RU2224297C1 - Способ моделирования хронического воспаления придатков матки - Google Patents
Способ моделирования хронического воспаления придатков матки Download PDFInfo
- Publication number
- RU2224297C1 RU2224297C1 RU2002117343/14A RU2002117343A RU2224297C1 RU 2224297 C1 RU2224297 C1 RU 2224297C1 RU 2002117343/14 A RU2002117343/14 A RU 2002117343/14A RU 2002117343 A RU2002117343 A RU 2002117343A RU 2224297 C1 RU2224297 C1 RU 2224297C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- medical
- oviducts
- experiment
- animals
- day
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Surgical Instruments (AREA)
Abstract
Изобретение относится к медицине, к экспериментальной гинекологии, и может быть использовано для моделирования хронического воспаления придатков матки. Лапаротомный разрез выполняют протяженностью 1,5-2 см, вводят суточную культуру золотистого стафилококка, штамм 209 в дозе 0,1 мл, содержащей 50 млн микробных тел, непосредственно в яйцеводы, одномоментно десерозируют в 8-10 точках висцеральную брюшину яйцеводов и покровный эпителий яичников медицинским скарификатором, после чего распыляют над десерозированными участками медицинский тальк в дозе 0,1 мг/см2, операционную рану послойно ушивают отдельными кетгутовыми швами, животных выводят из эксперимента на 30-40-е сутки путем декапитации под ингаляционным наркозом парами эфира. Данное изобретение направлено на приближение экспериментальной модели к клиническому и морфологическому течению хронического воспаления придатков матки у женщин и расширение области использования модели хронического воспаления придатков матки. 8 ил.
Description
Изобретение относится к медицине, конкретно к экспериментальной гинекологии, и касается способов моделирования хронического воспаления придатков матки.
Известен способ моделирования острого воспалительного процесса придатков матки [1]. Сущность способа состоит в следующем. Для опыта используют чистопородных половозрелых крольчих. Под местной инфильтрационной анестезией 20-30 мл 0,5% раствора новокаина проводят нижнесрединную лапаротомию в асептических условиях. Одну из маточных труб выводят в рану и тщательно обкладывают стерильными салфетками Под ампулярный конец трубы вблизи фимбрий подводят кетгутовую лигатуру и перевязывают трубу в указанном отделе, второй конец этой же лигатуры проводят на расстояние 0,2 см от места перевязки трубы, но не перевязывают. После такой предварительной подготовки, необходимой для предупреждения попадания микробов в брюшную полость, стенку трубы прокалывают тонкой инъекционной иглой, которую затем продвигают на 2 см проксимально и вводят из шприца "Рекорд" 0,2 мл суточной культуры золотистого стафилококка (штамм 209), содержащей 100 млн микробных тел. После извлечения иглы выше места прокола производят перевязку трубы, предварительно наложенной лигатурой. Вторая труба служит контролем Брюшную полость ушивают наглухо.
Данная модель позволяет изучить течение острого воспаления придатков, оценить воздействие различных фармакологических препаратов и немедикаментозной терапии. Однако данная модель имеет ряд недостатков: обезболивание местной анестезией 0,5% раствором новокаина не обеспечивает полной обездвижимости животных в станке на время операции, не всегда предохраняет от развития болевого шока, удлиняется время операции, перевязка маточной трубы перед введением культуры стафилококка нарушает каналикулярный путь распространения инфекции и способствует механической травматизации тканей. Кроме того, клиническое течение воспаления придатков матки у женщин характеризуется преимущественным вовлечением обеих маточных труб, а в существующей методике инфицирование одностороннее.
По назначению наиболее близким прототипом является способ моделирования асептического хронического воспаления придатков матки [2]. В качестве экспериментальных животных были выбраны беспородные белые крысы-самки массой 200-220 г. Под ингаляционным масочным наркозом парами эфира производят лапаротомию, рога матки выводят и обкладывают стерильными салфетками. Тонкой инъекционной иглой прокалывают маточный рог в непосредственной близости от яйцевода и продвигают иглу дистальнее. С помощью инсулинового шприца с обеих сторон в рог матки в непосредственной близости от яйцевода и в область яичниковой сумки вводят по 0,1 мл 0,5% раствора каррагенина, который состоит из комплекса фракций сульфатированной галактозы, выделенной из морских водорослей.
