SU1406160A1 - Способ получени эндонуклеазы рестрикции Fок1 из FLаVовастеRIUм океаNокоIтеS - Google Patents

Способ получени эндонуклеазы рестрикции Fок1 из FLаVовастеRIUм океаNокоIтеS Download PDF

Info

Publication number
SU1406160A1
SU1406160A1 SU864097789A SU4097789A SU1406160A1 SU 1406160 A1 SU1406160 A1 SU 1406160A1 SU 864097789 A SU864097789 A SU 864097789A SU 4097789 A SU4097789 A SU 4097789A SU 1406160 A1 SU1406160 A1 SU 1406160A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
enzyme
cultivation
purification
cells
peptone
Prior art date
Application number
SU864097789A
Other languages
English (en)
Inventor
Сергей Харитонович Дегтярев
Павел Александрович Белавин
Владимир Евгеньевич Репин
Эрнст Георгиевич Малыгин
Original Assignee
Всесоюзный Научно-Исследовательский Институт Молекулярной Биологии
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Всесоюзный Научно-Исследовательский Институт Молекулярной Биологии filed Critical Всесоюзный Научно-Исследовательский Институт Молекулярной Биологии
Priority to SU864097789A priority Critical patent/SU1406160A1/ru
Application granted granted Critical
Publication of SU1406160A1 publication Critical patent/SU1406160A1/ru

Links

Landscapes

  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Abstract

Изобретение относитс  к микробиологии , в частности к способу получени  рестриктаз. Целью изобретени   вл етс  повьшение выхода рект- риктазы Fok I. Дл  этого штамм-продуцент Flavobacterium okeanokoites В-2835 культивируют на жидкой питательной среде, содержащей, г/л: пептон 9,0-11,0; дрожжевой экстракт 4,0-6,0; NaCl 25,0-30,0; КС1 0,5- 1,0; ,,20 2,0-3,0; MgS04 7H20 6,0-7,5; глюкоза 0,5-1,5, до достижени  стационарной фазы роста с последующим вьщелением и очисткой рест- риктазы, включающей 3 хроматографи- ческие стадии. Способ позвол ет увеличить выход фермента в 8-10 раз.. Выход фермента 2000 ед. на 1 г биомассы , активность препарата 3000 ед./мл. 1 табл. с . (Л 4ik О Од а о

