PL82807B1 - - Google Patents
Download PDFInfo
- Publication number
- PL82807B1 PL82807B1 PL1972152947A PL15294772A PL82807B1 PL 82807 B1 PL82807 B1 PL 82807B1 PL 1972152947 A PL1972152947 A PL 1972152947A PL 15294772 A PL15294772 A PL 15294772A PL 82807 B1 PL82807 B1 PL 82807B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- solution
- enzyme
- phenol
- venom
- preparation
- Prior art date
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L24/00—Surgical adhesives or cements; Adhesives for colostomy devices
- A61L24/04—Surgical adhesives or cements; Adhesives for colostomy devices containing macromolecular materials
- A61L24/10—Polypeptides; Proteins
- A61L24/106—Fibrin; Fibrinogen
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K38/00—Medicinal preparations containing peptides
- A61K38/16—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
- A61K38/43—Enzymes; Proenzymes; Derivatives thereof
- A61K38/46—Hydrolases (3)
- A61K38/48—Hydrolases (3) acting on peptide bonds (3.4)
- A61K38/482—Serine endopeptidases (3.4.21)
- A61K38/4833—Thrombin (3.4.21.5)
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/34—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving hydrolase
- C12Q1/37—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving hydrolase involving peptidase or proteinase
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/56—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving blood clotting factors, e.g. involving thrombin, thromboplastin, fibrinogen
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L2400/00—Materials characterised by their function or physical properties
- A61L2400/04—Materials for stopping bleeding
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N2333/00—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
- G01N2333/435—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from animals; from humans
- G01N2333/46—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from animals; from humans from vertebrates
- G01N2333/4609—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from animals; from humans from vertebrates from reptiles
- G01N2333/4613—Snake venom
- G01N2333/4636—Snake venom from Bothrops sp.
- G01N2333/464—Snake venom from Bothrops sp. from Bothrops atrox; Reptilase; Atroxin
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N2333/00—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
- G01N2333/435—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from animals; from humans
- G01N2333/745—Assays involving non-enzymic blood coagulation factors
- G01N2333/75—Fibrin; Fibrinogen
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
- Y10S435/814—Enzyme separation or purification
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
- Y10S435/814—Enzyme separation or purification
- Y10S435/815—Enzyme separation or purification by sorption
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
- Y10S—TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y10S435/00—Chemistry: molecular biology and microbiology
- Y10S435/814—Enzyme separation or purification
- Y10S435/816—Enzyme separation or purification by solubility
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Immunology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Public Health (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Surgery (AREA)
- Hematology (AREA)
- Neurosurgery (AREA)
- Gastroenterology & Hepatology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
Description
Sposób wytwarzania preparatu enzymatycznego Przedmiotem wynalazku jest wytwarzanie pre¬ paratu enzymatycznego o trombino-podobnym dzia¬ laniu endopeptyidaizowym, majacego zastosowanie w medycynie i weterynarii w malych dawkach ja¬ ko srodek hemostatyczny, a w wiekszych dawkach jako srodek przeciw krzepliwosci krwi, z jadu we¬ zowego.W brytyjskim opisie patentowym nr 1 094 301 po¬ dano sposób wytwarzania enzymu o trombino-po¬ dobnym dzialaniu przeciw krzepliwosci krwi z jadu Ancistrodon rhodostoma. Enzym ten ma nastepu¬ jace wlasciwosci: w stanie czystym ma charakter proteinazowy i jest bezbarwny, adsorbuje na sla¬ bych zasadowych substancjach anionitowych, ta¬ kich jak dwuetyloaminometyloceluloza i trójetylo- aminoceluloza, rozpuszcza sie w roztworze soli fi¬ zjologicznej, wykazuje ruchliwosc elektroforetycz- na 3,9 X 10~5 volt/cm/sek. w 0,1 mola buforu fo¬ sforanowego o pH 7,0, posiada ciezar czasteczkowy (wyznaczony za pomoca ultrawirówki) nie przekra¬ czajacy 40000 w postaci monomerowej oraz wspól¬ czynnik sedymentacji S20W = 3,4 svedbergów przy stezeniu 4,86 mg/ml; czastkowa objetosc wlasciwa enzymu w stezeniu 4,86 ml/ml wynosi 0,7, jego dzialanie biologiczne jest podobne do dzialania troni- biny i antykrzepnieciowe in vivo i nie ulega zaha¬ mowaniu w ciagu 5 minut przez 1 X lO^8 molowy roztwór dwuizopropylofluorofosforanu.Stwierdzono, ze z jadu Bothrops atrox lub inne¬ go weza, którego jad jest immunologicznie wspól- 10 15 30 reaktywny z jadem Bothrops atrox, otrzymuje sie kompozycje enzymów, która z jednej strony, przy odpowiednio niskich dawkach dziala jako srodek hemostatyczny, a z drugiej, przy wiekszych daw¬ kach, dziala posrednio przeciw krzepnieciu krwi ludzi i innych ssaków, usuwajac z obiegu fibry- nogen, lecz nie powodujac hemostazy. Kompozycja ta, w porównaniu z enzymem wytworzonym spo¬ sobem opisanym w brytyjskim opisie patentowym nr ,1094 301, wykazuje kilka opisanych nizej zalet.Preparat enzymatyczny wedlug wynalazku, któ¬ ry w malych dawkach wykazuje dzialanie hemo- statyczne, a w wiekszych dawkach dziala jako sro¬ dek przeciw krzepnieciu krwi u ludzi i innych ssaków, ma nastepujace wlasciwosci: wykazuje trombdno-podobna aktywnosc endopeptydazowa; za¬ wiera skladnik peptydowy i skladnik weglowoda¬ nowy; z których ten pierwszy zawiera jeden lub wiecej polipeptydów o ciezarze czasteczkowym 18000—55000, wyznaczonym metoda ultrawirówki rzutowej; zawiera okolo 2—10fl/o wagowych weglo¬ wodanu (cukru obojetnego), co okresla sie na pod¬ stawie zawartosci protein; jest slabo rozpuszczal¬ na w wodzie destylowanej, lecz latwo rozpuszcza sie w roztworze soli fizjologicznej; tworzy kom¬ pleksy z fenolem i pochodnymi fenolu, slabo lub wcale nierozpuszczalne w wodzie; powoduje koa¬ gulacje fibrynogenu przez selektywne eliminowa¬ nie fibrynopeptydów A z fibrynogenu, nie uwal¬ niajac fibrynopeptydów B; wykazuje aktywnosc 82 80782807 4 trombino-podobna, odpowiadajaca okolo 30—450 jednostkom NIH-trombiny na 1 mg protein; roz¬ szczepia metylowy ester tosyloargininy i zelatyne, lecz nie rozszczepia metylowego estru lizyny, ety¬ lowego estru fenyloalaniny, N-acetylometioniny, N-acetylotyrozyny, leucyloglicyny i kazeiny; nie ulega zahamowaniu pod wplywem dzialania hepa¬ ryny, heparynoidów, hirudyny, antytrombin i wie- lowartosciowego inhibitora peptydazowego Kunitza [por. J. Gen. Physiol. 