PL82807B1 - - Google Patents

Download PDF

Info

Publication number
PL82807B1
PL82807B1 PL1972152947A PL15294772A PL82807B1 PL 82807 B1 PL82807 B1 PL 82807B1 PL 1972152947 A PL1972152947 A PL 1972152947A PL 15294772 A PL15294772 A PL 15294772A PL 82807 B1 PL82807 B1 PL 82807B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
solution
enzyme
phenol
venom
preparation
Prior art date
Application number
PL1972152947A
Other languages
English (en)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed filed Critical
Publication of PL82807B1 publication Critical patent/PL82807B1/pl

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L24/00Surgical adhesives or cements; Adhesives for colostomy devices
    • A61L24/04Surgical adhesives or cements; Adhesives for colostomy devices containing macromolecular materials
    • A61L24/10Polypeptides; Proteins
    • A61L24/106Fibrin; Fibrinogen
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • A61K38/16Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • A61K38/43Enzymes; Proenzymes; Derivatives thereof
    • A61K38/46Hydrolases (3)
    • A61K38/48Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
    • A61K38/482Serine endopeptidases (3.4.21)
    • A61K38/4833Thrombin (3.4.21.5)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/34Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving hydrolase
    • C12Q1/37Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving hydrolase involving peptidase or proteinase
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/56Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving blood clotting factors, e.g. involving thrombin, thromboplastin, fibrinogen
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L2400/00Materials characterised by their function or physical properties
    • A61L2400/04Materials for stopping bleeding
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2333/00Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
    • G01N2333/435Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from animals; from humans
    • G01N2333/46Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from animals; from humans from vertebrates
    • G01N2333/4609Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from animals; from humans from vertebrates from reptiles
    • G01N2333/4613Snake venom
    • G01N2333/4636Snake venom from Bothrops sp.
    • G01N2333/464Snake venom from Bothrops sp. from Bothrops atrox; Reptilase; Atroxin
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2333/00Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
    • G01N2333/435Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from animals; from humans
    • G01N2333/745Assays involving non-enzymic blood coagulation factors
    • G01N2333/75Fibrin; Fibrinogen
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/814Enzyme separation or purification
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/814Enzyme separation or purification
    • Y10S435/815Enzyme separation or purification by sorption
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/814Enzyme separation or purification
    • Y10S435/816Enzyme separation or purification by solubility

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Surgery (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Neurosurgery (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)

