RU2816989C1 - Способ экспериментального моделирования эхинококкоза печени - Google Patents
Способ экспериментального моделирования эхинококкоза печени Download PDFInfo
- Publication number
- RU2816989C1 RU2816989C1 RU2024101505A RU2024101505A RU2816989C1 RU 2816989 C1 RU2816989 C1 RU 2816989C1 RU 2024101505 A RU2024101505 A RU 2024101505A RU 2024101505 A RU2024101505 A RU 2024101505A RU 2816989 C1 RU2816989 C1 RU 2816989C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- liver
- echinococcosis
- layer
- germinal layer
- medicine
- Prior art date
Links
- 208000009366 Echinococcosis Diseases 0.000 title claims abstract description 16
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 16
- 208000004751 Hepatic Echinococcosis Diseases 0.000 title abstract 2
- 238000004088 simulation Methods 0.000 title abstract 2
- 210000004185 liver Anatomy 0.000 claims abstract description 22
- 208000031513 cyst Diseases 0.000 claims abstract description 9
- 206010011732 Cyst Diseases 0.000 claims abstract description 8
- 238000013459 approach Methods 0.000 claims abstract description 6
- QTCANKDTWWSCMR-UHFFFAOYSA-N costic aldehyde Natural products C1CCC(=C)C2CC(C(=C)C=O)CCC21C QTCANKDTWWSCMR-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 3
- ISTFUJWTQAMRGA-UHFFFAOYSA-N iso-beta-costal Natural products C1C(C(=C)C=O)CCC2(C)CCCC(C)=C21 ISTFUJWTQAMRGA-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 3
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 claims abstract description 3
- 206010014096 Echinococciasis Diseases 0.000 claims description 11
- 239000003814 drug Substances 0.000 abstract description 4
- 241000244160 Echinococcus Species 0.000 abstract description 3
- 201000003808 Cystic echinococcosis Diseases 0.000 abstract description 2
- 238000011477 surgical intervention Methods 0.000 abstract description 2
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract 1
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 4
- 241000700159 Rattus Species 0.000 description 4
- KFZMGEQAYNKOFK-UHFFFAOYSA-N Isopropanol Chemical compound CC(C)O KFZMGEQAYNKOFK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- ZCYVEMRRCGMTRW-UHFFFAOYSA-N 7553-56-2 Chemical compound [I] ZCYVEMRRCGMTRW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N Formaldehyde Chemical compound O=C WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000700157 Rattus norvegicus Species 0.000 description 2
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 2
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 2
- 229910052740 iodine Inorganic materials 0.000 description 2
- 239000011630 iodine Substances 0.000 description 2
- 239000012188 paraffin wax Substances 0.000 description 2
- 238000005303 weighing Methods 0.000 description 2
- ZUYKJZQOPXDNOK-UHFFFAOYSA-N 2-(ethylamino)-2-thiophen-2-ylcyclohexan-1-one;hydrochloride Chemical compound Cl.C=1C=CSC=1C1(NCC)CCCCC1=O ZUYKJZQOPXDNOK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- HBGOLJKPSFNJSD-UHFFFAOYSA-N Etamsylate Chemical compound CC[NH2+]CC.OC1=CC=C(O)C(S([O-])(=O)=O)=C1 HBGOLJKPSFNJSD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N Hydrochloric acid Chemical compound Cl VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000004792 Prolene Substances 0.000 description 1
- 206010039897 Sedation Diseases 0.000 description 1
- 210000001015 abdomen Anatomy 0.000 description 1
- 238000010171 animal model Methods 0.000 description 1
- 230000002421 anti-septic effect Effects 0.000 description 1
- 230000000740 bleeding effect Effects 0.000 description 1
- 210000004204 blood vessel Anatomy 0.000 description 1
- 230000037396 body weight Effects 0.000 description 1
- 244000309464 bull Species 0.000 description 1
- 210000000038 chest Anatomy 0.000 description 1
- 238000002224 dissection Methods 0.000 description 1
- 229940011899 ethamsylate Drugs 0.000 description 1
- 239000003193 general anesthetic agent Substances 0.000 description 1
- 230000023597 hemostasis Effects 0.000 description 1
- 206010019680 hepatic infarction Diseases 0.000 description 1
- 239000007943 implant Substances 0.000 description 1
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 1
- 230000007935 neutral effect Effects 0.000 description 1
- 210000000056 organ Anatomy 0.000 description 1
- 238000002559 palpation Methods 0.000 description 1
- 238000011160 research Methods 0.000 description 1
- 230000036280 sedation Effects 0.000 description 1
- 210000001562 sternum Anatomy 0.000 description 1
- 210000002784 stomach Anatomy 0.000 description 1
- 238000001356 surgical procedure Methods 0.000 description 1
- 239000003356 suture material Substances 0.000 description 1
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 1
- 229960001594 tiletamine hydrochloride Drugs 0.000 description 1
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 1
- 210000002417 xiphoid bone Anatomy 0.000 description 1
Abstract
Изобретение относится к медицине и ветеринарии. После предоперационной подготовки определяют край правой реберной дуги. При помощи скальпеля выполняют косопоперечный доступ из правого подреберья. На поверхность печени укладывают герминативный слой кисты эхинококка размером 1,0×1,0 см. К печени подшивают герминативный слой. Рану послойно ушивают. Способ позволяет приблизить модель кистозного эхинококкоза к его клиническому течению; сформировать кисты за меньший интервал времени; однократно и технически просто исполнить оперативное вмешательство для экспериментального моделирования эхинококкоза печени. 5 ил., 1 пр.
