PL244125B1 - Kompartmentowy zasobnik do hodowli i namnażania powierzchniowego ludzkich autologicznych fibroblastów na nośniku membranowym - Google Patents
Kompartmentowy zasobnik do hodowli i namnażania powierzchniowego ludzkich autologicznych fibroblastów na nośniku membranowym Download PDFInfo
- Publication number
- PL244125B1 PL244125B1 PL433952A PL43395220A PL244125B1 PL 244125 B1 PL244125 B1 PL 244125B1 PL 433952 A PL433952 A PL 433952A PL 43395220 A PL43395220 A PL 43395220A PL 244125 B1 PL244125 B1 PL 244125B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- compartment
- container
- compartments
- storage tank
- membrane
- Prior art date
Links
- 239000012528 membrane Substances 0.000 title claims abstract description 57
- 210000002950 fibroblast Anatomy 0.000 title claims abstract description 52
- 102000008186 Collagen Human genes 0.000 claims abstract description 36
- 108010035532 Collagen Proteins 0.000 claims abstract description 36
- 229920001436 collagen Polymers 0.000 claims abstract description 36
- 230000000087 stabilizing effect Effects 0.000 claims abstract description 14
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 claims abstract description 6
- 239000007788 liquid Substances 0.000 claims description 14
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 claims description 12
- 244000005700 microbiome Species 0.000 claims description 6
- 238000011109 contamination Methods 0.000 claims description 5
- 230000002906 microbiologic effect Effects 0.000 claims description 5
- 229920001343 polytetrafluoroethylene Polymers 0.000 claims description 5
- 239000011521 glass Substances 0.000 claims description 3
- -1 poly(tetrafluoroethylene) Polymers 0.000 claims description 3
- 239000002861 polymer material Substances 0.000 claims description 3
- 229920001296 polysiloxane Polymers 0.000 claims description 3
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 abstract description 21
- 238000001356 surgical procedure Methods 0.000 abstract description 10
- 210000000988 bone and bone Anatomy 0.000 abstract description 6
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 abstract description 6
- 230000012010 growth Effects 0.000 abstract description 3
- 230000002380 cytological effect Effects 0.000 abstract description 2
- 210000004379 membrane Anatomy 0.000 description 49
- 238000000034 method Methods 0.000 description 29
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 20
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 16
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 12
- 230000010261 cell growth Effects 0.000 description 10
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 10
- 230000008569 process Effects 0.000 description 8
- CURLTUGMZLYLDI-UHFFFAOYSA-N Carbon dioxide Chemical compound O=C=O CURLTUGMZLYLDI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 230000001172 regenerating effect Effects 0.000 description 5
- 230000003416 augmentation Effects 0.000 description 4
- 230000001413 cellular effect Effects 0.000 description 4
- 210000002808 connective tissue Anatomy 0.000 description 4
- 230000035876 healing Effects 0.000 description 4
- 239000010410 layer Substances 0.000 description 4
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 4
- 230000003239 periodontal effect Effects 0.000 description 4
- 210000004872 soft tissue Anatomy 0.000 description 4
- 230000017423 tissue regeneration Effects 0.000 description 4
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 3
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 3
- 238000001574 biopsy Methods 0.000 description 3
- 229910002092 carbon dioxide Inorganic materials 0.000 description 3
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 3
- 239000012737 fresh medium Substances 0.000 description 3
- 210000004195 gingiva Anatomy 0.000 description 3
- 210000002510 keratinocyte Anatomy 0.000 description 3
- 239000000463 material Substances 0.000 description 3
- 238000010899 nucleation Methods 0.000 description 3
- 238000011160 research Methods 0.000 description 3
- 210000003491 skin Anatomy 0.000 description 3
- CIWBSHSKHKDKBQ-JLAZNSOCSA-N Ascorbic acid Chemical compound OC[C@H](O)[C@H]1OC(=O)C(O)=C1O CIWBSHSKHKDKBQ-JLAZNSOCSA-N 0.000 description 2
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 2
- 108091003079 Bovine Serum Albumin Proteins 0.000 description 2
- 241000233866 Fungi Species 0.000 description 2
- 239000000853 adhesive Substances 0.000 description 2
- 238000004026 adhesive bonding Methods 0.000 description 2
- 230000001070 adhesive effect Effects 0.000 description 2
- 230000000735 allogeneic effect Effects 0.000 description 2
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 2
- 239000001569 carbon dioxide Substances 0.000 description 2
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 2
- 239000002537 cosmetic Substances 0.000 description 2
- 239000012531 culture fluid Substances 0.000 description 2
- 210000004748 cultured cell Anatomy 0.000 description 2
- 238000012258 culturing Methods 0.000 description 2
- 230000006378 damage Effects 0.000 description 2
- 210000004207 dermis Anatomy 0.000 description 2
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 2
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 2
- 230000002255 enzymatic effect Effects 0.000 description 2
- 239000012894 fetal calf serum Substances 0.000 description 2
- 239000000835 fiber Substances 0.000 description 2
- 210000000630 fibrocyte Anatomy 0.000 description 2
- 230000008014 freezing Effects 0.000 description 2
- 238000007710 freezing Methods 0.000 description 2
- 230000002538 fungal effect Effects 0.000 description 2
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 description 2
- 238000002324 minimally invasive surgery Methods 0.000 description 2
- 230000000394 mitotic effect Effects 0.000 description 2
- 210000000214 mouth Anatomy 0.000 description 2
- 230000035755 proliferation Effects 0.000 description 2
- 230000009467 reduction Effects 0.000 description 2
- 230000008929 regeneration Effects 0.000 description 2
- 238000011069 regeneration method Methods 0.000 description 2
- 210000003660 reticulum Anatomy 0.000 description 2
- 239000002356 single layer Substances 0.000 description 2
- 150000003431 steroids Chemical class 0.000 description 2
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 2
- KIUKXJAPPMFGSW-DNGZLQJQSA-N (2S,3S,4S,5R,6R)-6-[(2S,3R,4R,5S,6R)-3-Acetamido-2-[(2S,3S,4R,5R,6R)-6-[(2R,3R,4R,5S,6R)-3-acetamido-2,5-dihydroxy-6-(hydroxymethyl)oxan-4-yl]oxy-2-carboxy-4,5-dihydroxyoxan-3-yl]oxy-5-hydroxy-6-(hydroxymethyl)oxan-4-yl]oxy-3,4,5-trihydroxyoxane-2-carboxylic acid Chemical class CC(=O)N[C@H]1[C@H](O)O[C@H](CO)[C@@H](O)[C@@H]1O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O[C@H]2[C@@H]([C@@H](O[C@H]3[C@@H]([C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O3)C(O)=O)O)[C@H](O)[C@@H](CO)O2)NC(C)=O)[C@@H](C(O)=O)O1 KIUKXJAPPMFGSW-DNGZLQJQSA-N 0.000 description 1
- APKFDSVGJQXUKY-KKGHZKTASA-N Amphotericin-B Natural products O[C@H]1[C@@H](N)[C@H](O)[C@@H](C)O[C@H]1O[C@H]1C=CC=CC=CC=CC=CC=CC=C[C@H](C)[C@@H](O)[C@@H](C)[C@H](C)OC(=O)C[C@H](O)C[C@H](O)CC[C@@H](O)[C@H](O)C[C@H](O)C[C@](O)(C[C@H](O)[C@H]2C(O)=O)O[C@H]2C1 APKFDSVGJQXUKY-KKGHZKTASA-N 0.000 description 1
- OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N Carbon Chemical compound [C] OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000006144 Dulbecco’s modified Eagle's medium Substances 0.000 description 1
- 102000016942 Elastin Human genes 0.000 description 1
- 108010014258 Elastin Proteins 0.000 description 1
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 1
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 1
- 108010073385 Fibrin Proteins 0.000 description 1
- 102000009123 Fibrin Human genes 0.000 description 1
