RU2244559C2 - Устройство и способ экстракции нуклеиновых кислот - Google Patents

Устройство и способ экстракции нуклеиновых кислот Download PDF

Info

Publication number
RU2244559C2
RU2244559C2 RU2002118594/15A RU2002118594A RU2244559C2 RU 2244559 C2 RU2244559 C2 RU 2244559C2 RU 2002118594/15 A RU2002118594/15 A RU 2002118594/15A RU 2002118594 A RU2002118594 A RU 2002118594A RU 2244559 C2 RU2244559 C2 RU 2244559C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
sample
vessel
matrix
nucleic acids
vessels
Prior art date
Application number
RU2002118594/15A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2002118594A (ru
Inventor
Мац МАЛМКИСТ (SE)
Мац МАЛМКИСТ
Original Assignee
Альфахиликс Аб
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Альфахиликс Аб filed Critical Альфахиликс Аб
Publication of RU2002118594A publication Critical patent/RU2002118594A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2244559C2 publication Critical patent/RU2244559C2/ru

Links

Images

Classifications

    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L3/00—Containers or dishes for laboratory use, e.g. laboratory glassware; Droppers
    • B01L3/56—Labware specially adapted for transferring fluids
    • B01L3/563—Joints or fittings ; Separable fluid transfer means to transfer fluids between at least two containers, e.g. connectors
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01F—MIXING, e.g. DISSOLVING, EMULSIFYING OR DISPERSING
    • B01F31/00—Mixers with shaking, oscillating, or vibrating mechanisms
    • B01F31/44—Mixers with shaking, oscillating, or vibrating mechanisms with stirrers performing an oscillatory, vibratory or shaking movement
    • B01F31/441—Mixers with shaking, oscillating, or vibrating mechanisms with stirrers performing an oscillatory, vibratory or shaking movement performing a rectilinear reciprocating movement
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01F—MIXING, e.g. DISSOLVING, EMULSIFYING OR DISPERSING
    • B01F33/00—Other mixers; Mixing plants; Combinations of mixers
    • B01F33/50—Movable or transportable mixing devices or plants
    • B01F33/501—Movable mixing devices, i.e. readily shifted or displaced from one place to another, e.g. portable during use
    • B01F33/5011—Movable mixing devices, i.e. readily shifted or displaced from one place to another, e.g. portable during use portable during use, e.g. hand-held
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01F—MIXING, e.g. DISSOLVING, EMULSIFYING OR DISPERSING
    • B01F35/00—Accessories for mixers; Auxiliary operations or auxiliary devices; Parts or details of general application
    • B01F35/71—Feed mechanisms
    • B01F35/716—Feed mechanisms characterised by the relative arrangement of the containers for feeding or mixing the components
    • B01F35/7163—Feed mechanisms characterised by the relative arrangement of the containers for feeding or mixing the components the containers being connected in a mouth-to-mouth, end-to-end disposition, i.e. the openings are juxtaposed before contacting the contents
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6844—Nucleic acid amplification reactions
    • C12Q1/686—Polymerase chain reaction [PCR]
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2200/00—Solutions for specific problems relating to chemical or physical laboratory apparatus
    • B01L2200/02—Adapting objects or devices to another
    • B01L2200/026—Fluid interfacing between devices or objects, e.g. connectors, inlet details
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2200/00—Solutions for specific problems relating to chemical or physical laboratory apparatus
    • B01L2200/06—Fluid handling related problems
    • B01L2200/0631—Purification arrangements, e.g. solid phase extraction [SPE]
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2300/00—Additional constructional details
    • B01L2300/04—Closures and closing means
    • B01L2300/041—Connecting closures to device or container
    • B01L2300/042—Caps; Plugs
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2300/00—Additional constructional details
    • B01L2300/06—Auxiliary integrated devices, integrated components
    • B01L2300/0681—Filter
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2400/00—Moving or stopping fluids
    • B01L2400/04—Moving fluids with specific forces or mechanical means
    • B01L2400/0403—Moving fluids with specific forces or mechanical means specific forces
    • B01L2400/0409—Moving fluids with specific forces or mechanical means specific forces centrifugal forces
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2400/00—Moving or stopping fluids
    • B01L2400/04—Moving fluids with specific forces or mechanical means
    • B01L2400/0475—Moving fluids with specific forces or mechanical means specific mechanical means and fluid pressure
    • B01L2400/0478—Moving fluids with specific forces or mechanical means specific mechanical means and fluid pressure pistons
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L3/00—Containers or dishes for laboratory use, e.g. laboratory glassware; Droppers
    • B01L3/02—Burettes; Pipettes
    • B01L3/021—Pipettes, i.e. with only one conduit for withdrawing and redistributing liquids
    • B01L3/0217—Pipettes, i.e. with only one conduit for withdrawing and redistributing liquids of the plunger pump type
    • B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L3/00—Containers or dishes for laboratory use, e.g. laboratory glassware; Droppers
    • B01L3/50—Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes
    • B01L3/508—Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes rigid containers not provided for above
    • B01L3/5082—Test tubes per se

Abstract

Изобретение относится к области молекулярной биологии. Сущность изобретения - способ и устройство, в них нуклеиновые кислоты выделяют непосредственно из образца без стадии пипетирования с помощью заранее приготовленных, соединяемых друг с другом сосудов. Указанные сосуды используют по отдельности или соединенными вместе согласно стандартному формату микротитрования. Образец смешивают с лизирующим буфером и нуклеиновые кислоты связываются с матрицей в замкнутой системе, включающей, по меньшей мере, два взаимосоединяемых объема. Посредством вынужденного перемещения смеси образца и буфера несколько раз туда и обратно из одного объема в другой через узкий проход обеспечивают их тщательное перемешивание. Технический результат - быстрое и безопасное выделение нуклеиновых кислот. 11 с. и 33 з.п. ф-лы, 4 ил.

