PL77194B1 - - Google Patents

Download PDF

Info

Publication number
PL77194B1
PL77194B1 PL1971148113A PL14811371A PL77194B1 PL 77194 B1 PL77194 B1 PL 77194B1 PL 1971148113 A PL1971148113 A PL 1971148113A PL 14811371 A PL14811371 A PL 14811371A PL 77194 B1 PL77194 B1 PL 77194B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
strain
imi
medium
fusarium
solution
Prior art date
Application number
PL1971148113A
Other languages
English (en)
Original Assignee
Ranks Hovis Mcdougall Limited
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ranks Hovis Mcdougall Limited filed Critical Ranks Hovis Mcdougall Limited
Publication of PL77194B1 publication Critical patent/PL77194B1/pl

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23JPROTEIN COMPOSITIONS FOR FOODSTUFFS; WORKING-UP PROTEINS FOR FOODSTUFFS; PHOSPHATIDE COMPOSITIONS FOR FOODSTUFFS
    • A23J3/00Working-up of proteins for foodstuffs
    • A23J3/20Proteins from microorganisms or unicellular algae
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/14Fungi; Culture media therefor
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/14Fungi; Culture media therefor
    • C12N1/145Fungi isolates
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12RINDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/645Fungi ; Processes using fungi
    • C12R2001/77Fusarium
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/804Single cell protein
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S435/00Chemistry: molecular biology and microbiology
    • Y10S435/8215Microorganisms
    • Y10S435/911Microorganisms using fungi
    • Y10S435/929Fusarium

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Nutrition Science (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Description

