RU2073011C1 - Линкер для твердофазного синтеза пептидов - Google Patents

Линкер для твердофазного синтеза пептидов Download PDF

Info

Publication number
RU2073011C1
RU2073011C1 RU93048604A RU93048604A RU2073011C1 RU 2073011 C1 RU2073011 C1 RU 2073011C1 RU 93048604 A RU93048604 A RU 93048604A RU 93048604 A RU93048604 A RU 93048604A RU 2073011 C1 RU2073011 C1 RU 2073011C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
peptides
linker
phase synthesis
polymer
peptide
Prior art date
Application number
RU93048604A
Other languages
English (en)
Other versions
RU93048604A (ru
Inventor
А.Н. Семенов
Original Assignee
Российско-германское совместное предприятие "Константа"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Российско-германское совместное предприятие "Константа" filed Critical Российско-германское совместное предприятие "Константа"
Priority to RU93048604A priority Critical patent/RU2073011C1/ru
Publication of RU93048604A publication Critical patent/RU93048604A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2073011C1 publication Critical patent/RU2073011C1/ru

Links

Images

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

Использование: в пептидной химии. Сущность изобретения: линкер для твердофазного синтеза пептидов:
Figure 00000001

где R1 - водород или Boc, X = связь или группа: - CO Gly-CO Gly-β-Ala.-Ala. 2 табл.

Description

Изобретение относится к органической химии, в частности, к области синтеза пептидов в гетерогенных системах жидкость/твердое тело (твердофазного синтеза пептидов). Основная идея твердофазного синтеза пептидов заключается в том, что синтезируемый пептид на всех этапах синтеза (присоединение аминокислот, деблокирование, удаление непрореагировавших компонентов и т.д.) остается присоединенным к нерастворимому носителю (обычно полимеру) через группу, называемую линкер (linker). К линкеру предъявляются требования, которые зачастую бывают взаимоисключающими. Например, высокая химическая устойчивость (на всех этапах синтеза) и в то же время лабильность (т.е. возможность его расщепления по окончании синтеза в мягких условиях, не затрагивающих лабильные аминокислоты и другие защитные группы, если требуется получить пептид с сохранением защитных групп).
В настоящее время предложено большое количество вариантов линкеров [1,2] Тем не менее проблема не считается исчерпывающе решенной.
Недавно нами был предложен способ мягкого и селективного удаления фенилгидразидной группы, блокирующей карбоксильную функцию [3-6] Способ включает каталитическое окисление фенилгидразидной группы до высокоактивной и неустойчивой фенилдиимидной с последующим самопроизвольным гидролитическим разложением последней:
Figure 00000003

Мы предположили, что фенилгидразидная группа также может защищать карбоксильную функцию, будучи присоединенной к нерастворимому полимеру, т.е. выполнять функцию линкера для твердофазного синтеза пептидов. На основании этого предположения был разработан новый линкер для твердофазного синтеза пептидов.
В качестве нерастворимого полимера при этом может быть использован гидрофильный (сферон), гидрофобный (полистирол) или любой другой полимер, устойчивый в условиях твердофазного синтеза пептидов.
Заявляемое техническое решение является новым, т.к. ранее не были описаны линкеры, расщепляемые в мягких окислительных условиях. Оно имеет изобретательский уровень, т.к. оно явным образом не следует из уровня техники. Кроме того, является промышленно применимым, т.к. фенилгидразидный линкер позволяет осуществлять препаративный твердофазный синтез пептидов.
Пример 1. Получение носителя, содержащего фенилгидразин, на основе Сферона.
Носитель, содержащий фенилгидразидные группы, был получен путем модификации гидроксиэтилметакрилатного геля Spheron ArA 1000, "La Chema", Брно, Чехословакия (0,25-0,40 ммк, диаметр пор 37-50 нм). Исходный полимер содержал связанные 2-(4-аминофенил)сульфэтоксильные группы (0,85±15 ммоль/г полимера). Модификацию осуществляли по следующей схеме:
Figure 00000004

