RU2707541C2 - Способ получения иммобилизованного мицелия базидиомицета fomitopsis officinalis - Google Patents

Способ получения иммобилизованного мицелия базидиомицета fomitopsis officinalis Download PDF

Info

Publication number
RU2707541C2
RU2707541C2 RU2017145642A RU2017145642A RU2707541C2 RU 2707541 C2 RU2707541 C2 RU 2707541C2 RU 2017145642 A RU2017145642 A RU 2017145642A RU 2017145642 A RU2017145642 A RU 2017145642A RU 2707541 C2 RU2707541 C2 RU 2707541C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
mycelium
officinalis
basidiomycete
strain
fomitopsis officinalis
Prior art date
Application number
RU2017145642A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2017145642A (ru
RU2017145642A3 (ru
Inventor
Татьяна Ильинична Громовых
Сергей Викторович Луценко
Ася Юрьевна Айрапетова
Наталия Борисовна Фельдман
Вера Сергеевна Садыкова
Ирина Александровна Гаврюшина
Владимир Валентинович Каширин
Original Assignee
федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский университет)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский университет) filed Critical федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский университет)
Priority to RU2017145642A priority Critical patent/RU2707541C2/ru
Publication of RU2017145642A publication Critical patent/RU2017145642A/ru
Publication of RU2017145642A3 publication Critical patent/RU2017145642A3/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2707541C2 publication Critical patent/RU2707541C2/ru

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/14Fungi; Culture media therefor
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N11/00Carrier-bound or immobilised enzymes; Carrier-bound or immobilised microbial cells; Preparation thereof
    • C12N11/02Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier
    • C12N11/10Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier the carrier being a carbohydrate
    • C12N11/12Cellulose or derivatives thereof

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Изобретение относится к биотехнологии и может быть использовано для получения иммобилизованного мицелия базидиального гриба Fomitopsis officinalis. Способ предусматривает культивирование штамма Fomitopsis officinalis ВКПМ F-961 совместно со штаммом-продуцентом бактериальной целлюлозы Gluconacetobacter hansenii ВКПМ В-10547 на синтетической среде, содержащей глюкозу, дрожжевой экстракт, Na2HPO4, K2HPO4, (NH4)2SO4, моногидрат лимонной кислоты, рН среды 6,5. Изобретение обеспечивает повышение выхода и продуктивности мицелия. 2 ил., 2 табл., 2 пр.