Однако экспериментальное хроническое воспаление придатков матки, созданное введением каррагенина, несмотря на стабильность воспроизведения, чаще сопровождается развитием воспалительных инфильтратов больших размеров, состоящих из лимфоидных, плазматических, тучных клеток и фибробластов, формируются эпигелиоидные гранулемы. Подобная воспалительная реакция тканей характерна для определенного вида инфекции и, в частности, для генитального туберкулеза и актиномикоза, удельный вес которых в этиологической структуре воспаления придатков матки составляет не более 10-15%. Гораздо чаще в клинической практике наблюдаются негранулематозные воспалительные процессы придатков матки.
Задачей, решаемой данным изобретением, является приближение экспериментальной модели к клиническому и морфологическому течению хронического воспаления придатков матки у женщин и расширение области использования модели хронического воспаления придатков матки.
Поставленная задача решается способом моделирования хронического воспаления придатков матки путем нижнесрединной лапаротомии с протяженностью разреза 1,5-2 см (микролапаротомия) под ингаляционным наркозом парами эфира у беспородных половозрелых крыс-самок, находящихся в фазах покоя (метаэструс, диэструс) астрального цикла, выведения рогов матки с яйцеводами и яичниками, введением в оба яйцевода флогогена в виде 0,1 мл суточной культуры золотистого стафилококка - штамм 209, содержащего 50 млн. микробных тел, одномоментного точечного десерозирования медицинским скарификатором в 8-10 точках висцеральной брюшины яйцеводов с двух сторон, покровного эпителия яичников медицинским скарификатором с двух сторон, распыления над десерозированными участками медицинского талька в дозе 0,1 мг/см2, послойным закрытием отдельными кетгутовыми швами раны передней брюшной стенки и выведением животных из эксперимента декапитацией под ингаляционным наркозом парами эфира на 30-40-е сутки.
Новым является то, что животных вводят в эксперимент в фазы покоя эстрального цикла, для снижения толерантности к инфекции, нижнесрединный лапаротомный разрез выполняют протяженностью 1,5-2 см, вводят флогоген в виде 0,1 мл суточной культуры золотистого стафилококка - штамм 209, содержащего 50 млн микробных тел непосредственно в оба яйцевода, одномоментно проводят десерозирование висцеральной брюшины яйцеводов и покровного эпителия яичников медицинским скарификатором с двух сторон в 8-10-ти точках, распыляют над десерозированными участками медицинский тальк в дозе 0,1 мг/см2, послойно закрывают отдельными кетгутовыми швами рану передней брюшной стенки.
Данные отличительные признаки не вытекают явным образом для специалиста из уровня техники и позволяют достичь нового положительного эффекта, а именно - приближения модели к клиническому течению хронического воспаления придатков матки.
Предлагаемый способ апробирован на 52-х беспородных половозрелых белых крысах-самках в отделе экспериментальной физиологии и хирургии Центральной научно-исследовательской лаборатории Сибирского государственного медицинского университета. Таким образом, техническое решение соответствует критериям изобретения "новизна", "изобретательский уровень", "промышленно применим".
Способ осуществляют следующим образом
В качестве экспериментального материала используют половозрелых белых беспородных крыс-самок (массой 200-220 г), находящихся в фазах покоя (метаэструс, диэструс) астрального цикла.
В качестве экспериментального материала используют половозрелых белых беспородных крыс-самок (массой 200-220 г), находящихся в фазах покоя (метаэструс, диэструс) астрального цикла.
Крысу фиксируют в станке в положении на спине. Операционное поле широко и тщательно выбривают. Кожу обрабатывают спиртом и 5-% йодной настойкой. Под ингаляционным наркозом парами эфира производят нижнюю срединную лапаротомию с протяженностью разреза не более 1,5-2 см. Рога матки с яйцеводами и яичниками выводят и обкладывают стерильными салфетками, увлажненными стерильным 0,9% раствором натрия хлорида. Тонкой инъекционной иглой прокалывают яйцевод и продвигают иглу дистальнее. При помощи инсулинового шприца (фирма-производитель MISAWA MEDICAL INDASTRY CO LTD, TOKYO, JAPAN) вводят 0,1 мл суточной культуры золотистого стафилококка (штамм 209), содержащей 50 млн микробных тел. Аналогично проводят инфицирование второго яйцевода. Тотчас же после инфицирования выполняют точечное десерозирование висцеральной брюшины яйцеводов, покровного эпителия яичников стерильным медицинским скарификатором с двух сторон в 8-10-ти точках. И сразу же после этого над десерозированными участками распыляют медицинский тальк в дозе 0,1 мг/см2. Затем послойно отдельными кетгутовыми швами закрывают рану передней брюшной стенки: брюшину, апоневроз и мышцу вместе, кожу - отдельно. Шов на коже обрабатывают йодонатом и крысу помещают в клетки. Антибиотикотерапию и другие лечебные мероприятия не применяют.