- 108010080379 Fibrin Tissue Adhesive Proteins 0.000 description 1
- BWGVNKXGVNDBDI-UHFFFAOYSA-N Fibrin monomer Chemical compound CNC(=O)CNC(=O)CN BWGVNKXGVNDBDI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 102000018233 Fibroblast Growth Factor Human genes 0.000 description 1
- 108050007372 Fibroblast Growth Factor Proteins 0.000 description 1
- ZDXPYRJPNDTMRX-VKHMYHEASA-N L-glutamine Chemical compound OC(=O)[C@@H](N)CCC(N)=O ZDXPYRJPNDTMRX-VKHMYHEASA-N 0.000 description 1
- 229930182816 L-glutamine Natural products 0.000 description 1
- 102000016611 Proteoglycans Human genes 0.000 description 1
- 108010067787 Proteoglycans Proteins 0.000 description 1
- 241000700605 Viruses Species 0.000 description 1
- 230000003213 activating effect Effects 0.000 description 1
- 230000002411 adverse Effects 0.000 description 1
- 210000001909 alveolar process Anatomy 0.000 description 1
- APKFDSVGJQXUKY-INPOYWNPSA-N amphotericin B Chemical compound O[C@H]1[C@@H](N)[C@H](O)[C@@H](C)O[C@H]1O[C@H]1/C=C/C=C/C=C/C=C/C=C/C=C/C=C/[C@H](C)[C@@H](O)[C@@H](C)[C@H](C)OC(=O)C[C@H](O)C[C@H](O)CC[C@@H](O)[C@H](O)C[C@H](O)C[C@](O)(C[C@H](O)[C@H]2C(O)=O)O[C@H]2C1 APKFDSVGJQXUKY-INPOYWNPSA-N 0.000 description 1
- 229960003942 amphotericin b Drugs 0.000 description 1
- 230000000844 anti-bacterial effect Effects 0.000 description 1
- 230000000843 anti-fungal effect Effects 0.000 description 1
- 229940121375 antifungal agent Drugs 0.000 description 1
- 239000011668 ascorbic acid Substances 0.000 description 1
- 229960005070 ascorbic acid Drugs 0.000 description 1
- 235000010323 ascorbic acid Nutrition 0.000 description 1
- 239000012298 atmosphere Substances 0.000 description 1
- 230000002146 bilateral effect Effects 0.000 description 1
- 230000004071 biological effect Effects 0.000 description 1
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 1
- 230000010478 bone regeneration Effects 0.000 description 1
- 238000009395 breeding Methods 0.000 description 1
- 230000001488 breeding effect Effects 0.000 description 1
- 229910052799 carbon Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000021164 cell adhesion Effects 0.000 description 1
- 239000006143 cell culture medium Substances 0.000 description 1
- 230000030833 cell death Effects 0.000 description 1
- 230000012292 cell migration Effects 0.000 description 1
- 210000003855 cell nucleus Anatomy 0.000 description 1
- 230000004663 cell proliferation Effects 0.000 description 1
- 230000008614 cellular interaction Effects 0.000 description 1
- 230000008859 change Effects 0.000 description 1
- 229960005188 collagen Drugs 0.000 description 1
- 230000000295 complement effect Effects 0.000 description 1
- 230000003750 conditioning effect Effects 0.000 description 1
- 238000010276 construction Methods 0.000 description 1
- 239000000356 contaminant Substances 0.000 description 1
- 238000007796 conventional method Methods 0.000 description 1
- 230000007547 defect Effects 0.000 description 1
- 238000013461 design Methods 0.000 description 1
- 238000011161 development Methods 0.000 description 1
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 1
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 1
- 229920002549 elastin Polymers 0.000 description 1
- 238000001493 electron microscopy Methods 0.000 description 1
- 210000002919 epithelial cell Anatomy 0.000 description 1
- 210000005081 epithelial layer Anatomy 0.000 description 1
- 230000001605 fetal effect Effects 0.000 description 1
- 229950003499 fibrin Drugs 0.000 description 1
- 229940126864 fibroblast growth factor Drugs 0.000 description 1
- 239000012530 fluid Substances 0.000 description 1
- 238000004362 fungal culture Methods 0.000 description 1
- 230000004927 fusion Effects 0.000 description 1
- 210000005260 human cell Anatomy 0.000 description 1
- 238000002513 implantation Methods 0.000 description 1
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 1
- 230000001939 inductive effect Effects 0.000 description 1
- 238000012423 maintenance Methods 0.000 description 1
- 238000012961 medicinal therapy Methods 0.000 description 1
- 230000000936 membranestabilizing effect Effects 0.000 description 1
- 210000003716 mesoderm Anatomy 0.000 description 1
- 230000004060 metabolic process Effects 0.000 description 1
- 239000007769 metal material Substances 0.000 description 1
- 230000000813 microbial effect Effects 0.000 description 1
- 238000013508 migration Methods 0.000 description 1
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 1
- 210000002200 mouth mucosa Anatomy 0.000 description 1
- 210000004877 mucosa Anatomy 0.000 description 1
- 210000004400 mucous membrane Anatomy 0.000 description 1
- 230000000737 periodic effect Effects 0.000 description 1
- 239000011148 porous material Substances 0.000 description 1
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 1
- 230000001105 regulatory effect Effects 0.000 description 1
- 230000008439 repair process Effects 0.000 description 1
- 238000005096 rolling process Methods 0.000 description 1
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 description 1
- 210000004876 tela submucosa Anatomy 0.000 description 1
- 230000008719 thickening Effects 0.000 description 1
- 239000003104 tissue culture media Substances 0.000 description 1
- 238000012546 transfer Methods 0.000 description 1
- 238000011282 treatment Methods 0.000 description 1
- 238000002255 vaccination Methods 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M25/00—Means for supporting, enclosing or fixing the microorganisms, e.g. immunocoatings
- C12M25/02—Membranes; Filters
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M23/00—Constructional details, e.g. recesses, hinges
- C12M23/02—Form or structure of the vessel
- C12M23/06—Tubular
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M23/00—Constructional details, e.g. recesses, hinges
- C12M23/34—Internal compartments or partitions
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Sustainable Development (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Clinical Laboratory Science (AREA)
- Immunology (AREA)
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
Abstract
Przedmiotem wynalazku jest kompartmentowy zasobnik do hodowli i namnażania powierzchniowego ludzkich autologicznych fibroblastów na nośniku membranowym w warunkach in vitro. Zasobnik przeznaczony jest do cytologicznej (komórkowej) hodowli fibroblastów ludzkich pobranych od pacjenta, i umożliwia zapewnienie odpowiedniego środowiska do ich wzrostu. Rozwiązanie może znaleźć zastosowanie zwłaszcza w chirurgii kości wyrostka zębodołowego. Kompartmentowy zasobnik charakteryzuje się tym, że składa się z trzech kompartmentów (sekcji/modułów) w postaci tulei o takich samych średnicach, to jest kompartmentu dolnego (2), kompartmentu środkowego (3) oraz kompartmentu górnego (4), łączonych ze sobą w sposób rozłączny, w których zamontowane są dwie przesłony poprzeczne (5) z regulacją prześwitu przesłony od całkiem zamkniętej do otwartej, przy czym jedna przesłona zamontowana jest w kompartmencie górnym a jedna na połączeniu kompartmentu dolnego i środkowego w sposób umożliwiający odseparowanie komór wewnętrznych tych kompartmentów od siebie, od dołu zasobnik wyposażony jest w podstawę (1) stanowiącą zamknięcie kompartmentu dolnego (2), od góry zasobnik wyposażony jest w zamknięcie (6) kompartmentu górnego (4), natomiast przy połączeniu kompartmentu górnego z kompartmentem środkowym, to jest w kompartmencie górnym przy jego podstawie albo korzystniej w kompartmencie środkowym przy jego górnej krawędzi, zamontowany jest pierścień stabilizujący (7), na którym stabilnie zamontowana, na przykład przyklejona jest jałowa kolagenowa membrana (8) z kolagenu pochodzenia ludzkiego lub zwierzęcego do hodowli ludzkich fibroblastów.
