RU2568605C1 - ШТАММ БАКТЕРИИ Komagataeibacter xylinus - ПРОДУЦЕНТ БАКТЕРИАЛЬНОЙ ЦЕЛЛЮЛОЗЫ - Google Patents
ШТАММ БАКТЕРИИ Komagataeibacter xylinus - ПРОДУЦЕНТ БАКТЕРИАЛЬНОЙ ЦЕЛЛЮЛОЗЫ Download PDFInfo
- Publication number
- RU2568605C1 RU2568605C1 RU2014150288/10A RU2014150288A RU2568605C1 RU 2568605 C1 RU2568605 C1 RU 2568605C1 RU 2014150288/10 A RU2014150288/10 A RU 2014150288/10A RU 2014150288 A RU2014150288 A RU 2014150288A RU 2568605 C1 RU2568605 C1 RU 2568605C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- bacterial cellulose
- bacterial
- strain
- medium
- cellulose
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Изобретение относится к области биотехнологии. Штамм Komagataeibacter xylinus депонирован во Всероссийской коллекции промышленных микроорганизмов (ВКПМ) под регистрационным номером ВКПМ В-12068. Бактериальная целлюлоза может быть использована для восстановительной хирургии, тканевой регенерации и восстановления кожных покровов. Изобретение позволяет повысить выход бактериальной целлюлозы. 7 ил., 4 пр.
Description
Изобретение относится к области биотехнологии, касается нового штамма - продуцента бактериальной целлюлозы Komagataeibacter xylinus и может быть использовано для восстановительной хирургии, реконструкции дефектов кожных покровов и закрытия кожных ран, а также для направленной тканевой регенерации в стоматологии, общей и челюстно-лицевой хирургии, для клеточной и тканевой инженерии в качестве опорных матриксов, с возможностью депонирования и доставки лекарственных препаратов. Материалы предназначены для длительного контакта с раневой поверхностью.
Целлюлоза синтезируется высшими и низшими фототрофными организмами, а также прокариотами родов Gluconacetobacter, Acetobacter, Komagataeibacter [Yamada Y., Yukphan P., Lan Vu H. Т., Muramatsu Y., Ochaikul D., Tanasupawat S., Nakagawa Y. Description of Komagataeibacter gen. nov., with proposals of new combinations (Acetobacteraceae) // J. Gen. Appl. Microbiol. - 2012. - 58, 397-404; Tanaka M, Murakami S, Shinke R, Aoki K. Genetic characteristics of cellulose-forming acetic acid bacteria identified phenotypically as Gluconacetobacter xylinus // Biosci Biotechnol Biochem. - 2000. - 64 (4). - P. 757-760].
Целлюлоза - внеклеточный полисахарид и, за исключением бактерий и оболочников, она является частью клеточной стенки у растений, водорослей и слизевиков (Dictyostelium) [Saxena I.М., Brown R.M. Cellulose biosynthesis: current views and evolving concepts // Annals of botany. - 2005. - T. 96. - №. 1. - C. 9-21].
Бактериальная целлюлоза предназначена для различных сфер применения, таких как: пищевая и бумажная промышленность, медицина и фармакология.
Бактериальная целлюлоза не токсична, обладает высокой биологической совместимостью, не вызывает аллергии и физического отторжения. Плоская гель-пленка бактериальной целлюлозы - это идеальная повязка при пересадке кожи, лечении ран, послеоперационных швов и язв, а в сочетании с лекарственными препаратами бактериальная целлюлоза эффективна для терапии гнойных воспалений, потертостей и пролежней и др.