Description

Изобретение относится к биотехнологии и может быть использовано для культивирования мицелия базидиальногогриба Fomitopsis officinalis (Vill.:Fr.) Bond. Et Sing.
Ксилотрофный базидиомицет F. officinalis, известный как трутовик лекарственный или лиственничная губка, применяется как источник лекарственных средств. В медицинской практике применяются плодовые тела для получения препаратов, оказывающих слабительное и кровоостанавливающее действие, уменьшающих потоотделение у туберкулезных больных.
В плодовых телах гриба F. officinalis содержится агарициновая и эбуриколовая, фумаровая, рициноловая, лимонная и яблочная, органические кислоты; d-глюкозамин; биофлаваноиды, витамины группы В, P, Е, А, эфирные масла, фитостерин, глюкоза и маннит (Feng W, Yang J S._A new drimaneses uiterpenoid and a new triterpene lactone from fungus of Fomes officinalis // J. Asian Nat Prod Res. 2015; 17 (11): 1065-72; WuH. T., Lu F.H., Su Y.C., Ou H.Y., Hung H.C., Wu J.S., Yang Y.C., Chang C. J. In vivo and in vitro antitumor effects of fungal extracts // Molecules. 2014 Feb 21; 19 (2): 2546-56].
Клинические испытания трутовика позволили выделить полисахарид "ланофил", который стимулирует биосинтез ферментов, участвующих в восстановлении нарушенного обмена веществ клетками печении расщепления глюкозы и жиров в организме [Han J, Li L, Zhong J, Tohtaton Z, Ren Q, Han L, Huang X, Yuan T. Officinalonic acids A-H, lanostane triterpenes from the fruiting bodies of Fomes officinalis // Phytochemistry. 2016 Oct; 130: 193-200; Feng W, Yang J, Xu X, Liu Q. Quantitative determination of lanostane triterpenes in Fomes officinalis and their fragmentation study by HPLC-ESI. Phytochem Anal. 2010 Nov-Dec; 21(6): 531-8].
Известен патент РФ №2257222, опубл. 27.07.2005, бюл. №21, A61K 35/84 «Комплексная переработка гриба трутовика лекарственного (Fomitopsis officinalis (Vill.: Fr.) Bond. Et Sing.), характеризующаяся тем, что сырье измельчают до размера частиц 1-3 мм и подвергают четырехступенчатой экстракции, на первой ступени экстрагируют сжиженным диоксидом углерода при давлении 6,0-7,0 МПа, температуре 22-26°С в течение 10-12 ч с выделением углекислотного экстракта, содержащего эфирное масло, жирные ненасыщенные кислоты, каротиноиды, витамины Е, А и стерины, затем на второй ступени остаток экстрагируют диэтиловым эфиром при температуре 34-36°С в течение 2-3 ч с выделением экстракта, содержащего агарициновую кислоту и липидно-каротиноидный комплекс, и остатка, который на третьей стадии экстрагируют 70-96%-ным этиловым спиртом в течение 3-6 ч при температуре 78-80°C с выделением спиртового экстракта, содержащего каротиноиды, биофлавоноиды и витамин K, на четвертой ступени остаток экстрагируют водой при температуре 98-100°С в течение 3-5 ч с последующим настаиванием в течение 10-12 ч при температуре 18-22°C с выделением водного экстракта, содержащего углеводы, часть дубильных веществ, витамины В1, В2, В6, Р.
Известен патент РФ №2404249, опубл. 20.11.2010, бюлл. №32; «Способ получения водорастворимых полисахаридов из плодового тела трутовика лекарственного, обладающих иммунотропной активностью, характеризующийся тем, что плодовое тело гриба трутовика измельчают до размеров частиц не более 3 мм, экстрагируют смесью хлороформа и спирта этилового 95%, которые берут в соотношении 1:2, высушенный шрот экстрагируют трижды горячей водой при соотношениях сырья и экстрагента 1:20, 1:15, 1:10 в течение 6 ч, объединенное извлечение упаривают при температуре 50°С до 1/5 первоначального объема, фильтруют, осаждают 95%-ным спиртом этиловым, центрифугируют, отделяют и очищают.
В настоящее время естественные ресурсы вида F. officinalis уже истощены, поэтому его, как редкий исчезающий вид грибов, планируют включить в Красную книгу России.
Поиск новых источников для получения лекарственных препаратов на основе мицелия F. officinalis является одной из приоритетных задач ресурсосберегающих технологий, стоящих перед отечественной наукой ["Химический и биологический синтез лекарственных средств и пищевых продуктов", Постановление Правительства РФ №2727/п-П8 от 21 июля 1996 г.].