Description
Przedmiotem wynalazku jest kompartmentowy zasobnik do hodowli i namnażania powierzchniowego ludzkich autologicznych fibroblastów na nośniku membranowym w warunkach in vitro. Zasobnik przeznaczony jest do cytologicznej (komórkowej) hodowli fibroblastów ludzkich pobranych od pacjenta, i umożliwia zapewnienie odpowiedniego środowiska do ich wzrostu. Rozwiązanie może znaleźć zastosowanie zwłaszcza w chirurgii kości wyrostka zębodołowego.
Fibroblasty są to komórki występujące u zwierząt, wywodzące się z mezodermy, będące najliczniejszymi komórkami tkanki łącznej właściwej. Posiadają jedno okrągłe lub owalne jądro komórkowe, przeważnie z wyraźnym jąderkiem. Aktywne fibroblasty mogą być rozpoznane dzięki szorstkiemu retikulum komórkowemu. Nieaktywne fibroblasty, zwane także fibrocytami, są mniejsze i wrzecionowate, ze zredukowanym retikulum. Fibroblasty i fibrocyty są osiadłe, ale posiadają zdolność do ruchu. Częstość podziałów mitotycznych fibroblastów zwiększa się podczas gojenia się tkanki łącznej, pod wpływem czynnika wzrostu fibroblastów - FGF. Fibroblasty, które mają zdolność do podziałów mitotycznych zwane są często komórkami siateczkowymi. Fibroblasty produkują kolagen, włókna istoty międzykomórkowej, proteoglikany istoty podstawowej [Wojciech Sawicki: Histologia. S. 123-124, PZWL, 2005. ISBN 83-200-3127-3].
Hodowla komórek pozwala na namnażanie i utrzymywanie przy życiu komórek pobranych z organizmu ludzkiego. Hodowle komórkowe prowadzone są w specjalnych warunkach, w ciemności, z dostępem do dwutlenku węgla, w temperaturze 37°C. Komórki do hodowli pobiera się podczas zabiegów, operacji, biopsji itp. Można je pobrać, zależnie od potrzeb, z tkanek zdrowych, jak i nowotworowych. Hodowle komórkowe stały się w ostatnich latach powszechnie wykorzystywanym narzędziem w badaniach nad nowoczesnymi lekami, kosmetykami i innymi substancjami odziaływującymi na ludzkie komórki. Za ich pomocą możemy aktywnie, a jednocześnie bezpiecznie sprawdzić działanie określonych substancji na tkanki ludzkie; umożliwiają badanie w ściśle kontrolowanych warunkach doświadczalnych. Redukuje to znacznie koszty oraz ilość potrzebnego czasu na przeprowadzenie badań w stosunku do na przykład badań na zwierzętach, które to w przypadku badań nad kosmetykami są dodatkowo całkowicie objęte zakazem na terenie Unii Europejskiej.
Hodowla komórek autogennych prowadzonych w warunkach in vitro pozwala na namnażanie i utrzymywanie przy życiu komórek pobranych od indywidualnego pacjenta. Hodowle komórkowe prowadzone są w specjalnych warunkach z wykorzystaniem podłoża stymulującego wzrost komórek, z dostępem do dwutlenku węgla, w temperaturze 37°C. Fibroblasty ludzkie do hodowli pobiera się na przykład podczas zabiegów małoinwazyjnych, operacyjnych lub biopsji błony śluzowej i skóry, to jest z tkanek prawidłowych. Fibroblasty są komórkami położonymi w błonie śluzowej, podśluzowej i skórze właściwej. Produkują kolagen i elastynę, które nadają tkankom miękkim stabilność, elastyczność i chronią je przed urazami mechanicznymi. W zakresie zabiegów regeneracyjnych w obrębie jamy ustnej, na przykład chirurgii periodontologicznej, błony śluzowej i dziąseł, autogenne fibroblasty uzyskane w hodowli in vitro posiadają potencjał wzmacniający pierwotne efekty naprawcze i regeneracyjne, przyspieszające gojenie, oraz stymulujące procesy odnowy tkankowej. Fibroblasty stanowią najbardziej istotny element komórkowy warunkujący powodzenie zabiegów chirurgii śluzówkowo-dziąsłowej, zabiegów pokrycia recesji oraz poszerzenia strefy dziąsła właściwego. Ich potencjał regeneracyjny warunkuje prawidłowy proces gojenia i regeneracji tkankowej, tworzenie włókien kolegenowych przyzębia oraz tkanek miękkich.
Z opisu patentowego US6110208A znany jest sposób uzyskiwania sztucznej skóry z biokompatybilną warstwą fibroblastów wyhodowanych na podłożu membranowym do celów allogennych przeszczepów dermatologicznych. Metoda polega na wysiewaniu hodowli keratynocytów na mikroperforowanej membranie opartej na pochodnej kwasu hialuronowego i ekspandowaniu wymienionych keratynocytów na wspomnianej membranie zgodnie z konwencjonalnymi technikami, obejmującymi zastosowanie płodowej surowicy cielęcej, aż do osiągnięcia częściowego lub całkowitego połączenia. Następnie hodowane są fibroblasty wyizolowane ze skóry właściwej z innych obszarów zwykłymi technikami w DMEM zawierającym 10% płodowej surowicy cielęcej, kondycjonowanie tych fibroblastów do proliferacji przez wysiew na plastiku, wysiewanie fibroblastów w tkance włókninowej i kontynuowanie hodowli aż do zamrażania w przypadku, gdy uzyskana sztuczna skóra musi być zachowana lub aż do szczepienia. W kolejnym kroku ma miejsce układanie warstwy nabłonkowej już utworzonej na tkance włókninowej skolonizowanej przez fibroblasty, uważając, aby zewnętrzna krawędź mikroperforowanej mem brany nie dotykała dna naczynia i żeby rozciągała się nieznacznie poza leżącą poniżej tkankę włókninową. Opcjonalnie łączone są warstwy komórek nabłonkowych na mikroperforowanej membranie z leżącą poniżej tkanką włókninową skolonizowaną przez fibroblasty za pomocą klejów biologicznych wybranych z grupy składającej się z: kolagenu, fibryny, kleju fibrynowego. Na końcu dodaje się odpowiednią objętość tego samego medium stosowanego w początkowym etapie, utrzymując hodowlę zanurzoną tak, aby keratynocyty górnej warstwy mikroperforowanej membrany znajdowały się na granicy powietrze-ciecz, dodając przy pierwszej i następnych zmianach pożywkę, kwas askorbinowy w stężeniu równym 1 μg/ml, kontynuując hodowlę do szczepienia lub zamrażania. Do słabych stron rozwiązania według tego wynalazku należy stosunkowo długi czas prowadzonej metody, konieczność wymiany podłoża i transferu nośnika na nowe, świeże podłoże.