Бактериальная целлюлоза предназначена для использования в реконструктивной медицине в качестве имплантатов [ЕР 2070557, МПК A61F 2/28, A61L 24/08, A61L 27/20, опубл. 17.06.2009; RU 2476187, МПК A61F 2/06, A61F 2/24, A61L 27/50, A61L 27/20, опубл. 27.02.2013]; раневых покрытий и искусственной кожи [RU 2462514, МПК С12Р 19/04, A61L 15/28, C12R 1/02, опубл. 27.09.2012; US 4.912.049, МПК A61L 26/00, A61L 27/00, A61L 27/20, A61L 27/60, A63B 51/02, B01D 71/10, С12Р 19/04, D06N 3/02, опубл. 27.03.1990; US 5.846.213, МПК A61F 13/00, A61L 15/28, B01D 39/18, опубл. 08.12.1998], носителя лекарственных препаратов [US 2011/0286948, МПК A61K 38/18, A61K 38/43, A61K 47/38, A61K 8/18, A61Q 3/00, С08В 1/00, С12Р 19/041, опубл. 24.11.2011]; гелей и гидрогелей [RU 2298022, МПК C08L 33/00, C08L 39/00, C08L 101/14, опубл. 27.04.2007], клеточной и тканевой инженерии [RU 2460785, МПК C12N 5/07, C08L 1/00, D01F 2/00, опубл. 10.09.2012], косметологии и др.
Расширение масштабов и областей применения бактериальной целлюлозы напрямую зависят от наличия продуктивных штаммов, обеспечивающих высокие выходы этого ценного биотехнологического продукта. С этой целью выделяются новые штаммы - продуценты бактериальной целлюлозы и совершенствуются способы их выращивания для эффективной продукции бактериальной целлюлозы.
Известны питательные среды [патент РФ №2141530, МПК С12Р 19/02, C12N 1/20, опубл. 20.11.1999], содержащие в качестве источника углерода для получения бактериальной целлюлозы с использованием штамма Acetobacter xylinum отходы производства сахара ВКМ N В-880. Выход бактериальной целлюлозы после культивирования на жидкой питательной среде в течение 5-10 суток составляет 7-16 г.
В качестве продуцента бактериальной целлюлозы известен штамм бактерии Gluconacetobacter hansenii GH-1/2008 [RU 2464307, МПК C12N 1/20, C12P 19/04, C12R 1/01, опубл. 20.10.2012], который получен путем многоступенчатого скрининга из культуры «чайного кваса». Штамм депонирован в ВКПМ под номером В-10547. Штамм продуцирует бактериальную целлюлозу при культивировании на средах, содержащих в качестве источника углерода сахарозу или фруктозу. При культивировании в течение 7 суток на селективных средах выход бактериальной целлюлозы составляет 4,73-6,67 г/л.
Известен более эффективный состав питательной среды для получения бактериальной целлюлозы [RU 2189394, МПК С12Р 19/04, C12N 1/20, C12R 1:02, опубл. 20.09.2002], содержащий в качестве источника углерода гидролизаты древесины, торфа, сульфитный щелок целлюлозно-бумажного производства, нестандартное сырье плодово-ягодных производств. Выход бактериальной целлюлозы в культуре Acetobacter xylinum ВКМ N В-880 за 5-10 суток выращивания в 100 мл колбах на 60 мл среды составляет 9,8-11,3 г, что соответствует выходу бактериальной целлюлозы 163,3-188,3 г/л.
Недостатком вышеописанных изобретений является низкий выход бактериальной целлюлозы.
Целью изобретения является выявление нового продуктивного штамма, способного устойчиво продуцировать бактериальную целлюлозу с высокими выходами на средах, содержащих различные источники углерода.
Техническим результатом изобретения является новый штамм Komagataeibacter xylinus (ВКПМ В-12068) - продуцент бактериальной целлюлозы.
Изобретение поясняется чертежами. На фиг. 1 представлены микрофотографии Komagataeibacter xylinus В-12068 (×1000, окраска метиленовым синим). На фиг. 2 представлены колонии бактерий Komagataeibacter xylinus В-12068 на агаризованной Hestrin-Schramm среде. На фиг. 3 представлено фото поверхностной культуры Komagataeibacter xylinus В-12068 в статическом режиме в колбах на Hestrin-Schramm среде с различными источниками углерода: а - мальтоза; б - глюкоза; в - галактоза. На фиг. 4 представлено фото бактериальной целлюлозы при поверхностном (а) и глубинном (б и в) культивировании штамма Komagataeibacter xylinus В-12068 в колбах на Hestrin-Schramm среде с глюкозой. На фиг. 5 представлены РЭМ снимки бактериальной целлюлозы при поверхностном культивировании штамма Komagataeibacter xylinus В-12068 в статических условиях в кюветах на Hestrin-Schramm среде с глюкозой. На фиг. 6 дан элементный состав бактериальной целлюлозы, продуцируемой Komagataeibacter xylinus В-12068. На фиг. 7. представлены рентгенограммы образцов бактериальной целлюлозы, продуцируемой Komagataeibacter xylinus В-12068, полученной в статическом режиме: 1 и 2 (степень кристалличности 60 и 67%) и 3 - в динамическом режиме (степень кристалличности 30%).