Известно, что биологически активные вещества высших грибов содержатся не только в базидиомах, но и в вегетативном мицелии гриба, получаемом путем жидкофазного и твердофазного культивирования. Важным преимуществом получения биомассы мицелия с помощью биотехнологических методов являются: неограниченная возможность и безотходность производства препаратов, недефицитность сырьевых ресурсов.
Мицелий различных штаммов вида F. officinalis интенсивно исследуется в качестве источника биологически активных веществ [Сидоренко М.Н. Оценка возможности использования лиственничной губки в качестве источника биологически активных веществ. Перспективы развития инноваций в биологии: Материалы Всероссийской научной школы для молодежи Владивосток, 2010, с. С. 99-103].
Известен патент РФ №2375439, опубл. 10.12.2009 г.«Штамм базидиального гриба Fomitopsis officinalis, проявляющий антибактериальную активность в отношении бактерий.
Мицелий ксилотрофных базидиомицетов трудно культивируется в условиях жидкофазного культивирования, но лучше растет на твердых субстратах [Ксилотрофные базидиомицеты в чистой культуре. / Г.В. Ильина, Д.Ю. Ильин. Пенза: РИО ПГСХА, 2013. - 224 с.].
В работе [Ковалева Г.К., Громовых Т.И. Биологические свойства и продуктивность нового штамма базидиомицета Tyv-2006 Fomitopsis officinalis (Will.) Bond. Et Singer // Вестник КрасГАУ. - Красноярск, 2009. - №1. - С - 68-75] показано, что скорость роста мицелия лиственничной губки на различных натуральных, комплексных и синтетических агаризованных средах относительно невелика (средняя суточная скорость линейного роста составляет 2-4 мм). Для получения инокулюма требуется 12-14 дней, а посевного мицелия на твердых субстратах - около 20 суток. Однако эта величина не является постоянной. Она изменяется не равномерно, в зависимости от возраста культуры и состава среды.
С использованием подобранных условий получения жидкого инокулюма (состава и рН сред, температура инкубации, аэрация, освещение, скорость перемешивания) сроки получения посевного мицелия первой генерации могут быть сокращены до 10-12 суток.
Однако продуктивность биомассы мицелия базидиомицетов в условиях жидкофазного культивирования составляет от 5 г/л абсолютно сухого вещества (а.с.в.), поэтому до настоящего времени не налажено крупнотоннажное производство мицелия продуцентов этого вида.
При культивировании штаммов-продуцентов Fomitopsis officinalis на твердых растительных субстратах возникает проблема отделения биомассы мицелия от растительных остатков, в связи с чем, такую биомассу целесообразно использовать только в кормовых целях.
Для получения пищевых и фармацевтических препаратов на основе мицелия штаммов Fomitopsis officinalis необходимо разработать принципиально новые подходы к способам культивирования, обеспечивающим получение чистого продукта без примесей растительных остатков.
Проблемой, решаемой изобретением, является поиск новых источников для получения лекарственных препаратов на основе мицелия F. officinalis.
Технический результат состоит в повышении продуктивности мицелия трутовика лекарственного Fomitopsis officinalis, определяемой на основе абсолютно сухого веса биомассы мицелия (а.с.в.).
Поставленная проблема решается способом получения иммобилизованного мицелия базидиального гриба Fomitopsis officinalis, заключающимся в культивировании штамма Fomitopsis officinalis (ВКПМ F-961) совместно со штаммом-продуцентом бактериальной целлюлозы Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008 (ВКПМ В-10547) на синтетической среде состава, г/л: глюкоза - 70.0, дрожжевой экстракт - 5.0, Na2HPO4 - 0.27, K2HPO4 - 0.2, (NH4)2SO4 - 0.3, моногидрат лимонной кислоты - 0.115, рН среды 6,5.
Известен штамм бактерии Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008 -продуцент бактериальной целлюлозы, [Патент РФ №2464307. опубл. 20.10.2012. Бюлл.№29].
Бактериальная целлюлоза является наноматериалом, имеющим микропоры размером от 5×10 до 50×100 нм, на котором хорошо иммобилизуются клетки прокариот и эукариот [Gromovykh T.I., Sadykova V.S., Lutcenko S.V., Dmitrenok A.S., Feldman N.B., Danilchuk T.N., Kashirin V.V. // PrikladnayaBiokhimiya i Mikrobiologiya, 2017, Vol. 53, No. 1, pp. 69-75; NimeskernL, Martinez AvilaH, SundbergJ, GatenholmP, MiillerR, StokKS. Mechanical evaluation of bacterial nanocellulose as an implant material for ear cartilage replacement. J Mech Behav Biomed. - 2013. - 22:12-21]. Кроме того, она нетоксична, обладает высокими адсорбционными свойствами, является биоразлагаемым и биосовместимым полимером.
