SU1471949A3 - Способ конструировани рекомбинантной плазмидной ДНК, кодирующей бычий гормон роста - Google Patents

Способ конструировани рекомбинантной плазмидной ДНК, кодирующей бычий гормон роста Download PDF

Info

Publication number
SU1471949A3
SU1471949A3 SU813345603A SU3345603A SU1471949A3 SU 1471949 A3 SU1471949 A3 SU 1471949A3 SU 813345603 A SU813345603 A SU 813345603A SU 3345603 A SU3345603 A SU 3345603A SU 1471949 A3 SU1471949 A3 SU 1471949A3
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
growth hormone
cdna
dna
pbr
fragment
Prior art date
Application number
SU813345603A
Other languages
English (en)
Inventor
Л.Миллер Уолтер
А.Мартиал Джозеф
Д.Бакстер Джон
Original Assignee
Дзе Раджентс Оф Дзе Юниверсити Оф Колифорния (Фирма)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Family has litigation
First worldwide family litigation filed litigation Critical https://patents.darts-ip.com/?family=22663908&utm_source=google_patent&utm_medium=platform_link&utm_campaign=public_patent_search&patent=SU1471949(A3) "Global patent litigation dataset” by Darts-ip is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
Application filed by Дзе Раджентс Оф Дзе Юниверсити Оф Колифорния (Фирма) filed Critical Дзе Раджентс Оф Дзе Юниверсити Оф Колифорния (Фирма)
Application granted granted Critical
Publication of SU1471949A3 publication Critical patent/SU1471949A3/ru

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/70Vectors or expression systems specially adapted for E. coli
    • C12N15/71Expression systems using regulatory sequences derived from the trp-operon
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/575Hormones
    • C07K14/61Growth hormone [GH], i.e. somatotropin
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K2319/00Fusion polypeptide
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K2319/00Fusion polypeptide
    • C07K2319/01Fusion polypeptide containing a localisation/targetting motif
    • C07K2319/02Fusion polypeptide containing a localisation/targetting motif containing a signal sequence
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K2319/00Fusion polypeptide
    • C07K2319/70Fusion polypeptide containing domain for protein-protein interaction
    • C07K2319/74Fusion polypeptide containing domain for protein-protein interaction containing a fusion for binding to a cell surface receptor
    • C07K2319/75Fusion polypeptide containing domain for protein-protein interaction containing a fusion for binding to a cell surface receptor containing a fusion for activation of a cell surface receptor, e.g. thrombopoeitin, NPY and other peptide hormones

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Endocrinology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Fodder In General (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)

Abstract

Изобретение относитс  к области генной инженерии и касаетс  способа получени  рекомбинантной плазмидной ДНК, кодирующей бычий гормон роста. Рекомбинантна  плазмидна  ДНК, кодирующа  гормон роста быка, получена путем выделени  мРНК из гипофизарных желез быков с последующим получением кДНК и клонированием полученной кДНК в PBR 322. 1 з.п.ф-лы, 1 табл.

