и получают раствор очищенного фермента.
Предмет изобретени 
1.Способ нолучени  литического фермента нуте.м выращиванн  его продуцентов на питательной среде, содержащей источники углерода , азота, в присутствии .минеральных солей е гюследующи.м выделением фермента из культуральиой жидкости, отличающийс  тем, что в качестве продуцента иснользуют микроорганизм Micropolys рога 434.
2.Способ но 11. 1, отличающийс  тем, ч го вырандивание осуществл ют при температуре 40-60° С в течение 16-24 час.
SU1412761A Способ получения литического фермента SU348010A1 (ru)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU348010A1 true SU348010A1 (ru)

Family

ID=

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Dox The intracellular enzyms of penicillium and aspergillus: with special reference to those of Penicillium camemberti
IL34956A (en) Production of lipase
SU348010A1 (ru) Способ получения литического фермента
US8574887B2 (en) Process to grow and concentrate algae
US3658650A (en) Cell wall lytic enzyme and process for the production thereof
US4357425A (en) Process for producing L-amino acid oxidase
JP3553128B2 (ja) リポマイセス属に属する菌体外多糖高生産株の育種法
EP0248832B1 (fr) Procede de culture de microorganismes, notamment du groupe des frankia et preparation d'inoculums bacteriens
JPS6018394B2 (ja) 微生物によるラクタ−ゼの製造法
JPS6147512B2 (ru)
JPH0549491A (ja) 微細藻類から多糖類を生産する方法
CN113151002B (zh) 一种平菇木霉及其应用
JPS582671B2 (ja) コレステリンエステラ−ゼの製法
JP2002159290A (ja) 新規リパーゼおよびその製造方法
KR900005530B1 (ko) 고농도당 내성의 바실러스속 두산 3호(Bacillus sp.Doosan 3)와 이를 이용한 다당류의 제조방법
RU2117702C1 (ru) Способ получения глицеролоксидазы
JP3442281B2 (ja) 新規ヘテロ多糖産生能を有する微細藻類、新規ヘテロ多糖及びその製造方法
JPH09292A (ja) グルタチオン含有藻体およびグルタチオンの製造方法
RU2575804C1 (ru) ШТАММ ДРОЖЖЕЙ Candida parapsilosis - ПРОДУЦЕНТ ЛИПАЗЫ
SU412247A1 (ru)
RU2026347C1 (ru) Штамм бактерии alteromonas haloplanktis - продуцент полиуридил-эндорибонуклеазы
RU2170762C2 (ru) Штамм penicillium funiculosum км мгу 433-продуцент глюкозооксидазы и способ получения глюкозооксидазы
JPH06189779A (ja) トレハロースの製造法
SU1118674A1 (ru) Способ стабилизации глюкоамилазы,продуцируемой @ @ в процессе хранени
JPH0133159B2 (ru)