Заявляемое техническое решения отличается тем, что в качестве продуцента используют новый штамм Komagataeibacter xylinus В-12068, способный утилизировать различные источники углерода и при культивировании глубинным динамическим и поверхностным статическим режимами обеспечивающий выходы получаемого продукта - бактериальной целлюлозы - от 200 до 350 г/л со степенью кристалличности соответственно 30 и 60-67%.
Признаки, отличающие заявляемое техническое решение, не выявлены в других технических решениях при изучении данной и смежной областей техники и, следовательно, обеспечивают заявляемому решению соответствие критериям «новизна» и «изобретательский уровень».
Заявляемый штамм выделен из природной ассоциации Medusomyces gisevii J. Lindau (чайный гриб) селекционным путем на стандартной среде Hestrin-Schramm, содержащей, (в %): глюкозы - 2,0, пептона - 0,5, дрожжевого экстракта - 0,5, Na2HPO4 - 0,27, лимонной кислоты - 0,115 [Hestrin S., Schramm М. Synthesis of cellulose by Acetobacter xylinum. 2. Preparation of freeze-dried cells capable of polymerizing glucose to cellulose. // Biochem. J. - 1954. - V. 58(2). - P. 345-352].
Заявляемый штамм Komagataeibacter xylinus депонирован во Всероссийской коллекции промышленных микроорганизмов (ВКПМ), коллекционный номер ВКПМ В-12068.
Идентификация штамма произведена на основании морфологических, биохимических, генетических и ростовых характеристик [Bergey′s Manual of Systematic Bacteriology. Second Edition. Volume 2: The Proteobacteria. Part C: The Alpha-, Beta-, Delta-, and Epsilonproteobacteria / Ed. George M. Garrity. - Springer, 2005. - p. 72-77].
Генетические характеристики:
Клонирован и охарактеризован ДНК фрагмент 1448 н.п. (депонирован в базе данных GenBank NCBI под номером KJ000081), включающий нуклеотидную последовательность гена, кодирующего 16S рРНК:
Культурально-морфологические характеристики:
Бактерии палочковидные, неподвижные, эндоспор не образуют (фиг. 1); окраска по Граму - отрицательная; расположение одиночное или парное; размеры: 0.4-0.6×1.0-1,5 µм. Границы физиологического действия pH в диапазоне 2.5-6.5, оптимальные значения 3,5-4,5. Штамм сохраняет способность к росту в диапазоне температур 20-37°С, оптимум роста 28-30°С.
Облигатный аэроб. Каталазоположительный, оксидазоотрицательный. Не обладает гидролитическими ферментами: желатину не разжижает, крахмал не гидролизует. Нитраты не восстанавливает; индол, сероводород - не образует. Хемоорганотроф. Нуждается в факторах роста (дрожжевой экстракт). На среде Hestrin-Schramm способен в качестве источника углерода использовать глюкозу, сахарозу, фруктозу, мальтозу. Рост на среде с галактозой и маннитолом - незначительный. Не растет на АЕ среде в присутствии 3% этанола и 6% уксусной кислоты. Не растет в присутствии 30% D-глюкозы. Чувствителен к NaCl выше 0,5% концентрации.
В жидкой питательной среде Hestrin-Schramm с глюкозой, сахарозой или мальтозой в статических условиях на поверхности культуральной жидкости образует плотную однородную гелеобразную пленку из микрофибрилл целлюлозы.
На среде Hestrin-Schramm с другими источниками углерода (галактоза, маннитол) образует слабо выраженную рыхлую пленку, распадающуюся на хлопья.