Description

31
Полиаденилировэнную РНК траскри- бируют в одноцепочечную с ДНК с использованием обратной транскриптазы. РНК удал ют путем щелочного гидролиза . Одноцепочечную с ДНК экстрагируют фенолом, подвергают хроматографи- ческому разделению при пропускании над G-50 Sephadex и осаждают этанолом . Одноцепочечную ДНК используют как основу дл  синтеза второй цепи кДНК с применением обратной транскриптазы . Одноцепочечную гепариновую петлю у З -концевой части первой молекул рной цепи кДНК удал ют путем обработки нуклеазой 5д. Двух- цепочечную с ДНК очищают экстракци- ей фенолом, подвергают хроматографи- ческому разделению при пропускании над G5.0 Sephadex и осаждают в этано- ле. Двухцепочечнук кДНК снабжают концевым звеном,dCMP с использованием dCTP и концевой трасферазы.
Плазмиду pBR 322 расщепл ют эндо- нуклеазой Pst I и снабжают концевым звеном dGMP с тем исключением, что вместо dCTP используют dGTP. 50 нг расщепленной Pst I плазмиды pBR.322 с dG-концевой частью и 20 нг двуцепо чечной кДНК с dG-концевой частью от- жигшот в 50 мкл реакционной смеси.
Трансформацию Е. coli X, 1776 плаз - мидой осуществл ют как описано ниже, Штамм Е. coli X 1776 становитс  проницаемым дп  ДНК.в результате вьздерж- ки в термостате в 75 мкМ СаС, 5 MKMMgCl, 10 мкМ Трис, рН 7,5 в течение 20 мин при 4 с, Плазмиду и бактерии выдерживают в течение 60 мин при и затем в течение 2 мин при . Преобразованные колонии отбирают по стойкости к тетрациклину. Присутствие размноженной ДНК определ ют путем гибридизации колоний кДНК зондом, меченным 32Р и кодируюпа1М гормон роста быков. Плазмиду ДНК выдел ют из отобранных колоний, расщепл ют Pst I, подвергают электрофорезу на 1%-ной агарозе, обрабатьгоают этидийбромидом, фотографируют и, наконец , перенос т на нитроцеллюлозные фильтры. Наличие последовательностей гормона роста определ ют путем гибридизации с полной цепью кДИК гормона крысы, меченной nick-трансл цией. Получакп один клон, которьш гибриди- зировалс  с nick-транслированной DMA и обозначенной как рВР 348. Введенна 
Q 5 0
5 о
5
0
5
0
5
последовательность включала 8831 пар оснований.
Пример 2. Плазмиду рВР 348 расщепл ют Pst 1, фосфат у 5 -концевых звеньев фрагментов ДНК удал ют путем обработки щелочной фосфатазой и замен ют меченным Р фосфатом с использованием полинуклеотидной киназы. Затем плазмиду рВР 348 расщепл ют Pst I, Pvu II или Sau ЗА, меченными , и полинуклеотидной киназой, а после этого расщепл ют другими ферментами с образованием фрагментов ДНК, меченых в одиночной концевой части. Эти фрагменты получают путем элюировани  из поли- акриламидного гел  и устанавливают последовательность.
Аминокислотные положени  нумеруют, начина  с аминокислоты с аминовым концом гормона роста быков в направлении к карбоксильному концу и в направлении к первому AU.G кодону, который , как предполагаетс ,  вл етс  точкой начала трансл ции. Данна  последовательность кодирует синтез . гормона роста, включающий поелетрансл ционную обработку. Трансл ци  гормона роста mRNA приводит к предшественнику гормона роста, включающему сигнальный пептид.
Пример ,3. (А) Осуществл ют процедуру таким же образом, как описано в примере 1, использу  плазмиду pBR 315 вместо плазмиды pBR 322.. Все услови , включа  отбор рекомбинант- ных клонов, описаны ранее.
Введенную последовательность уда л ют и анализируют аналогично примеру 2, в результате чего получают ДНК, содержащую примерно 831.п.о.
(В) Осуществл ют процедуру таким же образом, как описано в примере 1, с использованием плазмиды pBR 316 вместо плазмиды pBR 322-. Все услови  идентичны описанным в примере 1-.
Пример 4. В данном примере сДНА, кодирующую предЩественник гормона роста быков, получают по примеру 1 .
(А) Линкеры Hind III,,имеющие последовательность 5 -CCAAGCTTGG-3 , соедин ют с кДНК, полученной по примеру 1, за счет св зьшани  обрезанных концов с использованием Т4 DNA лигазы. После св зьшани  продукт об- рабатьшают посредством Hind III или Hsu I. Плазмиду pBR 322 расщепл ют
Hind III или Hsu I и подвергают обработке щелочной фосфатазой. После оса)ени  из этанола обработанную фосфатазой расщепленную pBR 322 соедин ют с кДНК, содержащей линкер Hind III. Е. coli X 1776 трансформируют рекомбинантной плазмидой и отбирают по чувствительности к тетрациклину . Получают колонию, включающую введенную последовательность, котора  гибридизируетс  с nick-транслированной ДНК. Введенную последовательность удал ют путем расщеплени  с Hind III или Hsu I и анализируют, как описано в примере 2. Введенна  молекула содержала примерно 830 пар оснований , (в) Осуществл ют процедуру аналогично примеру 4, в котором использовалось несколько векторов вместо pBR 322, однако вместо плазмиды pBR 322 используют плазмиды pSC lOlj рМВ9, pBR 315 и pBR 316. Все услови , включа  отбор рекомбинантных клонов, аналогичны описанным. Дл  всех плазмид получают идентичные результаты, т.е. в каждом случае получают рекомбинан- тную плазмйду, содержащую кДНК, кодирующую гормон роста быка.
(С) Осуществл ют процедуру таким же образом, как описано в примере 4 (А), но используют несколько других сайтов рестрикции и эндонуклеаз рестрикции . В данном примере используют линкеры Sal I и Ват Н I вместо линкеров Hind III. Последовательности линкеров представл ют собой 5 -GGTCCACC-3 и З -CCGGATCCGG-з . При использовании линкеров Sal I кДНК и pBR 322 расщепл ют эндонукле- азой Sal I, а при использовании линкеров Ват Н I эндонуклеаза ограничени  представл ет собой Ват HI. Все услови , включа  отбор рекомбина- нтных клонов, описаны в примере 4 (А-).
(D)Осуществл ют процедуру аналогично примеру 4 (С), в котором вместо плазмиды pBR 322 используют плазмиды pSC 101, рМВ9, pBR 313, pBR 315 и pBR 316; Все услови  такие же, как в примере 4 (С) и получают идентичные результаты.
(E)Осуществл ют процедуру аналогично примеру 4 (А) с использованием линкера Есо RI, имеющего последовательность 5 -CCGAATT6G-3 , вместо линкера -Hind III и с использованием эндонуклеа ы Есо RI вместо Hind III
(Hsu I). Транформирование колонии не отбирают по чувствительности к тетрациклину .
(F)Осуществл ют процедуру аналогично примеру 4 (Е), но с использованием плазмид pSC 101, рМВ 9, pBR 313 и pBR 315 вместо pBR 322. Используют те же услови , что описаны в
