RU2785942C1 - Способ моделирования обратимой механической желтухи - Google Patents

Способ моделирования обратимой механической желтухи Download PDF

Info

Publication number
RU2785942C1
RU2785942C1 RU2021136063A RU2021136063A RU2785942C1 RU 2785942 C1 RU2785942 C1 RU 2785942C1 RU 2021136063 A RU2021136063 A RU 2021136063A RU 2021136063 A RU2021136063 A RU 2021136063A RU 2785942 C1 RU2785942 C1 RU 2785942C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
tourniquet
bile duct
common bile
latex
laparotomy
Prior art date
Application number
RU2021136063A
Other languages
English (en)
Inventor
Михаил Александрович МОРОЗОВ
Екатерина Валериевна Блинова
Василий Иванович Давыдкин
Наталья Ивановна Морозова
Екатерина Николаевна Бородина
Анжелика Андреевна Балашкина
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Национальный исследовательский Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарёва"
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Национальный исследовательский Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарёва" filed Critical Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Национальный исследовательский Мордовский государственный университет им. Н.П. Огарёва"
Application granted granted Critical
Publication of RU2785942C1 publication Critical patent/RU2785942C1/ru

Links

Images

Abstract

Изобретение относится к медицине, а именно к экспериментальной хирургии и фармакологии. В брыжейке позади общего желчного протока делают окно, через которое проводят латексный жгут. Затем производят дополнительный разрез кожи на 1 см правее лапаротомной раны, оба конца латексного жгута через отдельные проколы мышц передней брюшной стенки в области контрапертурного разреза выводят под кожу. После чего жгут натягивают и формируют 3 узла, сдавливая общий желчный проток между жгутом и передней брюшной стенкой. Лапаротомную и контрапертурную раны ушивают. На 5-е сутки осуществляют доступ к латексному узлу путем рассечения кожи над ним, узел пересекают, выполняют декомпрессию общего желчного протока. Способ обеспечивает моделирование обратимой механической желтухи у белых лабораторных крыс для последующего изучения гепатопротекторной активности новых лекарственных веществ, прост в осуществлении, не требует выполнения повторной лапаротомии, что уменьшает количество осложнений со стороны органов брюшной полости и послеоперационной раны. 4 ил., 2 табл., 2 пр.

