PL212212B1 - Kompozycja szczepionki przeciwko zakażeniu wirusem Zachodniego Nilu, kompozycja końskiej szczepionki, szczepionka wirusa Zachodniego Nilu oraz zastosowania - Google Patents

Kompozycja szczepionki przeciwko zakażeniu wirusem Zachodniego Nilu, kompozycja końskiej szczepionki, szczepionka wirusa Zachodniego Nilu oraz zastosowania

Info

Publication number
PL212212B1
PL212212B1 PL368535A PL36853502A PL212212B1 PL 212212 B1 PL212212 B1 PL 212212B1 PL 368535 A PL368535 A PL 368535A PL 36853502 A PL36853502 A PL 36853502A PL 212212 B1 PL212212 B1 PL 212212B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
virus
vaccine
tcid
west nile
oil
Prior art date
Application number
PL368535A
Other languages
English (en)
Other versions
PL368535A1 (pl
Inventor
Hsien-Jue Chu
Original Assignee
Wyeth Corp
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Wyeth Corp filed Critical Wyeth Corp
Publication of PL368535A1 publication Critical patent/PL368535A1/pl
Publication of PL212212B1 publication Critical patent/PL212212B1/pl

Links

Classifications

    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00—Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/10—Dispersions; Emulsions
    • A61K9/107—Emulsions ; Emulsion preconcentrates; Micelles
    • A61K9/1075—Microemulsions or submicron emulsions; Preconcentrates or solids thereof; Micelles, e.g. made of phospholipids or block copolymers
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K48/00—Medicinal preparations containing genetic material which is inserted into cells of the living body to treat genetic diseases; Gene therapy
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/02—Bacterial antigens
    • A61K39/08—Clostridium, e.g. Clostridium tetani
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/12—Viral antigens
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/39—Medicinal preparations containing antigens or antibodies characterised by the immunostimulating additives, e.g. chemical adjuvants
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P25/00—Drugs for disorders of the nervous system
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/04—Antibacterial agents
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00—Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/12—Antivirals
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/51—Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
    • A61K2039/525—Virus
    • A61K2039/5252—Virus inactivated (killed)
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/51—Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
    • A61K2039/525—Virus
    • A61K2039/5254—Virus avirulent or attenuated
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/51—Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
    • A61K2039/53—DNA (RNA) vaccination
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/55—Medicinal preparations containing antigens or antibodies characterised by the host/recipient, e.g. newborn with maternal antibodies
    • A61K2039/552—Veterinary vaccine
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/555—Medicinal preparations containing antigens or antibodies characterised by a specific combination antigen/adjuvant
    • A61K2039/55511—Organic adjuvants
    • A61K2039/55566—Emulsions, e.g. Freund's adjuvant, MF59
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/70—Multivalent vaccine
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2710/00—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA dsDNA viruses
    • C12N2710/00011—Details
    • C12N2710/16011—Herpesviridae
    • C12N2710/16711—Varicellovirus, e.g. human herpesvirus 3, Varicella Zoster, pseudorabies
    • C12N2710/16734—Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2760/00—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses negative-sense
    • C12N2760/00011—Details
    • C12N2760/16011—Orthomyxoviridae
    • C12N2760/16111—Influenzavirus A, i.e. influenza A virus
    • C12N2760/16134—Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2770/00—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses positive-sense
    • C12N2770/00011—Details
    • C12N2770/24011—Flaviviridae
    • C12N2770/24111—Flavivirus, e.g. yellow fever virus, dengue, JEV
    • C12N2770/24134—Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2770/00—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses positive-sense
    • C12N2770/00011—Details
    • C12N2770/36011—Togaviridae
    • C12N2770/36111—Alphavirus, e.g. Sindbis virus, VEE, EEE, WEE, Semliki
    • C12N2770/36134—Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein
    • Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30—Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Dispersion Chemistry (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Neurosurgery (AREA)
  • Neurology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