19, str. 991—1007, (1936)]; ule¬ ga zahamowaniu przy stezeniu enzymu okolo 5 ml/ /ml do okolo 95% pod wzgledem zdolnosci koagu- lacyjnej i aktywnosci esterazowej pod wplywem 2,5 X 10-3 molowego roztworu fluorofosforanu dwuizopropylu o pH 8, w ciagu 2 godzin; ulega za¬ hamowaniu pod wplywem metylowego estru tosylo¬ argininy i pod wplywem przeciwciala zawartego w surowicy antybothrops; nie jest wiazana, a wiec i dezaktywowana przez fibryne; jej pól-okres bio¬ logicznego rozpadu jest znacznie dluzszy od pól- -okresu rozpadu heparyny; wywoluje wytwarzanie sie pochodnej fibryny, która reaguje z nadmiarem fibrynogenu, tworzac dajacy sie polimeryzowac kompleks fibrynowo-fibrynogenowy; dziala na fi- brynogen tworzac fibryne o fizyko-chemicznych wlasciwosciach róznych od wlasciwosci fibryny wy¬ tworzonej z trombiny tym, ze ulega szybkiej hy¬ drolizie pod wplywem dzialania enzymów fibryno- litycznych, na przyklad plazminy, nawet w obec¬ nosci aktywowanego czynnika XIII i jonów wap¬ nia, a takze tym, ze rozpuszcza sie w 5-molowym wodnym roztworze mocznika; wywoluje in vivo defibrynogenacje i wtórna fibrynolize bez ubocz¬ nego dzialania krwotokowego i tromboembolicz- nego.Sposób wedlug wynalazku wytwarzania prepa¬ ratu enzymatycznego polega na tym, ze wytwarza sie izotoniczny roztwór wodny jadu Bothrops atrox lub innego weza, którego jad jest immunologicznie wspólreaktywny z jaden Bothrops atrox, o pH okolo 4,5—7, a nastepnie albo poddaje sie ten roz¬ twór frakcyjnemu wytracaniu soli w celu usunie¬ cia substancji balastowych, a nastepnie wytrace¬ nia frakcji zawierajacej enzym, po czym rozpusz¬ cza sie te frakcje w wodzie destylowanej ustala¬ jac wartosc pH roztworu na 3—4, ogrzewa roztwór w temperaturze 30—40°C w ciagu od kilku minut do okolo 2 godzin i doprowadza wartosc pH roz¬ tworu do okolo 4—6, albo ustala sie wartosc pH roztworu izotonicznego na 3—4 i ogrzewa sie go w temperaturze 30—50°C w ciagu od kilku minut do okolo 2 godzin, po czym wyosabnia sie wytra¬ cone proteiny, doprowadza wartosc pH roztworu do 4,5—7, poddaje go frakcyjnemu wytracaniu soli w celu usuniecia substancji balastowych, a na¬ stepnie wytracenia frakcji zawierajacej aktywny enzym, rozpuszcza sie te frakcje w wodzie desty¬ lowanej i doprowadza wartosc pH roztworu do okolo 4—6. Nastepnie do wytworzonego roztworu wprowadza sie fenol lub jego pochodne, w celu wytracenia nierozpuszczalnego kompleksu zawie¬ rajacego enzym i albo rozklada sie kompleks przez podzialanie nan rozcienczonym kwasem octowym w polarnym rozpuszczalniku organicznym i wyosab¬ nia sie uwolniony nierozpuszczalny enzym, albo poddaje sie kompleks w srodowisku wodnym reak¬ cji z zasada przy wartosci pH 7,5—8,5 i wyosab¬ nia uwolniony enzym przez ultrafiltracje, dialize lub filtracje przez zel, a nastepnie oczyszcza sie 5 wytworzony enzym.Jako substancje wyjsciowa do wytwarzania pre¬ paratu enzymatycznego sposobem wedlug wynalaz¬ ku stosuje sie korzystnie jad weza Bothrops atrox, znanego w literaturze równiez jako Coluber atrox 10 Linnaeus (Sys. Nat. Ed. 10, ,1 — 222, 1758) — Bothrops atrox Linnaeus (Dumeril, Bibron et Du- meril, Erpet, gen., 7 — ,1507, 1854), Lachesis lan- ceolatus Boulenger (Cat. Snak. Brit. Mus., 3 — 535, 1898), Lachesis atrox Linnaeus (Boulenger, Cat. 15 Sbak. Brit. Mus., 3 — 537 — 1896) — Bothrops atrox atrox Linnaeus (J. A. Peters, Buli, Mus, com.Zool., Cambridge. Mass., 122 — 509, 1960) i Bothrops moojeni Hoge (A. R. Hoge, Mem. Inst. Butantan, 32 — 126, (1965). Mozna równiez stosowac jad in- 20 nych wezów z gatunku Bothrops, na przyklad weza Bothrops jararaca. W zasadzie odpowiedni jest jad kazdego weza, który jest immunologicznie wspól¬ reaktywny z jadem Bothrops atrox. Definicje i wy¬ jasnienie terminu „immunologicznie wspólreaktyw- 23 ny" mozna znalezc np. w dziele B. A. Kabata, Einfiihrung in die Immunchemie und Immunolo¬ gie, Springer Verlag, 1971, str. 1 i nastepne.Ponizej podano szczególowy opis sposobu wy¬ twarzania preparatu enzymatycznego wedlug wy 30 nalazku.Liofilizowany jad wezowy, na przyklad jad weza Bothrops atrox, rozpuszcza sie w roztworze soli fizjologicznej o wartosci pH 4,5—7, a nierozpu- szczona substancje usuwa sie z roztworu przez od- 33 wirowanie lub odsaczenie. Nastepnie doprowadza sie wartosc pH roztworu do stanu slabo kwasnego, czyli okolo 3—4, przez dodanie kwasu nieorganicz¬ nego, np. kwasu solnego lub kwasu siarkowego, albo kwasu organicznego, takiego jak kwas octo- 40 wy, po czym ogrzewa sie roztwór, mieszajac, co powoduje wytracenie protein bez straty skladnika czynnego.Ilosc wytraconych substancji zalezy od czasu ogrzewania i temperatury, a takze od wartosci pH 45 roztworu. Przy wartosci pH 3 wystarcza 10-minu- towe ogrzewanie w temperaturze 30°C, podczas gdy przy pH 3,5 dogodnie jest ogrzewac roztwór w ciagu 1 godziny w temperaturze 30°C lub w cia¬ gu 30 minut w temperaturze 40°C. Przy wartosci 50 pH 4 przedluza sie czas ogrzewania do okolo 2 godzin i podnosi temperature do okolo 50°C.Wytracone proteiny wyosabnia sie przez odwi¬ rowanie, wartosc pH przesaczu doprowadza sie do okolo 4,5—7, korzystnie okolo 6,5, po czym przesacz 55 poddaje sie frakcyjnemu wytracaniu soli w celu usuniecia substancji balastowych, a nastepnie