Description
Изобретение относится к медицине и ветеринарии, может быть использовано для моделирования эхинококкоза печени.
В литературе известен способ моделирования эхинококкоза печени в эксперименте, заключающийся в имплантации дочерней эхинококковой кисты в полость, которая формируется сведением двумя кисетными швами всех пяти долей печени белых крыс [1]. Ранее были предложены и другие способы формирования модели эхинококкоза, заключающиеся во введении зародышевых элементов внутрибрюшинно, непосредственно в паренхиму печени или в кровоснабжающие орган сосуды [2,3].
Недостатками данных способов являются:
- многоэтапность методики,
- необходимость повторной операции для удаления баллона и имплантации дочернего пузыря,
- возможность обструкции крупных сосудов и инфаркта печени при введении зародышевых элементов эхинококка в паренхиму,
- длительный срок формирования эхинококковой кисты.
Предлагаемое изобретение направлено на улучшение способа моделирования эхинококкоза печени.
Решение поставленной задачи обеспечивается тем, что в способе экспериментального моделирования эхинококкоза печени после косопоперечного доступа из правого подреберья на поверхность печени укладывают герминативный слой эхинококковой кисты размером 1,0×1,0 см, затем одним швом фиксируют герминативный слой к печени, после чего рану ушивают.
В предлагаемом методе улучшение способа моделирования эхинококкоза печени достигается за счет:
- приближения модели кистозного эхинококкоза к его клиническому течению,
- формирования кисты за меньший интервал времени,
- однократного оперативного вмешательства,
- технической простоты исполнения.
Изобретение поясняется: фиг. 1, на которой показана фиксация крысы на операционном столе; фиг. 2, на которой показано рассечение кожи скальпелем и косопоперечный доступ из правого подреберья; фиг. 3, на которой показано расположение герминативного слоя кисты эхинококка размером 1,0×1,0 см; фиг. 4, на которой показано подшивание герминативного слоя эхинококка к печени; фиг. 5, на которой показано послойное ушивание краев раны.
Моделирование эхинококкоза печени осуществляют следующим образом: лабораторным крысам линии Wistar выполняется косопоперечный доступ из правого подреберья, после чего на поверхность печени укладывается герминативный слой кисты эхинококка размером 1,0×1,0 см и подшивается нитью Prolene 6/0. Затем выполняется гемостаз и послойное ушивание раны наглухо. Данный способ апробирован на 15 крысах линии Wistar массой 250±50 г в соответствии с «Международными рекомендациями по проведению медико-биологических исследований с использованием лабораторных животных».
Пример. Ниже приводятся результаты апробации. В условиях операционной крысам линии Wistar массой 250±50 г вводится общий анестетик диссоциативного действия Zoletil 100 (по 250 мг тилетамина гидрохлорида и золепама гидрохлорида) в дозе 20 мг/кг массы. После наступления седативного эффекта у животного сбривается шерсть в области брюшка и грудной клетки справа, после чего осуществляется фиксация на операционном столе (фиг. 1). Операционное поле обрабатывается антисептическим раствором по Филончикову-Гроссиху. Пальпаторно определяется мечевидный отросток грудины и край правой реберной дуги. При помощи скальпеля производится косопоперечный доступ из правого подреберья (фиг. 2). На поверхность печени укладывается герминативный слой кисты эхинококка размером 1,0×1,0 см (фиг. 3), после чего одним швом подшивается герминативный слой к печени (фиг. 4). Края раны ушиваются с использованием шовного материала послойно наглухо (фиг. 5), после чего обрабатываются 5% спиртовым раствором йода. С целью профилактики кровотечения, крысе однократно вводится 0,1 мл 12,5% этамзилата, после чего животное укладывается животом на предварительно обернутый пеленкой пузырь со льдом на 15-20 минут. На завершающем этапе процедуры животное помещается в чистую клетку. Обработка операционного шва 5% спиртовым раствором йода проводится один раз в сутки на протяжении 3 дней.
Для объективной оценки эффективности моделирования эхинококкоза печени использовали гистологический метод. Киста печени фиксировалась в 10% нейтрального формалина, в течение 24 часов. После фиксации образцы подвергались дегидратации путем инкубации в изопропиловых спиртах и имбибировались парафином по общепринятой методике. Из парафиновых блоков с помощью ротационного микротома изготавливались срезы ткани толщиной 4 мкм, окрашивались гематоксилином-эозином и пикрофуксином по Ван Гизон и заключались на покровные стекла. Изучение гистологических препаратов осуществлялось с помощью бинокулярного микроскопа в проходящем свете при суммарном увеличении ×50, ×100, ×200, ×400.