Экспериментальных животных содержат в стандартных условиях вивария на обычном питании с добавлением овощей и творога, при дозированном освещении (12: 12, свет с 8 часов). Ежедневно всех животных осматривают, отмечают их общее состояние, внешний вид, поведение, пищевую возбудимость и двигательную активность. Измеряют массу тела и температуру в ампулярном отделе прямой кишки. Определяют количество лейкоцитов в периферической крови и проводят кольпоцитологическое исследование для диагностики фазы эстрального цикла. Животных выводят из эксперимента декапитацией под ингаляционным наркозом парами эфира в фазу диэструса, которую определяют кольпоцитологачески, на 30-40-е сутки опыта.
Конкретный пример
В качестве экспериментального материала использовалась половозрелая белая беспородная крыса-самка массой 210 г., находящиеся в фазе диэструса эстрального цикла, полученная в Центральном виварии Сибирского государственного медицинского университета. Эксперимент выполнялся на базе отдела экспериментальной физиологии и хирургии центральной научно-исследовательской лаборатории Сибирского государственного медицинского университета.
В качестве экспериментального материала использовалась половозрелая белая беспородная крыса-самка массой 210 г., находящиеся в фазе диэструса эстрального цикла, полученная в Центральном виварии Сибирского государственного медицинского университета. Эксперимент выполнялся на базе отдела экспериментальной физиологии и хирургии центральной научно-исследовательской лаборатории Сибирского государственного медицинского университета.
Крысу фиксировали в станке в положении на спине. Операционное поле широко и тщательно выбривали. Кожу обрабатывали спиртом и 5-% йодной настойкой. Под ингаляционным наркозом парами эфира производили нижнюю срединную лапаротомию, с протяженностью разреза 2 см. Рога матки с придатками выводили и обкладывали стерильными салфетками, увлажненными стерильным 0,9% раствором натрия хлорида. Тонкой инъекционной иглой прокалывали яйцевод и продвигали иглу дистальнее. При помощи инсулинового шприца (фирма-производитель MISAWA MEDICAL INDASTRY СО LTD, TOKYO, JAPAN) вводили 0,1 мл суточной культуры золотистого стафилококка (штамм 209), содержащей 50 млн микробных тел. Разведение культуры и установление количества микробных тел в единице объема производилось на кафедре микробиологии Сибирского государственного медицинского университета непосредственно перед опытом. Аналогично проводилось инфицирование второго яйцевода. Тотчас же после инфицирования выполнялось точечное десерозирование висцеральной брюшины яйцеводов, покровного эпителия яичников стерильным медицинским скарификатором с двух сторон в 8-ми точках. И сразу же после этого над десерозированными участками распылялся медицинский тальк в дозе 0,1 мг/см2 при помощи пластикового инсуфлятора. Затем послойно непрерывным швом закрывали рану передней брюшной стенки (брюшину, апоневроз и мышцу вместе, кожу - отдельно) кетгутом 4/0. Шов на коже обрабатывали йодонатом и животных помещали в клетки. Антибиотикотерапию и другие лечебные мероприятия не применяли.
Экспериментальное животное содержали в стандартных условиях вивария на обычном питании с добавлением овощей и творога, при дозированном освещении (12: 12, свет с 8 часов). Ежедневно животное осматривали, отмечали его общее состояние, внешний вид, поведение, пищевую возбудимость и двигательную активность. Массу тела измеряли на медицинских весах, температуру - максимальным ртутным термометром в ампулярном отделе прямой кишки. Определяли количество лейкоцитов в периферической крови и проводили кольпоцитологическое исследование для диагностики стадии астрального цикла.
Выводили животное из эксперимента на 40-е сутки (в стадию диэструса, которую определяли кольпоцитологически) путем декапитации под ингаляционным наркозом парами эфира.
