RU2725733C1 - Транспортная жидкая питательная среда для сохранения жизнеспособности бруцеллезного микроба - Google Patents

Транспортная жидкая питательная среда для сохранения жизнеспособности бруцеллезного микроба Download PDF

Info

Publication number
RU2725733C1
RU2725733C1 RU2019138098A RU2019138098A RU2725733C1 RU 2725733 C1 RU2725733 C1 RU 2725733C1 RU 2019138098 A RU2019138098 A RU 2019138098A RU 2019138098 A RU2019138098 A RU 2019138098A RU 2725733 C1 RU2725733 C1 RU 2725733C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
viability
nutrient medium
brucella
sodium
microbe
Prior art date
Application number
RU2019138098A
Other languages
English (en)
Inventor
Людмила Семеновна Катунина
Александр Николаевич Куличенко
Анна Алексеевна Курилова
Юрий Сергеевич Ковтун
Дмитрий Григорьевич Пономаренко
Диана Владимировна Русанова
Анна Андреевна Хачатурова
Виктория Геннадьевна Сафонникова
Екатерина Игоревна Василенко
Елена Борисовна Жилченко
Наталия Сергеевна Сердюк
Ольга Анатольевна Коняева
Ольга Николаевна Белозёрова
Нина Вадимовна Жаринова
Original Assignee
Федеральное казённое учреждение здравоохранения "Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное казённое учреждение здравоохранения "Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека" filed Critical Федеральное казённое учреждение здравоохранения "Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека"
Priority to RU2019138098A priority Critical patent/RU2725733C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2725733C1 publication Critical patent/RU2725733C1/ru

Links

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20—Bacteria; Culture media therefor
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/02—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving viable microorganisms
    • C12Q1/04—Determining presence or kind of microorganism; Use of selective media for testing antibiotics or bacteriocides; Compositions containing a chemical indicator therefor

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Изобретение относится к медицинской микробиологии, в частности к способам получения питательных сред, обеспечивающих оптимальные условия для жизнедеятельности бруцелл при их транспортировке. Транспортная питательная среда для сохранения жизнеспособности бруцелл содержит пептон ферментативный, дрожжевой экстракт, натрий хлористый, натрий лимоннокислый 3 замешенный 5,5 водный, стимулятор роста гемофильных микроорганизмов, уголь активированный, глицерин, глюкозу, натрия метабисульфит и дистиллированную воду при заданном соотношении ингредиентов. Изобретение позволяет сохранить жизнеспособность бруцелл до лаборатории. 3 пр.

