RU2464307C1 - Штамм бактерии cluconacetobacter hansenii gh-1/2008 - продуцент бактериальной целлюлозы - Google Patents
Штамм бактерии cluconacetobacter hansenii gh-1/2008 - продуцент бактериальной целлюлозы Download PDFInfo
- Publication number
- RU2464307C1 RU2464307C1 RU2011121841/10A RU2011121841A RU2464307C1 RU 2464307 C1 RU2464307 C1 RU 2464307C1 RU 2011121841/10 A RU2011121841/10 A RU 2011121841/10A RU 2011121841 A RU2011121841 A RU 2011121841A RU 2464307 C1 RU2464307 C1 RU 2464307C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- strain
- medium
- gluconacetobacter hansenii
- bacterial
- water
- Prior art date
Links
Images
Abstract
Штамм бактерий Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008 получен путем многоступенчатого скрининга из культуры «чайного кваса». Штамм депонирован в ВКПМ под номером В-10547. Штамм продуцирует бактериальную целлюлозу. При культивировании в течение 7 суток на селективных средах выход бактериальной целлюлозы составляет 4,73-6,67 г/л. 12 ил., 5 пр.
Description
Изобретение относится к области микробиологии, касается нового штамма GH-1/2008 Gluconacetobacter hansenii и может быть использовано в медицине, в пищевой и фармацевтической промышленностях.
Целлюлоза синтезируется не только растениями, водорослями, но и некоторыми прокариотами, в том числе и родам Gluconacetobacter [M.Shoda, Y.Sugano. Recent advances in bacterial cellulose production, Biotechnology and Bioprocess Engineering, 10 (2005), 1-8].
Молекулы бактериальной целлюлозы соединены между собой β-1,4-гликозидными связями в виде длинной цепочки. Структура бактериальной целлюлозы очень похожа на структуру целлюлозы растений, но меньше по числу глюкозных остатков, а следовательно, меньше по длине самих молекул [W.Czajia, A.Krystynowicz, S. Bielecki, R.M. Brown Jr. Microbial cellulose - The natural power to heal wounds, Biomaterials, 27 (2006), 145-151].
С помощью рентгеноструктурного анализа установлено, что молекулы бактериальной целлюлозы, синтезируемые бактериями из рода Gluconacetobacter, имеют нитевидную форму. Эти нитевидные молекулы объединяются в мицеллы и формируют микрофибриллы с диаметром 1,5-2 нм. Микрофибриллы объединяются в макрофибриллы с диаметром 50-100 нм. Макрофибриллы бактериальной целлюлозы меньше по размеру в сравнении с таковыми молекулами растений. Длина бактериальной целлюлозы от 1 до 9 µм [Stanislaw Bielecki. Bacterial cellulose/ Alina Krystynowicz, Halina Kalinowska. Institute of Technical Biochemistry, Technical University of Lodz, Stefanowskiego, 2005, c.41].
В настоящее время известно много продуктов на основе бактериальной целлюлозы. В пищевой промышленности на основе целлюлозы получают традиционный продукт "Nata-de Coco", известный в Азии [A. Budhiono, В. Rosidi, H. Taher, M.Iguchi, Kinetic aspects of bacterial cellulose formation in Nata-de-coco culture system, Carbohydra. Polym. 40 (1999) 137 - 143], а также пищевые волокна [S.R. Stephens, J.A. Westland, A.N. Neogi, Method of using bacterial cellulose as a dietary fiber component. US patent 4960763 (1990)]. В медицине используют для получения искусственной кожи [L.F.X. Farah, Process of the preparation of cellulose film, cellulose film produced thereby, artificial skin graft and its use. US patent 4912049 (1990)]. Известны и другие направления использования бактериальной целлюлозы: продукт компании Xylos Corp. (США) - Prima CelTM, продукты BiofillTM и BioprocessTM компании Fzmb GmbH Германии [P.R. Chawla et al.: Fermentative Production of Microbial cellulose, Food Technol. Biotechnol. 47 (2) 107-124 (2009)].
В настоящее время микробиологической промышленностью не освоено производство пищевых и фармацевтических препаратов на основе штаммов Gluconacetobacter hansenii. Отсутствие работ по созданию биотехнологии на основе штаммов вида Gluconacetobacter hansenii сдерживает возможности получения на их основе пищевых и фармацевтических препаратов.
Предлагается применение штамма Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008 в качестве продуцента бактериальной целлюлозы, используемый в медицине, в пищевой и фармацевтической промышленностях.
