RU2707541C2 - Способ получения иммобилизованного мицелия базидиомицета fomitopsis officinalis - Google Patents
Способ получения иммобилизованного мицелия базидиомицета fomitopsis officinalis Download PDFInfo
- Publication number
- RU2707541C2 RU2707541C2 RU2017145642A RU2017145642A RU2707541C2 RU 2707541 C2 RU2707541 C2 RU 2707541C2 RU 2017145642 A RU2017145642 A RU 2017145642A RU 2017145642 A RU2017145642 A RU 2017145642A RU 2707541 C2 RU2707541 C2 RU 2707541C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- mycelium
- officinalis
- basidiomycete
- strain
- fomitopsis officinalis
- Prior art date
Links
Images
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
- C12N1/14—Fungi; Culture media therefor
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N11/00—Carrier-bound or immobilised enzymes; Carrier-bound or immobilised microbial cells; Preparation thereof
- C12N11/02—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier
- C12N11/10—Enzymes or microbial cells immobilised on or in an organic carrier the carrier being a carbohydrate
- C12N11/12—Cellulose or derivatives thereof
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Zoology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Botany (AREA)
- Mycology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
- Virology (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Изобретение относится к биотехнологии и может быть использовано для получения иммобилизованного мицелия базидиального гриба Fomitopsis officinalis. Способ предусматривает культивирование штамма Fomitopsis officinalis ВКПМ F-961 совместно со штаммом-продуцентом бактериальной целлюлозы Gluconacetobacter hansenii ВКПМ В-10547 на синтетической среде, содержащей глюкозу, дрожжевой экстракт, Na2HPO4, K2HPO4, (NH4)2SO4, моногидрат лимонной кислоты, рН среды 6,5. Изобретение обеспечивает повышение выхода и продуктивности мицелия. 2 ил., 2 табл., 2 пр.
Description
Изобретение относится к биотехнологии и может быть использовано для культивирования мицелия базидиальногогриба Fomitopsis officinalis (Vill.:Fr.) Bond. Et Sing.
Ксилотрофный базидиомицет F. officinalis, известный как трутовик лекарственный или лиственничная губка, применяется как источник лекарственных средств. В медицинской практике применяются плодовые тела для получения препаратов, оказывающих слабительное и кровоостанавливающее действие, уменьшающих потоотделение у туберкулезных больных.
В плодовых телах гриба F. officinalis содержится агарициновая и эбуриколовая, фумаровая, рициноловая, лимонная и яблочная, органические кислоты; d-глюкозамин; биофлаваноиды, витамины группы В, P, Е, А, эфирные масла, фитостерин, глюкоза и маннит (Feng W, Yang J S._A new drimaneses uiterpenoid and a new triterpene lactone from fungus of Fomes officinalis // J. Asian Nat Prod Res. 2015; 17 (11): 1065-72; WuH. T., Lu F.H., Su Y.C., Ou H.Y., Hung H.C., Wu J.S., Yang Y.C., Chang C. J. In vivo and in vitro antitumor effects of fungal extracts // Molecules. 2014 Feb 21; 19 (2): 2546-56].
Клинические испытания трутовика позволили выделить полисахарид "ланофил", который стимулирует биосинтез ферментов, участвующих в восстановлении нарушенного обмена веществ клетками печении расщепления глюкозы и жиров в организме [Han J, Li L, Zhong J, Tohtaton Z, Ren Q, Han L, Huang X, Yuan T. Officinalonic acids A-H, lanostane triterpenes from the fruiting bodies of Fomes officinalis // Phytochemistry. 2016 Oct; 130: 193-200; Feng W, Yang J, Xu X, Liu Q. Quantitative determination of lanostane triterpenes in Fomes officinalis and their fragmentation study by HPLC-ESI. Phytochem Anal. 2010 Nov-Dec; 21(6): 531-8].