10 примере 4 (Е), и дл  каждой плазмиды получают идентичные результаты.
(G)Осуществл ют процедуру аналогично примеру 4 (А) с использованием линкера Pst I, имеющего последова15 тельность 5 -GCTGCAGC-3 , и с использованием Pst I эндонуклеазы вместо сайта Hind III и вместо Hind III (Hsu I) соответственно. Используют идентичные услови  с той разницей,
Q что отбор рекомбинантных клонов осуществл ют , как описано в примере 1 Получают рекомбинантньй клон.
(Н) Осуществл ют процедуру аналогично примеру 4 (G), но используют
5 плазмиды pBR 315 и вместо плазмцды pBR 322. Используют те же услови , что описаны в примере 4 (G), и получают идентичные результаты. Q) Осуществл ют процедуры таким
0 же образом, как описано в примерах 1 3 (А), 3 (В) и 4 (А) - (И), с использованием Е. coli RRJ или Е. coli НВ 101 вместо Е. cali X 1776. Все услови  и результаты идентичны описанным.
j ПримерЗ. В данном примере получают cDNA, кодирующую i предщественник гормона роста быков , как описано в призере 1. Линкеры Есо RI соедин ют с кДНК и рас-
Q щепл ют посредством Есо RJ.
(А) В качестве вектора используют Charon 16А. Когезионно св ,занные концевые части обрабатьтают путем - жки в течение 60 мин при 42°С в 0,1 М
g Трис-НС1, рН 8,0 и 10 мМ MgCljj. Данньй вектор расщепл ют в сайте ;ЕСО RI эндонуклеазой Есо RJ и затем подвергают обработке щелочной фосфа- тазой. Шсле осаждени  из этанола в обработанный фосфатазой вектор ЬЕсо RI сайт ввод т кДНК при мол рном соотношении 2 моль вектора на I моль.
0
+
Эту смесь сшивают лигазой фага Т Полученной смесью трансформируют суспензию клеток Е. coli X 1776, приготовленную дл  преобразовани , как описано в примере 1. Рекомбинантные фаги извлекают и нанос т на .Lac бактерии в чашках, содержащих 5-хлор-4-бром-3-индолип- ()-В-глактозид (Х6) , дл  продуцировани  бесцветных негативных колоний отбирают рекомбинант- ные фаги (80 мкг/мл), содержащие
сДНК в Е. coRJ сайте вектора 16А. Отобранный рекомбинант изолирую и обрабатьшают избытком эндонуклеа- зы Есо RJ и продукт обработки анализируют , как описано в примере 2. Из- влекают ДНК с длинной цепью, включающей примерно 830 пар оснований. Полученные фаги упаковьшают in vitro.
(Б) ДНК фагов Charon ЗА или 4А используют в качестве векто-ра вместо ДНК Charon 16А. Все услови  были идентичны тем, что описаны дл  ДНК Charon 16А. Выбор рекомбинантных фагов осуществл ют путем нанесени  фагов на Lac бактерии в чашках, со- держащих Хб, и изолировани  бесцветных негативных колоний с последующими либо гибридизацией с соответствующей пробой, или обработкой эндо- нуклеазой. Эту введенную последова- тельность удал ют, как описано ранее в результате чего п олучают ДНК с длинной цепью примерно 830 пар осно- ваний.
(C)ДНК фaгa gt WE8 ЛВ используют в качестве вектора вместо Charon 16А Все услови  идентичны описанным дл  Charon 16А. Отбор рекомбинантных фагов осуществл ют по способу гибридизации .
Введенный фрагмент удал ют, как описано ранее, в результате чего получалась ДНК, включающа  примерно 830 пар оснований (длина цепи).
(D)Осуществл ют процедуру таким же образом, как описано в примерах
5(А) - (С), в которых использовались Е. coli RPJ, Е. coli ИВ 101, Е. coli DP 50 или Е. coli DPS иф F, вместо Е. coli, X 1776, Все услови  тедентич- ны и получают идентичные результаты.
Пример 6. Дл  осуществлени  данного примера получают сДНК, кодирующую предшественник гармона роста, как описано в примере 1 . Вво- д т линкеры Hind III и кДНК обраба- тьшают посредством Hind III или Hsu I, как описано в примере 4(А).
Ппазмиду рС 194, изолированную из S. aureus, используют в качестве вектора, рС 194 расщепл ют в зоне Hind Hi посредством Hind III или Hsu I и затем подвергают обработке щелочной фосфатазой.
Полученную кДНК соедин ют с расщепленной рС-194, Осуществл ют трансформацию В, subtil is RuB, Клеточную суспензию нанос т непосредственно на L чашки, содержащие 3 мкг хлор- амфеникола. Отобранньй рекомбинант изолируют и обрабатывают посредством Hind III и продукт расщеплени  анализируют, как описано в примере 2 Извлекают ДНК длиной цепи примерно 830 пар оснований.
Пример 7, (А) Плазмиду pBR 348 обрабатывают эндонуклеазой Нае II с образованием фрагмента, включающего 1600 п.о. Однако зона Нае II находитс  в пределах введенной кДНК, кодирукнцей предшественник гормона роста, а втора  зона - в пределах фрагмента плазмиды pBR322. В результате расщеплени  получают
,...3 - З -GCGGAA5
Бычий GH (гормон роста) начинаетс  либо с 4-1 ala, либо с -+2 phe остататочного звена в концевом по-: ложении NHj,. Удаление ко дона ala . осуществл ют путем вьщержки в термостате ДНК вместе с dATP и фрагментом Кленова DNA полимеразы I. В результате этой реакции получают.
5 ТТС .,.,3
З - AAG5 .
ДНК экстрагируют фенолом и осаждают . Избыток dATP и .дигерированные основани  удал ют путем хроматографии на G50 Sephadex. Оставшеес  5 звено удал ют нуклеазой S.. В результате такого расщеплени  получают
5- ТТС ,.,,3
з - AAG- ....5
(В) Осуществл ют процедуру таким же образом, как описано в примере 7(А), в котором дезоксинуклеотидную последовательность, кодирующую предшественника гормона роста быка, удал ют путем обработки рекомбинантных ДНК, полученньис в примерах 3, 4, 5 И 6 эндонуклеазой Нае II.
Используемые векторы и эндонуклеа зы показаны в таблице.
После обработки ферментом рестрикции изолируют последовательность предшественника гормона роста быка посредством гельэлектрофореза и за914
тем ее подвергают обработке, как описано в Примере 7(А), при этом получают идентичные результаты.
(С) Осуществл ют процедуры таким же образом как описано в примерах 7(А) и 7(В), с использованием полимеразы или З - 5 экзонуклеазы вместо фрагмента Кпенова ДНК полимеразы I.
Все другие услови  идентичны и в каждом случае получают идентичные последовательности фрагмента гормона роста быков.
П р и м е р 8. {А) фрагмент гормона роста быков ,
5 - С ТТС....3
з - GCCGAAG з
получают путем обработки Нае II,- как описано в примере 7(А) или 7(В). Затупление осуществл ют следующим об- . ДНК, вьщерживают в термостате- с dATP, dCTP, dCTP, dTTP и фрагменто Кпенова ДНК полимеразы I. В результате этой реакции получают 5 - GG
З - GCGGAAG ...,
ДНК экстрагируют фенолом и осаждают. Данную последовательность затем выдерживают в термостате с фрагментом Кленова ДНК полимеразы I в присутствии dCTP. Эту последовательность за тем обрабатьюают S| нуклеазой, в результате чего получают последовательность