Description

Изобретение относится к медицинской микробиологии, в частности к получению питательных сред, обеспечивающих оптимальные условия для жизнедеятельности бруцеллезного микроба при их транспортировке. Изобретение целесообразно использовать для диагностических исследований на бруцеллез клинического материала от людей.
Для диагностики бруцеллеза проводят сбор биоматериала от больного, подозрительного на данное заболевание, путем забора из вены 5 мл крови и посева ее на жидкую питательную среду. В таком виде биоматериал отправляют для дальнейшего исследования в специализированную бактериологическую лабораторию (МУК 4.2.3010-12 Порядок организации и проведения лабораторной диагностики бруцеллеза для лабораторий территориального, регионального и федерального уровней, стр. 16).
Известна транспортная жидкая питательная среда для сбора, культивирования и транспортировки крови больных, подозреваемых на заболевание бруцеллезом, содержащая, г/л: гидролизат говяжьего мяса 170,0; натрий хлористый 5,0; глицерин 20,0; глюкозу 10,0; цитрат натрия 5,0; САГ - 10,6; 20%-ную гидроокись натрия 0,0001-0,0003; дистиллированную воду до 1 л (патент РФ №2247775. Опубл. 10.03.2005 г. Бюл. №7).
Недостатком данной питательной среды является невозможность приобретения стимулятора роста САГ-1 в связи с закрытием института биоорганической химии АН УССР (Украина).
Наиболее близкой к заявляемому изобретению является питательная среда (жидкая) для культивирования бруцелл, содержащая, г/л: гидролизат говяжьего мяса 170,0; натрий хлористый 5,0; глицерин 20,0; глюкозу 10,0; цитрат натрия 5,0; липоевую кислоту 0,5; дистиллированную воду до 1 л (патент РФ №2238973. Опубл. 27.10.2004 г. Бюл. №30).
Недостатком данной среды является невозможность приобретения для изготовления среды стимулятора роста бруцелл, липоевой кислоты, в малом количестве, а также ее дороговизна.
Целью предполагаемого изобретения является получение транспортной жидкой питательной среды для сохранения жизнеспособности бруцеллезного микроба от момента посева крови больного, подозреваемого на бруцеллез, до доставки проб в специализированную лабораторию.
Сущность предполагаемого изобретения заключается в том, что посев крови от больного, подозреваемого на бруцеллез, осуществляют в транспортную жидкую питательную среду для сохранения жизнеспособности бруцеллезного микроба, разлитую и завальцованную в пенициллиновые флаконы (объемом 15 мл) по 5 мл, стерильную, которая сохраняет жизнеспособность бруцеллезного микроба при транспортировке на любые расстояния.
Достигаемый технический результат заключается в том, что основой предлагаемой транспортной жидкой питательной среды для сохранения жизнеспособности бруцеллезного микроба является: пептон ферментативный, дрожжевой экстракт, уголь активированный, также основа включает натрий хлористый, глицерин, глюкозу, натрий лимоннокислый, дистиллированную воду до 1 л, с добавлением в среду стимулирующих добавок - стимулятора роста гемофильных микроорганизмов и натрия метабисульфита, при следующем соотношении ингредиентов:
Пептон ферментативный 20,0 г
Дрожжевой экстракт 10,0 г
Натрий хлористый 5,0 г
Натрий лимоннокислый 3-зам. 5,5 водный 5,0 г
Стимулятор роста гемофильных
микроорганизмов 10,0 г
Уголь активированный 20,0 г
Глицерин 20 мл
Глюкоза 10,0 г
Натрия метабисульфит 0,3 г
Дистиллированная вода до 1 л.
Пептон сухой ферментативный для бактериологических целей - ГОСТ 13805-76. Производитель ООО «НПО «Порт-Петровск». Дата изготовления 05.2018 г. Годен до 05.2021 года. Пептон представляет собой смесь разнообразных частиц распада белка, не свертывающихся при нагревании (пептоны, пептиды, аминокислоты и т.д.). Пептон ферментативный в своем составе содержит 16 аминокислот, мг %: аспарагиновая кислота 0,40±0,03; треонин 0,30±0,01; серии 0,40±0,03; глутаминовая кислота 0,50±0,03; глицин 0,50±0,01; аланин 1,0±0,02; валин 0,80±0,02; метионин 0,40±0,02; изолейцин 0,70±0,01; лейцин 2,40±0,06; тирозин 0,40±0,01; фенилаланин 1,30±0,01; лизин 1,30±0,05; гистидин 0,20±0,02; аргинин 1,70±0,09; триптофан 0,06±0,01 (Шепелин А.П., Дятлов И.А. Питательные среды для энтеробактерий. Оболенск, 2017. 232 с. С. 43).
Дрожжевой экстракт - произведен во Франции, партия № AD 17A04592. Дата изготовления 10.2017 г. Срок годности 10.2020 г.