Тотчас после взятия яйцеводы и яичники фиксировали в жидкости Карнуа, заливали в парафин и после приготовления срезов толщиной 4-5 мкм окрашивали гематоксилином и эозином и по Ван-Гизону. Гистологические исследования проводились на кафедре гистологии, цитологии и эмбриологии Сибирского государственного медицинского университета.
Визуально в брюшной полости у животного, умерщвленного на 40-е сутки, обращал на себя внимание выраженный спаечный процесс. Имелись непрозрачные с множественными мелкими визуализируемыми сосудами спайки, плоскостные и паутинные. Яичники и яйцеводы были интимно спаяны с окружающим сальником, слева определялся гидросальпинкс (фиг.1).
При гистологическом исследовании яичников и яйцеводов животных на 40-е сутки белочная оболочка утолщена, сформированы грубые фиброзные спайки с окружающим сальником, множественные включения "тальковых телец" в них (фиг. 2). В области спаек нередко выявлялись клеточные инфильтраты (фиг.3). Между сальником и покровным эпителием яичников определялись множественные осумкованные полости, содержавшие скопления макрофагов группами по 5-7 и более клеток. В корковом веществе яичников было уменьшено количество примордиальных и растущих фолликулов, увеличено - атретических фолликулов и тел (фиг. 4). Довольно часто встречались "тальковые тельца" (фиг.5), выявлялись гигантские клетки "инородных тел" (фиг.6). Часть подверженных атрезии фолликулов характеризовалась явлениями кариорексиса фолликулярного эпителия, дегенерацией овоцита (фиг.7). В корковом и мозговом веществе яичника обнаруживались тромбоз мелких венозных сосудов, кариопикноз интерстициальных клеток (фиг. 8). Отмечались пролиферативные изменения соединительной ткани в корковом и мозговом слоях яичника.
Результаты исследований
Эксперимент был проведен на 52 половозрелых беспородных крысах-самках, у которых было создано хроническое воспаление придатков матки.
Эксперимент был проведен на 52 половозрелых беспородных крысах-самках, у которых было создано хроническое воспаление придатков матки.
Контролем служили интактные животные (24 особи) одного возраста с подопытными и содержавшиеся вместе с ними в условиях вивария. Взятие контрольного материала производили в динамике одновременно с экспериментальным для учета возрастных изменений.
При вскрытии брюшной полости визуально изучали состояние органов брюшной полости: наличие и характер выпота, состояние брюшины, величину, положение и подвижность рогов матки, яйцеводов и яичников, выраженность спаечного процесса.
Тотчас после взятия яйцеводы и яичники фиксировали в жидкости Карнуа, заливали в парафин и после приготовления срезов толщиной 4-5 мкм окрашивали гематоксилином и эозином и по Ван-Гизону. Гистологические исследования проводились на кафедре гистологии, цитологии и эмбриологии Сибирского государственного медицинского университета.
Визуально в брюшной полости у животных, умерщвленных на 30-е и 40-е сутки, обращал на себя внимание выраженный спаечный процесс. Имелись непрозрачные с множественными мелкими визуализируемыми сосудами спайки, плоскостные и паутинные. Яичники и яйцеводы были интимно спаяны с окружающим сальником, в ряде случаев с образованием кист с серозно-геморрагическим содержимым, а также иногда и гидросальпинксов.
При гистологическом исследовании яичников и яйцеводов животных на 30-40-е сутки белочная оболочка утолщена, сформированы грубые фиброзные спайки с окружающим сальником, множественные включения "тальковых телец" в них. Между сальником и покровным эпителием яичников определялись множественные осумкованные полости, содержавшие скопления макрофагов группами по 5-7 и более клеток. В корковом веществе яичников было уменьшено количество примордиальных и растущих фолликулов, увеличено - атретических фолликулов и тел. Также довольно часто встречались инкапсулированные "тальковые тельца", выявлялись гигантские клетки "инородных тел", нагруженные тальковыми тельцами. Часть подверженных атрезии фолликулов характеризовалась явлениями кариорексиса фолликулярного эпителия, дегенерацией овоцита. Отмечались пролиферативные и фиброзные изменения соединительной ткани в корковом и мозговом слоях яичника, а также в собственной пластинке слизистой яйцеводов.