Uprawniony z patentu: Ranks Hovis McDougall Limited, Londyn (Wiel¬ ka Brytania) Sposób wytwarzania jadalnych substancji zawierajacych bialko Przedmiotem wynalazku jest sposób wytwarzania jadalnych substancji zawierajacych bialko, a zwla¬ szcza bialko grzybowe, poprzez dzialanie drobno¬ ustrojów.Znany jest sposób wytwarzania jadalnych: sub¬ stancji zawierajacych bialko, polegajacy na inkubo- waniu i rozmnazaniu Imperfecti i na wydzielaniu z przyswajalnej, wyjalowionej pozywki weglowoda¬ nowej rozmnozonego organizmu, stanowiacego ja¬ dalna substancje zawierajaca bialko. Wegiel sub¬ stancji odzywczych w postaci przyswajalnego we¬ glowodanu stanowi podloze ograniczajace rozmna¬ zanie.Przedmiotem wynalazku jest sposób otrzymywa¬ nia grzybni posiadajacej wysoka wartosc biologi¬ czna wykorzystania bialka netto (NPU), która to wartosc w próbach prowadzonych na szczurach wynosi co najmniej 70 w przeliczeniu na azot za¬ warty w grupach a-aminowych.Sposób wytwarzania jadalnej substancji zawiera¬ jacej bialko polega wedlug wynalazku na inkubo- waniu i rozmnazaniu wegetatywnym w warunkach aerobowych na pozywce, zawierajacej zasadnicze skladniki pokarmowe podtrzymujace wzrost, nie¬ toksycznego szczepu z rodzaju Fasarium, jego wa¬ riantów lub mutantów i wydzieleniu rozmnozonego organizmu stanowiacego jadalna substancje zawie¬ rajaca bialko.Wegiel substancji wzrostowych w postaci ptrzyswa- 10 15 20 25 30 jalnego weglowodanu jest podlozem ograniczajacym rozmnazanie.Wydzielony rozmnozony organizm, stanowiacy ja¬ dalna substancje zawierajaca bialko, mozna doda¬ wac do srodków zywnosciowych spozywanych przez ludzi i zwierzeta.Podloze stosowane w etapie i inkubacji moze byc pochodzenia roslinnego i skladac sie na przyklad ze skrobi i substancji zawierajacych skrobie lub produktów ich hydrolizy, z sacharozy, z substancji zawierajacych sacharoze lub ze zhydrolizowanej sa¬ charozy, takiej jak cukier inwertowany lub z mie¬ szaniny tych substancji. Podloze moze stanowic na przyklad zhydrolizowana skrobia ziemniaczana, melasa, glukoza, zhydrolizowana skrobia z fasoli lub z manioku. Mozna tez stosowac podloze pocho¬ dzenia zwierzecego zawierajace serwatke. Jako nie¬ toksyczny szczep Fusarium mozna stosowac szczep Fusarium graminearum, a korzystnie szczep Fusa¬ rium giraminearum Schwabe, zdeponowany w Com- monwealth Mycological Institute pod numerem I.M.I. 145425 oraz jego warianty i mutanty.Mozna stosowac równiez ponizsze nowe warianty szczepu, zdeponowane we wspomnianym Instytucie: 1-7 zdeponowany pod numerem I.M.I. 154209, 1-8 zdeponowany pod numerem I.M.I. 154211, 1-9 zde¬ ponowany pod numerem I.M.I. 154212, 1-15 zdepo¬ nowany pod numerem IJM.I. 154213 i 1-16 zdepono¬ wany pod numerem I.M.I. 154210.Nowy szczep Fusarium graminearum Schwabe 7719477194 I.M.I. 145425 nie jest patogenny dla pszenicy. Posia¬ da on nastepujace cechy morfologiczne: Pozywka: Agar ziemniaczano-sacharozowy Zmodyfikowany agar Czapka-Do- W autoklawie umieszcza sie na xa (produkt fir- okres 15 minut pod cisnieniem my Oxoid) 1,05 kG/cm2 250 g umytych, po¬ krajanych w kostke ziemniaków.Wywar cedzi sie przez 2 godziny.Do metnego przesaczu dodaje sie 2% glukozy i 2% agaru, pozywke ogrzewa sie w autoklawie i ro¬ zlewa.Warunki wzrostu: 25°C, kilka tygodni.Tempo wzrostu: 4 cm w ciagu 3 dni, 3 cm w ciagu 3 dni.Typ wzrostu: Klaczkowate kolonie rozprzestrzenio¬ ne na powierzchni pozywki z biala grzybnia po¬ wietrzna.Podloze na agarze ziemniaczano-sacharozowym sza¬ raworózowe z platnikami od purpurowych do zól¬ tych, z tendencja do nieco jasniejszego zabarwienia na agarze Czapka-Doxa. Niekiedy, zwlaszcza pod¬ czas starzenia, grzybnia wytwarza ciemnoczerwony pigment. Po tygodniu lub dwóch grzybnia powie¬ trzna ma tendencje do brazowienia i opadania.Wówczas kolonia staje sie raczej sluzowata, ponie¬ waz powstaje sporodochia, a zabarwienie przecho¬ dzi od rózowego do brazowego na podlozu z agaru ziemniaczano-sacharozowego i lososiowo-rózowego na podlozu z agaru Czapka-Doxa. Nie powstaja zadne wydzieliny, a wytwarzane pigmenty maja tendencje do przyjmowania barwy grzybni.Konidia: Organizm ten nie wytwarza mikrokoni- diów. Makrokonidia wytwarzane sa przez pojedyn¬ cze boczne sterygmy lub przez wielokrotnie rozga¬ lezione konidiofory z krótkimi sterygmami. W star¬ szych kulturach konidiofory skupiaja sie tworzac sporodochium, zwlaszcza na agarze Czapka-Doxa.Konidia maja ksztalt od sierpowatego do ksztaltu grzbietobrzusznie wypuklego wrzeciona i posiadaja od 3 do 5 komórek, w mlodszych hodowlach zazwy¬ czaj 5. Wymiany zarodników wahaja sie od 25—50 \i X2,5—4,0 ia. Komórka dolna ma czesto trzonek, zwlaszcza w dluzszych zarodnikach 5-komórko- wych. W grzybni trafiaja sie komórki nabrzmiale, a niekiedy wystepuja interkalarnie chlamidospory pojedynczo lub w lancuchach.Ponizej opisano przykladowo sposoby otrzymy¬ wania wariantów lub wyizolowanych szczepów Fu- sarium graminearum Schwabe I.M.I. 145425 oraz ich cechy morfologiczne.Wyizolowane szczepy otrzymane z hodowli ciaglych.Fusarium graminearum Schwabe I.M.I. 154209 do 154213 wyselekcjonowano z szalek z agarem brzecz- kowych, zaszczepionych plynna hodowla Fusarium graminearum Schwabe 145245, rosnaca na pozywce glukozowej w temperaturze 30°C w warunkach cia¬ glej hodowli, ograniczanej zawartoscia wegla w po¬ zywce, przy szybkosci jego zuzywania wynoszacej 0,1—0,15/godzine. Z kadzi fermentacyjnej co okolo 100 godzin pobierano próbki w celu badania popu- 10 25 30 35 lacji wariantów, a wyizolowane szczepy I.M.I. 154209 do 154213 pobrano z szalek zawierajacych próbki otrzymane po 1100 godzinach fermentacji.Szczepy te sa charakterystyczne dla wiekszosci ty¬ pów wariantów morfologicznych powstalych pod¬ czas fermentacji.W warunkach podanych w tym przykladzie wa¬ rianty szczepu zaczely pojawiac sie na szalkach po 800 godzinach. Sa one wytwarzane dalej z poste¬ pem czasu z tym, ze populacja powoli zmienia sie, jesli chodzi o udzial procentowy kazdego z typów.Fermentacje prowadzi sie w nastepujacych wa¬ runkach: 15 Roztwór 1 20 Roztwór 2 Pozywka % Glukoza 3,0 Siarczan amonu 0,25 Dwuwodorofosforan potasu 0,30 Siarczan magnezu 0,025 Srodek przeciwpieniacy glikol polipropylenowy o cie¬ zarze czasteczkowym 2000 sterylizowany orzy wartosci pH 3 w ciagu 30 minut pod cisnieniem 2,05 kG/cm2. 