RU2547697C1 - Способ моделирования острого деструктивного инфицированного панкреонекроза - Google Patents

Способ моделирования острого деструктивного инфицированного панкреонекроза Download PDF

Info

Publication number
RU2547697C1
RU2547697C1 RU2014101205/14A RU2014101205A RU2547697C1 RU 2547697 C1 RU2547697 C1 RU 2547697C1 RU 2014101205/14 A RU2014101205/14 A RU 2014101205/14A RU 2014101205 A RU2014101205 A RU 2014101205A RU 2547697 C1 RU2547697 C1 RU 2547697C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
cavity
pancreas
complex
external
cryodestruction
Prior art date
Application number
RU2014101205/14A
Other languages
English (en)
Inventor
Елена Александровна Еленская
Борис Семенович Суковатых
Елена Борисовна Артюшкова
Алексей Ильич Итинсон
Антон Алексеевич Итинсон
Original Assignee
Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Курский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Курский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации filed Critical Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Курский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации
Priority to RU2014101205/14A priority Critical patent/RU2547697C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2547697C1 publication Critical patent/RU2547697C1/ru

Links

Images

Landscapes

  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)

Abstract

Изобретение относится к медицине, в частности к экспериментальной хирургии, и может быть использовано для моделирования острого деструктивного инфицированного панкреонекроза. Способ включает лапаротомию у крыс линии Вистар с выведением в рану комплекса селезенки и поджелудочной железы. Затем выполняют криодеструкцию участка железы в течение 5 сек аппликатором площадью 0,6 см2, охлажденным в жидком азоте в течение 40 сек. Далее проводят погружение комплекса поджелудочной железы и селезенки в заранее сформированную из наружной и внутренней косых мышц передней брюшной стенки ограниченную полость. Затем в эту полость вводят 0,3 мл 1 млрд микробной взвеси золотистого стафилококка. Перед ушиванием операционной раны к листкам наружной косой мышцы закрепляют фистулу для последующего введения в сформированную полость лекарственных препаратов. Способ обеспечивает создание управляемого моделирования панкреонекроза, близкого к таковому, развивающемуся в клинических условиях. 6 ил., 4 табл., 1 пр.

