RU2320195C1 - Способ получения белкового препарата из цианобактерий - Google Patents
Способ получения белкового препарата из цианобактерий Download PDFInfo
- Publication number
- RU2320195C1 RU2320195C1 RU2006118740/13A RU2006118740A RU2320195C1 RU 2320195 C1 RU2320195 C1 RU 2320195C1 RU 2006118740/13 A RU2006118740/13 A RU 2006118740/13A RU 2006118740 A RU2006118740 A RU 2006118740A RU 2320195 C1 RU2320195 C1 RU 2320195C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- phycocyanin
- cyanobacteria
- protein
- product
- spirulina
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Coloring Foods And Improving Nutritive Qualities (AREA)
Abstract
Изобретение относится к пищевой, микробиологической промышленности, а именно к способам извлечения биологических препаратов из цианобактерий, и может быть использовано для обогащения пищевых продуктов и получения биологически активных веществ. Способ включает водную экстракцию, фракционную преципитацию сернокислым аммонием концентрацией от 20 до 70% от насыщения, по завершению каждой стадии проводят центрифугирование с отделением белкового осадка, обработку которого далее осуществляют на диэтиламиноэтиловом активированном носителе методом ионообменной хроматографии, с последующей обработкой на мембранной установке до содержания солей не более 5% и сушкой готового продукта до влажности не более 3%. В качестве цианобактерий берут сухую биомассу спирулины, обогащенную селеном, хромом и другими эссенциальными микроэлементами. Изобретение позволяет упростить и снизить себестоимость готового продукта и получить белковый препарат с высокой степенью очистки, содержащий при этом фикоцианин и эссенциальные микроэлементы, получить продукт как источник этих микроэлементов и (или) пищевого красителя, допускающее применение в промышленных масштабах и приводящее к получению высокоочищенного препарата фикоцианина. 4 з.п. ф-лы, 6 табл., 2 ил.
Description
Изобретение относится к пищевой, микробиологической промышленности, а именно к способам извлечения биологических препаратов из цианобактерий, и может быть использовано для обогащения пищевых продуктов и получения биологически активных веществ.
В настоящее время известны способы получения белковых препаратов, в том числе способ выделения фикоцианина из биомассы водорослей.
Известен способ, в котором выделение белковой фракции проводят, осаждая фикоцианин из водного экстракта биомассы под действием риванола. Данный способ не применим в пищевой промышленности, поскольку риванол не относится к числу веществ (пищевых добавок), которые можно использовать в составе пищевой продукции. (Minkova K.М., Tchernov A.A., Tchorbadjieva M.I., et al., Purification of C-phycocyanin from Spirulina (Arthrospira) fusiformis. // J. Biotechnol. - 2003. - V.102, N 1. - P.55-59.)
Известен способ, включающий выделение фикоцианина из сине-зеленой водоросли с использованием стадий хроматографии на гидроксиапатите и сефакриле HR-200. (Li В., Zhang X., Gao M., Chu X. Effects of CD59 on antitumoral activities of phycocyanin from Spirulina platensis // Biomed Pharmacother. - 2005. - V.59, N 10. - P.551-560.)
Указанный способ также трудно использовать при получении фикоцианина в крупных масштабах ввиду его низкой производительности.
Наиболее близким аналогом к заявленному способу является способ получения белкового препарата из цианобактерий, включающий одностадийную обработку цельного экстракта [микроводоросли] путем экстракции, преципитации сернокислым аммонием, за чем следует ионообменная хроматография на колонке с ДЭАЭ-сефарозой Cl-6В. Чистый фикоцианин был получен из Spirulina, Phormidium и Lyngbya с отношением D620/D280, характеризующим чистоту препарата; равным соответственно 4.42, 4.43 и 4.59 (Patel A, Mishra S, Pawar R, Ghosh PK. Purification and characterization of C-Phycocyanin from cyanobacterial species of marine and freshwater habitat. // Protein Expr. Purif. - 2005. - V.40, N 2. - P.248-255).
Способ охарактеризован авторами как «одностадийный», тогда как на самом деле имеется не менее 3 стадий (экстракция, преципитация сернокислым аммонием и хроматография на ДЭАЭ-сефарозе). Кроме того, в неявном виде проводятся еще не менее двух стадий диализа для удаления сернокислого аммония и других солей, применяемых при выделении. Поэтому «одностадийность» не может рассматриваться как преимущество метода.
Применяется метод колоночной хроматографии на ДЭАЭ-сефарозе, который позволяет получить препарат очень высокой чистоты (которая не требуется для целей пищевого использования фикоцианина). При этом данная стадия малопроизводительна, требует сложного специального оборудования (промышленные колонки, насосы, детекторы, градиентные смесители), что в итоге приводит к сильному удорожанию продукта.
Технической задачей заявленного изобретения является упрощение способа, снижение себестоимости готового продукта и получение белкового препарата с высокой степенью очистки, содержащего при этом фикоцианин и эссенциальные микроэлементы, и, кроме того, получение продукта как источника этих микроэлементов и (или) пищевого красителя, допускающее применение в промышленных масштабах и приводящее к получению очищенного препарата фикоцианина с содержанием основного вещества не менее 40% и величиной D620/D280 не менее 2,0.