0,01 MnS04 • 4H2O 0,0005 FeSG4 • 7H2O 0,0005 ZnS04 • 7HaO 0,0005 C0CI2 • 6H2O 0,0001 CnS04 • 5H2O 0,0001 NaMoQ4 • 2H2O 0,0001 Sterylizowany w ciagu 2,05 kG/cm2 Roztwór 3 Biotyna Cholina Metionina 15 minut pod cisnieniem 0,10 lub 0,20 ^g/litr 0,10 lub 2 mg/litr 0 lub 600 mg/litr 40 Sterylizowany oddzielnie przez filtracje.Wszystkie roztwory dodawano, w miare potrzeby aseptycznie, do zbiornika z pozywka, a nastepnie umieszczono w chemositacie o pojemnosci 8,5 litra, 45 w którym panowaly nastepujace warunki wzrostu: temperatura 30^C, napowietrzenie w ilosci 1 oboje- tosc powietrza na jednostke objetosci w ciagu 1 minuty, mieszanie z szybkoscia 800 obrotów na mi¬ nute za pomoca turbiny o tarczy z 6 lopatkami, 50 0,5D, naczynie fermentacyjne wyposazone w prze¬ grody. W zbiorniku fermentacyjnym utrzymuje sie stala wartosc pH 5 za pomoca automatycznego do¬ dawania sterylnego amoniaku. Sklad roztworu 3 zmieniano przy róznych czasach w celu okreslenia 55 u max (maksymalne tempo wzrostu) z róznymi dodatkami, takimi jak sama biotyna lub biotyna wspólnie z cholina. Tempo wzrostu wynosilo 0,1— —0,15/godzine-1.Piec wyizolowanych szczepów posiada nastepuja¬ ce cechy morfologiczne: Pozywka: Agar ziemniaczanó-sacharozo- Agar Czapka- wy. W autoklawie umieszcza sie -Doxa (produk- 65 pod cisnieniem 1,05 kG/cm2 na cji firmy Oxoid)77194 5 okres 15 min. 250 g umytych, pokrajanych w kostke ziemnia¬ ków. Wywar cedzi sie przez 2 warstwy gazy. Do metnego prze¬ saczu dodaje sie 2% glukozy i 2% agaru, pozywke ogrzewa sie w autoklawie i dysperguje.Warunki wzrostu: temperatura 25°C.Typ wzrostu: Wyizolowany szczep 1-7 Kolonia jest morfologicznie podobna do kolonii ro¬ dzicielskiej A 3/5 z ta róznica, ze jej srednica jest mniejsza i po 3 dniach wzrostu w temperaturze 30°C ma pozywce Czapka-Doxa wynosi 1,5 cm. Sto¬ pien klaczkowatosci grzybni powietrznej jest rózny w róznych koloniach, ale mniejszy niz w wyizolowa¬ nym szczepie 1-8. Grzybnie starszych hodowli po¬ siadaja splowiala barwe brazowa. Powracaja sek¬ tory o zabarwieniu od zóltobrazowego do szarawo- -rózowego z pewnym przechodzeniem pigmentu do pozywki.Wyizolowany szczep 1-8.Bardzo silne biale klaczki grzybni powietrznej. Sre¬ dnica kolonii równiez mniejsza niz kolonii rodzi¬ cielskiej A 3/5 i po 3 dniach wzrostu nia pozywce Czapka-Doxa w temperaturze 30°C wynosi 2 cm.Powracaja segmenty o zabarwieniu od lososiowo- -rózowego do szaraworózowego.Wyizolowany szczep 1-9.Makroskopowo zblizony do wyizolowanego szczepu 1-8, lecz tracac barwe lososiowa staje sie szklisty.Wyizolowany szczep 1-15.Male, zbite, kopulaste kolonie. Grzybnia krótka, poplatana, z tendencja do falistosci. Powstaja licz¬ ne struktury, sporadochiopodobne, które w punkcie szczepienia rozmazem robia wrazenie rózowych.Rózowe zabarwienie na krancach. Srednica kolonii po 3 dniach wzrostu na pozywce Czapka-Doxa w temperaturze 30°C wynosi tylko 0,4 cm.Wyizolowany szczep 1-16.Wyizolowany szczep 1-16 jest bardzo niestaly i nie¬ ustannie w jego hodowli pojawia sie szczep 1-16.Szczep ten ma wyglad podobny do wyizolowanego szczepu 1-7, chociaz jego kolonie maja tendencje wyrastania do nieco wiekszych srednic. Po 3 dniach wzrostu wystepuja srednice 2,4 cm, a nawet wie¬ ksze.Konidia. Wyizolowany szczep 1-7.Powstaja liczne makrokonidia, podobnie jak w szczepie rodzicielskim A 3/5. W starszych koloniach powstaja sporodachia. Pojedyncze makrokonidia ma¬ ja ksztalt i wymiary podobne do szczepu rodziciel¬ skiego A 3/5, a mianowicie 25—50/^X3—5^. W star¬ szych hodowlach twarzy sie wiele sporodochiów.W grzybni tego szczepu wystepuja równiez liczne chlamidospory, interkalarne i teminalne. Maja one ksztalt gladkich kulek o wymiarach 10—12//. Nie¬ kiedy pojedyncza chlamidospora powstaje z poje- 5 dynczej komórki makrokonidium.Wyizolowany szczep 1-8.Makrokonidia mniej liczne niz w wyizolowanym 10 szczepie 1-7, a te, które istnieja, przewaznie mniej¬ sze i prostsze, 1—3-komórkowe o dlugosci 25—35 fi tworza nieliczne sporodochia, natomiast liczne chla¬ midospory, interkalarne, terminalne, pojedyncze i w lancuchach. 15 20 30 Wyizolowany szczep 1-9.Bardzo podobny do wyizolowanego szczepu 1-8 z ta róznica, ze posiada wiecej makrokonidiów, nie¬ mal w takiej ilosci jak w wyizolowanym szczepie 1-7.Wyizolowany szczep 1-15.Bardzo nieliczne makrokonidia o strukturach typu 25 sporodochium, sa w rzeczywistosci utworzone ze zgrupowan chlamidospor. Liczne chlamidospory wystepuja takze w grzybni. Makrokonidia mniejsze niz w szczepie rodzicielskim, tylko 2-komórkowe o wymiarach 30—35^X4/*.Wyizolowany szczep 1-16.Bardzo podobny do wyizolowanego szczepu 1-7, z licznymi makrokonidiami i chlamidosporami. Ma- 35 krokonidia typowe, o wymiarach 30—45^X4/*.W sposobie wedlug wynalazku temperature inku¬ bacji utrzymuje sie zazwyczaj w granicach 25— —34°C, korzystnie okolo 30°C. Szczepienie inicjujace proces najlepiej prowadzic poprzez etap wstepnego 40 skielkowania zarodników, wykorzystujac na przy¬ klad 2—10% inokulum, zazwyczaj 5—10%. Pod¬ czas inkubacji wartosci pH pozywki korzystnie utrzymuje sie w odpowiednim przedziale, zapew^ niajacym maksymalny wzrost, na przyklad 3,5—7. 