Дрожжевой экстракт используется в качестве полноценного и дешевого источника факторов роста микроорганизмов, что повышает ростовые свойства предлагаемой питательной среды (Методические рекомендации по изготовлению и использованию питательных сред и растворов для микробиологических целей, культивирования клеток и вирусов. - М., 1986). По химическому составу дрожжи представляют высокоценный питательный субстрат, весьма близкий к мясу, содержащий до 53% белка. Дрожжевой экстракт используют как источник витамина группы В, азотистых оснований. Богатство дрожжей белками и витаминами позволяет получать из них высококачественные питательные среды («Питательные среды в медицинской микробиологии», Козлов Ю.А., М., Медгиз. 1950 г., с. 101-102).
Натрий хлористый - хч, ГОСТ 4233-77, партия 24. Произведен в г. Барнаул. Дата изготовления 06.2017 г. Срок годности 3 года. Бактерии нуждаются в минимальном количестве солей. Будучи растворены в питательной среде и находясь в состоянии электролитической диссоциации, ионизируемые минеральные соединения являются одновременно катализаторами различных химических процессов, происходящих в микробной клетке. Натрий хлористый необходим для поддержания изотоничности среды и окислительно-восстановительного потенциала.
Глюкоза кристаллическая - ЧДА, партия 20140327, ООО «МСД Торговая компания». Срок годности 3 года. С внесением в питательную среду глюкозы в концентрации 1% улучшаются ее ростовые свойства.
Глицерин - ГОСТ 6259-75, партия 21.2015. Дата выпуска 04.2018. Срок годности 3 года. С внесением в питательную среду глицерина в концентрации 2% улучшаются ее ростовые свойства.
Натрий лимоннокислый 3-зам. 5,5 вод. ГОСТ 22280-76. Партия №6. Дата изготовления 10.2018 г. Срок годности 10.2019 год. Применяется широко в клинической практике для сохранения жизнеспособности микроорганизмов в период от момента взятия биоматериала до посева. Основная цель использования - сохранить жизнеспособность возбудителя и предотвратить размножение сопутствующей микрофлоры в период транспортировки образцов. «Питательные среды для медицинской и санитарной микробиологии» М.С. Поляк, В.И. Сухаревич, М.Э. Сухаревич. Санкт-Петербург. Элби-СПб. 2008. С. 22.
Стимулятор роста гемофильных микроорганизмов ТУ 9385-016-78095326-2007. ФБУН Государственный научный центр прикладной микробиологии и биотехнологии. Г. Оболенск. Московская область.
Уголь активный древесный порошкообразный, марки ОУ-А. Тонкодисперсный порошок, черного цвета. Без посторонних включений, соответствует ГОСТ 4453-74. Абсорбирует на себя продукты метаболизма микробов.
Натрия метабисульфит, по данным авторов Zo Bell С.Е. и Meyer K.F., 1932; Lankford et al., 1952; Lankford et al.,1956; Rode et al., 1951; Гудзовский А.Г., 1982, полностью обеспечивает потребность бруцеллезного микроба в сере. Метабисульфит натрия ГОСТ 11683-76 в средах переходит в гидросульфит натрия, при нагревании происходит термическое разложение с выделением двуокиси серы (SO2), что способствует нейтрализации продуктов жизнедеятельности культивируемых микроорганизмов.
Дистиллированная вода - ГОСТ 6709-72, отвечает всем санитарно-гигиеническим требованиям. Внешний вид - прозрачная жидкость, хлориды, мг/дм3 нет, нитраты, мг/дм3 нет. дельная электропроводимость при 20°С, См/м - 0,38, рН - 6,5. Вода составляет 80-90% от клеточной массы микроорганизмов и играет важнейшую роль в их физиологических функциях, а также входит в состав структурных элементов клетки, служит средой для биохимических реакций, источником кислорода в процессах метаболизма, непосредственно участвует в метаболических реакциях, например, в реакциях гидролиза.
Кровь человеческая донорская Ph+ 0(1). Тесты на ВИЧ, гепатиты В и С, сифилис отрицательны. Дата донации 27.08.2018 г.
Пенициллиновые флаконы ФО-1-10 по ТУ 64-2-1087, вместимостью 15 мл, марка НС-2 или МТО. Флаконы герметично закрывают резиновыми пробками К-2 по ТУ 38.006108-95, или типа ТУ 38.106618-95, завальцовывают алюминиевыми колпачками по ТУ 9467-003-05749470-94.
Шприц LUER. Апирогенно. 5Б/5m1. Сделано в России. Шприц инъекционный однократного применения. Срок годности 10.2019 г. Шприц для введения крови в пенициллиновые флаконы.
Шприц для инсулина 1 А/1 m1. Шприц инъекционный однократного применения. Срок годности 01.2022 г. Шприц для забора зараженного материала из пенициллиновых флаконов и дальнейшего высева на пластинки питательного агара.
