RU2053292C1 - Штамм бактерий alcaligenes eutrophus - продуцент белковой биомассы - Google Patents
Штамм бактерий alcaligenes eutrophus - продуцент белковой биомассы Download PDFInfo
- Publication number
- RU2053292C1 RU2053292C1 SU5024752A RU2053292C1 RU 2053292 C1 RU2053292 C1 RU 2053292C1 SU 5024752 A SU5024752 A SU 5024752A RU 2053292 C1 RU2053292 C1 RU 2053292C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- strain
- protein
- biomass
- culture
- producer
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Использование: промышленная микробиология. Сущность изобретения: выявление нового штамма Alcal genes eutrophus SV - продуцента белковой биомассы. Проводят многоступенчатую селекцию по скорости роста и синтезу белка. Штамм Alcaliegenes eutrophus SV - продуцент биомассы, обладает высокой скоростью роста 0,43 ± 0,02 ч- 1, содержание белка в биомассе 65 - 67%, содержание аминокислот 65%, время генерации 1,5 ч, продуктивность 2 г/л ч, белкосинтезирующая активность 2,4 - 2,9 мг белка/мг РНК/ч.
Description
Изобретение относится к микробиологической промышленности и касается штамма-продуцента белковой биомассы.
Известны микробиологические способы получения белковой биомассы на гидролизатах растительного сырья и отходах целлюлозно-бумажной промышленности, а также на n-парафинах нефти [1-5]
Недостатками способов являются низкие скорости роста продуцентов (0,20-0,25 с-1), не высокие концентрации белка в биомассе (40-55%), а также ограниченность сырьевой базы в целом.
Недостатками способов являются низкие скорости роста продуцентов (0,20-0,25 с-1), не высокие концентрации белка в биомассе (40-55%), а также ограниченность сырьевой базы в целом.
Известны продуценты биомассы на водороде Hydrogenomonas thermophilus K-2 [6] а также белковых веществ Alcaligenes eutrophus Z-1 [7] Микробиологический синтез белка на водороде характеризуется высокими скоростями роста продуцентов и выходами белка, отсутствием токсичных отходов и побочных продуктов, не зависит от дефицитного органического сырья, позволяет получать продукт высокой чистоты. Процесс можно ориентировать на различные доступные и дешевые источники водорода, включая водородсодержащие индустриальные газовые выбросы. Для бактерий H. thermophilus Л-2 максимальный выход биомассы составляет при росте на водороде 1,5-2,0 г/л, максимальное развитие организма происходит за 24 ч. Штамм A. eutrophus Z-1 имеет следующие характеристики: лаг-фаза при росте на водороде составляет 24-28 ч, максимальный урожай 60- часовой культуры 2,9-3,1 г/л продуктивность в линейной фазе роста 0,06-0,10 г/л· ч, содержание белка в биомассе 50-60% но к стационарной фазе оно падает до 23% [7]
Недостатками данных штаммов являются низкие значения общей продуктивности и выхода биомассы.
Недостатками данных штаммов являются низкие значения общей продуктивности и выхода биомассы.
Известен штамм Calderobacterium hydrogenophilum продуцент гидрогеназы, а также возможный источник кормового белка [8] Штамм наиболее близок к предлагаемому, так как может быть источником белковых веществ, имея следующие характеристики при росте на водороде при 76оС: максимальные значения удельной скорости роста 0,4 ч-1, время генерации 2 ч, концентрация белка в биомассе 60% содержание аминокислот 36%
Недостатком штамма является низкое содержание аминокислот, а также необходимость стабилизировать температуру культивирования на высоких значениях, что существенно усложняет технологию и требует специального термостойкого оборудования и значительных энергозатрат.
Недостатком штамма является низкое содержание аминокислот, а также необходимость стабилизировать температуру культивирования на высоких значениях, что существенно усложняет технологию и требует специального термостойкого оборудования и значительных энергозатрат.
Цель изобретения выявление нового штамма, растущего на водороде, более эффективно синтезирующего высокобелковую биомассу не в экстремальных условиях.