wy¬ tracenia frakcji czynnej. Wytracanie to prowadzi sie z zastosowaniem soli kwasów z amoniakiem, metalami alkalicznymi lub metalami ziem alkalicz- 60 nych, np. chlorku lub siarczanu sodowego, chlor¬ ku lub siarczanu magnezowego, badz chlorku lub siarczanu amonowego. W przypadku stosowania siarczanu amonowego przy wartosci pH 6,5, sub¬ stancje balastowe wytracaja sie przy 40% nasy- 05 ceniu, a frakcja czynna przy 55°/o nasycenia w tern-B28A7 $ peraturze 20°C. Stosowanie innych soli, wartosci pH i temperatur wymaga innych stopni nasycenia.Frakcje czynna wyosabnia sie z roztworu ma¬ cierzystego przez odwirowanie, po czym rozpusz¬ cza sie ja w wodzie destylowanej i doprowadza 5 wartosc pH roztworu do 4—6, korzystnie okolo 5.Przez dodanie okolo 7% wagowych fenolu lub od¬ powiedniej ilosci pochodnej tego zwiazku, wywo¬ luje sie wytracenie skladnika czynnego w postaci kompleksu. io- Odpowiednimi pochodnymi fenolu sa kwasy fe- nolokarboksylowe, na przyklad kwas salicylowy, alkilofenole, na przyklad o-, m- lub p^krezol, fe¬ nole chlorowcowane, na przyklad o-, m- lub p-chlo- rofenol, chlorowcowane lub alkilowane kwasy fe- 15 nololkarboksylowe, nip. (kwasy krezolowe i chloro- fenolowe, badz sole kwasów fenolokarboksylowych lub ich pochodne, np. salicylan sodowy i sodowe sole kwasów krezolokarboksylowych. Poza tym stosuje sie równiez zywice fenolowo-formaldehy- 20 dowe zawierajace wolne grupy fenolowe, takie jak Amberlite XE 97. Ilosc wytraconej substancji za¬ lezy od stopnia rozpuszczalnosci stosowanej po¬ chodnej fenolu lub, w przypadku kwasów, od stopnia rozpuszczalnosci stosowanej wolnego kwa- 25 su. Otrzymany nierozpuszczalny kompleks skladni¬ ka czynnego wyosabnia sie przez odwirowanie i rozklada jednym z nizej podanych sposobów.Wyosobniony kompleks plucze sie kilkakrotnie roztworem 0,1—0,5°/o kwasu octowego w rozpusz- 30 czalniku polarnym w celu rozlozenia kompleksu i rozpuszczenia fenolu lub jego pochodnej, przy czym skladnik czynny pozostaje w postaci nie¬ rozpuszczalnego osadu. Odpowiednimi rozpuszczal¬ nikami polarnymi sa np. alkanole o 1—4 atomach 35 wegla w lancuchu, ketony alkilowe o wzorze R1 —CO —R2, w którym R1 i R2 oznaczaja rodniki alkilowe o 1—4 atomach wegla, lub estry alkilowe o wzorze R1 — O — R2, w którym R1 i R2 oznaczaja rodniki alkilowe o 2—3 atomach wegla. 40 Inny sposób rozkladu jest nastepujacy: kompleks skladajacy sie ze skladnika czynnego i fenolu lub jego pochodnej, rozpuszcza sie w wodzie i dopro¬ wadza wartosc pH roztworu do okolo 7,5—8,5, ko¬ rzystnie 8, przez dodanie wodorotlenku metalu al- 45 kalicznego, octanu metalu alkalicznego, cytrynia¬ nu metalu alkalicznego, weglanu lub wodorowegla¬ nu metalu alkalicznego, fosforanu metalu dwu- lub trójalkalicznego badz aininej zasady buforowej, albo wodorotlenku amonowego lub amoniaku. Na- 50 stepnie przesacza sie roztwór pod cisnieniem azotu przez ultrafiltr o takiej wielkosci oczek, aby za¬ trzymal enzymowy skladnik czynny, a przepuscil roztwór fenolu lub jego pochodnej. Odpowiednimi filtraimi sa filtry „Diafilo" typu UM-05, UM-2, 55 UM^IO, lub PM-10 (sa to ultrafiltry np. z polime¬ rów syntetycznych, sprzedawane przez AMICON, Oosterhout (N. B.), Holandia). Zatrzymany na fil¬ trze skladnik czynny plucze sie kilkoma porcjami wody destylowanej lub roztworu odpowiedniego 60 srodka konserwujacego w celu usuniecia pozosta¬ lego fenolu lub jego pochodnej i równoczesnie steza.Aktywny preparat enzymatyczny, z którego usu¬ nieto fenol lub jego pochodna, wykazuje aktyw- 65 nósc okolo 10^-»15 jednostek NIH-trombiny na 1 mg substancji suchej (stopien czystosci I), daje on jednak trzy linie straceniowe na immunofero- gramie oraz cztery strefy proteinowe na ferogra- mie akryloamidowym i ma barwe zólta. Ponadto, preparat enzymatyczny o stopniu czystosci I wy¬ kazuje równiez aktywnosc tromboplastyczna.W celu dalszego oczyszczenia, preparat enzyma¬ tyczny o stopniu czystosci I rozpuszcza sie w bu¬ forze tris-(hydroksymetylo)-aminometanofosforano- wym o wartosci pH 6,0 (0,02 mola), otrzymujac 5% roztwór, który poddaje sie chromatografii na ko¬ lumnie DEAE — „Sephadex A-50?' (DEAE = dwu- etyloawiiLnoetyl, „Sephadex" jest anakaem handlo¬ wym produktów polidekstranowych, dostarczanych przez przedsiebiorstwo Pharmacia w Uppsali w Szwecji), uprzednio przeksztalconej w postac PO4 i zrównowazonej buforem TRIS-fosforanowym 0 wartosci pH 6,0 (0,02 mola).Chromatografie prowadzi sie przez wylewanie roztworu kompozycji enzymów na kolumne, usu¬ wanie substancji balastowych przez plukanie ko¬ lumny 4-krotnie wieksza od jej objetosci iloscia buforu TRISnfosforanowego o pH 6,0 (0,02 mola) [TRIS = tris-(hydroksymetylo)-aminometan] i roz¬ puszczenie kompozycji enzymów przez eluowanie jej dwukrotnie wieksza od objetosci kolumny ilo¬ scia buforu TRIS-fosforanowego o pH 6,0 (0,04 mola). Sole usuwa sie z aktywnego eluatu przez ultrafiltrowainie. Liofilizacja przesaczu daje pre¬ parat enzymatyczny o stopniu czystosci II o ak¬ tywnosci odpowiadajacej lOO—200 jednostkom NIH-trombiny na 1 mg zawartosci protein. Immu- nogerogram wykazuje pojedyncza linie stracenio- wa, a ferograim aJkryloainiiinowy — dwie strefy.Preparat enzymatyczny mozna wytworzyc w~po- staci krystalicznej przez pozostawienie wolnego od soli koncentratu, otrzymanego w wyniku ultrafil¬ tracj i, na okres 48 godzin w temperaturze 2°C, wyosobnienie krysztalów przez odwirowanie z rów¬ noczesnym chlodzeniem i wyplukanie tych kryszta¬ lów lodowata woda destylowana. W ten sposób, z niewielka wydajnoscia, otrzymuje sie prostokat¬ ne plytki tworzace bezpostaciowe czastki, przy czym nastepuje to szybko w przypadku suszenia pod zredukowanym cisnieniem, a stopniowo przy su¬ szeniu na powietrzu. Po wysuszeniu krysztalów otrzymuje sie preparat enzymatyczny o aktywno¬ sci wyzszej niz 200, jednostek NIH-trombiny na 1 mg zawartosci protein (stopien czystosci III).Preparat enzymatyczny o stopniu czystosci II okazuje sie substancja jednorodna na podstawie analizy elektroferogramu bibulowego, elektrofero- gramu membranowego, chromatogramu