Description

Sposób wytwarzania preparatu enzymatycznego Przedmiotem wynalazku jest wytwarzanie pre¬ paratu enzymatycznego o trombino-podobnym dzia¬ laniu endopeptyidaizowym, majacego zastosowanie w medycynie i weterynarii w malych dawkach ja¬ ko srodek hemostatyczny, a w wiekszych dawkach jako srodek przeciw krzepliwosci krwi, z jadu we¬ zowego.W brytyjskim opisie patentowym nr 1 094 301 po¬ dano sposób wytwarzania enzymu o trombino-po¬ dobnym dzialaniu przeciw krzepliwosci krwi z jadu Ancistrodon rhodostoma. Enzym ten ma nastepu¬ jace wlasciwosci: w stanie czystym ma charakter proteinazowy i jest bezbarwny, adsorbuje na sla¬ bych zasadowych substancjach anionitowych, ta¬ kich jak dwuetyloaminometyloceluloza i trójetylo- aminoceluloza, rozpuszcza sie w roztworze soli fi¬ zjologicznej, wykazuje ruchliwosc elektroforetycz- na 3,9 X 10~5 volt/cm/sek. w 0,1 mola buforu fo¬ sforanowego o pH 7,0, posiada ciezar czasteczkowy (wyznaczony za pomoca ultrawirówki) nie przekra¬ czajacy 40000 w postaci monomerowej oraz wspól¬ czynnik sedymentacji S20W = 3,4 svedbergów przy stezeniu 4,86 mg/ml; czastkowa objetosc wlasciwa enzymu w stezeniu 4,86 ml/ml wynosi 0,7, jego dzialanie biologiczne jest podobne do dzialania troni- biny i antykrzepnieciowe in vivo i nie ulega zaha¬ mowaniu w ciagu 5 minut przez 1 X lO^8 molowy roztwór dwuizopropylofluorofosforanu.Stwierdzono, ze z jadu Bothrops atrox lub inne¬ go weza, którego jad jest immunologicznie wspól- 10 15 30 reaktywny z jadem Bothrops atrox, otrzymuje sie kompozycje enzymów, która z jednej strony, przy odpowiednio niskich dawkach dziala jako srodek hemostatyczny, a z drugiej, przy wiekszych daw¬ kach, dziala posrednio przeciw krzepnieciu krwi ludzi i innych ssaków, usuwajac z obiegu fibry- nogen, lecz nie powodujac hemostazy. Kompozycja ta, w porównaniu z enzymem wytworzonym spo¬ sobem opisanym w brytyjskim opisie patentowym nr ,1094 301, wykazuje kilka opisanych nizej zalet.Preparat enzymatyczny wedlug wynalazku, któ¬ ry w malych dawkach wykazuje dzialanie hemo- statyczne, a w wiekszych dawkach dziala jako sro¬ dek przeciw krzepnieciu krwi u ludzi i innych ssaków, ma nastepujace wlasciwosci: wykazuje trombdno-podobna aktywnosc endopeptydazowa; za¬ wiera skladnik peptydowy i skladnik weglowoda¬ nowy; z których ten pierwszy zawiera jeden lub wiecej polipeptydów o ciezarze czasteczkowym 18000—55000, wyznaczonym metoda ultrawirówki rzutowej; zawiera okolo 2—10fl/o wagowych weglo¬ wodanu (cukru obojetnego), co okresla sie na pod¬ stawie zawartosci protein; jest slabo rozpuszczal¬ na w wodzie destylowanej, lecz latwo rozpuszcza sie w roztworze soli fizjologicznej; tworzy kom¬ pleksy z fenolem i pochodnymi fenolu, slabo lub wcale nierozpuszczalne w wodzie; powoduje koa¬ gulacje fibrynogenu przez selektywne eliminowa¬ nie fibrynopeptydów A z fibrynogenu, nie uwal¬ niajac fibrynopeptydów B; wykazuje aktywnosc 82 80782807 4 trombino-podobna, odpowiadajaca okolo 30—450 jednostkom NIH-trombiny na 1 mg protein; roz¬ szczepia metylowy ester tosyloargininy i zelatyne, lecz nie rozszczepia metylowego estru lizyny, ety¬ lowego estru fenyloalaniny, N-acetylometioniny, N-acetylotyrozyny, leucyloglicyny i kazeiny; nie ulega zahamowaniu pod wplywem dzialania hepa¬ ryny, heparynoidów, hirudyny, antytrombin i wie- lowartosciowego inhibitora peptydazowego Kunitza [por. J. Gen. Physiol. 19, str. 991—1007, (1936)]; ule¬ ga zahamowaniu przy stezeniu enzymu okolo 5 ml/ /ml do okolo 95% pod wzgledem zdolnosci koagu- lacyjnej i aktywnosci esterazowej pod wplywem 2,5 X 10-3 molowego roztworu fluorofosforanu dwuizopropylu o pH 8, w ciagu 2 godzin; ulega za¬ hamowaniu pod wplywem metylowego estru tosylo¬ argininy i pod wplywem przeciwciala zawartego w surowicy antybothrops; nie jest wiazana, a wiec i dezaktywowana przez fibryne; jej pól-okres bio¬ logicznego rozpadu jest znacznie dluzszy od pól- -okresu rozpadu heparyny; wywoluje wytwarzanie sie pochodnej fibryny, która reaguje z nadmiarem fibrynogenu, tworzac dajacy sie polimeryzowac kompleks fibrynowo-fibrynogenowy; dziala na fi- brynogen tworzac fibryne o fizyko-chemicznych wlasciwosciach róznych od wlasciwosci fibryny wy¬ tworzonej z trombiny tym, ze ulega szybkiej hy¬ drolizie pod wplywem dzialania enzymów fibryno- litycznych, na przyklad plazminy, nawet w obec¬ nosci aktywowanego czynnika XIII i jonów wap¬ nia, a takze tym, ze rozpuszcza sie w 5-molowym wodnym roztworze mocznika; wywoluje in vivo defibrynogenacje i wtórna fibrynolize bez ubocz¬ nego dzialania krwotokowego i tromboembolicz- nego.Sposób wedlug wynalazku wytwarzania prepa¬ ratu enzymatycznego polega na tym, ze wytwarza sie izotoniczny roztwór wodny jadu Bothrops atrox lub innego weza, którego jad jest immunologicznie wspólreaktywny z jaden Bothrops atrox, o pH okolo 4,5—7, a nastepnie albo poddaje sie ten roz¬ twór frakcyjnemu wytracaniu soli w celu usunie¬ cia substancji balastowych, a nastepnie wytrace¬ nia frakcji zawierajacej enzym, po czym rozpusz¬ cza sie te frakcje w wodzie destylowanej ustala¬ jac wartosc pH roztworu na 3—4, ogrzewa roztwór w temperaturze 30—40°C w ciagu od kilku minut do okolo 2 godzin i doprowadza wartosc pH roz¬ tworu do okolo 4—6, albo ustala sie wartosc pH roztworu izotonicznego na 3—4 i ogrzewa sie go w temperaturze 30—50°C w ciagu od kilku minut do okolo 2 godzin, po czym wyosabnia sie wytra¬ cone proteiny, doprowadza wartosc pH roztworu do 4,5—7, poddaje go frakcyjnemu wytracaniu soli w celu usuniecia substancji balastowych, a na¬ stepnie wytracenia frakcji zawierajacej aktywny enzym, rozpuszcza sie te frakcje w wodzie desty¬ lowanej i doprowadza wartosc pH roztworu do okolo 4—6. Nastepnie do wytworzonego roztworu wprowadza sie fenol lub jego pochodne, w celu wytracenia nierozpuszczalnego kompleksu zawie¬ rajacego enzym i albo rozklada sie kompleks przez podzialanie nan rozcienczonym kwasem octowym w polarnym rozpuszczalniku organicznym i wyosab¬ nia sie uwolniony nierozpuszczalny enzym, albo poddaje sie kompleks w srodowisku wodnym reak¬ cji z zasada przy wartosci pH 7,5—8,5 i wyosab¬ nia uwolniony enzym przez ultrafiltracje, dialize lub filtracje przez zel, a nastepnie oczyszcza sie 5 wytworzony enzym.Jako substancje wyjsciowa do wytwarzania pre¬ paratu enzymatycznego sposobem wedlug wynalaz¬ ku stosuje sie korzystnie jad weza Bothrops atrox, znanego w literaturze równiez jako Coluber atrox 10 Linnaeus (Sys. Nat. Ed. 10, ,1 — 222, 1758) — Bothrops atrox Linnaeus (Dumeril, Bibron et Du- meril, Erpet, gen., 7 — ,1507, 1854), Lachesis lan- ceolatus Boulenger (Cat. Snak. Brit. Mus., 3 — 535, 1898), Lachesis atrox Linnaeus (Boulenger, Cat. 15 Sbak. Brit. Mus., 3 — 537 — 1896) — Bothrops atrox atrox Linnaeus (J. A. Peters, Buli, Mus, com.Zool., Cambridge. Mass., 122 — 509, 1960) i Bothrops moojeni Hoge (A. R. Hoge, Mem. Inst. Butantan, 32 — 126, (1965). Mozna równiez stosowac jad in- 20 nych wezów z gatunku Bothrops, na przyklad weza Bothrops jararaca. W zasadzie odpowiedni jest jad kazdego weza, który jest immunologicznie wspól¬ reaktywny z jadem Bothrops atrox. Definicje i wy¬ jasnienie terminu „immunologicznie wspólreaktyw- 23 ny" mozna znalezc np. w dziele