RU2547697C1 - Способ моделирования острого деструктивного инфицированного панкреонекроза - Google Patents
Способ моделирования острого деструктивного инфицированного панкреонекроза Download PDFInfo
- Publication number
- RU2547697C1 RU2547697C1 RU2014101205/14A RU2014101205A RU2547697C1 RU 2547697 C1 RU2547697 C1 RU 2547697C1 RU 2014101205/14 A RU2014101205/14 A RU 2014101205/14A RU 2014101205 A RU2014101205 A RU 2014101205A RU 2547697 C1 RU2547697 C1 RU 2547697C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- cavity
- pancreas
- complex
- external
- cryodestruction
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Abstract
Изобретение относится к медицине, в частности к экспериментальной хирургии, и может быть использовано для моделирования острого деструктивного инфицированного панкреонекроза. Способ включает лапаротомию у крыс линии Вистар с выведением в рану комплекса селезенки и поджелудочной железы. Затем выполняют криодеструкцию участка железы в течение 5 сек аппликатором площадью 0,6 см2, охлажденным в жидком азоте в течение 40 сек. Далее проводят погружение комплекса поджелудочной железы и селезенки в заранее сформированную из наружной и внутренней косых мышц передней брюшной стенки ограниченную полость. Затем в эту полость вводят 0,3 мл 1 млрд микробной взвеси золотистого стафилококка. Перед ушиванием операционной раны к листкам наружной косой мышцы закрепляют фистулу для последующего введения в сформированную полость лекарственных препаратов. Способ обеспечивает создание управляемого моделирования панкреонекроза, близкого к таковому, развивающемуся в клинических условиях. 6 ил., 4 табл., 1 пр.
Description
Изобретение относиться к медицине, в частности к экспериментальной хирургии.
Наиболее близким к заявленному решению является способ моделирования деструктивного панкреатита, описанный Шалимовым С.А. и соавт., 1989 г., с применением аппарата «Криоэлектроника»: после извлечения через лапаротомное отверстие поджелудочной железы на ее поверхности устанавливают аппликатор установки «Криоэлектроника», замораживают нужных размеров участок до температуры от -25°С до -100°С и ниже, поддерживают эту температуру в течение 3-5 мин, а затем размораживают. На участке, подвергшемся криовоздействию, возникает острый геморрагический панкреатит с исходом в очаговый некроз и склероз. Прилегающие участки железы остаются интактными. Если площадь криодеструкции превышает 30% площади всей железы, животное погибает. Деструкции подвергается как эндо-, так и экзокринная ткань. После чего поджелудочная железа погружалась в брюшную полость животного.
Недостатками данного способа являются: отсутствие ограниченности воспалительного процесса от органов брюшной полости, с развитием панкреатита и ферментативного перитонита.
Технический результат изобретения: создание управляемого способа моделирования острого деструктивного инфицированного панкреонекроза, близкого к таковому, развивающемуся в клинических условиях.
Технический результат достигается тем, что после моделирования деструктивного панкреонекроза путем криодеструкции поджелудочной железы крысы аппликатором площадью 0,6 см2 в течение 5 сек, охлажденным в жидком азоте в течение 40 сек, производится погружение комплекса поджелудочной железы и селезенки крысы в заранее сформированную искусственным путем из наружной и внутренней косых мышц передней брюшной стенки животного ограниченную полость, с последующим в нее введением 0,3 мл 1 млрд микробной взвеси золотистого стафилококка. Перед ушиванием операционной раны к листкам наружной косой мышцы закреплялась фистула для последующего введения в сформированную полость лекарственных препаратов.
Изобретение поясняется чертежами.
Фиг.1 - формирование полости из мышц передней брюшной стенки.
Фиг.2 - выведение из брюшной полости комплекса поджелудочной железы и селезенки.
Фиг.3 - нанесение криодеструкции на поджелудочную железу.
Фиг.4 - погружение комплекса поджелудочной железы и селезенки крысы в сформированную искусственным путем из мышц передней брюшной стенки животного ограниченную полость.
Фиг.5 - введение в сформированную искусственным путем из мышц передней брюшной стенки животного ограниченную полость 0,3 мл 1 млрд микробной взвеси золотистого стафилококка.
Фиг.6 - закрепление фистулы к листкам наружной косой мышцы передней брюшной стенки животного для последующего введения в сформированную полость лекарственных препаратов.
Способ осуществляется следующим образом.
Моделирование острого деструктивного инфицированного панкреонекроза проводят на половозрелых крысах линии «Wistar», средней массой тела 250-300 г, без признаков заболеваний, прошедших карантин и содержащихся на стандартном пищевом и питьевом режиме в условиях вивария.