Description

Изобретение относится к медицине, экспериментальной хирургии и фармакологии, и может быть использовано для моделирования обратимой механической желтухи у крыс в эксперименте для изучения новых лекарственных средств, обладающих гепатопротекторной активностью.
Формирование обратимой механической желтухи у крыс вызывает некоторые сложности. Это связано анатомическими и физиологическими особенностями животных. В среднем для исследования используются семинедельные крысы массой от 200 до 250 г. Диаметр холедоха этих животных, как правило, не превышает 1 мм, следовательно, он имеет тонкие стенки и очень легко травмируется при манипуляциях. Другой важной особенностью является то, что использование объемных инородных предметов в брюшной полости приводит к выраженному спаечному процессу, рубцовой деформации органов (в том числе желчного протока) и гибели животных.
Существует несколько способов моделирования обратимой механической желтухи. Один из них – наложение нитей на желчные пути, которые проводят через полихлорвиниловые цилиндры и затягивают. Данный способ позволяет произвести реокклюзию желчных путей без повреждения (KZ 7553, МПК G09B 23/28, А61В 17/00, опубл. 17.05.1999).
Однако недостатком данного способа являются невозможность многократного создания регулируемой механической желтухи, так как после лапаротомии у 10 экспериментальных животных образуется выраженный спаечный процесс и повторно идентифицировать холедох не представляется возможным.
Наиболее близким способом моделирования регулируемой механической желтухи в эксперименте является наложение лигатурной перетяжки на общий желчный проток. Удаление лигатуры производится (декомпрессия холедоха) на 3-и сут после моделирования (Беляев А.Н. Эффективность внутрипортальных инфузий мексидола при лечении механической желтухи. Журнал «Хирургия» № 9, 2009, стр. 66-69).
Недостатками данного способа являются вероятность развязывания лигатуры и, как следствие, отсутствие возникновения желтухи, невозможность повторного оперативного вмешательства на экспериментальном животном вследствие выраженного спаечного процесса.
Известно формирование обратимой механической желтухи с использованием быстро рассасывающихся шовных материалов. Суть данной модели заключается в наложении на холедох быстро рассасываемого шовного материала. Удобство данного способа заключается в том, что для его формирования нет потребности в повторной лапаротомии. После окклюзии шовный материал постепенно начинает рассасываться, что в будущем приводит к восстановлению пассажа желчи. Однако срок рассасывания лигатуры будет зависеть от индивидуальных особенностей животных. В связи с этим невозможно применить данный способ в случаях, когда у животных нужно восстановить ток желчи в определенный день (Nurettin Kahramansoy., Fahri Yimaz., Mustafa Sit., A new model of reversible obstructive jaumdice usingrapidly absorbable suture materials. J Clinical and investigative medicine. December 2012; 35(6): Е351-357).
Известно формирование обратимой механической желтухи при помощи титановых клипс. Данный способ достаточно прост в исполнении и выполняется в два этапа. Его суть заключается в наложении титановой клипсы на желчный проток с последующим ее удалением. Однако несмотря на простоту, у данного способа есть ограничения. Во-первых, учитывая, что клипса не обладает эластичностью есть вероятность перфорации желчного протока при ее наложении. Во-вторых, при данном способе развивается выраженный спаечный процесс в области окклюзии, описанный автором данного способа. Это вызывает техническое трудности при удалении конструкции, что может привести к повреждению и перфорации желчного протока. Для того чтобы нивелировать недостатки данной модели автор предлагает использовать биорезорбируемую мембрану из гиалуроновой кислоты/карбоксиметилцеллюлозы, что значительно улучшает результат. Однако высокая стоимость титановых клипс и вышеуказанных мембран значительно ограничивают использование данного способа и не позволяет использовать его рутинно (Ryutaro Mori., Yoji Nagashima., Takafumi Kumamoto., Daisuke Morioka. A simple and easily reproducible model of reversible obstructive jaundice in rats. J in vivo (Athens, Greece) May 2019; 33: Е699-706).