B. A. Kabata, Einfiihrung in die Immunchemie und Immunolo¬ gie, Springer Verlag, 1971, str. 1 i nastepne.Ponizej podano szczególowy opis sposobu wy¬ twarzania preparatu enzymatycznego wedlug wy 30 nalazku.Liofilizowany jad wezowy, na przyklad jad weza Bothrops atrox, rozpuszcza sie w roztworze soli fizjologicznej o wartosci pH 4,5—7, a nierozpu- szczona substancje usuwa sie z roztworu przez od- 33 wirowanie lub odsaczenie. Nastepnie doprowadza sie wartosc pH roztworu do stanu slabo kwasnego, czyli okolo 3—4, przez dodanie kwasu nieorganicz¬ nego, np. kwasu solnego lub kwasu siarkowego, albo kwasu organicznego, takiego jak kwas octo- 40 wy, po czym ogrzewa sie roztwór, mieszajac, co powoduje wytracenie protein bez straty skladnika czynnego.Ilosc wytraconych substancji zalezy od czasu ogrzewania i temperatury, a takze od wartosci pH 45 roztworu. Przy wartosci pH 3 wystarcza 10-minu- towe ogrzewanie w temperaturze 30°C, podczas gdy przy pH 3,5 dogodnie jest ogrzewac roztwór w ciagu 1 godziny w temperaturze 30°C lub w cia¬ gu 30 minut w temperaturze 40°C. Przy wartosci 50 pH 4 przedluza sie czas ogrzewania do okolo 2 godzin i podnosi temperature do okolo 50°C.Wytracone proteiny wyosabnia sie przez odwi¬ rowanie, wartosc pH przesaczu doprowadza sie do okolo 4,5—7, korzystnie okolo 6,5, po czym przesacz 55 poddaje sie frakcyjnemu wytracaniu soli w celu usuniecia substancji balastowych, a nastepnie wy¬ tracenia frakcji czynnej. Wytracanie to prowadzi sie z zastosowaniem soli kwasów z amoniakiem, metalami alkalicznymi lub metalami ziem alkalicz- 60 nych, np. chlorku lub siarczanu sodowego, chlor¬ ku lub siarczanu magnezowego, badz chlorku lub siarczanu amonowego. W przypadku stosowania siarczanu amonowego przy wartosci pH 6,5, sub¬ stancje balastowe wytracaja sie przy 40% nasy- 05 ceniu, a frakcja czynna przy 55°/o nasycenia w tern-B28A7 $ peraturze 20°C. Stosowanie innych soli, wartosci pH i temperatur wymaga innych stopni nasycenia.Frakcje czynna wyosabnia sie z roztworu ma¬ cierzystego przez odwirowanie, po czym rozpusz¬ cza sie ja w wodzie destylowanej i doprowadza 5 wartosc pH roztworu do 4—6, korzystnie okolo 5.Przez dodanie okolo 7% wagowych fenolu lub od¬ powiedniej ilosci pochodnej tego zwiazku, wywo¬ luje sie wytracenie skladnika czynnego w postaci kompleksu. io- Odpowiednimi pochodnymi fenolu sa kwasy fe- nolokarboksylowe, na przyklad kwas salicylowy, alkilofenole, na przyklad o-, m- lub p^krezol, fe¬ nole chlorowcowane, na przyklad o-, m- lub p-chlo- rofenol, chlorowcowane lub alkilowane kwasy fe- 15 nololkarboksylowe, nip. (kwasy krezolowe i chloro- fenolowe, badz sole kwasów fenolokarboksylowych lub ich pochodne, np. salicylan sodowy i sodowe sole kwasów krezolokarboksylowych. Poza tym stosuje sie równiez zywice fenolowo-formaldehy- 20 dowe zawierajace wolne grupy fenolowe, takie jak Amberlite XE 97. Ilosc wytraconej substancji za¬ lezy od stopnia rozpuszczalnosci stosowanej po¬ chodnej fenolu lub, w przypadku kwasów, od stopnia rozpuszczalnosci stosowanej wolnego kwa- 25 su. Otrzymany nierozpuszczalny kompleks skladni¬ ka czynnego wyosabnia sie przez odwirowanie i rozklada jednym z nizej podanych sposobów.Wyosobniony kompleks plucze sie kilkakrotnie roztworem 0,1—0,5°/o kwasu octowego w rozpusz- 30 czalniku polarnym w celu rozlozenia kompleksu i rozpuszczenia fenolu lub jego pochodnej, przy czym skladnik czynny pozostaje w postaci nie¬ rozpuszczalnego osadu. Odpowiednimi rozpuszczal¬ nikami polarnymi sa np. alkanole o 1—4 atomach 35 wegla w lancuchu, ketony alkilowe o wzorze R1 —CO —R2, w którym R1 i R2 oznaczaja rodniki alkilowe o 1—4 atomach wegla, lub estry alkilowe o wzorze R1 — O — R2, w którym R1 i R2 oznaczaja rodniki alkilowe o 2—3 atomach wegla. 40 Inny sposób rozkladu jest nastepujacy: kompleks skladajacy sie ze skladnika czynnego i fenolu lub jego pochodnej, rozpuszcza sie w wodzie i dopro¬ wadza wartosc pH roztworu do okolo 7,5—8,5, ko¬ rzystnie 8, przez dodanie wodorotlenku metalu al- 45 kalicznego, octanu metalu alkalicznego, cytrynia¬ nu metalu alkalicznego, weglanu lub wodorowegla¬ nu metalu alkalicznego, fosforanu metalu dwu- lub trójalkalicznego badz aininej zasady buforowej, albo wodorotlenku amonowego lub amoniaku. Na- 50 stepnie przesacza sie roztwór pod cisnieniem azotu przez ultrafiltr o takiej wielkosci oczek, aby za¬ trzymal enzymowy skladnik czynny, a przepuscil roztwór fenolu lub jego pochodnej. Odpowiednimi filtraimi sa filtry „Diafilo" typu UM-05, UM-2, 55 UM^IO, lub PM-10 (sa to ultrafiltry np. z polime¬ rów syntetycznych, sprzedawane przez AMICON, Oosterhout (N. B.), Holandia). Zatrzymany na fil¬ trze skladnik czynny plucze sie kilkoma porcjami wody destylowanej lub roztworu odpowiedniego 60 srodka konserwujacego w celu usuniecia pozosta¬ lego fenolu lub jego pochodnej i równoczesnie steza.Aktywny preparat enzymatyczny, z którego usu¬ nieto fenol lub jego pochodna, wykazuje aktyw- 65 nósc okolo 10^-»15 jednostek NIH-trombiny na 1 mg substancji suchej (stopien czystosci I), daje on jednak trzy linie straceniowe na immunofero- gramie oraz cztery strefy proteinowe na ferogra- mie akryloamidowym i ma barwe zólta. Ponadto, preparat enzymatyczny o stopniu czystosci I wy¬ kazuje równiez aktywnosc tromboplastyczna.W celu dalszego oczyszczenia, preparat enzyma¬ tyczny o stopniu czystosci I rozpuszcza sie w bu¬ forze tris-(hydroksymetylo)-aminometanofosforano- wym o wartosci pH 6,0 (0,02 mola), otrzymujac 5% roztwór, który poddaje sie chromatografii na ko¬ lumnie DEAE — „Sephadex A-50?' (DEAE = dwu- etyloawiiLnoetyl, „Sephadex" jest anakaem handlo¬ wym produktów polidekstranowych, dostarczanych przez przedsiebiorstwo Pharmacia w Uppsali w Szwecji), uprzednio przeksztalconej w postac PO4 i zrównowazonej buforem TRIS-fosforanowym 0 wartosci pH 6,0 (0,02 mola).Chromatografie prowadzi sie przez wylewanie roztworu kompozycji enzymów na kolumne, usu¬ wanie substancji balastowych przez plukanie ko¬ lumny 4-krotnie wieksza od jej objetosci iloscia buforu TRISnfosforanowego o pH 6,0 (0,02 mola) [TRIS = tris-(hydroksymetylo)-aminometan] i roz¬ puszczenie kompozycji enzymów przez eluowanie jej dwukrotnie wieksza od objetosci kolumny ilo¬ scia buforu TRIS-fosforanowego o pH 6,0 (0,04 mola). Sole usuwa sie z aktywnego eluatu przez ultrafiltrowainie. Liofilizacja przesaczu daje pre¬ parat enzymatyczny o stopniu czystosci II o ak¬ tywnosci odpowiadajacej lOO—200 jednostkom NIH-trombiny na 1 mg zawartosci protein. Immu- nogerogram wykazuje pojedyncza linie stracenio- wa, a ferograim aJkryloainiiinowy — dwie strefy.Preparat enzymatyczny mozna wytworzyc w~po- staci krystalicznej przez pozostawienie wolnego od soli koncentratu, otrzymanego w wyniku ultrafil¬ tracj i, na okres 48 godzin w temperaturze 2°C, wyosobnienie krysztalów przez odwirowanie z rów¬ noczesnym chlodzeniem i wyplukanie tych kryszta¬ lów lodowata woda destylowana. W ten sposób, z niewielka wydajnoscia, otrzymuje sie prostokat¬ ne plytki tworzace bezpostaciowe czastki, przy czym nastepuje to szybko w przypadku suszenia pod zredukowanym cisnieniem, a stopniowo przy su¬ szeniu na powietrzu. Po wysuszeniu krysztalów otrzymuje sie preparat