5 - GCC ТТСз
3 - CGG AAG5
(в) Осуществл ют процедуру таким же образом, как описано в примере 8(А), с использованием Т4 ДНК полимеразы или 3 - 5, т.е. в присутствии dCTP.
Пример 9. Дезоксинуклеотид- ную последовательность, кодирующую гормон роста быков, ввод т в векторы переноса, как описано дл  предшественника гормона роста быков.
(А) Осуществл ют процедуры таким же образом, как описано в примерах , 3(А), 3(В), 4(А) - (J), 5(А) - ,() и 6, о использованием ДНК, приготовленной аналогично примерам 7(А), 7(В) или 7(С). Все другие услови  идентичны. ДНК расщепл ют соответствующими эндонуклеазами, как показано в таблице, и анализируют, как описано в примере 2. В каждом случае по9 О
лучают ДНК с последовательностью, начинающуюс  с Phe в положении 2.
(В) Осуществл ют процедуры таким же образом, как описано в примерах I, 3(А), 3(В), 4 (А) - (СГ), 5СА) - (D) и 6, с использованием ДНК, приготовленной согласно примеру 8(А) или 8(В). Все другие услови  идентичны.
ДНК расщепл ют соответствующей эндо-. нуклеазой (как показано в таблице) и анализируют, как описано в примере 2. В каждом случае получают ДНК., имеющую последовательность, начинающуюс  с Ala кодона.
Пример 10. (А) Экспрессию предшественника гормона роста быка как белка сли ни  демонстрируют с помощью радиоиммунного анализа и
миникпеточного эксперимента. В эксперименте с радиоиммунным анализом Е. coli X 1776, содержащие pBR 348, или Е. coli, содержащие pBR 322, как контроль, выращивают в питательном
бульоне и извлекают посредством центрифугировани . Клетки повторно суспендируют и лизирутот, и в гормон роста ввод т радиомеченый гормон роста овец и антитело овец (или быков).
Иммунный комплекс осаждают и измер ют радиоактивность. Эксперимент показал , что белок сли ни  сохран ет некоторую 1муноактивность гормона роста быков. Дп  более подробной иллюстрации продуцировани  белка сли ни  осуществл ют мкниклеточньй эксперимент . Данньй эксперимент показывает , что pBR 348 образует белок сли ни , состо щий из 183 аминокислот
| Лактамазы, 217 аминокислот предгор- мона роста быка и несколько св зывающих аминокислот, кодированных обычно, нетранслированной 5 зоной. Общий молекул рный вес, составл ющий примерно 45000, соответствует предсказанному молекул рному весу гибридного белка.
(В) Дп  пр мой экспрессии предшественника гормона роста быка введен ™ сначала отдел ют от pBR 348 путем частичного расщеплени  эндону- клеазной Pst I и очищают посредством препаративного гель-электрофореза. 15 мкг образца очищенной введенной
Н затем модиАицируют путем суспен- зировани  ДНК в воде, в которую вво т раствор солей так, чтобы конеча  композици  содержала: 70 мМ Трис, Н 8,8; 70 мМ MgCl2 ; Ю Ь дитио1
треитола и 13,75 молекул рных звеньев полимеразы ДНК в общем объеме 250 мкл Реакционную смесь вьщерживают в термостате при 37 С в течение нескольких минут, затем ввод т dATP до концентрации 50 M}J. После, дополнительной выдержки в термостате в течение 30 мин фермент инактивируют путем термообра ботки при 65°С в течение 5 мин. Этот процесс повтор ют еще два раза, один раз с использованием dCTP и dATP, а затем снова с использованием dTTP. Обработанную DNA извлека1от путем осаждени  этанолом. Обрабатывают S, нук- леазой. Данный процесс обеспечивает получение молекулы ДНК, заканчивающейс  в начальном кодоне в положении за номером 26. Такие молекулы транс- лирзгютс  при вводе в вектор экспрессии , имеющий зону ввода, соответствующую примерно 3-11 нуклеотидам от последовательности рибрсомного св зы- ,вани .
Вектор пр мой экспрессии конструируют путем модификации плазмиды ptrp ЕЗО, путем удалени  23-29 нуклеоти- дов с использованием полимерат зы и S нуклеазы, как описано ранее.
Модифицированную кДНК и модифицированный вектор экспрессии снабжают линкером, имеющим последовательнйсть 5 -CCGGATCCGG-3 у одной цепи, и гомологичную ей, последовательность у другой цепи посредством св зьюани  с использованием лигазы. Эти линкеры обеспечивают наличие Ват Е+ сайтов. Бактерии-хоз ева Е. coli НВ 101, RR5 или X 1776 трансформируют посредством рекомбинантных ДНК, несущих фрагмент , кодирующий предшественник гормона роста, и трансформаты отбирают по стойкости к ампициллину. Единственный трансформант, обозначенный как ptr рЕЗО/bGH отбирают дл  дополнительного анализа.
Бактериальные клетки, трансформированные плазмщ ой ptr рЕЗО/bGH, выращивают в стандартной.минимальной среде (М9), содержащей LeU PrO, витамин В1 и ампициллин, при 37°С. На ранней логарифмической фазе trp опе- рон индуцируют путем ввода й-индолил- акриловой кислоты (30 мкг/мл среды). Контрольные культуры оставались не- индуцированньми. По прошествии 3 ч роста 1,5 мл клеток .подвергают радиоактивному мечению путем ввода 20 1К S-L-Met и выдерживают в тер моста47
ев л. ой ин а т н . а- и - ы-
rp т ,i .
ь ы 5 г а - л- . ота1949J2
те в течение 10 мин. Клетки извлекают путем центрифугировани , промывают и снова суспенди руют в 250 мкл буферного раствора, содержащего 10% гликол , 5% р -меркаптоэтанола и 2,3% SDS в 0,0525 М Трис, рН 6,8. Суспензию кип т т в течение 5 мин, затем ввод т в 10%-ный гель SDS полиакрилами10 да и фракционируют посредством электрофореза . Полосы, соответствующие белковым зонам, визуально наблюдают посредством ауторадиографии. Результаты показали наличие новой белковой
15 полосы, составл ющей примерно 2АООО дальтон, котора  отсутствует в неиндуцированных или непреобразованных культурах.
Предшественник гормона роста бы20 ков очищают обычными способами,
включающими, например, гель-фильтрацию , ионообменную хроматографию, адсорбционную хроматографию и методы, основанные на различии растворимос25 тей. Предшественник гормона роста Превращают в гормон роста.
(С) Линкеры с последовательностью S -CCGGATCCGGATG-3 у одной цепи и гомологичной ей последовательностью
30 У другой.цепи соедин ют фрагментом ДНК, кодирующим гормон роста.быка, полученным аналогично примерам 7(А) - (С) и 8(А) - (В). Эту модифицированную DNA затем ввод т в вектор ptr
-g рЕ 30, как описано в примере 10(В). Бактерию-хоз ина трансформируют и культивируют, и получаемый в результате гормон роста быков очищают, как описано в примере 10(В).