Z opisu patentowego PL209784 znany jest sposób hodowli pierwotnej ludzkich fibroblastów do autologicznych zabiegów augmentacyjnych pochodzących z tkanki łącznej dziąsła zrogowaciałego błony śluzowej jamy ustnej, znajdujących zastosowanie w zabiegach augmentacyjnych, to jest pogrubienia i poszerzenia tkanek miękkich wyrostka zębodołowego. Sposób polega na tym, że pobrane znaną techniką medyczną w sposób jałowy fragmenty tkanki łącznej dziąsła zrogowaciałego o powierzchni 1-2 mm2 umieszcza się na szalkach Petriego w płynie hodowlanym z dodatkiem 10% surowicy płodowej oraz 0,03% L-glutaminy i Amfoterycyny B 100 μg/ml, po czym materiał ten rozdrabnia się mechanicznie na fragmenty o wielkości około 0,4 mm2 i prowadzi hodowlę przez 3-5 dni, w atmosferze 5% CO2, natomiast po osiągnięciu pełnej monowarstwy komórki przenosi się na nośnik, którym jest siatka kolagenowa zbudowana z wysoko oczyszczonego kolagenu świńskiego w postaci trójwymiarowej o kształcie i powierzchni dostosowanych do wielkości ubytku tkanek miękkich dziąsła zrogowaciałego i zawiesza się ponownie w płynie hodowlanym, pozostawiając na okres do 5 dni, po czym nośnik z komórkami przenosi się w miejsce biorcze pacjenta. Do słabych stron rozwiązania według tego wynalazku należy stosunkowo długi czas prowadzonej metody, konieczność przeniesienia fizycznego fragmentów dziąsła podczas wymiany podłoża płynnego.
Znane jest też rozwiązanie dotyczące konstrukcji urządzenia do hodowli fibroblastów („Cell culture devices having ultrathin porous membrane and uses thereof”, US8119394B2), które służy do hodowli in vitro dwóch lub więcej linii komórkowych na podłożu porowatych membran umieszczonych pomiędzy komorami hodowlanymi oraz posiada możliwość detekcji interakcji komórek. Urządzenie zawiera pierwszą i drugą komorę oddzielone przez co najmniej jedną nanoskalową membranę umieszczoną między pierwszą a drugą komorą, przy czym co najmniej jedna membrana w nanoskali ma średnią grubość mniejszą niż około 100 nm i ma wiele porów rozciągających się między jej przeciwległymi bokami. Zawiera ponadto pożywkę do hodowli komórek w pierwszej i drugiej komorze, pierwszy typ komórki w pierwszej komorze i drugi typ komórki w drugiej komorze. Podstawową niedogodnością tego rozwiązania jest brak możliwości ciągłej wymiany podłoża płynnego pomiędzy komorami.
Z opisu patentowego PL150070 znany jest sposób hodowli biologicznej komórek i tkanek oraz urządzenie hodowli biologicznej komórek i tkanek. Rozwiązanie dotyczy szerokiego aspektu hodowli, nie tylko komórkowej, ale również całych tkanek. Niespecyficzne rozwiązanie, nieprecyzujące rodzaju i struktury biologicznej hodowanej tkanki, zakłada użycie pierwotnego wycinka (bioptatu) pobranego od dawcy, umieszczonego na przepuszczalnej przeponie, który będzie stanowił źródło komórek do odbudowy tkankowej. Zakłada również użycie przepuszczalnej, bliżej nie opisanej, przepony, ufiksowanej w określonym, niezmiennym położeniu wewnątrz zbiornika do hodowli w środowisku płynnym, jako elementu nośnikowego dla elementów biologicznych. Druga strona przepony będzie omywana płynną substancją odżywczą dla komórek i tkanek. Podczas gdy rozwiązanie według zgłaszanego wynalazku, w całkowitym przeciwieństwie do PL150070, zakłada użycie wstępnie rozchodowanych jednoznacznie określonych komórek, fibroblastów (a nie pierwotnego wycinka), które będą zawieszone w płynnej odżywce do hodowli tkankowych, użycie specyficznej biologicznie, tkankowo komplementarnej i ksenogennej, nieprzepuszczalnej membrany kolagenowej, wykazującej powinowactwo do fibroblastów, której położenie przestrzenne według jednej osi może być płynnie regulowane w zakresie 360 stopni. Obie strony membrany kolagenowej znajdują się w tym samym płynnym środowisku stanowiącym płynną substancję odżywczą dla fibroblastów.
Z opisu patentowego PL238767 znane jest rozwiązanie dotyczące zasobnika do pozyskiwania biofilmu do analizy mikroskopii elektronowej SEM. Przewiduje ono użycie nieruchomej płytki węglowej, umieszczonej w rozkładanym zasobniku, zawierającym podłoże do hodowli specyficznych drobnoustrojów tworzących biofilm inokulowanych z hodowli bakteryjnych/grzybiczych, z filtrem antybakteryjnym/an tygrzybicznym oraz zaworu do ewakuacji płynu odżywczego. Koncepcja ww. zasobnika do hodowli biofilmu nie ma elementów wspólnych ze zgłaszanym rozwiązaniem i dotyczy całkowicie innej koncepcji obejmującej struktury biologiczne biofilmu drobnoustrojów do ich następczej analizy i nie ma zastosowania w hodowli komórek do celów medycyny regeneracyjnej, implantacji i augmentacji tkankowej.
Z opisu patentowego FR2283903 znana jest membrana posiadająca aktywność biologiczną, kolumna enzymatyczna zawierająca tę membranę i jej zastosowanie w metodach analitycznych. Przedstawiona w tym rozwiązaniu koncepcja elementu do zastosowań diagnostycznych i analitycznych koncentruje się wyłącznie na wytworzeniu nowatorskiej błony biologicznie nieaktywnej, z zawartością molekuł enzymów w przeciwieństwie do rozwiązania według zgłaszanego wynalazku - tj. standardowa biologicznie czynna membrana kolagenowa, aktywująca fibroblasty z ich powinowactwem adhezyjnym, przeznaczona do terapii leczniczych, bez żadnych elementów enzymatycznych.