Под общим наркозом (хлоралгидрат 300 мг/кг, внутрибрюшинно), с соблюдением правил асептики и антисептики проводят лапаротомию параректальным разрезом слева, длинной до 2 см. Выполняют моделирование острого деструктивного инфицированного панкреонекроза путем криодеструкции поджелудочной железы крысы аппликатором площадью 0,6 см2 в течение 5 сек, охлажденным в жидком азоте в течение 40 сек, производится погружение комплекса поджелудочной железы и селезенки крысы в заранее сформированную искусственным путем из наружной и внутренней косых мышц передней брюшной стенки животного ограниченную полость, с последующим в нее введением 0,3 мл 1 млрд микробной взвеси золотистого стафилококка. Перед ушиванием операционной раны к листкам наружной косой мышцы закреплялась фистула для последующего введения в сформированную полость лекарственных препаратов.
Пример конкретного выполнения
Исследование проводилось в условиях операционного блока НИИ Экологической медицины на базе Курского государственного медицинского университета. Использовались половозрелые крысы самцы линии «Wistar» без признаков заболеваний, прошедшие карантин и содержащиеся на стандартном пищевом и питьевом режиме в условиях вивария. Все манипуляции выполнялись с соблюдением требований к гуманному обращению с животными (г.Страсбург, Франция, 1986).
С соблюдением правил асептики и антисептики под общим наркозом (хлоралгидрат 300 мг/кг, внутрибрюшинно) проводилась лапаротомия параректальным разрезом слева, длинной до 2 см. В рану выводился комплекс селезенка с желудочно-селезеночной связкой. Поджелудочная железа изолировалась от органов брюшной полости путем наложения 1-2 швов на листки внутренней косой мышцы, а от окружающих тканей - стерильной салфеткой.
Перед моделированием острого деструктивного инфицированного панкреонекроза производили измерение микроциркуляции в желудочно-селезеночной связке методом лазерной доплеровской флоуметрии (ЛДФ). Исследование осуществляли при помощи аппарата - лазер-доплеровского флоуметра «Biopac-systems MP-100» и датчика «TSD-144». Запись и обработка данных производилась при помощи программы AcqKnowledge 3.8.1. Уровень микроциркуляции регистрировали в 24 точках желудочно-селезеночной связки по ходу сегментарных селезеночных артерий. Запись кривой уровня микроциркуляции проводили в течение 30 сек в каждой точке. Из полученных 24 значений выводили среднее, которое вносили в протокол и принимали за уровень микроциркуляции у данного животного.
В сосуд Дюара, содержащий жидкий азот, на 40 сек погружался аппликатор с площадью рабочей поверхности 0,6 см2, при погружении аппликатор держали за шелковую нить. После извлечения из жидкого азота аппликатор захватывался пинцетом и на 5 сек прижимался к левой доле поджелудочной железы так, чтобы избежать контакта с селезеночными сосудами. После замораживания поджелудочной железы дожидались ее оттаивания. Затем комплекс поджелудочной железы и селезенки погружался в полость, образованную наружной и внутренней косой мышцами передней брюшной стенки крысы. В полость вводилась микробная взвесь золотистого стафилококка в объеме 0,3 мл. Перед ушиванием полости к листкам наружной косой мышцы закреплялась фистула для последующего введения в сформированную полость лекарственных препаратов. Установленная фистула частично укрывалась кожей.
В эксперименте производилось 4 серии исследований:
1 серия - крысы без лечения, 2 серия - крысы, которым проводилось лечение введением в сформированную оперативным путем полость мази «Левомеколь», 3 серия - крысы, которым проводилось лечение введением в сформированную полость гипохлорита натрия в геле гидроксиметилцеллюлозы, 4 серия - крысы, которым проводилось лечение введением в сформированную полость геля гидроксиметилцеллюлозы.
Во всех сериях крысы выводились из эксперимента на 3, 5, 7, 10 сутки.
При выведении крыс из эксперимента проводилось измерение микроциркуляции в желудочно-селезеночной связке методом лазерной доплеровской флоуметрии (ЛДФ). После замера микроциркуляции проводился забор крови из левого желудочка сердца для проведения биохимического исследования, исследования OAK (плазматические клетки), забор тканей и органов для подсчета КОЕ, гистологического исследования комплекса поджелудочной железы и селезенки, печени, почек, сердца, тонкой кишки.