Способ осуществляют следующим образом.
Культивирование штамма мицелия базидиомицета Fomitopsis officinalis (ВКПМ F-961) проводят совместно с продуцентом бактериальной целлюлозы Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008 (ВКПМ В-10547) на синтетической среде следующего состава, г/л: глюкоза - 70.0, дрожжевой экстракт - 5.0, Na2HPO4 - 0.27, K2HPO4 - 0.2, (NH4)2SO4 - 0.3, моногидрат лимонной кислоты - 0.115. Культивирование проводят в течение 30 суток при температуре 28±2°С. Полученные пленки иммобилизованного мицелия Fomitopsis officinalis на матрице бактериальной целлюлозы отделяют от питательной среды и определяют содержание белка и агарициновой кислоты.
Содержание белка в мицелии базидиомицета Fomitopsis officinalis, полученного как в монокультуре, так и на матрице бактериальной целлюлозы, определяют методом М. Брэдфорда [Bradford М.М. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dyebinding // Anal. Biochem. 1976. Vol. 72. P. 248-254].
Для определения количества белка в образцах мицелия навеску массой 0,05 г, предварительно высушенного в сухожаровом шкафу при температуре 60°С до постоянной массы, растирают в гранитной ступке. Растертый мицелий пересыпают в колбу с притертой крышкой, заливают 60 мл детергента - 6М раствора мочевины, взбалтывают и оставляют на сутки в теплом месте при температуре 20-22°С. Настоявшуюся суспензию взбалтывают, затем отбирают дозатором 1 мл суспензии в пробирку и центрифугируют 60 секунд при 12000 об/мин, после чего отбирают супернатант для проведения анализа. Концентрацию белка определяют по калибровочному графику, построенному с использованием бычьего сывороточного альбумина (БСА) в качестве стандарта. По количеству белка, содержащегося в иммобилизованном мицелии, рассчитывают процент мицелия (долю) в образцах.
Идентичность белкового состава образцов мицелия подтверждают методом электрофореза в полиакриламидном геле в денатурирующих условиях [Стручкова И.В., Кальясова Е.А. Теоретические и практические основы проведения электрофореза белков в полиакриламидном геле. Нижний Новгород: НГУ им Н.И. Лобачевского. 2012-60 с.].
Определение агарициновой кислоты в мицелии проводят согласно методу, разработанному в патенте №2330676 РФ «Способ получения агарициновой кислоты», опубл. 10.08.2008, бюл. №22.
Пример 1. Способ по изобретению.
Жидкофазное стационарное культивирование смешанной культуры мицелия базидиомицета штамма TYV- 2006 Fomitopsis officinalis (Vill.:Fr.) Bond. Et Sing (ВКПМ F-961) и продуцента бактериальной целлюлозы штамма Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008 (ВКПМ В-10547) проводят на синтетической питательной среде следующего состава, г/л: глюкоза - 70.0, дрожжевой экстракт - 5.0, Na2HPO4- 0.27, K2HPO4- 0.2, (NH4)2SO4- 0.3, моногидрат лимонной кислоты - 0.115, рН среды доводят до значения 6,0-6,5 с помощью 0,1 М раствора NaOH.
Среду разливают в колбы Эрленмейера объемом 250 мл и стерилизуют при остаточном давлении 0,5 атм в течение 30 минут. Посевной материал продуцента Ghansenii выращивают при перемешивании 120 об/мин в течение 5 суток на жидкой среде Н5 следующего состава, г/л: глюкоза - 70.0, дрожжевой экстракт -5.0, Na2HPO4 - 2.7, K2HPO4 - 2.0, (NH4)2SO4 - 3.0, моногидрат лимонной кислоты - 1.15, спирт - 5.0, рН=4.0.
Проводят посев продуцента бактериальной целлюлозы штамма Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008 суспензией с титром 108 КОЕ/мл в объеме 10 см3 и культивируют в стационарных условиях в течение 48 часов до появления тонкой пленки бактериальной целлюлозы.
Посевной материал продуцента F.officinalis выращивают на агаровой среде Maltax-10 в концентрации 5%. Посев проводят агаровым блоком газонной культуры мицелия F. officinalis размером 10×10×5 мм3. Через 48 часов культивирования Ghansenii GH-1/2008 в колбы вносят инокулят агарового блока мицелия F.officinalis площадью 1 см2 и проводят дальнейшее культивирование в течение 30 суток в термостате при температуре 30±1°С.