Техническим результатом изобретения является штамм Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008 (ВКПМ В-10547), продуцент бактериальной целлюлозы.
Штамм Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008 (ВКПМ В-10547) получен путем многоступенчатого скрининга в ГОУ ВПО Московский государственный университет прикладной биотехнологии (МГУПБ) из культуры «чайного кваса».
Штамм Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008 идентифицирован по морфологическим, культурально-биохимическим свойствам и генетическим характеристикам и имеет следующие признаки:
Штамм - облигатный аэроб, клетки цилиндрические размерами 0,6-1,2×1-3 мкм, расположенные поодиночке, в парах, в коротких цепочках или в небольших кластерах [Фиг.1]; спор не образуют; грамотрицательный, клетки подвижные; колонии бледные, пигменты не продуцирует.
Штамм Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008 ВКПМ В-10547 на различных питательных средах лучше образует бактериальную целлюлозу на среде, содержащей сахарозу, чем на среде, содержащей глюкозу. Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008 не растет на среде с 3% этанола и в присутствии 4-8% уксусной кислоты. Этанол является стимулятором синтеза целлюлозы при концентрации 0,3-1,5%, но при более высоких концентрациях ингибирует процесс биосинтеза целлюлозы. Стимулятором синтеза целлюлозы является кокосовое молоко при концентрации менее 0,5%.
Клетки штамма Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008 могут расти без добавления уксусной кислоты. Штамм растет при рН от 2.5 до 6.5, оптимальным рН является интервал от 4.0 до 6.0.
Штамм Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008 ВКПМ В-10547 плохо растет на плотных питательных средах, содержание агара в плотной среде не должно быть выше 15 г/л [Фиг.2].
Оптимальной средой для роста и размножения штамма является питательная среда следующего состава (г/л): сахароза - 30 г, (NH4)2SO4 - 3 г, K2НРO4 - 2 г, дрожжевой экстракт - 5 г, Na2HPO4 - 2,7 г, моногидрат лимонной кислоты - 1,15 г, спирт 1%, кокосовое молоко - 0,1%, вода - 1000 мл.
Штамм идентифицирован до вида с помощью анализа 16S РНК.
При секвенировании вариабельных участков 16S РНК получена собранная нуклеотидная последовательность для штамма:
Последовательности были выровнены с соответствующими последовательностями ближайших видов бактерий, доступными из базы данных GenBank. По результатам проведенного анализа секвенсов вариабельных участков 16S рДНК штамм наиболее близок к виду Gluconacetobacter hansenii (99%).
Штамм растет на известных средах, рекомендуемых для рода Gluconacetobacter: HS (глюкоза: 20 г, пептон: 5 г, дрожжевой экстракт: 5 г, Na2HPO4: 2,7, моногидрат лимонной кислоты: 1,15, вода 1000 мл), GY (глюкоза: 100 г, дрожжевой экстракт: 10 г, вода: 1000 мл) [Don J. Brenner, Noel R.Krieg, James T.Staley. Bergey's Manual of Systematic Bacteriology - second edition - volume 2 - part C- The Alpha -, Beta-, Delta-, and Epsilonproteobacteria. - Spinger 2005 - p.41-96.]. При культивировании в течение 7 суток на среде HS биомасса сухой полученной пленки составляет 2,17 г/л, на среде GY составляет 6,83 г/л.
Методом атомно-силовой микроскопии изучена структура пленки бактериальной целлюлозы, синтезируемой штаммом Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008. Установлено, что штамм способен образовывать тонкие нити полимера целлюлозы размером 0,5-3 нм с иммобилизованными на них клетками продуцента [Фиг.3].
Для получения пленок с различными биомассами можно использовать следующие селективные среды:
Среда Н0: сахароза: 30 г, Nа2НРO4: 2.7 г, K2НРO4: 2 г, (NH4)2SO4: 3 г, дрожжевой экстракт: 5 г, лимонная кислота: 1,15 г, уксусная кислота 9%: до рН 4.62, вода: 1000 мл.
Среда H1: сахароза: 30 г, Nа2НРO4: 2.7 г, K2НРO4: 2 г, (NH4)2SO4: 3 г, дрожжевой экстракт: 5 г, лимонная кислота: 1,15 г, вода: 1000 мл.
Среда Н2: сахароза: 30 г, Nа2НРO4: 2.7 г, K2НРO4: 2 г, (NH4)2SO4: 3 г, дрожжевой экстракт: 5 г, лимонная кислота: 1,15 г, уксусная кислота 9% до рН 4.62, спирт 1%, вода: 1000 мл.