Przedmiotem wynalazku jest kompozycja szczepionki przeciwko zakażeniu wirusem Zachodniego Nilu, kompozycja końskiej szczepionki, szczepionka wirusa Zachodniego Nilu oraz zastosowania. Niniejszym opisano także sposoby podawania takich szczepionek ssakom, w szczególności koniom.
Wirus Zachodniego Nilu, znany jako Flavivirus, zidentyfikowano po raz pierwszy w 1937 r. w Afryce i wykryto po raz pierwszy w Ameryce Północnej w 1999 r. Za główną przyczynę rozprzestrzeniania się zakażenia wewnątrz i pomiędzy krajami uważa się migrujące ptaki. Wirus jest przenoszony przez komary, które zakaziły się żerując na ptakach z wiremią. Następnie wirus namnaża się podczas okresów żywienia się dorosłego komara krwią. Następnie zakażone komary przekazują wirusa ludziom i zwierzętom, na których żerują.
Wirus Zachodniego Nilu jest czynnikiem wywołującym chorobę wirusową Zachodniego Nilu, w szczególności zapalenie mózgu Zachodniego Nilu, w przeważającej większości u ludzi, innych ssaków i ptaków. Główny problem stanowi brak skutecznego leczenia choroby wywołanej przez wirusa Zachodniego Nilu. Poza lekami przeciwzapalnymi stosowanymi do zwalczania obrzęku tkanek ośrodkowego układu nerwowego, nie ma innego dostępnego działania medycznego. Nie ma także znanej dostępnej szczepionki zapobiegającej zakażeniu. Jedynym środkiem kontrolowania wirusa Zachodniego Nilu było do tej pory zapobieganie kontaktom z nosicielami.
Naukowcy sądzą, że wirus Zachodniego Nilu przechodzi ten sam wzór zakażenia, który wykryto dla innych wirusów przenoszonych przez komary. Kiedy zakażony komar gryzie koniowatego, wirus dostaje się do skóry lub tkanek tuż poniżej miejsca ugryzienia, skąd przedostaje się do układu krążenia. Wirus może się namnażać we krwi i u koniowatego może wystąpić gorączka, która często nie jest wykrywana, ponieważ w tym czasie nie ma innych objawów choroby. Jednakże, kiedy wirus dokonuje inwazji układu nerwowego, i objawy kliniczne pojawiają się w ciągu jednego do trzech dni. Najbardziej narażone koniowate, takie jak konie, wykazują najpierw objawy osłabienia lub paraliżu tylnego i złą koordynację. Zmianom fizycznym może towarzyszyć depresja i związane z nią zmiany zachowania. W poważnych przypadkach mogą rozwijać się drżenia, konwulsje, przebieranie kończynami i paraliż. Obserwowano również poważne problemy neurologiczne i zgony. Dotychczas nie jest dostępna szczepionka zapobiegająca zakażeniu wirusem Zachodniego Nilu u koniowatych i jedynym środkiem kontroli występowania wirusa Zachodniego Nilu jest zapobieganie kontaktowi z nosicielem.
Dlatego też istnieje zapotrzebowanie na bezpieczne i skuteczne środki kontrolowania rozprzestrzeniania się wirusa Zachodniego Nilu u ssaków i ptaków. W szczególności istnieje zapotrzebowanie na szczepionkę, głównie do podawania koniowatym, wystarczająco bezpiecznej do podawania nawet ciężarnym klaczom, bez działań niepożądanych. Potrzebna jest również szczepionka nadająca się do zapobiegania lub łagodzenia objawów choroby wywołanej przez wirusa Zachodniego Nilu, zwłaszcza w zapaleniu mózgu Zachodniego Nilu, koniowatych i innych ssaków.
Przedmiotem wynalazku jest kompozycja szczepionki przeciwko zakażeniu wirusem Zachodniego Nilu, która obejmuje: inaktywowany cały wirus Zachodniego Nilu w immunogennie skutecznej ilości, ulegający metabolizmowi olej w immunogennie stymulującej ilości; oraz farmaceutycznie dopuszczalny nośnik, przy czym kompozycja szczepionki jest skuteczna u koniowatych wobec zakażenia wirusem Zachodniego Nilu do 12 miesięcy, a inaktywowanym wirusem Zachodniego Nilu jest szczep VM-2 o numerze dostępu ATCC nr PTA-6860 lub jego hodowla następcza (ang. subculture). Korzystnie jednostkowa dawka szczepionki według wynalazku obejmuje od około 1 x 104 TCID50 do około 1 x 108 TCID50, korzystniej od około 1 x 104 TCID50 do około 5 x 107 TCID50 wirusa. Najkorzystniej wirus w kompozycji według wynalazku jest obecny w ilości wystarczającej do dostarczenia co najmniej około 1 x 104 TCID50 na dawkę jednostkową.
Ponadto korzystnie ulegający metabolizmowi olej w kompozycji według wynalazku stanowi olej SP. Korzystniej, ulegający metabolizmowi olej jest obecny w ilości od około 4% do 10% obj./obj. Najkorzystniej ulegający metabolizmowi olej jest obecny w ilości około 5% obj./obj.
Również korzystnie wirus w kompozycji według wynalazku jest obecny w ilości wystarczającej do dostarczenia co najmniej około 1 x 106 TCID50, korzystniej 5 x 107 TCID50 na dawkę jednostkową.
W korzystnej postaci wykonania kompozycja według wynalazku ponadto obejmuje składnik szczepionki skierowany przeciwko wirusowi wścieklizny, wirusowi Wschodniego końskiego zapalenia mózgu, wirusowi Zachodniego końskiego zapalenia mózgu, wirusowi Wenezuelskiego końskiego zapalenia mózgu, końskiemu wirusowi opryszczki, takiemu jak EHV-1 lub EHV-4, Ehrlichia risticii, Streptococcus equi, anatoksynie tężca, wirusowi końskiej grypy (EIV).
PL 212 212 B1
Przedmiotem wynalazku jest również kompozycja końskiej szczepionki obejmująca:
a) co najmniej około 1 x 104 TCID50 do około 1 x 109 TCID50 na dawkę jednostkową inaktywowanego wirusa Zachodniego Nilu przy czym inaktywowanym wirusem Zachodniego Nilu jest szczep VM-2 o numerze dostępu ATCC nr PTA-6860 lub jego hodowla następcza; oraz
b) około 4% do 10% obj./obj. adiuwanta z ulegającego metabolizmowi oleju obejmującego około 1 do 3% kopolimeru i blokowego polioksyetyleno-polioksypropylenowego, około 2 do 6% skwalanu i około 0,1 do 0,5% monooleinianu polioksyetylenosorbitolu.
W kolejnym aspekcie wynalazek dostarcza szczepionki wirusa Zachodniego Nilu dla koniowatych obejmującej.
a) co najmniej około 1 x 106 TCID50 do około 1 x 108 TCID50, korzystnie 1 x 107 TCID50, korzystniej 5 x 107 TCID50, na dawkę jednostkową uśmierconego lub inaktywowanego wirusa Zachodniego Nilu, przy czym wirusem Zachodniego Nilu jest szczep VM-2 o numerze dostępu ATCC nr PTA-6860 lub jego hodowla następcza; oraz
b) co najmniej około 1% obj./obj. adiuwanta zawierającego co najmniej jeden ulegający metabolizmowi olej i co najmniej jeden czynnik zwilżający lub dyspergujący.
Korzystnie szczepionka według wynalazku jest sformułowana w dwóch jednostkach dawki. Również korzystnie szczepionka według wynalazku zawiera co najmniej około 4% adiuwanta, korzystniej około 4% do 10% adiuwanta. W korzystnej postaci wykonania adiuwantem w szczepionce według wynalazku jest olej SP. Ponadto korzystnie szczepionka według wynalazku zawiera co najmniej dwa czynniki zwilżające lub dyspergujące, korzystniej stanowiące niejonowe środki powierzchniowo czynne, które w najkorzystniejszej postaci są wybrane z grupy składającej się z kopolimerów blokowych polioksyetylen/polioksypropylen i estrów polioksyetylenowych
W korzystnej postaci wykonania szczepionka według wynalazku jest sformułowana w dwóch jednostkach dawki, przy czym każda jednostka dawki obejmuje około 0,5 do 5 ml szczepionki zawierającej 5 x 107 TCID50 wirusa i około 1 do 10% obj./obj. adiuwanta, przy czym adiuwant obejmuje co najmniej jeden ulegający metabolizmowi olej i co najmniej dwa czynniki zwilżające i dyspergujące stanowiące niejonowe czynniki powierzchniowo czynne, oraz ponadto farmaceutycznie dopuszczalny nośnik. Korzystnie adiuwant stanowi olej SP, korzystniej olej SP obejmuje skwalan w ilości około 2 do 6% wag. adiuwanta, kopolimer blokowy polioksyetylen/polioksypropylen w ilości około 1 do 3% wag. adiuwanta i monooleinian polioksyetylenosorbitolu w ilości około 0,1 do 0,5% wag. adiuwanta.
Również korzystnie szczepionka według wynalazku ponadto obejmuje co najmniej jeden składnik szczepionki skierowany przeciwko wirusowi grypy, wirusowi Wschodniego końskiego zapalenia mózgu, wirusowi Zachodniego końskiego zapalenia mózgu, wirusowi Wenezuelskiego końskiego zapalenia mózgu, wirusowi Rhinopneumonits i anatoksynie tężca.
Kolejnym przedmiotem wynalazku jest zastosowanie kompozycji obejmującej inaktywowany cały wirus Zachodniego Nilu w immunogennie skutecznej ilości, ulegający metabolizmowi olej, korzystnie olej SP, w immunogennie stymulującej ilości, korzystnie w ilości 5% obj./obj., oraz farmaceutycznie dopuszczalny nośnik do wytwarzania szczepionki do zapobiegania lub łagodzenia objawów zapalenia mózgu Zachodniego Nilu u koniowatych, w szczególności koni, a korzystniej ciężarnych klaczy, przy czym szczepionka jest skuteczna u koniowatych wobec zakażenia wirusem Zachodniego Nilu do 12 miesięcy, a inaktywowanym wirusem Zachodniego Nilu jest szczep VM-2 o numerze dostępu ATCC nr PTA-6860 lub jego hodowla następcza.
Korzystnie szczepionka otrzymywana zgodnie z zastosowaniem według wynalazku jest przeznaczona do podawania pozajelitowo, korzystnie domięśniowo, a wirus jest obecny w ilości wystarczającej, aby dostarczyć co najmniej około 1 x 104 TCID50 do około 1 x 109 TCID50, korzystnie co najmniej około 1 x 106 TCID50, na dawkę jednostkową.
Zgodnie z zastosowaniem według wynalazku wirus jest obecny w ilości dostarczającej co najmniej około 1 x 106 TCID50 na dawkę jednostkową, oraz co najmniej dwie dawki są podawane każdemu z przedstawicieli koniowatych.
Szczegółowy opis wynalazku
Ogólnie problem z projektowaniem nowej szczepionki polega na tym, że szczepionka z żywym wirusem może być potencjalnie niebezpieczna dla danego gospodarza, który jest jej celem i że szczepionka z zabitym lub inaktywowanym wirusem może potencjalnie nie posiadać zdolności do stymulowania wystarczająco skutecznej odpowiedzi immunologicznej. Aby otrzymać możliwą do przyjęcia skuteczność, w kompozycji szczepionki stosuje się powszechnie adiuwant lub immunogennie stymulujący składnik w połączeniu z zabitym lub inaktywowanym wirusem. Jednakże bezpieczeństwo gospo4
PL 212 212 B1 darza, który jest celem szczepionki, jest często zmniejszone przez dodawanie adiuwanta. Na przykład, okazywało się wielokrotnie, że ciężarne zwierzęta mają znacząco wyższy wskaźnik poronień po podawaniu szczepionki z zabitego lub inaktywowanego wirusa zawierającej adiuwant.