К охлажденной до 0oC суспензии 5 г сферона ArA 1000 в 250 мл 2 М HCl добавляли 200 мл охлажденного льдом 2%-ного раствора NaNO2 и интенсивно перемешивали в течение 4 ч при 0oC. Диазотированный полимер отделяли фильтрацией, промывали на фильтре 100 мл охлажденной льдом конц. HCl и переносили в колбу. К полимеру добавляли коллоидный раствор 5 г SnCl2 в 100 мл конц. HCl. Суспензию перемешивали 2 ч при комнатной температуре и затем нагревали в течение 1 ч до 50-60oC. Полимер отделяли фильтрацией горячего раствора, промывали 500 мл воды и сушили в вакууме. Выход: 4,87 г.
Пример 2. Синтез пептида на полимерном носителе (сфероне).
Синтез пептида проводили по стандартному протоколу, описанному в [7] изложенному в табл.1. Все стадии выполняли в стеклянном реакторе объемом 50 мл для твердофазного синтеза пептидов в ручном варианте. Использовали следующие реактивы: производные аминокислот ("Bachem", Швейцария), триэтиламин, диизопропилкарбодиимид, анизол, гидроксибензотриазол ("Fluka", Швейцария), трифторуксусная кислота и органические растворители ("Мосреактив", Россия).
Пример 3. Удаление частично защищенного пептида BOC-Trp-Met-Cys(Asm)-OH с полимерного носителя (сферона).
1 г пептидил-полимера, полученного согласно Примера 2, суспендировали в 20 мл смеси, содержащей 8 мл DMF, 2 мл 1 М раствора пиридинацетатного буфера в DMF, 9 мл 20%-ного водного раствора уксусной кислоты и 1 мл 0,5 М водного раствора CuSO4. За протеканием реакции следили методом офВЭЖХ. Через 16 ч площадь пика, соответствующего целевому продукту, достигла максимального значения и составила 83% (от суммы площадей всех пиков, наблюдаемых методом офВЭЖХ). После этого полимер отфильтровали, промыли на фильтре DMF уксусной кислотой и водой. Объединенные фильтрат и промывные жидкости нанесли на препаративную колонку C18 2,5 x 25 см и элюировали градиентом метанола в 0,005 М аммоний-ацетатном буфере, рН 4,0. Фракции, содержащие целевой продукт, объединили, упарили до небольшого объема и лиофилизовали. Выход пептида 9 мг. Структуру пептида подтвердили методом 1H-ЯМР-спектроскопии (ЯМР-спектрометр Bruker, 500 MHz, DMSO-d6, стандарт тетраметилсилан), величины химических сдвигов протонов приведены ниже.
Figure 00000005

δH (500 MHz; DMSO-d6; Me4Si) 1,29 (9H, 1), 6,83 (1H, 2), 4,21 (1H, 3), 3,09 (2H, 4), 7,13 (1H, 5), 10,76 (1H, 6), 7,31 (1H, 7), 7,04 (1H, 8), 6,96 (1H, 9), 7,58 (1H, 10), 7,98 (1H, 11), 4,46 (1H, 12), 1,94 (2H, 13), 2,44 (2H, 14), 2,02 (3H, 15), 8,35 (1H, 16), 4,45 (1H, 17), 2,85-3,00 (2H, 18), 4,22 (2H, 19), 8,51 (1H, 20), 1,83 (3H, 21).
Пример 4. Синтез полимерного носителя, содержащего фенилгидразин, на основе хлорметилированного сшитого полистирола (смола Меррифилда).
Синтез полимерного носителя проводили по следующей схеме:
Figure 00000006