Известно формирование обратимой механической желтухи с использованием холедохохоледохоанастомоза. Данный способ состоит из двух этапов. На первом этапе крысе выполняется лапаротомия, производится выделение холедоха и перевязка его двумя тонкими лигатурами, между которыми желчный проток пересекается. На втором этапе выполняется релапаротомия, выделяется проксимальная и дистальная культя желчного протока и при помощи пластиковой трубки от внутрисосудистого катетера производится наложение холедохохоледохоанастомоза с восстановлением пассажа желчи по желчевыводящим путям. Данный способ технически сложный и требует дополнительного дорогостоящего оборудования, микрохирургического навыка у исследователя, а так же длительного времени операции, что значительно ограничивает рутинное использование данного метода. В другой модификации данного способа описывается возможность наложения холедоходуоденоанастомоза, однако данный способ имеет все те же ограничения, плюс данный анастомоз достаточно часто забивается кишечным содержимым что приводит к нарушению тока желчи и как следствие рецидива механической желтухи (Xin Huang, Chong-Hui Li, Ai-Qun Zhang, Zhe Kong, Wan-Qing Gu, Jia-Hong Dong. J Annals of Surgical Treatment and Research 2017;92(6):389-395).
Представленный нами способ формирования обратимой желтухи у крыс имеет явное преимущество перед всеми вышеуказанными моделями. Во-первых, ток желчи в любой можно восстановить в любой день после окклюзии в зависимости от потребностей исследователя, что не позволяет первый способ. Во-вторых, для создания заявленного способа все используемые материалы имеют небольшую стоимость. Третьим преимуществом является простота и быстрота операции. Четвертым преимуществом является отсутствие потребности в повторной лапаротомии, что значительно уменьшает количество осложнений со стороны органов брюшной полости и послеоперационной раны.
Технический результат, при использовании заявленного изобретения, заключается в разработке способа моделировании обратимой механической желтухи у белых лабораторных крыс для последующего изучения гепатопротекторной активности новых лекарственных веществ.
Сущность изобретения заключается в том, что способ моделирования обратимой механической желтухи включает фиксацию дистального отдела общего желчного протока к внутренней поверхности передней брюшной стенке. В брыжейке позади общего желчного протока делают окно, через которое проводят латексный жгут, затем производят дополнительный разрез кожи на 1 см правее лапаротомной раны, оба конца латексного жгута через отдельные проколы мышц передней брюшной стенки в области контрапертурного разреза выводят под кожу, после чего жгут натягивают и формируют 3 узла, сдавливая общий желчный проток между жгутом и передней брюшной стенкой, лапаротомную и контрапертурную раны ушивают. На 5-е сутки осуществляют доступ к латексному узлу путем рассечения кожи над ним, узел пересекают, выполняют декомпрессию общего желчного протока.
На фиг. 1 показана схема заявленной модели обратимой механической желтухи у крыс; на фиг. 2 показан общий желчный проток, проходящий в брыжейке двенадцатиперстной кишки; на фиг. 3 представлены микрофотографии печени животных без лечения 5-ые; 14-ые сут Гемотоксилин и эозин, Х200 (пример 1), на фиг. 4 представлены микрофотографии печени животных на фоне введения Гептрала 5-ые, 14-ые сут Гемотоксилин и эозин, Х200 (пример 2).
Способ моделирования обратимой механической желтухи осуществляет следующим образом.
У белых беспородных крыс обоего пола под уретановым наркозом (800 мг/кг внутрибрюшинно) производят верхнюю срединную лапоротомию для доступа к брюшной полости. Для визуализации общего желчного протока 1 доли печени 2 отводят кверху, начальную часть двенадцатиперстной кишки 3 захватывают анатомическим пинцетом на расстоянии 1 см от пилорического отдела желудка и смещают книзу. Особенность строения общего желчного протока у крыс заключается в том, что его дистальная часть на достаточно большом протяжении проходит в брыжейке двенадцатиперстной кишки 4 и в данной области холедох достаточно подвижный (фиг. 2). В данной части брыжейки позади холедоха делается окно, через которое проводится латексный жгут 5 диаметром 1 мм и длиной 7 см. После этого производится дополнительный