enzymatyczny o aktywno¬ sci wyzszej niz 200, jednostek NIH-trombiny na 1 mg zawartosci protein (stopien czystosci III).Preparat enzymatyczny o stopniu czystosci II okazuje sie substancja jednorodna na podstawie analizy elektroferogramu bibulowego, elektrofero- gramu membranowego, chromatogramu na zelu, chromatogramu jonitowegi i immunodyfuzogramu wedlug metody Ouchter-Lonny^go. Droga elektro¬ forezy w zelu poliakryloamidowym, z aktywnej frakcji enzymowej wyosabnia sie jednak farmako¬ logicznie nieaktywna frakcje poli-peptydowa.Skladnik nieaktywny wyosabnia sie z frakcji enzy¬ mowej przez poddanie preparatu enzymatycznego o stopniu czystosci II chromatografii na zelu z za¬ stosowaniem mieszaniny alifatycznego kwasu kar- bóksylowego z woda lub mieszaniny wodnego roz¬ tworu buforowego z mieszajacym sie z woda roz-82807 puszczalnikiem organicznym, przy czym stosuje sie zel hydrofobowy lub hydrofilowy.Przykladami zelów hydrofilowych sa zele poli- dekstranowe, takie jak „Sephadex" (Pharmacia, Uppsala — Szwecja), zele poliakryloamidowe, ta¬ kie jak „Bio-Gel" (wytworzony przez Bio-Rad La¬ boratories w Richmond w Kalifornii) oraz zele agarozowe i agarowe, takie jak „Sepharose" (Phar¬ macia, Szwecja). Chromatografie prowadzi sie do¬ godnie przy niezmiennym stezeniu jonów wodo¬ rowych na przyklad w zakresie wartosci pH 2—9, korzystnie w zakresie 2—6. Odpowiednimi kwasami karboksylowymi sa na przyklad mieszajace sie z woda alifatyczne kwasy monokarboksylowe o lancuchu prostym lub rozgalezionym i zawierajace 1—4 atomów wegla. Jako bufory stosuje sie typowe zwiazki rozpuszczalne w mieszaninach wody z roz¬ puszczalnikami, takie jak mrówczany, octany, fo¬ sforany, cytryniany i weglany zasad nieorganicz¬ nych, takich jak zasady metaloalkaliczne lub amo¬ nowe, badz zasad organicznych, takich jak piry¬ dyna lub tris-(hydroksymetylo)-aminometan. Ko¬ rzystnie stosuje sie bufory nie adsorbujace promie¬ ni nadfioletowych i wystepujace w stanie lotnym pod cisnieniem nizszym od atmosferycznego, takie jak mrówczan amonowy lub octan amonowy; po przeprowadzeniu chromatografii dokonuje sie wte¬ dy analizy densytometrycznej eluatów w nadfio¬ lecie i steza sie te eluaty metoda liofilizacji.Alifatyczne kwasy karboksylowe stosuje sie w stezeniach 5—95% objetosciowo w wodzie. W przy¬ padku stosowania zelów hydrofilowych stosuje sie stezenie kwasu karboksylowego w wysokosci 5— —50% objetosciowo. Stosujac bufory wodne ciodaje sie mieszajacy sie z woda rozpuszczalnik organi¬ czny w stezeniu 5—95% objetosciowo. W przypad¬ ku stosowania zelów hydrofilowych stosuje sie ste¬ zenie rozpuszczalnika w wysokosci 10—50% obje¬ tosciowo. Przykladami odpowiednich mieszajacych sie z woda rozpuszczalników sa alkanole o lancu¬ chach prostych lub rozgalezionych, zawierajace 1—5 atomów wegla, ketony, takie jak aceton, dwu- etyloketon lub keton metylowo-etylowy, alkiloami- ny, takie jak jedno-, dwu- lub trójmetylo- etylo- lub propyloamina, lub uretany, np. etylouretany.Ze wzgledu na to, ze eluaty steza sie korzystnie metoda liofilizacji, zaleca sie stosowac rozpuszczal¬ niki wystepujace w stanie lotnym pod cisnieniem nizszym od atmosferycznego i nie obnizajace tem¬ peratury zamarzania roztworu. Przykladami odpo¬ wiednich rozpuszczalników sa III-rzed. butanol i cykloheksanol.Wytworzone droga chromatografii na zelu pre¬ paraty enzymatyczne wykazuja aktywnosc biologi¬ czna 200—400 jednostek NIH-trombiny na 1 mg zawartosci protein (stopien czystosci III). Wiek¬ sza czesc frakcji nieaktywnej usuwa sie z prepa¬ ratu enzymatycznego metoda chromatografii na zelu.Stosowany w tym opisie termin „stopien czysto¬ sci II" oznacza 100—200 jednostek NIH-trombiny na 1 mg zawartosci protein, a termin „stopien czy¬ stosci III" — 200—400 jednostek NIH-trombiny na 1 mg zawartosci protein.Wyniki aminokwasowej analizy preparatu enzy¬ matycznego mieszcza sie w podanych nizej zakre¬ sach, w zaleznosci od stopnia czystosci. Analize te prowadzi sie w ciagu 22—72 godzin przez pod¬ danie preparatu hydrolizie z zastosowaniem stalo- wrzacego kwasu solnego w temperaturze 110°C, w atmosferze azotu. Wyniki podano w tablicy 1. 10 15 20 30 35 40 45 50 55 60 65 Tablica 1 Aminokwasy Kwas asparaginowy Treonina Seryna Kwas glutaminowy Prolina Glicyna Alanina Cystyna 1/2 Walina Metionina Izoleucyna Leucyna Tyrozyna . Fenyloalanina Histydyna Lizyna Arginina Liczba mikromoli w 1 mg skladnika peptydowego 1^1,3 0,35—0,55 0,4 —0,5 0,85—0,75 0,55—0,9 0,65—0,9 0,4 —0,65 0,35—0,e 0,45—0,6 0,1 —0,2 0,45—0,75 0,3 —0,5 0,3 ^0,5 0,3 —0,45 0,2 —0,25 0,45—0,65 0,3 —0,45 W tablicy 2 podano przykladowo wyniki analizy aminokwasowej dla: A — preparatu enzymatycznego o stopniu czysto¬ sci II, B — preparatu enzymatycznego o stopniu czysto¬ sci III (czyli preparat o znacznie zredukowa¬ nej zawartosci substancji nieaktywnej).Skladnik weglowodanowy preparatu enzymatycz¬ nego wydaje sie byc co najmniej czesciowo zwia¬ zany z polipeptydem, w postaci glikopeptydu. Okre¬ slenie zawartosci weglowodanów (cukru obojetne¬ go) prowadzi sie metoda orcynolowa [por. L. F.Hewitt, Biochem. J. 31 str. 360 (1937)].Preparat enzymatyczny o stopniu czystosci III (czyli preparat o zredukowanej zawartosci substan¬ cji nieaktywnej) zawiera skladnik peptydowy o prawdopodobnym ciezarze czasteczkowym 38000— —55000, natomiast skladnik peptydowy preparatu enzymatycznego o stopniu czystosci II ma ciezar czasteczkowy 28000^55000.Preparat enzymatyczny o stopniu czystosci II za¬ wiera skladnik aktywujacy czynnik XIII.Preparat enzymatyczny o stopniu czystosci III wykazuje nastepujacy uklad aminokwasów (wy¬ znaczony metoda rozkladowa Edmana, opisana przez S. B. Needlemana w Protein Seauence De- termination, Springer-Verlag, Berlin—Heidelberg, New York, 1970, str. 2ill i nast.) od azotowego kon¬ ca lancucha: walina -^ izoleucyna -+ glicyna -? glicyna r- kwas, asparaginowy -- kwas glutaminowy,9 8280T 10 T a bli b a 2 Aminokwasy Kwas aspara¬ ginowy Treonina Her^na Kwas glutami¬ nowy Prólina Glicyna" Alanina Cystyna 1/2 Walina Metionina Izoieueyfia Leucyria Tyrozyna Fenyloalanina Mistydyna Lizyna Argiilina Liczba mikromoli w 1 mg 1 skladnika peptydowego A 1,05-4,1 6,35^6,41 6,43—*,45 6,67—6,7 6,58—billi 6,67—0,76 6,41—0,5 6,47—6,^ 6,47—6,55 6,17—6,2 6,45—6,55 6,46—6,47 0,33—0,5 0,33—0,43 0,2 —0,22 0,6 —0,64 0,3 —0,4 B 1,17—1,25 0,42—6,54 0,41—0,5 0,6S—6,71 6,76—6,$ 0,63—6,64 0,35—0,41 6,55—0,6 6,65—0,72 0,6 —6,64 0,3 —0,36 0,33—0,38 0,21—0,23 0,48—0,53 0,32--0,36 Preparat enzymatyczny wytworzony sposobem wedlug wynalazku nie zawiera neurotoksyn dzia¬ lajacych szkodliwie na system nerwowy, proteaz tworzacych bradykinine, która obniza cisnienie krwi, lecytynaz dzialajacych hemolitycznie i uszka¬ dzajacych nerM, oksydaz arndinotowasowych i fosfa¬ taz* Preparat ten ma zastosowania jako reagent i sro¬ dek pomocniczy w fizjologicznych badaniach koa¬ gulacji in vitro, np. w badaniach konwersji fibry- nogenu w fibryne w obecnosci heparyny i anty- trombin oraz w badaniach fibrynopeptydów, pa¬ tologicznych struktur fibrynogenowych, produktów rozpadu fibryno&enu, czynnika VIII i czynnika XIII.Wytworzony sposobem wedlug, wynalazku prepa¬ rat enzymatyczny stosowany in vivo