Claims (2)

1. Способ конструировани  реком- бинантной плазмидной ДНК, кодирующей бычий гормон роста, заключающийс  в
45 том, что вьщел ют полиаденилирован- ную мРНК из гипофиза быка, очищают поли А мРНК адсорбционной хроматографией с применением олиго-ё-ц еллюло- зы, обрабатывают обратной транскрипgQ тазой и получают однкДНК, удваивают полученную однкДНК .с помощью обратной транскриптазы, полученную двунитевую кДНК последовательно обрабатьюают эн- донуклазой Нае II, фрагментом Кленоgg ва, ДНК полимеразой, а затем нуклеа- зой S( и получают кДНК, кодирукнцую бычий гормон роста с 26 по 191 аминокислоту со следующей нуклеотидной последовательностью;
S-ATGATGCCTCCAGGCCCCCGGACCTCCCTGCTCCT GCTTTCGCCCTGCTCTGCCTGCCGTGGAGTCAGGTG GTGGGCGCGTTCCC AGGCATGTGGTTGTCCGGGGTG TTTGCGAACGCTGTGCTCCGGGGTCAGCACCTGCAC
CAGCTGGGTGCTGAGACCTTGAAAGAGTTTGAG CGTAGCTACATCGGGGAGGGAGAGAGATACTGC ;ATCCAGAACACCGAGGTTGCCTTCTGCTTCT€C IGAAACCATGCCGGCGGCCACGGGCAAGAATGAG
GGCCAGCAGAAATGAGACTTGGAGCTGCTTCGC
ATCTCACTGCTCCTGATCCAGTCGTGGCTTGGG
GCCCTGCAGTTTCTCAGGAGAGTCTTCACC
AACAGCTTGGTGTTTGGGAGGTCGGAGCGТ
GTCTATGAGAAGCTGAAGGACCTGGAGGAA
GGCATGTTGGCCGTGATGGGGGAGCTGGAA
GATGG CAGC GGGCGGGG TGGG CAGATGCTC
AAGCAGACCTATGAGAAATTTGACACAAAC
ATGCGCAGTGACGAGGCGGTGCTCAAG
AACTACGGTqTGGTGTGGTGCTTCCGG
AAGGACCTGGATAAGACGGAGACGTAC
CTGAGGGTGATGAAGTGGCGCGGGTTC
GGGGAGGGCAGGTGTGGCTTGTAG-З ,
5
°
5
0
следующей обработкой эндонуклеазой S, и получением кДНК, кодирук дей гормон роста быка со следующей нуклео- тидной последовательностью
5 -GGGTTGGGAGCGATGTGGTTGTGCGGCCTGTTT GGGAAGGGTGTGCTGGGGGCTCAGCACCTGCAG GAGGTGGGTGCTGACAGGTTGAAAGAGTTl GAG CGTACGTAGATGCCGGAGGGACAGAGATAGTCC ATGGAGAAGAGCCAGGTTGCCTTGTGCTTGTGC.. GAAAGCATCCCGGCCGCCACGGGCAAGAATGAG GCCCAGGAGAAATCAGACTTGGAGCTGCTTGGG ATGTCACTGCTGCTGATCGAGTCGTGGCTTGGGCCCGTG CAGTTTCTCAGCAGAGTCTTGACCAACAGGTTG GTGTT GGAGCTGGGACCGTGTCTATGAGAAG ,GTGAAGGACCTGGAGGAAGGGATCTTGGCCCTG ATGCGGGAGGTGGAAGATGGGACCCCCCGCGTC GGGGAGATCGTCAAGCAGACGTATGAGAAATTT GAGACAAACATGCGCAGTGACGAGGGCGTG CTCAAGAACTACGGTCTGCTGTCCTGGTTCCGGAAG GAGGTGGATAAGAGGGAGACGTAGGTGAGGGTGATG AAGTGGGGGCGGTTGGGGGAGGGGAGGTGTGGCTTGTAG
и клонируют ее в PS t I или EcoRI сайт вектора pBR 322.
2. Gnoco6 no п. 1, отличающийс  тем, что двунитевую кДНК расщепл ют Нае II эндонуклеазой полученные фрагменты инкубируют в присутствии с1АТФ, dГTФ, бЦТФ и dTTФ последовательно обрабатывают фрагментом Кленова, ДНК-полимеразой фага Т.
I1-Т
или 3 -5 в присутствии ёТТФ -с по
Фермент ограничени 
Вектор переноса (Пример)
0
Pst I Hind III Sal I Bam HI ECO RI
ЗА,ЗБ, 4G, 4H
4A,4B, 6
4G,4D
4G,4D
4E,4F 5A, 5B, 5G
SU813345603A 1980-08-26 1981-10-23 Способ конструировани рекомбинантной плазмидной ДНК, кодирующей бычий гормон роста SU1471949A3 (ru)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US18134880A 1980-08-26 1980-08-26