Полученные пленки иммобилизованного на бактериальной целлюлозе мицелия отделяют от культуральной жидкости на бумажном фильтре, высушивают в сухожаровом шкафу при t=60°С до постоянной массы (рисунок 1, г и е). Определяют абсолютно сухой вес биомассы мицелия (а.с.в.), который составляет 11,4 г/л. Среднесуточная продуктивность составляет 0,38 г/л*сут. Определяют количество белка и агарициновой кислоты в образцах.
Технический результат предлагаемого способа - повышение выхода и продуктивности мицелия - достигается при совместном способе культивирования базидиального гриба F. officinalis и продуцента бактериальной целлюлозы штамма G. hansenii, выращиваемых на синтетической среде. Продуктивность мицелия рассчитывают по количеству белка в образцах иммобилизованного мицелия на бактериальной целлюлозе, следующим образом:
А - количество мицелия в образце, %, В - количество белка в образце мицелия, полученном в монокультуре, %; С - количество белка в иммобилизованном мицелии на бактериальной целлюлозе, полученного в смешанной культуре, %, тогда количество мицелия в нем будет составлять:
А=В×100/С.
Биомасса мицелия F. officinalis в смешанной культуре с продуцентом бактериальной целлюлозы G. hansenii на среде Maltax составляет 9,2 г/л, что выше, чем при культивировании чистой культуры продуцента в 1.9 раза; биомасса мицелия F. officinalis в смешанной культуре с продуцентом бактериальной целлюлозы G. hansenii на синтетической среде составляет - 11.4 г/л, в чистой культуре - 3,5, что выше в 3.2 раза (таблица 1).
Figure 00000001
На Фиг. 2 представлена электрофореграмма белков экстрактов из образцов мицелия штамма F. officinalis, полученного в различных условиях культивирования: 2 - F. officinalis на среде Maltax, 5%, 3 -иммобилизованный мицелий F. officinalis на матрице бактериальной целлюлозы (среда Maltax. 5%), 4 - иммобилизованный мицелий F. officinalis на матрице бактериальной целлюлозы (синтетическая среда); 5 - F. officinalis на синтетической среде; 1,6 - маркеры молекулярной массы: а - бычий сывороточный альбумин (Мм=67000 Да), 6 - химотрипсиноген А (Мм=25000 Да), в - рибонуклеаза А (13700 Да)
Представленные данные подтверждают идентичность белкового состава в супернатантах,: полученных экстракцией всех исследуемых образцов мицелия (на Фиг. 2: 2, 3, 4 и 5); полосы идентичны, с молекулярной белков массой в пределах 60000-65000 Да.
Пример 2.
Жидкофазное стационарное культивирование чистой культуры мицелия базидиомицета штамма TYV- 2006 Fomitopsis officinalis (Vill.:Fr.) Bond. Et Sing (ВКПМ F-961) и продуцента бактериальной целлюлозы штамма Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008 (ВКПМ В-10547) проводят на синтетической питательной среде следующего состава, г/л: глюкоза - 70.0, дрожжевой экстракт - 5.0, Na2HPO4 - 0.27, K2HPO4 - 0.2, (NH4)2SO4 - 0.3, моногидрат лимонной кислоты - 0.115, рН среды доводят до значения 6,0 -6,5 с помощью 0,1 М раствора NaOH.
Среду разливают в колбы Эрленмейера объемом 250 мл и стерилизуют при остаточном давлении 0,5 атм. в течение 30 минут. Посевной материал продуцента F.officinalis выращивают на агаровой среде Maltax в концентрации 5%. Посев проводят агаровым блоком газонной культуры мицелия F. officinalis размером 10×10×5 мм3. Жидкофазное стационарное культивирование мицелия F.officinalis проводят в термостате при температуре 28±1°С в течение 30 суток.
Пленки культуры, выращенные стационарным способом на жидкой среде, отделяют от культуральной жидкости на бумажном фильтре, высушивают в сухожаровом шкафу при t=60°С до постоянной массы.
Определяют абсолютно сухой вес биомассы мицелия (а.с.в.), которые составляет на синтетической среде 3,5 г/л.
Среднесуточная продуктивность составляет 0,12 г/л*сут.
На Фиг. 1 представлен рост мицелия F. officinalis и пленки, полученные при жидкофазном стационарном культивировании на средах: а - Maltax-10 (концентрация 5%), б - синтетической среде, в - рост и д - пленка - при совместном культивировании с Gluconacetobacter hansenii на среде Maltax-10, г - рост и е - пленка, полученная при совместном культивировании с Gluconacetobacter hansenii на синтетической среде. Определяют количество белка и агарициновой кислоты в образцах.
Figure 00000002