Стандарт мутности оптический, эквивалентный 10 международным единицам (10 ME) (ОСО мутности 42-28-85-2018), дата изготовления 01.06.2019 г., годен до 01.06.2020 г. (производство ФГБУ «НЦЭСМП» Минздрава России, Россия).
Предлагаемая среда создает оптимальные условия для сохранения жизнеспособности и роста бруцелл от момента посева крови больного, подозрительного на бруцеллез, до доставки проб в специализированную лабораторию. Введение в состав среды стимулирующих добавок -стимулятора роста гемофильных микроорганизмов, метабисульфита натрия, и сочетанное применение вышеописанных ингредиентов в целом обеспечивает существенное повышение ростовых свойств транспортной питательной среды жидкой в отношении бруцелл.
Способ получения транспортной жидкой питательной среды для сохранения жизнеспособности и роста бруцелл заключается в следующем: в эмалированную кастрюлю вносят пептон ферментативный 20,0 г; дрожжевой экстракт 10,0 г; натрий хлористый 5,0 г; натрий лимоннокислый 3 зам. 5,5 водный 5,0 г; стимулятор роста гемофильных микроорганизмов 10,0 г; уголь активированный марки ОУА 20,0 г; дистиллированную воду до 1 л, затем устанавливают рН 4,5 раствором соляной кислоты в соотношении 1:1, кипятят в течение 5 мин до растворения всех составляющих, затем фильтруют через ткань Бельтинг и 8 слоев фильтровальной бумаги, в фильтрате устанавливают рН (7,6±0,1) 20% раствором натрия гидроокиси, добавляют глицерин 20,0 мл; глюкозу 10,0 г; натрий метабисульфит 0,3 г. Среду разливают в стерильные пенициллиновые флаконы объемом 15 мл по (5,0±0,1) мл, закупоривают стерильными резиновыми пробками, накрывают алюминиевыми колпачками, вальцуют, стерилизуют при 1 атм 20 мин. Готовую транспортную жидкую питательную среду используют для сохранения жизнеспособности и роста возбудителя бруцеллеза от момента посева в нее крови больного, подозрительного на бруцеллез, и до доставки проб в специализированную лабораторию для дальнейшего исследования.
Для подтверждения высоких ростовых свойств заявляемой питательной среды в соответствии с методическими указаниями МУ 3.3.2.2124-06 «Контроль диагностических питательных сред по биологическим показателям для возбудителей чумы, холеры, сибирской язвы, туляремии, бруцеллеза, легионеллеза», Москва, 2007 г., проводили ее контроль с использованием среды сравнения и донорской крови, искусственно контаминированной возбудителем бруцеллеза. В качестве испытуемых культур брали тест-штаммы бруцелл Brucella melitensis 16 М; В. abortus 19 ВА; В. suis 1330 и вирулентные штаммы В. melitensis 565; В. abortus 544. Испытуемые культуры бруцелл предварительно выращивали на скошенном агаре Альбими, рН (7,3±0,1), при температуре 37°С в течение 48 ч. Затем культуры смывали с поверхности скошенного агара 0,9% раствором натрия хлорида, доводили концентрацию микробной взвеси до 10 единиц по оптическому стандарту мутности ОСО 42-28-85П ФГБУ НЦЭСМП МЗ России, эквивалентную 1,7×109 бруцелл в 1 мл. Полученную микробную взвесь культуры разводили в 0,9% растворе натрия хлорида сначала до концентрации 1×109 м.к./мл, затем, серийными десятикратными разведениями, - до концентрации 1×103 м.к./мл (разведение 10-6).
Разведение 10-7 (1×102 м.к./мл) получали в крови путем десятикратного титрования: 0,5 мл взвеси из разведения 10-6 (1×103 м.к./мл) переносили в 4,5 мл крови. В процессе разведения перенос взвеси в следующую пробирку производили стерильной пипеткой объемом 1 мл, меняя пипетку для каждого разведения.
Далее по 0,5 мл микробной взвеси каждого из штаммов В. melitensis 16 М; В. melitensis 565; В. abortus 544; В, abortus 19 ВА; В. suis 1330 из разведения 10-7 (1×102 м.к./мл крови) одноразовыми шприцами вносили в 3 флакона с 5 мл предлагаемой транспортной жидкой питательной среды и в 3 флакона с 5 мл среды сравнения - эритрит-бульона, перемешивали и инкубировали при температуре (37±1)°С в течение 22-26 ч. Одновременно по 0,1 мл этих же взвесей каждого тестируемого штамма высевали на 3 чашки Петри с эритрит-агаром (контрольный посев). Через 22-26 ч инкубации при температуре (37±1)°С по 0,1 мл микробной взвеси из каждого флакона высевали также на 3 чашки Петри с эритрит-агаром. Засеянные чашки с эритрит-агаром без подращивания и с подращиванием инкубировали при температуре (37±1)°С в течение 70-74 ч.