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1471949A3 true SU1471949A3 (ru) 1989-04-07

Family

ID=22663908

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU813345603A SU1471949A3 (ru) 1980-08-26 1981-10-23 Способ конструировани рекомбинантной плазмидной ДНК, кодирующей бычий гормон роста

Country Status (24)

Country Link
EP (1) EP0047600B1 (ru)
JP (2) JP2534221B2 (ru)
KR (1) KR830007822A (ru)
AT (1) ATE72833T1 (ru)
AU (1) AU544453B2 (ru)
CA (1) CA1225948A (ru)
CZ (1) CZ280596B6 (ru)
DD (4) DD212403A5 (ru)
DE (1) DE3177273D1 (ru)
DK (1) DK372881A (ru)
ES (2) ES504968A0 (ru)
FI (1) FI812614L (ru)
GR (1) GR74350B (ru)
HU (1) HU195535B (ru)
IE (1) IE52755B1 (ru)
IL (1) IL63628A (ru)
NZ (1) NZ198050A (ru)
PH (2) PH21216A (ru)
PL (1) PL232797A1 (ru)
PT (1) PT73569B (ru)
RO (1) RO105533B1 (ru)
SU (1) SU1471949A3 (ru)
YU (1) YU44962B (ru)
ZA (1) ZA815696B (ru)