Список литературы
1. Патент РФ №2222052, МПК G09B 23/28, 2000.01. Способ моделирования солитарного эхинококкоза печени в эксперименте. Заявитель: Дагестанская государственная медицинская академия.
2. Рузаков В.А., Павлов В.В., Коваленко Ф.П. Медицинская паразитология - 1987, 5 - с. 17-19;
3. Коваленко Ф.П., Баллад Н.Е., Джабаров В.И. Способ моделирования лаврального альвеококкоза. А.С. 991485. СССР. Бюл. Открытия. Изобретения. 1983. 3, с. 2
Claims (1)
- Способ экспериментального моделирования эхинококкоза печени, отличающийся тем, что после предоперационной подготовки определяют край правой реберной дуги, затем при помощи скальпеля выполняют косопоперечный доступ из правого подреберья, после чего на поверхность печени укладывают герминативный слой кисты эхинококка размером 1,0×1,0 см, затем к печени подшивают герминативный слой, после чего рану послойно ушивают.
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2816989C1 true RU2816989C1 (ru) | 2024-04-08 |
Family
ID=
Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2222052C2 (ru) * | 2001-06-15 | 2004-01-20 | Дагестанская государственная медицинская академия | Способ моделирования солитарного эхинококкоза печени в эксперименте |
| CN105641716A (zh) * | 2016-01-11 | 2016-06-08 | 王思博 | 一种细粒棘球蚴小动物活体内成像模型及其构建方法 |
Patent Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2222052C2 (ru) * | 2001-06-15 | 2004-01-20 | Дагестанская государственная медицинская академия | Способ моделирования солитарного эхинококкоза печени в эксперименте |
| CN105641716A (zh) * | 2016-01-11 | 2016-06-08 | 王思博 | 一种细粒棘球蚴小动物活体内成像模型及其构建方法 |
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| Исмаилов Д.А. и др. Способ моделирования эхинококкоза органов брюшной и плевральной полостей // Хирургия Узбекистана - 2008. - Nо2. - С. 84-87. О.Н. Андреянов и др. Получение ларвального альвеококка E.multilocularis в условиях лаборатории / Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями. - 2016. - Nо 17. - С. 27-29. * |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Alworth et al. | Laboratory reptile surgery: principles and techniques | |
| JP7542880B2 (ja) | オルガノイドの生体移植用組成物 | |
| Kashiwagi et al. | Use of a split dura for revascularization of ischemic hemispheres in moyamoya disease | |
| RU2816989C1 (ru) | Способ экспериментального моделирования эхинококкоза печени | |
| Tian et al. | Kidney transplantation in mice using left and right kidney grafts | |
| CN115475282A (zh) | 一种海藻酸盐-胶原可注射复合水凝胶及其制备方法 | |
| Dion et al. | Single bilateral ovarian venous return in uterine transplant: Validation in an orthotopic auto-transplant model in the Yucatan minipig | |
| RU2684195C1 (ru) | Способ перкутанной аспирационной пункционной биопсии печени у крыс | |
| RU2691647C1 (ru) | Средство для профилактики образования патологических кожных рубцов | |
| Dedja et al. | Heterotopic cardiac xenotransplantation in rodents: Report of a refined technique in a hamster‐to‐rat model | |
| Emir et al. | Does hyperbaric oxygen therapy reduce the effects of ischemia on colonic anastomosis in laparoscopic colon resection? | |
| RU2799132C1 (ru) | Способ создания модели рака печени на иммунодефицитных мышах | |
| RU2785942C1 (ru) | Способ моделирования обратимой механической желтухи | |
| RU2506955C1 (ru) | Способ изготовления биотрансплантатов твердой мозговой оболочки для эндоскопических вмешательств в реконструктивной хирургии | |
| RU2740270C1 (ru) | Способ лапаротомически ассистированной цистоскопии у мелких домашних животных | |
| RU2547697C1 (ru) | Способ моделирования острого деструктивного инфицированного панкреонекроза | |
| RU2740443C1 (ru) | Способ трансплантации фрагмента опухоли рака яичника человека в яичник самки иммунодефицитной мыши | |
| RU2756019C1 (ru) | Малоинвазивный метод хирургического лечения варикоцеле | |
| RU2222052C2 (ru) | Способ моделирования солитарного эхинококкоза печени в эксперименте | |
| RU2325865C2 (ru) | Способ лечения туберкулеза позвоночника, осложненного свищевым процессом | |
| RU2524128C1 (ru) | Способ моделирования остеорезорбции в условиях репаративного остеогенеза | |
| RU2610361C2 (ru) | Способ экспериментального моделирования аутотрансплантации селезеночной ткани в печень | |
| RU2232430C1 (ru) | Способ моделирования острого гнойного холангита у экспериментальных животных | |
| Malik et al. | EFFECT ON THE TESTOSTERONE ON HEPATIC REGENERATION IN RABBIT MODELS. | |
| RU2802674C1 (ru) | Способ полюсной клиновидной резекции селезенки |