Среда Н3: фруктоза: 30 г, Nа2НРO4: 2.7 г, K2НРO4: 2 г, (NH4)2SO4: 3 г, дрожжевой экстракт: 5 г, лимонная кислота: 1,15 г, вода: 1000 мл.
Среда Н4: сахароза: 30 г, Nа2НРO4: 2.7 г, K2НРO4: 2 г, (NH4)2SO4: 3 г, дрожжевой экстракт: 5 г, лимонная кислота: 1,15 г, кокосовое молоко: 1 г, вода: 1000 мл.
Среда Н5: сахароза: 30 г, Nа2НРO4: 2.7 г, K2НРO4: 2 г, (NH4)2SO4: 3 г, дрожжевой экстракт: 5 г, лимонная кислота: 1,15 г, кокосовое молоко: 1 г, спирт 1%, вода: 1000 мл.
Среда Т1: cахароза: 30 г, черный чайный экстракт: 4 г, вода 1000 мл.
Среда А1: сахароза: 30 г, трутовик лакированный (Линьчжи) 65%+ кодонопсис мелковолосистый 35%: 4 г, вода 1000 мл.
Среда А5 сахароза: 30 г, Adenosma glutinosum 90%+ лакрица 10%: 4 г, вода 1000 мл.
Среда А7: сахароза: 30 г, горец многоцветковый: 4 г, вода 1000 мл.
Среда А12: сахароза: 30 г, кукурузные рыльца: 4 г, вода 1000 мл.
На фиг.1-8 представлены следующие иллюстрации:
Фиг.1. Морфология клетки и микроструктура волокна целлюлозы штамма под атомно-силовым и световым микроскопами
1a - под световым микроскопом
1б, 1в - под атомно-силовым микроскопом
А - клетки бактерии Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008 ВКПМ В-10547;
Б - волокна целлюлозы.
Фиг.2. Характер роста штамма Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008 В-10547 на полужидкой и жидкой средах
2а - на полужидкой среде
2б - на жидкой среде.
Фиг.3. Микроструктура волокна целлюлозы штамма Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008 В-10547 в 2D и 3D моделях
3а - 2D модель
3б - 3D модель.
Фиг.4. Пленка Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008, полученная при культивировании на среде А 12 в течение 7 суток.
Фиг.5. Пленка Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008, полученная при культивировании на среде А7 в течение 7 суток.
Фиг.6. Пленка Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008, полученная при культивировании на среде H1 в течение 7 суток.
Фиг.7. Пленка Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008, полученная при культивировании на среде Н4 в течение 7 суток.
Фиг.8. Пленка Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008, полученная при культивировании на среде Н5 в течение 7 суток.
Пример 1: Культуру штамма Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008 выращивают в течение 3-7 суток на среде А12 (сахароза: 30 г, кукурузные рыльца: 4 г, вода 1000 мл) при 28±2°С. Питательные среды стерилизуют в автоклаве при 0.5 атм (110°С) в течение 20 минут. После окончания культивирования полученную пленку отделяют от питательной среды, добавляют дистиллированную воду в отношении 1:10 (1 г сырой пленки:10 мл дистиллированной воды) и стерилизуют в автоклаве при 1 атм (121°С) в течение 5 минут. Пленки могут долго сохраняться в дистиллированной воде. При такой форме хранения пленки питательную среду, на которой выращивали штамм, не используют. Биомасса полученной пленки составляет 4.73 г/л [Фиг.4].
Пример 2: Культуру штамма Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008 выращивают в течение 3-7 суток на среде А7 (сахароза: 30 г, горец многоцветковый: 4 г, вода 1000 мл.) при 28±2°С. Питательную среду стерилизуют в автоклаве при 0.5 атм (110°С) в течение 20 минут. После окончания культивирования полученную пленку отделяют от питательной среды, добавляют дистиллированную воду в отношении 1:10 (1 г сырой пленки:10 мл дистиллированной воды) и стерилизуют в автоклаве при 1 атм (121°С) в течение 5 минут. Пленки могут долго сохраняться в дистиллированной воде. При такой форме хранения пленки питательную среду, на которой выращивали штамм, не используют. Биомасса полученной пленки составляет 4.93 г/л при культивировании в течение 7 суток [Фиг.5].