BOC-NHNH-C6H4-CONH-CH2-COOH. 2,52 г N-трет-бутилоксикарбонил-пара-карбоксифенилгидразина (коммерческий продукт научно-производственной фирмы "ДиОс") (10 ммоль) растворили в 10 мл диметилформамида, добавили 1,38 мл (10 ммоль) триэтиламина и раствор охладили до -10oC. При перемешивании добавили 1,3 мл (10 ммоль) изобутилхлорформиата. Через 2 мин к реакционной смеси добавили раствор 900 мг (12 ммоль) глицина в смеси 3 мл диметилформамида и 3 мл 4 н NaOH. Реакционную смесь перемешивали 24 ч, упарили, остаток растворили в 300 мл этилацетата и промыли последовательно 1 н серной кислотой и водой до нейтральной реакции. Этилацетат упарили досуха и остаток кристаллизовали из смеси этилацетат/гексан. Выход 2,47 г (80%).
BOC-β-Ala-COO-CH2polymer. 10 г сшитого хлорметилированного полистирола (смола Меррифилда (Fluka, 2% сшивки, 3,5 ммоль хлора/1 г смолы) суспендировали в 20 мл диоксана. К суспензии добавили 7,52 г (9,4 ммоль) тетрабутиламмония и 1,78 г (9,4 ммоль) BOC-b-Ala-OH. Реакционную смесь нагревали с обратным холодильником 8 ч, смолу отфильтровали, промыли диоксаном, метанолом, водой, метанолом и высушили в вакуумном эксикаторе до постоянного веса. Выход 10,315 г, что составляет 0,2 ммоль присоединившейся аминокислоты на 1 г смолы.
BOC-NHNH-C6H4-CONH-CH2-CONH-β-Ala-COO-CH2-polymer. 1 г BOC-β-Ala-COO-CH2-polymer поместили в реактор для твердофазного синтеза пептидов в ручном варианте объемом 50 мл. Добавили смесь трифторуксусная кислота/хлороформ/анизол 1: 2,5: 0,5 (v/v/v) и инкубировали 40 мин. По окончании реакции смолу промыли хлороформом, смесью хлороформ/триэтиламин 9:1, хлороформом и диметилформамидом. Добавлии 20 мл диметилформамида, 309 мг (1 ммоль) BOC-NHNH-C6H4-CONH-CH2-COOH, 135 мг (1 ммоль) HOBt и 126 мг (1 ммоль) диизопропилкарбодиимида. Реакцию проводили 24 ч при перемешивании на шейкере. По окончании реакции смолу промыли диметилформамидом и хлороформом.
Пример 5. Синтез пептида на полимерном носителе (смола Меррифилда).
1 г смолы Меррифилда, содержащей фенилгидразин в качестве линкера (получен в примере 4) использовали для синтеза пептида BOC-Trp-Met-Cys(Acm)-OH. Синтез проводили аналогично примеру 2.
Пример 6. Удаление частично защищенного пептида BOC-Trp-Met-Cys(Acm)-OH с полимерного носителя (смолы Меррифилда) в растворах разного состава.
Смола Меррифилда ограниченно набухает в присутствие воды, поэтому было проведено предварительное исследование влияния состава среды на выход пептида. По 10 мг пептидил-полимера, полученного в примере 5, поместили в пробирки. Добавили диметилформамид, 20% -ную уксусную кислоту, 0,5 М CuSO4 (раствор в воде) и воду в пропорциях, приведенных в таблице 2. Через 24 ч методом количественной ВЭЖХ определили содержание пептида (в условных единицах площади пика). Результаты приведены в табл.2.
Из табл. 2 видно, что оптимальной по составу является среда, содержащая 90% диметилформамида. Очевидно, что в среде этого состава смола Меррифилда набухает достаточно эффективно и в то же время количество воды достаточно для участия в реакции отщепления пептида.
Пример 7. Удаление частично защищенного пептида BOC-Trp-Met-Cys(Acm)-OH с полимерного носителя (смолы Меррифилда).
1 г пептидил-полимера, полученного в примере 6, суспендировали в смеси, содержащей 17 мл диметилформамида, 1 мл 1 М пиридинийацетата в диметилформамиде, 1 мл 20%-ной водной уксусной кислоты и 1 мл 0,5 М CuSO4. Через 24 ч смолу отфильтровали и пептид выделяли из фильтрата аналогично примеру 3. Выход 2,5 мг.