Оценку ростовых свойств транспортной жидкой питательной среды осуществляли отдельно для каждого штамма путем визуального осмотра, измерения диаметра и подсчета среднего количества колоний бруцелл, выросших на чашках с эритрит-агаром через 70-74 ч инкубирования при температуре (37±1)°С до и после подращивания в предлагаемой транспортной жидкой среде, среде сравнения и в результате «контрольного» посева.
Среднее количество колоний бруцелл, выросших в результате «контрольного» посева, составило 32,2; 25,7; 23,7; 24,3; 21,3 для В. melitensis 16 М; В. abortus 19 ВА; В. suis 1330, В. melitensis 565; В. abortus 544, соответственно.
Пример 1. Тестируемые штаммы выращивали на питательной среде, содержащей: пептон ферментативный 18,0 г; дрожжевой экстракт 8,0 г; натрий хлористый 3,0 г; натрий лимоннокислый 3-зам. 5,5 водный 3,0 г; стимулятор роста гемофильных микроорганизмов 8,0 г; уголь активированный марки ОУА 18,0 г; дистиллированную воду до 1 л. Указанные ингредиенты соединяли в эмалированной кастрюле и устанавливали рН 4,5 раствором соляной кислоты в соотношении 1:1, кипятили в течение 5 мин до растворения всех составляющих, затем фильтровали через ткань Бельтинг и 8 слоев фильтровальной бумаги, в фильтрате устанавливали рН (7,6±0,1) 20% раствором натрия гидроокиси, и добавляли глицерин 18,0 мл; глюкозу 8,0 г; натрий метабисульфит 0,1 г.
При таком соотношении ингредиентов количество колоний в S-форме, диаметром 1,0-1,2 мм, выросших на пластинках агара через 70-74 ч из посевной дозы 10 м.к., для В. melitensis 16 М; В. abortus 19 ВА; В. suis 1330, В. melitensis 565; В. abortus 544, соответственно, в среднем составляло: 98,6; 90,2; 93,8; 75,4; 102,5 после подращивания в предлагаемой среде и 100,8; 104,2; 102,6; 89,9; 104,9 в среде сравнения.
Пример 2. Штаммы выращивали на питательной среде содержащей, пептон ферментативный 20,0 г; дрожжевой экстракт 10,0 г; натрия хлорид 5,0 г; натрий лимоннокислый 3 зам. 5,5 водный 5,0 г; стимулятор роста гемофильных микроорганизмов 10,0 г; уголь активированный марки ОУА 20,0 г; дистиллированную воду до 1 л. Указанные ингредиенты соединяли в эмалированной кастрюле и устанавливали рН 4,5 раствором соляной кислоты в соотношении 1:1, кипятили в течение 5 мин до растворения всех составляющих, затем фильтровали через ткань Бельтинг и 8 слоев фильтровальной бумаги, в фильтрате устанавливали рН (7,6±0,1) 20% раствором натрия гидроокиси, и добавляли глицерин 20,0 мл; глюкозу 10,0 г; натрий метабисульфит 0,3 г.
При таком соотношении ингредиентов количество колоний в S-форме, диаметром 1,5-2,0 мм, выросших на пластинках агара через 70-74 ч из посевной дозы 10 м.к., для В. melitensis 16 М; В. abortus 19 ВА; В, suis 1330, В. melitensis 565; В. abortus 544, соответственно, в среднем составляло: 112,2; 111,5; 113,2; 94,6; 121,1 после подращивания в предлагаемой среде и 100,8; 104,2; 102,6; 89,9; 104,9 в среде сравнения.
Пример 3. Штаммы выращивали на питательной среде, содержащей: пептон ферментативный 22,0 г; дрожжевой экстракт 12,0 г; натрия хлорид 7,0 г; натрий лимоннокислый 3 зам. 5,5 водный 7,0 г; стимулятор роста гемофильных микроорганизмов 12,0 г; уголь активированный марки ОУА 22,0 г; дистиллированную воду до 1 л. Указанные ингредиенты соединяли в эмалированной кастрюле и устанавливали рН 4,5 раствором соляной кислоты в соотношении 1:1, кипятили в течение 5 мин до растворения всех составляющих, затем фильтровали через ткань Бельтинг и 8 слоев фильтровальной бумаги, в фильтрате устанавливали рН (7,6±0,1) 20% раствором натрия гидроокиси, и добавляли глицерин 22,0 мл; глюкозу 12,0 г; натрий метабисульфит 0,3 г.
При таком соотношении ингредиентов количество колоний в S-форме, диаметром 1,3-1,4 мм, выросших на пластинках агара через 70-74 ч из посевной дозы 10 м.к., для В. melitensis 16 М; В. abortus 19 ВА; В. suis 1330, В. melitensis 565; В. abortus 544, соответственно, в среднем составляло: 102,7; 93,4; 90,9; 77,1; 99,8 после подращивания в предлагаемой среде и 100,8; 104,2; 102,6; 89,9; 104,9 в среде сравнения.
Таким образом, способ получения транспортной питательной среды (пример 2) является оптимальным по количеству подобранных ингредиентов, которые в совокупности обеспечивают сохранение жизнеспособности и рост бруцелл от момента посева крови больного, подозрительного на бруцеллез, до доставки проб в специализированную лабораторию.