Пример 3: Культуру штамма Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008 выращивают в течение 7-21 суток на среде H1 (сахароза: 30 г, Nа2НРO4: 2.7 г, K2НРO4: 2 г, (NH4)2SO4: 3 г, дрожжевой экстракт: 5 г, лимонная кислота: 1,15 г, вода: 1000 мл) при 28±2°С. Питательную среду стерилизуют в автоклаве при 0.5 атм (110°С) в течение 20 минут. После окончания культивирования полученную пленку отделяют от питательной среды, промывают под проточной водой. После промывания полученные пленки нагревают в растворе NaOH 0,5H в течение 20 минут при температуре 80°С для уничтожения и удаления клеток. Для нейтрализации NaOH 0.5H используют 0.5H уксусную кислоту. Рекомендуется стерилизовать полученные пленки в автоклаве при 1 атм (121 градусов) в течение 15 минут. До стерилизации добавляют дистиллированную воду в отношении 1:10 (1 г сырой пленки:10 мл дистиллированной воды). Пленки сохраняют в дистиллированной воде или высушивают до постоянной массы. Биомасса полученной пленки составляет 5.57 г/л при культивировании в течение 7 суток [фиг.6].
Пример 4: Культуру штамма Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008 выращивают в течение 7-21 суток на среде Н4 (сахароза: 30 г, Nа2НРO4: 2.7 г, K2НРO4: 2 г, (NH4)2SO4: 3 г, дрожжевой экстракт: 5 г, лимонная кислота: 1,15 г, кокосовое молоко: 1 г, вода: 1000 мл) при 28±2°С. Питательную среду стерилизуют в автоклаве при 0.5 атм (110°С) в течение 20 минут. После окончания культивирования полученную пленку отделяют от питательной среды, промывают под проточной водой. После промывания полученные пленки нагревают в растворе NaOH 0,5H в течение 20 минут при температуре 80°С для уничтожения и удаления клеток. Для нейтрализации NaOH 0,5Н используют раствор 0.5Н уксусной кислоты. Рекомендуют стерилизовать полученные пленки в автоклаве при 1 атм (121°С) в течение 15 минут. До стерилизации добавляют дистиллированную воду в отношении 1:10 (1 г сырой пленки:10 мл дистиллированной воды). Пленки сохраняют в дистиллированной воде или высушивают до постоянной массы. Биомасса полученной пленки составляет 5.17 г/л при культивировании в течение 7 суток [фиг.7].
Пример 5: Культуру штамма Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008 выращивают в течение 7-21 суток на среде Н5 (сахароза: 30 г, Nа2НРO4: 2.7 г, K2НРO4: 2 г, (NH4)2SO4: 3 г, дрожжевой экстракт: 5 г, лимонная кислота: 1,15 г, кокосовое молоко: 1 г, спирт 1%, вода: 1000 мл) при 28±2°С. Спирт добавляют после стерилизации. Питательную среду стерилизуют в автоклаве при 0.5 атм (110°С) в течение 20 минут. После окончания культивирования полученную пленку отделяют от питательной среды, промывают под проточной водой. После промывания полученные пленки нагревают в растворе NaOH 0,5Н в течение 20 минут при температуре 80°С для уничтожения и удаления клеток. Для нейтрализации NaOH 0,5Н используют раствор 0,5Н уксусной кислоты. Рекомендуют стерилизовать полученные пленки в автоклаве при 1 атм (121°С) в течение 15 минут. До стерилизации добавляют дистиллированную воду в отношении 1:10 (1 г сырой пленки:10 мл дистиллированной воды). Пленки сохраняют в дистиллированной воде или высушивают до постоянной массы. Биомасса полученной пленки составляет 6.67 г/л при культивировании в течение 7 суток [фиг.8].