Предлагаемый штамм является одним из вариантов, выделенных из культуры Alcaligenes eutrophus Z-1 в процессе длительной многоступенчатой селекции по скорости роста и синтезу белка. Использована стандартная процедура последовательных пересевов культур на плотные среды с поэтапным отбором колоний, образованных клетками с максимальными значениями скорости роста и содержания белка.
Штамм Alcaligenes eutrophus депонирован в коллекции Центрального музея промышленных микроорганизмов Института "ВНИИгенетика", коллекционный номер ВКПМ В-5786.
Морфологические признаки штамма. Клетки палочки (молодые короткие, в стационарной фазе разной длины, размеры 0,3-0,5х1,2-2,0 мкм, грамотрицательные, подвижные (молодые монотрики), с возрастом перетрихи). На агаризованной среде с пептоном (гетеротрофные условия роста) образуют округлые колонии, кремовато-серого цвета, с возрастом коричневеющие, размер колоний 1,5-5,0 мм. На минеральной агаризованной среде (автотрофные условия роста) колонии мелкие, светло-серые, полупрозрачные. В жидких средах рост диффузный.
Культурально-морфологические признаки штамма стабильно сохраняются при варьировании условий культивирования и сред.
Вариант 1. Штамм A. tutrophus B-5786 выращивали в периодической автотрофной культуре. Жидкая солевая среда Шлегеля содержит Na2HPO4 · 9H2O 9,5 KH2PO4 1,5 MgSO4 0,2 CO(NH2)2 1,5 а также 5 мл раствора железа лимоннокислого (5 г/л) и 3 мл стандартного раствора микроэлементов, содержащего, г/л: H3BO3 0,228 CоCl2 · 6 H2O 0,030 CuSO4 · 5 H2O 0,008 MnCl2 · 4 H2O 0,008
ZnSO4 · 7 H2O 0,176 NaMoO4 · 2 H2O 0,008 NiCl2 0,008
Культивирование осуществляли в стеклянной 2- литровой колбе, заполненной 0,5 л среды, инокулированной музейной культурой предлагаемого штамма.
ZnSO4 · 7 H2O 0,176 NaMoO4 · 2 H2O 0,008 NiCl2 0,008
Культивирование осуществляли в стеклянной 2- литровой колбе, заполненной 0,5 л среды, инокулированной музейной культурой предлагаемого штамма.
Исходная концентрация клеток в культуре 0,5 г/л. Колба соединена с газометром, заполненном газами, об. водород 70,0; кислород, 20,0; двуокись углерода 10,0. Культивирование проводили в течение 38 ч при 30оС и pH 7,0. Периодически, через 6-8 ч, газовая среда в колбе обновляется (с помощью вакуумного насоса газовая смесь эвакуируется из колбы и поступает свежая смесь), в результате состав газов в культуре мало изменяется от установленной нормы. Удельная скорость роста бактерий в линейной фазе составляет 0,41 ч-1, продуктивность 1,5-2,0 г/л· ч, концентрация белка в клетках 68% сумма аминокислоты 65% при высеве на агаризованную среду колонии образуются на третьи сутки: округлые серовато-кремовые, клетки короткие палочки, 0,3-0,5х1,0-1,2 мкм, подвижные, в основном монотрихи.
Вариант 2. Штамм выращивали в проточной культуре в ферментере объемом 2 л с заполнением культурной 0,5 л при стабилизации pH (7,0), температуры (30оС) при скорости прокачки газовой смеси через культуру, равной 4 л/мин· л. Состав газовой смеси, об. кислород 16 ± 3; двуокись углерода 9 ± 1; водород остальное, до 100. Концентрация клеток в культуре в установившемся режиме составляла 2,0 ± 0,15 г/л. Основа жидкой солевой среды аналогично варианту 1, но с уменьшенным содержанием фосфатов, соответственно, для натрия фосфорнокислого и калия фосфорнокислого 4,5 и 0,75 г/л. Культивирование в системе pH-статирования, корректирующий раствор 0,1 М КОН. Цикл непрерывного культивирования 100 ч при следующих характеристиках: удельная скорость роста бактерий 0,41 ч-1, концентрация белка и аминокислот в клетках, соответственно, 70 и 65% Популяция на 90% представлена активно делящимися молодыми клетками: короткие палочки, 0,3-0,5х1,0-1,2 мкм монотрихи.