na zelu, chromatogramu jonitowegi i immunodyfuzogramu wedlug metody Ouchter-Lonny^go. Droga elektro¬ forezy w zelu poliakryloamidowym, z aktywnej frakcji enzymowej wyosabnia sie jednak farmako¬ logicznie nieaktywna frakcje poli-peptydowa.Skladnik nieaktywny wyosabnia sie z frakcji enzy¬ mowej przez poddanie preparatu enzymatycznego o stopniu czystosci II chromatografii na zelu z za¬ stosowaniem mieszaniny alifatycznego kwasu kar- bóksylowego z woda lub mieszaniny wodnego roz¬ tworu buforowego z mieszajacym sie z woda roz-82807 puszczalnikiem organicznym, przy czym stosuje sie zel hydrofobowy lub hydrofilowy.Przykladami zelów hydrofilowych sa zele poli- dekstranowe, takie jak „Sephadex" (Pharmacia, Uppsala — Szwecja), zele poliakryloamidowe, ta¬ kie jak „Bio-Gel" (wytworzony przez Bio-Rad La¬ boratories w Richmond w Kalifornii) oraz zele agarozowe i agarowe, takie jak „Sepharose" (Phar¬ macia, Szwecja). Chromatografie prowadzi sie do¬ godnie przy niezmiennym stezeniu jonów wodo¬ rowych na przyklad w zakresie wartosci pH 2—9, korzystnie w zakresie 2—6. Odpowiednimi kwasami karboksylowymi sa na przyklad mieszajace sie z woda alifatyczne kwasy monokarboksylowe o lancuchu prostym lub rozgalezionym i zawierajace 1—4 atomów wegla. Jako bufory stosuje sie typowe zwiazki rozpuszczalne w mieszaninach wody z roz¬ puszczalnikami, takie jak mrówczany, octany, fo¬ sforany, cytryniany i weglany zasad nieorganicz¬ nych, takich jak zasady metaloalkaliczne lub amo¬ nowe, badz zasad organicznych, takich jak piry¬ dyna lub tris-(hydroksymetylo)-aminometan. Ko¬ rzystnie stosuje sie bufory nie adsorbujace promie¬ ni nadfioletowych i wystepujace w stanie lotnym pod cisnieniem nizszym od atmosferycznego, takie jak mrówczan amonowy lub octan amonowy; po przeprowadzeniu chromatografii dokonuje sie wte¬ dy analizy densytometrycznej eluatów w nadfio¬ lecie i steza sie te eluaty metoda liofilizacji.Alifatyczne kwasy karboksylowe stosuje sie w stezeniach 5—95% objetosciowo w wodzie. W przy¬ padku stosowania zelów hydrofilowych stosuje sie stezenie kwasu karboksylowego w wysokosci 5— —50% objetosciowo. Stosujac bufory wodne ciodaje sie mieszajacy sie z woda rozpuszczalnik organi¬ czny w stezeniu 5—95% objetosciowo. W przypad¬ ku stosowania zelów hydrofilowych stosuje sie ste¬ zenie rozpuszczalnika w wysokosci 10—50% obje¬ tosciowo. Przykladami odpowiednich mieszajacych sie z woda rozpuszczalników sa alkanole o lancu¬ chach prostych lub rozgalezionych, zawierajace 1—5 atomów wegla, ketony, takie jak aceton, dwu- etyloketon lub keton metylowo-etylowy, alkiloami- ny, takie jak jedno-, dwu- lub trójmetylo- etylo- lub propyloamina, lub uretany, np. etylouretany.Ze wzgledu na to, ze eluaty steza sie korzystnie metoda liofilizacji, zaleca sie stosowac rozpuszczal¬ niki wystepujace w stanie lotnym pod cisnieniem nizszym od atmosferycznego i nie obnizajace tem¬ peratury zamarzania roztworu. Przykladami odpo¬ wiednich rozpuszczalników sa III-rzed. butanol i cykloheksanol.Wytworzone droga chromatografii na zelu pre¬ paraty enzymatyczne wykazuja aktywnosc biologi¬ czna 200—400 jednostek NIH-trombiny na 1 mg zawartosci protein (stopien czystosci III). Wiek¬ sza czesc frakcji nieaktywnej usuwa sie z prepa¬ ratu enzymatycznego metoda chromatografii na zelu.Stosowany w tym opisie termin „stopien czysto¬ sci II" oznacza 100—200 jednostek NIH-trombiny na 1 mg zawartosci protein, a termin „stopien czy¬ stosci III" — 200—400 jednostek NIH-trombiny na 1 mg zawartosci protein.Wyniki aminokwasowej analizy preparatu enzy¬ matycznego mieszcza sie w podanych nizej zakre¬ sach, w zaleznosci od stopnia czystosci. Analize te prowadzi sie w ciagu 22—72 godzin przez pod¬ danie preparatu hydrolizie z zastosowaniem stalo- wrzacego kwasu solnego w temperaturze 110°C, w atmosferze azotu. Wyniki podano w tablicy 1. 10 15 20 30 35 40 45 50 55 60 65 Tablica 1 Aminokwasy Kwas asparaginowy Treonina Seryna Kwas glutaminowy Prolina Glicyna Alanina Cystyna 1/2 Walina Metionina Izoleucyna Leucyna Tyrozyna . Fenyloalanina Histydyna Lizyna Arginina Liczba mikromoli w 1 mg skladnika peptydowego 1^1,3 0,35—0,55 0,4 —0,5 0,85—0,75 0,55—0,9 0,65—0,9 0,4 —0,65 0,35—0,e 0,45—0,6 0,1 —0,2 0,45—0,75 0,3 —0,5 0,3 ^0,5 0,3 —0,45 0,2 —0,25 0,45—0,65 0,3 —0,45 W tablicy 2 podano przykladowo wyniki analizy aminokwasowej dla: A — preparatu enzymatycznego o stopniu czysto¬ sci II, B — preparatu enzymatycznego o stopniu czysto¬ sci III (czyli preparat o znacznie zredukowa¬ nej zawartosci substancji nieaktywnej).Skladnik weglowodanowy preparatu enzymatycz¬ nego wydaje sie byc co najmniej czesciowo zwia¬ zany z polipeptydem, w postaci glikopeptydu. Okre¬ slenie zawartosci weglowodanów (cukru obojetne¬ go) prowadzi sie metoda orcynolowa [por. L. F.Hewitt, Biochem. J. 31 str. 360 (1937)].Preparat enzymatyczny o stopniu czystosci III (czyli preparat o zredukowanej zawartosci substan¬ cji nieaktywnej) zawiera skladnik peptydowy o prawdopodobnym ciezarze czasteczkowym 38000— —55000, natomiast skladnik peptydowy preparatu enzymatycznego o stopniu czystosci II ma ciezar czasteczkowy 28000^55000.Preparat enzymatyczny o stopniu czystosci II za¬ wiera skladnik aktywujacy czynnik XIII.Preparat enzymatyczny o stopniu czystosci III wykazuje nastepujacy uklad aminokwasów (wy¬ znaczony metoda rozkladowa Edmana, opisana przez S. B. Needlemana w Protein Seauence De- termination, Springer-Verlag, Berlin—Heidelberg, New York, 1970, str. 2ill i nast.) od azotowego kon¬ ca lancucha: walina -^ izoleucyna -+ glicyna -? glicyna r- kwas, asparaginowy -- kwas glutaminowy,9 8280T 10 T a bli b a 2 Aminokwasy Kwas aspara¬ ginowy Treonina Her^na Kwas glutami¬ nowy Prólina Glicyna" Alanina Cystyna 1/2 Walina Metionina Izoieueyfia Leucyria Tyrozyna Fenyloalanina Mistydyna Lizyna Argiilina Liczba mikromoli w 1 mg 1 skladnika peptydowego A 1,05-4,1 6,35^6,41 6,43—*,45 6,67—6,7 6,58—billi 6,67—0,76 6,41—0,5 6,47—6,^ 6,47—6,55 6,17—6,2 6,45—6,55 6,46—6,47 0,33—0,5 0,33—0,43 0,2 —0,22 0,6 —0,64 0,3 —0,4 B 1,17—1,25 0,42—6,54 