Claims (1)

  1. Линкер для твердофазного синтеза пептидов общей формулы
    Figure 00000007

    где R1 водород или Вос;
    X связь или группа CO Gly-β-Ala-T.н
RU93048604A 1993-10-20 1993-10-20 Линкер для твердофазного синтеза пептидов RU2073011C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU93048604A RU2073011C1 (ru) 1993-10-20 1993-10-20 Линкер для твердофазного синтеза пептидов

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU93048604A RU2073011C1 (ru) 1993-10-20 1993-10-20 Линкер для твердофазного синтеза пептидов

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU93048604A RU93048604A (ru) 1996-04-27
RU2073011C1 true RU2073011C1 (ru) 1997-02-10

Family

ID=20148413

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU93048604A RU2073011C1 (ru) 1993-10-20 1993-10-20 Линкер для твердофазного синтеза пептидов

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2073011C1 (ru)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2753880C1 (ru) * 2017-09-19 2021-08-24 Иммунворк Инк. Фармацевтические конструкции с повышенной аффинностью связывания с альбумином
US20220185841A1 (en) * 2019-09-12 2022-06-16 Fujifilm Corporation Method for producing peptide compound, reagent for forming protective group, and hydrazine derivative

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
1. G.Barany, N.Kneib - Cordomier, D.G.Mullen. Int. J. Pept.Prot.Res, 1987, v.30, р.705. 2. G.B.Fields and other. Int. J. Peptide Prot. Res., 1990, v.35, р.161. 3. A.N. Semenov and other. Peptide Res., 1992, v.5, р.300. 4. Семенов А.Н., Ломоносова И.В., Титов М.И. Биоорганическая химия, 1993, т.19, с.66. 5. Семенов А.Н., Ломоносова И.В. Биоорганическая химия. - 1993, т.19, с.182. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2753880C1 (ru) * 2017-09-19 2021-08-24 Иммунворк Инк. Фармацевтические конструкции с повышенной аффинностью связывания с альбумином
US20220185841A1 (en) * 2019-09-12 2022-06-16 Fujifilm Corporation Method for producing peptide compound, reagent for forming protective group, and hydrazine derivative

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Fridkin et al. Use of polymers as chemical reagents. I. Preparation of peptides
US8299225B2 (en) Amidite for synthesizing modified nucleic acid and method for synthesizing modified nucleic acid
US4102877A (en) Cyclization of peptides
KR102337328B1 (ko) 용액상 gap 펩타이드 합성을 위한 시스템 및 방법
ZA200600584B (en) Preparation of somatostatin peptides
JPS6317839B2 (ru)
JP2960257B2 (ja) ビオチン導入試薬およびそれを用いる合成ペプチド精製法
RU2073011C1 (ru) Линкер для твердофазного синтеза пептидов
US5166394A (en) Coupling reagent for peptide synthesis
EP2210882A1 (en) Synthesis of new protected azahistidine, their processes and their use in synthesises
JP2989007B2 (ja) N―置換ケテンイミン活性化物質を用いるアミノ酸チオヒダントインの生成方法
JP4514330B2 (ja) 超分子ペアリングシステムその製造及び使用
EP0680955B1 (en) PROCESS FOR PRODUCING N-tert-BUTYL-2-PYRAZINECARBOXAMIDE AND N-tert-BUTYL-2-PIPERAZINECARBOXAMIDE
JP4878031B2 (ja) 固相ペプチド合成法
PL167504B1 (pl) Sposób wytwarzania peptydów za pomoca syntezy w fazie stalej PL PL
JP2003508408A (ja) 環状偽ペプチッドの製造方法
BE898650A (fr) Synthese d'aspartame
JP2000510839A (ja) 触媒イミダゾール(例えばヒスチジン)機能を有する触媒を使用した安定化変遷複合体を用いたアシル移行
CA2323678A1 (en) Process for the preparation of a tetrapeptide
CN111378009A (zh) 一种奥曲肽的制备方法
JP2748897B2 (ja) 新規なアルギニン誘導体およびこれを用いるペプチドの製造方法
JPS624276A (ja) 架橋試薬
US4035348A (en) Tetrapeptides and methods for their production
RU1781226C (ru) Способ получени пироглутамилсодержащих субстратов
JPH08511258A (ja) 保護基及びアンカー基用の化合物とその使用