Поставленная задача решается в способе получения белкового препарата из цианобактерий, включающем водную экстракцию, постадийную преципитацию сернокислым аммонием и обработку на диэтиламиноэтиловом активированном носителе, при этом в качестве цианобактерий берут сухую биомассу спирулины, обогащенную эссенциальными микроэлементами, проводят постадийную преципитацию сернокислым аммонием в количестве от 20 до 70% от насыщения, по завершению каждой стадии проводят центрифугирование с отделением белкового осадка, обработку которого далее осуществляют на диэтиламиноэтиловом активированном носителе методом ионообменной хроматографии, с последующей обработкой на мембранной установке до содержания солей не более 5% и сушкой готового продукта до влажности не более 3%.
В качестве цианобактерий берут сухую биомассу спирулины, обогащенную селеном, хромом и другими эссенциальными микроэлементами.
Кроме того, проводят не менее 4 стадий преципитаций и дополнительно перед обработкой на диэтиламиноэтиловом активированном носителе методом ионообменной хроматографии белковую фракцию обрабатывают буферным раствором до получения рН 4,0-4,2.
В настоящее время широкое распространение получает использование в питании человека различных продуктов, получаемых биотехнологическим путем. В их числе продукты на основе биомассы микроводорослей, таких как спирулина (Arthrospira spp.). Спирулина характеризуется высоким (более 60%) содержанием биологически полноценного белка, эссенциальных полиненасыщенных жирных кислот (гамма-линоленовая кислота), микроэлементов (железо), витаминов. В результате выращивания спирулины в присутствии минеральных солей селена, йода, цинка, меди, марганца, хрома можно получить биомассы, дополнительно обогащенные этими микроэлементами в органически связанной, легко усваиваемой в организме и малотоксичной форме.
Использование спирулины в питании имеет определенные ограничения, связанные с ее органолептическими свойствами: специфическим вкусом и запахом продукта, наличием у некоторых людей его индивидуальной непереносимости. Предлагаемый способ позволяет получать белковые препараты, обладающие повышенной пищевой ценностью и улучшенными органолептическими и функциональными свойствами.
Белковый препарат, полученный заявленным способом, содержит достаточное количество такого компонента, как фикоцианин. Фикоцианин - белок, входящий в состав фотосинтезирующих пигментных комплексов спирулины - фикобилисом. В составе биомассы спирулины он представлен несколькими изоформами, включая аллофикоцианин и С-фикоцианин. Последний является преобладающим в количественном отношении. Его содержание может составлять по разным данным от 4 до 9% по массе сухих веществ спирулины. С-фикоцианин состоит из 2 типов субъединиц молекулярной массой 17-21 кД, организованных в нативном белке в гексамерный комплекс. Каждая субъединица содержит ковалентно связанный хромофор фикоцнанобилин, определяющий его биологическую активность. Структура фикоцианобилина приведена на фиг.1. Как видно из этой структуры, фикоцианобилин является веществом, родственным билирубину сыворотки крови, и, подобно ему, обладает свойствами гасителя свободных радикалов. Благодаря этому фикоцианин является активным пищевым антиоксидантом и демонстрирует комплекс физиологических эффектов, к числу которых относятся:
- индукция апоптоза опухолевых клеток и подавление их пролиферации;
- селективное ингибирование циклооксигеназы-2;
- подавление апоптоза, вызванного вирусной инфекцией;
- снижение концентрации фактора некроза опухоли в тканях,
- снижение содержания в воспаленных тканях медиаторов воспаления: гистамина, простагландинов, лейкотриенов;
- ингибирование окислительного стресса клетки за счет способности реагировать с разнообразными свободными радикалами, а также пероксинитритом;
- предотвращение перекисного окисления липидов, повреждения ДНК, разрушения клеточных мембран и гибели клетки.
Фикоцианин известен как пищевой краситель. Он обладает интенсивным максимумом поглощения в видимой области спектра при длине волны 620 нм, вследствие чего растворы фикоцианина достаточно высокой степени очистки имеют интенсивно синий («васильковый») цвет. Такой белковый препарат можно использовать, например, в напитках для цвета. Другие окрашенные компоненты спирулины, в том числе хлорофиллы, каротиноиды, ухудшают чистоту этого цвета, сдвигая его в сторону зеленого или желто-зеленого. Кроме того, использование препаратов фикоцианина с большим количеством балластных белков в качестве компонента жидких продуктов затруднено наличием значительного пенообразования. Вследствие этого для использования в качестве натурального пищевого красителя фикоцианин должен быть достаточно глубоко очищен. Показателем степени очистки является величина отношения оптических плотностей раствора при двух длинах волн D620/D280. В цельном водном экстракте биомассы этот показатель составляет величину порядка 0,3-0,4, что соответствует содержанию фикоцианина 6-8% от общего белка. В фикоцианине 100%-ной чистоты этот показатель составляет 4,98. Однако для использования в пищевой промышленности препарата фикоцианина его отношение D620/D280 должно быть не меньше 2 (что соответствует содержанию основного вещества 40%).