Wiadomo obecnie, że kiedy używa się odpowiedniego adiuwanta np. metabolizowanego oleju, takiego jak olej SP, w połączeniu z immunogennie czynnym składnikiem jak tutaj opisywany, to wypadkowa kompozycja szczepionki przeciw wirusowi Zachodniego Nilu jest bezpieczna w użyciu i jest szczególnie użyteczna u koniowatych, zwłaszcza u koni, a nawet u ciężarnych klaczy, gdzie także wykazywała skuteczność. Dlatego też wynalazek osiąga towarzyszące sobie cele skutecznej immunizacji i bezpieczeństwa, zwłaszcza u zwierząt ciężarnych.
Bezpieczna i skuteczna kompozycja szczepionki może obejmować: immunogennie czynny składnik wybrany z grupy zawierającej żywego atenuowanego, inaktywowanego lub zabitego całego wirusa Zachodniego Nilu lub jego podjednostkę, antygen pochodzący z omawianego wirusa, DNA pochodzący z omawianego wirusa, plazmidowy DNA wirusa Zachodniego Nilu, plazmid ze wstawkami sekwencji omawianego wirusa, oraz ich mieszaninę, adiuwant i ewentualnie farmaceutycznie dopuszczalny nośnik. Kompozycja szczepionki może być podawana bezpiecznie i skutecznie ssakom i ptakom, w szczególności koniowatym, takim jak konie, osły, osłowate itd. Kompozycja szczepionki jest w szczególności odpowiednia dla koni w celu zapobiegania lub łagodzenia objawów choroby wywołanej przez wirusa Zachodniego Nilu, takiej jak zapalenie mózgu.
DNA pochodzący z wirusa Zachodniego Nilu można otrzymać poprzez jego izolację z takich źródeł jak płyny lub tkanki gatunków należących do koniowatych lub ptaków, u których zdiagnozowano zapalenie mózgu Zachodniego Nilu. Źródła te obejmują płyn mózgowo-rdzeniowy lub partie rdzenia kręgowego lub mózgu. DNA można również otrzymać stosując inne dostępne techniki, jak technologia plazmidowa. Na przykład, odpowiednie komórki organizmu, np. E. coli, można poddać transformacji plazmidem zawierającym wstawki sekwencji kodujące białko wirusa Zachodniego Nilu w celu otrzymania komórek wyjściowych (ang. master seed). Komórki wyjściowe mogą być następnie hodowane i pasażowane. Komórki poddane transformacji, zawierające DNA wirusa Zachodniego Nilu, można następnie zbierać oraz izolować i otrzymywać DNA stosując techniki dostępne specjalistom w dziedzinie.
Całego wirusa Zachodniego Nilu lub jego podjednostkę można izolować z zakażonych zwierząt stosując tradycyjne techniki. Próbki wirusa mogą być również pozyskiwane ze zbiorów hodowli tkankowych, utrzymujących depozyt organizmów, takich jak wirus Zachodniego Nilu. W American Type Culture Collection (ATCC), na przykład, wirus Zachodniego Nilu jest zdeponowany pod numerami ATCC VR-82, VR-1267 i VR-1267 AF.
Całego wirusa Zachodniego Nilu lub jego podjednostkę można użyć w postaci żywego atenuowanego wirusa, jednakże korzystniej w postaci zabitego lub inaktywowanego tradycyjnymi środkami inaktywującymi, na przykład chemiczną inaktywacją, stosując chemiczne środki inaktywujące, takie jak podwójna etylenoimina, beta-propiolakton, formalina, aldehyd glutarowy, dodecylosiarczan sodowy lub podobne, lub ich mieszanina, najkorzystniej formalina. Omawianego wirusa można również inaktywować za pomocą ogrzewania lub psoralenu w obecności światła ultrafioletowego. Atenuację uzyskuje się tradycyjnymi metodami.
Cały wirus Zachodniego Nilu lub jego podjednostkę można utrzymywać lub hodować w mózgach mysich lub w odpowiednich podłożach hodowli tkankowych, takich jak podłoża optiMEM (LTI, Grand Island, NY) lub MEM, lub w komórkach znanych w dziedzinie, takich jak komórki nerkowe szarej małpy afrykańskiej (ang. African green monkey kidney cells) (komórki Vero) lub komórki osesków chomika (BHK, ang. baby hamster cells), korzystnie w komórkach Vero. Omawianego wirusa można następnie oddzielać od hodowli tkankowej lub podłoża komórkowego stosując tradycyjne techniki, takie jak wirowanie, filtrowanie lub podobne.
Korzystny izolat wirusa Zachodniego Nilu można otrzymać z National Veterinary Services Laboratory (część Departamentu Rolnictwa Stanów Zjednoczonych) w Ames, IA, jako szczep VM-2. Szczep wirusa można oczyszczać z łysinek do trzech razy i pasażować do X + 5 w komórkach Vero.
W użytym tu znaczeniu termin „immunogennie czynny/„immunogennie aktywny określa zdolność do stymulowania odpowiedzi immunologicznej, tj. do stymulowania wytwarzania przeciwciał, zwłaszcza przeciwciał humoralnych lub do stymulowania odpowiedzi komórkowej. Na przykład, zdolność do stymulowania wytwarzania krążących lub wydzielniczych przeciwciał lub wytwarzania odpowiedzi komórkowej na miejscowych obszarach śluzówki (np. śluzówka jelit), we krwi obwodowej, płynie mózgowo-rdzeniowym lub podobnych.
PL 212 212 B1
Ilość czynnego immunogennie składnika, która jest skuteczna i immunizująca, może być różna i jest dowolną ilością, wystarczającą do wywołania odpowiedzi immunologicznej i nadania immunologicznej ochrony przeciwko chorobie wywoływanej przez wirusa Zachodniego Nilu. Ilość immunogennie czynnego składnika na dawkę jednostkową to korzystnie co najmniej około 1 x 104 TCID50, korzystnie od około 1 x 104 TCID50 do około 109 TCID50, korzystniej co najmniej około 1 x 106 TCID50, zwłaszcza 106 do 107 TCID50 (korzystnie co najmniej około 1 x 107). Ilości te są stosowne dla zabitego lub inaktywowanego całego wirusa lub jego podjednostki lub antygenu lub DNA z niego pochodzącego lub ich mieszaniny. W szczególności pożądane jest, użycie w kompozycji szczepionki według wynalazku co najmniej około 5 x 107 TCID50 zabitego lub inaktywowanego całego wirusa Zachodniego Nilu lub jego podjednostki lub antygenu lub DNA z niego pochodzącego lub ich mieszaniny.
Rozważane jest, że w jednej jednostce dawki kompozycji szczepionki można wykorzystać około 50 do 3000 mikrogramów ^g lub 10-6 gramów) plazmidowego DNA wirusa Zachodniego Nilu. Bardziej korzystnie można wykorzystać około 100 do 1000 μg, a najbardziej korzystnie 100 do 250 μg DNA plazmidowego.
Jako schemat szczepień rozważana jest tutaj co najmniej jedna dawka jednostkowa na zwierzę. Szczególnie użyteczne mogą być dwie lub większa liczba jednostek dawki. Dawka jednostkowa może typowo zawierać około 0,1 do 10 mililitrów kompozycji szczepionki, korzystnie około 0,5 do 5 mililitrów, a jeszcze bardziej korzystnie około 1 do 2 mililitrów, z każdą dawką jednostkową zawierającą uprzednio opisaną ilość wirusa lub składnika wirusowego. Specjalista w dziedzinie zauważy, że określona ilość kompozycji szczepionki na dawkę jednostkową, jak również ogólna liczba jednostek dawki w schemacie szczepienia, może być optymalizowana tak długo, jak zwierzęciu dostarczana jest skutecznie immunizująca ilość wirusa lub jego składnika.
Kompozycja szczepionki według wynalazku przeciw wirusowi Zachodniego Nilu zawiera jeden lub więcej adiuwantów. W użytym tu znaczeniu termin „adiuwant odnosi się do każdego składnika, który poprawia odpowiedź na szczepionkę lub immunogen. Typowo adiuwant obejmuje około 0,1 do 50% obj./obj. kompozycji szczepionki według wynalazku, korzystnie około 1 do 50% obj./obj. szczepionki, bardziej korzystnie około 1 do 20%, zwłaszcza 1 do 10% obj./obj. Jeszcze bardziej korzystne są ilości około 4 do 10%.
Odpowiednie adiuwanty zawierają immunostymulujące oleje, takie jak pewne metabolizowane oleje. Metabolizowane oleje odpowiednie do użycia w kompozycji według wynalazku obejmują zarówno emulsje olejowe, np. olej SP (opisany dalej), Emulsigen (MPV Laboratories, Ralston, NZ), Montanide 264,266,26 (Seppic S.A. Paryż, Francja), a także olej arachidowy (z orzeszków ziemnych) i inne oleje powstałe na bazie roślinnej, skwalan (olej z wątroby rekina) lub inne metabolizowane oleje, dla których można pokazać, że są odpowiednie jako adiuwanty w weterynaryjnej praktyce szczepień.
Adiuwant oprócz metabolizowanego oleju może być kompozycją obejmującą dodatkowo jeden lub więcej czynników zwilżających lub dyspergujących w ilości około 0,1 do 25%, bardziej korzystnie około 1 do 10% i jeszcze bardziej korzystnie około 1 do 3% objętości adiuwanta. Szczególnie korzystnymi czynnikami zwilżającymi lub dyspergującymi są niejonowe środki powierzchniowo czynne. Użyteczne niejonowe środki powierzchniowo czynne obejmują kopolimery blokowe polioksyetyleno-polioksypropylenowe, zwłaszcza te sprzedawane pod znakiem towarowym PLURONIC i dostępne w BASF Corporation (Mt. Olive, NJ). Inne użyteczne niejonowe środki powierzchniowo czynne obejmują estry polioksyetylenowe, takie jak monooleinian polioksyetylenosorbitolu, dostępny pod znakiem towarowym TWEEN 80. Jako część kompozycji szczepionki według wynalazku w adiuwancie pożądane może być włączenie więcej niż jednego, np. co najmniej dwóch, czynników zwilżających lub dyspergujących.
Inne składniki adiuwanta mogą obejmować takie składniki konserwujące jak formalina i tiomersal, w ilościach do około 1% obj./obj. adiuwanta.
Szczególnie korzystnym adiuwantem jest olej SP. Określenie „olej SP, używane w opisie i przykładach, oznacza emulsję olejową obejmującą kopolimer blokowy polioksyetyleno-polioksypropylenowy, skwalan, monooleinian polioksyetylenosorbitolu i buforowany roztwór soli. Ogólnie emulsja olejowa SP zawiera około 1 do 3% obj./obj. kopolimeru blokowego, około 2 do 6% obj./obj. skwalanu, bardziej korzystnie około 3 do 6% obj./obj. skwalanu i około 0,1 do 0,5% obj./obj. monooleinianu polioksyetylenosorbitolu, przy czym resztę stanowi buforowany roztworów soli.
Kiedy w kompozycji szczepionki według wynalazku jako adiuwant są wykorzystywane immunogennie stymulujące ilości oleju SP, mogą się one różnić w zależności od immunogennie aktywnego składnika, stopnia potencjalnej ekspozycji na zakażenie, metody podawania kompozycji szczepionki, wieku i rozmiaru koniowatego lub im podobnych. Ogólnie, odpowiednie są ilości około 1 do 50%
PL 212 212 B1 obj./obj. kompozycji szczepionki, korzystnie około 4 do 10% obj./obj. i bardziej korzystnie około 4 do 5% obj./obj. oleju SP.
Farmaceutycznie (lub farmakologicznie) dopuszczalnym nośnikiem, odpowiednim do wykorzystania w kompozycji szczepionki według wynalazku może być każdy konwencjonalny ciekły nośnik, odpowiedni do farmaceutycznych kompozycji weterynaryjnych, korzystniej zrównoważony roztwór soli lub inny roztwór na bazie wody, odpowiedni do stosowania w podłożach hodowli tkankowych. Wykorzystywane mogą być również inne dostępne nośniki.