Известен патент РФ №2257222, опубл. 27.07.2005, бюл. №21, A61K 35/84 «Комплексная переработка гриба трутовика лекарственного (Fomitopsis officinalis (Vill.: Fr.) Bond. Et Sing.), характеризующаяся тем, что сырье измельчают до размера частиц 1-3 мм и подвергают четырехступенчатой экстракции, на первой ступени экстрагируют сжиженным диоксидом углерода при давлении 6,0-7,0 МПа, температуре 22-26°С в течение 10-12 ч с выделением углекислотного экстракта, содержащего эфирное масло, жирные ненасыщенные кислоты, каротиноиды, витамины Е, А и стерины, затем на второй ступени остаток экстрагируют диэтиловым эфиром при температуре 34-36°С в течение 2-3 ч с выделением экстракта, содержащего агарициновую кислоту и липидно-каротиноидный комплекс, и остатка, который на третьей стадии экстрагируют 70-96%-ным этиловым спиртом в течение 3-6 ч при температуре 78-80°C с выделением спиртового экстракта, содержащего каротиноиды, биофлавоноиды и витамин K, на четвертой ступени остаток экстрагируют водой при температуре 98-100°С в течение 3-5 ч с последующим настаиванием в течение 10-12 ч при температуре 18-22°C с выделением водного экстракта, содержащего углеводы, часть дубильных веществ, витамины В1, В2, В6, Р.
Известен патент РФ №2404249, опубл. 20.11.2010, бюлл. №32; «Способ получения водорастворимых полисахаридов из плодового тела трутовика лекарственного, обладающих иммунотропной активностью, характеризующийся тем, что плодовое тело гриба трутовика измельчают до размеров частиц не более 3 мм, экстрагируют смесью хлороформа и спирта этилового 95%, которые берут в соотношении 1:2, высушенный шрот экстрагируют трижды горячей водой при соотношениях сырья и экстрагента 1:20, 1:15, 1:10 в течение 6 ч, объединенное извлечение упаривают при температуре 50°С до 1/5 первоначального объема, фильтруют, осаждают 95%-ным спиртом этиловым, центрифугируют, отделяют и очищают.
В настоящее время естественные ресурсы вида F. officinalis уже истощены, поэтому его, как редкий исчезающий вид грибов, планируют включить в Красную книгу России.
Поиск новых источников для получения лекарственных препаратов на основе мицелия F. officinalis является одной из приоритетных задач ресурсосберегающих технологий, стоящих перед отечественной наукой ["Химический и биологический синтез лекарственных средств и пищевых продуктов", Постановление Правительства РФ №2727/п-П8 от 21 июля 1996 г.].
Известно, что биологически активные вещества высших грибов содержатся не только в базидиомах, но и в вегетативном мицелии гриба, получаемом путем жидкофазного и твердофазного культивирования. Важным преимуществом получения биомассы мицелия с помощью биотехнологических методов являются: неограниченная возможность и безотходность производства препаратов, недефицитность сырьевых ресурсов.
Мицелий различных штаммов вида F. officinalis интенсивно исследуется в качестве источника биологически активных веществ [Сидоренко М.Н. Оценка возможности использования лиственничной губки в качестве источника биологически активных веществ. Перспективы развития инноваций в биологии: Материалы Всероссийской научной школы для молодежи Владивосток, 2010, с. С. 99-103].
Известен патент РФ №2375439, опубл. 10.12.2009 г.«Штамм базидиального гриба Fomitopsis officinalis, проявляющий антибактериальную активность в отношении бактерий.
Мицелий ксилотрофных базидиомицетов трудно культивируется в условиях жидкофазного культивирования, но лучше растет на твердых субстратах [Ксилотрофные базидиомицеты в чистой культуре. / Г.В. Ильина, Д.Ю. Ильин. Пенза: РИО ПГСХА, 2013. - 224 с.].
В работе [Ковалева Г.К., Громовых Т.И. Биологические свойства и продуктивность нового штамма базидиомицета Tyv-2006 Fomitopsis officinalis (Will.) Bond. Et Singer // Вестник КрасГАУ. - Красноярск, 2009. - №1. - С - 68-75] показано, что скорость роста мицелия лиственничной губки на различных натуральных, комплексных и синтетических агаризованных средах относительно невелика (средняя суточная скорость линейного роста составляет 2-4 мм). Для получения инокулюма требуется 12-14 дней, а посевного мицелия на твердых субстратах - около 20 суток. Однако эта величина не является постоянной. Она изменяется не равномерно, в зависимости от возраста культуры и состава среды.
С использованием подобранных условий получения жидкого инокулюма (состава и рН сред, температура инкубации, аэрация, освещение, скорость перемешивания) сроки получения посевного мицелия первой генерации могут быть сокращены до 10-12 суток.
Однако продуктивность биомассы мицелия базидиомицетов в условиях жидкофазного культивирования составляет от 5 г/л абсолютно сухого вещества (а.с.в.), поэтому до настоящего времени не налажено крупнотоннажное производство мицелия продуцентов этого вида.
При культивировании штаммов-продуцентов Fomitopsis officinalis на твердых растительных субстратах возникает проблема отделения биомассы мицелия от растительных остатков, в связи с чем, такую биомассу целесообразно использовать только в кормовых целях.