Колонии на плотной среде Hestrin-Schramm мелкие (1-3 мм), выпуклые, кремовато-серого цвета, непрозрачные, пленкообразные, с ровным или слегка волнистым краем (фиг. 2). Не пигментированные.
В составе жирных кислот штамма на питательной среде Hestrin-Schramm идентифицировано 36 жирных кислот; преобладают пальмитиновая (27,88%), цис-вакценовая (20,1%) и стеариновая (12.51%) кислоты.
Ростовые характеристики:
Культивирование бактерий проводят в стерильном режиме с использованием 0,5-1,0 литровых колб, плоских стеклянных или металлических кювет, заполненных средой Hestrin-Schramm на 30-50% по объему, в статических условиях в термостате и в динамических условиях на термостатируемой качалке при 29-30°С. В зависимости от условий культивирования получаемая бактериальная целлюлоза может быть в виде гель-пленки, сплетенных нитей, ворса, суспензии и др. (фиг. 3).
При культивировании на жидкой среде Hestrin-Schramm в течение 7 суток в конических колбах на 250 мл с объемом питательной среды 100 мл (начальная рН=6.0, температура инкубирования 30°С) в статических условиях образуется целлюлозная плотная пленка: на глюкозе 105,8 г/л; на сахарозе 101,2 г/л; на мальтозе 72,6 г/л (фиг. 4).
При поверхностном культивировании на жидкой среде Hestrin-Schramm на глюкозе от 3 до 7 суток в плоских кюветах при высоте налива среды - 1,0-1,5 см (начальная рН=6.0, температура инкубирования 30°С) в статических условиях образуется целлюлозная плотная гель-пленка массой от 200 до 350 г/л.
При культивировании в глубинной культуре с перемешиванием (динамический режим) в стеклянных колбах с коэффициентом заполнения 0,3-0,5 на термостатируемой качалке (120 об./мин) из целлюлозы образуются сферические, нитевидные, жгутовидные структуры с выходами бактериальной целлюлозы до 133,5 г/л.
Для реализации режима синтеза бактериальной целлюлозы штамм Komagataeibacter xylinus В-12068 выращивают в периодическом режиме выращивания (статическом поверхностном или глубинном динамическом) на среде с источником углерода - сахарами.
Для культивирования штамма применимы среды следующего состава:
Среда 1: для получения бактериальной целлюлозы включает: источники углерода - глюкозу, азота - пептон, витаминов - дрожжевой экстракт, минеральных добавок - Na2HPO4, дополнительный источник углерода - моногидрат лимонной кислоты и воду при следующем соотношении ингредиентов, вес.%:
глюкоза - 2,0;
пептон - 0,5;
дрожжевой экстракт - 0,5;
Na2HPO4 - 0,27;
моногидрат лимонной кислоты - 0,115;
вода - остальное.
Среда 2: содержит глюкозу, пептон, дрожжевой экстракт, безводный K2HPO4 и воду при следующем соотношении ингредиентов, вес.%:
глюкоза - 0,5;
пептон - 0,5;
дрожжевой экстракт - 0,5;
K2HPO4 (безводный) - 0,1;
вода - остальное.
Среда 3: содержит 100 г сахарозы и 500 мл экстракта черного чая, полученного мацерацией 2 г чайного листа при температуре 70-90°С в течение 15 мин, после полного растворения сахарозы объем доводят до 1 л.
Культивирование проводят в течение 7 суток при температуре 30°С, начальное значение рН=6.0, в статических условиях поверхностным способом и в динамических условиях в глубинной культуре с перемешиванием с использованием шейкера «Incubator Shaker Series Innova 44».
В зависимости от условий выращивания штамма полученный продукт (бактериальная целлюлоза) представляет собой гель-пленку. Полученную бактериальную целлюлозу снимают с поверхности или извлекают из среды.
Для очистки пленку бактериальной целлюлозы помещают в 0,5% раствор NaOH на 24 ч при температуре 25-27°С, и периодически перемешивают.
После промывки в дистиллированной воде, пленку помещают в 0,5% раствор соляной или уксусной кислоты на 24 ч, после чего промывают дистиллированной водой до получения реакции промывочных вод pH 6-7, и высушивают на воздухе при комнатной температуре до постоянной массы.