Dodatkowe dostępne w dziedzinie zaróbki mogą być również włączone w kompozycję szczepionki, zgodnie z różnymi wykonaniami opisanymi wcześniej. Można na przykład wykorzystać związki modyfikujące pH.
Składniki kompozycji szczepionki według wynalazku, jak to opisano wcześniej, włączając nośnik, mogą być łączone razem za pomocą dostępnych technik.
Dodatkowo rozważa się, że oprócz immunogennie czynnego składnika wirusa Zachodniego Nilu, jak to opisano powyżej, kompozycja szczepionki jako czynny składnik może również zawierać inne czynne składniki, takie jak antypatogenny składnik skierowany przeciw wirusowi wścieklizny, wirusowi Wschodniego zapalenia mózgu koniowatych, wirusowi Zachodniego zapalenia mózgu koniowatych, wirusowi Wenezuelskiego zapalenia mózgu koniowatych, wirusowi opryszczki koniowatych, takiego jak EHV-1 lub EHV-4, Ehrlichia risticii, Streptococcus equi, anatoksynie tężca, wirusowi grypy koniowatych (EIV), wirusowi Wschodniego, Zachodniego i Wenezuelskiego zapalenia nosa i płuc lub podobnym lub ich kombinacjom. Ilości jednego lub większej liczby tych wirusów mogą być określone na podstawie ich skuteczności opisanej w literaturze z dziedziny lub przy zastosowaniu dostępnych technik.
W jednym z wykonań wynalazku immunogennie czynny składnik wynalazku może być wprowadzony do liposomów przy zastosowaniu znanej technologii, którą opisano w Nature, 1974, 252, 252-254 lub w Journal of Immunology, 1978, 120, 1109-13. W innym wykonaniu wynalazku immunogennie czynny składnik może być skoniugowany z odpowiednimi biologicznymi składnikami, takimi jak polisacharydy, peptydy, białka lub podobnymi lub ich kombinacją.
W korzystnym wykonaniu wynalazku, kompozycja szczepionki według wynalazku może być wytworzona w formie dawki jednostkowej, jak to wcześniej opisano, aby ułatwić podawanie i zapewnić jednolitość dawkowania. Preparat może być wytworzony przy zastosowaniu dostępnych technik, takich jak te dające się zastosować do przygotowania emulsji.
Kompozycję szczepionki według wynalazku można podawać pozajelitowo, na przykład domięśniowo, podskórnie, dootrzewnowo, śródskórnie lub podobnie, korzystnie domięśniowo; lub omawianą kompozycję można podawać doustnie lub donosowo.
Niniejszym opisano także sposób zapobiegania lub łagodzenia objawów zapaleniu mózgu Zachodniego Nilu u koniowatych, korzystnie u koni, który obejmuje podawanie omawianym koniowatym bezpiecznej kompozycji szczepionki, jak to powyżej opisano.
W rzeczywistej praktyce, kompozycję szczepionki według wynalazku podaje się pozajelitowo, podskórnie, doustnie, donosowo lub innymi dostępnymi sposobami, korzystnie dootrzewnowo, bardziej korzystnie domięśniowo, w skutecznych ilościach zgodnie z planem, który można ustalić na podstawie przewidywanego czasu potencjalnej ekspozycji na nosiciela wirusa Zachodniego Nilu. W ten sposób, leczone zwierzę może mieć czas na budowanie odporności przed naturalną ekspozycją. Jako nieograniczający przykład, typowy plan postępowania lub schemat dawkowania może zawierać podawanie pozajelitowe, korzystniej wstrzyknięcie domięśniowe jednej dawki jednostkowej, co najmniej około 2-8 tygodni przed potencjalną ekspozycją. Korzystne jest co najmniej dwukrotne podawanie, na przykład jedna dawka jednostkowa około 8 tygodni przed potencjalną ekspozycją na wirusa i druga dawka jednostkowa około 3-5 tygodni przed potencjalną ekspozycją leczonego zwierzęcia. Jak opisano wcześniej, typowo dawka jednostkowa będzie w zakresie około 0,1 do 10 mililitrów kompozycji szczepionki zawierającej ilości czynnika czynnego i procentowe ilości adiuwanta i czynnika nieaktywnego(ych), jak opisano wcześniej. Bardziej korzystna jest być może dawka jednostkowa w zakresie około 0,5 do 5 mililitrów, a szczególnie korzystna w zakresie około 1 do 2 mililitra(ów).
Dla lepszego zrozumienia wynalazku przestawiono poniżej następujące przykłady. Przykłady te jedynie ilustrują i zrozumiałym jest, że w żaden sposób nie ograniczają zakresu lub podstawowych zasad wynalazku. Faktycznie różne modyfikacje wynalazku, dodatkowe do tych pokazanych i opisanych tutaj, staną się oczywiste dla specjalistów w dziedzinie po następujących przykładach i powyższym opisie. Modyfikacje te również mieszczą się w zakresie załączonych zastrzeżeń.
PL 212 212 B1
P r z y k ł a d 1
Przygotowanie szczepionki
A) Przygotowanie oleju SP
Opis składnika Objętość
Kopolimer blokowy polioksyetyleno-polioksy- 20,0 ml propylenowy (Pluronic® L121, BASF, Mt. Olive, NJ)
Skwalan (Kodak, Rochester, NY) 40,0 ml
Monooleinian polioksyetylenosorbitolu (Tween 80, 3,2 ml
Sigma Chemical, St. Louis, MO)
Buforowany roztwór soli (roztwór D-V PBS, wolny od 936,8 ml
Ca i Mg)
Składniki miesza się i homogenizuje do czasu uzyskania stabilnej masy lub emulsji. Składniki lub mieszaninę można autoklawować przed homogenizacją. Emulsję można później sterylizować przez filtrację. Można dodać formalinę do stężenia końcowego 0,2%. Można dodać tiomersal do końcowego rozcieńczenia 1:10000.
B) Przygotowanie szczepionki
Izolat wirusa Zachodniego Nilu z koniowatego, otrzymany z USDA w AMES, IA (Lot No. VM-2, Equine Origin, 1999 izolat północno-amerykański, drugi pasaż w hodowli komórek VeroM), hodowano w licznych hodowlach komórek Vero w pożywce do hodowli tkankowej OptiMEM (LTI, Grand Island, NY) w temp. 37°C. Ustalano miano zebranego materiału, a następnie inaktywowano go za pomocą dodania 10% roztworu formaliny do końcowego stężenia 0,1%. Inaktywację prowadzi się w temp. 37°C przez okres nie krótszy niż 144 godziny. Następnie dodawana jest 0,1% formalina i przeprowadzana jest inkubacja w temp. 37°C przez kolejny okres nie krótszy niż 144 godz.
Szczepionki są przygotowywane poprzez zawieszanie odpowiedniej objętości płynu z inaktywowanym wirusem w 1-20% objętościowych oleju SP na 1 ml dawki.
P r z y k ł a d 2
Ocena odpowiedzi przeciwciał na domięśniowe wstrzyknięcie badanej szczepionki
W ocenie tej, konie podzielono w sposób losowy na cztery grupy: pierwszej grupie, złożonej z dwudziestu koni, podano badaną szczepionkę w dawce 1 x 107 TCID50 (dawka zakażająca hodowlę tkankową, ang. Tissue Culture Infectious Dose), drugiej grupie, złożonej z dwudziestu koni, podano badaną szczepionkę w dawce 5 x 107 TCID50, trzeciej grupie, złożonej z pięciu koni, podano badaną szczepionkę w dawce 1 x 108 TCID50, a czwartą grupę, złożoną z ośmiu koni, pozostawiono jako nieszczepioną kontrolę środowiskową. Konie traktowane otrzymywały pierwszą dawkę szczepionki zgodnie z grupą, do której zostały przypisane. Po dwudziestu jeden dniach od podania pierwszej dawki, podano drugą dawkę tej samej szczepionki. Wszystkim koniom pobierano krew w celu uzyskania surowicy w czasie podawania pierwszej i drugiej dawki oraz w odstępach tygodniowych przez 28 dni po podaniu drugiej dawki.
Badana szczepionka A
Składnik_Stężenie/dawka_Objętość/ml
-i win7Trin n ηοΛ7 ~.i
Inaktywowany wirus Zachodniego 1 x 107 TCID50 0,0347 ml
Nilu
MEM1 nie dotyczy 0,9138 ml
Olej SP 5% 0,0500 ml
Polimyksyna B2 30,0 μg/ml 0,0003 ml
Neomycyna 30,0 μg/ml 0,0003 ml
Tiomersal (5%) 1:20000 0,0010 ml
Badana szczepionka B
Składnik Stężenie/dawka Objętość/ml
Inaktywowany wirus Zachodniego 5 x 107 TCID50 0,1734 ml
Nilu
MEM1 nie dotyczy 0,7752 ml
Olej SP 5% 0,0500 ml
Polimyksyna B2 30,0 μg/ml 0,0002 ml
Neomycyna3 30,0 μg/ml 0,0002 ml
Tiomersal4 (5%) 1:20000 0,0010 ml
PL 212 212 B1
Badana szczepionka C
Składnik Stężenie/dawka Objętość/ml
Inaktywowany wirus Zachodniego 1 x 108 TCID50 0,3467 ml
Nilu
MEM1 nie dotyczy 0,6019 ml
Olej SP 5% 0,0500 ml
Polimyksyna B2 30,0 μg/ml 0,0002 ml
Neomycyna3 30,0 μg/ml 0,0002 ml
Tiomersal4 (5%) 1:20000 0,0010 ml
1LTI, Grand Island, NY 2Sigma, St. Louis, MO 3Sigma, St. Louis, MO 4Sigma, St. Louis, MO
Otrzymane dane serologiczne przedstawiono w poniższej tabeli 1, w której 0 DPV 1 oznacza dzień 0 przed szczepieniem: a 14 DPV 2 oznacza dzień 14 po szczepieniu. NR oznacza brak wyników.
Jak widać z danych zamieszczonych w tabeli 1, traktowane konie ze wszystkich grup wykazały znaczący wzrost poziomu przeciwciał przeciw wirusowi Zachodniego Nilu, podczas gdy u koni kontrolnych poziom przeciwciał pozostał niski lub nie stwierdzono ich występowania. Poziom odpowiedzi u koni, które otrzymały szczepionkę był niezależny od poziomu antygenu w szczepionce, którą otrzymały.
T a b e l a 1
Badana szczepionka Dawka (TCID50) Badanie nr 1 Badanie nr 2
0DPV1 14DPV2 0DPV1 14DPV2
1 2 3 4 5 6
A 1 x 107 < 10 160 < 10 80
A 1 x 107 < 10 20 < 10 10
A 1 x 107 < 10 > 320 < 10 40
A 1 x 107 < 10 80 < 10 > 320
A 1 x 107 < 10 80 < 10 40
A 1 x 107 < 10 80 < 10 160
A 1 x 107 < 10 40 < 10 40
A 1 x 107 < 10 80 < 10 80
A 1 x 107 < 10 160 < 10 80
A 1 x 107 < 10 40 < 10 10
A 1 x 107 < 10 40 < 10 10
A 1 x 107 < 10 160 < 10 40
A 1 x 107 < 10 > 320 < 10 NR*
A 1 x 107 < 10 > 320 < 10 NR
A 1 x 107 < 10 > 320 < 10 80
A 1 x 107 < 10 160 < 10 20
A 1 x 107 > 10 > 320 < 10 160
A 1 x 107 < 10 80 < 10 80
A 1 x 107 < 10 80 < 10 160
A 1 x 107 < 10 160 < 10 160
B 5 x 107 < 10 80 < 10 40
B 5 x 107 < 10 20 < 10 < 10
PL 212 212 B1 cd. tabeli 1
1 2 3 4 5 6
B 5 x 107 < 10 > 320 < 10 160
B 5 x 107 < 10 80 < 10 > 320
B 5 x 107 < 10 > 320 < 10 160
B 5 x 107 < 10 80 < 10 80
B 5 x 107 < 10 160 < 10 > 320
B 5 x 107 < 10 80 < 10 40
B 5 x 107 < 10 160 < 10 40
B 5 x 107 < 10 40 < 10 80
B 5 x 107 < 10 20 < 10 20
B 5 x 107 < 10 > 320 < 10 160
B 5 x 107 < 10 > 40 < 10 > 320
B 5 x 107 < 10 80 < 10 40
B 5 x 107 < 10 80 < 10 NR
B 5 x 107 < 20 > 320 < 10 80
B 5 x 107 > 20 160 < 10 80
B 5 x 107 < 10 > 320 < 10 160
B 5 x 107 < 10 > 320 < 10 > 320
B 5 x 107 < 10 80 < 10 160
C 1 x 108 < 10 > 320 < 10 > 320
C 1 x 108 < 10 > 320 < 10 160
C 1 x 108 < 10 160 < 10 80
C 1 x 108 < 10 > 320 < 10 NR
C 1 x 108 < 10 40 < 10 40
Kontrola 0 < 10 < 10 < 10 < 10
Kontrola 0 < 10 < 10 < 10 < 10
Kontrola 0 < 10 < 10 < 10 < 10
Kontrola 0 < 10 < 10 < 10 NR
Kontrola 0 < 10 < 10 < 10 < 10
Kontrola 0 < 10 < 10 < 10 < 10
Kontrola 0 < 10 < 10 < 10 < 10
Kontrola 0 < 10 < 10 < 10 < 10
P r z y k ł a d 3