0,41—0,5 0,6S—6,71 6,76—6,$ 0,63—6,64 0,35—0,41 6,55—0,6 6,65—0,72 0,6 —6,64 0,3 —0,36 0,33—0,38 0,21—0,23 0,48—0,53 0,32--0,36 Preparat enzymatyczny wytworzony sposobem wedlug wynalazku nie zawiera neurotoksyn dzia¬ lajacych szkodliwie na system nerwowy, proteaz tworzacych bradykinine, która obniza cisnienie krwi, lecytynaz dzialajacych hemolitycznie i uszka¬ dzajacych nerM, oksydaz arndinotowasowych i fosfa¬ taz* Preparat ten ma zastosowania jako reagent i sro¬ dek pomocniczy w fizjologicznych badaniach koa¬ gulacji in vitro, np. w badaniach konwersji fibry- nogenu w fibryne w obecnosci heparyny i anty- trombin oraz w badaniach fibrynopeptydów, pa¬ tologicznych struktur fibrynogenowych, produktów rozpadu fibryno&enu, czynnika VIII i czynnika XIII.Wytworzony sposobem wedlug, wynalazku prepa¬ rat enzymatyczny stosowany in vivo w umiarko¬ wanych dawkach, hamuje krwawienie i skraca czas koagulacji u zwierzat doswiadczalnych oraz u pa¬ cjentów o normalnej lub patologicznej hemostazie.Preparat ten, stosowany dozylnie w umiarkowa¬ nych dawkach u ludzi, powoduje wytwarzanie sie w obiegu krwionosnym rozpuszczalnych komplek¬ sów fibrynowo-fibrynogenowych, co stwierdzono na podstawie dodatniej próby plazmy na kriofi- bryne i próby parakoagulacyjnej oraz analiz azo¬ towego konca frakcji plazmy ludzkiej. Preparat enzymatyczny wytworzony sposobem wedlug wy¬ nalazku jest zatem pozytecznym srodkiem hemo- statycznym.W przypadku podawania tego preparatu psom w wiekszych dawkach, zachodzi szybka defibry- nogenacja i wtórna fibrynoliza, a we krwi daje sie.zauwazyc obecnosc produktów rozpadu fibryno- genu. Defibrynogenacja i fibrynoiiza zachodza bez zadnych objawów wstrzasowych, trombocytopenii i komplikacji tromboembolicznych lub krwotoko- wych; Doswiadczenia kliniczne na pacjentach z tromboza zyl nóg lub siatkówki wykazaly, ze preparat enzymatyczny ma szczególne zastosowa¬ nie w terapii defibrynogenujacej i fibrynolitycz- nej.; O ile wiadomo, nowy preparat enzymatyczny nie moze byc zastapiony jako reagent przez zaden in¬ ny porównywalny srodek. Chociaz wytwarzana z enzymu gronkowcowego koagulaza trombinowa jest równiez enzymem trombino-podobnym, które¬ go aktywnosc nie Ulega zahamowaniu pod wply¬ wem antytrombin, ódszCzepia ona z czasteczki fi¬ brynogenu zarówno peptyd A jak i peptyd B, pod¬ czas gdy preparat enzymatyczny wytworzony spo¬ sobem wedlug wynalazku uwalnia tylko peptyd A.Wsród srodków hemostatycznych o dzialaniu trombino^podobhym, preparat enzymatyczny wy¬ tworzony sposobem •¦ wedlug wynalazku wyróznia sie swoja wstrzykiwalnoscia. Trombina, koagulaza trombinowa i srodki trombinotwórcze, takie jak tromboplastyny i jad zmii Eussela, wywoluja przy stosowaniu pozajelitowym objawy tromboembolicz- ne oraz trombocytopenie; srodki te mozna wiec stosowac tylko miejscowo.W przypadku stosowania wiekszych dawek pre¬ paratu enzymatycznego wytworzonego sposobem wedlug wynalazku do defibrynogenowania w sta¬ nach tromboembolicznych, preparat ten dziala ja¬ ko koagulator i równoczesnie wywoluje fibryno- lize. Wskutek utraty i rozpadu wiekszej czesci fi¬ brynogenu, krew traci zdolnosc do koagulowania w wyniku defibrynogenacji. Ponadto, produkty roz¬ padu fibrynogenu wytworzone podczas wzbudzonej fibrynolizy dzialaja hamujaco na koagulacje. Po kilku dniach (np. 2—3 dniach), ilosc produktów rozpadu fibrynogenu spada na tyle, ze nie zwiek¬ szaja one tendencji do krwawienia. Podczas defi¬ brynogenacji nie wystepuje trombocytopenia, a pacjenci nie wykazuja zwiekszonej tendencji do krwawienia przy zawartosci 0,01—0,05 g fibryno¬ genu w 100 ml plazmy. Pacjentów tych mozna równiez poddawac zabiegom chirurgicznym bez ry¬ zyka niebezpiecznego krwawienia.Stosunkowo niewielkie zahamowanie hemostazy wywolane dzialaniem kompozycji enzymów we¬ dlug wynalazku stanowi wielka zalete w porów¬ naniu z antykoagulatorami grupy heparynowej oraz antykoagulatorami szeregu dwukumarynowe- go, które hamuja synteze róznych czynników koa- gulacyjnych w watrobie i dzialaja bardzo szkodli¬ wie na procesy hemostatyczne. Dzieki swemu sil¬ nemu dzialaniu antykoagulacyjnemu, nowy prepa¬ rat enzymatyczny ma szczególne zastosowanie do zapobiegania tworzeniu sie skrzeplin podczas za¬ biegów chirurgicznych. Dotychczas nie zaobserwo¬ wano odpornosci na ten prepart przy stosowania dozylnym. W przypadku stosowania tego prepa¬ ratu, leczenie i kontrola przebiegu terapii sa bardzo latwe.W porównaniu z antykoagulatorem wytwarza¬ nym sposobem podanym w brytyjskim opisie pa¬ tentowym nr 1004 301, preparat enzymatyczny wytwarzany sposobem wedlug wynalazku wykazu¬ je te zasadnicza zalete, ze jego aktywnosc fizjo¬ logiczna jest znacznie dluzsza. Porównywalna daw- 10 15 20 26 30 35 40 45 50 55 Kwas aspara¬ ginowy Treoftina Her^na Kwas glutami¬ nowy Prólina GlicyhS Alanina Cystyna 1/2 Walina Metionina Izoieueyfia Leucyria Tyrozyna Fenyloalanina Mistydyna Lizyna Arginina 1,65-4,1 6,35^6,41 6,43—*,45 6,67—6,7 6,58—6,73 6,67—0,76 6,41—0,5 6,47—6,^ 6,47—6,55 6,17—6,2 6,45—6,55 6,46—6,47 0,33—0,5 0,33—0,43 0,2 —0,22 0,6 —0,64 0,3 —0,4 1,17—1,25 0,42—6,54 0,41—0,5 0,6S—6,71 6,7&-Ó,8'? 6,76—0,$ 0,63—6,64 0,35—0,42 6,55—0,6 Ó,lS—6,17 6,65—0,72 0,6 —6,64 0,3 —0,36 0,33—0,38 0,2,1—0,23 0,48—0,53 0,32--0,3611 ka nowego preparatu wykazuje dluzsze dzialanie defibrynogenacyjne. Podczas gdy heparyne trzeba wstrzykiwac co 4—6 godzin, jedna dawka prepa¬ ratu enzymatycznego wytwarzanego sposobem we¬ dlug wynalazku zachowuje aktywnosc w ciagu co najmniej 24 godzin. Ponadto, przy stosowaniu do¬ zylnym, preparat ten nie wytwarza odpornosci organizmu. O ile antykoagulator z brytyjskiego opisu patentowego nr 1 094 301 nalezy stosowac w dawkach 4—6 razy po 60 jednostek na 60 kg wagi ciala pacjenta, w ciagu 24 godzin (.1 jednostka to taka ilosc enzymu, która zastosowana wobec fi- brynogenu ludzkiego daje taki sam okres koagulacji co 1 jednostka NIH-trombiny; NIH = National In- stitute of Health), to jedna dawka najwyzej 14 jednostek preparatu enzymatycznego wytworzo¬ nego sposobem wedlug wynalazku