разрез кожи на 1 см правее лапоротомной раны. Оба конца латексного жгута через отдельные проколы мышц передней брюшной стенки 6 в области контрапертурного разреза выводятся на переднюю поверхность под кожу, после чего жгут натягивается и формируются три узла. Таким образом, общий желчный проток сдавливается между жгутом и передней брюшной стенкой, что приводит к застою желчи, о чем свидетельствует расширение диаметра проксимального отдела холедоха. Лапоротомная рана послойно ушивается. Кожа контрапертурной раны 7 зашивается наглухо 8, закрывая сформированный латексный узел на передней поверхности мышц, что предотвращает инфицирование брюшной полости
Декомпрессия общего желчного протока выполняется на 5-ые сут под общим обезболиванием. Осуществляется доступ к латексному узлу путем рассечения кожи над ним. Узел пересекается и извлекается. Оставшиеся дефекты от латексного жгута в мышцах передней брюшной стенки ушиваются отдельными узловыми швами. Кожа данной области зашивается непрерывным швом.
В моделировании способа было использовано 16 белых беспородных лабораторных крыс весом 250 г (8 особей – женского пола, 8 – мужского).
Для подтверждения развития механической желтухи у всех животных из хвостовой вены забирали кровь на 3-и, 5-ые сут после окклюзии общего желчного протока, а также на 7-ые, 14-ые и 21-е сут после его реперфузии, для определения биохимических маркеров (аланинаминатрасфераза АЛТ, аспарагинаминотрансфераза АСТ, общий билирубин ОБ, билирубин прямой ПБ, билирубин непрямой НБ, гаммаглутамилтранспептидаза ГГТП). Часть животных выводили из эксперимента на 3-и, 5-ые, 7-ые, 14-ые и 21-е сут и изучали макро- и микроморфологию печени.
Способ моделирования обратимой механической желтухи для изучения гепатопротекторной активности новых лекарственных веществ подтверждается примерами.
Пример 1.
У 8 белых лабораторных крыс (4 – женские особи, 4 – мужские особи) под уретановым наркозом произвели верхнюю срединную лапоротомию. После отведения печени кверху и двенадцатиперстную кишку книзу сделали окно в брыжейке двенадцатиперстной кишки позади холедоха через которое провели латексный жгут диаметром 1 мм и длиной 7 см. После этого выполнили дополнительный разрез кожи на 1 см правее лапоротомной раны. В данной области трансмускулярно через отдельные проколы вывели оба конца латексного жгута на переднюю поверхность мышц передней брюшной стенки и сформировали три узла, фиксируя холедох к задней поверхности передней брюшной стенки. Операционную рану послойно ушили. На 3-и, 5-ые, 7-ые, 14-ые, 21-ые сут у всех животных их хвостовой вены забирали кровь на биохимическое исследование. 4 крысы, выбранные случайным образом на 5-ые, 14-ые сут были выведены из эксперимента под эфирным наркозом для изучения микроморфологии печени. После компрессии общего желчного протока у всех животных наблюдалось повышение АЛТ, АСТ крови начиная с 3-и сут, достигших максимального значения к 5-ым сут (табл. 1). Так, показатели АЛТ – 151,6 Е/л, при норме 76 Е/л, АСТ – 324,2 Е/л при норме 99 Е/л, что свидетельствует о развитие цитолитического синдрома, подтвержденного морфологически при окраске срезов печени гематоксилином и эозином. На гистологических препаратах на 5-ые сут развивалось полнокровие центральных вен и синусоид, очаги некроза, зернистая и гидропическая дистрофия части гепатоцитов, лимфо – и гистиоцитарная инфильтрация, выраженная пролиферация желчных протоков. Уровень ОБ достигал 152,8 мкмоль/л, ПБ 150,138 мкмоль/л, НБ 2,662 мкмоль/л, при норме ОБ 6,9 мкмоль/л, ПБ 1,7 мкмоль/л, НБ 5,2 мкмоль/л.
После декомпрессии у всех животных восстанавливался пассаж желчи по желчевыводящим путям. Клинически это проявлялось в виде нормализации цвета мочи до светло-желтого. Кал становился темно-коричневого цвета, ушные раковины приобретали бледно-розовую окраску, глазное яблоко становилось насыщенно красным. Динамику цитолитического и холестатического синдрома изучали путем взятия крови из хвостовой вены с последующим изучением вышеуказанных биохимических показателей на 7-ые, 14-ые, 21-ые сут. Уже на 7-ые сут отмечалось значительное снижение изучаемых показателей: ОБ 36 мкмоль/л, ПБ 17,955 мкмоль/л, НБ 18,045 мкмоль/л, ГГПД 38 Е/л. Представленная положительная динамика сохранялась на протяжении всего эксперимента и к 21-ым сут все исследуемые показатели пришли в норму: ОБ 7,33 мкмоль/л, ПБ 1,71 мкмоль/л, НБ 5,62 мкмоль/л, ГГПД 11 Е/л (табл. 1).