Ocena bezpieczeństwa badanej szczepionki u koni w warunkach terenowych W tym badaniu, 200 zdrowych koni płci męskiej i żeńskiej szczepiono dawką 6 x 106 TCID50 inaktywowanej badanej szczepionki, podawanej domięśniowo w postaci szczepienia 1 ml dawką i następnie trzy do czterech tygodni później w postaci szczepienia drugą 1 ml dawką. Traktowane konie są trzymane i karmione z zastosowaniem tradycyjnych praktyk gospodarczych dla farmy lub stajni. Wszystkie traktowane konie były obserwowane przez weterynarza przez 30 minut po szczepieniu w celu stwierdzenia występowania szybkich reakcji, takich jak ślinienie, ciężkie lub niemiarowe oddychanie, drżenie lub anafilaksja. Przez dwa tygodnie po szczepieniu, konie obserwowano codziennie w celu stwierdzenia występowania opóźnionych reakcji takich jak letarg, anoreksja lub niezwykły
PL 212 212 B1 obrzęk w miejscu wstrzyknięcia. Od badanych koni pobierano poprzez nakłucie żyły 5 do 10 ml próbki krwi w dniu pierwszego szczepienia (dzień zero) i co najmniej jeszcze raz po dwóch lub większej liczbie tygodni po drugim szczepieniu (dzień 36 lub późniejszy). Wykonano testy serologiczne stosując badanie PRNT [Chang, G.J., Hunt, A.R. i Davis B., Journal of Virology, 74 str. 4244-5422 (2000)].
Badana szczepionka
Składnik_Stężenie/dawka_Objętość/ml
Inaktywowany wirus Zachodniego 6 x 106 TCID50 0,21 ml
Nilu
Olej SP 5% 0,05 ml
MEM nie dotyczy 0,74 ml
U mniej niż 2% koni zaobserwowano kliniczne objawy osłabienia. Ocena ta pokazuje, że szczepionka według wynalazku jest bezpieczna do stosowania u koni w warunkach terenowych.
P r z y k ł a d 4
Ocena skuteczności badanej szczepionki (preparaty wielowalentne i monowalentne) u koni w warunkach terenowych
Oceniano skuteczność kombinacji szczepionki zawierającej zabity wirus Zachodniego Nilu (WNV) wobec choroby WNV wywołanej doświadczalnie.
Ogółem rozdzielono 30 koni: do jednej grupy szczepionej (20 koni) i do jednej grupy kontrolnej (10 koni). Konie w grupie szczepionej otrzymały domięśniowo, w odstępie trzech tygodni, dwie dawki badanej szczepionki zawierającej zabity wirus Zachodniego Nilu (5 x 107 TCID50 na dawkę z 5% oleju SP), wirus grypy, wirus zapalenia mózgu i rdzenia (Wschodniego, Zachodniego i Wenezuelskiego), wirus zapalenia nosa i płuc (serotyp 1 i 4) i anatoksynę tężca. Próbki surowicy zbierano okresowo dla zmierzenia odpowiedzi przeciwciał za pomocą badania PRNT (ang. plaque reduction neutralization test). Dwadzieścia cztery (24) dni po drugim szczepieniu, wszystkim koniom podano podskórnie WNV. Po tej prowokacji konie monitorowano pod kątem temperatury mierzonej w odbycie i jakichkolwiek objawów klinicznych dwa razy dziennie przez dwa tygodnie, a następnie raz w tygodniu w celu wykrycia wirusów we krwi. Konie poddawano eutanazji i sekcji zwłok w 21 i 22 DPC. Płyn mózgowo-rdzeniowy (CSF), rdzeń kręgowy (szyjny, piersiowy i lędźwiowy) i próbki tkanek mózgu (części czołowej, potylicznej, rdzenia przedłużonego i pnia mózgu) badano dla stwierdzenia ciężkiej patologii i zbierano w celu izolacji wirusa.
Czternaście dni po drugim szczepieniu, 75% szczepionych zwierząt wykazało serokonwersję (miano > 5), ze średnią geometryczną miana 10, podczas gdy zwierzęta kontrolne pozostały ujemne (miano < 5). Szczepienie wytworzyło znaczącą ochronę przeciw wiremii (prekursor rozwinięcia pełnoobjawowej choroby wywołanej przez wirusa Zachodniego Nilu). Dziewięć z 10 (90%) kontroli rozwinęło wiremię po prowokacji wirusem, podczas gdy tylko osiem z 20 (40%) szczepionych miało przejściową wiremię lub wiremię utrzymującą się najwyżej tylko kilka dni. Co ważne, w czasie okresu obserwacji nie zaobserwowano objawów klinicznych choroby wywołanej przez WNV u żadnego ze szczepionych zwierząt, które prowokowano wirusem. (Obserwowano przejściowe odpowiedzi gorączkowe u jednego kontrolnego i dwóch szczepionych koni. Jednakże nie było dowodów sugerujących, że odpowiedzi te były wywołane zakażeniem WNV). W tkance mózgowej u jednego zwierzęcia kontrolnego stwierdzono krwotok punkcikowaty w substancji białej i krwotok podtwardówkowy. Z próbek pobranych od tego zwierzęcia WNV wyizolowano z mózgu, ale nie wyizolowano z CSF i rdzenia kręgowego. Z żadnej próbki tkanek zbieranych od innych koni prowokowanych wirusem nie wyizolowano WNV.
Wyniki tego badania pokazują znaczącą ochronę występującą u koni szczepionych badaną kombinacją szczepionki zarówno wobec wiremii, jak i objawów klinicznych choroby wywołanej przez WNV.
Drugie badanie przeprowadzono według protokołu podobnego do tego powyżej, z wyjątkiem tego, że wykorzystano monowalentną szczepionkę przeciw WNV (samą szczepionkę wobec WNV) i że wszystkie konie po 12 miesiącach od drugiego szczepienia prowokowano wirusem WNV. U dziewięciu z 11 (81,8%) kontroli, po prowokacji, rozwinęła się wiremia, podczas gdy tylko jeden z 19 (5,3%) szczepionych koni miał przejściową wiremię. Podczas okresu obserwacji u żadnego z koni prowokowanych wirusem nie zaobserwowano objawów klinicznych związanych z WNV. U żadnego z koni prowokowanych wirusem nie obserwowano odpowiedzi w postaci gorączki. Nie wyizolowano WNV z żadnych tkanek lub próbek CSF pobranych od koni prowokowanych wirusem. (Przed prowokowaniem wirusem, na koniec 12-miesiecznego okresu, 17 z dziewiętnastu szczepionych koni miało miana w badaniu PRNT wynoszące 5 lub wyższe, podczas gdy grupa kontrolna pozostała ujemna (<5).)
PL 212 212 B1
Wyniki tego drugiego badania pokazują znaczącą ochronę (94% chronionej frakcji) wobec wiremii występującą u koni szczepionych zabitą monowalentną szczepionką przeciw WNV. Wyniki te wskazują również na długo utrzymującą się odporność ochronną.
P r z y k ł a d 5
Ocena skuteczności badanej szczepionki DNA u koni w warunkach terenowych
Przykład ten pokazuje skuteczność szczepionki DNA wobec wirusa Zachodniego Nilu (WNV), jako część dalszego wykonania według wynalazku. Szczepionka DNA zawierała 100 μg oczyszczonego DNA z adiuwantem w postaci 5% oleju SP na 2 ml dawki i była oceniana wobec doświadczalnej prowokacji WNV.
W celu wytworzenia kompozycji szczepionki DNA wobec WNV, komórki bakteryjne zbierano z hodowli pasażowanej 10 razy z komórek wyjściowych, stosując szczep E. coli DH10B, otrzymany z Invitrogen (Carlsbad, CA), zawierający plazmid Zachodniego Nilu pCBWN, otrzymany z Centers for Disease Control (Fort Collins, CO). Komórki bakteryjne zawieszano w buforze glukoza-tris-EDTA i lizowano wodorotlenkiem sodowym i dodecylosiarczanem sodowym. Lizat neutralizowano roztworem octanu potasu. Złożony wytrącony materiał zawierający DNA, RNA, szczątki komórek i białka usuwano stosując filtrację. Przesącz poddawano wytrącaniu poprzez dodanie alkoholu izopropylowego. Osad zbierano za pomocą wirowania i zawieszano ponownie w buforze. Proces ten powtarzano stosując octan amonu. Zebrany osad zawieszano ponownie w buforze i nakładano na kolumnę chromatograficzną wypełnioną żywicą Polyflo®. Kolumnę następnie płukano i z kolumny eluowano plazmidowy DNA. Ostatecznie eluat silnie diafiltrowano wobec soli fizjologicznej buforowanej fosforanem. Materiały oczyszczonego plazmidowego DNA były następnie dostarczone do mieszania. Badana szczepionka zawierała 100 μg plazmidowego DNA z adiuwantem w postaci 5% oleju SP.
Konie wykorzystane w badaniu podzielono losowo na dwie grupy: dwadzieścia koni otrzymało szczepionkę DNA wobec WNV, a 10 koni wykorzystano jako kontrole. Pierwszą grupę szczepiono domięśniowo 2,0 ml dawkami szczepionki w odstępie trzech tygodni. Konie kontrolne nie otrzymały ani szczepień ani placebo. Jedną grupę koni (9 szczepionych i 5 kontrolnych) 5 tygodni po drugim szczepieniu prowokowano wirusem, podczas gdy drugą grupę koni (11 szczepionych i 5 kontrolnych) prowokowano wirusem 12 tygodni po drugim szczepieniu. W skrócie, na 12 dni przed prowokacją koni wirusem, komarom Aedes albopictus, zainfekowanym WNV, pozwalano na żerowanie na każdym koniu co najmniej 5 minut. Po prowokacji wirusem, w temp. -20°C zamrażano tylko te komary, które były wypełnione krwią po posiłku na każdym koniu, a następnie analizowano miano wirusa miareczkowano jako pulę. Komary następnie homogenizowano za pomocą worteksu, stosując rozcieńczalnik. Homogenat wirowano, a supernatant przenoszono w celu analizy miana na komórkach Vero.
Po prowokacji wirusem, konie monitorowano dwa razy dziennie przez co najmniej 9 dni pod kątem temperatury mierzonej w odbycie i w celu sprawdzenia objawów klinicznych dwa razy dziennie przez co najmniej 21 dni. Próbki surowicy pobierano dwa razy dziennie przez pierwszych 9 dni po prowokacji wirusem (DPC); jeden raz dziennie od 10 do 14 DPC i ostatecznie 21 DPC. Izolację wirusa przeprowadzono z próbek surowicy pobranych od 0 DPC do 10 DPC dla pierwszej grupy, którą prowokowano wirusem oraz od 0 DPC do 11 DPC dla drugiej grupy, którą prowokowano wirusem. Pierwszą grupę 14 koni i drugą grupę 16 koni poddano eutanazji i sekcji zwłok, odpowiednio 28 do 37 DPC i 29 do 38 DPC. Płyn mózgowo-rdzeniowy (CSF) i próbki tkanek mózgu, móżdżku i pnia mózgu pobierano w celu stwierdzenia ciężkiej patologii i izolacji wirusa.
dni po drugim szczepieniu, 6 z 20 szczepionych koni miało mierzalne miano wynoszące 2 lub więcej, a jeden koń miał miano 5. Szczepienie nadało ochronę wobec doświadczalnego prowokowania wirusem Zachodniego Nilu z wykorzystaniem komarów. Wiremię wykryto u 5 z 5 kontrolnych zwierząt i u 4 z 9 szczepionych w pierwszej grupie prowokowanej wirusem, podczas gdy 4 z 5 kontroli i 2 z 11 szczepionych miały wiremię w drugiej grupie koni prowokowanych wirusem. Wykryta wiremia była przejściowa i występowała tylko w ciągu sześciu dni po prowokacji. Ogólnie, wiremię wykryto u 9 z 10 (90%) koni kontrolnych i tylko u 6 z 20 (30%) szczepionych.
Nie obserwowano objawów neurologicznych związanych z zakażeniem WNV u żadnego z badanych koni, w czasie okresu obserwacji, po prowokacji. Z żadnej próbki tkanek zbieranych od wszystkich badanych koni, nie wyizolowano WNV. Jeden koń z pierwszej grupy prowokowanej wirusem, poddany eutanazji 7 DPC, nie wykazywał dużych lub mikroskopowych dowodów zapalenia mózgu lub zapalenia opon mózgowo-rdzeniowych.
Wyniki tego badania wykazują znaczącą ochronę wobec wiremii u koni szczepionych badaną szczepionką.