Description

Изобретение относитс  к микробиологии и касаетс  способа получени  ферментов нуклеинового обмена, в частности рестриктаз.
Целью изобретени   вл етс  повышение выхода фермента.
Способ заключаетс  в том, что штамм F.okeanokoites выращивают на жидкой среде следующего состава,г/л:
Пептон 9,0 - 11,0
Дрожжевой
экстракт 4,0 - 6,0
NaCl 25,0 - 30,0
КС10,5 - 1,0
CaCl2-6 Н,20 . 2,0 - 3,0 MgS04-7 6,0 - 7,5
Глюкоза 0,5-1,5
р-Н7,2,
культивирование провод т при 27-29°С до стационарной фазы роста, что соответствует оптической плотности 2,2- 2,6 о.е. при нМ. Клетки разрушают ультразвуком и целевой продукт получают последовательной хроматогра фической очисткой на фосфоцеллюлозе Р-11, бензил-ДЕАЕ-целлюло36 и фосфоцеллюлозе Е-11 .
Культивирование бактерий на среде имеющей сбалансированный состав со- лей, ,и при оптимальной температуре 27-29 С приводит не к увеличению выхода биомассы, а к ее обогащению именно ферментом рестрикции и повышению выхода целевого продукта в 8-10
раз по сравнению с известным способом .
Выбор температуры культивировани  обусловлен следующими эксперименталь ными фактами: изменение на 4-5°С в любую сторону от оптимального интервала (27-29 с) уменьшает скорость роста F.okeanokoites в 2 раза и не позвол ет получить более высокий вы- ход фермента.
Результаты экспериментов по подбору компонентов питательной среды дл  культивировани  F.okeanokoites представлены в таблице.
Наиболее оптимальной и сбалансированной по составу солей  вл етс  среда 15.
Выход фермента в логарифмической фазе роста повышаетс  в 1,1-1,2 раза по сравнению со стационарной фазой, однако полученный препарат фермента не стабилен при хранении (50% инактиваци  за 1 н еделю) .
о
5
0 5
O
5
„ с
0
5
Установлено, что дл  получени  стабильного при хранении препарата фермента сбор урожа  бактерий наиболее технологично производить на стадии стационарной фазы роста.
Пример. Получение рестрикта- зы Fok I.
Культивирование F.okeanokoites.
При культивировании клеток используют химреактивы отечественного производства без дополнительной очистки.
Дл  выращивани  бактерий готов т растворы пита-т ельной среды.
Раствор 1: Пептон 10 г Дрожжевой
экстракт 5 г NaCl 27 г КС10,7 г
Вода 900 мл Раствор кип т т 5 мин, охлаждают до комнатной температуры, фильтруют через фильтровальную бумагу, довод т рН до 7,2 с помощью 5 н. раствора NaOH.
Раствор 2: MgS04-7H,0 7 г
Вода 50 мл
Раствор 3: 2,2 г Вода 40 мл
Раствор 4: Глюкоза 1 г
Вода 10 мл
Все растворы стерилизуют в автоклаве при 40 мин, затем сливают в стерильных услови х непосредственно перед приготовлением питательной среды.
Клетки бактерий подращивают на твердой питательной среде при 28 С в течение суток, затем готов т иноку- л т дл  засева ферментера. Объем ино- кул та 1/10 часть от объема ферментера . Культивирование провод т в ферментере (объем 20 л) при 28 С и аэрации 20 л/ч. Величина рН в процессе роста поддерживаетс  автоматически на уровне 7,2 добавлением 0,2 н. NaOH.
Клетки выращивают до стационарной .фазы (оптическа  плотность 2,5 при нм). Клетки собирают центрифугированием при 5000 g в течение 10 мин. Выход биомассы 3,5 г/л.
Выделение и очистка рестриктазы.
Все процедуры по выделению и очистке фермента провод т при О - 4°С. 4 г клеток суспендируют в 20 мл 0,01М трис-НС1 буфера, рН 7,5, содержащего 0,1% тритона Х-100, разрушают на ультразвуковом дезинтеграторе 4 раза по 40 с, клеточный дебрис отдел ют
центрифугированием при 5000xg в течение 20 мин. Полученный грубый экстракт нанос т на колонку с фосфоцеллю- лозой Р-11 размером 1, см, уравновешенную 0,02 М трис-HGl буфером, рН 7,5, содержащим 1 мМ 2-меркаптоэта- нола, 0,5 мМ ЭДТА и 5% глицерина (буфер А). Несорбированный на колонке материал элюируют 50 мл буфера А. Фермент эхооируют 20 мл буфера А, содержащего 1 М NaCl и диализуют лротив буфера Б (0,02 М калий фосфатный буфер, рН 7,5, содержащий 1 мМ 2-мер- каптоэтанола, 0,5 мМ ЭДТА и 5% глице- рина).
После диализа раствор фермента осветл ют центрифугированием при в течение 5 мин и супернатант нанос т на колонку размером 0, см с бензил-ДЕАЕ-целлюлозой.
Несорбированный материал, содержащий фермент, собирают и нанос т на колонку размером 0,9 х2 см с фосфо- целлюлозой Р-11, уравновешенной буфе- ром Б, .Фермент элюируют 40 мл линейного градиента NaCl (0,1 М) в буфере Б. Фракции, содержащие растриктазу (элюируемые при 0,4 - 0,45 М NaCl), собирают и диализуют против буфера Б содержащего 50% глицерина. Выход продукта составл ет 2000 ед./г биомассы . Полученный препарат имеет активность 3000 ед./мл. Активность фермента определ ют в реакционной смеси котора  в 20 мкл содержит 1 мкг ДНК фага Л, 0,02 М трис-НС1 буфера, рН 7,5, 0,01 М MgCl, 0,02 М КС1, 1 мМ 2-меркаптоэтанола.
Реакцию провод т при 37 С в течение 1 ч, затем пробы подвергают элекрофорезу в 1%-ном агарозном геле. За единицу активности принимают минимальное количество фермента, необходимое дл  полного расщеплени  1 мкг ДНК фаза А при данных услови х реакции .
Отсутствие неспецифических эндо- нуклеаз и фосфотаз подтверждаетс 
высокоэффективным лигированием фрагментов ДНК фага Д, полученных в результате гидролиза полученным препаратом фермента. Правильность лйгиро- вани  подтверждаетс  повторным гидролизом рестриктазой Fok I с образованием аналогичных фрагментов.