na 60 kg wagi ciala pacjenta wystarcza do utrzymania stanu de- fibrynogenacji u doroslego czlowieka w ciagu 24 godzin.Aktywnosc preparatu enzymatycznego wytwo¬ rzonego sposobem wedlug wynalazku wyznacza sie na podstawie jej trombino-podobnego dzialania na ludzki fibrynogen. Jedna jednostka tego preparatu odpowiada ilosci, która powoduje koagulacje roz¬ tworu fibrynogenu w tym samym czasie co jedna jednostka NIH standartowej trombiny.W stanie oczyszczonym preparat enzymatyczny wytworzony sposobem wedlug wynalazku jest la¬ two rozpuszczalny w rozcienczonych roztworach soli, lecz slabo rozpuszczalny w wodzie destylowa¬ nej. Daje sie on wytracac z roztworów wodnych solami lub mieszajacymi sie z woda rozpuszczal¬ nikami organicznymi oraz moze byc odwracalnie wiazana na jonitach zasadowych i tworzy nieroz¬ puszczalne w wodzie kompleksy z fenolem i jego pochodnymi. Ponadto, preparat ten cechuje wy¬ soki stopien odpornosci na cieplo i znaczna od¬ pornosc na dzialanie kwasów.Jako srodek hemostatyczny stosuje sie preparat enzymatyczny wytwarzany sposobem wedlug wy¬ nalazku w dziennych dawkach okolo 0,25—1,5 jed¬ nostek NIH na 60 kg wagi ciala pacjenta. Nato¬ miast jako antykoagulator krwi stosuje sie ten pre¬ parat w dziennych dawkach okolo 2—100, korzyst¬ nie okolo 7—14 jednostek NIH na 60 kg ciala pac¬ jenta.Zakres wynalazku obejmuje równiez srodek far¬ maceutyczny zawierajacy jako skladnik czynny preparat enzymatyczny wytworzony sposobem we¬ dlug wynalazku. Jezeli srodek taki ma byc sto¬ sowany jako antykoagulator krwi, wówczas wi¬ nien zawierac 10—500, 'korzystnie okolo 100 mifaro- gramów skladnika czynnego na dawke jednostko¬ wa. Najdogodniej rozpuszcza sie preparat enzyma¬ tyczny w srodowisku wodnym, odpowiednim do sto¬ sowania pozajelitowego. W praktyce najodpowied¬ niejszymi sa ampulki zawierajace 2 ml wodnego roztworu preparatu enzymatycznego, zawierajace¬ go korzystnie okolo 0,9% NaCl, okolo 0,3—0,5% fenolu i okolo 0,01—0,2% czesciowo zhydrolizowa- nej zelatyny (jako stabilizatora) oraz wykazujace¬ go wartosc pH okolo 5,0—8,0, korzystnie 6,5.Zakres wynalazku obejmuje takze reagent maja¬ cy zastosowanie w badaniach in vitro krwi ssa- 82807 12 ków, a szczególnie ludzi, na przyklad w badaniach procesu tworzenia sie fibryny lub anomalii w tym procesie, do szybkiego okreslania poziomu fibry¬ nogenu w obecnosci heparyny, do szybkiego wy- 5 krywania obecnosci fibryny i produktów jej roz¬ padu w plazmie oraz jako srodek zastepujacy trom- bine w próbach na koagulacje krwi.Dla celów praktycznych, reagent taki wytwarza sie z mieszaniny 10—50 mikrogramów liofilizowa¬ lo nego preparatu enzymatycznego, 1 mg czesciowo zhydrolizowanej zelatyny (jako stabilizatora), 2 mg p-ióksybenzoesainu metylu, 8,5 mg NaCl i glicyny w ilosci dopelniajacej do 34 mg. Mieszanine te rozpuszcza sie w 1 ml wody destylowanej, a otrzy- 15 many roztwór moze byc natychmiast uzyty jako opisany wyzej reagent.Przyklad I. W 1000 ml 0,9% roztworu NaCl rozpuszcza sie 20 g jadu Bothirops atrox, po czym odwirowuje sie roztwór w ciagu 10 minut z pred- 20 koscia 3O00 obrotów na minute. Po usunieciu wy¬ traconej substancji, doprowadza sie wartosc pH roztworu do 3,5 rozcienczonym kwasem octowym, ogrzewa sie ten roztwór w ciagu 1 godziny w tem¬ peraturze 30°C w kapieli wodnej i ponownie od- 25 wirowuje. Wytracona substancje usuwa sie, a na¬ stepnie doprowadza sie wartosc pH roztworu do 6,5 przez dodanie wodorotlenku sodowego i dopelnia sie roztwór do objetosci 1000 ml 0,9% roztworem NaCl, po czym dodaje sie, mieszajac 670 ml nasy- 30 conego roztworu siarczanu amonowego, pozostawia mieszanine do odstania w temperaturze pokojowej na okres 1 godziny i usuwa sie wytracony osad przez odwirowanie. Nastepnie dodaje sie dalsze 552 ml nasyconego roztworu siarczanu amonowe- 35 go, a po uplywie 1 godziny odwirowuje sie mie¬ szanine.Odwirowana ciecz usuwa sie, a wytracona sub¬ stancje rozpuszcza w 100 ml wody destylowanej, po czym doprowadza wartosc pH roztworu do 5,0 40 przez dodanie rozcienczonego kwasu octowego, a nastepnie, mieszajac roztwór, dodaje sie don 7,7 ml 90% fenolu i pozostawia mieszanine do odsta¬ nia w temperaturze pokojowej na okres 15 godzin.Po odwirowaniu usuwa sie ciecz, a wytracony 45 enzym plucze dwukrotnie 10 ml wody nasyconej fenolem, odwirowuje i rozpuszcza w 50 ml eta¬ nolu zawierajacego 1% kwas octowy. Mieszanine te miesza sie w ciagu 1 godziny, a nastepnie fil¬ truje przez szklany filtr prózniowy. Zatrzymana na 50 filtrze substancje plucze sie kilkoma porcjami po 20 ml etanolu i suszy pod cisnieniem nizszym od atmosferycznego, otrzymujac 2—2,5 g kompozycji enzymów o stopniu czystosci I i aktywnosci trom- bino^podobnej okolo 10—12 jednostek NIH na 1 mg 55 substancji suchej. Produkt ten jest trwaly przy przechowywaniu.Surowy enzym rozpuszcza sie w 40 ml buforu tris-fosforanowego o wartosci pH 6,0 (0,02 mola) i miesza w ciagu 15 minut, po czym usuwa sie sub- 60 stancje nie rozpuszczona przez odwirowanie, czy¬ sta ciecz wylewa z predkoscia 0,8—1,0 ml/minute na kolumne 200 ml DEAE-Sephadexu wyrownowa¬ zona buforem tris-fosforanowym, a nastepnie elu¬ uje 800 ml tego samego roztworu buforowego. 