Families Citing this family (34)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4443539A (en) * 1980-02-05 1984-04-17 The Upjohn Company Process for preparing bovine growth hormone
JPS58996A (ja) * 1981-06-01 1983-01-06 ザ・ボ−ド・オブ・トラステイ−ズ・ミシガンステ−トユニバ−シテイ− 細菌中での牛成長ホルモン遺伝子のクロ−ン化
US5254463A (en) * 1981-09-18 1993-10-19 Genentech, Inc. Method for expression of bovine growth hormone
EP0278121B1 (en) * 1981-09-18 1995-09-06 Genentech, Inc. Microbially produced bovine growth hormone (BGH) and its use
NZ201918A (en) * 1981-09-18 1987-04-30 Genentech Inc N-terminal methionyl analogues of bovine growth hormone
GB2121054B (en) * 1982-05-25 1986-02-26 Lilly Co Eli Cloning vectors for expression of exogenous protein
CA1224432A (en) * 1982-08-17 1987-07-21 Gary N. Buell Dna sequences, recombinant dna molecules and processes for producing bovine growth hormone-like polypeptides in high yield
WO1984001150A1 (en) * 1982-09-16 1984-03-29 Amgen Avian growth hormones
CA1341012C (en) 1982-09-27 2000-06-06 Biogen, Inc. Dna sequences, recombinant dna molecules and processes for producing swine growth hormone-like polypeptides
AU2092983A (en) * 1982-11-08 1984-05-17 Genentech Inc. Porcine growth hormone produced by recombinant dna technology
ZA837173B (en) * 1982-11-08 1984-05-30 Univ Case Western Reserve Genomic bovine growth hormone
EP0111814A3 (en) * 1982-12-16 1985-08-14 Mgi Pharma, Inc. The cloning and expression of nucleotide sequences encoding bovine growth hormone
DE3247922A1 (de) * 1982-12-24 1984-06-28 Boehringer Ingelheim International GmbH, 6507 Ingelheim Dna-sequenzen, deren herstellung, diese sequenzen enthaltende plasmide und deren verwendung zur synthese eukaryotischer genprodukte in prokaryoten
AU2704084A (en) * 1983-04-19 1984-10-25 Genex Corp. Cloned ovine growth hormone genes
US4859600A (en) * 1983-04-25 1989-08-22 Genentech, Inc. Recombinant procaryotic cell containing correctly processed human growth hormone
US4755465A (en) * 1983-04-25 1988-07-05 Genentech, Inc. Secretion of correctly processed human growth hormone in E. coli and Pseudomonas
BG49718A3 (en) * 1983-07-15 1992-01-15 Bio- Technology General Corp Method for preparing of polypeptid with superoxiddismutasne activitty
US5198361A (en) * 1983-07-15 1993-03-30 Bio-Technology General Corp. Plasmids for production of met-asp-gln bovine growth hormone, hosts containing the plasmids, products manufactured thereby and related methods
US4521409A (en) * 1983-10-03 1985-06-04 Cornell Research Foundation, Inc. Use of growth hormone to enhance ruminant mammary development
US4935370A (en) * 1983-12-23 1990-06-19 Pfizer Inc. Expression plasmids for improved production of heterologous protein in bacteria
DE3484926D1 (de) * 1983-12-23 1991-09-19 Pfizer Expressionsplasmide fuer die herstellung eines heterologen proteins in bakterien.
US5489529A (en) * 1984-07-19 1996-02-06 De Boer; Herman A. DNA for expression of bovine growth hormone
US4861868A (en) 1985-02-22 1989-08-29 Monsanto Company Production of proteins in procaryotes
US5037806A (en) * 1985-02-22 1991-08-06 Monsanto Company Biologically active method using somatotropins
EP0229110B1 (en) 1985-06-26 1992-05-20 The Upjohn Company Solubilization and oxidation of somatotropin from transformed microorganisms
US4786501A (en) * 1985-07-15 1988-11-22 International Minerals & Chemical Corp. Cylindrical implants for the controlled release of growth hormones
US5631227A (en) * 1985-09-18 1997-05-20 The Upjohn Company Somatotropin analogs
WO1987001708A2 (en) * 1985-09-18 1987-03-26 The Upjohn Company Enhanced bioactivity of mammalian somatotropin through selective deamidation
EP0263206B1 (en) * 1986-10-08 1990-12-12 The Upjohn Company Enhanced bioactivity of mammalian somatotropin through selective deamidation
US5215896A (en) * 1987-03-20 1993-06-01 Creative Biomolecules, Inc. Leader sequences for the production of recombinant proteins
US5013653A (en) 1987-03-20 1991-05-07 Creative Biomolecules, Inc. Product and process for introduction of a hinge region into a fusion protein to facilitate cleavage
US5268284A (en) * 1988-03-11 1993-12-07 The Upjohn Company Ribosome binding site
JP2787729B2 (ja) * 1990-08-02 1998-08-20 株式会社ニッポンジーン 組換え型ミンク成長ホルモン遺伝子、組換え型ミンクプレ成長ホルモン遺伝子、ミンク成長ホルモン又はミンクプレ成長ホルモン形質転換プラスミド、及び、ミンク成長ホルモン又はミンクプレ成長ホルモン形質転換大腸菌
WO2002051238A2 (en) 2000-12-26 2002-07-04 Monsanto Technology Llc Recombinant dna vectors for expression of somatotropins