Способ осуществляют следующим образом.
Сухую биомассу спирулины, обогащенную эссенциальными микроэлементами, взвешивают и добавляют от 9 до 11 частей очищенной (дистиллированной или деионизованной) воды на 1 часть массы спирулины. Смесь перемешивают мешалкой в течение не менее 16 часов, после чего осаждают нерастворимый в воде остаток центрифугированием при ускорении не менее 3500 g. К надосадочной жидкости добавляют сернокислый аммоний в количестве от 20 до 30% от насыщения (от 140 до 210 г на 1 литр белкового раствора). Смесь выдерживают не менее 30 минут, после чего центрифугируют при ускорении не менее 3500 g до полного осаждения нерастворимой фракции. К надосадочной жидкости добавляют сернокислый аммоний до количества от 45 до 55% от насыщения (от 140 до 210 г на 1 литр надосадочной жидкости), после чего центрифугируют как указано выше. Осадок белков растворяют в минимально возможном количестве воды и переосаждают не менее 2 раз сернокислым аммонием в количестве от 45 до 70% от насыщения. Окончательный белковый осадок растворяют в минимальном количестве воды и удаляют соль путем обработки на мембранной установке (методом диализа или диафильтрации), обеспечивающей удаление не менее 98% солей. В растворе белков устанавливают величину рН от 4,0 до 4,2 путем добавления соответствующего буферного раствора. Смесь центрифугируют как указано выше, осадок белков растворяют в ацетатном буфере с рН 5,2 концентрацией не ниже 0,01 и не выше 0,06 М, содержащем не менее 0,01 и не более 0,05 М хлористого натрия, и добавляют ДЭАЭ-активированный носитель (целлюлоза или сефароза или сефадекс или их аналог) в количестве не менее 100 см3 на 1 г сухих веществ препарата). Жидкую фракцию удаляют на фильтре, носитель с адсорбированным фикоцианином промывают не менее 3 раз ацетатным буфером вышеуказанного состава, жидкость полностью удаляют на фильтре и добавляют равное (по объему носителя) количество ацетатного буфера рН 5,2, содержащего не менее 0,4 и не более 0,6 М хлористого натрия.
Жидкую фракцию отделяют на фильтре, промывают носитель не менее двух раз указанным буфером, фильтраты объединяют и добавляют к ним сернокислый аммоний в количестве от 45 до 70% от насыщения. Белки осаждают центрифугированием.
Осадок белков диспергируют в минимальном количестве воды и освобождают от солей путем обработки на мембранной установке, до содержания солей не более 5%. Окончательный раствор высушивают методом лиофильной сушки до содержания влаги в продукте не более 3% по массе. Сухой продукт представляет собой белковый продукт с содержанием фикоцианина 50-60%. Продукт готов для введения в любые пищевые продукты, как жидкие, так и любой другой консистенции.
Пример 1. Навеску 50 г сухой биомассы хромсодержащей спирулины помещают в стеклянный стакан объемом 1000 см3 и добавляют 500 см3 дистиллированной воды. Смесь помещают на магнитную мешалку и подвергают интенсивному перемешиванию в течение 16 часов. Смесь центрифугируют при ускорении 3900 g в течение 1 часа в центрифуге с охлаждением до +4°С. Осадок удаляют, а супернатант объемом 370 см3 охлаждают до 0°С в бане со льдом и к нему добавляют 123 см3 насыщенного при 0°С раствора сернокислого аммония (НСА), что составляет 25% доли насыщенного раствора сернокислого аммония. Далее смесь центрифугируют при ускорении 3900 g и температуре +4°С. Осадок (темно-зеленого цвета) удаляют. К супернатанту (сине-зеленого цвета) объемом 465 см3 добавляют 247 см3 НСА. Смесь центрифугируют при 3900 g и температуре +4°С. Супернатант объемом 510 см3 - мутный, желто-зеленого цвета удаляют, а осадок интенсивно синего цвета диспергируют в минимально возможном количестве дистиллированной воды. После диспергирования осадка объем смеси составил 350 см3, его переносят в стакан объемом 1000 см3 и смешивают с равным объемом - 350 см3 НСА, что соответствует 50% доли насыщенного раствора сернокислого аммония.
Смесь центрифугируют при 3900 g и температуре +4°С. Супернатант объемом 500 см3 лимонно-желтого цвета удаляют. С осадком (интенсивно синего цвета) процедура растворения в воде, осаждения НСА и центрифугирования повторяют еще 2 раза как описано выше. Последовательные супернатанты были соответственно бледно-желтым и бесцветным. Они были удалены. Окончательный осадок (после третьего переосаждения) диспергируют в воде с добавлением ЭДТА, его объем составил 330 см3. Этот раствор помещают в мешочки из целлофановой мембраны и подвергают диализу против дистиллированной воды в стеклянной банке (диализаторе) объемом 3000 см3 на магнитной мешалке в холодильнике при температуре +4°С. Диализат (бесцветный) удаляют, а ретентат (интенсивно синего цвета) центрифугируют 1 час при 3900 g и температуре +4°С. Незначительный осадок (черного цвета с зеленоватым оттенком) удаляют, супернатант, имеющий объем 385 см3, разливают порциями по 80-100 см3 в стеклянные банки объемом 500 см3, замораживают в морозильной камере при температуре -18°С и подвергают сублимационной вакуумной сушке при комнатной температуре. Масса продукта после высушивания 7,8 г.