Результаты проведенных исследований
Таблица 1 | |||
Распределение экспериментальных животных по группам опытов | |||
№ п\п | Название группы | Характер эксперимента | Количество животных |
1 | интактная | Без лечения | 96 |
2 | сравнения | Введение в брюшную полость мази «Левомеколь» | 96 |
3 | контрольная | Введение в брюшную полость иммобилизированным гипохлоритом натрия в геле полимеров | 96 |
Таблица 2 | ||||
Уровень летальности в исследуемых группах | ||||
Название группы | 3 сутки | 5 сутки | 7 сутки | 10 сутки |
итактаная | 97,5% | 83,3% | 83,3% | 79,1% |
сравнения | 79,3% | 70,8% | 66,6% | 62,5% |
контрольная | 62,5% | 54,2% | 42% | 30% |
Примечание: * - р<0,05 в сравнении с показателями первой группы |
При исследовании уровня летальности: смертность в 3 контрольной в 1,4 раза (46,8%) меньше, чем во 2 сравнения (69,7%), и в 1,8 раза ниже, чем в итактной (83,3%).
Таблица 3 | ||||
Динамика показателей эндогенной интоксикации у животных с экспериментальным панкреонекрозом | ||||
показатели | Сроки после операции | Группы животных | ||
1 | 2 | 3 | ||
ЛИИ, усл. ед. (здоровые животные - 1,1±0,3) | 3 | 7,6±0,5 | 6,3±0,4 | 4,5±0,5* |
5 | 6,3±0,4 | 4,9±0,4 | 1,9±0,4* | |
7 | 6,1±0,4 | 3,3±0,3* | 1,3±0,3* | |
10 | 4,9±0,3 | 2,1±0,3* | 1,2±0,3* | |
Лейкоциты *103\мл (здоровые животные - 8,8±0,4) |
3 | 19,1±0,8 | 17,4±0,7 | 14,9±0,5* |
5 | 17,2±0,6 | 13,5±0,4 | 9,5±0,4* | |
7 | 12,7±0,4 | 10,7±0,3* | 8,0±0,3* | |
10 | 11,1±0,4 | 8,9±0,2* | 8,1±0,3* | |
Примечание: * - р<0,05 в сравнении с показателями первой группы |
При исследовании общего анализа крови установлено, что нормализация лейкоцитоза и лейкоцитарного индекса интоксикации (ЛИИ) в контрольной группе наступала к 5-м суткам, а в группе сравнения - на 7 сутки.
Таблица 4 | |||||
Результаты бактериологического исследования ткани из очага инфицирования у крыс с экспериментальным панкреонекрозом | |||||
№ | Название группы | Количество микроорганизмов, КОЕ*103/мл | |||
3 сутки | 5 сутки | 7 сутки | 10 сутки | ||
1 | интактные | 89,5±7,2 | 84,2±5,8 | 81,1±4,8 | 78,1±1,8 |
2 | сравнения | 61,3±6,2 | 58,4±5,0 | 53,6±3,2 | 47,2±2,1 |
3 | контрольная | 37,8±6,7 | 32,2±4,6 | 29,4±2,2 | 26,7±1,2 |
Примечание: достоверность различий средних, р<0,05. |
При бактериологическом исследовании количество микроорганизмов в 1 г ткани очага инфицирования на 3 сутки в контрольной группе в 1,6 раза ниже, чем в группе сравнения и почти в 2 раза ниже к 10-м суткам.
Таким образом, предложенная модель позволяет экспериментально изучать действие лекарственных препаратов на течение инфицированного панкреонекроза.
Claims (1)
- Способ моделирования острого деструктивного инфицированного панкреонекроза, включающий лапаротомию, выведение поджелудочной железы из брюшной полости и последующую криодеструкцию участка железы, отличающийся тем, что у крыс линии Вистар предварительно формируют ограниченную полость из наружной и внутренней косых мышц передней брюшной стенки, из брюшной полости выводят комплекс поджелудочной железы и селезенки, затем в течение 5 секунд осуществляют криодеструкцию участка железы аппликатором площадью 0,6 см, охлажденным в жидком азоте в течение 40 секунд, затем погружают комплекс в заранее сформированную ограниченную полость и вводят в нее 0,3 мл 1 млрд микробной взвеси золотистого стафилококка, перед ушиванием операционной раны к листкам наружной косой мышцы вшивают фистулу для последующего введения в полость лекарственных веществ.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2014101205/14A RU2547697C1 (ru) | 2014-01-15 | 2014-01-15 | Способ моделирования острого деструктивного инфицированного панкреонекроза |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2014101205/14A RU2547697C1 (ru) | 2014-01-15 | 2014-01-15 | Способ моделирования острого деструктивного инфицированного панкреонекроза |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2547697C1 true RU2547697C1 (ru) | 2015-04-10 |
Family
ID=53296438
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2014101205/14A RU2547697C1 (ru) | 2014-01-15 | 2014-01-15 | Способ моделирования острого деструктивного инфицированного панкреонекроза |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2547697C1 (ru) |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2199153C2 (ru) * | 2000-11-20 | 2003-02-20 | Красноярская государственная медицинская академия | Способ моделирования панкреонекроза |