Claims (2)

  1. Транспортная жидкая питательная среда для сохранения жизнеспособности бруцеллезного микроба со следующим соотношением ингредиентов:
  2. пептон ферментативный 20,0 г дрожжевой экстракт 10,0 г натрий хлористый 5,0 г натрий лимоннокислый 3-зам. 5,5водный 5,0 г стимулятор роста гемофильных микроорганизмов 10,0 г уголь активированный 20,0 г глицерин 20 мл глюкоза 10,0 г натрия метабисульфит 0,3 г дистиллированная вода до 1 л
RU2019138098A 2019-11-25 2019-11-25 Транспортная жидкая питательная среда для сохранения жизнеспособности бруцеллезного микроба RU2725733C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2019138098A RU2725733C1 (ru) 2019-11-25 2019-11-25 Транспортная жидкая питательная среда для сохранения жизнеспособности бруцеллезного микроба

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2019138098A RU2725733C1 (ru) 2019-11-25 2019-11-25 Транспортная жидкая питательная среда для сохранения жизнеспособности бруцеллезного микроба

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2725733C1 true RU2725733C1 (ru) 2020-07-03

Family

ID=71510525

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2019138098A RU2725733C1 (ru) 2019-11-25 2019-11-25 Транспортная жидкая питательная среда для сохранения жизнеспособности бруцеллезного микроба

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2725733C1 (ru)