Description

Область изобретения
Настоящее изобретение относится к так называемому сухому способу работы с образцами и реагентами, и в частности, к области приготовления образцов, количественному и качественному экстрагированию, очистке и амплификации нуклеиновых кислот (ДНК или РНК, включая различные виды нуклеиновых кислот) из органических образцов, таких как кровь, сыворотка, моча, клеточные суспензии, образцы амплифицированные in vitro и образцы биопсий.
Уровень техники
Существует большое количество разнообразных протоколов для выделения и очистки нуклеиновых кислот. Большинство способов имеют своей целью выделение высокочистых образцов, которые подходят для использования при амплификации с помощью ПЦР (полимеразной цепной реации).
Один из используемых в настоящее время протоколов, в котором применяется Split Second™ DNA Preparation Kit (Boehringer Mannheim GmbH), включает следующие стадии. Сначала в пробирки для микроцентрифуги разливают первый буферный раствор. Образец, например цельную кровь человека, добавляют в пробирки. Пробирки помещают на качалку на 10 мин и затем центрифугируют 5 мин при 2500 об/мин на микроцентрифуге. Затем отбирают и выбрасывают супернатант, а осадок ресуспендируют в буферном растворе. Ресуспендированный осадок затем центрифугируют 3 мин при 2500 об/мин. После второго центрифугирования отбирают и выбрасывают супернатант. Осадок ресуспендируют во втором буфере и смесь тщательно взбалтывают (на установке Вортекс). После инкубирования в течение 5 мин на водной бане при 65°С, образец можно непосредственно использовать для ПЦР.
Другим протоколом является очистка ДНК с использованием хаотропического (разобщающего) агента и частиц диоксида кремния, как описано у Dr. J. Kleiber (preparation of DNA templates, Boehringer Mannheim GmbH, FRG). Суспензию кремнезема добавляют в лизирующий буфер в пробирке для микроцентрифуги, и взбалтывают. Затем к лизирующему буферу, содержащему частицы диоксида кремния, добавляют кровь, обработанную EDTA (этилендиаминтетрауксусной килотой), и смесь взбалтывают. После 10 мин инкубации, во время которой пробирку следует регулярно переворачивать, чтобы не дать осесть частичкам диоксида кремния, смесь центрифугируют. После удаления супернатанта, осадок диоксида кремния с нуклеиновыми кислотами подвергают серии промывок: первый буфер для промывки (гуанидинтиоцианат, Tris/HCl), затем этанол (70%) и, наконец, ацетон. Каждая стадия промывки требует перемешивания смеси взбалтыванием, ее центрифугирования и удаления супернатанта. После последней отмывки осадок оксида кремния с нуклеиновой кислотой высушивают нагреванием до 56°С в течение 10 минут. Наконец, смесь центрифугируют 2 мин при 10,000×g. После этого супернатант содержит очищенную нуклеиновую кислоту и может быть использован для ПЦР.
Не трудно заметить, что множественные стадии используемых в настоящее время протоколов являются трудоемкими и требуют постоянной концентрации внимания. Экстрагируемые объемы требуется пипетировать в большом количестве пробирок для микроцентрифуги, и эти пробирки подвергают различным воздействиям, таким как центрифугирование, перемешивание взбалтыванием и инкубация.
Работа с образцами, которые берут из тела человека, вне зависимости являются ли они образцами биопсии, крови или сыворотки, или образцами других жидкостей тела, таких как моча или слюна, клеточными суспензиями или in vitro амплифицированными образцами, включает в себя множество практических сложностей и особых соображений. Лабораторный персонал не только должен быть защищен от болезнетворных агентов, которые возможно содержатся в образцах, сами образцы должны быть защищены от загрязнения, как исходящего из других образцов, так и от персонала, работающего с ними.
Большое количество этапов, обычно используемых при очистке нуклеиновых кислот, повышает риск перенесения нуклеиновых кислот из образца в образец. При принятии решения на основе результатов необычайно чувствительной полимеразной цепной реакции (ПЦР) или других систем амплификации, мельчайшая контаминация может привести к ложным положительным результатам.
Работа с человеческой кровью предполагает специфические проблемы. Поскольку нельзя использовать гепаринизированную кровь (гепарин ингибирует ПЦР), образцы имеют тенденцию к свертыванию в контейнерах, где они находятся, в кончиках пипеток и пробирках для микроцентрифуги. Далее, кровь имеет тенденцию приставать к поверхностям и высыхать с формированием крошечных хлопьев, которые с легкостью переносятся по воздуху. И, наконец, не следует пренебрегать психологическим дискомфортом или стрессом, испытываемым при работе с потенциально заразными образцами человеческой крови.
Настоящее изобретение имеет своей целью улучшение, например, упрощение очистки нуклеиновых кислот из органических образцов в общем, и, в частности, приготовления образцов нуклеиновых кислот из цельной (необработанной) крови человека.
В частности, нуклеиновые кислоты представлены в форме дезоксирибонуклеиновой кислоты (ДНК) и рибонуклеиновой кислоты (РНК). ДНК в свою очередь подразделяется на плазмидную ДНК и геномную ДНК. РНК обычно подразделяют на информационную РНК (мРНК), транспортную РНК (тРНК) и рибосомальную РНК (рРНК). Эти группы часто называют "видами нуклеиновых кислот". Было бы желательным создать легкий и надежный способ качественной экстракции нуклеиновых кислот, т.е. различения различных видов нуклеиновых кислот.
Во многих химических или фармацевтических областях применения, реагент или фармацевтический реагент хранится и доставляется пользователю в лиофилизированной форме и должен быть восстановлен при смешивании его с подходящим количеством соответствующего растворителя. Растворителем часто является вода или водный раствор, такой как физиологический солевой раствор. К этой технике прибегают в основном с тем, чтобы увеличить стабильность и вместе с ней срок хранения реагента или фармацевтического реагента. В некоторых случаях, реакции между компонентами, содержащимися в реагентах, становятся невозможными или заметно замедляются в лиофилизированном состоянии и инициируются, когда материал восстанавливают.
При восстановлении лиофилизированного вещества должно быть гарантировано тщательное перемешивание. Градиенты концентрации, недостаточное перемешивание и возможно оставшиеся твердые частицы могут привести к ошибкам и риску при дальнейшем использовании восстановленной смеси. Также необходимо принимать в расчет опасность контаминации лиофилизированного вещества, в особенности, когда восстановление производят открытым способом.
Примеры приложений, в которых контаминирующий материал может полностью изменить результат включают аналитические и биохимические приложения, в которых генетическая информация из образца подвергается амплификации. Важные реакции этого типа включают полимеразную цепную реакцию (ПЦР), лигазную цепную реакцию (ЛЦР), ЛЦР с промежутком (gapped-LCR-reaction), амплификацию нуклеиновых кислот, основанную на их последовательности (NASBA), самоподдерживающуюся репликацию (SSR), амплификацию, медиированную транскрипцией (ТМА), амплификацию с вытеснением нити (SDA), амплификацию мишени, амплификацию сигнала, Hybrid CaptureR реакцию, или любое сочетание реакций, описанных выше. Задачей настоящего изобретения является сведение к минимуму или полное устранение возможности контаминации при приготовлении образца для вышеуказанных и других приложений, при которых контаминация вызывает риск ошибки.
Другой задачей настоящего изобретения является создание способа и устройства для восстановления лиофилизированных веществ, например, реагентов для биохимического анализа или фармацевтических агентов, которые могли бы обеспечить более высокую степень безопасности, надежности и легкости в использовании, чем доступные в настоящее время системы.
Наиболее близкие известные аналоги