Для получения пищевых и фармацевтических препаратов на основе мицелия штаммов Fomitopsis officinalis необходимо разработать принципиально новые подходы к способам культивирования, обеспечивающим получение чистого продукта без примесей растительных остатков.
Проблемой, решаемой изобретением, является поиск новых источников для получения лекарственных препаратов на основе мицелия F. officinalis.
Технический результат состоит в повышении продуктивности мицелия трутовика лекарственного Fomitopsis officinalis, определяемой на основе абсолютно сухого веса биомассы мицелия (а.с.в.).
Поставленная проблема решается способом получения иммобилизованного мицелия базидиального гриба Fomitopsis officinalis, заключающимся в культивировании штамма Fomitopsis officinalis (ВКПМ F-961) совместно со штаммом-продуцентом бактериальной целлюлозы Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008 (ВКПМ В-10547) на синтетической среде состава, г/л: глюкоза - 70.0, дрожжевой экстракт - 5.0, Na2HPO4 - 0.27, K2HPO4 - 0.2, (NH4)2SO4 - 0.3, моногидрат лимонной кислоты - 0.115, рН среды 6,5.
Известен штамм бактерии Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008 -продуцент бактериальной целлюлозы, [Патент РФ №2464307. опубл. 20.10.2012. Бюлл.№29].
Бактериальная целлюлоза является наноматериалом, имеющим микропоры размером от 5×10 до 50×100 нм, на котором хорошо иммобилизуются клетки прокариот и эукариот [Gromovykh T.I., Sadykova V.S., Lutcenko S.V., Dmitrenok A.S., Feldman N.B., Danilchuk T.N., Kashirin V.V. // PrikladnayaBiokhimiya i Mikrobiologiya, 2017, Vol. 53, No. 1, pp. 69-75; NimeskernL, Martinez AvilaH, SundbergJ, GatenholmP, MiillerR, StokKS. Mechanical evaluation of bacterial nanocellulose as an implant material for ear cartilage replacement. J Mech Behav Biomed. - 2013. - 22:12-21]. Кроме того, она нетоксична, обладает высокими адсорбционными свойствами, является биоразлагаемым и биосовместимым полимером.
Способ осуществляют следующим образом.
Культивирование штамма мицелия базидиомицета Fomitopsis officinalis (ВКПМ F-961) проводят совместно с продуцентом бактериальной целлюлозы Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008 (ВКПМ В-10547) на синтетической среде следующего состава, г/л: глюкоза - 70.0, дрожжевой экстракт - 5.0, Na2HPO4 - 0.27, K2HPO4 - 0.2, (NH4)2SO4 - 0.3, моногидрат лимонной кислоты - 0.115. Культивирование проводят в течение 30 суток при температуре 28±2°С. Полученные пленки иммобилизованного мицелия Fomitopsis officinalis на матрице бактериальной целлюлозы отделяют от питательной среды и определяют содержание белка и агарициновой кислоты.
Содержание белка в мицелии базидиомицета Fomitopsis officinalis, полученного как в монокультуре, так и на матрице бактериальной целлюлозы, определяют методом М. Брэдфорда [Bradford М.М. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dyebinding // Anal. Biochem. 1976. Vol. 72. P. 248-254].
Для определения количества белка в образцах мицелия навеску массой 0,05 г, предварительно высушенного в сухожаровом шкафу при температуре 60°С до постоянной массы, растирают в гранитной ступке. Растертый мицелий пересыпают в колбу с притертой крышкой, заливают 60 мл детергента - 6М раствора мочевины, взбалтывают и оставляют на сутки в теплом месте при температуре 20-22°С. Настоявшуюся суспензию взбалтывают, затем отбирают дозатором 1 мл суспензии в пробирку и центрифугируют 60 секунд при 12000 об/мин, после чего отбирают супернатант для проведения анализа. Концентрацию белка определяют по калибровочному графику, построенному с использованием бычьего сывороточного альбумина (БСА) в качестве стандарта. По количеству белка, содержащегося в иммобилизованном мицелии, рассчитывают процент мицелия (долю) в образцах.
Идентичность белкового состава образцов мицелия подтверждают методом электрофореза в полиакриламидном геле в денатурирующих условиях [Стручкова И.В., Кальясова Е.А. Теоретические и практические основы проведения электрофореза белков в полиакриламидном геле. Нижний Новгород: НГУ им Н.И. Лобачевского. 2012-60 с.].