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2238973C1 (ru) * 2003-03-24 2004-10-27 Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Питательная среда (жидкая) для культивирования бруцелл
RU2247775C1 (ru) * 2003-08-04 2005-03-10 Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Транспортная жидкая питательная среда для сбора, культивирования и транспортировки крови больных, подозреваемых на заболевание бруцеллезом
RU2529364C1 (ru) * 2013-05-07 2014-09-27 Федеральное казённое учреждение здравоохранения Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав портребителей и благополучия человека Бифазная транспортная питательная среда для выделения и выращивания бруцеллезного микроба

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2238973C1 (ru) * 2003-03-24 2004-10-27 Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Питательная среда (жидкая) для культивирования бруцелл
RU2247775C1 (ru) * 2003-08-04 2005-03-10 Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Транспортная жидкая питательная среда для сбора, культивирования и транспортировки крови больных, подозреваемых на заболевание бруцеллезом
RU2529364C1 (ru) * 2013-05-07 2014-09-27 Федеральное казённое учреждение здравоохранения Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав портребителей и благополучия человека Бифазная транспортная питательная среда для выделения и выращивания бруцеллезного микроба

Similar Documents

Publication Publication Date Title
RU2433170C1 (ru) Питательная среда жидкая для культивирования чумного микроба вакцинного штамма ев
CN105713873A (zh) 一种免疫细胞体外扩增培养的无血清培养基及其应用
CN110205355A (zh) 一种微生物高灵敏检测培养基及其制备方法和应用
RU2626568C1 (ru) Питательная среда плотная для культивирования и сбора биомассы чумного микроба вакцинного штамма Y.pestis EV
RU2725733C1 (ru) Транспортная жидкая питательная среда для сохранения жизнеспособности бруцеллезного микроба
RU2412240C1 (ru) Питательная среда для выращивания легионелл
RU2435842C1 (ru) Питательная среда транспортная (жидкая) для культивирования бруцеллезного микроба
RU2681285C1 (ru) ПИТАТЕЛЬНАЯ СРЕДА ПЛОТНАЯ ДЛЯ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ БРУЦЕЛЛ ВИДА Brucella neotomae
CN114350571B (zh) 非动物源性培养基及用其培养嗜黏蛋白阿克曼氏菌的方法
RU2247775C1 (ru) Транспортная жидкая питательная среда для сбора, культивирования и транспортировки крови больных, подозреваемых на заболевание бруцеллезом
CN109913396A (zh) 一种液体培养基及利用其分离培养鸡毒支原体的方法
RU2238973C1 (ru) Питательная среда (жидкая) для культивирования бруцелл
CN112680499B (zh) 一种厌氧微生物的体外检测试剂盒
RU2702174C1 (ru) ПИТАТЕЛЬНАЯ СРЕДА ПЛОТНАЯ ДЛЯ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ И СБОРА БИОМАССЫ ВАКЦИННОГО ШТАММА ЧУМНОГО МИКРОБА Y.pestis EV
RU2190220C1 (ru) Способ выявления микобактерий туберкулеза
RU2681116C2 (ru) Питательная среда плотная для хранения микроба чумы
RU2756601C1 (ru) Обогащенная питательная среда плотная для выращивания биомассы бруцелл
RU2648160C2 (ru) Питательная среда для выделения бактерий yersinia enterocolitica
RU2764139C1 (ru) Плотная питательная среда с гидролизатом чайного гриба, стимулирующим накопление бактериальной массы бруцелл
CN109355226A (zh) 用于军团菌的增菌培养和分离培养的双相培养基及其制备方法
RU2745504C1 (ru) Питательная среда жидкая для выращивания и сброса биомассы вакционного штамма чумного микроба yersinia pestis ev
RU2748492C1 (ru) Питательная среда плотная для контроля количества живых микробных клеток вакцинного штамма чумного микроба y. pestis ev
RU2708029C1 (ru) Питательная среда для культивирования yersinia pestis ev
RU2183970C1 (ru) Способ получения бактериальных аллергенов
CN1162549C (zh) 结核菌双相快速培养基及其制备方法