Таким образом, для приближения экспериментальной модели к клиническому и морфологическому течению хронического воспаления верхнего отдела генитального тракта предложено комбинировать монокультуральное воспаление с одномоментным десерозированием висцеральной брюшины яйцеводов и покровного эпителия яичников, а также распылением над изучаемыми органами медицинского талька в дозе 0,1 мг/см2. Это позволяет создать модель хронического воспаления придатков матки с выраженным спаечным процессом. В качестве экспериментальных животных выбраны белые крысы-самки, поскольку у белых беспородных крыс, в отличие от крольчих, овуляция спонтанная, а не индуцированная самцом, кожа у крыс морфологически приближается к коже человека, что очень важно, учитывая ее роль в реализации положительных эффектов физиотерапевтических воздействий. Для снижения толерантности животных к инфекции эксперимент осуществляют в фазы покоя (метаэструс, диэструс) эстрального цикла. Выбор инфекта обусловлен тем, что по-прежнему остается высокой роль аэробной инфекции и в частности золотистого стафилококка в развитии воспалительных заболеваний придатков матки и поэтому для создания экспериментальной модели взят золотистый стафилококк (штамм 209), обладающий плазмокоагулирующими и гемолитическими свойствами, лецитиназной активностью, способностью ферментировать маннит, не лизирующийся имеющимися фагами. Возбудитель чувствителен к β-лактамным антибиотикам. Комбинирование инфекционного агента с тальком позволяет приблизить экспериментальную модель к клиническому течению хронического воспаления придатков матки у женщин.
Как показали экспериментальные исследования, предлагаемая модель имеет характерные для клинического течения хронических воспалительных заболеваний придатков матки у женщин патогенетические признаки - контаминация слизистой оболочки яйцеводов с инфекционным фактором при его введении в дистальные отделы рогов матки, восходящее, двухстороннее инфицирование, негранулематозный тип воспалительного процесса в тканях яичников и яйцеводов на 30-40-е сутки. Адекватное обезболивание исключало развитие болевого шока.
По предложенной методике нами создана модель хронического воспаления придатков матки у 52-х экспериментальных животных (беспородные белые половозрелые крысы-самки массой 200-220 г.). Необходимо отметить относительную простоту воспроизведения модели воспаления придатков матки, отсутствие летальных исходов у экспериментальных животных и стабильное воспроизведение полученных результатов.
Данная модель хронического воспаления придатков матки с выраженным спаечным процессом позволяет провести апробацию терапевтического действия ряда новых препаратов, в сочетании с методами физиотерапевтического лечения.
Литература
1. Самородинова Л.А. Методика создания экспериментального инфекционного сальпингита//Бюлл. эксперим. биол. и медицины. -1966. - 2. - С.123-124.
1. Самородинова Л.А. Методика создания экспериментального инфекционного сальпингита//Бюлл. эксперим. биол. и медицины. -1966. - 2. - С.123-124.
2. Тихоновская О. А. Моделирование острого и хронического воспаления придатков матки // Молодежь и научно-технический прогресс. - Тез. докл. - Томск, 1986. - С.76.
Claims (1)
- Способ моделирования хронического воспаления придатков матки путем проведения у белых беспородных половозрелых крыс-самок нижнесрединной лапаротомии, выведения рогов матки с яйцеводами и яичниками, введения флогогена, ушивания операционной раны и выведения животных из эксперимента, отличающийся тем, что лапаротомный разрез выполняют протяженностью 1,5-2 см, вводят суточную культуру золотистого стафилококка, штамм № 209 в дозе 0,1 мл, содержащей 50 млн микробных тел, непосредственно в яйцеводы, одномоментно десерозируют в 8-10 точках висцеральную брюшину яйцеводов и покровный эпителий яичников медицинским скарификатором, после чего распыляют над десерозированными участками медицинский тальк в дозе 0,1 мг/см2, операционную рану послойно ушивают отдельными кетгутовыми швами, животных выводят из эксперимента на 30-40 сутки путем декапитации под ингаляционным наркозом парами эфира.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2002117343/14A RU2224297C1 (ru) | 2002-06-28 | 2002-06-28 | Способ моделирования хронического воспаления придатков матки |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2002117343/14A RU2224297C1 (ru) | 2002-06-28 | 2002-06-28 | Способ моделирования хронического воспаления придатков матки |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2002117343A RU2002117343A (ru) | 2004-01-20 |