Claims (1)

  1. Способ получения иммобилизованного мицелия штамма базидиомицета Fomitopsis officinalis, заключающийся в культивировании штамма базидиомицета TYV-2006 Fomitopsis officinalis ВКПМ F-961 совместно со штаммом-продуцентом бактериальной целлюлозы GH-1/2008 Gluconacetobacter hansenii ВКПМ В-10547 на синтетической среде состава, г/л: глюкоза - 70.0, дрожжевой экстракт - 5.0, Na2HPO4 - 0.27, K2HPO4 - 0.2, (NH4)2SO4 - 0.3, моногидрат лимонной кислоты - 0.115, рН среды 6,5.
RU2017145642A 2017-12-25 2017-12-25 Способ получения иммобилизованного мицелия базидиомицета fomitopsis officinalis RU2707541C2 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2017145642A RU2707541C2 (ru) 2017-12-25 2017-12-25 Способ получения иммобилизованного мицелия базидиомицета fomitopsis officinalis

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2017145642A RU2707541C2 (ru) 2017-12-25 2017-12-25 Способ получения иммобилизованного мицелия базидиомицета fomitopsis officinalis

Publications (3)

Publication Number Publication Date
RU2017145642A RU2017145642A (ru) 2019-06-25
RU2017145642A3 RU2017145642A3 (ru) 2019-06-25
RU2707541C2 true RU2707541C2 (ru) 2019-11-27

Family

ID=67002473

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2017145642A RU2707541C2 (ru) 2017-12-25 2017-12-25 Способ получения иммобилизованного мицелия базидиомицета fomitopsis officinalis

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2707541C2 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN110295133A (zh) * 2019-08-02 2019-10-01 长春理工大学 一种细菌纤维素合成菌的筛选方法

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2330676C1 (ru) * 2007-01-09 2008-08-10 ГОУ ВПО Росздрава Пятигорская государственная фармацевтическая академия Способ получения агарициновой кислоты
RU2360960C1 (ru) * 2007-12-17 2009-07-10 Федеральное государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Сибирский федеральный университет" ШТАММ БАЗИДИОМИЦЕТА Fomitopsis Tyv-2006, ИСПОЛЬЗУЕМЫЙ ДЛЯ ПОЛУЧЕНИЯ ПРОТИВООПУХОЛЕВЫХ ПРЕПАРАТОВ
RU2464307C1 (ru) * 2011-05-31 2012-10-20 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Московский государственный университет пищевых производств" Штамм бактерии cluconacetobacter hansenii gh-1/2008 - продуцент бактериальной целлюлозы