45 W tych warunkach czas wzrostu w hodowli okre¬ sowej wynosi zazwyczaj 20—48 godzin.Zarówno w procesach hodowli ciaglej, jak i okre¬ sowej, nalezy prowadzic napowietrzanie i mieszanie w celu zapewnienia w brzeczce odpowiedniej ilosci 50 rozpuszczonego tlenu, którego brak moze stanowic czynnik ograniczajacy wzrost. Jest rzecza oczywi¬ sta, ze w pozywce podloza znajduja sie takie pod¬ stawowe skladniki odzywcze jak azot, siarka, fosfor i inne sladowe pierwiastki, tak, ze wzrost w zasa- 55 dzie jest ograniczony tylko przez weglowodan przy¬ swajalny dla grzyba. Ponadto, oprócz wyzej wymie¬ nionych skladników pokarmowych, dla utrzymania maksymalnego tempa wzrostu pozadana jest obe¬ cnosc w pozywce jednej lub wiecej witamin, takich 6o jak na przyklad biotyna. W celu regulacji wydzie¬ lania piany podczas fermentacji korzystnie jest do¬ dawac do pozywki podloza nietoksyczny srodek przeciwpieniacy.Substancje wytwarzana sposobem wedlug wyna- 65 lazku wydziela sie w dowolny znany sposób. Tak77194 na przyklad powstala grzybnie mozna odzyskac po¬ przez oddzielenie, przemycie, filtracje i wysuszenie.Stwierdzono jednak, ze jesli przy stosowaniu filtra¬ cji pod cisnieniem wilgotnosc otrzymywanej sub¬ stancji obnizy sie ponizej krytycznego poziomu wy¬ noszacego okolo 50% wagowych, to dalej mozna prowadzic suszenie w nieco wyzszej temperaturze, co jest bardzo wazne z punktu widzenia ekonomi¬ ki procesu otrzymywania tych substancji. Suszenie nie powinno niszczyc wartosci odzywczych grzybni, która suszy sie w strumieniu powietrza o tempe¬ raturze 75°C lub przez wynirazanie.Grzybnia wytwarzana sposobem wedlug wynalaz¬ ku przejawia bardzo dobra zdolnosc wiazania wody i moze sluzyc jako srodek zageszczajacy i zelujacy.Po obróbce zachowuje ona witaminy jak równiez inne przyswajalne substancje odzywcze, takie jak lipidy i nieco weglowodanów. Grzybnia ta ma za¬ dowalajace wlasciwosci wypiekowe, co ma duze znaczenie w przypadkach chlebów wzbogaconych bialkiem, spozywanych jako pozywienie. Ponadto, dzieki wlóknistej strukturze, grzybnie otrzymana sposobem wedlug wynalazku mozna wypiekac, smazyc lub gotowac na parze i podawac ludziom jako pozywienie porównywalne pod wzgledem wy¬ gladu i przyswajalnosci z pozywieniem tradycyj¬ nym, do którego nawykli.Sposób wedlug wynalazku wyjasniono w naste¬ pujacych przykladach. Przyklad 1—4 odnosza sie do hodowli okresowej.Przyklad I. W naczyniu fermentacyjnym wy¬ posazonym w mieszadlo przygotowuje sie i wyjala¬ wia 10 litrów pozywki o nastepujacym skladzie, przy czym procenty oznaczaja liczbe gramów na 100 ml pozywki: Melasa z trzciny cukrowej dostarczajaca 6% cukru Siarczan amonu 1,2% NaH2PCU 0,25% Wyjalawiac w ciagu 30 minut pod cisnieniem 2,05 kG/cm2.OaCOs 0,5% Wyjalawiac 3 godziny pod cisnieniem 2,05 kG/cm2.Skladniki pozywki dodaje sie w warunkach ase- ptycznych i ochladza do temperatury 30°C. Inoku- lum w ilosci równej 5—10% objetosci pozywki, wy¬ hodowane na wstrzasarce na pozywce z glukozy i wyciagu namokowego kukurydzy lub na innych odpowiednich pozywkach, szczepi sie zawiesina za¬ rodników szczepu Fusarium graminearum Schwabe I.M.I. 145425, hoduje w ciagu 18—24 godzin w tem¬ peraturze 30°C na wstrzasarce obrotowej i dodaje w warunkach aseptycznych do kadzi fermentacyj¬ nej.Brzeczke inkubowana w temperaturze 30°C mie¬ sza sie w naczyniu wyposazonym w przegrody za pomoca 6-lopatkowej turbiny tarczowej (0,5 D) z szybkoscia 800. obrotów/minute, przepuszczajac przez nia wysterylizowane powietrze w ilosci i ob¬ jetosci powietrza na jednostke objetosci pozywki w ciagu 1 minuty. Po 35 godzinach dojrzala grzyb¬ nie usuwa sie z brzeczki, odwirowuje, przemywa woda i suszy w strumieniu powietrza o tempera- b turze 75°C w suszarce tasmowej. Suchy produkt ma nastepujacy sklad: Azot calkowity 8% Popiól 5,3% Lipidy 2,7% NPU optymalne 52% 10 30 40 45 50 55 60 w przeliczeniu na azot calkowity Przyklad II. W 14-litrowej kadzi fermentacyj- 15 nej typu Microferm, New Brunswick, przygotowano 10 litrów pozywki o nastepujacym skladzie: roztwór 1 Glukoza pH 3,0 3,0 20 roztwór 2 Siarczan amonu 0,7 roztwór 3 Dwuwodorofosforan po¬ tasu pH 5,0 1,0 roztwór 4 FeSCU • 7H20 pH 2,5 0,001 25 MnS04 • 4H20 0.0005 CuS04 • 5H20 0,0001 MgSG4 • 7*1*0 0,025 roztwór 5 NagMoCU • 2H20 0,0001 CoCl2 • 6H20 0,0001 CaCl2 • 2H20 roztwór 6 NaOH 0,0015 0,1 Kazdy z wymienionych roztworów wyjalowiano przez ogrzewanie w ciagu 15 minut pod cisnieniem 2,05 kG/cm2.Roztwór 7. Opisane nizej witaminy i (lub amino¬ kwasy) wyjalowiane przez filtracje.Przygotowane roztwory dodawano do naczynia w warunkach aseptycznych. Inokulum hodowano jak w przykladzie I z ta róznica, ze jego stezenie koncowe bylo tak dobrane, aby w kadzi fermenta¬ cyjnej zapewnic zawartosc suchej grzybni w ilosci 0,5 g/litr. Hodowle prowadzono w nastepujacych warunkach: temperatura 30°C, napowietrzanie i ob¬ jetosc powietrza na jedna objetosc pozywki w cia¬ gu 1 minuty, szybkosc mieszania taka, aby ilosc tlenu rozpuszczonego w pozywce przekraczala 25% wartosci nasycenia, mierzonej metoda New Brun¬ swick Inc., DO. W celu tlumienia piany dodaje sie jako srodek przeciwpieniacy odpowiednia ilosc ste¬ rylnego glikolu polipropylenowego o ciezarze cza¬ steczkowym 2000. Przy pomocy dodawanego ste¬ rylnego roztworu wodorotlenku potasowego utrzy¬ muje sie wartosc pH pozywki w granicach 6—6,3.Bez roztworu 7 (pozywka mini¬ malna) Roztwór 7 dodany w takiej ilos¬ ci, ze koncowe stezenie biotyny w pozywce wynosilo 50 ^ug/litr Tempo wzrostu na 1 godzine bardzo wolno 0,277194 10 Hoztwór T dodany w takiej ilos¬ ci, ze koncowe stezenie biotyny w pozywce wynosilo 50 jUg/litr chlorku choliny 30 mg/litr, a rmetióniny 300 mg/litr. 0,25 Przyklad III. Zachowano pozywke i warunki jak w przykladzie