В патенте US 5330916 описан способ экстракции компонентов клетки и сосуд, который подходит для использования в этом способе. Так называемый двусторонний сосуд для экстракции имеет два отделения, отделенных друг от друга фильтром, и подвижный притертый поршень, который размещен в одной из камер. При движении поршня образец подвергается воздействию механических сил, клетки в образце разрываются и их содержимое попадает в жидкую фазу. Указанная жидкая фаза проходит через фильтр во второе отделение, при этом органические составляющие и остатки клеток остаются в первом отделении.
В патенте US 5786182 описан двухкамерный сосуд одноразового использования для реакций амплификации, в котором первая камера содержит смесь реагентов для амплификации, а вторая камера содержит фермент для амплификации. Эти две камеры соединены каналом для прохода жидкости, который можно открыть или через который можно переместить образец в результате механического воздействия, приложения вакуума и т.п. Сущность изобретения заключается в том, что разделяют реагенты, обладающие разной устойчивостью к нагреванию, т.е. чувствительный к нагреванию ферментативный реагент и устойчивый при нагревании реагент для амплификации, и предусматиривают возможность соединения их вместе в выбранный момент времени.
Сосуд согласно патенту US 5786182 предназначен для реакций амплификации и не предусматривает возможности попеременного наполнения камер, составляющих данный двухкамерный сосуд, так же как он не подходит для экстракции нуклеиновых кислот, т.е. в нем отсутствуют средства для тщательного перемешивания образца и реагента.
Способ и сосуд согласно US 5330916 представляет собой наиболее близкий существующий аналог в том, что касается экстрагирования нуклеиновых кислот. Однако он не позволяет вносить изменения в процедуры экстракции, замены буферов, последовательной экстракции и т.д. с достаточной степенью легкости и надежности.
Краткое содержание изобретения
Настоящее изобретение решает вышеуказанные задачи посредством устройства и способов согласно прилагаемой формуле изобретения.
Согласно настоящему изобретению предложено устройство для экстрагирования нуклеиновых кислот, в котором указанная система содержит первый сосуд (3) для размещения образца и по меньшей мере один второй сосуд (4), содержащий по меньшей мере один реагент (2), при этом указанные сосуды соединены посредством узкого канала (7, 8) с возможностью отсоединения, и средства (5, 6) для вынужденного перемещения образца из первого сосуда во второй и обратно.
Настоящее изобретение также относится к способу экстрагирования нуклеиновых кислот из образца, согласно которому указанный образец помещают в первый сосуд, который соединен с возможностью отсоединения со вторым сосудом, при этом указанный второй сосуд содержит заранее приготовленный реагент, после чего образец прокачивают во второй сосуд и обратно, повторяя это до момента достаточного перемешивания, после чего сосуд, содержащий смесь, соединяют с третьим сосудом, содержащим заранее приготовленный реагент, и перемешивание повторяют.
Дальнейшие примеры реализации изобретения и их преимущества станут очевидны или могут быть легко выведены из описания и примеров, включая прилагаемые чертежи.
Краткое описание чертежей
Настоящее изобретение будет раскрыто более подробно в описании и примерах, приведенных ниже, со ссылками на соответствующие чертежи, на которых:
на фиг.1 показано поперечное сечение двух сосудов, А и В, согласно одному из примеров реализации изобретения;
на фиг.2 изображено два сосуда согласно фиг.1, соединенных друг с другом согласно изобретению;
на фиг.3 показан сосуд с колпачком для отделения матрицы, несущей нуклеиновые кислоты; и
на фиг.4 показана конструкция с фиг.3, помещенная в центрифужную пробирку (А) и пробирку для микроцентрифуги (В), соответственно, например, для их опорожнения с помощью центрифуги.
Описание изобретения
Способ очистки, экстрагирования и ферментативной обработки нуклеиновых кислот согласно настоящему изобретению делает возможной работу с образцом “всухую” и необходимыми буферами, поскольку стадия пипетирования становится ненужной.
Образец, например, объем крови, сыворотки, мочи, слюны, клеточная суспензия, например, из образца биопсии, или образец амплифицированный in vitro, помещают в первое пространство. Это первое пространство может быть пространством, содержащимся в пробирке, VacutainerR, шприце или предпочтительно первое пространство, которое содержится в устройстве согласно изобретению, описанному ниже. Образец затем приводят в контакт с лизирующим буфером, который также предпочтительно содержит матрицу, способную связывать нуклеиновые кислоты. Подходящим лизирующим буфером является солевой раствор, кроме того, содержащий детергент, обычно используемые агенты, такие как Tris (Boehringer Mannheim GmbH) и EDTA (Merck). Подходящей матрицей являются частицы стекла или оксида кремния, диатомовые земли, стеклянные волокна, нейлоновые волокна, суспензия целлюлозы, шарики парамагнетика, латексные шарики и т.п. Матрица может иметь также покрытие, например, она может быть покрыта стрептавидином или любым другим материалом для отделения нитей нуклеиновых кислот или нитей только одной нуклеиновой кислоты.
Этот первый буфер, предпочтительно содержащий также твердую матрицу, содержится во втором пространстве, имеющем узкий канал. При попадании во второе пространство образец образует смесь с лизирующим буфером и матрицей. Эту смесь затем продавливают через вышеупомянутый канал, и она попадает в пространство, которое может быть первым пространством, в случае если образец первоначально был помещен в устройство согласно настоящему изобретению. При прохождении через узкий канал или отверстие между двумя пространствами или сосудами, смесь эффективным образом перемешивается. Затем смесь продавливают обратно во второе пространство и процедуру повторяют некоторое количество раз, гарантирующее тщательное перемешивание и лизис клеток в образце. После достаточного количества перемещений через канал смесь становится практически гомогенной. Во время этого перемешивания нуклеиновые кислоты связываются с матрицей, содержащейся в лизирующем буфере. Когда перемешивание прекращают, смесь находится или в первом, или во втором пространстве.
Матрицу со связанными с ней нуклеиновыми кислотами затем отделяют от основной массы раствора. В случае использования матрицы, состоящей из частиц, такое отделение можно провести, если закрыть пространство, которое содержит матрицу, мембраной или разделительным колпачком, как описано ниже, и центрифугировать устройство. Матрица останется на мембране или в разделительном колпачке.
При использовании матрицы из парамагнитных частиц разделения достигают приложением магнитного поля вокруг сосуда или к подвижному элементу или поршню, используемому для вынужденного перемещения содержимого сосудов из одного в другой.
Смесь, содержую лизирующий буфер и матрицу, затем смешивают с буфером для промывания, содержащимся в третьем пространстве или в сосуде, присоединенном ко второму сосуду или пространству. Пропуская смесь туда и обратно между этими двумя пространствами через узкий канал, в очередной раз обеспечивают тщательное перемешивание и промывку. Когда перемешивание заканчивают, смесь находится или во втором или в третьем пространстве, а все остальное выбрасывают. Наконец, очищенные нуклеиновые кислоты могут быть удалены с матрицы с использованием буфера для элюирования или, в случае парамагнитной матрицы, при выключении парамагнитного поля.
Путем использования различных матриц можно проводить экстракцию различных видов нуклеиновых кислот. Это осуществляют подбором материала матрицы, структуры матрицы, ее упаковки и прочих