Определение агарициновой кислоты в мицелии проводят согласно методу, разработанному в патенте №2330676 РФ «Способ получения агарициновой кислоты», опубл. 10.08.2008, бюл. №22.
Пример 1. Способ по изобретению.
Жидкофазное стационарное культивирование смешанной культуры мицелия базидиомицета штамма TYV- 2006 Fomitopsis officinalis (Vill.:Fr.) Bond. Et Sing (ВКПМ F-961) и продуцента бактериальной целлюлозы штамма Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008 (ВКПМ В-10547) проводят на синтетической питательной среде следующего состава, г/л: глюкоза - 70.0, дрожжевой экстракт - 5.0, Na2HPO4- 0.27, K2HPO4- 0.2, (NH4)2SO4- 0.3, моногидрат лимонной кислоты - 0.115, рН среды доводят до значения 6,0-6,5 с помощью 0,1 М раствора NaOH.
Среду разливают в колбы Эрленмейера объемом 250 мл и стерилизуют при остаточном давлении 0,5 атм в течение 30 минут. Посевной материал продуцента Ghansenii выращивают при перемешивании 120 об/мин в течение 5 суток на жидкой среде Н5 следующего состава, г/л: глюкоза - 70.0, дрожжевой экстракт -5.0, Na2HPO4 - 2.7, K2HPO4 - 2.0, (NH4)2SO4 - 3.0, моногидрат лимонной кислоты - 1.15, спирт - 5.0, рН=4.0.
Проводят посев продуцента бактериальной целлюлозы штамма Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008 суспензией с титром 108 КОЕ/мл в объеме 10 см3 и культивируют в стационарных условиях в течение 48 часов до появления тонкой пленки бактериальной целлюлозы.
Посевной материал продуцента F.officinalis выращивают на агаровой среде Maltax-10 в концентрации 5%. Посев проводят агаровым блоком газонной культуры мицелия F. officinalis размером 10×10×5 мм3. Через 48 часов культивирования Ghansenii GH-1/2008 в колбы вносят инокулят агарового блока мицелия F.officinalis площадью 1 см2 и проводят дальнейшее культивирование в течение 30 суток в термостате при температуре 30±1°С.
Полученные пленки иммобилизованного на бактериальной целлюлозе мицелия отделяют от культуральной жидкости на бумажном фильтре, высушивают в сухожаровом шкафу при t=60°С до постоянной массы (рисунок 1, г и е). Определяют абсолютно сухой вес биомассы мицелия (а.с.в.), который составляет 11,4 г/л. Среднесуточная продуктивность составляет 0,38 г/л*сут. Определяют количество белка и агарициновой кислоты в образцах.
Технический результат предлагаемого способа - повышение выхода и продуктивности мицелия - достигается при совместном способе культивирования базидиального гриба F. officinalis и продуцента бактериальной целлюлозы штамма G. hansenii, выращиваемых на синтетической среде. Продуктивность мицелия рассчитывают по количеству белка в образцах иммобилизованного мицелия на бактериальной целлюлозе, следующим образом:
А - количество мицелия в образце, %, В - количество белка в образце мицелия, полученном в монокультуре, %; С - количество белка в иммобилизованном мицелии на бактериальной целлюлозе, полученного в смешанной культуре, %, тогда количество мицелия в нем будет составлять:
А=В×100/С.
Биомасса мицелия F. officinalis в смешанной культуре с продуцентом бактериальной целлюлозы G. hansenii на среде Maltax составляет 9,2 г/л, что выше, чем при культивировании чистой культуры продуцента в 1.9 раза; биомасса мицелия F. officinalis в смешанной культуре с продуцентом бактериальной целлюлозы G. hansenii на синтетической среде составляет - 11.4 г/л, в чистой культуре - 3,5, что выше в 3.2 раза (таблица 1).
На Фиг. 2 представлена электрофореграмма белков экстрактов из образцов мицелия штамма F. officinalis, полученного в различных условиях культивирования: 2 - F. officinalis на среде Maltax, 5%, 3 -иммобилизованный мицелий F. officinalis на матрице бактериальной целлюлозы (среда Maltax. 5%), 4 - иммобилизованный мицелий F. officinalis на матрице бактериальной целлюлозы (синтетическая среда); 5 - F. officinalis на синтетической среде; 1,6 - маркеры молекулярной массы: а - бычий сывороточный альбумин (Мм=67000 Да), 6 - химотрипсиноген А (Мм=25000 Да), в - рибонуклеаза А (13700 Да)
Представленные данные подтверждают идентичность белкового состава в супернатантах,: полученных экстракцией всех исследуемых образцов мицелия (на Фиг. 2: 2, 3, 4 и 5); полосы идентичны, с молекулярной белков массой в пределах 60000-65000 Да.