II z ta róznica, ze glukoze za¬ stapiono maltoza.Roztwór 7 dodawano w takiej ilosci, ze koncowe stezenie bio¬ tyny w pozywce wynosilo 50 /^g/litr.Boztwór 7 dodany w takiej ilos¬ ci, ze koncowe stezenie biotyny w pozywce wynosilo 50 //g/litr, -chlorku choliny 30 mg/litr, a metioniny 300 mg/litr.Tempo wzrostu na 1 godzine 0,18 0,21 Przyklad IV. W kadzi fermentacyjnej, wyko¬ nanej z nierdzewnej stali, o pojemnosci 130 litrów, przygotowano 100 litrów pozywki o nastepujacym skladzie koncowym: Clukoza Wyciag namokowy kukurydzy (50% suchej masy) Siarczan amonu Dwuwodorofosforan potasu MgS04 • 7H20 ZnS04 • 7H2O FeS04 • 7H20 MnS04 • 4H20 Stezenie koncowe % 4 0,8 0,2 0,2 0,025 0,0005 0,0005 0,0001 Pozywke wyjalawia sie przy wartosci pH 3 w ciagu 30 minut pod cisnieniem 205 kG/cm2 i po ochlodzeniu do temperatury 30°C doprowadza sie wartosc pH pozywki do 5 dodajac wyjalowiony amoniak. Nastepnie w warunkach aseptycznych do pozywki dodano biotyne wyjalowiona przez filtra¬ cje w takiej ilosci, aby jej ostateczne stezenie wy¬ nosilo 40 wg/litr. Zawartosc kadzi fermentacyjnej zaszczepiono 10 litrami kultury wyhodowanej w zraszanym naczyniu w ciagu 18 godzin w tempera¬ turze 30°C na pozywce zawierajacej 2% glukozy, 0,4% tryptonu (produkcji firmy Oxoid), 0,1% ek¬ straktu drozdzowego (produkcji firmy Oxoid), O—15% siarczanu amonowego, 1% dwuwodorofos- foranu potasowego, 0,1% wodorotlenku sodowego, 0,025% siarczanu magnezowego, 0,001% siarczanu zelazowego, 0,001% siarczanu cynku, 0,0005% siar¬ czanu magnezowego i 0,001% siarczanu miedzio¬ wego, do której to pozywki jako srodka tlumiace¬ go piane dodawano 0,05% glikolu polipropyleno¬ wego o ciezarze czasteczkowym 2000. Pozywke te wyjalowiano w ciagu 45 minut przy cisnieniu 2,05 kG/cm2 i zaszczepiano zawiesina zarodników 10 15 20 25 40 45 50 55 60 naszego szczepu Fusarium graminearum Schwabe I.M.I. 145 425. Zapewniono nastepujace warunki wzrostu: temperatura 30°C, napowietrzanie brzecz¬ ki zabezpieczajace ilosc rozpuszczonego tlenu prze¬ kraczajace 10% wartosci nasycenia. W celu tlumie¬ nia piany, jako srodek przeciwpieniacy stosowano sterylny glikol polipropylenowy o ciezarze czastecz¬ kowym 2000. Za pomoca dodawanego wyjalowione¬ go amoniaku utrzymuje sie wartosc pH pozywki równa 5. Próbki grzybni pobrane po okresie wzro¬ stu, po wysuszeniu zawieraja: azotu calkowitego 8—8,6%, azotu w grupach anaminowych 6,4—6,6%.Poczatkowe tempo wzrostu na zastosowanej kom¬ pleksowej pozywce zarówno w przypadku pozywki hodowli okresowej jak i inekulum wynosilo okolo 0,3/godzine.Nastepne przyklady V, VI, VII odnosza sie do hodowli ciaglych.Przyklad V. Sporzadzono pozywke o nastepu¬ jacym skladzie: Roztwór 1.Glukoza Siarczan amonu Dwuwodorofosforan potasu Siarczan magnezu Srodek przeciwpieniacy — < glikol propylenowy o ciezarze czastecz¬ kowym 2000.Stezenie koncowe % 3 0,25 0,3 0,025 04 35 Roztwór sterylizuje sie przy wartosci pH 3 w ciagu 30 minut pod cisnieniem 2,05 kG/cm2.Roztwór 2 MnS04 • 4H20 FeS04 • 7H20 ZnSC4 • 7H2O C0CI2 • 6HaO CuS04 • 5HsO NaMoQ4 • 2H2O 0,0005 0,0005 0,0005 0,0001 0,0001 0,0001 Roztwór sterylizuje sie w ciagu 15 minut pod cis¬ nieniem 2,05 kG/cma. * ¦ Roztwór 3. Witaminy i/lub aminokwasy, jak poda¬ no nizej, sterylizowane przez filtracje.Wszystkie roztwory dodawano, w miare potrzeby, w warunkach aseptycznych. W chemostacie o poje¬ mnosci 8,5 litrów zapewniono nastepujace warunki wzrostu: temperatura 30°C, napowietrzenie w ilosci 1 objetosci powietrza na jedna objetosc pozywki w ciagu 1 minuty, mieszanie przy pomocy poje¬ dynczej turbiny z 6 lopatkami na tarczy, 0,5 D — naczynie fermentacyjne wyposazone w przegrody.Wzrastajacy organizm stanowi szczep Fusarium graminearum Schwabe I.M.I. 145 425. Za pomoca automatycznego dodawania amoniaku utrzymywa¬ no wairtosc pH równa 5. Wyniki podano w ta¬ blicy 1. )11 77 194 Tablica 1 12 Roztwór Roztwór 3 dodany w ta¬ kiej ilosci, ze koncowe stezenie biotyny w po¬ zywce wynosi 20 jig/litr.Roztwór 3 dodany w ta¬ kiej ilosci, ze koncowe stezenie biotyny w po¬ zywce wynosi 20 g/litr, a metioniny 600 ^g/litr. fx max 1 godz. 0,17— —0,19 0,20— —0,21 Wspólczyn¬ nik wydaj¬ nosci 0,5 0,5 Grzybnia Azot calko¬ wity % 7,2—7,9 7,7—8,6 Azot w gru¬ pach a-ami- nowych % 6,3—6,8 6,1—6,5 NPU w przeli¬ czeniu na azot calkowity 54 59 NPU w przeli¬ czeniu na azot] w grupach -amonowych 1 65 78 Przyklad Via. Przygotowano pozywke o na¬ stepujacym skladzie: % Skrobia fasolowa (zadana a-amylaza)-weglo¬ wodanu 3 wyciag namokowy kukurydzy 1,33 siarczan amonu 0,25 dwuwodorofosforan potasu 0,15 20 glikol polipropylenowy o ciezarze czastecz¬ kowym 2000 jako srodek przeciwpieniacy 0,025 Pozywke sterylizowano przy wartosci pH 4 w ciagu 30 minut pod cisnieniem 2,05 kG/cm* 25 i umieszczano w chemostacie o pojemnosci 8,5 litra, zapewniajac takie same warunki wzrostu jak w przykladzie V z ta róznica, ze wartosc pH zmie¬ nila sie od 3,5 do 6, a tempo wzrostu przez caly czas wynosilo 0,l/godzine. siarczan magnezu 0,025 30 Otrzymano wyniki podane w tablicy 2.Produkt produkt hodowany przy wartosci pH 4 produkt hodowany przy wairtosci pH 5 produkt hodowany przy wartosci pH 6 Tablica 2 Azot calkowity % 7,8 8,6 7,7 Azot zwiazany w grupach a-ami- nowych % 6,6 7,1 5,9 NPU w przelicze¬ niu na azot cal¬ kowity 54 57 61 NPU w przelicze¬ niu na azot w grupach a-amino- wych 67 71 80 Przyklad VIb. Pozywke i warunki wzrostu stosowano jak w przykladzie Via z tym, ze przez caly czas utrzymywano wartosc pH brzeczki równa 5, natomiast temperature procesu zmieniono od 26 do 34°C. Stwierdzono, ze optymalna jest temperatu¬ ra od 30 do 32°C.Przyklady VII-IX opisuja fermentacje 5 wa¬ riantów lub szczepów wyizolowanych ze szczepu Fusarium graminearum Schwabe I.M.I. 145 425.Przyklad VII. W dwóch kolbach do hodowli na wstrzasarce o pojemnosci po 1 litr umieszczono po 200 ml. pozywki skladajacej sie z nastepujacych roztworów: « Roztwór 2. 