Claims (1)
- Штамм бактерии Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008 ВКПМ В-10547 - продуцент бактериальной целлюлозы.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2011121841/10A RU2464307C1 (ru) | 2011-05-31 | 2011-05-31 | Штамм бактерии cluconacetobacter hansenii gh-1/2008 - продуцент бактериальной целлюлозы |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2011121841/10A RU2464307C1 (ru) | 2011-05-31 | 2011-05-31 | Штамм бактерии cluconacetobacter hansenii gh-1/2008 - продуцент бактериальной целлюлозы |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2464307C1 true RU2464307C1 (ru) | 2012-10-20 |
Family
ID=47145392
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2011121841/10A RU2464307C1 (ru) | 2011-05-31 | 2011-05-31 | Штамм бактерии cluconacetobacter hansenii gh-1/2008 - продуцент бактериальной целлюлозы |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2464307C1 (ru) |
Cited By (8)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2523606C1 (ru) * | 2013-03-12 | 2014-07-20 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарёва" | ШТАММ Gluconacetobacter sucrofermentans -ПРОДУЦЕНТ БАКТЕРИАЛЬНОЙ ЦЕЛЛЮЛОЗЫ |
| RU2535983C1 (ru) * | 2013-12-17 | 2014-12-20 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Российский университет дружбы народов" (РУДН) | ПРОДУЦЕНТ ИНГИБИТОРА ВОЗБУДИТЕЛЯ БАКТЕРИАЛЬНОЙ ПЯТНИСТОСТИ ТЫКВЕННЫХ КУЛЬТУР (Acidovorax citrulli) |
| RU2536973C1 (ru) * | 2013-12-06 | 2014-12-27 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарёва" | Способ получения бактериальной целлюлозы |
| RU2568605C1 (ru) * | 2014-12-11 | 2015-11-20 | Федеральное Государственное Автономное Образовательное Учреждение Высшего Профессионального Образования "Сибирский Федеральный Университет" | ШТАММ БАКТЕРИИ Komagataeibacter xylinus - ПРОДУЦЕНТ БАКТЕРИАЛЬНОЙ ЦЕЛЛЮЛОЗЫ |
| RU2597291C1 (ru) * | 2015-07-16 | 2016-09-10 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт проблем химико-энергетических технологий Сибирского отделения РАН (ИПХЭТ СО РАН) | Способ получения бактериальной целлюлозы |
| RU2654675C2 (ru) * | 2012-12-28 | 2018-05-21 | Кендзи ТАДЗИМА | Бактериальная целлюлоза и продуцирующая ее бактерия |
| RU2681281C1 (ru) * | 2018-07-20 | 2019-03-05 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Национальный исследовательский Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарёва" | Штамм бактерии Komagataeibacter hansenii - продуцент бактериальной целлюлозы |
| RU2707541C2 (ru) * | 2017-12-25 | 2019-11-27 | федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский университет) | Способ получения иммобилизованного мицелия базидиомицета fomitopsis officinalis |
Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2141530C1 (ru) * | 1998-05-05 | 1999-11-20 | Санкт-Петербургский государственный университет | Состав питательной среды культивирования acetobacter xylinum для получения бактериальной целлюлозы (варианты) |
| CN101503663A (zh) * | 2008-12-25 | 2009-08-12 | 四川大学 | 1株葡糖醋杆菌及其筛选纯化方法 |
| CN101608167A (zh) * | 2009-01-20 | 2009-12-23 | 海南椰国食品有限公司 | 木葡糖酸醋杆菌属菌株及其选育和生产细菌纤维素的方法 |
-
2011
- 2011-05-31 RU RU2011121841/10A patent/RU2464307C1/ru not_active IP Right Cessation
Patent Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2141530C1 (ru) * | 1998-05-05 | 1999-11-20 | Санкт-Петербургский государственный университет | Состав питательной среды культивирования acetobacter xylinum для получения бактериальной целлюлозы (варианты) |
| CN101503663A (zh) * | 2008-12-25 | 2009-08-12 | 四川大学 | 1株葡糖醋杆菌及其筛选纯化方法 |
| CN101608167A (zh) * | 2009-01-20 | 2009-12-23 | 海南椰国食品有限公司 | 木葡糖酸醋杆菌属菌株及其选育和生产细菌纤维素的方法 |
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| CHAWLA P.R. ЕТ AL. Microbial Cellulose: Fermentative Production and Applications // Food Technol. Biotechnol. 47 (2) 107-124 (2009). Найдено в Интернете:<hrcak.srce.hr>file/59853>. * |
Cited By (8)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2654675C2 (ru) * | 2012-12-28 | 2018-05-21 | Кендзи ТАДЗИМА | Бактериальная целлюлоза и продуцирующая ее бактерия |
| RU2523606C1 (ru) * | 2013-03-12 | 2014-07-20 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарёва" | ШТАММ Gluconacetobacter sucrofermentans -ПРОДУЦЕНТ БАКТЕРИАЛЬНОЙ ЦЕЛЛЮЛОЗЫ |