65 Pierwsza frakcje eluatu usuwa sie, po czym eluujen sie enzym 400 ml buforu tris-fosforanowego (0,04 mola), a po wyosobnieniu aktywnego eluatu steza sie go pod cisnieniem na ultrafiltrze UM-10 (AMI- CON) i plucze az do calkowitego uwolnienia go od soli. Wolny od soli koncentrat suszy sie pod ci¬ snieniem nizszym od atmosferycznego nad P2O5 lub liofilizuje, otrzymujac 200—250 mg kompozycji enzymów o stopniu czystosci II i aktywnosci okolo 100^-il5O jednosteik NIH trombiny na 1 mg zawar¬ tosci protein.Nastepnie steza sie koncentrat na ultrafiltrze do objetosci 5 ml, a roztwór filtruje przez szklany filtr prózniowy o porowatosci G-4 w celu usunie¬ cia pylów, po czym pozostawia sie czysty roztwór do odstania w chlodziarce w temperaturze 2°C na okres co najmniej 24 godzin. Wytracone prostokat¬ ne krysztaly kompozycji enzymów wyosabnia sie przez odwirowanie w temperaturze 0—2°C, plucze kilkakrotnie 0,5 ml porcjami wódy destylowanej stosujac równoczesne chlodzenie lodem i wreszcie suszy nad P2O5, otrzymujac 45 mg bezbarwnego produktu o aktywnosci okolo 150—200 jednostek NIH trombiny na 1 mg zawartosci protein.Przyklad II. W 1000 ml 0,9% roztworu NaCl rozpuszcza sie 20 g jadu Bothrops atrox i dopro¬ wadza wartosc pH roztworu do 6,5. Po dodaniu 670 ml nasyconego roztworu siarczanu amonowego pozostawia sie mieszanine do odstania w tempera¬ turze 20°C na okres 1 godziny, a nastepnie odwi¬ rowuje sie ja. Po dodaniu dalszych 552 ml nasy¬ conego roztworu siarczanu amonowego i uplywie 1 godziny odwirowuje sie substancje stala, która nastepnie rozpuszcza sie w 100 ml wody destylo¬ wanej. Wartosc pH roztworu doprowadza sie do 3,5 przez dodanie rozcienczonego kwasu octowego, po czym ogrzewa roztwór w ciagu 1 godziny do temperatury 30°C. Po odwirowaniu ustala" sie war¬ tosc pH cieczy na 5,0 i po dodaniu 3 ml m-krezolu pozostawia sie ja w temperaturze pokojowej na okres 15 godzin.Wytracona substancje wyosabnia sie przez odwi¬ rowanie, plucze dwukrotnie 10 ml porcjami wody nasyconej krezolem, rozpuszcza w 50 ml wody de¬ stylowanej dodajac 1 n NaOH przy pH 8,0. Po usu¬ nieciu nie rozpuszczonej substancji przez odwiro¬ wanie, filtruje sie roztwór przez ultrafiltr AMI- CON UM-10, a nastepnie plucze pozostalosc na fil¬ trze woda destylowana dotad az krezol przestanie byc wykrywalny w popluczynach metoda reakcji z chlorkiem zelazowym, po czym rozpuszcza sie przesacz filtracyjny zawierajacy enzym w 20 ml buforu tris-fosforanowego o wartosci pH 6,0 (0,02 mola).Po usunieciu substancji nie rozpuszczonej przez odwirowanie, wylewa sie roztwór z predkoscia 0,8—1 ml/minute na kolumne 200 ml DEAE-Sep- hadex A-50 wyrównowazona tym samym roztwo¬ rem buforowym, a nastepnie plucze 800 ml buforu tris-fosforanowego o wartosci pH 6,0 (0,02 mola), po czym eiuuje sie trombino-podobny enzym 400 ml buforu tris-fosforanowego o pH 6,0 (0,04 mola), a aktywny eluat steza pod cisnieniem na ultrafil¬ trze i plucze do chwili calkowitego uwolnienia go od soli.Z otrzymanego koncentratu wytwarza sie bezpo- 82807 14 srednio sterylny roztwór do zastrzyków, badz su¬ szy sie go pod obnizonym cisnieniem. Po wysu¬ szeniu otrzymuje sie okolo 200' mg kompozycji enzymów o aktywnosci okolo 120«—-160 jednostek 5 NIH trombiny na 1 mg zawartosci protein.Przyklad III. Kolumne o dlugosci 92 cm i przekroju 1,8 cm2 wypelnia sie Sephadexem G-1O0 wyrównowazonym 10% wodnym roztworem kwasu octowego. 6,26 mg kompozycji enzymów wy- 10 tworzonej w przykladzie I (stopien czystosci II) rozpuszcza sie w 0,3 ml 10% wodnego roztworu kwasu octowego i wylewa ten roztwór na przy¬ gotowana kolumne. Od dolu kolumny przepuszcza sie przez nia ,10% wodny roztwór kwasu octowe- w go z predkoscia 5,6 ml/godzine. Analiza w nadfio¬ lecie wyfeazuje utworziende sde dwóch stref absorp¬ cyjnych w pasmie 280 milimikronów. Po zliofili- zowaniu eluatu z pierwszej strefy, otrzymuje sie 4,25 mg kompozycji enzymów o aktywnosci 200—250 20 jednostek NIH trombiny na 1 mg zawartosci pro¬ tein. 25 PL PL
Claims (7)
1. Zastrzezenia patentowe 1. Sposób wytwarzania preparatu enzymatyczne¬ go z jadu Bothrops atrox lub innego weza, którego jad jest immunologicznie wspólreaktywny z jadem Bothrops atrox, wykazujacego w nizszych dawkach 30 aktywnosc hemostatyczna, a w wiekszych daw¬ kach aktywnosc antykoagulacyjna wobec krwi lu¬ dzi i innych ssaków, znamienny tym, ze wytwarza sie izotoniczny roztwór wodny jadu Bothrops atrox lub innego weza, którego jad jest immunologicznie 35 wspólreaktywny z jadem Bothrops atrox o warto¬ sci pH okolo 4,5—7, a nastepnie albo poddaje sie ten roztwór-frakcyjnemu wytracaniu soli w celu usuniecia substancji balastowych, a nastepnie wy¬ tracenia frakcji zawierajacej enzym, po czym roz- 40 puszcza sie te frakcje w wodzie destylowanej usta¬ lajac wartosc pH roztworu na 3—4, ogrzewa roz¬ twór w temperaturze 30^50°C w ciagu od kilku minut do okolo 2 godzin i doprowadza wartosc pH roztworu do okolo 4—6, albo ustala sie wartosc 45 pH roztworu izotonicznego na 3—4 i ogrzewa sie go w temperaturze 30—50°C w ciagu od kilku mi¬ nut do okolo 2 godzin, po czym wyosabnia sie wytracone proteiny, doprowadza wartosc pH roz¬ tworu do 4,5—7, poddaje go frakcyjnemu wytra- 50 caniu soli w celu usuniecia substancji balasto¬ wych, a nastepnie wytracenia frakcji zawierajacej aktywny enzym, rozpuszcza sie te frakcje w wo¬ dzie destylowanej i doprowadza wartosc pH roz¬ tworu do okolo 4—6, nastepnie do wytworzonego 55 roztworu wprowadza sie fenol lub jego pochodne, w celu wytracenia nierozpuszczalnego kompleksu zawierajacego enzym i albo rozklada sie kompleks przez podzialanie nan rozcienczonym kwasem octo¬ wym w polarnym rozpuszczalniku organicznym 60 i wyosabnia sie uwolniony nierozpuszczony enzym, albo poddaje sie kompleks w srodowisku wodnym reakcji z zasada przy wartosci pH 7,5—8,5 i wy¬ osabnia uwolniony enzym przez ultrafiltracje, dia¬ lize lub filtracje przez zel, a nastepnie oczyszcza 65 sie wytworzony enzym.15 82807 16
2. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze kompozycje enzymów oczyszcza sie metoda chro¬ matografii na zasadowym jonicie.
3. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze frakcyjne wytracanie soli prowadzi sie z zastoso¬ waniem soli kwasów nieorganicznych z amonia¬ kiem, metalami alkalicznymi lub metalami ziem alkalicznych.
4. Sposób wedlug zastrz. 1 i 3, znamienny tym, ze do frakcyjnego wytracania soli stosuje sie siar¬ czan amonowy o wartosci pH 4,5—7, korzystnie okolo 6,5.
5. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze do wytwarzania nierozpuszczalnego kompleksu ja¬ ko pochodne fenolu stosuje sie kwasy fenolokarbo- ksylowe, alkilofenole, chlorowcowane fenole, chlo¬ rowcowane lub alikilowane kwasy fenolókarboksy- lowe lub sole kwasów fenolokarboksylowych badz ich pochodne.
6. Sposób wedlug zastrz. 1 i 5, znamienny tym, ze do wytwarzania nierozpuszczalnego kompleksu stosuje sie fenol, krezol lub salicylan sodowy.