150 см3 ДЭАЭ-сефарозы переносят на стеклянный фильтр диаметром 10 см и 5-кратно отмывают объемом 100 см3 ацетатного буфера 0,05 М рН 5,2, с 0,05 М хлористого натрия на колбе Бюхнера над вакуумом. Отмытую смолу переносят в стеклянный флакон на 500 см3. Навеску 1 г лиофильно высушенной белковой фракции биомассы спирулины, содержащей фикоцианин, растворяют в 100 см3 вышеуказанного буфера. Раствор вносят во флакон с ДЭАЭ-сефарозой и помещают на встряхиватель. Содержимое флакона далее переносят на стеклянный фильтр, и смолу дробно отмывают порциями по 150 см3 вышеуказанного буфера. Фильтрат - пенящаяся мутная жидкость желто-зеленого цвета - удаляется. На фильтре остается окрашенная фикоцианином смола интенсивно-синего цвета. Смолу, собранную с фильтра, переносят в стеклянный флакон на 500 см3 и добавляют 200 см3 ацетатного буфера 0,05 М рН 5,2 с 0,4 М хлористым натрием. Содержимое флакона далее переносят на стеклянный фильтр. Смола далее однократно промыта 200 см3 того же буфера и фильтраты объединены. Объем объединенного фильтрата - 380 см3. К полученному фильтрату добавляют 134,1 г безводного сернокислого аммония. Смесь осторожно перемешивают до полного растворения соли, после чего центрифугируют при ускорении 3900 g и температуре +4°С. Супернатант удаляют, а осадок диспергируют в минимальном объеме дистиллированной воды. Этот раствор помещают в мешочек из целлофановой мембраны и подвергают диализу в течение 24 часов против дистиллированной воды. Диализат (бесцветный) удаляют, ретентат (интенсивно синего цвета) подвергают сублимационной вакуумной сушке при комнатной температуре в темноте. Масса продукта после высушивания 0,160 г.
В результате осуществления способа получили белковый препарат с содержанием фикоцианина и хрома, пригодным для обогащения питьевого напитка.
Пищевая ценность, функциональные и органолептические показатели полученного препарата: характеризуется величиной D620/D280=2,18, что достаточно для его использования в качестве пищевого красителя, содержание фикоцианина 43% по массе продукта, содержание общего белка в препарате 90%, содержание золы 7% и влажность 3%, препарат представляет собой аморфный порошок темно-синего цвета, без вкуса и лишенный свойственного спирулине запаха, легко растворимый в воде с образованием раствора интенсивно синего цвета.
Достигнута очистка фикоцианина в 4,8 раза с выходом по пигменту (фикоцианобилину), равным 45% по отношению к цельному экстракту биомассы.
Пример 2. Проводят аналогично примеру 1, за исключением того, что в качестве качестве цианобактерий берут сухую биомассу спирулины, обогащенную селеном.
В результате осуществления способа получили белковый препарат с содержанием фикоцианина и селена, пригодного для обогащения пищевых продуктов, в том числе напитков.
Пищевая ценность, функциональные и органолептические свойства полученного препарата характеризуются величиной D620/D280=2,9, что достаточно для его использования в качестве пищевого красителя, содержание фикоцианина 58% по массе продукта, содержание общего белка в препарате 90%, содержание золы 7% и влажность 3%, препарат представляет собой аморфный порошок темно-синего цвета, без вкуса и лишенный свойственного спирулине запаха, легко растворим в воде с образованием раствора интенсивно синего цвета. Содержание селена в сухом продукте по данным определения микрофлуориметрическим методом составило 94±4 мкг/г.
Таким образом, суточная потребность взрослого человека в селене удовлетворяется 0,7 г сухого продукта.
Достигнута очистка фикоционина в 4,8 раза с выходом по пигменту (фикоцианобилину), равным 45% по отношению к цельному экстракту биомассы.