50 55 Siarczan amonu Dwuwodorofosforan potasu MgS04 . 7H20 FeS04 • (NH4)2S04 • 6H20 MnS04 • 4HsjO CuS04 • 5Hj£ CoCl2 . 6H20 CaCl2 • 2H20 Na2Mo04 • 2H20 NaOH 0,565 1,00 0,025 0,0005 0,0005 0,0001 0,0001 0,0015 0,00001 0,2 Roztwór 1.Stezenie koncowe % Glukoza (sterylizowana oddzielnie przy wartosci pH 3 w ciagu 10 minut pod cisnieniem 0,7 kG/cm2} 65 Sole sterylizowano w ciagu 15 minut pod cisnie¬ niem 2,05 kG/cm2. Koncowa wartosc pH roztworu wynosi 6.Roztwór 3. Opisane nizej witaminy sterylizowane- przez filtracje.77194 13 14 Roztwory dodawano do kolb w warunkach asc¬ etycznych do otrzymania koncowej objetosci 200 ¦.ml. Nastepnie zawartosc kolb szczepiono przemyty¬ mi zarodnikami naszego szczepu Fusarium grami- .Jieamim 1-7 I.M.I. 154 209 do osiagniecia stezenia 8X103/ml. Zapewniono nastepujace warunki wzro¬ stu: temperatura 30°C, wstrzasanie na wstrzasarce obrotowej o 140 obr./mdnute i skoku 5,08 mm. Co godzine mierzono tempo wzrostu za pomoca pomia¬ ru gestosci optycznej próbki przy 600 m\i..Na podstawie otrzymanych wyników stwierdzono nastepujace tempo wzrostu: Tempo wzro¬ stu/godzine Bez roztworu 3 (pozywka mini- bardzo wolne malina) Roztwór 3 dodano w takiej ilos¬ ci, ze koncowe stezenie biotyny w pozywce wynosilo 50 //g/litr 0,22 Roztwór 3 dodano w takiej ilos¬ ci, ze koncowe stezenie biotyny w pozywce wynosilo 50 ^g/litr, a chlorku choliny 50 mg/litr. 0,27 Przyklad VIII. Postepowano jak w przykla¬ dzie VII z ta róznica, ze szczep 1-7 zastapiono szczepem Fusarium graminearum Schwabe 1-8.Stwierdzono nastepujace szybkosci wzrostu.Tempo wzro¬ stu/godzine Bez roztworu 3 (pozywka mini- bardzo wolne malna) Roztwór 3 dodawano w takiej Ilosci, ze koncowe stezenie bioty¬ ny w pozywce wynosilo 50 \i g/litr 0,22 Roztwór 3 dodawano w takiej ilosci, ze koncowe stezenie bio¬ tyny w pozywce wynosilo 50 yt, g/litr, a chlorku choliny 50 mg/litr. 0,27 Przyklad IX. Postepuje sie jak w przykladzie Tli z ta róznica, ze szczep 1-7 zastapiono naszym szczepem Fusarium graminearum Schwabe 1-9. tStwierdzono nastepujace tempo wzrostu.Tempo wzro¬ stu/godzine Bez roztworu 3 (pozywka mini- bardzo wolne malna) Roztwór 3 dodawano w takiej ilosci, ze koncowe stezenie bioty¬ ny w pozywce wynosilo 50 p g/litr 0,21 Roztwór 3 dodawano w takiej ilosci, ze koncowe stezenie bio¬ tyny w pozywce wynosilo 50 u g/Mtr, a chlorku choliny 50 mg/litr. 0,27 Przyklad X. Postepuje isie jak w przykladzie "VII z ta róznica, ze szczep 1-7 zastapiono naszym szczepem Fusatrium graminearum Schwabe 1-15 Stwierdzono nastepujace tempo wzrostu: Tempo wzro- 5 stu/godzine Bez roztworu 3 (pozywka mini- bardzo wolne malna) Roztwór 3 dodawano w takiej ilosci, ze koncowe stezenie bioty- 10 ny w pozywce wynosilo 50 p g/litr 0,21 Roztwór 3 dodawano w takiej ilosci, ze koncowe stezenie bio¬ tyny w pozywce wynosilo 50 u 15 g/Mtr, a chlorku choliny 50 mg/litr. 0,27 Przyklad XI. Postepuje sie jak w przykladzie VII z ta róznica, ze szczep 1-7 zastepuje sie naszym 20 szczepem Fusarium graminearum Schwabe 1-16.Stwierdzono nastepujace tempo wzrostu: Tempo wzro¬ stu/godzine 25 Bez roztworu 3 (pozywka mini- bardzo wolne malna) Roztwór 3 dodawano w takiej ilosci, ze koncowe stezenie bioty¬ ny w pozywce wynosilo 50 /ll 30 g/litr 0,21 Roztwór 3 dodawano w takiej ilosci, ze koncowe stezenie bio¬ tyny w pozywce wynosilo 50 fi g/litr, a chlorku choliny 50 35 mg/litr. 0,27 Przyklad XII. Postepuje sie jak w przykla¬ dzie VII z ta róznica, ze szczep 1-7 zastepuje sie rodzicielskim szczepem Fusarium graminearum 40 Schwabe I.M.I. 145 425. Stwierdzono nastepujace tempo wzrostu: Tempo wzro¬ stu/godzine 45 Bez roztworu 3 (pozywka mini- bardzo wolne malna) Roztwór 3 dodawano w takiej ilosci, ze koncowe stezenie bioty¬ ny w pozywce wynosilo 50 [i 50 g/litr 0,22 Roztwór 3 dodawano w takiej ilosci, ze koncowe stezenie bio¬ tyny w pozywce wynosilo 50 \i g/litr, a chlorku choliny 50 55 mg/litr. 0,27 Przyklady XIII i XIV opisuja fermentacje prze¬ prowadzona przez inne szczepy Fusarium niz Fu¬ sarium graminearum. 60 Przyklad XIII. Brzeczka posiewowa w ilosci 80 litrów zawierajaca glukoze i wyciag namokowy kukurydzy zaszczepiono zawiesina zarodników szczepu Fusarium solani. Po wyrosnieciu, gdy ste¬ zenie brzeczki posiewowej osiagnie 10—20 g/litr 65 dzieli sie ja na dwie porcje po 40 litrów kazda,77194 15 umieszczajac je w 400-litrowych naczyniach. Po¬ siew szczepi sie na pozywce o nastepujacym skla¬ dzie: 0/ /o 16 Skrobia KHtP04 (NH^jSCU Wyciag namokowy kukurydzy (50% suchej masy) 6 0,20 0,25 0,50 Wzrost odbywa sie w nastepujacych warunkach: wartosc pH utrzymuje sie na poziomie 5,5 dodajac sterylny amoniak: temperatura wynosi 30°C, cis¬ nienie 4,1 kG/cm2. Szybkosc przeplywu powietrza 1, objetosc powietrza na jedna objetosc pozywki w ciagu minuty. Obroty mieszadla zwieksza sie stop¬ niowo z 92 do 184 obr./minute w celu utrzymania odpowiedniej ilosci rozpuszczonego w brzeczce tle¬ nu. Mieszadlo sklada sie -z 2 turbin 0,4 D. Po zu¬ zyciu weglowodanu zawartego w pozywce wyros¬ nieta grzybnie usuwa sie, saczy, przemywa woda, odwirowuje i suszy w cieplym powietrzu o tempe¬ raturze 75°C w suszami tasmowej.Suchy produkt ma nastepujacy sklad: azot calkowity popiól 9,1% 8,3% azot calkowity popiól NPU optymalne 9,9% 10,8% 47,0 w przeliczeniu na azot calkowity.Zawartosc calkowitego azotu okreslono automatycz¬ nym analizatorem Kjeldahla (Technicon) patrz A.Ferrari, Amn, N.Y.Sci. 87, 792 (1969).Azot zwiazany w grupach aminowych oznaczano zmodyfikowana metoda TNBS, patrz M.A. Pinine- gar, Technicon Symposium 1965, str. 80. PL PL PL PL PL