7. Sposób wedlug zastrz. 1, znamienny tym, ze kompozycje enzymów oczyszcza sie metoda chroma¬ tografii na zelu, takim jak polidekstran, polialkry- lamid, agaroza lub agar, stosujac mieszaniny alifa¬ tycznych kwasów karboksylowych, z woda lub mie¬ szaniny wodnych roztworów buforowych z miesza¬ jacymi sie z woda rozpuszczalnikami organicznymi jako srodki eluujace. 10 Druk. Nar. Z.-3, zam. 629/76 Cena 10 zl PL PL
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
CH73371A CH586233A5 (pl) | 1971-01-18 | 1971-01-18 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
PL82807B1 true PL82807B1 (pl) | 1975-10-31 |
Family
ID=4193923
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
PL1972152947A PL82807B1 (pl) | 1971-01-18 | 1972-01-17 |
Country Status (21)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US3849252A (pl) |
AR (1) | AR196298A1 (pl) |
AT (1) | AT321456B (pl) |
AU (1) | AU476722B2 (pl) |
BE (1) | BE778226A (pl) |
BR (1) | BR7200318D0 (pl) |
CA (1) | CA966418A (pl) |
CH (1) | CH586233A5 (pl) |
CS (1) | CS168578B2 (pl) |
DE (1) | DE2201993C2 (pl) |
ES (1) | ES398962A1 (pl) |
FI (1) | FI51485C (pl) |
HU (1) | HU165725B (pl) |
IL (1) | IL38536A (pl) |
NL (1) | NL176955C (pl) |
NO (1) | NO138145C (pl) |
PH (1) | PH15651A (pl) |
PL (1) | PL82807B1 (pl) |
SE (1) | SE407805B (pl) |
SU (1) | SU581872A3 (pl) |
ZA (1) | ZA72132B (pl) |
Families Citing this family (18)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE2615844A1 (de) * | 1976-04-10 | 1977-10-20 | Knoll Ag | Fibrinogen spaltendes enzymsystem |
CH626917A5 (pl) * | 1976-08-17 | 1981-12-15 | Pentapharm Ag | |
US6613324B1 (en) * | 1991-02-28 | 2003-09-02 | Bristol-Myers Squibb Company | Adhesive for the gluing of biological tissues |
CH681693A5 (pl) * | 1991-02-28 | 1993-05-14 | Pentapharm Ag | |
EP0534178B1 (en) * | 1991-09-27 | 2001-04-18 | Omrix Biopharmaceuticals S.A. | Improved tissue glue prepared by using cryoprecipitate |
DE4202667C1 (pl) * | 1992-01-29 | 1993-05-13 | Behringwerke Ag, 3550 Marburg, De | |
DE4203965A1 (de) * | 1992-02-11 | 1993-08-12 | Max Planck Gesellschaft | Antidot fuer hirudin und synthetische thrombininhibitoren |
CN1091315A (zh) * | 1992-10-08 | 1994-08-31 | E·R·斯奎布父子公司 | 血纤维蛋白封闭剂组合物及其使用方法 |
DK0691858T3 (da) * | 1993-03-30 | 2000-05-08 | Omrix Biopharm Sa | Tokomponent fibrinklæber |
US5681815A (en) * | 1993-06-28 | 1997-10-28 | Sophie Chen | Antiviral and antitumor agents |
JP3742675B2 (ja) * | 1995-06-28 | 2006-02-08 | 東菱薬品工業株式会社 | 虚血−再灌流障害の予防および治療薬 |
JP3866800B2 (ja) * | 1996-08-29 | 2007-01-10 | 東菱薬品工業株式会社 | アポトーシス関連疾患の予防及び/又は治療薬 |
JP2001508447A (ja) * | 1997-01-08 | 2001-06-26 | ブリストル−マイヤーズ スクイブ カンパニー | 温度制御手段を備えた遠心分離装置 |
US6132598A (en) * | 1997-01-08 | 2000-10-17 | Bristol-Myers Squibb Company | Centrifuge apparatus with temperature control means |
US6365380B2 (en) | 2000-02-23 | 2002-04-02 | Pcbu Services, Inc. | Method for stereoselectively inverting a chiral center of a chemical compound using an enzyme and a metal catalyst |
CN100335622C (zh) * | 2003-03-28 | 2007-09-05 | 上海万兴生物制药有限公司 | 巴曲酶基因的合成及其表达产物的纯化制备 |
GB2431655A (en) * | 2005-10-27 | 2007-05-02 | Pentapharm Ag | Antagonisation of anticoagulants |
WO2008119203A1 (fr) | 2007-03-30 | 2008-10-09 | Shanghai Wanxing Biopharmaceuticals, Co., Ltd. | Batroxobine recombinante purifiée à haute activité spécifique |
Family Cites Families (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
GB1094301A (en) * | 1964-02-21 | 1967-12-06 | Nat Res Dev | Improvements relating to anticoagulants |
GB1293795A (en) * | 1969-07-04 | 1972-10-25 | Twyford Lab Ltd | Improvements relating to anticoagulants |
-
1971
- 1971-01-18 CH CH73371A patent/CH586233A5/xx not_active IP Right Cessation
-
1972
- 1972-01-10 IL IL38536A patent/IL38536A/xx unknown
- 1972-01-10 ZA ZA720132A patent/ZA72132B/xx unknown
- 1972-01-12 CA CA132,228A patent/CA966418A/en not_active Expired
- 1972-01-14 AU AU37939/72A patent/AU476722B2/en not_active Expired
- 1972-01-14 US US00217994A patent/US3849252A/en not_active Expired - Lifetime
- 1972-01-17 DE DE2201993A patent/DE2201993C2/de not_active Expired
- 1972-01-17 PL PL1972152947A patent/PL82807B1/pl unknown
- 1972-01-17 NL NLAANVRAGE7200638,A patent/NL176955C/xx not_active IP Right Cessation
- 1972-01-18 AT AT39972A patent/AT321456B/de not_active IP Right Cessation
- 1972-01-18 SU SU7201738944A patent/SU581872A3/ru active
- 1972-01-18 SE SE7200546A patent/SE407805B/xx unknown
- 1972-01-18 CS CS311A patent/CS168578B2/cs unknown
- 1972-01-18 ES ES398962A patent/ES398962A1/es not_active Expired
- 1972-01-18 FI FI720109A patent/FI51485C/fi active
- 1972-01-18 NO NO97/72A patent/NO138145C/no unknown
- 1972-01-18 HU HUPE811A patent/HU165725B/hu unknown
- 1972-01-19 BE BE778226A patent/BE778226A/xx unknown
- 1972-01-19 BR BR318/72A patent/BR7200318D0/pt unknown
- 1972-01-19 AR AR240143A patent/AR196298A1/es active
-
1973
- 1973-01-18 PH PH13212A patent/PH15651A/en unknown
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
BE778226A (fr) | 1972-07-19 |
HU165725B (pl) | 1974-10-28 |
AT321456B (de) | 1975-04-10 |
BR7200318D0 (pt) | 1973-10-04 |
NL7200638A (pl) | 1972-07-20 |
IL38536A0 (en) | 1972-03-28 |
CH586233A5 (pl) | 1977-03-31 |
US3849252A (en) | 1974-11-19 |
FI51485B (pl) | 1976-09-30 |
CA966418A (en) | 1975-04-22 |
DE2201993C2 (de) | 1986-09-18 |
SE407805B (sv) | 1979-04-23 |
DE2201993A1 (de) | 1972-08-10 |
ES398962A1 (es) | 1976-01-01 |
NL176955B (nl) | 1985-02-01 |
AR196298A1 (es) | 1973-12-18 |
NO138145C (no) | 1978-07-12 |
PH15651A (en) | 1983-03-11 |
NO138145B (no) | 1978-04-03 |
CS168578B2 (pl) | 1976-06-29 |
AU476722B2 (en) | 1976-09-30 |
ZA72132B (en) | 1972-09-27 |
AU3793972A (en) | 1973-07-19 |
IL38536A (en) | 1975-08-31 |
SU581872A3 (ru) | 1977-11-25 |
NL176955C (nl) | 1985-07-01 |
FI51485C (fi) | 1977-01-10 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
PL82807B1 (pl) | ||
US6103693A (en) | Method for isolation of highly pure von willebrand factor | |
FI95136B (fi) | Menetelmä anneksiinien puhdistamiseksi | |
JPH01193229A (ja) | 抗血液凝固剤 | |
EP1519944B1 (en) | Processes for the preparation of fibrinogen | |
EP0041173B1 (en) | Blood-coagulation-promoting products and methods of preparing them | |
JPS59137417A (ja) | 人尿由来コロニ−形成刺激因子及びカリクレインの製造法 | |
DE2734427C3 (de) | Verfahren zur Gewinnung von thrombinartigen Enzymen aus Schlangengiften | |
KR960007922B1 (ko) | 조직단백질 pp4의 저온살균법 | |
AU659807B2 (en) | Platelet adhesion inhibitor | |
EP0823476B1 (en) | Method for activating prothrombin to thrombin | |
Nahas et al. | Effect of heparin on the coagulant action of snake venoms | |
KR102528707B1 (ko) | 고순도의 히알루로니다제 정제 방법 | |
JPH05503302A (ja) | 巨核球成熟因子 | |
KR101780643B1 (ko) | 효소분해를 이용한 헤파린의 정제 방법 | |
CN1548534B (zh) | 一种蛇毒血凝酶及其生产方法与应用 | |
US4027012A (en) | Process for the extraction of components having anticoagulant activity "in vivo" from snake venoms and products obtained | |
KR100377279B1 (ko) | 트롬빈의제조방법 | |
US4391746A (en) | Blood-coagulation-promoting products and methods of preparing them | |
US2543808A (en) | Method of preparing fibrinogen | |
JPH07291999A (ja) | 血小板安定化因子ix−フラグメント、その製造方法及びこれを含有する薬剤 | |
Ratnoff | A. The Physiology of Blood Coagulation | |
US4039658A (en) | Fibrinolytic substances | |
US4086140A (en) | Process for isolating fibrinolytic substances | |
Yotis | Clotting of citrated plasma by a proteolytic enzyme associated with an antibacterial agent from serum |