Морфологическая картина печени на 14-ые сут характеризовалась сохранением полнокровия центральных вен, мелковакуольной дистрофией отдельных гепатоцитов, пролиферацией фибробластов, снижением уровня лимфогистиоцитарной инфильтрации. Однако стоит отметить, что к 21-ым сут эксперимента все исследуемые значения, за исключением прямого билирубина, оставались выше исходного уровня.
Пример 2.
У 8 белых лабораторных крыс (4 – женские особи, 4 – мужские особи) под уретановым наркозом произвели верхнюю срединную лапоротомию. После отведения печени кверху и двенадцатиперстную кишку книзу сделали окно в брыжейке двенадцатиперстной кишки позади холедоха через которое провели латексный жгут диаметром 1 мм и длиной 7 см. После этого выполнили дополнительный разрез кожи на 1 см правее лапоротомной раны. В данной области трансмускулярно через отдельные проколы вывели оба конца латексного жгута на переднюю поверхность мышц передней брюшной стенки и сформировали три узла, фиксируя холедох к задней поверхности передней брюшной стенки. Операционную рану послойно ушили. На 3-и, 5-ые, 7-ые, 14-ые и 21-ые у всех животных их хвостовой вены забирали кровь на биохимическое исследование. 4 крысы, выбранные случайным образом на 5-ые, 14-ые сут были выведены из эксперимента под эфирным наркозом для изучения и микроморфологии печени. После компрессии общего желчного протока у всех животных наблюдалось повышение АЛТ, АСТ крови начиная с 3-х сут, достигших максимального значения к 5-ым сут (табл. 2). Так, показатели АЛТ – 155,1 Е/л, при норме 76 Е/л, АСТ – 320,4 Е/л при норме 99 Е/л, что свидетельствует о развитие цитолитического синдрома, подтвержденного морфологически при окраске срезов печени гематоксилином и эозином.
Уровень ОБ достигал 158,3 мкмоль/л, ПБ 146,205 мкмоль/л, НБ 12,095 мкмоль/л, при норме ОБ 6,9 мкмоль/л, ПБ 1,7 мкмоль/л, НБ 5,2 мкмоль/л.
После декомпрессии с лечебной целью всем крысам данной группы ежедневно вводился Гептрал в хвостовую вену в суточной дозировке 60 мг/кг. Динамику цитолитического и холестатического синдрома изучали путем взятия крови из хвостовой вены с последующим изучением вышеуказанных биохимических показателей на 7-ые, 14-ые, 21-ые сут. Результат исследования отражен в табл. 2. Из результатов исследования видно, что уже с 7-х сут отмечена значительная положительная динамика в виде снижения всех изучаемых показателей: ОБ 27 мкмоль/л, ПБ 3,42 мкмоль/л, НБ 23,58 мкмоль/л, ГГПД 14,5 Е/л. Представленная положительная динамика сохранялась на протяжении всего эксперимента и к 21-ым сут все исследуемые показатели пришли в норму: ОБ 6 мкмоль/л, ПБ 1,71 мкмоль/л, НБ 4,29 мкмоль/л, ГГПД 3 Е/л (табл. 2). В данной группе нормализация биохимических показателей происходила более стремительно в сравнении с группой крыс без лечения. Так же стоит отметить, что к 21-му дню эксперимента уровень АЛТ, АСТ, ОБ, НБ был сопоставим с показателями интактных животных, что обусловлено гепатопротекторной активностью препарата Гептрал. На микропрепаратах печени, окрашенных гемотоксилином и эозином на 14-ые сут наблюдения на фоне введения препарата Гептрал наблюдалось незначительное полнокровие центральных вен, участки размножения печеночных клеток с наличием двухядерных гепатоцитов.
Таким образом, заявленный способ может использоваться для изучения гепатопротекторной активности лекарственных средств.
Таблица 1
Биохимические показатели крови животных (пример 1)
Уровень АЛТ (Е/Л) Уровень АСТ (Е/Л) Уровень ОБ (мкмоль/л) Уровень ПБ
(мкмоль/л)
Уровень НБ
(мкмоль/л)
ГГПД (Е/Л)
3 сутки 129,4 247,6 113,9 100,89 13,01 87,2
5 сутки 151,6 324,2 152,8 150,138 2,662 103,8
7 сутки 103,5 341,9 36 17,955 18,045 38
14 сутки 92,5 190,3 21,5 3,42 18,08 22,5
21 сутки 90,1 148,7 7,33 1,71 5,62 11
Таблица 2
Биохимические показатели крови животных (пример 2)
Уровень АЛТ (Е/Л) Уровень АСТ (Е/Л) Уровень ОБ
(мкмоль/л)
Уровень ПБ
(мкмоль/л)
Уровень НБ (мкмоль/л) ГГПД
(Е/Л)
3сутки 131,6 249,1 115,7 97,47 18,23 76
5 сутки 155,1 320,4 158,3 146,205 12,095 101,9
7 сутки 84,2 197 27 3,42 23,58 14,5
14 сутки 64,9 103 9,5 1,71 7,79 10
21 сутки 62,5 93 6 1,71 4,29 3