Пример 3. Навеску 50 г сухой биомассы хромсодержащей спирулины помещают в стеклянный стакан объемом 1000 см3 и добавляют 500 см3 дистиллированной воды. Смесь подвергают интенсивному перемешиванию в течение 16 часов при температуре +4°С в холодильнике. Смесь центрифугируют при ускорении 3900 g в течение 1 часа в центрифуге с охлаждением до +4°С. Осадок удаляют, супернатант объемом 370 см охлаждают до 0°С в бане со льдом и к нему добавляют 123 см3 насыщенного при 0°С раствора сернокислого аммония (НСА), что соответствует 25% доли насыщенного раствора сернокислого аммония. Далее смесь центрифугируют при ускорении 3900 g и температуре +4°С. Осадок (темно-зеленого цвета) удаляют. К супернатанту (сине-зеленого цвета) объемом 465 см3 добавляют 247 см3 НСА. Смесь центрифугируют при 3900 g и температуре +4°С. Супернатант объемом 510 см3 - мутный, желто-зеленого цвета - удаляют, осадок интенсивно синего цвета диспергируют в минимально возможном количестве дистиллированной воды. После диспергирования осадка объем смеси составил 350 см3. Он перенесен в стакан объемом 1000 см3 и смешан с равным объемом - 350 см3 НСА, что составляет 50% доли насыщенного раствора сернокислого аммония. Смесь центрифугируют при 3900 g и температуре +4°С. Супернатант объемом 500 см3 лимонно-желтого цвета удаляют. С осадком (интенсивно синего цвета) процедура растворения в воде, осаждения НСА и центрифугирования повторена еще 2 раза, как описано выше. Последовательные супернатанты были соответственно бледно-желтым и бесцветным. Они были удалены. Окончательный осадок (после третьего переосаждения) диспергирован в воде с добавлением ЭДТА, его объем составил 330 см3. Этот раствор помещен в мешочки из целлофановой мембраны и подвергнут диализу против дистиллированной воды в стеклянной банке (диализаторе) объемом 3000 см3 на магнитной мешалке в холодильнике при температуре +4°С. Диализат (бесцветный) удаляют, ретентат (интенсивно синего цвета) центрифугируют 1 час при 3900 g и температуре +4°С. Незначительный осадок (черного цвета с зеленоватым оттенком) удаляют, супернатант, имеющий объем 385 см, разливают порциями по 80-100 см3 в стеклянные банки объемом 500 см3, заморожен в морозильной камере при температуре -18°С и подвергнут сублимационной вакуумной сушке при комнатной температуре. Масса продукта после высушивания 7,8 г.
Навеску 1 г лиофильно высушенной белковой фракции биомассы спирулины, содержащей фикоцианин, растворяют в 90 см воды и добавляют при охлаждении в бане со льдом 10 см3 1 М ацетатного буфера рН 4,0. Смесь выдерживают 30 минут, после чего центрифугируют при 3900 g и температуре +4°С. Супернатант отбрасывают, осадок растворяют в 200 см3 0,05 M ацетатного буфера рН 5,2 с 0,05 М хлористым натрием. В раствор добавляют (при комнатной температуре) 100 см3 ДЭАЭ-сефарозы (производства Pharmacia, Швеция), предварительно 5-кратно отмытой объемами по 100 см3 ацетатного буфера 0,05 М рН 5,2 с 0,05 М хлористого натрия. Смесь переносят во флакон на 500 см3 и помещают на встряхиватель. Содержимое флакона далее переносят на стеклянный фильтр, и смолу дробно отмывают порциями по 150 см3 вышеуказанного буфера. Фильтрат - жидкость бледно-зеленого цвета отброшен. На фильтре остается окрашенная фикоцианином смола интенсивно-синего цвета. Смолу собирают с фильтра, переносят в стеклянный флакон на 500 см3 и добавляют 200 см3 ацетатного буфера 0,05 М рН 5,2 с 0,4 М хлористым натрием. Содержимое флакона далее перенесено на стеклянный фильтр и фильтрат отделен на воронке Бюхнера над вакуумом. Смола далее двукратно промыта 100 см3 того же буфера и фильтраты объединены. Объем объединенного фильтрата - 400 см3. К полученному фильтрату добавлено при охлаждении в бане со льдом 141 г безводного сернокислого аммония. Смесь осторожно перемешивают до полного растворения соли и далее центрифугируют при ускорении 3900 g и температуре +4°С. Супернатант удаляют, осадок диспергируют в минимальном объеме дистиллированной воды. Этот раствор помещают в мешочек из целлофановой мембраны и подвергают диализу в течение 24 часов против дистиллированной воды. Диализат (бесцветный) отброшен, ретентат (интенсивно синего цвета) подвергнут сублимационной вакуумной сушке при комнатной температуре в темноте.
Полученный препарат фикоцианина из хромсодержащей спирулины пригоден для непосредственного использования в качестве пищевого красителя.
Пищевая ценность и функциональные свойства полученного препарата: характеризуется величиной D620/D280=2,9, что достаточно для его использования в качестве пищевого красителя, содержание фикоцианина 59% по массе продукта, содержание общего белка в препарате 90%, содержание золы 7% и влажность 3%, препарат представляет собой аморфный порошок темно-синего цвета, без вкуса и лишенный свойственного спирулине запаха, легко растворимый в воде с образованием раствора интенсивно синего цвета.
Достигнута очистка фикоцианина в 7,2 раза с выходом по пигменту (фикоцианобилину), равным 58% по отношению к цельному экстракту биомассы. Масса продукта после высушивания 0,150 г.
В результате очистки с использованием стадии сдвига рН удается повысить чистоту препарата фикоцианина с 43 до 59% и увеличить выход целевого продукта с 45 до 58%.