w umiarko¬ wanych dawkach, hamuje krwawienie i skraca czas koagulacji u zwierzat doswiadczalnych oraz u pa¬ cjentów o normalnej lub patologicznej hemostazie.Preparat ten, stosowany dozylnie w umiarkowa¬ nych dawkach u ludzi, powoduje wytwarzanie sie w obiegu krwionosnym rozpuszczalnych komplek¬ sów fibrynowo-fibrynogenowych, co stwierdzono na podstawie dodatniej próby plazmy na kriofi- bryne i próby parakoagulacyjnej oraz analiz azo¬ towego konca frakcji plazmy ludzkiej. Preparat enzymatyczny wytworzony sposobem wedlug wy¬ nalazku jest zatem pozytecznym srodkiem hemo- statycznym.W przypadku podawania tego preparatu psom w wiekszych dawkach, zachodzi szybka defibry- nogenacja i wtórna fibrynoliza, a we krwi daje sie.zauwazyc obecnosc produktów rozpadu fibryno- genu. Defibrynogenacja i fibrynoiiza zachodza bez zadnych objawów wstrzasowych, trombocytopenii i komplikacji tromboembolicznych lub krwotoko- wych; Doswiadczenia kliniczne na pacjentach z tromboza zyl nóg lub siatkówki wykazaly, ze preparat enzymatyczny ma szczególne zastosowa¬ nie w terapii defibrynogenujacej i fibrynolitycz- nej.; O ile wiadomo, nowy preparat enzymatyczny nie moze byc zastapiony jako reagent przez zaden in¬ ny porównywalny srodek. Chociaz wytwarzana z enzymu gronkowcowego koagulaza trombinowa jest równiez enzymem trombino-podobnym, które¬ go aktywnosc nie Ulega zahamowaniu pod wply¬ wem antytrombin, ódszCzepia ona z czasteczki fi¬ brynogenu zarówno peptyd A jak i peptyd B, pod¬ czas gdy preparat enzymatyczny wytworzony spo¬ sobem wedlug wynalazku uwalnia tylko peptyd A.Wsród srodków hemostatycznych o dzialaniu trombino^podobhym, preparat enzymatyczny wy¬ tworzony sposobem •¦ wedlug wynalazku wyróznia sie swoja wstrzykiwalnoscia. Trombina, koagulaza trombinowa i srodki trombinotwórcze, takie jak tromboplastyny i jad zmii Eussela, wywoluja przy stosowaniu pozajelitowym objawy tromboembolicz- ne oraz trombocytopenie; srodki te mozna wiec stosowac tylko miejscowo.W przypadku stosowania wiekszych dawek pre¬ paratu enzymatycznego wytworzonego sposobem wedlug wynalazku do defibrynogenowania w sta¬ nach tromboembolicznych, preparat ten dziala ja¬ ko koagulator i równoczesnie wywoluje fibryno- lize. Wskutek utraty i rozpadu wiekszej czesci fi¬ brynogenu, krew traci zdolnosc do koagulowania w wyniku defibrynogenacji. Ponadto, produkty roz¬ padu fibrynogenu wytworzone podczas wzbudzonej fibrynolizy dzialaja hamujaco na koagulacje. Po kilku dniach (np. 2—3 dniach), ilosc produktów rozpadu fibrynogenu spada na tyle, ze nie zwiek¬ szaja one tendencji do krwawienia. Podczas defi¬ brynogenacji nie wystepuje trombocytopenia, a pacjenci nie wykazuja zwiekszonej tendencji do krwawienia przy zawartosci 0,01—0,05 g fibryno¬ genu w 100 ml plazmy. Pacjentów tych mozna równiez poddawac zabiegom chirurgicznym bez ry¬ zyka niebezpiecznego krwawienia.Stosunkowo niewielkie zahamowanie hemostazy wywolane dzialaniem kompozycji enzymów we¬ dlug wynalazku stanowi wielka zalete w porów¬ naniu z antykoagulatorami grupy heparynowej oraz antykoagulatorami szeregu dwukumarynowe- go, które hamuja synteze róznych czynników koa- gulacyjnych w watrobie i dzialaja bardzo szkodli¬ wie na procesy hemostatyczne. Dzieki swemu sil¬ nemu dzialaniu antykoagulacyjnemu, nowy prepa¬ rat enzymatyczny ma szczególne zastosowanie do zapobiegania tworzeniu sie skrzeplin podczas za¬ biegów chirurgicznych. Dotychczas nie zaobserwo¬ wano odpornosci na ten prepart przy stosowania dozylnym. W przypadku stosowania tego prepa¬ ratu, leczenie i kontrola przebiegu terapii sa bardzo latwe.W porównaniu z antykoagulatorem wytwarza¬ nym sposobem podanym w brytyjskim opisie pa¬ tentowym nr 1004 301, preparat enzymatyczny wytwarzany sposobem wedlug wynalazku wykazu¬ je te zasadnicza zalete, ze jego aktywnosc fizjo¬ logiczna jest znacznie dluzsza. Porównywalna daw- 10 15 20 26 30 35 40 45 50 55 Kwas aspara¬ ginowy Treoftina Her^na Kwas glutami¬ nowy Prólina GlicyhS Alanina Cystyna 1/2 Walina Metionina Izoieueyfia Leucyria Tyrozyna Fenyloalanina Mistydyna Lizyna Arginina 1,65-4,1 6,35^6,41 6,43—*,45 6,67—6,7 6,58—6,73 6,67—0,76 6,41—0,5 6,47—6,^ 6,47—6,55 6,17—6,2 6,45—6,55 6,46—6,47 0,33—0,5 0,33—0,43 0,2 —0,22 0,6 —0,64 0,3 —0,4 1,17—1,25 0,42—6,54 0,41—0,5 0,6S—6,71 6,7&-Ó,8'? 6,76—0,$ 0,63—6,64 0,35—0,42 6,55—0,6 Ó,lS—6,17 6,65—0,72 0,6 —6,64 0,3 —0,36 0,33—0,38 0,2,1—0,23 0,48—0,53 0,32--0,3611 ka nowego preparatu wykazuje dluzsze dzialanie defibrynogenacyjne. Podczas gdy heparyne trzeba wstrzykiwac co 4—6 godzin, jedna dawka prepa¬ ratu enzymatycznego wytwarzanego sposobem we¬ dlug wynalazku zachowuje aktywnosc w ciagu co najmniej 24 godzin. Ponadto, przy stosowaniu do¬ zylnym, preparat ten nie wytwarza odpornosci organizmu. O ile antykoagulator z brytyjskiego opisu patentowego nr 1 094 301 nalezy stosowac w dawkach 4—6 razy po 60 jednostek na 60 kg wagi ciala pacjenta, w ciagu 24 godzin (.1 jednostka to taka ilosc enzymu, która zastosowana wobec fi- brynogenu ludzkiego daje taki sam okres koagulacji co 1 jednostka NIH-trombiny; NIH = National In- stitute of Health), to jedna dawka najwyzej 14 jednostek preparatu enzymatycznego wytworzo¬ nego sposobem wedlug wynalazku na 60 kg wagi ciala pacjenta wystarcza do utrzymania stanu de- fibrynogenacji u doroslego czlowieka w ciagu 24 godzin.Aktywnosc preparatu enzymatycznego wytwo¬ rzonego sposobem wedlug wynalazku wyznacza sie na podstawie jej trombino-podobnego dzialania na ludzki fibrynogen. Jedna jednostka tego preparatu odpowiada ilosci, która powoduje koagulacje roz¬ tworu fibrynogenu w tym samym czasie co jedna jednostka NIH standartowej trombiny.W stanie oczyszczonym preparat enzymatyczny wytworzony sposobem wedlug wynalazku jest la¬ two rozpuszczalny w rozcienczonych roztworach soli, lecz slabo rozpuszczalny w wodzie destylowa¬ nej. Daje sie on wytracac z roztworów wodnych solami lub mieszajacymi sie z woda rozpuszczal¬ nikami organicznymi oraz moze byc odwracalnie wiazana na jonitach zasadowych i tworzy nieroz¬ puszczalne w wodzie kompleksy z fenolem i jego pochodnymi. Ponadto, preparat ten cechuje wy¬ soki stopien odpornosci na cieplo i znaczna od¬ pornosc na dzialanie kwasów.Jako srodek hemostatyczny stosuje sie preparat enzymatyczny wytwarzany sposobem wedlug wy¬ nalazku w dziennych dawkach okolo 0,25—1,5 jed¬ nostek NIH na 60 kg wagi ciala pacjenta. Nato¬ miast jako antykoagulator krwi stosuje sie ten pre¬ parat w dziennych dawkach okolo 2—100, korzyst¬ nie okolo 7—14 jednostek NIH na 60 kg ciala pac¬ jenta.Zakres wynalazku obejmuje równiez srodek far¬ maceutyczny zawierajacy jako skladnik czynny preparat enzymatyczny wytworzony sposobem we¬ dlug wynalazku. Jezeli srodek taki ma byc sto¬ sowany jako antykoagulator krwi, wówczas wi¬ nien zawierac 10—500, 'korzystnie okolo 100 mifaro- gramów skladnika czynnego na dawke jednostko¬ wa. Najdogodniej rozpuszcza sie preparat enzyma¬ tyczny w srodowisku wodnym, odpowiednim do sto¬ sowania pozajelitowego. W praktyce najodpowied¬ niejszymi sa ampulki zawierajace 2 ml wodnego roztworu preparatu enzymatycznego, zawierajace¬ go korzystnie okolo 0,9% NaCl, okolo 0,3—0,5% fenolu i okolo 0,01—0,2% czesciowo