Пример 2.
Жидкофазное стационарное культивирование чистой культуры мицелия базидиомицета штамма TYV- 2006 Fomitopsis officinalis (Vill.:Fr.) Bond. Et Sing (ВКПМ F-961) и продуцента бактериальной целлюлозы штамма Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008 (ВКПМ В-10547) проводят на синтетической питательной среде следующего состава, г/л: глюкоза - 70.0, дрожжевой экстракт - 5.0, Na2HPO4 - 0.27, K2HPO4 - 0.2, (NH4)2SO4 - 0.3, моногидрат лимонной кислоты - 0.115, рН среды доводят до значения 6,0 -6,5 с помощью 0,1 М раствора NaOH.
Среду разливают в колбы Эрленмейера объемом 250 мл и стерилизуют при остаточном давлении 0,5 атм. в течение 30 минут. Посевной материал продуцента F.officinalis выращивают на агаровой среде Maltax в концентрации 5%. Посев проводят агаровым блоком газонной культуры мицелия F. officinalis размером 10×10×5 мм3. Жидкофазное стационарное культивирование мицелия F.officinalis проводят в термостате при температуре 28±1°С в течение 30 суток.
Пленки культуры, выращенные стационарным способом на жидкой среде, отделяют от культуральной жидкости на бумажном фильтре, высушивают в сухожаровом шкафу при t=60°С до постоянной массы.
Определяют абсолютно сухой вес биомассы мицелия (а.с.в.), которые составляет на синтетической среде 3,5 г/л.
Среднесуточная продуктивность составляет 0,12 г/л*сут.
На Фиг. 1 представлен рост мицелия F. officinalis и пленки, полученные при жидкофазном стационарном культивировании на средах: а - Maltax-10 (концентрация 5%), б - синтетической среде, в - рост и д - пленка - при совместном культивировании с Gluconacetobacter hansenii на среде Maltax-10, г - рост и е - пленка, полученная при совместном культивировании с Gluconacetobacter hansenii на синтетической среде. Определяют количество белка и агарициновой кислоты в образцах.
Claims (1)
- Способ получения иммобилизованного мицелия штамма базидиомицета Fomitopsis officinalis, заключающийся в культивировании штамма базидиомицета TYV-2006 Fomitopsis officinalis ВКПМ F-961 совместно со штаммом-продуцентом бактериальной целлюлозы GH-1/2008 Gluconacetobacter hansenii ВКПМ В-10547 на синтетической среде состава, г/л: глюкоза - 70.0, дрожжевой экстракт - 5.0, Na2HPO4 - 0.27, K2HPO4 - 0.2, (NH4)2SO4 - 0.3, моногидрат лимонной кислоты - 0.115, рН среды 6,5.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2017145642A RU2707541C2 (ru) | 2017-12-25 | 2017-12-25 | Способ получения иммобилизованного мицелия базидиомицета fomitopsis officinalis |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2017145642A RU2707541C2 (ru) | 2017-12-25 | 2017-12-25 | Способ получения иммобилизованного мицелия базидиомицета fomitopsis officinalis |
Publications (3)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2017145642A RU2017145642A (ru) | 2019-06-25 |
RU2017145642A3 RU2017145642A3 (ru) | 2019-06-25 |
RU2707541C2 true RU2707541C2 (ru) | 2019-11-27 |
Family
ID=67002473
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2017145642A RU2707541C2 (ru) | 2017-12-25 | 2017-12-25 | Способ получения иммобилизованного мицелия базидиомицета fomitopsis officinalis |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2707541C2 (ru) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN110295133A (zh) * | 2019-08-02 | 2019-10-01 | 长春理工大学 | 一种细菌纤维素合成菌的筛选方法 |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2330676C1 (ru) * | 2007-01-09 | 2008-08-10 | ГОУ ВПО Росздрава Пятигорская государственная фармацевтическая академия | Способ получения агарициновой кислоты |
RU2360960C1 (ru) * | 2007-12-17 | 2009-07-10 | Федеральное государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Сибирский федеральный университет" | ШТАММ БАЗИДИОМИЦЕТА Fomitopsis Tyv-2006, ИСПОЛЬЗУЕМЫЙ ДЛЯ ПОЛУЧЕНИЯ ПРОТИВООПУХОЛЕВЫХ ПРЕПАРАТОВ |