структурно-физических свойств. Этот процесс зависит также от выбора подходящих химических свойств и/или химической или биологической предобработки, например, такой как обработка для улучшения аффинных свойств, покрытие матрицы антителами, аффинными группами, стрептавидином, биотином. Специфические последовательности нуклеиновых кислот могут быть экстрагированы с использованием комплиментарной нуклеиновой кислоты, гибридизованной на матрице. Таким образом, например, можно провести экстракцию специфичных вирусных нуклеиновых кислот, как часть подготовки образца к диагностическому тесту.
Буфер или буферы для экстрагирования могут быть подобраны или адаптированы для экстракции определенных видов нуклеиновых кислот. Согласно одному примеру реализации изобретения, образец пропускают туда и обратно между двумя сосудами, один из которых содержит матрицу, специальным образом адаптированную или способствующую адсорбции одного вида нуклеиновых кислот, в то время как другой сосуд содержит матрицу специальным образом адаптированную или способствующую адсорбции другого вида нуклеиновых кислот и буферный раствор, подходящий для обеих матриц. Таким образом, экстрагируемые нуклеиновые кислоты физически разделяются, что улучшает кинетику реакции и приводит к более высокому результату, как качественно, так и количественно.
Согласно альтернативному способу реализации данного способа, матрицу можно добавлять после проведения лизиса.
Устройство согласно настоящему изобретению содержит по меньшей мере два сосуда, которые имеют подвижные участки стенок или элементы для вытеснения содержимого каждого из сосудов, и соединительные элементы, которые подходят к соответствующей части, по меньшей мере, одного другого сосуда и предпочтительно прочих сосудов.
Согласно предпочтительному способу реализации, один из сосудов содержит твердую матрицу, жестко зафиксированную в нем или имеющую физические препятствия к покиданию сосуда. Матрицей может служить вставка из гранулированного или волокнистого материала, например, частиц стекла или диоксида кремния, стекловолокна, нейлонового волокна, целлюлозы или диатомовой земли, которая по выбору может быть подвергнута спеканию или сжатию другим способом, с тем, чтобы придать ей форму вставки и таким образом, исключить возможность уноса ее из сосуда в направлении потока жидкости при опорожнении сосуда. Матрица может быть специфичным образом выбрана, адаптирована или модифицирована с учетом физических/структурных и/или химических/ биологических свойств, как описано выше. Альтернативным образом, при использовании парамагнитных частиц, перемещение частиц матрицы можно регулировать приложением к сосуду магнитного поля.
Матрица также может представлять собой покрытие на внутренней поверхности стенок одного из сосудов, альтернативно, стенки одного из сосудов могут быть выполнены из стекла, акрила, полистирола или другого материала, способного обратимо связывать, например, нуклеиновые кислоты при определенных условиях. В последнем случае является предпочтительным создание шероховатостей или увеличение активной поверхности стенок иным способом.
Согласно одному из примеров реализации данного изобретения возможности комбинирования сосудов определяются резьбой, формой или размером их наконечников и отверстий. Первый сосуд может, например, быть снабжен как внешней, так и внутренней резьбой. После того как перемешивание в первом сосуде окончено, второй сосуд выбрасывают, и первый сосуд соединяют с третьим сосудом посредством его внешней резьбы.
Кроме того, используя цветовые коды, тактильные метки и т.п., можно определять порядок использования сосудов. Накладывая непосредственные физические ограничения (различная резьба, различные размеры сединяемых частей, и т.д.) на возможности соединения сосудов, можно минимизировать возможность ошибки.
Устройство согласно настоящему изобретению предпочтительно выполнено из подходящего термопласта. Примеры таких материалов включают, но не ограничены, полипропиленом (ПП), полистиролом (ПС), полиэтиленом (ПЭ), полиэтиленом высокого давления (ПЭВД), поликарбонатом (ПК), полиацетатом (ПА), полиметилметакрилатом (ПММА) и поливинилиденфторидом (ПВФ). Выбор материала определяется не только химическими и температурными требованиями по отношению к реагентам и буферам, которые будут повергаться обработке, или к реакциям, которые предстоит проводить в устройстве, но также соображениями экономии, такими как материальные затраты, технология производства и т.п.. Одним из подходящих способов производства является прессование под давлением. Вакуумное пресс-литье является еще одним возможным способом производства. Устройство согласно изобретению, конечно, производится в условиях, которые исключают присутствие в нем загрязнений, которые могут влиять на протекание реакции или реакций, для использования в которых оно предназначается.
Устройство изображено на Фиг.1 в виде двух сосудов 3 и 4. В иллюстративных целях сосуды изображены в виде изделий, напоминающих обычные шприцы, имеющих основную часть, подвижный поршень 5 и 6, и выходное отверстие или наконечник 7 и 8. Вокруг выходных отверстий размещен кольцевой выступ 9 или 10. Поскольку кольцевой выступ на сосуде 3 имеет внутреннюю резьбу 11, а кольцевой выступ на сосуде 4 имеет соответствующую внешнюю резьбу, они могут быть прочно соединены друг с другом, обеспечивая плотное соединение отверстий 7 и 8. Кольцевые выступы и резьбу также можно использовать для присоединения колпачка на сосуды для защиты целостности их содержимого, обеспечения стерильности их внутренних поверхностей и т.п.
В целях иллюстрации, объем жидкости, которая содержится в сосуде 3 и обозначена прерывистыми линиями, может рассматриваться как образец, например, образец цельной крови. Жидкость в сосуде 4 в этом случае представляет собой лизирующий буфер, также предпочтительно содержащий матрицу.
С тем, чтобы можно было управлять перемещением поршней, сосуды выполнены с первым кольцевым сужением 18 на ближнем конце сосуда и вторым кольцевым сужением 19 на удаленном конце сосуда. Первый выступ 18 окажет заметное сопротивление и таким образом укажет пользователю, что поршень находится вблизи от своего нижнего положения. Тем не менее, поршень можно продавить через первый выступ 18, например при опустошении сосуда. Второй выступ 19 предохранит поршень от вытаскивания из сосуда, например по ошибке или в результате слишком высокого давления, создаваемого в сосуде.
На Фиг.2 два сосуда 3 и 4 показаны соединенными посредством нарезных кольцевых выступов, описанных выше. Соединение открывает путь для потока жидкости между пространствами двух сосудов, проходящего через сужение или "шейку", образованную выходными отверстиями сосудов. Поскольку соединение плотное, оба сосуда ограничивают один общий объем. При опускании поршня 5 образец, содержащийся в сосуде 3, продавливается через узкий канал в сосуд 4, который содержит лизирующий буфер и матрицу 2. Поскольку соединение является плотным, поршень 6 отходит назад вследствие давления, оказываемого поршнем 5. Когда большая часть образца опорожнена в сосуд 4, нажимают поршень 6, перегоняя образец плюс буфер в сосуд 3. Таким образом, содержимое перекачивают туда и обратно с образованием смеси. При использовании негепаринизированной крови, что является необходимым для целей ПЦР, показано, что такое перемешивание предотвращает свертывание крови. По окончании перемешивания смесь оставляют в одном из сосудов, или 3 или 4.
Согласно одному из примеров реализации сосуд 4 содержит матрицу, выполненную таким образом, чтобы предотвратить ее унос из сосуда, например, вставку из стекловолокна или спеченных частиц диоксида кремния и т.д., при этом предпочтительным является опорожнение содержимого 4 после тщательного перемешивания в сосуд 3, или другой эквивалентный сосуд, так, чтобы в сосуде осталась только матрица со связанными с ней нуклеиновыми кислотами. Сосуд 3 затем выбрасывают вместе со всем содержимым.
Затем к сосуду 4 присоединяют третий сосуд (не показан), который содержит буфер для промывки, и процедуру перекачивания повторяют. Когда промывка завершена, сосуд 4 освобождают от всего, кроме матрицы со связанными с ней нуклеиновыми кислотами, а третий сосуд, содержащий использованный промывочный буфер, выбрасывают.