Стерилизуют полученные пленки в автоклаве при 1 атм. (121°С) в течение 15 минут. До стерилизации добавляют дистиллированную воду в отношении 1:10 (1 г сырой пленки: 10 мл дистиллированной воды).
Стерильные сырые пленки хранят в дистиллированной воде в закрытых емкостях. При высушивании бактериальной целлюлозы до постоянной массы хранение осуществляют при средней комнатной температуре 15-25°С и влажности не более 60%.
Определение выхода бактериальной целлюлозы проводят следующим образом: отмытые пленки помещают на фильтровальную бумагу для удаления излишней влаги и далее взвешивают. Содержание сухого вещества в образце целлюлозы - отношение массы испытуемого образца после сушки до постоянной массы при температуре (105±2)°С в определенных условиях к его массе до высушивания. Содержание сухого вещества выражается в процентах.
Структуру поверхности бактериальной целлюлозы анализируют растровой электронной микроскопией (Phillips SEM 525 М). Рентгеноструктурный анализ и измерение степени кристалличности сухих образцов бактериальной целлюлозы выполнены на рентгеноспектрометре D8 ADVANCE "Bruker" (Германия) (графитовый монохроматор на отраженном пучке).
Пример 1.
Культивирование штамма Komagataeibacter xylinus В-12068 проводят в статическом режиме в колбах емкостью 250 мл, содержащих 100 мл питательной среды Hestrin-Schramm с мальтозой в следующем соотношении, вес.%:
мальтоза - 2,0;
пептон - 0,5;
дрожжевой экстракт - 0,5;
Na2HPO4 - 0,27;
моногидрат лимонной кислоты - 0,115;
вода - остальное.
Посевную культуру вносят в количестве 1 мл. Инкубируют при 30°С, через 7 суток пленку бактериальной целлюлозы извлекают из среды и помещают для очистки в 0,5% раствор NaOH на 24 ч при температуре 25-27°С, при периодическом перемешивании. Затем пленку промывают дистиллированной водой, нейтрализуют 0,5% раствором уксусной кислоты, и снова промывают дистиллированной водой до получения реакции промывочных вод pH 6-7. Выход пленки составляет 7,26 г.
Пример 2.
В условиях примера 1 питательная среда содержит глюкозу в количестве 2,0 вес.%. Выход пленки составляет 10,58 г.
Пример 3.
Культивирование штамма Komagataeibacter xylinus В-12068 проводят в статическом режиме в плоских кюветах емкостью 1000 мл, содержащих 500 мл питательной среды Hestrin-Schramm с глюкозой в следующем соотношении, вес.%:
глюкоза - 2,0;
пептон - 0,5;
дрожжевой экстракт - 0,5;
Na2HPO4 - 0,27;
моногидрат лимонной кислоты - 0,115;
вода - остальное.
Высота слоя питательной среды 1,0-1,2 см. Посевную культуру вносят в количестве 5 мл. Инкубируют при 30°С, через 7 суток пленку бактериальной целлюлозы извлекают из среды и очищают, как описано в примере 1. Выход пленки составляет 171,24 г.
Пример 4.
Культивирование штамма Komagataeibacter xylinus В-12068 проводят в динамическом режиме в колбах емкостью 500 мл, содержащих 200 мл питательной среды Hestrin-Schramm с глюкозой в следующем соотношении, вес.%:
глюкоза - 2,0;
пептон - 0,5;
дрожжевой экстракт - 0,5;
Na2HPO4 - 0,27;
моногидрат лимонной кислоты - 0,115;
вода - остальное.
Посевную культуру вносят в количестве 2 мл. Инкубируют при 30°С на термостатируемой качалке (120 об./мин.), через 7 суток пленку бактериальной целлюлозы отделяют от среды и очищают, как описано в примере 1. Выход пленки составляет 58,31 г.
Использование штамма Komagataeibacter xylinus ВКПМ В-12068 позволяет получать бактериальную целлюлозу с высокими выходами до 200-350 г/л, при поверхностном и глубинном культивировании на жидкой питательной среде, с использованием в качестве источника углерода - глюкозы.