RU2464307C1 (ru) * | 2011-05-31 | 2012-10-20 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Московский государственный университет пищевых производств" | Штамм бактерии cluconacetobacter hansenii gh-1/2008 - продуцент бактериальной целлюлозы |
-
2017
- 2017-12-25 RU RU2017145642A patent/RU2707541C2/ru active
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2330676C1 (ru) * | 2007-01-09 | 2008-08-10 | ГОУ ВПО Росздрава Пятигорская государственная фармацевтическая академия | Способ получения агарициновой кислоты |
RU2360960C1 (ru) * | 2007-12-17 | 2009-07-10 | Федеральное государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Сибирский федеральный университет" | ШТАММ БАЗИДИОМИЦЕТА Fomitopsis Tyv-2006, ИСПОЛЬЗУЕМЫЙ ДЛЯ ПОЛУЧЕНИЯ ПРОТИВООПУХОЛЕВЫХ ПРЕПАРАТОВ |
RU2464307C1 (ru) * | 2011-05-31 | 2012-10-20 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Московский государственный университет пищевых производств" | Штамм бактерии cluconacetobacter hansenii gh-1/2008 - продуцент бактериальной целлюлозы |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
КИСЕЛЕВА О.В. и др. Глубинное культивирование серно-желтого трутовика с целью получения белковой биомассы. Химия растительного сырья, 2011, т. 4. c. 337-338. * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN110295133A (zh) * | 2019-08-02 | 2019-10-01 | 长春理工大学 | 一种细菌纤维素合成菌的筛选方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2017145642A (ru) | 2019-06-25 |
RU2017145642A3 (ru) | 2019-06-25 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN111018954B (zh) | 具有抗真菌和清除自由基活性的环色-丝-缬-缬-亮肽及制备方法 | |
JP5583927B2 (ja) | C.ヒストリチカムのための哺乳動物源成分を含まない増殖培地 | |
Cui et al. | Characterisation and bioactivity of protein-bound polysaccharides from submerged-culture fermentation of Coriolus versicolor Wr-74 and ATCC-20545 strains | |
Raubitschek | Mechanical versus chemical keratolysis by dermatophytes | |
CN110982868A (zh) | 一种提高灵芝三萜含量的共培养方法及应用 | |
CN113073070A (zh) | 一种长双歧杆菌、其应用及产品 | |
KR101148513B1 (ko) | 천마를 활용한 에르고티오닌 증강조성물 제조방법 | |
RU2707541C2 (ru) | Способ получения иммобилизованного мицелия базидиомицета fomitopsis officinalis | |
Wang et al. | Nutritional value and volatiles of the edible mushroom Leucocalocybe mongolica | |
TWI241344B (en) | Processes for producing an antrodia camphorata culture having pharmacological activity, processes for obtaining a pharmacologically active composition from a culture of A camphorata, products produced thereby and pharmaceutical compositions of cancer... | |
CN106822597B (zh) | 一种发酵中药及其制备方法和用途 | |
KR101114495B1 (ko) | 2단계 방식에 의한 기능성 강화 가공발효녹용 및 그 제조방법 | |
WO2004099427A1 (en) | Method of extracting crude beta glucan from phellinus linteus | |
CN116355816A (zh) | 一种发酵翅果油种子的微生物及其降血脂组合物 | |
CN115161254A (zh) | 一种提高乳酸菌胞外囊泡产量的方法 | |
KR101760174B1 (ko) | 버섯균주를 이용한 우엉 발효산물을 제조하는 방법 | |
Gregori et al. | Growth characteristics and ergosterol content of Grifola frondosa in various solid-state substrates | |
Gao et al. | ACE inhibitory, antitumor and antioxidant activities of submerged culture materials of three medicinal mushrooms | |
JP3783915B2 (ja) | 納豆菌由来の生理活性物質 | |
CN117337969B (zh) | 一种药食同源酵素及其制备方法和应用 | |
CN101711775B (zh) | 一种用于预防和治疗肿瘤的益生菌发酵巴西菇的发酵组合物 | |
US12127507B2 (en) | Active mycelium compound extraction process | |
RU2757086C1 (ru) | Штамм бактерий Bacillus megaterium, обладающий способностью продуцировать пробиотические и антимикробные вещества класса органических кислот | |
CN117025419B (zh) | 一种麦冬内生真菌及其应用 | |
US20240155983A1 (en) | Active Mycelium Compound Extraction Process |