Claims (35)

1. Kompozycja szczepionki przeciwko zakażeniu wirusem Zachodniego Nilu, która obejmuje: inaktywowany cały wirus Zachodniego Nilu w immunogennie skutecznej ilości, ulegający metabolizmowi olej w immunogennie stymulującej ilości; oraz farmaceutycznie dopuszczalny nośnik, przy czym kompozycja szczepionki jest skuteczna u koniowatych wobec zakażenia wirusem Zachodniego Nilu do 12 miesięcy, a inaktywowanym wirusem Zachodniego Nilu jest szczep VM-2 o numerze dostępu ATCC nr PTA-6860 lub jego hodowla następcza.
2. Kompozycja według zastrz. 1, znamienna tym, że jednostkowa dawka szczepionki obejmuje od około 1 x 104 TCID50 do około 1 x 108 TCID50 wirusa.
3. Kompozycja według zastrz. /2, znamienna tym, że jednostkowa dawka szczepionki obejmuje od około 1 x 104 TCID50 do około 5 x 107 TCID50 wirusa.
4. Kompozycja według zastrz. 3, znamienna tym, że wirus jest obecny w ilości wystarczającej do dostarczenia co najmniej około 1 x 104 TCID50 na dawkę jednostkową.
5. Kompozycja według zastrz. 1, znamienna tym, że ulegający metabolizmowi olej stanowi olej SP.
6. Kompozycja według zastrz. 5, znamienna tym, że ulegający metabolizmowi olej jest obecny w ilości od około 4% do 10% obj./obj.
7. Kompozycja według zastrz. 6, znamienna tym, że ulegający metabolizmowi olej jest obecny w ilości około 5% obj./obj.
8. Kompozycja według zastrz. 7, znamienna tym, że wirus jest obecny w ilości wystarczającej do dostarczenia co najmniej około 1 x 106 TCID50 na dawkę jednostkową.
9. Kompozycja według zastrz. 8, znamienna tym, że wirus jest obecny w ilości wystarczającej do dostarczenia co najmniej około 5 x 107 TCID50 na dawkę jednostkową.
10. Kompozycja według jednego z zastrz. 1 do 9, znamienna tym, że ponadto obejmuje składnik szczepionki skierowany przeciwko wirusowi wścieklizny, wirusowi Wschodniego końskiego zapalenia mózgu, wirusowi Zachodniego końskiego zapalenia mózgu, wirusowi Wenezuelskiego końskiego zapalenia mózgu, końskiemu wirusowi opryszczki, Ehrlichia risticii, Streptococcus equi, anatoksynie tężca, wirusowi końskiej grypy (EIV).
11. Kompozycja końskiej szczepionki obejmująca:
a) co najmniej około 1 x 104 TCID50 do około 1 x 109 TCID50 na dawkę jednostkową inaktywowanego wirusa Zachodniego Nilu przy czym inaktywowanym wirusem Zachodniego Nilu jest szczep VM-2 o numerze dostępu ATCC nr PTA-6860 lub jego hodowla następcza; oraz
b) około 4% do 10% obj./obj. adiuwanta z ulegającego metabolizmowi oleju obejmującego około 1 do 3% kopolimeru blokowego polioksyetyleno/polioksypropylenowego, około 2 do 6% skwalanu i około 0,1 do 0,5% monooleinianu polioksyetylenosorbitolu.
12. Szczepionka wirusa Zachodniego Nilu dla koniowatych obejmująca:
a) co najmniej około 1 x 106 TCID50 do około 1 x 108 TCID50 na dawkę jednostkową uśmierconego lub inaktywowanego wirusa Zachodniego Nilu przy czym wirusem Zachodniego Nilu jest szczep VM-2 o numerze dostępu ATCC nr PTA-6860 lub jego hodowla następcza; oraz
b) co najmniej około 1% obj./obj. adiuwanta zawierającego co najmniej jeden ulegający metabolizmowi olej i co najmniej jeden czynnik zwilżający lub dyspergujący.
13. Szczepionka według zastrz. 12, znamienna tym, że obejmuje co najmniej około 1x107 TCID50 wirusa.
14. Szczepionka według zastrz. 13, znamienna tym, że obejmuje co najmniej około 5x107 TCID50 wirusa.
15. Szczepionka według zastrz. 12, znamienna tym, że jest sformułowana w dwóch jednostkach dawki.
16. Szczepionka według zastrz. 12, znamienna tym, że zawiera co najmniej około 4% adiuwanta.
17. Szczepionka według zastrz. 16, znamienna tym, że zawiera około 4% do 10% adiuwanta.
18. Szczepionka według zastrz. 12, znamienna tym, że adiuwantem jest olej SP.
19. Szczepionka według zastrz. 12, znamienna tym, że zawiera co najmniej dwa czynniki zwilżające lub dyspergujące.
20. Szczepionka według zastrz. 19, znamienna tym, że czynnik zwilżający lub dyspergujący stanowią niejonowe środki powierzchniowo czynne.
PL 212 212 B1
21. Szczepionka według zastrz. 20, znamienna tym, że niejonowe środki powierzchniowo czynne są wybrane z grupy składającej się z kopolimerów blokowych polioksyetylen/polioksypropylen i estrów polioksyetylenowych.
22. Szczepionka według zastrz. 12, znamienna tym, że jest sformułowana w dwóch jednostkach dawki, przy czym każda jednostka dawki obejmuje około 0,5 do 5 ml szczepionki zawierającej 5 x 107 TCID50 wirusa i około 1 do 10% obj./obj. adiuwanta, przy czym adiuwant obejmuje co najmniej jeden ulegający metabolizmowi olej i co najmniej dwa czynniki zwilżające i dyspergujące stanowiące niejonowe czynniki powierzchniowo czynne, oraz ponadto farmaceutycznie dopuszczalny nośnik.
23. Szczepionka według zastrz. 22, znamienna tym, że adiuwant stanowi olej SP.
24. Szczepionka według zastrz. 23, znamienna tym, że olej SP obejmuje skwalan w ilości około 2 do 6% wag. adiuwanta, kopolimer blokowy polioksyetylen/polioksypropylen w ilości około 1 do 3% wag. adiuwanta i monooleinian polioksyetylenosorbitolu w ilości około 0,1 do 0,5% wag. adiuwanta.
25. Szczepionka według zastrz. 22, znamienna tym, że ponadto obejmuje co najmniej jeden składnik szczepionki skierowany przeciwko wirusowi grypy, wirusowi Wschodniego końskiego zapalenia mózgu, wirusowi Zachodniego końskiego zapalenia mózgu, wirusowi Wenezuelskiego końskiego zapalenia mózgu, wirusowi Rhinopneumonits i anatoksynie tężca.
26. Zastosowanie kompozycji obejmującej inaktywowany cały wirus Zachodniego Nilu w immunogennie skutecznej ilości, ulegający metabolizmowi olej w immunogennie stymulującej ilości, oraz farmaceutycznie dopuszczalny nośnik do wytwarzania szczepionki do zapobiegania lub łagodzenia objawów zapalenia mózgu Zachodniego Nilu u koniowatych, przy czym szczepionka jest skuteczna u koniowatych wobec zakażenia wirusem Zachodniego Nilu do 12 miesięcy, a inaktywowanym wirusem Zachodniego Nilu jest szczep VM-2 o numerze dostępu ATCC nr PTA-6860 lub jego hodowla następcza.
27. Zastosowanie według zastrz. 26, znamienne tym, że ulegający metabolizmowi olej stanowi olej SP.
28. Zastosowanie według zastrz. 26, znamienne tym, że koniowatymi są konie.
29. Zastosowanie według zastrz. 28, znamienne tym, że końmi są ciężarne klacze.
30. Zastosowanie według zastrz. 26, znamienne tym, że szczepionka jest przeznaczona do podawania pozajelitowo.
31. Zastosowanie według zastrz. 26, znamienny tym, że szczepionka jest przeznaczona do podawania domięśniowo.
32. Zastosowanie według zastrz. 26, znamienne tym, że wirus jest obecny w ilości wystarczającej, aby dostarczyć co najmniej około 1 x 104 TCID50 do około 1 x 109 TCID50 na dawkę jednostkową.
33. Zastosowanie według zastrz. 32, znamienne tym, że wirus jest obecny w ilości wystarczającej, aby dostarczyć co najmniej około 1 x 106 TCID50 na dawkę jednostkową.
34. Zastosowanie według zastrz. 33, znamienne tym, że wirus jest obecny w ilości dostarczającej co najmniej około 1 x 106 TCID50 na dawkę jednostkową, oraz co najmniej dwie dawki są podawane każdemu z przedstawicieli koniowatych.
35. Zastosowanie według zastrz. 34, znamienne tym, że ulegający metabolizmowi olej stanowi olej SP, który jest obecny w ilości 5% obj./obj.
PL368535A 2001-07-27 2002-07-23 Kompozycja szczepionki przeciwko zakażeniu wirusem Zachodniego Nilu, kompozycja końskiej szczepionki, szczepionka wirusa Zachodniego Nilu oraz zastosowania PL212212B1 (pl)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US30833401P 2001-07-27 2001-07-27