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2330676C1 (ru) * 2007-01-09 2008-08-10 ГОУ ВПО Росздрава Пятигорская государственная фармацевтическая академия Способ получения агарициновой кислоты
RU2360960C1 (ru) * 2007-12-17 2009-07-10 Федеральное государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Сибирский федеральный университет" ШТАММ БАЗИДИОМИЦЕТА Fomitopsis Tyv-2006, ИСПОЛЬЗУЕМЫЙ ДЛЯ ПОЛУЧЕНИЯ ПРОТИВООПУХОЛЕВЫХ ПРЕПАРАТОВ
RU2464307C1 (ru) * 2011-05-31 2012-10-20 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Московский государственный университет пищевых производств" Штамм бактерии cluconacetobacter hansenii gh-1/2008 - продуцент бактериальной целлюлозы

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
КИСЕЛЕВА О.В. и др. Глубинное культивирование серно-желтого трутовика с целью получения белковой биомассы. Химия растительного сырья, 2011, т. 4. c. 337-338. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN110295133A (zh) * 2019-08-02 2019-10-01 长春理工大学 一种细菌纤维素合成菌的筛选方法

Also Published As

Publication number Publication date
RU2017145642A (ru) 2019-06-25
RU2017145642A3 (ru) 2019-06-25

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN111018954B (zh) 具有抗真菌和清除自由基活性的环色-丝-缬-缬-亮肽及制备方法
JP5583927B2 (ja) C.ヒストリチカムのための哺乳動物源成分を含まない増殖培地
Cui et al. Characterisation and bioactivity of protein-bound polysaccharides from submerged-culture fermentation of Coriolus versicolor Wr-74 and ATCC-20545 strains
Raubitschek Mechanical versus chemical keratolysis by dermatophytes
CN110982868A (zh) 一种提高灵芝三萜含量的共培养方法及应用
CN113073070A (zh) 一种长双歧杆菌、其应用及产品
KR101148513B1 (ko) 천마를 활용한 에르고티오닌 증강조성물 제조방법
RU2707541C2 (ru) Способ получения иммобилизованного мицелия базидиомицета fomitopsis officinalis
Wang et al. Nutritional value and volatiles of the edible mushroom Leucocalocybe mongolica
TWI241344B (en) Processes for producing an antrodia camphorata culture having pharmacological activity, processes for obtaining a pharmacologically active composition from a culture of A camphorata, products produced thereby and pharmaceutical compositions of cancer...
CN106822597B (zh) 一种发酵中药及其制备方法和用途
KR101114495B1 (ko) 2단계 방식에 의한 기능성 강화 가공발효녹용 및 그 제조방법
WO2004099427A1 (en) Method of extracting crude beta glucan from phellinus linteus
CN116355816A (zh) 一种发酵翅果油种子的微生物及其降血脂组合物
CN115161254A (zh) 一种提高乳酸菌胞外囊泡产量的方法
KR101760174B1 (ko) 버섯균주를 이용한 우엉 발효산물을 제조하는 방법
Gregori et al. Growth characteristics and ergosterol content of Grifola frondosa in various solid-state substrates
Gao et al. ACE inhibitory, antitumor and antioxidant activities of submerged culture materials of three medicinal mushrooms
JP3783915B2 (ja) 納豆菌由来の生理活性物質
CN117337969B (zh) 一种药食同源酵素及其制备方法和应用
CN101711775B (zh) 一种用于预防和治疗肿瘤的益生菌发酵巴西菇的发酵组合物
US12127507B2 (en) Active mycelium compound extraction process
RU2757086C1 (ru) Штамм бактерий Bacillus megaterium, обладающий способностью продуцировать пробиотические и антимикробные вещества класса органических кислот
CN117025419B (zh) 一种麦冬内生真菌及其应用
US20240155983A1 (en) Active Mycelium Compound Extraction Process