Z opisu patentowego WO2010033820 znane są bioreaktory, systemy i metody unaczynienia struktur tkankowych. Rozwiązanie to dotyczy systemu bioreaktora tkankowego z pierwotnym przeznaczeniem do indukcji waskularyzacji, unaczynienia wytworzonych, niespecyficznych pełnych struktur tkankowych bliżej nieokreślonego charakteru. Bioreaktor nie posiada jednak żadnych elementów zbliżonych do membrany kolagenowej, nie mają one możliwości obrotu o 360 stopni, jak ma to miejsce w niniejszym zgłoszeniu, co wyraźnieje odróżnia.
Unikalne rozwiązanie wykorzystania kilku płynnie regulowanych przesłon ze zmienną średnicą, oddzielających kompartmenty, przedstawione w rozwiązaniu według niniejszego wynalazku w żaden sposób nie jest przedstawione w rozwiązaniach znanych ze stanu techniki i jest wyjątkowym, nieoczekiwanym rozwiązaniem, które nie wynika w sposób oczywisty z dotychczasowego stany wiedzy. Prostota rozwiązania stanowi szczególną jego zaletę, decydującą o sile i zdolności aplikacyjnej.
Celem twórców niniejszego wynalazku było opracowanie takiej konstrukcji zasobnika do pozyskiwania hybrydowego elementu biologicznego z nośnikiem kolagenowym gotowego do użycia w warunkach klinicznych, w postaci komórkowego augmentatu zwłaszcza kości wyrostka zębodołowego, która umożliwi i zapewni przyśpieszony proces wgajania i regeneracji w trakcie procedury chirurgii wyrostka. Innym celem było opracowanie rozwiązania dającego możliwość wykorzystania kompartmentów zasobnika jako wymiennego rezerwuaru dla pożywki płynnej wraz z możliwością jej wymiany.
Zostało to rozwiązane według wynalazku w ten sposób, że kompartmentowy zasobnik do hodowli i namnażania powierzchniowego ludzkich autologicznych fibroblastów na nośniku membranowym składający się z trzech kompartmentów (sekcji/modułów), to jest kompartmentu dolnego, kompartmentu środkowego oraz kompartmentu górnego, łączonych ze sobą w sposób rozłączny, przy czym kompartmenty są w postaci tulei o takich samych średnicach, a zasobnik wyposażony jest w dwie przesłony poprzeczne z regulacją prześwitu przesłony od całkiem zamkniętej do otwartej, przy czym jedna przesłona zamontowana jest w kompartmencie górnym a jedna na połączeniu kompartmentu dolnego i środkowego oddzielając - przy zamkniętej przesłonie - komory wewnętrzne tych kompartmentów od siebie, od dołu zasobnik wyposażony jest w podstawę stanowiącą zamknięcie kompartmentu dolnego, od góry zasobnik wyposażony jest w zamknięcie kompartmentu górnego, natomiast przy połączeniu kompartmentu górnego z kompartmentern środkowym, to jest w kompartmencie górnym przy jego podstawie albo korzystniej w kompartmencie środkowym przy jego górnej krawędzi, zamontowany jest pierścień stabilizujący, na którym stabilnie zamontowana, na przykład przyklejona jest jałowa kolagenowa membrana z kolagenu pochodzenia ludzkiego lub zwierzęcego do hodowli ludzkich fibroblastów. Korzystniej jest gdy pierścień stabilizujący membranę jest umiejscowiony przy górnej krawędzi kompartmentu środkowego, gdyż łatwiej montuje się go na górę kompartmentu środkowego niż przy krawędzi dolnej kompartmentu górnego.
Korzystnie, wysokość kompartmentu dolnego stanowi 2/3 wysokości kompartmentu górnego, natomiast wysokość kompartmentu środkowego stanowi 1/3 wysokości kompartmentu górnego, a przesłona w kompartmencie górnym usytuowana jest na 1/3 wysokości tego kompartmentu patrząc od podstawy.
Korzystnie, pierścień stabilizujący membranę kolagenową ma funkcję rotacji wraz z zamontowaną na nim membraną o kąt do 360° wokół osi obrotu prostopadłej do osi wzdłużnej zasobnika. Obrót pierścienia z membraną umożliwia zmianę kąta nachylenia membrany, dając możliwość selektywnej kontroli wzrostu fibroblastów w różnych częściach tej membrany.
Korzystnie, górne zamknięcie kompartmentu górnego stanowi nakrętka gwintowana.
Korzystnie, zasobnik wyposażony jest w filtr mikrobiologiczny zapobiegający kontaminacji mikroorganizmów, umieszczony w górnej części kompartmentu górnego, najkorzystniej w zamknięciu kompartmentu górnego, tak by znajdował się nad podłożem płynnym do hodowli komórkowej. Mikroorganizmy z otaczającego powietrza: bakterie, wirusy i grzyby kontaminują, nadkażają podłoże i mogą doprowadzić do śmierci komórek, stąd pożądane jest zastosowanie w/w filtra celem odizolowania podłoża od dostępu tychże mikroorganizmów.
Korzystnie, membrana kolagenowa ma średnicę nie większą niż 40 mm, najkorzystniej między 30 a 40 mm, bowiem powyżej tej średnicy po kilku dniach hodowli membrana może sią odkształcać, a nawet zapaść do środka pod ciężarem wyhodowanych komórek.
Korzystnie, wysokość kompartmentu środkowego jest nie niższa niż 30 mm, co zapewnia odpowiednią przestrzeń dla podłoża do procesu hodowli fibroblastów.
Korzystnie, minimalna wysokość całego zasobnika według koncepcji wynalazku wynosi od 15 cm do 25 cm w zależności od rodzaju hodowli komórkowej i przeznaczenia biologicznego zasobnika, to jest w zależności od rodzaju podłoża, pożądanego stopnia rozhodowania fibroblastów, wielkości membrany do hodowli.
Korzystnym jest, gdy pierścień stabilizujący wykonany jest z tworzywa sztucznego, polimerowego, na przykład silikonowego, co zapewnia odpowiednią elastyczność elementu, wynikającą z inercji materiału.
Również korzystnym jest, gdy poszczególne kompartmenty zasobnika wykonane są z tworzywa sztucznego, zwłaszcza z poli(tetrafluoroetylenu) (PTFE) albo plastiku albo ze szkła. Natomiast niekorzystnym byłoby stosowanie materiałów metalowych, które niekorzystnie wpływają na hodowane komórki.
Korzystnie, w zamknięciu kompartmentu górnego zamontowane jest złącze dozujące dla pipety, które umożliwia sterylne dodawanie dodatkowych substancji do podłoża w kompartmencie górnym, w trakcie hodowli, w tym np. substancji zapobiegających kontaminacji bakteryjnej lub grzybiczej podłoża lub środków wspomagających wzrost komórek (sterydy).
Struktura przestrzenna uzyskanej hodowli fibroblastów jest zależna między innymi od podłoża wzrostu oraz warunków prowadzenia hodowli komórek adaptowanych na błonie biologicznej. W odróżnieniu od klasycznej hodowli komórkowej, wzrost komórek na powierzchni błon kolagenowych wymaga dodatkowych elementów wspomagających proliferację, migrację oraz adhezję komórek. W związku z tym istotne jest zapewnienie regularnej wymiany - podczas wzrostu komórek - podłoża, które stanowi środowisko inkubacji i metabolizmu, zapobiegając w ten sposób wyczerpaniu składników odżywczych.
