RU1797470C - Состав дл капсулировани биологически активного вещества - Google Patents

Abstract

Использование: кормопроизводство. Сущность изобретени : состав дл  капсули- ровани  биологически активного вещества включает св зующую систему из пленкообразующих компонентов, в качестве которых используют гидрофобный полимер - зеин и водонерастворимый полимер - этил- целлюлозу при следующем соотношении компонентов, мае. %: зеин 50,0-90,0; этил- целлюлоза 10,0-50,0, и дополнительно пластификатор - триацетин в количестве 7,7-10,0%.3 табл.

Description

Изобретение относитс  к кормопроизводству .

Цель изобретени  - повышение стабильности состава в рубце и сычуге и выделени  биологически активного вещества в тонком кишечнике.

Изобретение иллюстрируетс  следующими примерами.

Пример 1. Использу  технику капсу- лировани  пульверизацией, получают гранулы из метионина, покрытого оболочкой из композиции, состо щей из зеина 69,2%, этилцеллюлозы № 22 (Геркулес)23% и триа- цетина 7,7%. Содержание метионина в покрытых гранулах 72%.

Дл  сравнени  изготавливают гранулы с метионином, покрытым оболочкой из следующей композиции по прототипу:

Гранулы А: этилцеллюлоза № 100 (Гер кулес) 80%. сополимер стирол-2-винил-пи- ридин (30-70) 20%; содержание метионина в покрытых гранулах 70%.

Гранулы В: этилцеллюлоза № 100 (Геркулес ) 58,3%, сополимер стирол-2-винил- пиридин (30-70) 25%, пропиленгликолЬ 16,7%; содержание метионина в покрытых гранулах 73%,

Различные покрытые гранулы, изготовленные подобным образом, подвергаютс  тестам in vitro и In vivo.

1. Тест In vitro.

Высаливание метионина, содержащегос  в получаемых гранулах, определ ют при перемешивании известного количества гранул в буферной среде, поддержани  посто нным рН при температуре 40°С.

. Сравнивают скорости высаливани  образца при различных рН. Полученные результаты отражены в табл. 1,

2. Тест In vivo.

Определ ют стойкость гранул к пребыванию в рубце, в сычуге, затем в тонкой кишке у барана, измер   количество общего

Х|

Ю

2

3

со

азота, исчезнувшего из мешочков, после каждого из трех последовательных этапов.

2.1. Переваривание в рубце.

Нейлоновые мешочки (квадратна  петл  46 микрон), содержащие каждый прибли- ительно 3 г покрыти , точно взвешенные, помещают на 12 ч в рубец двух баранов из расчета два мешочка на продукт и на барана .

После инкубации в рубце мешочки промывают холодной водой, затем сушат в течение 48 ч.

Мешочки развешивают и определ ют количество исчезнувших гранул. Остатки затем вынимают из мешочков и отбирают двойную пробу дл  дозировки общего азота.

Оставшиес  продукты объедин ют по видам продуктов и помещают вновь в нейлоновые мешочки.дл  йнкубации в сычуге.

2.2. Переваривание в сычуге.

Три нейлоновых мешочка (квадратные петли по 46 микрон), размер которых составл ет половину ранее использованных мешочков дл  переваривани  в рубце, содержащие приблизительно 0,5 г остатков, примен ют дл  каждой продолжительности инкубации и дл  каждого исследуемого продукта .

Эти мешочки, закрепленные на веревке , ввод т в сычуг 3 баранам с трубкой дл  размещени  в сычуге (внутренний диаметр 28 мм). Устанавливают тот же режим питани  из расчета 1 мешочек на барана и на продукт.

После инкубации в течение 0.5 ч, 2 ч и 4 ч мешочки промывают, высушивают и взвешивают .

Остатки, с одной стороны, отбирают в виде проб, дл  дозировки азота и, с другой стороны, используют дл  анализа переваривани  в тонкой кишке.

2.3. Переваривание в тонкой кишке.

Остатки, полученные выше, объедин ют в соответствии со временем инкубации и согласно продуктам. Их помещают в нейлоновые микропакеты (диски диаметром 20 мм; квадратные петли 46 микронов) из расчета 200 мг остатков в пакете и 3 пакета на все врем  инкубации.