zhydrolizowa- nej zelatyny (jako stabilizatora) oraz wykazujace¬ go wartosc pH okolo 5,0—8,0, korzystnie 6,5.Zakres wynalazku obejmuje takze reagent maja¬ cy zastosowanie w badaniach in vitro krwi ssa- 82807 12 ków, a szczególnie ludzi, na przyklad w badaniach procesu tworzenia sie fibryny lub anomalii w tym procesie, do szybkiego okreslania poziomu fibry¬ nogenu w obecnosci heparyny, do szybkiego wy- 5 krywania obecnosci fibryny i produktów jej roz¬ padu w plazmie oraz jako srodek zastepujacy trom- bine w próbach na koagulacje krwi.Dla celów praktycznych, reagent taki wytwarza sie z mieszaniny 10—50 mikrogramów liofilizowa¬ lo nego preparatu enzymatycznego, 1 mg czesciowo zhydrolizowanej zelatyny (jako stabilizatora), 2 mg p-ióksybenzoesainu metylu, 8,5 mg NaCl i glicyny w ilosci dopelniajacej do 34 mg. Mieszanine te rozpuszcza sie w 1 ml wody destylowanej, a otrzy- 15 many roztwór moze byc natychmiast uzyty jako opisany wyzej reagent.Przyklad I. W 1000 ml 0,9% roztworu NaCl rozpuszcza sie 20 g jadu Bothirops atrox, po czym odwirowuje sie roztwór w ciagu 10 minut z pred- 20 koscia 3O00 obrotów na minute. Po usunieciu wy¬ traconej substancji, doprowadza sie wartosc pH roztworu do 3,5 rozcienczonym kwasem octowym, ogrzewa sie ten roztwór w ciagu 1 godziny w tem¬ peraturze 30°C w kapieli wodnej i ponownie od- 25 wirowuje. Wytracona substancje usuwa sie, a na¬ stepnie doprowadza sie wartosc pH roztworu do 6,5 przez dodanie wodorotlenku sodowego i dopelnia sie roztwór do objetosci 1000 ml 0,9% roztworem NaCl, po czym dodaje sie, mieszajac 670 ml nasy- 30 conego roztworu siarczanu amonowego, pozostawia mieszanine do odstania w temperaturze pokojowej na okres 1 godziny i usuwa sie wytracony osad przez odwirowanie. Nastepnie dodaje sie dalsze 552 ml nasyconego roztworu siarczanu amonowe- 35 go, a po uplywie 1 godziny odwirowuje sie mie¬ szanine.Odwirowana ciecz usuwa sie, a wytracona sub¬ stancje rozpuszcza w 100 ml wody destylowanej, po czym doprowadza wartosc pH roztworu do 5,0 40 przez dodanie rozcienczonego kwasu octowego, a nastepnie, mieszajac roztwór, dodaje sie don 7,7 ml 90% fenolu i pozostawia mieszanine do odsta¬ nia w temperaturze pokojowej na okres 15 godzin.Po odwirowaniu usuwa sie ciecz, a wytracony 45 enzym plucze dwukrotnie 10 ml wody nasyconej fenolem, odwirowuje i rozpuszcza w 50 ml eta¬ nolu zawierajacego 1% kwas octowy. Mieszanine te miesza sie w ciagu 1 godziny, a nastepnie fil¬ truje przez szklany filtr prózniowy. Zatrzymana na 50 filtrze substancje plucze sie kilkoma porcjami po 20 ml etanolu i suszy pod cisnieniem nizszym od atmosferycznego, otrzymujac 2—2,5 g kompozycji enzymów o stopniu czystosci I i aktywnosci trom- bino^podobnej okolo 10—12 jednostek NIH na 1 mg 55 substancji suchej. Produkt ten jest trwaly przy przechowywaniu.Surowy enzym rozpuszcza sie w 40 ml buforu tris-fosforanowego o wartosci pH 6,0 (0,02 mola) i miesza w ciagu 15 minut, po czym usuwa sie sub- 60 stancje nie rozpuszczona przez odwirowanie, czy¬ sta ciecz wylewa z predkoscia 0,8—1,0 ml/minute na kolumne 200 ml DEAE-Sephadexu wyrownowa¬ zona buforem tris-fosforanowym, a nastepnie elu¬ uje 800 ml tego samego roztworu buforowego. 65 Pierwsza frakcje eluatu usuwa sie, po czym eluujen sie enzym 400 ml buforu tris-fosforanowego (0,04 mola), a po wyosobnieniu aktywnego eluatu steza sie go pod cisnieniem na ultrafiltrze UM-10 (AMI- CON) i plucze az do calkowitego uwolnienia go od soli. Wolny od soli koncentrat suszy sie pod ci¬ snieniem nizszym od atmosferycznego nad P2O5 lub liofilizuje, otrzymujac 200—250 mg kompozycji enzymów o stopniu czystosci II i aktywnosci okolo 100^-il5O jednosteik NIH trombiny na 1 mg zawar¬ tosci protein.Nastepnie steza sie koncentrat na ultrafiltrze do objetosci 5 ml, a roztwór filtruje przez szklany filtr prózniowy o porowatosci G-4 w celu usunie¬ cia pylów, po czym pozostawia sie czysty roztwór do odstania w chlodziarce w temperaturze 2°C na okres co najmniej 24 godzin. Wytracone prostokat¬ ne krysztaly kompozycji enzymów wyosabnia sie przez odwirowanie w temperaturze 0—2°C, plucze kilkakrotnie 0,5 ml porcjami wódy destylowanej stosujac równoczesne chlodzenie lodem i wreszcie suszy nad P2O5, otrzymujac 45 mg bezbarwnego produktu o aktywnosci okolo 150—200 jednostek NIH trombiny na 1 mg zawartosci protein.Przyklad II. W 1000 ml 0,9% roztworu NaCl rozpuszcza sie 20 g jadu Bothrops atrox i dopro¬ wadza wartosc pH roztworu do 6,5. Po dodaniu 670 ml nasyconego roztworu siarczanu amonowego pozostawia sie mieszanine do odstania w tempera¬ turze 20°C na okres 1 godziny, a nastepnie odwi¬ rowuje sie ja. Po dodaniu dalszych 552 ml nasy¬ conego roztworu siarczanu amonowego i uplywie 1 godziny odwirowuje sie substancje stala, która nastepnie rozpuszcza sie w 100 ml wody destylo¬ wanej. Wartosc pH roztworu doprowadza sie do 3,5 przez dodanie rozcienczonego kwasu octowego, po czym ogrzewa roztwór w ciagu 1 godziny do temperatury 30°C. Po odwirowaniu ustala" sie war¬ tosc pH cieczy na 5,0 i po dodaniu 3 ml m-krezolu pozostawia sie ja w temperaturze pokojowej na okres 15 godzin.Wytracona substancje wyosabnia sie przez odwi¬ rowanie, plucze dwukrotnie 10 ml porcjami wody nasyconej krezolem, rozpuszcza w 50 ml wody de¬ stylowanej dodajac 1 n NaOH przy pH 8,0. Po usu¬ nieciu nie rozpuszczonej substancji przez odwiro¬ wanie, filtruje sie roztwór przez ultrafiltr AMI- CON UM-10, a nastepnie plucze pozostalosc na fil¬ trze woda destylowana dotad az krezol przestanie byc wykrywalny w popluczynach metoda reakcji z chlorkiem zelazowym, po czym rozpuszcza sie przesacz filtracyjny zawierajacy enzym w 20 ml buforu tris-fosforanowego o wartosci pH 6,0 (0,02 mola).Po usunieciu substancji nie rozpuszczonej przez odwirowanie, wylewa sie roztwór z predkoscia 0,8—1 ml/minute na kolumne 200 ml DEAE-Sep- hadex A-50 wyrównowazona tym samym roztwo¬ rem buforowym, a nastepnie plucze 800 ml buforu tris-fosforanowego o wartosci pH 6,0 (0,02 mola), po czym eiuuje sie trombino-podobny enzym 400 ml buforu tris-fosforanowego o pH 6,0 (0,04 mola), a aktywny eluat steza pod cisnieniem na ultrafil¬ trze i plucze do chwili calkowitego uwolnienia go od soli.Z otrzymanego koncentratu wytwarza sie bezpo- 82807 14 srednio sterylny roztwór do zastrzyków, badz su¬ szy sie go pod obnizonym cisnieniem. Po wysu¬ szeniu otrzymuje sie okolo 200' mg kompozycji enzymów o aktywnosci okolo 120«—-160 jednostek 5 NIH trombiny na 1 mg zawartosci protein.Przyklad III. Kolumne o dlugosci 92 cm i przekroju 1,8 cm2 wypelnia sie Sephadexem G-1O0 wyrównowazonym 10% wodnym roztworem kwasu octowego. 6,26 mg kompozycji enzymów wy- 10 tworzonej w przykladzie I (stopien czystosci II) rozpuszcza sie w 0,3 ml 10% wodnego roztworu kwasu octowego i wylewa ten roztwór na przy¬ gotowana kolumne. Od dolu kolumny przepuszcza sie przez nia ,10% wodny roztwór kwasu octowe- w go z predkoscia 5,6 ml/godzine. Analiza w nadfio¬ lecie wyfeazuje utworziende sde dwóch stref absorp¬ cyjnych w pasmie 280 milimikronów. Po zliofili- zowaniu eluatu z pierwszej strefy, otrzymuje sie 4,25 mg kompozycji enzymów o aktywnosci 200—250 20 jednostek NIH trombiny na 1 mg zawartosci pro¬ tein. 25 PL PL