Нуклеиновые кислоты затем можно элюировать с матрицы, например, наполнив сосуд 4 буфером для элюирования, который предпочтительно содержится в четвертом сосуде, согласно данному изобретению. Альтернативно, сосуд, содержащий буфер для элюирования, присоединяют к сосуду 4 и элюирование проводят путем перекачивания содержимого туда и обратно между этими двумя сосудами.
Если предполагают использовать экстрагируемую нуклеиновую кислоту как матрицу для процесса амплификации, например ПЦР, к сосуду 4 можно присоединить четвертый сосуд, который содержит лиофилизированные реагенты для амплификации. Содержимое сосуда 4, включающее элюированную ДНК, затем продавливают в четвертый сосуд и перекачивают туда и обратно, с тем, чтобы достичь эффективного растворения и гомогенизации реагентов. В этом способе реализации приготовляют полную реакционную смесь, включающую матрицу для амплификации, и переносят ее непосредственно в сосуд для проведения ПЦР реакции. Это дает множество преимуществ, таких как более простое обращение и уменьшенный риск внесения загрязнений и т.п.
Сосуды также можно опорожнять посредством центрифугирования. Фиг.3 показывает способ реализации, в котором сосуд 3 содержит смесь из буфера и матрицы. На этой стадии нуклеиновые кислоты связаны с матрицей, при этом добавляют буфер для элюирования. Разделительный колпачок 13, имеющий выходные поры 14, соединяют с выходным отверстием 7 сосуда 3. Колпачок 13 может быть закреплен на резьбе кольцевого выступа 9 (не показано). При центрифугировании буфер для элюирования покидает сосуд через поры 14, матрица же остается в разделительном колпачке. Элюированные нуклеиновые кислоты затем можно использовать для амплификации, например ПЦР.
Фиг.4 иллюстрирует два способа применения, один, когда сосуд с надетым разделительным колпачком 13 помещен в центрифужную пробирку 17, и другой, когда сосуд используют для опорожнения его содержимого в пробирку для микроцентрифуги 16. Во время центрифугирования матрица остается в сосуде или задерживается разделительным колпачком, тогда как буфер для элюирования и нуклеиновые кислоты проходят через выходные поры 14 и перемещаются в пробирку 16 или 17. Пробирки 16 и 17 можно далее использовать в стадиях, например, необходимых для ПЦР протокола.
Первый сосуд, который является контейнером для образца, также может быть первичным приемником образца. Подразумевается, что первый сосуд приспосабливают для отбора образца. Согласно одному из способов реализации первый сосуд приспосабливают для удерживания гиподермальной иглы. Таким путем образец крови можно отбирать непосредственно в первый сосуд. При другом способе реализации первый сосуд приспосабливают для отбора полоски геля или колонии с чашки с агаром. Тогда сосуд оснащают насадкой для выкалывания полоски или насадкой для снятия колонии с чашки с агаром. Перекачивание содержимого сосудов в особенности подходит для экстрагирования нуклеиновых кислот из геля или клона, выращиваемого на чашке с агаром.
Согласно другому способу реализации устройство и способ по изобретению может быть приспособлено для параллельного формата работы. В лабораториях, где работают с большим количеством образцов, способ реализации, который включает использование множества сосудов, например 96, 384 или более сосудов типа, подходящего для микроцентрифуги или планшетов для микротитрования, может быть осуществлен в виде так называемого стандартного формата работы с микротитрами или других параллельных форматов. Такой набор, например 8×12 сосудов, предпочтительно можно сформовать как одно целое путем прессования под давлением. Соответствующие поршни также собирают в один блок с образованием рядов и колонок в том же формате, и также объединяют в единое целое путем прессования под давлением. Описанное выше перекачивание можно осуществлять вручную. Предпочтительным образом используют механическое устройство. Им может быть механическое или пневматическое устройство, включающее набор поршней. В этом способе реализации выходные отверстия 7 и 8 и кольцевые выступы 9, 10, имеющие резьбу, должны быть модифицированы способом, позволяющим плотное и надежное соединение без закручивания. Вращающее движение трудно осуществить, когда сосуды собраны в виде решетки, как в данной реализации. Другими словами, сосуды должны быть плотно соединены путем выранивания сосудов и прижатия их друг к другу. Это может быть осуществлено с использованием плотно входящих друг в друга соединений (фитингов), фланцев, защелкивающихся механизмов и т.п. Изменив форму кольцевых выступов 9 и 10, можно получить механизм типа "толкаем-закрываем" и "тянем-открываем".
Пример
В настоящем примере использовали набор взаимно соединяемых шприцов. Тестировали различные матрицы: частицы оксида кремния, стеклянные и нейлоновые волокна. Использовали лизирующий буфер, состоящий из солевого раствора и детергента. Буфер для промывки состоял из соевого раствора и этанола.
Образец негепаринизированной цельной крови человека набирали в первый шприц или непосредственно от пациента с использованием гиподермальной иглы, надетой на шприц, или из промежуточного контейнера, VacutainerR, содержавшего образец от пациента.
Приготавливали второй шприц, содержавший частицы диоксида кремния, суспендированные в лизирующем буфере. Затем шприц, содержащий образец крови, соединяли со вторым шприцом, и образец крови выпускали в лизирующий буфер. Смешанное содержание обоих шприцов затем перекачивали туда и обратно между двумя шприцами. Каждое перемещение через узкий перехват между соединенными шприцами способствовало перемешиванию образца с лизирующим буфером и обеспечивало тщательное перемешивание частиц оксида кремния в растворе. Такое перекачивание продолжали в течение нескольких минут и оканчивали, когда образец и лизирующий буфер были полностью в одном из шприцов. Другой шприц отсоединяли и выбрасывали.
При использовании солевого раствора с детергентом для лизиса клеток в образце негепаринизированной крови было обнаружено, что способ обработки согласно изобретению эффективно предотвращает сворачивание крови.
К шприцу, который содержал образец, оксид кремния и лизирующий буфер, присоединяли третий шприц, содержащий буфер для промывки. Затем буфер для промывки прокачивали туда и обратно между вторым и третьим шприцами. После окончания перемешивания объединенный раствор оставляли во втором шприце.
При использовании гранулированной матрицы, свободно перемещавшейся в содержимом сосуда, матрицу отделяли от раствора с помощью присоединения разделяющего колпачка к кончику шприца, помещения последнего в центрифужную пробирку и центрифугирования (как показано схематически на прилагающейся Фиг.4). Матрица оставалась в разделительном колпачке, тогда как раствор удаляли. Можно так проводить дальнейшую промывку или элюировать нуклеиновую кислоту из осадка, находящегося в разделительном колпачке.
Если матрицей служит вкладка из стеклянных волокон - или, как во втором примере, осуществленном изобретателем, нейлоновая нить некоторой длины - нет необходимости в использовании какого-либо разделительного колпачка. Вместо этого, матрицу промывали и элюировали in situ, путем присоединения различных шприцов, содержащих необходимые буферы к шприцу, содержавшему матрицу. Наконец, с матрицы элюировали нуклеиновые кислоты. Результат очистки подтверждали, подвергая элюированный образец гель-электрофорезу. Отчетливая отдельная полоса показывала, что очистка нуклеиновых кислот прошла успешно.
Хотя данное изобретение описано в отношении предпочтительных примеров реализации, которые представляют собой наилучший из известных в настоящее время изобретателю способов, следует понимать, что в пределах объема изобретения, который определен в прилагающейся формуле изобретения, возможны различные изменения и модификации, которые очевидны специалисту в данной области.