Таблица 1 | ||||||||||
Стадии фракционирования белка из хромсодержащей спирулины | ||||||||||
№№ п/п | Стадия | Объем см3 | Число оптических единиц на весь образец | Отношение D620/D280 | Выход по D280 % | Выход по D620 % | Содержание фикоцианина г на весь образец ИФА | Выход фикоцианина по данным ИФА в % | Кратность очистки по отношению D620/D280 | |
D280 | D620 | |||||||||
1 | Экстракт биомассы, осветленный центрифугированием | 370 | 41400 | 17000 | 0,41 | 100 | 100 | 3,7 | 100 | 1 |
2 | Супернатант после 1-го осаждения НСА | 465 | 40900 | 17400 | 0,43 | 99 | 102 | 4,57 | 123 | 1,05 |
3 | Осадок после 2-го осаждения НСА | 350 | 29700 | 16400 | 0,55 | 71 | 96 | 3,68 | 98 | 1,3 |
4 | Осадок после 1-го переосаждения НСА | 310 | 27200 | 16300 | 0,60 | 65 | 96 | 3,10 | 84 | 1,46 |
5 | Осадок после 2-го переосаждения НСА | 260 | 24500 | 16100 | 0,66 | 59 | 94 | 2,9 | 78 | 1,6 |
6 | Осадок после 3-го переосаждения НСА | 330 | 21800 | 15510 | 0,72 | 53 | 91 | 2,7 | 73 | 1,76 |
7 | Ретентат после диализа | 385 | 24700 | 15200 | 0,62 | 60 | 89 | 2,23 | 60 | 1,51 |
Таблица 2 | |||||||||
Результаты фракционирования содержащей фикоцианин белковой фракции из биомассы хромсодержащей спирулины методом объемной ("batch") хроматографии на анионообменной смоле ДЭАЭ-сефарозе. | |||||||||
№№ п/п | Стадия | Объем см3 | Число оптических единиц на весь образец | Отношение D620/D280 | Выход по D280 % | Выход по D620 % | Кратность очистки по отношению D620/D280 | Содержание фикоцианина в образце %1 | |
D280 | D620 | ||||||||
1 | Белковая фракция, полученная методом сульфатаммонийного фракционирования по примеру №1, лиофилизованная | 100 | 2090 | 1440 | 0,69 | 100 | 100 | 1 | 13,8 |
2 | Препарат, очищенный на ДЭАЭ-сефарозе | 25 | 337 | 737 | 2,18 | 16 | 51 | 3,15 | 43,7 |
1 Рассчитано по данным работы Bhaskar S.U., в которой для очищенного фикоцианина получено отношение D620/D280, равное 4,98 |
Таблица 3 | |||||||||
Результаты фракционирования содержащей фикоцианин белковой фракции из биомассы хромсодержащей спирулины методом сдвига рН (в аналитических масштабах) | |||||||||
№№ п/п | Стадия | Объем см3 | Число оптических единиц на весь образец | Отношение D620/D280 | Выход по D280 % | Выход по D620 % | Содержание фикоцианина в образце %1 | Кратность очистки по отношению D620/D280 | |
D280 | D620 | ||||||||
1 | Белковая фракция, полученная методом сульфатаммонийного фракционирования по примеру №1, лиофилизованная | 2,1 | 3,25 | 2,0 | 0,61 | 100 | 100 | 12,2 | 1 |
2 | Препарат, очищенный методом сдвига рН | 3,0 | 2,28 | 1,9 | 0,83 | 70 | 95 | 16,7 | 1,36 |
1 Рассчитано по данным работы Bhaskar S.U., в которой для очищенного фикоцианина получено отношение D620/D280, равное 4,98 |
Таблица 4 | ||||||||||
Стадии фракционирования белка из селенсодержащей спирулины | ||||||||||
№№ п/п | Стадия | Объем см3 | Число оптических единиц на весь образец | Отношение D620/D280 | Выход по D280 % | Выход по D620 % | Содержание фикоцианина г на весь образец ИФА | Выход фикоцианина по данным ИФА в %1 | Кратность очистки по отношению D620/D280 | |
D280 | D620 | |||||||||
1 | Экстракт биомассы, осветленный центрифугированием | 390 | 49400 | 20300 | 0,41 | 100 | 100 | 1,83 | 100 | 1 |
2 | Супернатант после 1-го осаждения НСА | 500 | 45000 | 18800 | 0,42 | 91 | 92 | 1,86 | 102 | 1,02 |