Claims (7)

1. Zastrzezenia patentowe 1. Sposób wytwarzania preparatu enzymatyczne¬ go z jadu Bothrops atrox lub innego weza, którego jad jest immunologicznie wspólreaktywny z jadem Bothrops atrox, wykazujacego w nizszych dawkach 30 aktywnosc hemostatyczna, a w wiekszych daw¬ kach aktywnosc antykoagulacyjna wobec krwi lu¬ dzi i innych ssaków, znamienny tym, ze wytwarza sie izotoniczny roztwór wodny jadu Bothrops atrox lub innego weza, którego jad jest immunologicznie 35 wspólreaktywny z jadem Bothrops atrox o warto¬ sci pH okolo 4,5—7, a nastepnie albo poddaje sie ten roztwór-frakcyjnemu wytracaniu soli w celu usuniecia substancji balastowych, a nastepnie wy¬ tracenia frakcji zawierajacej enzym, po czym roz- 40 puszcza sie te frakcje w wodzie destylowanej usta¬ lajac wartosc pH roztworu na 3—4, ogrzewa roz¬ twór w temperaturze 30^50°C w ciagu od kilku minut do okolo 2 godzin i doprowadza wartosc pH roztworu do okolo 4—6, albo ustala sie wartosc 45 pH roztworu izotonicznego na 3—4 i ogrzewa sie go w temperaturze 30—50°C w ciagu od kilku mi¬ nut do okolo 2 godzin, po czym wyosabnia sie wytracone proteiny, doprowadza wartosc pH roz¬ tworu do 4,5—7, poddaje go frakcyjnemu wytra- 50 caniu soli w celu usuniecia substancji balasto¬ wych, a nastepnie wytracenia frakcji zawierajacej aktywny enzym, rozpuszcza sie te frakcje w wo¬ dzie destylowanej i doprowadza wartosc pH roz¬ tworu do okolo 4—6, nastepnie do wytworzonego 55 roztworu wprowadza sie fenol lub jego pochodne, w celu wytracenia nierozpuszczalnego kompleksu zawierajacego enzym i albo rozklada sie kompleks przez podzialanie nan rozcienczonym kwasem octo¬ wym w polarnym rozpuszczalniku organicznym 60 i wyosabnia sie uwolniony nierozpuszczony enzym, albo poddaje sie kompleks w srodowisku wodnym reakcji z zasada przy wartosci pH 7,5—8,5 i wy¬ osabnia uwolniony enzym przez ultrafiltracje, dia¬ lize lub filtracje przez zel, a nastepnie oczyszcza 65 sie wytworzony enzym.15 82807 16
2. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze kompozycje enzymów oczyszcza sie metoda chro¬ matografii na zasadowym jonicie.
3. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze frakcyjne wytracanie soli prowadzi sie z zastoso¬ waniem soli kwasów nieorganicznych z amonia¬ kiem, metalami alkalicznymi lub metalami ziem alkalicznych.
4. Sposób wedlug zastrz. 1 i 3, znamienny tym, ze do frakcyjnego wytracania soli stosuje sie siar¬ czan amonowy o wartosci pH 4,5—7, korzystnie okolo 6,5.
5. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze do wytwarzania nierozpuszczalnego kompleksu ja¬ ko pochodne fenolu stosuje sie kwasy fenolokarbo- ksylowe, alkilofenole, chlorowcowane fenole, chlo¬ rowcowane lub alikilowane kwasy fenolókarboksy- lowe lub sole kwasów fenolokarboksylowych badz ich pochodne.
6. Sposób wedlug zastrz. 1 i 5, znamienny tym, ze do wytwarzania nierozpuszczalnego kompleksu stosuje sie fenol, krezol lub salicylan sodowy.
7. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze kompozycje enzymów oczyszcza sie metoda chroma¬ tografii na zelu, takim jak polidekstran, polialkry- lamid, agaroza lub agar, stosujac mieszaniny alifa¬ tycznych kwasów karboksylowych, z woda lub mie¬ szaniny wodnych roztworów buforowych z miesza¬ jacymi sie z woda rozpuszczalnikami organicznymi jako srodki eluujace. 10 Druk. Nar. Z.-3, zam. 629/76 Cena 10 zl PL PL
PL1972152947A 1971-01-18 1972-01-17 PL82807B1 (pl)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CH73371A CH586233A5 (pl) 1971-01-18 1971-01-18