Claims (44)

1. Устройство для экстрагирования нуклеиновых кислот из органических образцов, отличающееся тем, что указанное устройство содержит первый сосуд для размещения образца, первый поршень для выдавливания образца из первого сосуда и по меньшей мере один второй сосуд, содержащий по меньшей мере один заранее приготовленный реагент и имеющий второй поршень для выдавливания указанного реагента из второго сосуда, при этом указанные первый и по меньшей мере один второй сосуды соединены с возможностью разделения посредством узкого канала, при этом указанные первый и второй сосуды ограничивают единый закрытый объем.
2. Устройство по п.1, отличающееся тем, что указанный заранее приготовленный реагент в указанном втором сосуде представляет собой лиофилизированный реагент.
3. Устройство по п.1, отличающееся тем, что указанный второй сосуд дополнительно содержит матрицу, способную связывать нуклеиновые кислоты.
4. Устройство по п.1, отличающееся тем, что указанный заранее приготовленный реагент во втором сосуде представляет собой лизирующий буфер, при этом указанный второй сосуд дополнительно содержит матрицу, способную связывать нуклеиновые кислоты.
5. Устройство по любому из п.3 или 4, отличающееся тем, что указанная матрица представляет собой гранулированную матрицу, способную свободно перемещаться в сосуде.
6. Устройство по любому из п.3 или 4, отличающееся тем, что указанная матрица состоит из первичных частиц или волокон, которые образуют вторичную форму, которая не позволяет им покинуть сосуд.
7. Устройство по п.5, отличающееся тем, что указанная матрица выбрана из частиц стекла или оксида кремния, диатомовой земли, стеклянных волокон, нейлоновых волокон, суспензии целлюлозы, шариков парамагнетика и латексных шариков.
8. Устройство по п.3, отличающееся тем, что указанная матрица подвергнута обработке, повышающей ее специфичное сродство к нуклеиновым кислотам.
9. Устройство по п.3, отличающееся тем, что указанная матрица удерживается в сосуде посредством магнитного поля, воздействующего на магнитные компоненты матрицы.
10. Устройство по п.3, отличающееся тем, что указанная матрица представляет собой вставку из стеклянных волокон.
11. Устройство по п.8, отличающееся тем, что указанная матрица покрыта стрептавидином.
12. Устройство по п.8, отличающееся тем, что указанная матрица несет на себе гибридизованные нуклеиновые кислоты.
13. Устройство по п.1, отличающееся тем, что первый сосуд содержит соединительные средства для сцепления с соответствующими средствами на втором сосуде или последующих сосудах.
14. Устройство по п.13, отличающееся тем, что указанные соединительные средства посредством своего размера и/или функции определяют порядок присоединения второго и последующих сосудов.
15. Устройство по п.1, отличающееся тем, что сосуды и последующие сосуды, которые можно к ним присоединять, имеют физические свойства, такие, как тактильные метки, цветовые коды и подобные им, определяющие последовательность их использования.
16. Устройство по п.3, отличающееся тем, что оно содержит отделяющийся разделительный колпачок, который удерживает твердую матрицу.
17. Устройство по любому из пп.1-16, отличающееся тем, что сосуды соединены с образованием решетки, соответствующей стандартному формату микротитра.
18. Устройство для отделения матрицы, связывающей нуклеиновые кислоты, от жидкости, при этом указанное устройство содержит один конец для присоединения к устройству по п.1 и закрытый конец, снабженный по меньшей мере одной порой, отличающееся тем, что указанная по меньшей мере одна пора или каждая такая пора расположена выше нижней внутренней поверхности указанного устройства, определяя таким образом объем, не опорожняемый при центрифугировании.
19. Устройство по п.17, отличающееся тем, что оно прочно присоединяется к одному из концов устройства согласно п.1 и помещается в пробирку для центрифугирования.
20. Устройство по любому из пп.18 и 19, отличающееся тем, что сосуды соединены с образованием решетки, соответствующей стандартному формату микротитра.
21. Способ экстракции нуклеиновых кислот из органического образца, включающий размещение образца в сосуде, воздействие на образец механических сил и перемещение образца в другой сосуд, отличающийся тем, что способ осуществляют с использованием устройства по любому из пп.1-16.
22. Способ по п.21, отличающийся тем, что указанный образец является образцом крови, сыворотки, мочи, слюны, клеточной суспензией или образцом биопсии.
23. Способ по п.21, отличающийся тем, что указанный образец является образцом цельной крови человека.
24. Способ экстракции нуклеиновых кислот из органического образца, включающий размещение образца в сосуде, воздействие на образец механических сил и перемещение образца в другой сосуд, отличающийся тем, что в нем используют устройство по любому из пп.17 и 18.
25. Способ по п.24, отличающийся тем, что указанный образец является образцом крови, сыворотки, мочи, слюны, клеточной суспензией или образцом биопсии.
26. Способ по п.24, отличающийся тем, что указанный образец является образцом цельной крови человека.
27. Способ экстракции нуклеиновых кислот из образца, амплифицированного in vitro, включающий размещение образца в сосуде, воздействие на образец механических сил и перемещение образца в другой сосуд, отличающийся тем, что в нем используют устройство по любому из пп.1-16.
28. Способ по п.27, отличающийся тем, что указанный образец является образцом крови, сыворотки, мочи, слюны, клеточной суспензией или образцом биопсии.
29. Способ по п.27, отличающийся тем, что указанный образец является образцом цельной крови человека.
30. Способ экстракции нуклеиновых кислот из образца, амплифицированного in vitro, включающий размещение образца в сосуде, воздействие на образец механических сил и перемещение образца в другой сосуд, отличающийся тем, что в нем используют устройство по любому из пп.18 и 19.
31. Способ по п.30, отличающийся тем, что указанный образец является образцом крови, сыворотки, мочи, слюны, клеточной суспензией или образцом биопсии.
32. Способ по п.30, отличающийся тем, что указанный образец является образцом цельной крови человека.
33. Способ восстановления лиофилизированного реагента, включающий размещение образца в сосуде, воздействие на образец механических сил и перемещение образца в другой сосуд, отличающийся тем, что в нем используют устройство по п.1.
34. Способ восстановления реагента для одной из следующих реакций: полимеразной цепной реакции (ПЦР), лигазной цепной реакции (ЛЦР), ЛЦР с промежутком (gapped-LCR-reaction), амплификации нуклеиновых кислот, основанной на их последовательности (NASBA), самоподдерживающейся репликации (SSR), амплификации, медиированной транскрипцией (ТМА), амплификации с вытеснением нити (SDA), амплификации мишени, амплификации сигнала, Hybrid CaptureR реакции, или любого сочетания этих реакций, отличающийся тем, что в нем используют устройство по п.1.
35. Способ экстрагирования нуклеиновых кислот из образца, отличающийся тем, что указанный образец находится в первом сосуде, имеющем первый поршень, при этом первый сосуд соединен с возможностью отделения со вторым сосудом, имеющим второй поршень, при этом указанный второй сосуд содержит заранее приготовленный реагент, причем первый и второй сосуды вместе ограничивают один объем, после чего образец прокачивают во второй сосуд и обратно, причем указанную операцию повторяют до тех пор, пока не произойдет достаточное перемешивание, после чего сосуд, содержащий смесь, соединяют с третьим сосудом, содержащим заранее приготовленный реагент и перемешивание повторяют.
36. Способ по п.35, отличающийся тем, что указанный второй сосуд содержит лизирующий буфер и матрицу, способную связывать нуклеиновые кислоты.
37. Способ по п.35, отличающийся тем, что указанный третий сосуд содержит буфер для отмывки.
38. Способ по любому из пп.35-37, отличающийся тем, что очищенный образец удаляют из сосуда посредством центрифугирования.
39. Способ по любому из пп.35-37, отличающийся тем, что матрицу отделяют от жидкости, в которой она суспендирована, с помощью центрифугирования с использованием устройства по п.18.
40. Способ по любому из пп.35-37, отличающийся тем, что матрицу отделяют от жидкости, в которой она суспендирована, с использованием магнитного поля.
41. Способ по любому из пп.35-37, отличающийся тем, что образец является одним из следующего: образцом крови, сыворотки, мочи, слюны, клеточной суспензией и образцом биопсии.
42. Способ по любому из пп.35-37, отличающийся тем, что образец является образцом цельной крови человека.
43. Способ экстрагирования специфичных видов нуклеиновых кислот, включающий размещение образца в сосуде, воздействие на образец механических сил и перемещение образца в другой сосуд, отличающийся тем, что в нем используют устройство по п.1, при этом указанное устройство содержит матрицу, которая обработана таким образом, чтобы способствовать связыванию указанных видов нуклеиновых кислот с указанной матрицей.
44. Способ экстрагирования специфичных видов нуклеиновых кислот, включающий размещение образца в сосуде, воздействие на образец механических сил и перемещение образца в другой сосуд, отличающийся тем, что в нем используют устройство по п.1, при этом указанное устройство включает матрицу, содержащую комплементарную последовательность нуклеиновой кислоты, которая на ней гибридизована.
RU2002118594/15A 1999-12-10 2000-12-06 Устройство и способ экстракции нуклеиновых кислот RU2244559C2 (ru)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SE9904539A SE9904539D0 (sv) 1999-12-10 1999-12-10 Method and device for the handling of samples and reagents
SE9904539-5 1999-12-10