Вариант 3. Штамм культивировали в проточно-плотностатной культуре. Жидкая солевая среда готовится на основе кислот и щелочей, используют следующие растворы: КОН 30% кислота ортофосфорная (плотность 1,69), NaOH 20% источник азота мочевина в концентрации 1 г/л. Приготовление среды: на 1 л дистиллированной воды вносят 0,5 г MgSO4, 2 мл раствора KОН, 2 мл концентрированной ортофосфорной кислоты (железо и микроэлементы аналогично вариантам 1 и 2). Исходное pH среды с помощью подтитровки раствором NaOH доводят до 6,5-6,7. В процессе ферментации мочевина под воздействием бактериальной уреазы гидролизуется и pH стабилизируется на уровне 7,0 ± 0,1. Температура культивирования 30оС, объем ферментера составляет 8 л, объем культуры 2 л, длительность цикла ферментации не менее 200 ч в установившемся режиме при следующих характеристиках: концентрация клеток в культуре 3,0 ± 0,15 г/л, удельная скорость роста бактерий 0,43 ± 0,01 ч-1, скорость прокачки газа через культуру 8 л/мин на л (состав газов аналогично варианту 2). Продуктивность культуры 2,4 ± 0,15 г/л· ч, концентрация белка и аминокислот в биомассе, соответственно, 70 и 65% Клетки короткие коккоподобные палочки, размер 0,3-0,5х1,0 мкм, монотрихи.
Физиолого-биохимические свойства. Штамм облигатный аэроб, сахара не усваивает, кроме фруктозы, Штамм обладает широким органотрофным потенциалом и способен в качестве источника углерода использовать: аминокислоты (аланин, серин, лейцин, гистидин, триптофан, глутаминовую, аспарагиновую, лизин), органические кислоты (щавелевую, лимонную, янтарную, фумаровую, уксусную, валериановую), спирты (этанол, глицерин), а также окись углерода.
В качестве источника азота штамм усваивает минеральные и органические соединения: NH4OH, NH4Cl, NH3, KNO3, NH4NO3, CO(NH2)2. В массовой проточной культуре лучшими являются восстановленные формы азота хлористый аммоний и мочевина, однако применение первого требует дополнительных мер для стабилизации pH среды на уровне оптимальном для роста бактерий. На нитратах скорость роста штамма ниже на 30-35% Из органических соединений помимо названных аминокислот штамм усваивает мочевую и гиппуровую кислоты, креатинин, аллантоин.
Гидролитическими ферментами штамм не обладает, желатину не разжижает, крахмал не гидролизует. На минеральной среде в атмосфере водорода, двуокиси углерода и кислорода специфических факторов роста и органических добавок не требуется. Границы физиологического действия pH для штамма в диапазоне 4,4-8,6, оптимальны для скорости роста значения pH 6,5-7,2, сдвиг pH в кислую сторону на одну единицу снижает скорость роста практически в 2 раза. щелочная среда ингибирует рост более значительно, при pH 8,0 удельная скорость роста не превышает 0,22 ч-1.
Способность к росту штамм сохраняет в диапазоне температур 20-41оС, оптимум для размножения 29,5-32,0оС. Максимальная температурная точка для штамма 41оС, выше рост прекращается. Минимальная точка в периодической экстенсивной культуре составляет 20оС, в проточной культуре 22оС.
Содержание ГЦ пар нуклеотидов в ДНК равно 66%
При оптимальных условиях роста удельная скорость роста штамма составляет 0,41-0,45 ч-1, содержание белка в биомассе 65-67% содержание аминокислот 65% время генерации 1,5 ч, продуктивность 2 г/л· ч, белоксинтезирующая активность составляет 2,4-2,9 мг белка/мг РНК в час.
При оптимальных условиях роста удельная скорость роста штамма составляет 0,41-0,45 ч-1, содержание белка в биомассе 65-67% содержание аминокислот 65% время генерации 1,5 ч, продуктивность 2 г/л· ч, белоксинтезирующая активность составляет 2,4-2,9 мг белка/мг РНК в час.