Description

Изобретение относиться к медицине, в частности к экспериментальной хирургии.
Наиболее близким к заявленному решению является способ моделирования деструктивного панкреатита, описанный Шалимовым С.А. и соавт., 1989 г., с применением аппарата «Криоэлектроника»: после извлечения через лапаротомное отверстие поджелудочной железы на ее поверхности устанавливают аппликатор установки «Криоэлектроника», замораживают нужных размеров участок до температуры от -25°С до -100°С и ниже, поддерживают эту температуру в течение 3-5 мин, а затем размораживают. На участке, подвергшемся криовоздействию, возникает острый геморрагический панкреатит с исходом в очаговый некроз и склероз. Прилегающие участки железы остаются интактными. Если площадь криодеструкции превышает 30% площади всей железы, животное погибает. Деструкции подвергается как эндо-, так и экзокринная ткань. После чего поджелудочная железа погружалась в брюшную полость животного.
Недостатками данного способа являются: отсутствие ограниченности воспалительного процесса от органов брюшной полости, с развитием панкреатита и ферментативного перитонита.
Технический результат изобретения: создание управляемого способа моделирования острого деструктивного инфицированного панкреонекроза, близкого к таковому, развивающемуся в клинических условиях.
Технический результат достигается тем, что после моделирования деструктивного панкреонекроза путем криодеструкции поджелудочной железы крысы аппликатором площадью 0,6 см2 в течение 5 сек, охлажденным в жидком азоте в течение 40 сек, производится погружение комплекса поджелудочной железы и селезенки крысы в заранее сформированную искусственным путем из наружной и внутренней косых мышц передней брюшной стенки животного ограниченную полость, с последующим в нее введением 0,3 мл 1 млрд микробной взвеси золотистого стафилококка. Перед ушиванием операционной раны к листкам наружной косой мышцы закреплялась фистула для последующего введения в сформированную полость лекарственных препаратов.
Изобретение поясняется чертежами.
Фиг.1 - формирование полости из мышц передней брюшной стенки.
Фиг.2 - выведение из брюшной полости комплекса поджелудочной железы и селезенки.
Фиг.3 - нанесение криодеструкции на поджелудочную железу.
Фиг.4 - погружение комплекса поджелудочной железы и селезенки крысы в сформированную искусственным путем из мышц передней брюшной стенки животного ограниченную полость.
Фиг.5 - введение в сформированную искусственным путем из мышц передней брюшной стенки животного ограниченную полость 0,3 мл 1 млрд микробной взвеси золотистого стафилококка.
Фиг.6 - закрепление фистулы к листкам наружной косой мышцы передней брюшной стенки животного для последующего введения в сформированную полость лекарственных препаратов.
Способ осуществляется следующим образом.
Моделирование острого деструктивного инфицированного панкреонекроза проводят на половозрелых крысах линии «Wistar», средней массой тела 250-300 г, без признаков заболеваний, прошедших карантин и содержащихся на стандартном пищевом и питьевом режиме в условиях вивария.
Под общим наркозом (хлоралгидрат 300 мг/кг, внутрибрюшинно), с соблюдением правил асептики и антисептики проводят лапаротомию параректальным разрезом слева, длинной до 2 см. Выполняют моделирование острого деструктивного инфицированного панкреонекроза путем криодеструкции поджелудочной железы крысы аппликатором площадью 0,6 см2 в течение 5 сек, охлажденным в жидком азоте в течение 40 сек, производится погружение комплекса поджелудочной железы и селезенки крысы в заранее сформированную искусственным путем из наружной и внутренней косых мышц передней брюшной стенки животного ограниченную полость, с последующим в нее введением 0,3 мл 1 млрд микробной взвеси золотистого стафилококка. Перед ушиванием операционной раны к листкам наружной косой мышцы закреплялась фистула для последующего введения в сформированную полость лекарственных препаратов.
Пример конкретного выполнения
Исследование проводилось в условиях операционного блока НИИ Экологической медицины на базе Курского государственного медицинского университета. Использовались половозрелые крысы самцы линии «Wistar» без признаков заболеваний, прошедшие карантин и содержащиеся на стандартном пищевом и питьевом режиме в условиях вивария. Все манипуляции выполнялись с соблюдением требований к гуманному обращению с животными (г.Страсбург, Франция, 1986).
С соблюдением правил асептики и антисептики под общим наркозом (хлоралгидрат 300 мг/кг, внутрибрюшинно) проводилась лапаротомия параректальным разрезом слева, длинной до 2 см. В рану выводился комплекс селезенка с желудочно-селезеночной связкой. Поджелудочная железа изолировалась от органов брюшной полости путем наложения 1-2 швов на листки внутренней косой мышцы, а от окружающих тканей - стерильной салфеткой.
Перед моделированием острого деструктивного инфицированного панкреонекроза производили измерение микроциркуляции в желудочно-селезеночной связке методом лазерной доплеровской флоуметрии (ЛДФ). Исследование осуществляли при помощи аппарата - лазер-доплеровского флоуметра «Biopac-systems MP-100» и датчика «TSD-144». Запись и обработка данных производилась при помощи программы AcqKnowledge 3.8.1. Уровень микроциркуляции регистрировали в 24 точках желудочно-селезеночной связки по ходу сегментарных селезеночных артерий. Запись кривой уровня микроциркуляции проводили в течение 30 сек в каждой точке. Из полученных 24 значений выводили среднее, которое вносили в протокол и принимали за уровень микроциркуляции у данного животного.
В сосуд Дюара, содержащий жидкий азот, на 40 сек погружался аппликатор с площадью рабочей поверхности 0,6 см2, при погружении аппликатор держали за шелковую нить. После извлечения из жидкого азота аппликатор захватывался пинцетом и на 5 сек прижимался к левой доле поджелудочной железы так, чтобы избежать контакта с селезеночными сосудами. После замораживания поджелудочной железы дожидались ее оттаивания. Затем комплекс поджелудочной железы и селезенки погружался в полость, образованную наружной и внутренней косой мышцами передней брюшной стенки крысы. В полость вводилась микробная взвесь золотистого стафилококка в объеме 0,3 мл. Перед ушиванием полости к листкам наружной косой мышцы закреплялась фистула для последующего введения в сформированную полость лекарственных препаратов. Установленная фистула частично укрывалась кожей.
В эксперименте производилось 4 серии исследований:
1 серия - крысы без лечения, 2 серия - крысы, которым проводилось лечение введением в сформированную оперативным путем полость мази «Левомеколь», 3 серия - крысы, которым проводилось лечение введением в сформированную полость гипохлорита натрия в геле гидроксиметилцеллюлозы, 4 серия - крысы, которым проводилось лечение введением в сформированную полость геля гидроксиметилцеллюлозы.
Во всех сериях крысы выводились из эксперимента на 3, 5, 7, 10 сутки.
При выведении крыс из эксперимента проводилось измерение микроциркуляции в желудочно-селезеночной связке методом лазерной доплеровской флоуметрии (ЛДФ). После замера микроциркуляции проводился забор крови из левого желудочка сердца для проведения биохимического исследования, исследования OAK (плазматические клетки), забор тканей и органов для подсчета КОЕ, гистологического исследования комплекса поджелудочной железы и селезенки, печени, почек, сердца, тонкой кишки.
Результаты проведенных исследований
Таблица 1
Распределение экспериментальных животных по группам опытов
№ п\п Название группы Характер эксперимента Количество животных
1 интактная Без лечения 96
2 сравнения Введение в брюшную полость мази «Левомеколь» 96
3 контрольная Введение в брюшную полость иммобилизированным гипохлоритом натрия в геле полимеров 96
Таблица 2
Уровень летальности в исследуемых группах
Название группы 3 сутки 5 сутки 7 сутки 10 сутки
итактаная 97,5% 83,3% 83,3% 79,1%
сравнения 79,3% 70,8% 66,6% 62,5%
контрольная 62,5% 54,2% 42% 30%
Примечание: * - р<0,05 в сравнении с показателями первой группы
При исследовании уровня летальности: смертность в 3 контрольной в 1,4 раза (46,8%) меньше, чем во 2 сравнения (69,7%), и в 1,8 раза ниже, чем в итактной (83,3%).
Таблица 3
Динамика показателей эндогенной интоксикации у животных с экспериментальным панкреонекрозом
показатели Сроки после операции Группы животных
1 2 3
ЛИИ, усл. ед. (здоровые животные - 1,1±0,3) 3 7,6±0,5 6,3±0,4 4,5±0,5*
5 6,3±0,4 4,9±0,4 1,9±0,4*
7 6,1±0,4 3,3±0,3* 1,3±0,3*
10 4,9±0,3 2,1±0,3* 1,2±0,3*
Лейкоциты
*103\мл (здоровые животные - 8,8±0,4)
3 19,1±0,8 17,4±0,7 14,9±0,5*
5 17,2±0,6 13,5±0,4 9,5±0,4*
7 12,7±0,4 10,7±0,3* 8,0±0,3*
10 11,1±0,4 8,9±0,2* 8,1±0,3*
Примечание: * - р<0,05 в сравнении с показателями первой группы
При исследовании общего анализа крови установлено, что нормализация лейкоцитоза и лейкоцитарного индекса интоксикации (ЛИИ) в контрольной группе наступала к 5-м суткам, а в группе сравнения - на 7 сутки.
Таблица 4
Результаты бактериологического исследования ткани из очага инфицирования у крыс с экспериментальным панкреонекрозом
Название группы Количество микроорганизмов, КОЕ*103/мл
3 сутки 5 сутки 7 сутки 10 сутки
1 интактные 89,5±7,2 84,2±5,8 81,1±4,8 78,1±1,8
2 сравнения 61,3±6,2 58,4±5,0 53,6±3,2 47,2±2,1
3 контрольная 37,8±6,7 32,2±4,6 29,4±2,2 26,7±1,2
Примечание: достоверность различий средних, р<0,05.
При бактериологическом исследовании количество микроорганизмов в 1 г ткани очага инфицирования на 3 сутки в контрольной группе в 1,6 раза ниже, чем в группе сравнения и почти в 2 раза ниже к 10-м суткам.
Таким образом, предложенная модель позволяет экспериментально изучать действие лекарственных препаратов на течение инфицированного панкреонекроза.