| RU2536973C1 (ru) * | 2013-12-06 | 2014-12-27 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарёва" | Способ получения бактериальной целлюлозы |
| RU2535983C1 (ru) * | 2013-12-17 | 2014-12-20 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Российский университет дружбы народов" (РУДН) | ПРОДУЦЕНТ ИНГИБИТОРА ВОЗБУДИТЕЛЯ БАКТЕРИАЛЬНОЙ ПЯТНИСТОСТИ ТЫКВЕННЫХ КУЛЬТУР (Acidovorax citrulli) |
| RU2568605C1 (ru) * | 2014-12-11 | 2015-11-20 | Федеральное Государственное Автономное Образовательное Учреждение Высшего Профессионального Образования "Сибирский Федеральный Университет" | ШТАММ БАКТЕРИИ Komagataeibacter xylinus - ПРОДУЦЕНТ БАКТЕРИАЛЬНОЙ ЦЕЛЛЮЛОЗЫ |
| RU2597291C1 (ru) * | 2015-07-16 | 2016-09-10 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт проблем химико-энергетических технологий Сибирского отделения РАН (ИПХЭТ СО РАН) | Способ получения бактериальной целлюлозы |
| RU2707541C2 (ru) * | 2017-12-25 | 2019-11-27 | федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации (Сеченовский университет) | Способ получения иммобилизованного мицелия базидиомицета fomitopsis officinalis |
| RU2681281C1 (ru) * | 2018-07-20 | 2019-03-05 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Национальный исследовательский Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарёва" | Штамм бактерии Komagataeibacter hansenii - продуцент бактериальной целлюлозы |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| RU2464307C1 (ru) | Штамм бактерии cluconacetobacter hansenii gh-1/2008 - продуцент бактериальной целлюлозы | |
| Trovatti et al. | Gluconacetobacter sacchari: an efficient bacterial cellulose cell-factory | |
| RU2654675C2 (ru) | Бактериальная целлюлоза и продуцирующая ее бактерия | |
| Ağçeli et al. | Nano-sized biopolymer levan: Its antimicrobial, anti-biofilm and anti-cancer effects | |
| Bhatia et al. | Stepwise bioprocess for exopolysaccharide production using potato starch as carbon source | |
| Souza et al. | Kinetic study of a bacterial cellulose production by Komagataeibacter rhaeticus using coffee grounds and sugarcane molasses | |
| RU2568605C1 (ru) | ШТАММ БАКТЕРИИ Komagataeibacter xylinus - ПРОДУЦЕНТ БАКТЕРИАЛЬНОЙ ЦЕЛЛЮЛОЗЫ | |
| Prudnikova et al. | The new strain of acetic acid bacteria Komagataeibacter xylinus B-12068–producer of bacterial cellulose for biomedical applications | |
| RU2639557C1 (ru) | ШТАММ БАКТЕРИИ Xanthomonas campestris - ПРОДУЦЕНТ КСАНТАНА | |
| Moosavi-Nasab et al. | Fermentative production of dextran using food industry wastes | |
| JP5969390B2 (ja) | フコース含有細菌バイオポリマー | |
| RU2523606C1 (ru) | ШТАММ Gluconacetobacter sucrofermentans -ПРОДУЦЕНТ БАКТЕРИАЛЬНОЙ ЦЕЛЛЮЛОЗЫ | |
| Panesar et al. | Evaluation of Acetobacter strain for the production of microbial cellulose | |
| Zhu et al. | Combined effects of nitrogen levels and Daphnia culture filtrate on colony size of Scenedesmus obliquus | |
| RU2714638C1 (ru) | Штамм бактерии Xanthomonas theicola - продуцент ксантана | |
| RU2681281C1 (ru) | Штамм бактерии Komagataeibacter hansenii - продуцент бактериальной целлюлозы | |
| CN102373166A (zh) | 高产聚-β-羟基丁酸的苏云金芽孢杆菌（Bacillus thuringiensis）PX-95菌株及其用途 | |
| WO2022136246A1 (en) | Bacterial strains for biocellulose production | |
| CN111971395B (zh) | 子囊菌的发酵方法 | |
| Ozkan | Screening diatom strains belonging to Cyclotella genus for chitin nanofiber production under photobioreactor conditions: Chitin productivity and characterization of physicochemical properties | |
| Rajendran et al. | Biocompatible nanofiber from exopolysaccharide produced by moderately halophilic Paenibacillus alvei | |
| Mohammad et al. | Optimization of bacterial cellulose production using Plackett-Burman and response surface methodology | |
| Awang et al. | Isolation and identification of bacteria-producing cellulose from tropical fruit for halal capsule application | |
| Debnath et al. | Engineering strategies and applications of cyanobacterial exopolysaccharides: A review on past achievements and recent perspectives | |
| Rodrigues et al. | A green approach to biomass residue valorization: Bacterial nanocellulose production from agro-industrial waste |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20140601 |