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
YU257278A (en) * 1977-11-08 1984-02-29 Genentech Inc Process for obtaining a recombinat clone carrier
FI792481A (fi) * 1978-08-11 1980-02-12 Univ California Syntes av enkaroytiskt protein genom anvaendning av mikro-organismer
ZA802992B (en) * 1979-06-01 1981-10-28 Univ California Human pre-growth hormone
IL59690A (en) * 1980-03-24 1983-11-30 Yeda Res & Dev Production of bovine growth hormone by microorganisms and modified microorganisms adapted to produce it

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Мероу Дж.,Уозит Дк.,Эфетратиадис А. Исследование фибриона шелка.- В кн.: Рекомбинантные молекулы, значение дл науки и практики. Перченод с; ,англ. - M.tj Наука, 1977, К 7, с. 476- 484.. 1 Изобретение относитс к г,еннай инженерии и касаетс способа получени рекомбинантной плазмидной ДНК, кодирующей бычий гормон роста. Рекомбинантна плазмидна ДНК, кодирующа гормон роста быка, получена Путем вьщелеии мРНК , из гипофиз арнык желез быков с последуюпцвч получением кДНК и клонированием полученной кДНК в pBR 3212 Пример 1 Гипофизарии коров извлекают вскоре после умерщвлени коров и сразу же замораживают в жидком азоте. Рибонуклеиновую кислоту (РНК) приготавливают путем гомогенизировани гипофизарйев в растворе тиоцианата гуанидина. Затем РНК экстрагируют фенолом и осаждают в этаноле. Полиаденилированную РНК очищают, использу метод адсорбционной *

Also Published As

Publication number Publication date
ES514526A0 (es) 1983-04-16
ZA815696B (en) 1982-08-25
EP0047600B1 (en) 1992-02-26
IE811822L (en) 1982-02-26
PL232797A1 (en) 1983-07-18
PH22847A (en) 1989-01-19
EP0047600A3 (en) 1982-10-20
DD212403A5 (de) 1984-08-15
IL63628A0 (en) 1981-11-30
FI812614L (fi) 1982-02-27
CA1225948A (en) 1987-08-25
DD211581A5 (de) 1984-07-18
IE52755B1 (en) 1988-02-17
JPH09135691A (ja) 1997-05-27
IL63628A (en) 1991-06-10
DE3177273D1 (de) 1992-04-02
GR74350B (ru) 1984-06-26
PT73569A (en) 1981-09-01
AU7449681A (en) 1982-03-04
PT73569B (en) 1982-11-09
DD212267A5 (de) 1984-08-08
RO105533B1 (ro) 1995-10-01
JP2534221B2 (ja) 1996-09-11
HU195535B (en) 1988-05-30
DD204711A5 (de) 1983-12-07
YU206281A (en) 1984-08-31
CZ280596B6 (cs) 1996-03-13
ES8405072A1 (es) 1984-05-16
YU44962B (en) 1991-06-30
ES504968A0 (es) 1984-05-16
ES8305828A1 (es) 1983-04-16
DK372881A (da) 1982-02-27
PH21216A (en) 1987-08-21
JPS57171999A (en) 1982-10-22
ATE72833T1 (de) 1992-03-15
EP0047600A2 (en) 1982-03-17
JP2763024B2 (ja) 1998-06-11
CZ636081A3 (en) 1995-02-15
AU544453B2 (en) 1985-05-30
NZ198050A (en) 1984-12-14
KR830007822A (ko) 1983-11-07

Similar Documents

Publication Publication Date Title
SU1471949A3 (ru) Способ конструировани рекомбинантной плазмидной ДНК, кодирующей бычий гормон роста
CA1340522C (en) Fusion proteins containing neighbouring histidines for improved purification
Bedouelle et al. Mutations which alter the function of the signal sequence of the maltose binding protein of Escherichia coli
FORTKAMP et al. Cloning and expression in Escherichia coli of a synthetic DNA for hirudin, the blood coagulation inhibitor in the leech
SU1764515A3 (ru) Способ получени лейкоцитарного интерферона
Franklin et al. The N protein of bacteriophage lambda, defined by its DNA sequence, is highly basic
Filutowicz et al. Autorepressor properties of the π-initiation protein encoded by plasmid R6K
EP0316018A2 (en) Modification of DNA sequences
JPH0432838B2 (ru)
JPH0648987B2 (ja) 部分的合成遺伝子の発現によるペプチドの製法
IE54267B1 (en) Stabilization and selction of host cells containing recombinant dna which express a functional polypeptide
Baty et al. Extracellular release of colicin A is non‐specific.
JP2000060577A (ja) 成熟ヒトインタ―ロイキン1タンパク質
US5087564A (en) Release of recombinant peptides from polypeptides using V8 endopeptidase
AU595805B2 (en) Releasing desired peptides from fusion polypeptides using endopeptidases
WO1989003886A1 (en) Expression systems for preparation of polypeptides in prokaryotic cells
Zhang et al. Escherichia coli RNase D: sequencing of the rnd structural gene and purification of the overexpressed protein
US4675297A (en) Genes encoding bovine prolactin
EP0046669B1 (en) Somatostatin or somatostatin precursors
IE53607B1 (en) Expression vectors
US6194200B1 (en) Expression systems for preparation of polypeptides in prokaryotic cells
US6692941B1 (en) Bovine growth hormone
EP0163603B1 (en) A human t-cell growth factor
EP0113372A1 (en) Vector
EP0314184B1 (en) Expression plasmids