Эти пакеты ввод т в начале тонкой кишки (двенадцатиперстна  кишка) трем баранам , наход щимс  на одном и том же режиме питани  с простой трубкой на уровне двенадцатиперстной кишки (5 см привратника желудка, 12 мм внутренний диаметр), и повторно ввод т трубки (18 мм внутренний диаметр) в конце тонкой кишки (подвздошна  кишка).

Остатки каждого типа покрыти  изучались 2 по 2 в течение двух циклов измерени , каждое животное получало 1 пакет каждой из 6 обработок (2 покрыти  х 3 продолжительности инкубации в сычуге).

Каждое животное получало 6 пакетов с

интервалом 15 мин.

3 ч спуст  после начала введени  .повторно вводимую трубку открывают и содержимое , относ щеес  к подвздошной кишке, свободно вытекает наружу из животного.

Пакеты вынимают после продолжительности прохождени  от 3,5 до 8 ч. Пакеты собирают и подвергают анализу, как и в предшествующих тестах.

Полученные результаты приведены в

табл.2., Пример- 2. В смеси из 500 см3 дихлорметана и 500 см3 абсолютного этано- ла раствор ют 22 г зеина и 88 г стеариновой чистой кислоты.

Полученный раствор напыл ют методом аэрозольного напылени  на 350 г мёти- онина в виде гранул, средний диаметр которых составл ет 0,5-0,63 мм. Получают, таким образом, гранулы в оболочке, где содержание метионина составл ет 74,5%.

Количество выделенного метионина из гранул после 24 ч при 40°С в водной буферной среде составл ет при рН 6 (рубец) 6% и при рН 2 (сычуг) 7%.

После пребывани  в течение 48 ч в рубце овцы содержание остаточного метионина 68,0 ±6%.

Выделение метионина в тонком кишечнике 96% ±4,0.

.Пример 3. В смеси, состо щей из 500 см3 дихлорметана и 500 см3 абсолютного этанола, раствор ют 14 г зеина, 88 г чистой стеариновой кислоты и 8 г этилцеллюлозы № 22.

Полученный раствор напыл ют методом аэрозольного напылени  на 350 г хлор- гидрата лизина в виде гранул, средний диаметр которых близок 0.8 м. Получают, таким образом, гранулы в оболочке, где содержание хлоргидрата лизина составл ет

69,4%.:

.Количество хлоргидрата лизина, выделенного из гранул после 24 ч, при 40°С в буферной среде составл ет при рН б 2,6% и прирН26%.

После пребывани  в течение 48 ч в рубце овцы процент хлоргидрата остаточного лизина 78,0 ±2%,

Результаты примера 4 представлены в табл. 3.

Результаты показывают стойкость.оболочки к среде с рН 6, С учетом примера 1 результаты показывают, что предлагаемые композиции не чувствительны к изменению

рН; напротив, они показывают стабильность в кислом спектре рН. Практически это означает, что кормова  добавка (метионин),

покрыта  предлагаемой композицией, не разлагаетс  при прохождении у животного через рубец (рН6) и сычуг (рН 2).

Claims (2)

1. Формула изобретени  1. Состав дл  капсулировани  биологически активного вещества, включающий св зующую систему из пленкообразующих компонентов,отличающийс  тем,что, с целью повышени  стабильности состава в рубце и сычуге и выделени  биологически активного вещества в тонком кишечнике, в качестве пленкообразующих компонентов св зующей системы состав содержит гидрофобный полимер - зеин и водонерастворимый полимер - этилцеллголозу при следующем соотношении компонентов, мае. %:

   зеин-50-90;

   этил целлюлоза - 10-50.
2. 2.Достав по п. 1,отличающийс  тем, что дополнительно содержит пластификатор триацетин при следующем соотношении компонентов, мае. %

   зеин -54,0-69,2;

   этил целлюлоза - 23-36;

   триацетин- 7,7-10,0.

   Таблица 1

   Выделение продуктов на различных участках пищеварительного тракта барана

   Компонент

   Зеин Этилцеллюлоза

   Триацетин

   % метионина в гранулах

   Выделение при рН 6 за

   6ч

   24ч

   1797470

   10 Таблица 3

   Содержание. %

   54

   36

   10

   68.5

   8

   14