Poniżej opisano zasadę przygotowania zasobnika do użytku i zasadę działania tego urządzenia według wynalazku.
Przy połączeniu kompartmentu środkowego z górnym montuje się pierścień stabilizujący, a na nim stabilnie montuje się membranę kolagenową. Następnie wszystkie trzy kompartmenty łączy się ze sobą, przy czym urządzenie wyposaża się w dwie przesłony poprzeczne, jedną na połączeniu kompartmentu dolnego ze środkowym, a drugą w kompartmencie górnym.
W celu przeprowadzenia procesu hodowli fibroblastów otwiera się zamknięcie kompartmentu górnego oraz górną przesłonę umieszczoną w kompartmencie górnym, a zamyka się przesłonę dolną umieszczoną na połączeniu kompartmentu dolnego i środkowego. Następnie do zasobnika wprowadza się od góry płynne podłoże z rozhodowanymi fibroblastami w ilości podłoża nie większej niż pojemność kompartmentu dolnego, korzystnie równej pojemności kompartmentu dolnego, a zapełniającej, najkorzystniej w pełni, przestrzeń pomiędzy przesłoną dolną a górną i zamyka się szczelnie przesłonę górną (niepełne zapełnienie wspomnianej przestrzeni i zostawienie pustej przestrzeni może sprzyjać rozwojowi kontaminantów mikrobiologicznych - grzybów, bakterii w powietrzu). Następnie do zasobnika nad przesłonę górną wprowadza się dodatkową porcję świeżego podłoża do hodowli fibroblastów, w ilości podłoża nie większej niż pojemność kompartmentu dolnego, korzystnie równej pojemności kompartmentu dolnego, po czym zamyka się zamknięcie kompartmentu górnego, które korzystnie zawiera filtr mikrobiologiczny. Na tym etapie rozpoczyna się proces hodowli fibroblastów na membranie kolagenowej. Poprzez złącze dozujące dla pipety, które można sterylnie dodawać dodatkowe substancje do podłoża w trakcie hodowli, w tym np. substancji zapobiegających kontaminacji bakteryjnej lub grzybiczej podłoża lub środków wspomagających wzrost komórek (sterydy).
Po odpowiednim czasie, korzystnie w przedziale 24-48 godzin, otwiera się dolną przesłonę i usuwa podłoże do dolnego kompartmentu zasobnika i ponownie zamyka się dolną przesłonę. Następnie otwiera się górną przesłonę wprowadzając w ten sposób porcję świeżego podłoża w przestrzeń między przesłonę dolną a górną, po czym górną przesłonę się zamyka i zostawia całość na czas od 48 do 72 godzin kontynuując proces hodowli w świeżym podłożu, natomiast kompartment dolny odłącza się i usuwa/wylewa zużyte podłoże, po czym ponownie przyłącza się go do kompartmentu środkowego. Cały proces można powtarzać według potrzeb.
Rozwiązanie według wynalazku zapewnia użycie dedykowanego podłoża płynnego - stanowiącego standardowo stosowaną mieszaninę składników odżywczych - jako środowiska wzrostu komórek, zapewniając stabilny i niezakłócony wzrost komórek bez konieczności użycia sekwencji wymiany podłoża, a jednocześnie umożliwia homogenny i atraumatyczny wzrost komórek na membranie, która zostanie zainstalowana w procedurze chirurgii kości wyrostka zębodołowego. Jako uniwersalne rozwiązanie może zostać wykorzystane w technice sterowanej regeneracji tkanek (GTR - Guided Tissue Regeneration) oraz kości (GBR - Guided Bone Regeneration - inaczej augmentacja), a także dla badania morfologii monowarstwy fibroblastów z użyciem technik mikroskopowych. Zastosowanie rolującego pierścienia stabilizującego membranę w zasobniku umożliwia zróżnicowany, dwustronny wzrost komórek na obu powierzchniach membrany.
Zaletą rozwiązania jest zredukowanie całkowitego czasu przeznaczonego na procedurę hodowli fibroblastów ludzkich na heterogennym/allogennym nośniku kolagenowym, ograniczenie czynności przygotowawczych wykonywanych przez personel, atraumatyczne przygotowanie implantowanej membrany powleczonej monowarstwą fibroblastów oraz redukcja ryzyka uszkodzenia hodowli fibroblastów wynikająca ze wzrostu komórek na biologicznym podłożu kolagenowym.
Z uwagi na fakt, że średnica zasobnika o przekroju okrągłym wynosi optymalnie do 40 mm oraz biorąc pod uwagę wymaganą objętość substancji płynnej służącej do hodowli, a gromadzonej w zasobniku, minimalna wysokość całego zasobnika według koncepcji wynalazku powinna wynosić w zakresie od 15 cm do 25 cm w zależności od rodzaju hodowli komórkowej i przeznaczenia biologicznego zasobnika.
Okresowa wymiana podłoża w poszczególnych sekcjach podlega regulacji za pomocą systemu dwóch przesłon. Taki układ zapewnia stabilną kultywację fibroblastów w warunkach in vitro.
Przedmiot wynalazku jest uwidoczniony w przykładzie wykonania na rysunku, na którym fig. 1 przedstawia schematycznie zasobnik po połączeniu poszczególnych elementów w widoku z boku, fig. 2 - zasobnik w widoku z góry, fig. 3 - zasobnik przed połączeniem poszczególnych elementów w widoku z boku, fig. 4 - przesłonę poprzeczną w widoku z góry, a fig. 5 - pierścień stabilizujący z zamontowaną na nim membraną kolagenową w widoku z góry.
Przykład 1
Przykładowy kompartmentowy zasobnik (10) do hodowli i namnażania powierzchniowego ludzkich autologicznych fibroblastów na nośniku membranowym składa się z trzech kompartmentów (sekcji/modułów) w postaci tulei o takich samych średnicach, to jest kompartmentu dolnego (2), kompartmentu środkowego (3) oraz kompartmentu górnego (4), łączonych ze sobą w sposób rozłączny, w których zamontowane są dwie przesłony poprzeczne (5) z regulacją prześwitu przesłony od całkiem zamkniętej do otwartej, przy czym jedna przesłona zamontowana jest w kompartmencie górnym a jedna na połączeniu kompartmentu dolnego i środkowego w sposób umożliwiający odseparowanie komór wewnętrznych tych kompartmentów od siebie. Od dołu zasobnik (10) wyposażony jest w podstawę (1) stanowiącą zamknięcie kompartmentu dolnego (2), od góry zasobnik (10) wyposażony jest w zamknięcie (6) kompartmentu górnego (4), natomiast przy połączeniu kompartmentu górnego z kompartmentem środkowym, a dokładnie w kompartmencie środkowym przy jego górnej krawędzi, zamontowany jest pierścień stabilizujący (7), na którym stabilnie zamontowana jest poprzez wklejenie jałowa kolagenowa membrana (8) z kolagenu pochodzenia ludzkiego do hodowli ludzkich fibroblastów.