3 | Осадок после 2-го осаждения НСА | 330 | 31300 | 17800 | 0,57 | 63 | 88 | 1,54 | 84 | 1,35 |
4 | Осадок после 1-го переосаждения НСА | 380 | 28500 | 17900 | 0,63 | 57 | 88 | 1,71 | 93 | 1,53 |
5 | Осадок после 2-го переосаждения НСА | 360 | 25600 | 16900 | 0,66 | 51 | 83 | 1,51 | 82 | 1,61 |
6 | Осадок после 3-го переосаждения НСА | 300 | 31500 | 20100 | 0,64 | 63 | 99 | 1,57 | 85 | 1,56 |
7 | Ретентат после диализа | 330 | 23400 | 16800 | 0,72 | 47 | 83 | - | - | 1,76 |
Таблица 5 | |||||||||
Результаты фракционирования содержащей фикоцианин белковой фракции из биомассы селенсодержащей спирулины методом объемной ("batch") хроматографии на анионообменной смоле ДЭАЭ-сефарозе | |||||||||
№№ п/п | Стадия | Объем см3 | Число оптических единиц на весь образец | Отношение D620/D280 | Выход по D280 % | Выход по D620 % | Содержание фикоцианина в образце %1 | Кратность очистки по отношению D620/D280 | |
D280 | D620 | ||||||||
1 | Белковая фракция, полученная методом сульфатаммонийного фракционирования по примеру №1, лиофилизованная | 80 | 5680 | 4080 | 0,72 | 100 | 100 | 14,4 | 1 |
2 | Препарат, очищенный на ДЭАЭ-сефарозе | 200 | 490 | 1440 | 2,93 | 8,6 | 35 | 58,8 | 4,1 |
1 Рассчитано по данным работы Bhaskar S.U., в которой для очищенного фикоцианина получено отношение D620/D280, равное 4,98 |
Таблица 6 | |||||||||
Результаты повторного фракционирования содержащей фикоцианин белковой фракции из биомассы селенсодержащей спирулины методом объемной ("batch") хроматографии на анионообменной смоле ДЭАЭ-сефарозе | |||||||||
№№ п/п | Стадия | Объем см3 | Число оптических единиц на весь образец | Отношение D620/D280 | Выход по D280 % | Выход по D620 % | Содержание фикоцианина в образце, %1 | Кратность очистки по отношению D620/D280 | |
D280 | D620 | ||||||||
1 | Белковая фракция, полученная методом сульфатаммонийного фракционирования по примеру №1, лиофилизованная | 60 | 4260 | 3060 | 0,72 | 100 | 100 | 14,4 | 1 |
2 | Препарат, очищенный на ДЭАЭ-сефарозе | 230 | 483 | 1380 | 2,86 | 11,3 | 45 | 57,4 | 4,0 |
1 Рассчитано по данным работы Bhaskar S.U., в которой для очищенного фикоцианина получено отношение D620/D280, равное 4,98 |
Claims (5)
1. Способ получения белкового препарата из цианобактерий, включающий водную экстракцию, преципитацию сернокислым аммонием и обработку на диэтиламиноэтиловом активированном носителе, отличающийся тем, что в качестве цианобактерий берут сухую биомассу спирулины, обогащенную эссенциальными микроэлементами, проводят постадийную преципитацию сернокислым аммонием в количестве от 20 до 70% от насыщения, по завершению каждой стадии проводят центрифугирование с отделением белкового осадка, обработку которого осуществляют на диэтиламиноэтиловом активированном носителе методом ионообменной хроматографии, с последующей обработкой на мембранной установке до содержания солей не более 5% и сушкой готового продукта до влажности не более 3%.
2. Способ получения белкового препарата из цианобактерий по п.1, отличающийся тем, что в качестве цианобактерий берут сухую биомассу спирулины, обогащенную селеном.
3. Способ получения белкового препарата из цианобактерий по п.1, отличающийся тем, что в качестве цианобактерий берут сухую биомассу спирулины, обогащенную хромом.
4. Способ получения белкового препарата из цианобактерий по п.1, отличающийся тем, что проводят не менее 4-х стадий преципитации.