Publications (1)

Publication Number Publication Date
PL82807B1 true PL82807B1 (pl) 1975-10-31

Family

ID=4193923

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL1972152947A PL82807B1 (pl) 1971-01-18 1972-01-17

Country Status (21)

Country Link
US (1) US3849252A (pl)
AR (1) AR196298A1 (pl)
AT (1) AT321456B (pl)
AU (1) AU476722B2 (pl)
BE (1) BE778226A (pl)
BR (1) BR7200318D0 (pl)
CA (1) CA966418A (pl)
CH (1) CH586233A5 (pl)
CS (1) CS168578B2 (pl)
DE (1) DE2201993C2 (pl)
ES (1) ES398962A1 (pl)
FI (1) FI51485C (pl)
HU (1) HU165725B (pl)
IL (1) IL38536A (pl)
NL (1) NL176955C (pl)
NO (1) NO138145C (pl)
PH (1) PH15651A (pl)
PL (1) PL82807B1 (pl)
SE (1) SE407805B (pl)
SU (1) SU581872A3 (pl)
ZA (1) ZA72132B (pl)

Families Citing this family (18)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE2615844A1 (de) * 1976-04-10 1977-10-20 Knoll Ag Fibrinogen spaltendes enzymsystem
CH626917A5 (pl) * 1976-08-17 1981-12-15 Pentapharm Ag
US6613324B1 (en) * 1991-02-28 2003-09-02 Bristol-Myers Squibb Company Adhesive for the gluing of biological tissues
CH681693A5 (pl) * 1991-02-28 1993-05-14 Pentapharm Ag
EP0534178B1 (en) * 1991-09-27 2001-04-18 Omrix Biopharmaceuticals S.A. Improved tissue glue prepared by using cryoprecipitate
DE4202667C1 (pl) * 1992-01-29 1993-05-13 Behringwerke Ag, 3550 Marburg, De
DE4203965A1 (de) * 1992-02-11 1993-08-12 Max Planck Gesellschaft Antidot fuer hirudin und synthetische thrombininhibitoren
CN1091315A (zh) * 1992-10-08 1994-08-31 E·R·斯奎布父子公司 血纤维蛋白封闭剂组合物及其使用方法
DK0691858T3 (da) * 1993-03-30 2000-05-08 Omrix Biopharm Sa Tokomponent fibrinklæber
US5681815A (en) * 1993-06-28 1997-10-28 Sophie Chen Antiviral and antitumor agents
JP3742675B2 (ja) * 1995-06-28 2006-02-08 東菱薬品工業株式会社 虚血−再灌流障害の予防および治療薬
JP3866800B2 (ja) * 1996-08-29 2007-01-10 東菱薬品工業株式会社 アポトーシス関連疾患の予防及び/又は治療薬
JP2001508447A (ja) * 1997-01-08 2001-06-26 ブリストル−マイヤーズ スクイブ カンパニー 温度制御手段を備えた遠心分離装置
US6132598A (en) * 1997-01-08 2000-10-17 Bristol-Myers Squibb Company Centrifuge apparatus with temperature control means
US6365380B2 (en) 2000-02-23 2002-04-02 Pcbu Services, Inc. Method for stereoselectively inverting a chiral center of a chemical compound using an enzyme and a metal catalyst
CN100335622C (zh) * 2003-03-28 2007-09-05 上海万兴生物制药有限公司 巴曲酶基因的合成及其表达产物的纯化制备
GB2431655A (en) * 2005-10-27 2007-05-02 Pentapharm Ag Antagonisation of anticoagulants
WO2008119203A1 (fr) 2007-03-30 2008-10-09 Shanghai Wanxing Biopharmaceuticals, Co., Ltd. Batroxobine recombinante purifiée à haute activité spécifique

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
GB1094301A (en) * 1964-02-21 1967-12-06 Nat Res Dev Improvements relating to anticoagulants
GB1293795A (en) * 1969-07-04 1972-10-25 Twyford Lab Ltd Improvements relating to anticoagulants

Also Published As

Publication number Publication date
BE778226A (fr) 1972-07-19
HU165725B (pl) 1974-10-28
AT321456B (de) 1975-04-10
BR7200318D0 (pt) 1973-10-04
NL7200638A (pl) 1972-07-20
IL38536A0 (en) 1972-03-28
CH586233A5 (pl) 1977-03-31
US3849252A (en) 1974-11-19
FI51485B (pl) 1976-09-30
CA966418A (en) 1975-04-22
DE2201993C2 (de) 1986-09-18
SE407805B (sv) 1979-04-23
DE2201993A1 (de) 1972-08-10
ES398962A1 (es) 1976-01-01
NL176955B (nl) 1985-02-01
AR196298A1 (es) 1973-12-18
NO138145C (no) 1978-07-12
PH15651A (en) 1983-03-11
NO138145B (no) 1978-04-03
CS168578B2 (pl) 1976-06-29
AU476722B2 (en) 1976-09-30
ZA72132B (en) 1972-09-27
AU3793972A (en) 1973-07-19
IL38536A (en) 1975-08-31
SU581872A3 (ru) 1977-11-25
NL176955C (nl) 1985-07-01
FI51485C (fi) 1977-01-10

Similar Documents

Publication Publication Date Title
PL82807B1 (pl)
US6103693A (en) Method for isolation of highly pure von willebrand factor
FI95136B (fi) Menetelmä anneksiinien puhdistamiseksi
JPH01193229A (ja) 抗血液凝固剤
EP1519944B1 (en) Processes for the preparation of fibrinogen
EP0041173B1 (en) Blood-coagulation-promoting products and methods of preparing them
JPS59137417A (ja) 人尿由来コロニ−形成刺激因子及びカリクレインの製造法
DE2734427C3 (de) Verfahren zur Gewinnung von thrombinartigen Enzymen aus Schlangengiften
KR960007922B1 (ko) 조직단백질 pp4의 저온살균법
AU659807B2 (en) Platelet adhesion inhibitor
EP0823476B1 (en) Method for activating prothrombin to thrombin
Nahas et al. Effect of heparin on the coagulant action of snake venoms
KR102528707B1 (ko) 고순도의 히알루로니다제 정제 방법
JPH05503302A (ja) 巨核球成熟因子
KR101780643B1 (ko) 효소분해를 이용한 헤파린의 정제 방법
CN1548534B (zh) 一种蛇毒血凝酶及其生产方法与应用
US4027012A (en) Process for the extraction of components having anticoagulant activity "in vivo" from snake venoms and products obtained
KR100377279B1 (ko) 트롬빈의제조방법
US4391746A (en) Blood-coagulation-promoting products and methods of preparing them
US2543808A (en) Method of preparing fibrinogen
JPH07291999A (ja) 血小板安定化因子ix−フラグメント、その製造方法及びこれを含有する薬剤
Ratnoff A. The Physiology of Blood Coagulation
US4039658A (en) Fibrinolytic substances
US4086140A (en) Process for isolating fibrinolytic substances
Yotis Clotting of citrated plasma by a proteolytic enzyme associated with an antibacterial agent from serum