Claims (3)

1. Zastrzezenia patentowe 1. Sposób wytwarzania jadalnych substancji za¬ wierajacych bialko, znamienny tym, ze nietoksycz- 10 25 Podawany szczurom produkt wykazuje optymalna wartosc ' biologiczna wykorzystania bialka netto 30 równa 41 w przeliczeniu na azot calkowity. Przyklad XIV. Hodowano szczep Fusarium oxysporum A 9-23 (I.M.I. 154 214) jak w przykla¬ dzie XIII z ta róznica, ze skrobie zastapiono melasa z trzciny cukrowej w takiej ilosci, aby otrzymac stezenie cukrów 6%. Suchy produkt ma nastepuja¬ cy sklad: 35 55 ny szczep z rodzaju Fusarium, jego wariant lub mutant, inkubuje sie i rozmmaza wegetatywnie w warunkach aerobowych na pozywce zawierajacej zasadnicze skladniki pokarmowe podtrzymujace* wzrost, których wegiel w postaci przyswajalnego^ weglowodanu stanowi substrat ograniczajacy roz¬ mnazanie wegetatywne i z której wydziela sie roz¬ mnozony organizm zawierajacy substancje bialko¬ wa.
2. Sposób wedlug zastrz. 1. znamienny tym, ze utrzymuje sie temperature inkubacji 25—34°C.
3. Sposób wedlug zastrz. 1 i 2, znamienny tym, ze wartosc pH pozywki podczas inkubacji utrzymuje sie w granicach 3,5—7, 4. Sposób wedlug zastrz. 1—3, znamienny tym, ze do pozywki dodaje sie nietoksyczny srodek przeciw¬ dzialajacy powstawaniu piany. 5. Sposób wedlug zastrz. 1—4, znamienny tym, ze szczepienia inicjujace proces prowadzi sie poprzez etap wstepnego skielkowania, wykorzystujac 2—10% inokulum. 6. Sposób wedlug zastrz. 1—5, znamienny tym, ze proces prowadzi sie w hodowli ciaglej. 7. Sposób wedlug zastrz. i—5, znamienny tym, ze proces prowadzi sie w hodowli okresowej. 8. Sposób wedlug zastrz. 7, znamienny tym, ze hodowle prowadzi sie w ciagu 20—48 godzin. 9. Sposób wedlug zastrz. 1—8, znamienny tym, ze stosuje sie pozywke hodowlana zawierajaca jedna lub kilka witamin. 10. Sposób wedlug zastrz. 9, znamienny tym, ze jako witamine stosuje sie biotyne. 11. Sposób wedlug zastrz. 9, znamienny tym, ze jako witamine stosuje sie choline. 12. Sposób wedlug zastrz. 1—11, znamienny tym, ze jako nietoksyczny szczep Fusairium stosuje sie szczep Fusarium graminearum, Fusarium solani lub Fusarium oxysporum. 13. Sposób wedlug zastrz. 1—12, znamienny tym, ze jako nietoksyczny szczep stosuje sie szczep Fu¬ sarium graminearum Schwabe IMI 145 425. 14. Sposób wedlug zastrz. 1—12, znamienny tym, ze jako nietoksyczny szczep Fusarium stosuje sie wariant IMI 154 209, IMI 154 211, IMI 154 212, IMI 154 213 lub IMI 154 210 rodzicielskiego szczepu Fu¬ sarium graminearum Schwabe IMI 145 425. ERRATA Str. 1 w glówce, drugi wiersz „Pierwszenstwo" jest: dla zastrz. 2, 11 i 14 powinno byc: dla dasta. 2—11 i 14 Zaklady Typograficzne Lódz, zam. 94/75 — 100 egz. Cena lt zl PL PL PL PL PL
PL1971148113A 1970-05-14 1971-05-12 PL77194B1 (pl)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GB2345270 1970-05-14
GB3058470 1970-06-24