Claims (1)

  1. Способ моделирования обратимой механической желтухи, включающий срединную лапаротомию, фиксацию дистального отдела общего желчного протока к внутренней поверхности передней брюшной стенки, отличающийся тем, что в брыжейке позади общего желчного протока делают окно, через которое проводят латексный жгут, затем производят дополнительный разрез кожи на 1 см правее лапаротомной раны, оба конца латексного жгута через отдельные проколы мышц передней брюшной стенки в области контрапертурного разреза выводят под кожу, после чего жгут натягивают и формируют 3 узла, сдавливая общий желчный проток между жгутом и передней брюшной стенкой, лапаротомную и контрапертурную раны ушивают; на 5-е сутки осуществляют доступ к латексному узлу путем рассечения кожи над ним, узел пересекают, выполняют декомпрессию общего желчного протока.
RU2021136063A 2021-12-08 Способ моделирования обратимой механической желтухи RU2785942C1 (ru)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2785942C1 true RU2785942C1 (ru) 2022-12-15

Family

ID=

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2190972C2 (ru) * 1999-10-18 2002-10-20 Государственный научный центр колопроктологии Способ радикальной операции при остром парапроктите
RU2582765C1 (ru) * 2015-04-01 2016-04-27 Государственное Бюджетное Образовательное Учреждение Высшего Профессионального Образования "Красноярский Государственный Медицинский Университет Имени Профессора В.Ф. Войно-Ясенецкого Министерства Здравоохранения Российской Федерации" Способ моделирования регулируемой механической желтухи в эксперименте

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2190972C2 (ru) * 1999-10-18 2002-10-20 Государственный научный центр колопроктологии Способ радикальной операции при остром парапроктите
RU2582765C1 (ru) * 2015-04-01 2016-04-27 Государственное Бюджетное Образовательное Учреждение Высшего Профессионального Образования "Красноярский Государственный Медицинский Университет Имени Профессора В.Ф. Войно-Ясенецкого Министерства Здравоохранения Российской Федерации" Способ моделирования регулируемой механической желтухи в эксперименте

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ШИЛО Р. и др. Моделирование острого холангита у кроликов, Наука и инновации, 2019, 8 (198), 79-84. SARAH A. TAYLOR et al. A novel murine model of reversible bile duct obstruction demonstrates rapid improvement of cholestatic liver injury, Physiological reports, 2020, vol.8, issue 10, e14446. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Ohi et al. Biliary atresia
Stark et al. Restoration of mechanically lengthened jejunum into intestinal continuity in rats
RU2785942C1 (ru) Способ моделирования обратимой механической желтухи
RU2689856C1 (ru) Способ формирования лапароскопического интракорпорального термино-терминального циркулярно-перитонизированного толстокишечного анастомоза
RU2701217C2 (ru) Способ формирования колостомы
RU2692995C1 (ru) Способ ликвидации диастаза прямых мышц живота
RU2393786C1 (ru) Мини-инвазивный способ пластики послеоперационных вентральных грыж брюшной стенки
RU2347536C1 (ru) Способ восстановления оттока желчи при ортотопической трансплантации печени
RU2743882C1 (ru) Способ наложения одноствольной декомпрессионной илеостомы у больных с ожирением 3-4 степени
RU2445022C2 (ru) Способ профилактики несостоятельности швов энтероэнтероанастомоза
RU2808368C1 (ru) Способ моделирования синдрома Ашермана на крысах
Schöb et al. Technique of laparoscopic cholecystojejunostomy with a Roux-en-Y loop
RU2759270C1 (ru) Способ наложения двуствольной илеостомы при выполнении лапароскопической правосторонней гемиколэктомии латеро-медиальным доступом у больных раком толстой кишки, осложненным острой кишечной непроходимостью
RU2179412C2 (ru) Способ папиллосфинктеропластики
RU2735981C2 (ru) Способ чрезсосудистого доступа к органам малого таза при обширных онкологических операциях
RU2823977C1 (ru) Способ видеолапароскопической резекции кишечника
RU2545449C2 (ru) Способ динамического эндовидеоконтроля состоятельности тонкокишечного анастомоза у больных с острой абдоминальной хирургической патологией
RU2477081C2 (ru) Способ двухэтапного лечения рака толстой кишки
RU2297800C2 (ru) Способ двухэтапного формирования толсто-толстокишечного анастомоза
RU2709253C1 (ru) Способ формирования тонко-толстокишечного анастомоза в условиях острой кишечной непроходимости и перитонита
RU2743444C1 (ru) Способ формирования плоской колостомы
RU2631640C1 (ru) Способ хирургического лечения больших и гигантских вентральных грыж у детей, рожденных с омфалоцеле
RU2122361C1 (ru) Способ холедохо-, и гепатикоеюностомии
RU2137210C1 (ru) Способ создания модели грыжи пищеводного отверстия диафрагмы
RU2156610C1 (ru) Способ пластики гепатикохоледоха