5. Способ получения белкового препарата из цианобактерий по п.1, отличающийся тем, что дополнительно перед обработкой на диэтиламиноэтиловом активированном носителе методом ионообменной хроматографии белковую фракцию обрабатывают буферным раствором до получения рН 4,0-4,2.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2006118740/13A RU2320195C1 (ru) | 2006-05-31 | 2006-05-31 | Способ получения белкового препарата из цианобактерий |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2006118740/13A RU2320195C1 (ru) | 2006-05-31 | 2006-05-31 | Способ получения белкового препарата из цианобактерий |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2006118740A RU2006118740A (ru) | 2007-12-10 |
RU2320195C1 true RU2320195C1 (ru) | 2008-03-27 |
Family
ID=38903581
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2006118740/13A RU2320195C1 (ru) | 2006-05-31 | 2006-05-31 | Способ получения белкового препарата из цианобактерий |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2320195C1 (ru) |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
MD4360C1 (ru) * | 2013-09-23 | 2016-02-29 | Государственный Университет Молд0 | Способ получения миксоксантофилла из биомассы Spirulina platensis |
EP2484230B1 (de) | 2011-02-03 | 2017-05-17 | ADM WILD Europe GmbH & Co. KG | Proteinreiche Spirulina-Extrakte |
RU2739847C2 (ru) * | 2015-09-25 | 2020-12-29 | Ферментальж | Кислотная композиция, содержащая фикоцианин |
RU2775078C1 (ru) * | 2021-07-13 | 2022-06-28 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Федеральный исследовательский центр "Институт биологии южных морей имени А.О. Ковалевского РАН" (ФИЦ ИнБЮМ) | Способ получения продукта с содержанием с-фикоцианина из спирулины |
Families Citing this family (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103992402A (zh) * | 2014-04-30 | 2014-08-20 | 中国药科大学 | 一种高纯度藻蓝蛋白的制备方法 |
-
2006
- 2006-05-31 RU RU2006118740/13A patent/RU2320195C1/ru not_active IP Right Cessation
Cited By (10)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP2484230B1 (de) | 2011-02-03 | 2017-05-17 | ADM WILD Europe GmbH & Co. KG | Proteinreiche Spirulina-Extrakte |
EP2484230B2 (de) † | 2011-02-03 | 2024-01-24 | ADM WILD Europe GmbH & Co. KG | Proteinreiche Spirulina-Extrakte |
MD4360C1 (ru) * | 2013-09-23 | 2016-02-29 | Государственный Университет Молд0 | Способ получения миксоксантофилла из биомассы Spirulina platensis |
RU2739847C2 (ru) * | 2015-09-25 | 2020-12-29 | Ферментальж | Кислотная композиция, содержащая фикоцианин |
RU2781831C2 (ru) * | 2017-03-30 | 2022-10-18 | Ферментальж | Очистка фикобилипротеинов |
RU2810761C2 (ru) * | 2019-01-11 | 2023-12-28 | Ферментальж | Способ очистки фикоцианинов |
RU2822178C2 (ru) * | 2019-01-11 | 2024-07-02 | Ферментальж | Способ выделения фикоцианинов |
RU2827440C2 (ru) * | 2019-06-21 | 2024-09-26 | В. Ман Фис | Окрашенные гидрогелевые материалы и способ их получения |
RU2775078C1 (ru) * | 2021-07-13 | 2022-06-28 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Федеральный исследовательский центр "Институт биологии южных морей имени А.О. Ковалевского РАН" (ФИЦ ИнБЮМ) | Способ получения продукта с содержанием с-фикоцианина из спирулины |
RU2799540C1 (ru) * | 2022-05-04 | 2023-07-05 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Федеральный исследовательский центр "Институт биологии южных морей имени А.О. Ковалевского РАН" (ФИЦ ИнБЮМ) | Способ получения продукта с с-фикоцианином из биомассы спирулины |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2006118740A (ru) | 2007-12-10 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
JP6800211B2 (ja) | ブロッコリータンパク質のペプチドを調製する方法、それによって調製されたブロッコリータンパク質のペプチド、および、その使用 | |
CN103882083B (zh) | 一种抗氧化胶原肽的制备方法 | |
RU2733129C2 (ru) | Получение соевых белковых продуктов ("s810") | |
CN100374046C (zh) | 一种酶工程技术制备蓝莓混汁的方法 | |
RU2320195C1 (ru) | Способ получения белкового препарата из цианобактерий | |
CN107151686B (zh) | 一种高溶解性的鳕鱼蛋白 | |
CN106282285A (zh) | 一种以三文鱼为原料生产医药级蛋白肽粉的方法 | |
US10745351B2 (en) | Method of producing phycocyanin powder | |
KR20200062214A (ko) | 영양 품질이 개선된 완두 단백질 조성물 | |
CN106488927A (zh) | 用于从微藻生物质提取可溶性蛋白的方法 | |
CN112898410B (zh) | 一种中国鲎血蓝蛋白及其制备方法和应用 | |
WO2019231938A1 (en) | Purified protein concentrates of sweet potato leaves, and methods for recovery | |
JP6542486B2 (ja) | 食品として天然クロロフィルaを使用するために植物細胞からそれを効率的に抽出する方法及び食品中の抽出されたクロロフィルaを安定化するための種々の調製方法 | |
KR101827256B1 (ko) | 흑미 미강 추출 분말의 제조방법 및 그에 따른 흑미 미강 추출 분말 | |
CN103937858B (zh) | 一种从裂壶藻藻粕制备抗氧化剂的方法 | |
WO2019220218A1 (en) | A process for extraction and isolation of biochemical constituents from algae | |
US6479091B1 (en) | Beverage containing hybrid Rumex acetosa L. and methods for preparing same | |
KR20080093215A (ko) | 함초 발효 진액 제조방법 | |
EP3849995B1 (en) | Methods for separation of chlorophyll and soluble proteins | |
JP2531410B2 (ja) | 天然赤色色素の製造方法 | |
CN113519626A (zh) | 一种无乳糖奶粉及其制备方法 | |
Güroy | Determination of the phycocyanin, protein content and sensory properties of muffins containing Spirulina powder or fresh Spirulina | |
RU2676312C1 (ru) | Способ получения белково-витаминной добавки из икорного джуса | |
ES2709524B2 (es) | Procedimiento para obtener un hidrolizado enzimático a partir de semillas sobremaduras de uva y uso del mismo | |
CN112869137A (zh) | 一种长保质期的鲜炖燕窝 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20150601 |