Claims (1)

  1. Формула изобретени 
    Способ получени  эндонуклеазы рестрикции Fok I из Flavobacterium okeanokoites, включаюш11Й культивирование клеток в жидкой питательной среде, содержащей в качестве источника азота белковый гидролизат,-в качестве источника витаминов - дрожжевой экстракт, хлористый натрий, глюкозу и воду, разрушение клеток ультразвуком, хроматографию полученного экстракта на фосфоцеллюлозе и очистку целевого продукта ионообменной хроматографией, отличающийс  тем, что, с целью noBbmie- ни  выхода фермента, в качестве продуцента используют Flavobacterium okeanokoites ВКПМ-2835, в среду дл  культивировани  дополнительно ввод т хлористый кальций, хлористый калий и сульфат магни , в качестве белкового гидролизата используют пептон при
    следующем соотношении комопнентов,
    /
    г/л:
    Пептон
    Дрожжевой экстракт Хлористый натрий Хлористый калий Хлористый кальций Сульфат магни  Глюкоза Вода
    Остальное
    45
    культивирование ведут при 27-29 С до достижени  стационарной фазы роста, а при очистке целевого продукта ионообменную хроматографию провод т на бензил-ДЭАЭ-целлюлоза с последующей рехроматографией на фосфоцеллюлозе.
SU864097789A 1986-05-15 1986-05-15 Способ получени эндонуклеазы рестрикции Fок1 из FLаVовастеRIUм океаNокоIтеS SU1406160A1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU864097789A SU1406160A1 (ru) 1986-05-15 1986-05-15 Способ получени эндонуклеазы рестрикции Fок1 из FLаVовастеRIUм океаNокоIтеS

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU864097789A SU1406160A1 (ru) 1986-05-15 1986-05-15 Способ получени эндонуклеазы рестрикции Fок1 из FLаVовастеRIUм океаNокоIтеS

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1406160A1 true SU1406160A1 (ru) 1988-06-30

Family

ID=21249085

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU864097789A SU1406160A1 (ru) 1986-05-15 1986-05-15 Способ получени эндонуклеазы рестрикции Fок1 из FLаVовастеRIUм океаNокоIтеS

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1406160A1 (ru)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Holdeman L.V., Gate Е.Р. Мог- ore W.E.C. Anaerobe laboratory manual 4- eg. Virginia Polytechnic Institute and State University, Black- burg, 1977. Sugisaki H., Kanazawa S. New restriction endonucleases from Flavobac- terium okeanokoites (Fok I) and Mic- rococus luteus (Mlu I), Gene, 16, 73- 78, 1981. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JPS6033474B2 (ja) 新規なヒアルロニダ−ゼbmp−8231およびその製造法
JPS59156282A (ja) 新規耐熱性リパーゼおよびその製造法
JP3523285B2 (ja) 糖分解酵素の製造法
JPS6013668B2 (ja) グルタチオン・パ−オキシダ−ゼの製造法
SU1406160A1 (ru) Способ получени эндонуклеазы рестрикции Fок1 из FLаVовастеRIUм океаNокоIтеS
Mahesh et al. Optimization for the production of extracellular alkaline phosphatase from Proteus mirabilis
JPH0480675B2 (ru)
JPS6243671B2 (ru)
JP3040976B2 (ja) トレハロースを含有する糖化液の製造方法
JP3014950B2 (ja) トレハロースの製造方法
US4463091A (en) Method of producing amylase inhibitor AI-B
JPH0244510B2 (ru)
JPH0998779A (ja) トレハロース合成酵素、その製法及びそれを用いたトレハロースの製造法
JPH03224485A (ja) フルクトース‐1,6‐ビスホスフアート‐アルドラーゼ、その製造方法及びその使用方法
RU2077577C1 (ru) Штамм бактерии delcya marina - продуцент щелочной фосфатазы и способ получения щелочной фосфатазы
RU2032743C1 (ru) Способ получения дрожжевой алкогольоксидазы
JPS6243666B2 (ru)
JPH0515387A (ja) 細菌によるアルギン酸の分解法
JPS6326991B2 (ru)
JPH06189779A (ja) トレハロースの製造法
JPS62275694A (ja) ジフルクト−ス、ジアンヒドリド▲iii▼の製造法
SU1440919A1 (ru) Штамм бактерий кURтнIа ZopFII-продуцент рестрикционной эндонуклеазы кZо 91
JPS6349097A (ja) イプシロン−ポリ−l−リシンの製造法
JPS5843075B2 (ja) α−D−ガラクトシダ−ゼの製造方法
US3810822A (en) Process for obtaining a phosphodiesterase from dictyostelium discoideum