Штамм стабильно сохраняет свои свойства, устойчив в фаголизису и контаминации, это позволяет проводить незащищенную ферментацию в автотрофных условиях роста.
Хранение культуры осуществляется обычными способами: на косяках агаризованной среды Шлегеля и в лиофилизированном состоянии в запаянных стеклянных ампулах при 3-5оС. Частота пересовов косяков через 30-35 сут.
П р и м е р 1. Штамм Alcaligenes eutrophus ВКПМ В-5786 поддерживают на скошенной агаризованной среде Шлегеля в атмосфере смеси газов (водород:кислород:двуокись углерода-7:2:1). На поверхность скошенного агара наносят культуру штамма, пробирки помещают в эксикатор с герметически притертой крышкой, воздух эвакуируют, эксикатор, заполняют смесью газов вышеназванного состава. Пробирки, помещенные в эксикаторе, размещаются в термостатируемом шкафу при 30оС, инкубирование 7 сут.
Приготовление жидкой солевой среды для автотрофного выращивания штамма.
Раствор А среда Шлегеля, г/л: Na2HPO4 · 9 H2O 9,5 KH2PO4 1,5 MgSO4 0,2 CO(NH2)2 1,5
Раствор Б железо лимоннокислое FeNH4C6H5O7 5 г/л.
Раствор Б железо лимоннокислое FeNH4C6H5O7 5 г/л.
Раствор В микроэлементы по прописи Хоагланда, мкг/мл: H3BO3 228 CoCl2 · 6 H2O 30 CuSO4 · 5 H2O 8 MnCl2 · 4 H2O 8 ZnSO4 · 7 H2O 176 NaMO4 · 2 H2O 50 NiCl2 8
Растворы А, Б и В готовят и стерилизуют отдельно. Перед засевом к 1 л раствора А добавляют, соответственно, 5 и 3 мл pаствоpов Б и В. Для получения плотной среды к 1 л полученной солевой среды добавляют 20 г агара (стерилизация при 1 атм).
Растворы А, Б и В готовят и стерилизуют отдельно. Перед засевом к 1 л раствора А добавляют, соответственно, 5 и 3 мл pаствоpов Б и В. Для получения плотной среды к 1 л полученной солевой среды добавляют 20 г агара (стерилизация при 1 атм).
Клеточную массу смывают с поверхности косяков, выросших в эксикаторе, жидкой средой названного состава, смывом инокулируют 0,1 л среды, разлитой в конические колбы объемом 0,5 л (исходная оптическая плотность культуры 0,1 ед. при λ460 нм). Колбы соединяют герметично с газовой емкостью, содержащей водород, кислород и двуокись углерода в названном выше соотношении и размещают в термостатируемой качалке при 30оС на 42 ч до получения культуры с оптической плотностью 1,0 -1,5 ед. Лаг-фаза составляет 12-18 ч, удельная скорость роста культуры 0,42 ± 0,01 ч-1, продуктивность 1,5 г/л· ч, концентрация белка и аминокислот в клетках 70 и 65% соответственно.