Wysokość kompartmentu dolnego (2) wynosi 60 mm i stanowi 2/3 wysokości kompartmentu górnego (4) wynoszącej 90 mm, natomiast wysokość kompartmentu środkowego (3) wynosi 30 mm i stanowi 1/3 wysokości kompartmentu górnego (4), a przesłona (5) w kompartmencie górnym (4) usytuowana jest na 1/3 wysokości tego kompartmentu patrząc od podstawy (1).
Pierścień stabilizujący (7) membranę kolagenową (8) wykonany jest z tworzywa silikonowego i zamontowany jest w sposób umożliwiający jego rotację (wraz z zamontowaną na nim membraną) o 360° wokół osi obrotu prostopadłej do osi wzdłużnej zasobnika (10). Górne zamknięcie (6) kompartmentu górnego (4) stanowi nakrętka gwintowana, w której znajduje się filtr mikrobiologiczny zapobiegający kontaminacji mikroorganizmów, a w zamknięciu (6) zamontowane jest złącze dozujące (9) dla pipety. Membrana kolagenowa (8) ma średnicę 30 mm. Poszczególne kompartmenty (2), (3) i (4) zasobnika (10) wykonane są z poli(tetrafluoroetylenu) (PTFE).
Przykład 2
Przykładowy kompartmentowy zasobnik (10) do hodowli i namnażania powierzchniowego ludzkich autologicznych fibroblastów na nośniku membranowym składa się z trzech kompartmentów (sekcji/modułów) w postaci tulei o takich samych średnicach, to jest kompartmentu dolnego (2), kompartmentu środkowego (3) oraz kompartmentu górnego (4), łączonych ze sobą w sposób rozłączny, w których zamontowane są dwie przesłony poprzeczne (5) z regulacją prześwitu przesłony od całkiem zamkniętej do otwartej, przy czym jedna przesłona zamontowana jest w kompartmencie górnym a jedna na połączeniu kompartmentu dolnego i środkowego w sposób umożliwiający odseparowanie komór wewnętrznych tych kompartmentów od siebie. Od dołu zasobnik (10) wyposażony jest w podstawę (1) stanowiącą zamknięcie kompartmentu dolnego (2), od góry zasobnik (10) wyposażony jest w zamknięcie (6) kompartmentu górnego (4), natomiast przy połączeniu kompartmentu górnego z kompartmentem środkowym, a dokładnie w kompartmencie górnym przy jego podstawie, zamontowany jest pierścień stabilizujący (7), na którym stabilnie zamontowana jest poprzez wklejenie jałowa kolagenowa membrana (8) z kolagenu pochodzenia zwierzęcego do hodowli ludzkich fibroblastów.
Wysokość kompartmentu dolnego (2) wynosi 80 mm i stanowi 2/3 wysokości kompartmentu górnego (4) wynoszącej 120 mm, natomiast wysokość kompartmentu środkowego (3) wynosi 40 mm i stanowi 1/3 wysokości kompartmentu górnego (4), a przesłona (5) w kompartmencie górnym (4) usytuowana jest na 1/3 wysokości tego kompartmentu patrząc od podstawy (1).
Pierścień stabilizujący (7) membranę kolagenową (8) wykonany jest z tworzywa polimerowego. Górne zamknięcie (6) kompartmentu górnego (4) stanowi nakrętka gwintowana wyposażona w złącze dozujące (9) dla pipety. Membrana kolagenowa (8) ma średnicę 40 mm. Poszczególne kompartmenty (2), (3) i (4) zasobnika (10) wykonane są ze szkła.
Rozwiązanie według wynalazku może znaleźć zastosowanie do użycia klinicznego w przypadku procedur chirurgii periodontologicznej, chirurgii wyrostka zębodołowego (technika sterowanej regeneracji tkanek) i/lub chirurgii estetycznej. Kilkukompartmentowy moduł dla komórkowego podłoża hodowlanego z nośnikiem membranowym dla fibroblastów umożliwia efektywne i atraumartyczne pozyskanie warstwy autologicznych fibroblastów na membranie kolagenowej w warunkach klinicznych do zastosowania między innymi podczas zabiegów regeneracyjnych w obrębie jamy ustnej. Heterogenna, resorbowalna membrana kolagenowa, najczęściej pochodzenia świńskiego, umożliwia sterowaną regenerację tkanek przyzębia (GTR), zapewniając przyśpieszone odtworzenie uszkodzonej/zresorbowanej kości wyrostka zębodołowego.
Claims (11)
1. Kompartmentowy zasobnik do hodowli i namnażania powierzchniowego ludzkich autologicznych fibroblastów na nośniku membranowym, składający się z trzech kompartmentów (sekcji/modułów), to jest kompartmentu dolnego, kompartmentu środkowego oraz kompartmentu górnego, łączonych ze sobą w sposób rozłączny, znamienny tym, że kompartmenty są w postaci tulei o takich samych średnicach, a zasobnik (10) wyposażony jest w dwie przesłony poprzeczne (5) z regulacją prześwitu przesłony od całkiem zamkniętej do otwartej, przy czym jedna przesłona zamontowana jest w kompartmencie górnym a jedna na połączeniu kompartmentu dolnego i środkowego oddzielając - przy zamkniętej przesłonie - komory wewnętrzne tych kompartmentów od siebie, od dołu zasobnik (10) wyposażony jest w podstawę (1) stanowiącą zamknięcie kompartmentu dolnego (2), od góry zasobnik (10) wyposażony jest w zamknięcie (6) kompartmentu górnego (4), natomiast przy połączeniu kompartmentu górnego z kompartmentem środkowym, to jest w kompartmencie górnym przy jego podstawie albo korzystniej w kompartmencie środkowym przy jego górnej krawędzi, zamontowany jest pierścień stabilizujący (7), na którym stabilnie zamontowana, na przykład przyklejona jest jałowa kolagenowa membrana (8) z kolagenu pochodzenia ludzkiego lub zwierzęcego do hodowli ludzkich fibroblastów.
2. Kompartmentowy zasobnik według zastrz. 1, znamienny tym, że wysokość kompartmentu dolnego (2) stanowi 2/3 wysokości kompartmentu górnego (4), natomiast wysokość kompartmentu środkowego (3) stanowi 1/3 wysokości kompartmentu górnego (4), a przesłona (5) w kompartmencie górnym (4) usytuowana jest na 1/3 wysokości tego kompartmentu patrząc od podstawy (1).
3. Kompartmentowy zasobnik według zastrz. 1, znamienny tym, że pierścień stabilizujący (7) membranę kolagenową (8) ma funkcję rotacji wraz z zamontowaną na nim membraną o kąt do 360° wokół osi obrotu prostopadłej do osi wzdłużnej zasobnika (10).
4. Kompartmentowy zasobnik według zastrz. 1, znamienny tym, że górne zamknięcie (6) kompartmentu górnego (4) stanowi nakrętka gwintowana.
5. Kompartmentowy zasobnik według zastrz. 1, znamienny tym, że zasobnik (10) wyposażony jest w filtr mikrobiologiczny zapobiegający kontaminacji mikroorganizmów, umieszczony w górnej części kompartmentu górnego (4), najkorzystniej w zamknięciu (6) kompartmentu górnego, tak by znajdował się nad podłożem płynnym do hodowli komórkowej.