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL368535A1 PL368535A1 (pl) 2005-04-04
PL212212B1 true PL212212B1 (pl) 2012-08-31

Family

ID=27613166

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL398575A PL220846B1 (pl) 2001-07-27 2002-07-23 Kompozycja szczepionki przeciwko zakażeniu wirusem Zachodniego Nilu
PL368535A PL212212B1 (pl) 2001-07-27 2002-07-23 Kompozycja szczepionki przeciwko zakażeniu wirusem Zachodniego Nilu, kompozycja końskiej szczepionki, szczepionka wirusa Zachodniego Nilu oraz zastosowania

Family Applications Before (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL398575A PL220846B1 (pl) 2001-07-27 2002-07-23 Kompozycja szczepionki przeciwko zakażeniu wirusem Zachodniego Nilu

Country Status (25)

Country Link
US (8) US7153513B2 (pl)
EP (3) EP1427444B1 (pl)
JP (2) JP4718778B2 (pl)
KR (2) KR20040028952A (pl)
CN (2) CN1935258B (pl)
AU (1) AU2002365244B2 (pl)
BE (1) BE2014C006I2 (pl)
BR (1) BRPI0211492B1 (pl)
CA (1) CA2452545C (pl)
CY (1) CY2014010I2 (pl)
DK (1) DK1427444T3 (pl)
ES (1) ES2435095T3 (pl)
FR (1) FR14C0016I2 (pl)
HK (1) HK1066470A1 (pl)
HR (1) HRP20040195B1 (pl)
HU (2) HU228690B1 (pl)
LU (1) LU92348I2 (pl)
ME (1) ME00491B (pl)
MX (1) MXPA04000680A (pl)
NZ (3) NZ531265A (pl)
PL (2) PL220846B1 (pl)
PT (1) PT1427444E (pl)
RS (1) RS53184B (pl)
WO (1) WO2003061555A2 (pl)
ZA (1) ZA200401596B (pl)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
PL126562U1 (pl) * 2017-08-25 2019-03-11 Gondek Łukasz Kuźnia Mocy Urządzenie do regeneracji filtrów cząstek stałych i katalizatorów samochodowych