Claims (1)
- Штамм бактерий Komagataeibacter xylinus ВКПМ В-12068 - продуцент бактериальной целлюлозы.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2014150288/10A RU2568605C1 (ru) | 2014-12-11 | 2014-12-11 | ШТАММ БАКТЕРИИ Komagataeibacter xylinus - ПРОДУЦЕНТ БАКТЕРИАЛЬНОЙ ЦЕЛЛЮЛОЗЫ |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2014150288/10A RU2568605C1 (ru) | 2014-12-11 | 2014-12-11 | ШТАММ БАКТЕРИИ Komagataeibacter xylinus - ПРОДУЦЕНТ БАКТЕРИАЛЬНОЙ ЦЕЛЛЮЛОЗЫ |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2568605C1 true RU2568605C1 (ru) | 2015-11-20 |
Family
ID=54598056
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2014150288/10A RU2568605C1 (ru) | 2014-12-11 | 2014-12-11 | ШТАММ БАКТЕРИИ Komagataeibacter xylinus - ПРОДУЦЕНТ БАКТЕРИАЛЬНОЙ ЦЕЛЛЮЛОЗЫ |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2568605C1 (ru) |
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2017203281A1 (en) * | 2016-05-27 | 2017-11-30 | Customem Ltd | Production of functionalised cellulose |
| RU2681281C1 (ru) * | 2018-07-20 | 2019-03-05 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Национальный исследовательский Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарёва" | Штамм бактерии Komagataeibacter hansenii - продуцент бактериальной целлюлозы |
| EA033140B1 (ru) * | 2018-04-04 | 2019-08-30 | Учебно-Научно-Производственное Республиканское Унитарное Предприятие "Унитехпром Бгу" (Уп "Унитехпром Бгу") | Способ получения окисленной бактериальной целлюлозы |
| CN112824524A (zh) * | 2019-11-21 | 2021-05-21 | 中国科学院微生物研究所 | 一株产细菌纤维素菌株及其分离鉴定及产量分析 |
Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2141530C1 (ru) * | 1998-05-05 | 1999-11-20 | Санкт-Петербургский государственный университет | Состав питательной среды культивирования acetobacter xylinum для получения бактериальной целлюлозы (варианты) |
| RU2189394C2 (ru) * | 1998-01-12 | 2002-09-20 | Санкт-Петербургский государственный университет | Состав питательной среды культивирования acetobacter xylinum для получения бактериальной целлюлозы (варианты) |
| RU2464307C1 (ru) * | 2011-05-31 | 2012-10-20 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Московский государственный университет пищевых производств" | Штамм бактерии cluconacetobacter hansenii gh-1/2008 - продуцент бактериальной целлюлозы |
| RU2523606C1 (ru) * | 2013-03-12 | 2014-07-20 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарёва" | ШТАММ Gluconacetobacter sucrofermentans -ПРОДУЦЕНТ БАКТЕРИАЛЬНОЙ ЦЕЛЛЮЛОЗЫ |
-
2014
- 2014-12-11 RU RU2014150288/10A patent/RU2568605C1/ru active
Patent Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2189394C2 (ru) * | 1998-01-12 | 2002-09-20 | Санкт-Петербургский государственный университет | Состав питательной среды культивирования acetobacter xylinum для получения бактериальной целлюлозы (варианты) |
| RU2141530C1 (ru) * | 1998-05-05 | 1999-11-20 | Санкт-Петербургский государственный университет | Состав питательной среды культивирования acetobacter xylinum для получения бактериальной целлюлозы (варианты) |
| RU2464307C1 (ru) * | 2011-05-31 | 2012-10-20 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Московский государственный университет пищевых производств" | Штамм бактерии cluconacetobacter hansenii gh-1/2008 - продуцент бактериальной целлюлозы |
| RU2523606C1 (ru) * | 2013-03-12 | 2014-07-20 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарёва" | ШТАММ Gluconacetobacter sucrofermentans -ПРОДУЦЕНТ БАКТЕРИАЛЬНОЙ ЦЕЛЛЮЛОЗЫ |