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2002118594A RU2002118594A (ru) 2004-06-27
RU2244559C2 true RU2244559C2 (ru) 2005-01-20

Family

ID=20418090

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2002118594/15A RU2244559C2 (ru) 1999-12-10 2000-12-06 Устройство и способ экстракции нуклеиновых кислот

Country Status (11)

Country Link
US (1) US20020182718A1 (ru)
EP (1) EP1235905B1 (ru)
JP (1) JP2003516156A (ru)
CN (1) CN1332026C (ru)
AT (1) ATE423844T1 (ru)
AU (1) AU779168B2 (ru)
CA (1) CA2390354A1 (ru)
DE (1) DE60041654D1 (ru)
RU (1) RU2244559C2 (ru)
SE (1) SE9904539D0 (ru)
WO (1) WO2001042487A2 (ru)

Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2516522C2 (ru) * 2008-07-29 2014-05-20 Бастьен КАРКУШ Устройство для улавливания биологических частиц и его применение
RU2654666C2 (ru) * 2013-05-24 2018-05-21 Оккам Байолэбс, Инк. Система и способ сбора образца нуклеиновой кислоты
RU2672429C2 (ru) * 2014-09-04 2018-11-14 Этикон, Инк. Минимально засоряемое устройство доставки текучих сред и способ применения
US10287570B2 (en) 2014-11-21 2019-05-14 Occam Biolabs, Inc. System and method for collecting a sample of nucleic acid
CN111205971A (zh) * 2020-04-22 2020-05-29 博奥生物集团有限公司 采样管
RU2743140C2 (ru) * 2016-01-30 2021-02-15 Сейфгард Байосистемс Холдингс Лтд. Пробирка для ударной обработки шариками и способ экстракции дезорибонуклеиновой кислоты и/или рибонуклеиновой кислоты из микроорганизмов

Families Citing this family (52)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6902550B2 (en) * 2001-06-05 2005-06-07 Atrium Medical Corporation System for draining fluids
US6820506B2 (en) 2002-03-27 2004-11-23 3M Innovative Properties Company Multi-chambered pump-valve device
EP1552005A4 (en) * 2002-07-10 2010-12-15 Massachusetts Inst Technology APPARATUS AND METHOD FOR ISOLATING A NUCLEIC ACID FROM A SAMPLE
US7682818B2 (en) 2003-03-28 2010-03-23 Fujifilm Corporation Apparatus for separating and purifying nucleic acid and method for separating and purifying nucleic acid
US7947450B2 (en) 2003-07-10 2011-05-24 Universite Libre De Bruxelles Device, kit and method for pulsing biological samples with an agent and stabilising the sample so pulsed
CA2545494C (en) * 2003-07-10 2009-12-29 Universite Libre De Bruxelles Device, kit and method for pulsing biological samples with an agent and stabilising the sample so pulsed
EP1699363B1 (en) * 2003-12-16 2014-03-12 Idexx Laboratories, Inc. Tissue sampling device
JP4090443B2 (ja) * 2004-02-24 2008-05-28 株式会社日立ハイテクノロジーズ 核酸回収器具、その部品、及び核酸回収器具の生産方法
SE0401145D0 (sv) 2004-04-30 2004-04-30 Mats Malmqvist Continuous flow reaction vessel system
EP1602409A1 (en) * 2004-06-01 2005-12-07 The Automation Partnership (Cambridge) Limited Filtration unit
EP1851534A4 (en) * 2005-02-11 2010-07-28 Whatman Inc DEVICES AND METHOD FOR HANDLING AND MACHINING STAMPS
JP5038131B2 (ja) * 2005-05-17 2012-10-03 ユニバーサル・バイオ・リサーチ株式会社 フィルタ処理方法、フィルタ封入チップ、およびフィルタ処理装置
DE602006011876D1 (de) * 2005-05-24 2010-03-11 Uteron Pharma S A Utische substanzen und verfahren
DE102006002258B4 (de) * 2006-01-17 2008-08-21 Siemens Ag Modul zur Aufbereitung einer biologischen Probe, Biochip-Satz und Verwendung des Moduls
JP2007306867A (ja) * 2006-05-19 2007-11-29 Hitachi High-Technologies Corp 核酸抽出装置及び核酸抽出方法
WO2008075501A1 (ja) 2006-12-19 2008-06-26 Konica Minolta Medical & Graphic, Inc. 回転式抽出容器、それを用いた細胞種の同定方法、遺伝子検出方法、及び自動核酸抽出装置
US8357296B2 (en) 2007-09-24 2013-01-22 Emd Millipore Corporation Centrifugal filter
FI20085815A (fi) * 2008-09-02 2010-03-03 Wallac Oy Laitteisto, järjestelmä ja menetelmä nestemäisten näytteiden suodattamiseksi
WO2012011660A2 (ko) * 2010-07-23 2012-01-26 (주)바이오니아 시료 내장 마이크로 챔버 플레이트 및 분석용 마이크로 챔버 프레이트의 제조 방법, 분석용 마이크로 챔버 플레이트 및 시료 내장 마이크로 챔버 플레이트 제조 장치 셋
US9304070B2 (en) 2011-07-13 2016-04-05 Emd Millipore Corporation All-in-one sample preparation device and method
BR112014017140A8 (pt) * 2012-01-16 2017-07-04 Koninklijke Philips Nv método de determinação da presença de moléculas alvo em um fluido corporal compreendendo células; cartucho para inserção em um dispositivo analisador; e dispositivo analisador
CN102631717B (zh) * 2012-04-24 2013-11-27 祁小平 体外诱导病人自身外周血产生高浓度抗炎因子的装置
CN104471369B (zh) * 2012-07-06 2016-09-21 株式会社日立高新技术 核酸提取用成套工具及核酸提取装置
US20140018529A1 (en) * 2012-07-12 2014-01-16 E I Du Pont De Nemours And Company Nucleic acid isolation and purification system
US9333447B2 (en) * 2012-10-19 2016-05-10 Warsaw Orthopedic, Inc. Filtration device
AU2013202805B2 (en) * 2013-03-14 2015-07-16 Gen-Probe Incorporated System and method for extending the capabilities of a diagnostic analyzer
EP2969140B1 (en) * 2013-03-15 2021-02-17 Abbott Molecular Inc. One-step procedure for the purification of nucleic acids
CN104713753B (zh) * 2013-12-11 2019-03-29 北京六角体科技发展有限公司 样品控制型前处理系统
CN104307584B (zh) * 2014-09-25 2015-09-16 瑞安市富日包装机械有限公司 滴管组合机
US9625355B2 (en) 2014-12-01 2017-04-18 General Electric Company Extraction of materials from regions of interest in a sample
DE102015102350B3 (de) * 2015-02-19 2016-05-04 Sartorius Stedim Biotech Gmbh Filtrationsvorrichtung für flüssige Proben
CN107709984A (zh) * 2015-06-10 2018-02-16 恩姆菲舍尔科技公司 提取柱
US9696284B2 (en) 2015-06-10 2017-07-04 Thermo Fisher Scientific Oy Extraction column
WO2017040650A1 (en) 2015-09-01 2017-03-09 Becton, Dickinson And Company Depth filtration device for separating specimen phases
CN108350448A (zh) * 2015-09-10 2018-07-31 株式会社钟化 从含有核酸的样品中分离核酸的方法及用于该方法的装置
EP3165921A1 (en) * 2015-11-05 2017-05-10 Dominik Olbrzymek A kit for centrifugal separation of biological fluid components and a method for centrifugal separation of biological fluid components
US10596069B2 (en) * 2015-12-22 2020-03-24 Ethicon, Inc. Syringes with mixing chamber in a removable cap
KR101734377B1 (ko) * 2016-03-21 2017-05-15 중앙대학교 산학협력단 핵산 추출키트 및 이를 이용한 핵산 추출방법
CN105741656B (zh) * 2016-05-12 2019-03-19 中国电子科技集团公司第四十一研究所 一种环形电磁材料样件的制备装置及方法
CN108310993A (zh) * 2017-01-18 2018-07-24 首都医科大学 一种使用注射器的液体自动混合仪
CN107080973B (zh) * 2017-05-17 2019-05-31 中国地质大学（武汉） 一种滴管固相萃取装置和方法以及该装置的制备方法
IT201700054951A1 (it) * 2017-05-22 2018-11-22 Univ Degli Studi Di Roma “Tor Vergata” Nuovo sistema di afferraggio e fissaggio tra due vasi comunicanti o recipienti.
KR101971633B1 (ko) * 2017-07-24 2019-04-24 한국과학기술원 유전자 판별칩용 믹서장치 및 이를 이용한 pcr버퍼와 유전자 혼합방법
CN107760566A (zh) * 2017-11-22 2018-03-06 上海睿玻生物科技有限公司 一种自动化核酸提取仪
NL2020385B1 (en) * 2018-02-06 2019-08-14 Labonovum B V Device for extraction of blood serum constituents
CN108489780B (zh) * 2018-03-02 2021-04-13 中国科学院深海科学与工程研究所 一种用于高压下进行化学固定的装置
JP7235235B2 (ja) * 2018-10-11 2023-03-08 国立大学法人東北大学 血液、血球又は凝固関連因子へ定量的にずり応力を加える剪断発生装置
CN109100447B (zh) * 2018-10-22 2020-04-24 云南中烟工业有限责任公司 烟草中糖和淀粉的快速测定方法
CA3134446A1 (en) * 2019-03-19 2020-09-24 The Board Of Regents Of The University Of Oklahoma Kit, system, and method for dna extraction from samples
US20220267757A1 (en) * 2019-06-26 2022-08-25 University Of Central Florida Research Foundation, Inc. Integrated syringe
CN112337517B (zh) * 2020-10-27 2022-11-15 江苏昊东化工有限公司 一种基于气冲搅拌的引流棒
KR102603542B1 (ko) * 2021-06-23 2023-11-16 김수 다중 샘플링이 가능한 핵산추출장치