Families Citing this family (28)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7425437B2 (en) * 1999-11-26 2008-09-16 Crucell Holland B.V. Vaccines against West Nile Virus
MXPA04000680A (es) * 2001-07-27 2004-04-05 Wyeth Corp Vacuna para virus west nile.
EP1664786B1 (en) * 2003-09-09 2014-11-12 Idexx Laboratories, Inc. Detection of west nile virus infection and vaccination
US7074555B2 (en) * 2004-04-28 2006-07-11 Idexx Laboratories, Inc. Detection of West Nile Virus
FR2870126B1 (fr) 2004-05-17 2009-07-17 Pasteur Institut Vecteur lentiviral recombinant d'expression d'une proteine de flaviviridae et ses applications comme vaccin
CA2582534A1 (en) 2004-09-09 2006-03-16 Research Development Foundation Flavivirus variants having phenotypic variation and immunogenic compositions thereof
EP1863528A2 (en) * 2005-04-01 2007-12-12 Wyeth Use of wnv dna vaccine in combination with a conventional vaccine to overcome immunogen interference
US7959929B2 (en) 2005-04-21 2011-06-14 University Of Florida Research Foundation, Inc. Materials and methods for respiratory disease control in canines
US11865172B2 (en) 2005-04-21 2024-01-09 University Of Florida Research Foundation, Inc. Materials and methods for respiratory disease control in canines
AU2006245734C1 (en) 2005-05-12 2012-05-24 Crucell Holland B.V. Host cell specific binding molecules capable of neutralizing viruses and uses thereof
EP1724338A1 (en) * 2005-05-19 2006-11-22 Crucell Holland B.V. Methods for the production of a whole-inactivated West Nile Virus vaccine
WO2006122964A1 (en) * 2005-05-19 2006-11-23 Crucell Holland B.V. Methods for the production of a whole-inactivated west nile virus vaccine
EP1896069B1 (en) 2005-06-24 2013-03-13 Intervet International BV Inactivated chimeric vaccines and related methods of use
CN104017775B (zh) * 2005-10-19 2023-05-30 佛罗里达大学研究基金公司 能够感染犬科动物的流感病毒及其用途
EP1941033A2 (en) * 2005-10-20 2008-07-09 Wyeth a Corporation of the State of Delaware Compositions and methods for the treatment of canine influenza virus disease
EP2026839A4 (en) * 2005-12-14 2009-04-01 Univ Oklahoma RNA VIRUS VACCINE AND METHODS
EA018030B1 (ru) 2006-06-06 2013-05-30 Круселл Холланд Б.В. Связывающие молекулы человека, имеющие убивающую активность против стафилококков, и их применения
MX2010005014A (es) * 2007-11-06 2010-06-30 Wyeth Llc Vacuna viva avirulenta de mycoplasma hyopneumoniae con adyuvante.
US9415006B2 (en) 2008-05-23 2016-08-16 The Regents Of The University Of Michigan Immunogenic compositions comprising nanoemulsion and hepatitis B virus immunogen and methods of using the same
US9642908B2 (en) * 2008-07-30 2017-05-09 University Of Kentucky Research Foundation Equine disease model for herpesvirus neurologic disease and uses thereof
MX2011002071A (es) 2008-08-29 2011-04-05 Boehringer Ingelheim Vetmed Vacuna para el virus del nilo occidental.
EP2485725A2 (en) * 2009-10-07 2012-08-15 Wyeth LLC Compositions comprising adjuvant, macrolide and proteinaceous antigen and methods of use thereof
CA2829226C (en) 2011-03-14 2023-01-03 Boehringer Ingelheim Vetmedica, Inc. Equine rhinitis vaccine
CN103045544B (zh) * 2011-10-17 2015-01-14 华中农业大学 预防西尼罗河病毒的重组假型杆状病毒Bac-G-prM/E及疫苗与应用
PT3542819T (pt) * 2013-05-14 2021-10-14 Zoetis Services Llc Composições de vacina inovadoras que compreendem oligonucleótidos imunoestimulantes
CN105530956A (zh) * 2013-09-05 2016-04-27 硕腾服务有限责任公司 Hendra和Nipah病毒G糖蛋白免疫原性组合物
US11033615B2 (en) 2016-05-31 2021-06-15 The Government of the United States, As Represented by the Secretary of the Army Fort Detrick, Maryland Zika virus vaccine and methods of production
MX2021010343A (es) 2019-02-27 2022-01-18 Univ Rochester Vacuna para la influenza multivalente con virus vivo atenuado para la prevencion y el control del virus de la influenza equina (eiv) en caballos.

Family Cites Families (15)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US308334A (en) 1884-11-18 Ladder
US6184024B1 (en) * 1988-07-14 2001-02-06 The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services Chimeric and/or growth-restricted flaviviruses
US5741696A (en) * 1992-08-07 1998-04-21 Syntro Corporation Recombinant equine herpesviruses
FR2702373B1 (fr) * 1993-03-08 1996-06-07 Rhone Merieux Emulsions vaccinales fluides eau-dans-l'huile contenant une huile métabolisable.
CA2189979C (en) * 1994-05-10 2011-04-19 Hsien-Jue Chu Improved modified live brsv vaccine
US7227011B2 (en) * 1998-06-04 2007-06-05 United States Of America As Represented By The Secretary Of The Department Of Health And Human Services, Centers For Disease Control And Prevention Nucleic acid vaccines for prevention of flavivirus infection
JP4489943B2 (ja) 1998-06-04 2010-06-23 アメリカ合衆国 フラビウイルス感染の予防のための核酸ワクチン
JP2004510714A (ja) * 2000-10-04 2004-04-08 ザ・トラスティーズ・オブ・ザ・ユニバーシティ・オブ・ペンシルベニア フラビウイルス及びペスチウイルス由来のキャプシド蛋白質を使用する組成物及び方法
WO2002068637A2 (en) 2000-10-20 2002-09-06 Ribozyme Pharmaceuticals, Inc. Nucleic acid-based treatment of diseases or conditions related to west nile virus infection
AU2002305028A1 (en) 2001-02-28 2002-10-28 Brown University Research Foundation West nile virus epitopes and uses thereof
CA2440593A1 (en) * 2001-03-12 2002-09-19 Yale University Compositions and methods comprising west nile virus polypeptides
FR2823222B1 (fr) * 2001-04-06 2004-02-06 Merial Sas Vaccin contre le virus de la fievre du nil
US20030104008A1 (en) * 2001-04-06 2003-06-05 Loosmore Sheena May Recombinant vaccine against west nile virus
MXPA04000680A (es) * 2001-07-27 2004-04-05 Wyeth Corp Vacuna para virus west nile.
WO2004016586A2 (en) 2002-08-16 2004-02-26 Board Of Regents The University Of Texas System Compositions and methods related to flavivirus envelope protein domain iii antigens

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
PL126562U1 (pl) * 2017-08-25 2019-03-11 Gondek Łukasz Kuźnia Mocy Urządzenie do regeneracji filtrów cząstek stałych i katalizatorów samochodowych

Also Published As

Publication number Publication date
CA2452545C (en) 2015-06-09
BRPI0211492B1 (pt) 2016-06-21
EP2283858A2 (en) 2011-02-16
CN1273189C (zh) 2006-09-06
HUS1300055I1 (hu) 2016-08-29
US7445787B2 (en) 2008-11-04
PT1427444E (pt) 2013-11-19
EP2281572A1 (en) 2011-02-09
US20070166325A1 (en) 2007-07-19
HK1066470A1 (en) 2005-03-24
DK1427444T3 (da) 2013-11-04
CY2014010I1 (el) 2020-05-29
EP1427444A2 (en) 2004-06-16
EP1427444B1 (en) 2013-08-21
CN1535157A (zh) 2004-10-06
YU8004A (sh) 2006-08-17
EP2283858A3 (en) 2011-03-23
US20070231349A1 (en) 2007-10-04
US20030091595A1 (en) 2003-05-15
WO2003061555A2 (en) 2003-07-31
JP2011057692A (ja) 2011-03-24
HRP20040195A2 (en) 2004-08-31
US20070166324A1 (en) 2007-07-19
KR20090053967A (ko) 2009-05-28
HRP20040195B1 (hr) 2014-07-18
LU92348I9 (pl) 2019-01-02
NZ553165A (en) 2008-09-26
WO2003061555A3 (en) 2004-04-15
US20070166326A1 (en) 2007-07-19
EP1427444A4 (en) 2008-01-02
CA2452545A1 (en) 2003-07-31
PL398575A1 (pl) 2012-06-18
ZA200401596B (en) 2005-07-27
PL368535A1 (pl) 2005-04-04
KR20040028952A (ko) 2004-04-03
AU2002365244B2 (en) 2007-12-06
ME00491B (me) 2011-10-10
US7153513B2 (en) 2006-12-26
JP2005515236A (ja) 2005-05-26
RS53184B (en) 2014-06-30
FR14C0016I1 (pl) 2014-03-28
JP4718778B2 (ja) 2011-07-06
BR0211492A (pt) 2004-08-17
PL220846B1 (pl) 2016-01-29
MXPA04000680A (es) 2004-04-05
ES2435095T3 (es) 2013-12-18
LU92348I2 (fr) 2014-09-22
CY2014010I2 (el) 2024-02-16
US7648705B2 (en) 2010-01-19
FR14C0016I2 (fr) 2015-07-24
HUP0401606A3 (en) 2005-02-28
BE2014C006I2 (pl) 2021-02-04
HU228690B1 (en) 2013-05-28
HUP0401606A2 (hu) 2004-11-29
CN1935258A (zh) 2007-03-28
CN1935258B (zh) 2013-04-03
US20070231350A1 (en) 2007-10-04
NZ570270A (en) 2010-08-27
US7648706B2 (en) 2010-01-19
US20070178119A1 (en) 2007-08-02
US20070166802A1 (en) 2007-07-19
NZ531265A (en) 2008-08-29

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US7445787B2 (en) Methods for preventing or ameliorating West Nile encephalitis
AU2002365244A1 (en) West nile vaccine
KR100374434B1 (ko) 변형된소호흡관련합포체바이러스(brsv)생백신조성물
Baer et al. A model in mice for the pathogenesis and treatment of rabies
KR0162646B1 (ko) 보조제로서 토콜을 함유한 백신 및 그것의 제조방법
JPS62255436A (ja) ワクチン処方
EP0838222B1 (en) Vaccine compositions comprising inactivated immunogens and live chicken anaemia virus (CAV)
BR122015019697B1 (pt) composição de vacina para west nile, e uso de plasmídeo com inserções de sequência de dna de vírus west nile na preparação da mesma
GB2052983A (en) Vaccine for infectious bovine rhinotracheitis