Cited By (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2017203281A1 (en) * | 2016-05-27 | 2017-11-30 | Customem Ltd | Production of functionalised cellulose |
| EA033140B1 (ru) * | 2018-04-04 | 2019-08-30 | Учебно-Научно-Производственное Республиканское Унитарное Предприятие "Унитехпром Бгу" (Уп "Унитехпром Бгу") | Способ получения окисленной бактериальной целлюлозы |
| RU2681281C1 (ru) * | 2018-07-20 | 2019-03-05 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Национальный исследовательский Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарёва" | Штамм бактерии Komagataeibacter hansenii - продуцент бактериальной целлюлозы |
| CN112824524A (zh) * | 2019-11-21 | 2021-05-21 | 中国科学院微生物研究所 | 一株产细菌纤维素菌株及其分离鉴定及产量分析 |
| CN112824524B (zh) * | 2019-11-21 | 2022-11-15 | 中国科学院微生物研究所 | 一株产细菌纤维素菌株及其分离鉴定及产量分析 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Volova et al. | Production and properties of bacterial cellulose by the strain Komagataeibacter xylinus B-12068 | |
| Rodrigues et al. | Response surface statistical optimization of bacterial nanocellulose fermentation in static culture using a low-cost medium | |
| van Zyl et al. | Hierarchical structure of bacterial-derived cellulose and its impact on biomedical applications | |
| Lin et al. | Biosynthesis, production and applications of bacterial cellulose | |
| Chawla et al. | Microbial cellulose: fermentative production and applications. | |
| Kim et al. | Gluconacetobacter sp. gel_SEA623-2, bacterial cellulose producing bacterium isolated from citrus fruit juice | |
| Lin et al. | Production of bacterial cellulose with various additives in a PCS rotating disk bioreactor and its material property analysis | |
| RU2568605C1 (ru) | ШТАММ БАКТЕРИИ Komagataeibacter xylinus - ПРОДУЦЕНТ БАКТЕРИАЛЬНОЙ ЦЕЛЛЮЛОЗЫ | |
| RU2464307C1 (ru) | Штамм бактерии cluconacetobacter hansenii gh-1/2008 - продуцент бактериальной целлюлозы | |
| JPH0643443B2 (ja) | 網状セルロ−ス生成物及び微生物によるその製造方法 | |
| de Souza et al. | Nanocellulose biosynthesis by Komagataeibacter hansenii in a defined minimal culture medium | |
| Prudnikova et al. | The new strain of acetic acid bacteria Komagataeibacter xylinus B-12068–producer of bacterial cellulose for biomedical applications | |
| Yin et al. | Improvement in mechanical properties and biocompatibility of biosynthetic bacterial cellulose/lotus root starch composites | |
| Diaz-Ramirez et al. | Superabsorbent bacterial cellulose spheres biosynthesized from winery by-products as natural carriers for fertilizers | |
| Foresti et al. | Bacterial nanocellulose: Synthesis, properties and applications | |
| Gea et al. | Enhancing the quality of nata de coco starter by channeling the oxygen into the bioreactor through agitation method | |
| CN105420127B (zh) | 高分子量普鲁兰多糖的高产菌株及利用该菌株生产高分子量普鲁兰多糖的方法 | |
| El-Naggar et al. | Bacterial nanocellulose production using Cantaloupe juice, statistical optimization and characterization | |
| Tonouchi | Cellulose and other capsular polysaccharides of acetic acid bacteria | |
| Panesar et al. | Evaluation of Acetobacter strain for the production of microbial cellulose | |
| Shokatayeva et al. | Bacterial cellulose and pullulan from simple and low cost production media | |
| RU2681281C1 (ru) | Штамм бактерии Komagataeibacter hansenii - продуцент бактериальной целлюлозы | |
| CN113564079B (zh) | 一种产蔗糖磷酸化酶的多黏类芽孢杆菌及其应用 | |
| WO2022136246A1 (en) | Bacterial strains for biocellulose production | |
| KR102295345B1 (ko) | 증대된 박테리아 나노셀룰로오스 생산능을 갖는 글루콘아세토박터 한세니 돌연변이 균주 및 이를 이용한 박테리아 나노셀룰로오스 생산방법 |