Claims (1)

  1. Способ моделирования острого деструктивного инфицированного панкреонекроза, включающий лапаротомию, выведение поджелудочной железы из брюшной полости и последующую криодеструкцию участка железы, отличающийся тем, что у крыс линии Вистар предварительно формируют ограниченную полость из наружной и внутренней косых мышц передней брюшной стенки, из брюшной полости выводят комплекс поджелудочной железы и селезенки, затем в течение 5 секунд осуществляют криодеструкцию участка железы аппликатором площадью 0,6 см, охлажденным в жидком азоте в течение 40 секунд, затем погружают комплекс в заранее сформированную ограниченную полость и вводят в нее 0,3 мл 1 млрд микробной взвеси золотистого стафилококка, перед ушиванием операционной раны к листкам наружной косой мышцы вшивают фистулу для последующего введения в полость лекарственных веществ.
RU2014101205/14A 2014-01-15 2014-01-15 Способ моделирования острого деструктивного инфицированного панкреонекроза RU2547697C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2014101205/14A RU2547697C1 (ru) 2014-01-15 2014-01-15 Способ моделирования острого деструктивного инфицированного панкреонекроза

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2014101205/14A RU2547697C1 (ru) 2014-01-15 2014-01-15 Способ моделирования острого деструктивного инфицированного панкреонекроза

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2547697C1 true RU2547697C1 (ru) 2015-04-10

Family

ID=53296438

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2014101205/14A RU2547697C1 (ru) 2014-01-15 2014-01-15 Способ моделирования острого деструктивного инфицированного панкреонекроза