6. Kompartmentowy zasobnik według zastrz. 1, znamienny tym, że membrana kolagenowa (8) ma średnicę nie większą niż 40 mm, najkorzystniej między 30 a 40 mm.
7. Kompartmentowy zasobnik według zastrz. 1, znamienny tym, że wysokość kompartmentu środkowego (3) jest nie niższa niż 30 mm.
8. Kompartmentowy zasobnik według zastrz. 1, znamienny tym, że minimalna wysokość całego zasobnika (10) wynosi od 15 cm do 25 cm.
9. Kompartmentowy zasobnik według zastrz. 1, znamienny tym, że pierścień stabilizujący (7) wykonany jest z tworzywa sztucznego, polimerowego, na przykład silikonowego.
10. Kompartmentowy zasobnik według zastrz. 1, znamienny tym, że poszczególne kompartmenty (2), (3) i (4) zasobnika (10) wykonane są z tworzywa sztucznego, zwłaszcza z poli(tetrafluoroetylenu) albo plastiku albo ze szkła.
11. Kompartmentowy zasobnik według zastrz. 1, znamienny tym, że w zamknięciu (6) kompartmentu górnego (4) zamontowane jest złącze dozujące (9) dla pipety.
Priority Applications (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
PL433952A PL244125B1 (pl) | 2020-05-15 | 2020-05-15 | Kompartmentowy zasobnik do hodowli i namnażania powierzchniowego ludzkich autologicznych fibroblastów na nośniku membranowym |
EP21173198.9A EP3919607B1 (en) | 2020-05-15 | 2021-05-11 | Multi-compartment container for culturing and surface multiplication of human autologous fibroblasts on a membrane carrier |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
PL433952A PL244125B1 (pl) | 2020-05-15 | 2020-05-15 | Kompartmentowy zasobnik do hodowli i namnażania powierzchniowego ludzkich autologicznych fibroblastów na nośniku membranowym |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
PL433952A1 PL433952A1 (pl) | 2021-11-22 |
PL244125B1 true PL244125B1 (pl) | 2023-12-04 |
Family
ID=75904787
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
PL433952A PL244125B1 (pl) | 2020-05-15 | 2020-05-15 | Kompartmentowy zasobnik do hodowli i namnażania powierzchniowego ludzkich autologicznych fibroblastów na nośniku membranowym |
Country Status (2)
Country | Link |
---|---|
EP (1) | EP3919607B1 (pl) |
PL (1) | PL244125B1 (pl) |
Families Citing this family (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
IL311819A (en) * | 2021-09-30 | 2024-05-01 | Itayandbiond Ltd | A device for isolating cells from urine samples |
Family Cites Families (8)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CA1056746A (en) * | 1974-09-06 | 1979-06-19 | Chung J. Lai | Biologically active membrane material |
PL123425B1 (en) | 1978-09-22 | 1982-10-30 | Inst Zootechniki | Apparatus for measuring losses of heat being transmitted to the substrate by an apparatus simulating the living animal body |
PL150070B1 (en) * | 1986-06-12 | 1990-04-30 | Method of growing biological cell and tissue cultures and apparatus therefor | |
IT1281870B1 (it) | 1995-04-27 | 1998-03-03 | Fidia Advanced Biopolymers Srl | Pelle artificiale umana costituita da materiali biocompatibili a base di derivati dell'acido ialuronico |
JP2009529888A (ja) | 2006-03-14 | 2009-08-27 | ユニバーシティ オブ ロチェスター | 超薄多孔質メンブレンを有する細胞培養装置およびその使用 |
WO2010033820A1 (en) * | 2008-09-19 | 2010-03-25 | University Of Louisville Research Foundation, Inc. | Bioreactors, systems, and methods for vascularizing tissue constructs |
PL238767B1 (pl) * | 2017-05-22 | 2021-10-04 | Slaski Univ Medyczny W Katowicach | Zasobnik do pozyskiwania biofilmu do analizy mikroskopii elektronowej SEM |
CA3093581A1 (en) * | 2018-05-15 | 2019-11-21 | The University Of North Carolina At Chapel Hill | Devices, systems and apparatuses for generating self-sustaining hypoxic conditions and gaseous and non-gaseous chemical gradients for in vitro cell culture |
-
2020
- 2020-05-15 PL PL433952A patent/PL244125B1/pl unknown
-
2021
- 2021-05-11 EP EP21173198.9A patent/EP3919607B1/en active Active
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
EP3919607B1 (en) | 2023-11-15 |
EP3919607A1 (en) | 2021-12-08 |
PL433952A1 (pl) | 2021-11-22 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
ES2649616T3 (es) | Matriz e implante para ingeniería de tejidos | |
CN110191726A (zh) | 电纺基质和方法 | |
JP2022068312A (ja) | 組織を培養する装置及び方法 | |
US20150094808A1 (en) | Synthetic scaffolds and organ and tissue transplantation | |
CN103261394A (zh) | 细胞培养室及其制造方法、以及利用该细胞培养室的组织模型及其制作方法 | |
JPH07298876A (ja) | 通液性細胞培養担体と、この担体を用いる培養方法お よび培養装置 | |
WO2011023843A2 (es) | Elaboración de tejidos artificiales mediante ingeniería tisular utilizando biomateriales de fibrina y agarosa | |
JP6835384B1 (ja) | 細胞培養装置及びその使用 | |
US20160369221A1 (en) | Fluidic device and perfusion system for in vitro complex living tissue reconstruction | |
WO2018003858A1 (ja) | 細胞封入用デバイス及びその使用 | |
CN105412986B (zh) | 小肠黏膜下层载药补片及其制备方法和应用 | |
PL244125B1 (pl) | Kompartmentowy zasobnik do hodowli i namnażania powierzchniowego ludzkich autologicznych fibroblastów na nośniku membranowym | |
JP5154434B2 (ja) | 非無機化(non‐mineralized)結合組織の工学のためのビブリオ・ディアボリカス(Vibriodiabolicus)種により分泌される多糖の使用 | |
EP3315601B1 (en) | Method for culturing animal cell composition, method for producing animal cell composition using same, and animal cell composition | |
RU2449755C2 (ru) | Способ устранения костных дефектов с восстановлением в них костной ткани | |
CN101525596A (zh) | 一种使用同一份脐带血的血清来收获干细胞的方法 | |
KR102201546B1 (ko) | 세포가 적재된 생체 이식용 무세포 진피층 및 이의 제조방법 | |
CN104874024A (zh) | 细胞组装小肠黏膜下层仿生复合工程骨及其制备方法 | |
RU2736480C2 (ru) | Способ производства коллаген-ламининового матрикса для заживления язв, ожогов и ран кожи человека | |
CN101735984B (zh) | 一种组织工程支架材料接种细胞的简便方法 | |
ES2353990B1 (es) | Elaboracion de tejidos artificiales mediante ingenieria tisular utilizando biomateriales de fibrina y agarosa. | |
WO2018124888A1 (en) | Method of transporting in vivo grown tissue | |
JP4977854B2 (ja) | 組織形成用複合材料およびその製造方法 | |
RU2661738C2 (ru) | Способ получения тканеинженерной конструкции | |
Malik et al. | Organ, Histotypic and Organotypic Culture, and Tissue Engineering |