Publications (1)

Publication Number Publication Date
PL77194B1 true PL77194B1 (pl) 1975-04-30

Family

ID=26256522

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL1971148113A PL77194B1 (pl) 1970-05-14 1971-05-12

Country Status (24)

Country Link
US (1) US4294929A (pl)
JP (1) JPS5746357B1 (pl)
AR (1) AR199545A1 (pl)
AT (1) AT303649B (pl)
BE (1) BE767232A (pl)
BG (1) BG25524A3 (pl)
CA (1) CA988445A (pl)
CH (1) CH528592A (pl)
CS (1) CS156497B2 (pl)
DE (1) DE2123707C3 (pl)
DK (1) DK144069C (pl)
ES (1) ES391093A1 (pl)
FR (1) FR2095004A5 (pl)
HU (1) HU163922B (pl)
IE (1) IE35176B1 (pl)
IL (1) IL36848A (pl)
IT (1) IT1027006B (pl)
LU (1) LU63157A1 (pl)
NL (1) NL168266C (pl)
OA (1) OA03719A (pl)
PL (1) PL77194B1 (pl)
RO (1) RO85120B (pl)
TR (1) TR18665A (pl)
ZM (1) ZM5871A1 (pl)

Families Citing this family (22)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2300806A1 (fr) * 1975-02-13 1976-09-10 Glg Interet Collectif Agricole Procede de fabrication de produits riches en proteines
FR2386268A2 (fr) * 1976-03-09 1978-11-03 Anvar Procede perfectionne d'enrichissement en proteines de produits comestibles
GB8308162D0 (en) * 1983-03-24 1983-05-05 Ranks Hovis Mcdougall Plc Edible protein containing substances
US5047332A (en) * 1986-09-03 1991-09-10 Institut Armand-Frappier-Univ. Of Quebec Integrated process for the production of food, feed and fuel from biomass
GB9027016D0 (en) * 1990-12-12 1991-01-30 Ici Plc Controlling growth of filamentous microorganisms
EP0777737B1 (en) * 1994-06-30 2005-05-04 Novozymes Biotech, Inc. Non-toxic, non-toxigenic, non-pathogenic fusarium expression system and promoters and terminators for use therein
US9485917B2 (en) 2006-12-15 2016-11-08 Ecovative Design, LLC Method for producing grown materials and products made thereby
US11277979B2 (en) 2013-07-31 2022-03-22 Ecovative Design Llc Mycological biopolymers grown in void space tooling
US20150101509A1 (en) 2013-10-14 2015-04-16 Gavin R. McIntyre Method of Manufacturing a Stiff Engineered Composite
WO2016168563A1 (en) 2015-04-15 2016-10-20 Ecovative Design Llc Process for production of mycelial composite surfaces in a roll-to-roll format
WO2017151684A1 (en) 2016-03-01 2017-09-08 Sustainable Bioproducts Holdings, Llc Filamentous fungal biomats, methods of their production and methods of their use
US11359074B2 (en) 2017-03-31 2022-06-14 Ecovative Design Llc Solution based post-processing methods for mycological biopolymer material and mycological product made thereby
US11266085B2 (en) 2017-11-14 2022-03-08 Ecovative Design Llc Increased homogeneity of mycological biopolymer grown into void space
US11920126B2 (en) 2018-03-28 2024-03-05 Ecovative Design Llc Bio-manufacturing process
US11293005B2 (en) 2018-05-07 2022-04-05 Ecovative Design Llc Process for making mineralized mycelium scaffolding and product made thereby
CA3075412A1 (en) 2018-05-24 2019-11-28 Ecovative Design Llc Process and apparatus for producing mycelium biomaterial
CA3113935A1 (en) 2018-10-02 2020-04-09 Ecovative Design Llc A bioreactor paradigm for the production of secondary extra-particle hyphal matrices
CA3155385A1 (en) * 2019-11-05 2021-05-14 Jacob Michael Winiski Edible mycelia and methods of making the same
GB2597237B (en) 2020-05-22 2024-08-14 Marlow Foods Ltd Edible fungi
GB2597437B (en) 2020-05-22 2025-02-12 Marlow Foods Ltd Edible fungi
AU2022268924A1 (en) * 2021-05-04 2023-12-14 Ecovative Design Llc Edible aerial mycelia and methods of making the same
AU2022270087A1 (en) 2021-05-04 2023-12-07 Ecovative Design Llc Aerial mycelia and methods of making the same

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US2450055A (en) * 1945-01-06 1948-09-28 Friedrich F Nord Food composition containing fusaria
US3151038A (en) * 1962-08-24 1964-09-29 Univ Ohio State Res Found Process for the production of fungal protein
GB1085994A (en) 1965-02-19 1967-10-04 Mobil Oil Corp Growing fungi
US3546071A (en) * 1967-10-09 1970-12-08 Exxon Research Engineering Co Aerobic fermentation process
US3937654A (en) * 1970-05-14 1976-02-10 Ranks Hovis Mcdougall Limited Production of edible protein substances
US4061781A (en) * 1970-05-14 1977-12-06 Ranks Hovis Mcdougall Limited Edible protein substances composed of fungal mycellium

Also Published As

Publication number Publication date
ES391093A1 (es) 1974-08-01
OA03719A (fr) 1971-12-24
DE2123707A1 (pl) 1971-12-16
DE2123707B2 (de) 1978-07-13
TR18665A (tr) 1977-06-23
AT303649B (de) 1972-12-11
CH528592A (fr) 1972-09-30
RO85120B (ro) 1984-11-30
BE767232A (fr) 1971-10-01
NL168266C (nl) 1982-03-16
IE35176B1 (en) 1975-11-26
ZM5871A1 (en) 1972-02-21
DK144069C (da) 1982-06-01
NL7106649A (pl) 1971-11-16
DK144069B (da) 1981-11-30
IL36848A (en) 1975-03-13
NL168266B (nl) 1981-10-16
CA988445A (en) 1976-05-04
RO85120A (ro) 1984-10-31
LU63157A1 (pl) 1971-08-31
AR199545A1 (es) 1974-09-13
IE35176L (en) 1971-11-14
US4294929A (en) 1981-10-13
DE2123707C3 (de) 1982-10-14
BG25524A3 (en) 1978-10-10
HU163922B (pl) 1973-11-28
CS156497B2 (pl) 1974-07-24
IL36848A0 (en) 1971-07-28
IT1027006B (it) 1978-11-20
JPS5746357B1 (pl) 1982-10-02
FR2095004A5 (pl) 1972-02-04

Similar Documents

Publication Publication Date Title
PL77194B1 (pl)
CN103667222B (zh) 一种含饲用复合酶的生长猪专用酶及其制备方法
US3939279A (en) Feed and method of aquianimals cultivation
US3937654A (en) Production of edible protein substances
CN107022493B (zh) 一种高产饲用复合酶的米曲霉菌株及其应用
US4501765A (en) Production of edible protein-containing substances
CN103004659B (zh) 一种四大家鱼鱼苗养殖方法
CN103907747B (zh) 一种高蛋白饲料制备方法
CN109198167B (zh) 饲用酵母水解物及其制备方法和应用
CN109247447A (zh) 替代血浆蛋白粉生产教槽料的酵母水解物及其制备方法
CN103667221B (zh) 一种含碱性木聚糖酶的乳仔猪专用酶及其制备方法
Block et al. Mushroom mycelium, experiments with submerged culture
CA2179970A1 (en) Quick-fermented feed, its preparation and uses
CN101120719B (zh) 微生物发酵的紫甘薯饲料及其制备方法
CN107760612A (zh) 一种黑曲霉yy07菌株及其在固体发酵生产饲用酸性蛋白酶中的应用
US4466988A (en) Edible protein containing substances
Lipinsky et al. Algae, bacteria, and yeasts as food or feed
CA1154626A (en) Process for producing food proteins of fungal origin or from multicellular organisms, fermentation apparatus and proteins so-produced
Falanghe et al. Production of fungal mycelial protein in submerged culture of soybean whey
CN116121078A (zh) 一种联合制备高蛋白粉和高核酸破壁菌丝体的方法
CN103725661B (zh) 一种含饲用复合酶的乳仔猪专用酶及其制备方法
US4061781A (en) Edible protein substances composed of fungal mycellium
CN114790428A (zh) 一种提高肉食性水产动物健康和生长的预消化饲料
CN108740289A (zh) 一种应用于对虾养殖的发酵饲料
CN103750011B (zh) 一种含有纤维素酶的乳仔猪专用复合酶及其制备方法