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2547697C1 (ru)

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2199153C2 (ru) * 2000-11-20 2003-02-20 Красноярская государственная медицинская академия Способ моделирования панкреонекроза
RU2286608C1 (ru) * 2005-05-30 2006-10-27 Зоя Ивановна Микашинович Способ моделирования острого некротического панкреатита
RU2400820C2 (ru) * 2008-01-09 2010-09-27 Максим Анатольевич Ранцев Способ создания экспериментальной модели панкреонекроза у крыс
RU2465655C1 (ru) * 2011-07-26 2012-10-27 Государственное Образовательное Учреждение Высшего Профессионального Образования "Красноярский Государственный Медицинский Университет Имени Профессора В.Ф. Войно-Ясенецкого Министерства Здравоохранения И Социального Развития Российской Федерации Способ моделирования инфицированного панкреонекроза

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2199153C2 (ru) * 2000-11-20 2003-02-20 Красноярская государственная медицинская академия Способ моделирования панкреонекроза
RU2286608C1 (ru) * 2005-05-30 2006-10-27 Зоя Ивановна Микашинович Способ моделирования острого некротического панкреатита
RU2400820C2 (ru) * 2008-01-09 2010-09-27 Максим Анатольевич Ранцев Способ создания экспериментальной модели панкреонекроза у крыс
RU2465655C1 (ru) * 2011-07-26 2012-10-27 Государственное Образовательное Учреждение Высшего Профессионального Образования "Красноярский Государственный Медицинский Университет Имени Профессора В.Ф. Войно-Ясенецкого Министерства Здравоохранения И Социального Развития Российской Федерации Способ моделирования инфицированного панкреонекроза

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ШАЛИМОВ С.А. Руководство по экспериментальной хирургии. - М.: Медицина. 1989, с.191, 197. MEDVEDENKO AF, Experimental substantiation of occlusion of the pancreatic ducts in acute destructive pancreatitis Klin Khir. 1989;(11):22-4. ANO H.J. et al. Experimental pancreatitis in the rat. J. Gastroenterol. 1980, 15, 411-416 *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Venugopalan Essentials of veterinary surgery
Ruhullaevich et al. Improved results of treatment of purulent wounds with complex use of photodynamic therapy and CO2 laser in the experiment
KR102597594B1 (ko) 오가노이드의 생체 이식용 조성물
CN107836409A (zh) 一种乳腺癌原位pdx模型的构建方法
RU2547697C1 (ru) Способ моделирования острого деструктивного инфицированного панкреонекроза
Özaydın et al. Experimental Skin-Wound Methods and Healing-Assessment in Animal Models: A Review.
RU2714949C2 (ru) Способ моделирования местного отграниченного перитонита у крыс
RU2455703C1 (ru) Способ хирургического моделирования окислительного стресса у лабораторных животных
RU2703709C1 (ru) Способ моделирования экспериментальной раны мягких тканей у крыс для разработки тактики лечения
Spagnolo et al. Nephrosplenic space ablation in horses after homologous pericardium implant using a laparoscopic stapler
RU2668201C1 (ru) Способ моделирования острого деструктивного панкреатита у свиней
RU2440065C2 (ru) Биологический контейнер и его трансплантация животным
ES2337537A1 (es) Preparado alimenticio y composicion farmaceutica que contiene un extracto embrionario y sus respectivos usos.
RU2578818C1 (ru) Способ моделирования остеомиелита
RU2398377C1 (ru) Способ консервирования лейкозных клеток, выделенных из селезенки мышей инбредной линии akr/jy
RU2232430C1 (ru) Способ моделирования острого гнойного холангита у экспериментальных животных
RU2816989C1 (ru) Способ экспериментального моделирования эхинококкоза печени
RU2610361C2 (ru) Способ экспериментального моделирования аутотрансплантации селезеночной ткани в печень
Schmiedt et al. Effects of renal autograft ischemia and reperfusion associated with renal transplantation on arterial blood pressure variables in clinically normal cats
RU2681109C1 (ru) Способ стимуляции репаративных процессов при имплантации сверхлегкого полипропиленового эндопротеза в брюшную стенку
RU2506955C1 (ru) Способ изготовления биотрансплантатов твердой мозговой оболочки для эндоскопических вмешательств в реконструктивной хирургии
RU2524128C1 (ru) Способ моделирования остеорезорбции в условиях репаративного остеогенеза
RU2709220C1 (ru) Способ моделирования острого панкреатита различной степени тяжести у крыс
RU2715922C1 (ru) Способ лечения распространенного перитонита
RU2224297C1 (ru) Способ моделирования хронического воспаления придатков матки

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20160116