RU2286608C1 (ru) * | 2005-05-30 | 2006-10-27 | Зоя Ивановна Микашинович | Способ моделирования острого некротического панкреатита |
RU2400820C2 (ru) * | 2008-01-09 | 2010-09-27 | Максим Анатольевич Ранцев | Способ создания экспериментальной модели панкреонекроза у крыс |
RU2465655C1 (ru) * | 2011-07-26 | 2012-10-27 | Государственное Образовательное Учреждение Высшего Профессионального Образования "Красноярский Государственный Медицинский Университет Имени Профессора В.Ф. Войно-Ясенецкого Министерства Здравоохранения И Социального Развития Российской Федерации | Способ моделирования инфицированного панкреонекроза |
-
2014
- 2014-01-15 RU RU2014101205/14A patent/RU2547697C1/ru not_active IP Right Cessation
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2199153C2 (ru) * | 2000-11-20 | 2003-02-20 | Красноярская государственная медицинская академия | Способ моделирования панкреонекроза |
RU2286608C1 (ru) * | 2005-05-30 | 2006-10-27 | Зоя Ивановна Микашинович | Способ моделирования острого некротического панкреатита |
RU2400820C2 (ru) * | 2008-01-09 | 2010-09-27 | Максим Анатольевич Ранцев | Способ создания экспериментальной модели панкреонекроза у крыс |
RU2465655C1 (ru) * | 2011-07-26 | 2012-10-27 | Государственное Образовательное Учреждение Высшего Профессионального Образования "Красноярский Государственный Медицинский Университет Имени Профессора В.Ф. Войно-Ясенецкого Министерства Здравоохранения И Социального Развития Российской Федерации | Способ моделирования инфицированного панкреонекроза |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
ШАЛИМОВ С.А. Руководство по экспериментальной хирургии. - М.: Медицина. 1989, с.191, 197. MEDVEDENKO AF, Experimental substantiation of occlusion of the pancreatic ducts in acute destructive pancreatitis Klin Khir. 1989;(11):22-4. ANO H.J. et al. Experimental pancreatitis in the rat. J. Gastroenterol. 1980, 15, 411-416 * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Venugopalan | Essentials of veterinary surgery | |
Ruhullaevich et al. | Improved results of treatment of purulent wounds with complex use of photodynamic therapy and CO2 laser in the experiment | |
KR102597594B1 (ko) | 오가노이드의 생체 이식용 조성물 | |
CN107836409A (zh) | 一种乳腺癌原位pdx模型的构建方法 | |
RU2547697C1 (ru) | Способ моделирования острого деструктивного инфицированного панкреонекроза | |
Özaydın et al. | Experimental Skin-Wound Methods and Healing-Assessment in Animal Models: A Review. | |
RU2714949C2 (ru) | Способ моделирования местного отграниченного перитонита у крыс | |
RU2455703C1 (ru) | Способ хирургического моделирования окислительного стресса у лабораторных животных | |
RU2703709C1 (ru) | Способ моделирования экспериментальной раны мягких тканей у крыс для разработки тактики лечения | |
Spagnolo et al. | Nephrosplenic space ablation in horses after homologous pericardium implant using a laparoscopic stapler | |
RU2668201C1 (ru) | Способ моделирования острого деструктивного панкреатита у свиней | |
RU2440065C2 (ru) | Биологический контейнер и его трансплантация животным | |
ES2337537A1 (es) | Preparado alimenticio y composicion farmaceutica que contiene un extracto embrionario y sus respectivos usos. | |
RU2578818C1 (ru) | Способ моделирования остеомиелита | |
RU2398377C1 (ru) | Способ консервирования лейкозных клеток, выделенных из селезенки мышей инбредной линии akr/jy | |
RU2232430C1 (ru) | Способ моделирования острого гнойного холангита у экспериментальных животных | |
RU2816989C1 (ru) | Способ экспериментального моделирования эхинококкоза печени | |
RU2610361C2 (ru) | Способ экспериментального моделирования аутотрансплантации селезеночной ткани в печень | |
Schmiedt et al. | Effects of renal autograft ischemia and reperfusion associated with renal transplantation on arterial blood pressure variables in clinically normal cats | |
RU2681109C1 (ru) | Способ стимуляции репаративных процессов при имплантации сверхлегкого полипропиленового эндопротеза в брюшную стенку | |
RU2506955C1 (ru) | Способ изготовления биотрансплантатов твердой мозговой оболочки для эндоскопических вмешательств в реконструктивной хирургии | |
RU2524128C1 (ru) | Способ моделирования остеорезорбции в условиях репаративного остеогенеза | |
RU2709220C1 (ru) | Способ моделирования острого панкреатита различной степени тяжести у крыс | |
RU2715922C1 (ru) | Способ лечения распространенного перитонита | |
RU2224297C1 (ru) | Способ моделирования хронического воспаления придатков матки |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20160116 |