RU2224297C1 true RU2224297C1 (ru) | 2004-02-20 |
Family
ID=32172936
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2002117343/14A RU2224297C1 (ru) | 2002-06-28 | 2002-06-28 | Способ моделирования хронического воспаления придатков матки |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2224297C1 (ru) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2533739C2 (ru) * | 2012-07-11 | 2014-11-20 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Научно-исследовательский институт акушерства и гинекологии им. Д.О. Отта" Северо-Западного отделения Российской академии медицинских наук | Способ моделирования хронических воспалительных заболеваний женских половых органов в эксперименте |
-
2002
- 2002-06-28 RU RU2002117343/14A patent/RU2224297C1/ru not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
ГАРМАШЕВА Н.Д. Экспериментальный инфекционный эндометрит. - Л.: Медицина, 1947, с. 168. КЕИТ Л. и др. Причины инфекционных заболеваний малого таза. Репродуктивное здоровье. Пер. с англ. - М.: Медицина, 1988, т.1, гл.1, с. 123-132. СМЕТНИК В.П. и др. Неоперативная гинекология. СПб.: СОТИС, 1995, с. 12-26. МАИБОРОДА А.А. и др. Способ моделирования воспаления. Восточно-Сибирский журнал инфекционной патологии, 1995, № 1, с. 20 и 21. * |
ТИХОНОВСКАЯ О.А. Моделирование острого и хронического воспаления придатков матки. Молодежь и научно-технический прогресс. Тезисы докладов научно-практической конференции. - Томск: Издательство Томского университета, 1986, с. 76. * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2533739C2 (ru) * | 2012-07-11 | 2014-11-20 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Научно-исследовательский институт акушерства и гинекологии им. Д.О. Отта" Северо-Западного отделения Российской академии медицинских наук | Способ моделирования хронических воспалительных заболеваний женских половых органов в эксперименте |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2002117343A (ru) | 2004-01-20 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Koninckx et al. | Role of the peritoneal cavity in the prevention of postoperative adhesions, pain, and fatigue | |
Ferguson et al. | Scar–free healing: from embryonic mechanisms to adult therapeutic intervention | |
Amer et al. | Amnion graft following hysteroscopic lysis of intrauterine adhesions | |
Davidson | Animal models for wound repair | |
Samuels et al. | Fetal scarless wound healing | |
Wang et al. | Establishments and evaluations of post‐operative adhesion animal models | |
DaCosta et al. | Diphenylhydantoin sodium promotes early and marked angiogenes is and results in increased collagen deposition and tensile strength in healing wounds | |
RU2582226C1 (ru) | Способ лечения и профилактики рецидивов внутриматочных синехий | |
CN109568670B (zh) | 一种子宫内膜损伤修复的水凝胶及其制备方法 | |
CN110755695A (zh) | 一种具有生理响应性的壳聚糖凝胶及其在宫腔防黏连中的应用 | |
WO2022022475A1 (zh) | 多肽在制备创伤治疗药物中的用途 | |
RU2363476C1 (ru) | Способ профилактики образования послеоперационных спаек | |
RU2224297C1 (ru) | Способ моделирования хронического воспаления придатков матки | |
RU2525533C1 (ru) | Способ лечения и профилактики рецидивов внутриматочных синехий | |
WO2003022260B1 (en) | Use of methotrexate and l-arginine for the preparation of a medicament for treatment of uterine myoma | |
RU2714949C2 (ru) | Способ моделирования местного отграниченного перитонита у крыс | |
Siqueira et al. | Treatment of endometriosis with local acetylsalicylic acid injection: experimental study in rabbits | |
Sanoulis et al. | The use of plateletrich plasma in the gynaecological clinical setting. A review | |
Keener | Experimental observations on the use of rubber in the treatment of craniosynostosis | |
Valizadeh et al. | Will stem cells from fat and growth factors from blood bring new hope to female patients with reproductive disorders? | |
Tucker et al. | Chitosan‐based agent use for hemostasis after cryptorchidectomy in a horse | |
Özaydın et al. | Experimental skin-wound methods and healing-assessment in animal models: a review. | |
RU2808368C1 (ru) | Способ моделирования синдрома Ашермана на крысах | |
CN115837011B (zh) | 一种缓释乳糖酸的注射剂及乳糖酸微球在治疗薄型子宫内膜中的应用 | |
CN116763724B (zh) | 一种负载姜黄素的重组胶原蛋白水凝胶的制备方法及其在宫腔粘连治疗中的应用 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20040629 |