П р и м е р 2. С поверхности косяка музейной культуры приготавливают смыв аналогично примеру 1. Смывом инокулируют 0,5 л жидкой солевой среды того же состава, среда вносится в 2- литровые колбы, соединенные герметично с емкостью, содержащей газы известного состава (пример 1), колбы размещают на магнитной мешалке ММ-3. Инкубирование проводят в течение 3 сут. при 30оС. Удельная скорость роста бактерий составляет 0,41 ч-1, содержание белка и аминокислот в клетках 69 и 65%
Claims (1)
- Штамм бактерий Alcaligenes eutrophus ВКПМ В-5786 - продуцент белковой биомассы.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU5024752 RU2053292C1 (ru) | 1992-01-08 | 1992-01-08 | Штамм бактерий alcaligenes eutrophus - продуцент белковой биомассы |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU5024752 RU2053292C1 (ru) | 1992-01-08 | 1992-01-08 | Штамм бактерий alcaligenes eutrophus - продуцент белковой биомассы |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2053292C1 true RU2053292C1 (ru) | 1996-01-27 |
Family
ID=21595624
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU5024752 RU2053292C1 (ru) | 1992-01-08 | 1992-01-08 | Штамм бактерий alcaligenes eutrophus - продуцент белковой биомассы |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2053292C1 (ru) |
-
1992
- 1992-01-08 RU SU5024752 patent/RU2053292C1/ru active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
1. Андрусенко М.Я., Минина В.С., Безбородов А.М. и др. Получение белка пищевого достоинства на основе новых сырьевых источников. М.: ОНТИТЭИмикробиопром, 1979, 64 с. 2. Senez J.C. New dewelopments in the fieds of protein enrichment of found and feeds//Acta Biotechnol., 1983, vol.3, N 4, p.293-308. 3. Рычков Р.С. Перспективы развития микробиологической промышленности//изв. АН СССР. Сербиол.-1981, N 3, с.325-336. 4. Скрябин Г.К. и Ерошин В.К. Биотехническое получение белка//Биотехнология. М., 1984, с.35-41. 5. Катруш Р.В. Развитие производства кормового белка из углеводородов нефти. - Сб."Технология производства белка одноклеточных". М., 1984, с.3-7. 6. Авторское свидетельство СССР N 391175, кл. C 12K 3/00, 1973. 7. Веденина И.Я. Содержание основных компонентов клетки при автотрофном росте Alcaligenes eutrophus Z-1.//Микробиология. - 1968, вып.1, с.5-9. 8. Авторское свидетельство СССР N 1125245, кл. C 12N 9/02, 1984. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
RU2208640C2 (ru) | СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ L-АРГИНИНА, ШТАММ Escherichia coli - ПРОДУЦЕНТ L-АРГИНИНА | |
FI111738B (fi) | Rhodococcus rhodochrous-kanta nitriilihydrataasin tuottajana | |
US5134077A (en) | Microorganisms of the genus Erwinia useful for preparing 2,5-diketo-D-gluconic acid | |
Izumi et al. | Pyruvic acid production from 1, 2-propanediol by thiamin-requiring Acinetobacter sp. 80-M | |
US4490471A (en) | Microorganisms of the genus Pseudomonas and process for degrading compounds which contain methyl groups in aqueous solutions | |
CA1195272A (en) | Process for preparation of aspartylphenylalanine alkyl esters | |
US20050239165A1 (en) | Method for cultivation of the nitrile-hydratase-producing strain Rhodococcus rhodochrous M33 | |
US5563053A (en) | Process for production of amide compounds using microorganism | |
CA1238593A (en) | Microorganisms of the genus pseudomonas and process for the degradation of compounds containing methyl groups in aqueous solutions | |
JPH1142083A (ja) | 5−アミノレブリン酸生産微生物及びこれを用いた5−アミノレブリン酸の製造法 | |
RU2053292C1 (ru) | Штамм бактерий alcaligenes eutrophus - продуцент белковой биомассы | |
EP0343330A2 (en) | Biotransformation of L-tyrosine and L-phenylalanine to 2,5-dihydroxyphenylacetic acid | |
JPH08187092A (ja) | 好熱性微生物が有するニトリル化合物をアミド化合物に変換させる水和活性を向上させる方法 | |
US4060455A (en) | Process for the microbial production of L-serine using pseudomonas Sp. DSM 672 | |
US3293141A (en) | Fermentation process for producing l-tryptophan | |
SU644833A1 (ru) | Штамм 85-продуцент -аспарагиновой кислоты | |
CN86102773A (zh) | 生产l-山梨糖的方法 | |
EP0310949B1 (en) | Process for producing d-alanine | |
JP3006907B2 (ja) | 発酵法によるl−アラニンの製造法 | |
KR0146493B1 (ko) | 발효법에 의한 l-알라닌의 제조 방법 | |
Santoyo et al. | Growth kinetics of L-aminoacylase-producing Pseudomonas sp. BA2 | |
SU1406163A1 (ru) | Штамм бактерий RноDовастеR SрнаеRоIDеS-продуцент убихинона Q @ | |
SU1161551A1 (ru) | Штамм @ @ 2-82-продуцент пектат-лиазы | |
US4795708A (en) | Novel backteria and single cell protein production therewith | |
SU763464A1 (ru) | Способ получени над-зависимой алкогольдегидрогеназы |