Family Cites Families (22)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US578182A (en) * 1897-03-02 Apparatus for regulating and modifying electric circuits
US4722792A (en) * 1985-02-09 1988-02-02 Kurashiki Boseki Kabushiki Kaisha Filter for centrifugal separator
US4722794A (en) * 1985-04-05 1988-02-02 Remco Research And Development, Inc. Straining and stop valve
US4729875A (en) * 1986-06-26 1988-03-08 Allelix Inc. Device for performing immunochemical assays
US5114858A (en) * 1990-06-26 1992-05-19 E. I. Du Pont De Nemours And Company Cellular component extraction process in a disposable filtration vessel
SE9301759D0 (sv) * 1993-05-21 1993-05-21 Vincenzo Vassarotti Centrifugal method for concentrating macromolecules from a solution and device for carrying out said method
CA2170604C (en) * 1993-08-30 2007-03-13 Vikas V. Padhye Nucleic acid purification compositions and methods
US5990301A (en) * 1994-02-07 1999-11-23 Qiagen Gmbh Process for the separation and purification of nucleic acids from biological sources
US5955072A (en) * 1994-07-13 1999-09-21 Sankyo Company, Limited Expression systems utilizing autolyzing fusion proteins and a reducing polypeptide
US5728267A (en) * 1994-11-15 1998-03-17 Flaherty; James E. Concentrator for separating small samples in a centrifuge
US5779668A (en) * 1995-03-29 1998-07-14 Abbott Laboratories Syringe barrel for lyophilization, reconstitution and administration
US5783686A (en) * 1995-09-15 1998-07-21 Beckman Instruments, Inc. Method for purifying nucleic acids from heterogenous mixtures
DE19702907A1 (de) * 1997-01-28 1998-07-30 Boehringer Mannheim Gmbh Verfahren und Vorrichtung zur Reinigung von Nukleinsäuren
US5786182A (en) * 1997-05-02 1998-07-28 Biomerieux Vitek, Inc. Dual chamber disposable reaction vessel for amplification reactions, reaction processing station therefor, and methods of use
JP2001516731A (ja) * 1997-09-17 2001-10-02 ジエントラ・システムズ・インコーポレーテツド 核酸を単離するための装置および方法
AU1606999A (en) * 1997-11-26 1999-06-15 Albert Einstein College Of Medicine Of Yeshiva University Mouse telomerase reverse transcriptase
ATE218140T1 (de) * 1997-12-06 2002-06-15 Dna Res Innovations Ltd Isolierung von nukleinsäuren
US7455990B2 (en) * 1999-11-24 2008-11-25 Danisco A/S Method of extracting recombinant hexose oxidase
US7217513B2 (en) * 2001-07-10 2007-05-15 Massachusetts Institute Of Technology Apparatus and method for isolating a nucleic acid from a sample
ATE412775T1 (de) * 2001-07-17 2008-11-15 Fujifilm Corp Verfahren zur quantifizierung von nukleinsäuren mittels bestimmung der zellzahl
JP4017369B2 (ja) * 2001-09-28 2007-12-05 株式会社ヤクルト本社 核酸抽出装置
US7745180B2 (en) * 2002-04-24 2010-06-29 Hitachi Chemical Co., Ltd. Device and method for high-throughput quantification of mRNA from whole blood

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Е.М.Хватова и др. Нуклеотиды мозга. - М., 1987, с.7-39. *

Cited By (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2516522C2 (ru) * 2008-07-29 2014-05-20 Бастьен КАРКУШ Устройство для улавливания биологических частиц и его применение
RU2654666C2 (ru) * 2013-05-24 2018-05-21 Оккам Байолэбс, Инк. Система и способ сбора образца нуклеиновой кислоты
US10370650B2 (en) 2013-05-24 2019-08-06 Occam Biolabs, Inc. System and method for collecting a sample of nucleic acid
RU2672429C2 (ru) * 2014-09-04 2018-11-14 Этикон, Инк. Минимально засоряемое устройство доставки текучих сред и способ применения
US10420901B2 (en) 2014-09-04 2019-09-24 Ethicon, Inc. Minimally clogging device for delivery of fluids
US10287570B2 (en) 2014-11-21 2019-05-14 Occam Biolabs, Inc. System and method for collecting a sample of nucleic acid
RU2729113C2 (ru) * 2014-11-21 2020-08-04 Оккам Байолэбс, Инк. Система и способ сбора образца нуклеиновой кислоты
RU2743140C2 (ru) * 2016-01-30 2021-02-15 Сейфгард Байосистемс Холдингс Лтд. Пробирка для ударной обработки шариками и способ экстракции дезорибонуклеиновой кислоты и/или рибонуклеиновой кислоты из микроорганизмов
CN111205971A (zh) * 2020-04-22 2020-05-29 博奥生物集团有限公司 采样管
CN111205971B (zh) * 2020-04-22 2020-07-31 博奥生物集团有限公司 采样管

Also Published As

Publication number Publication date
WO2001042487B1 (en) 2002-02-07
DE60041654D1 (de) 2009-04-09
EP1235905B1 (en) 2009-02-25
WO2001042487A2 (en) 2001-06-14
CN1409761A (zh) 2003-04-09
EP1235905A2 (en) 2002-09-04
US20020182718A1 (en) 2002-12-05
ATE423844T1 (de) 2009-03-15
CA2390354A1 (en) 2001-06-14
AU779168B2 (en) 2005-01-13
AU2242101A (en) 2001-06-18
WO2001042487A3 (en) 2001-11-15
SE9904539D0 (sv) 1999-12-10
JP2003516156A (ja) 2003-05-13
CN1332026C (zh) 2007-08-15

Similar Documents

Publication Publication Date Title
RU2244559C2 (ru) Устройство и способ экстракции нуклеиновых кислот
CN107249746B (zh) 用于收集核酸样本的系统和方法
US6908759B2 (en) Method of manufacturing kit for isolation nucleic acids or biological materials
US5935858A (en) Device for isolating a component of a physiological sample
US8206916B2 (en) Device, kit and method for pulsing biological samples with an agent and stabilising the sample so pulsed
US8067172B2 (en) Device, kit and method for pulsing biological samples with an agent and stabilising the sample so pulsed
US20120107799A1 (en) Disposable, rapid extraction apparatus and methods
RU2002118594A (ru) Устройство и способ экстракции нуклеиновых кислот
CA2740150C (en) Device, kit and method for pulsing biological samples with an agent and stabilising the sample so pulsed
WO2000012675A1 (en) Self-contained device integrating nucleic acid extraction, amplification and detection
EP0972080B1 (en) Biomolecular processor
EP2055385B1 (en) Method and device for purifying nucleic acids
US20110178286A1 (en) Consumable analytical plasticware comprising high-solubility plastics
JP3582632B2 (ja) 核酸抽出用容器
US20030228600A1 (en) DNA isolation method and kit

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20101207