PL180863B1 - Jodowane związki arylowe oraz zawierające je diagnostyczne środki kontrastowe - Google Patents

Jodowane związki arylowe oraz zawierające je diagnostyczne środki kontrastowe

Info

Publication number
PL180863B1
PL180863B1 PL95319341A PL31934195A PL180863B1 PL 180863 B1 PL180863 B1 PL 180863B1 PL 95319341 A PL95319341 A PL 95319341A PL 31934195 A PL31934195 A PL 31934195A PL 180863 B1 PL180863 B1 PL 180863B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
group
groups
mmol
compounds according
moiety
Prior art date
Application number
PL95319341A
Other languages
English (en)
Other versions
PL319341A1 (en
Inventor
Torsten Almen
Sven Andersson
Lars-Göran Wistrand
Klaes Golman
Oyvind Antonsen
Rune Fossheim
Unni Nordby Wiggen
Hakan Wikström
Tomas Klingstedt
Ib Leunbach
Arne Berg
Harald Dugstad
Original Assignee
Nycomed Imaging As
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Nycomed Imaging As filed Critical Nycomed Imaging As
Publication of PL319341A1 publication Critical patent/PL319341A1/xx
Publication of PL180863B1 publication Critical patent/PL180863B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07CACYCLIC OR CARBOCYCLIC COMPOUNDS
    • C07C33/00Unsaturated compounds having hydroxy or O-metal groups bound to acyclic carbon atoms
    • C07C33/40Halogenated unsaturated alcohols
    • C07C33/46Halogenated unsaturated alcohols containing only six-membered aromatic rings as cyclic parts
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K49/00Preparations for testing in vivo
    • A61K49/04X-ray contrast preparations
    • A61K49/0433X-ray contrast preparations containing an organic halogenated X-ray contrast-enhancing agent
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07CACYCLIC OR CARBOCYCLIC COMPOUNDS
    • C07C235/00Carboxylic acid amides, the carbon skeleton of the acid part being further substituted by oxygen atoms
    • C07C235/02Carboxylic acid amides, the carbon skeleton of the acid part being further substituted by oxygen atoms having carbon atoms of carboxamide groups bound to acyclic carbon atoms and singly-bound oxygen atoms bound to the same carbon skeleton
    • C07C235/04Carboxylic acid amides, the carbon skeleton of the acid part being further substituted by oxygen atoms having carbon atoms of carboxamide groups bound to acyclic carbon atoms and singly-bound oxygen atoms bound to the same carbon skeleton the carbon skeleton being acyclic and saturated
    • C07C235/16Carboxylic acid amides, the carbon skeleton of the acid part being further substituted by oxygen atoms having carbon atoms of carboxamide groups bound to acyclic carbon atoms and singly-bound oxygen atoms bound to the same carbon skeleton the carbon skeleton being acyclic and saturated having the nitrogen atom of at least one of the carboxamide groups bound to a carbon atom of a six-membered aromatic ring
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07CACYCLIC OR CARBOCYCLIC COMPOUNDS
    • C07C237/00Carboxylic acid amides, the carbon skeleton of the acid part being further substituted by amino groups
    • C07C237/28Carboxylic acid amides, the carbon skeleton of the acid part being further substituted by amino groups having the carbon atom of at least one of the carboxamide groups bound to a carbon atom of a non-condensed six-membered aromatic ring of the carbon skeleton
    • C07C237/46Carboxylic acid amides, the carbon skeleton of the acid part being further substituted by amino groups having the carbon atom of at least one of the carboxamide groups bound to a carbon atom of a non-condensed six-membered aromatic ring of the carbon skeleton having carbon atoms of carboxamide groups, amino groups and at least three atoms of bromine or iodine, bound to carbon atoms of the same non-condensed six-membered aromatic ring
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07CACYCLIC OR CARBOCYCLIC COMPOUNDS
    • C07C33/00Unsaturated compounds having hydroxy or O-metal groups bound to acyclic carbon atoms
    • C07C33/40Halogenated unsaturated alcohols
    • C07C33/46Halogenated unsaturated alcohols containing only six-membered aromatic rings as cyclic parts
    • C07C33/48Halogenated unsaturated alcohols containing only six-membered aromatic rings as cyclic parts with unsaturation outside the aromatic rings
    • C07C33/483Monocyclic

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
  • Analysing Materials By The Use Of Radiation (AREA)
  • Exposure And Positioning Against Photoresist Photosensitive Materials (AREA)
  • Macromolecular Compounds Obtained By Forming Nitrogen-Containing Linkages In General (AREA)
  • Apparatus For Radiation Diagnosis (AREA)
  • Silver Salt Photography Or Processing Solution Therefor (AREA)
  • Electrochromic Elements, Electrophoresis, Or Variable Reflection Or Absorption Elements (AREA)
  • Devices For Indicating Variable Information By Combining Individual Elements (AREA)
  • Liquid Crystal (AREA)

Abstract

1. Jodowane zwiazki arylowe o wzorze I (w którym n jest równe 0 lub 1, i w którym gdy n jest równe 1, to kazde z ugrupowan C6H5 moze byc takie samo lub rózne; kazdy podstawnik R oznacza atom wodoru, atom jodu lub ugrupowanie hydrofilowe M lub M 1 , przy czym dwa lub trzy nie sasiadujace ze soba podstawniki R w kazdym ugrupowaniu C6H5 oznaczaja atomy jodu i co najmniej jeden, a korzystnie dwa lub trzy podstawniki R w kazdym z ugrupowan C6 H 5 oznaczaja ugru- powania M lub M 1 ; X oznacza wiazanie lub grupe stanowiaca lancuch laczacy dwie grupy C6H5, majaca 1 do 7 atomów, albo, gdy n jest równe 0, X oznacza podstawnik R; kazde M niezaleznie oznacza niejonowe ugrupowa- nie hydrofilowe, a kazde M 1 niezaleznie oznacza grupe C 1 -4 alkilowa, podstawiona co najmniej jedna grupa hy- droksylowa i ewentualnie polaczona z pierscieniem fenylowym poprzez grupe karbonylowa, sulfonowa lub sulfotlenkowa, przy czym co najmniej jeden podstawnik R jest ugrupowaniem M 1; pod warunkiem, ze gdy n jest równe zero, to albo jest obecna co najmniej jedna grupa M 1 inna niz hydroksymetyl lub 1,2-dihydroksyetyl, albo jesli jest obecna jedna grupa M 1 , hydroksymetylowa lub 1,2-dihydroksyetylowa, to obecna jest takze co najmniej jedna grupa M zawierajaca hydroksylowany alkil przylaczony do azotu), oraz ich izomery. PL PL PL PL PL PL PL PL PL PL

Description

Przedmiotem wynalazku są no we jodowane związki arylowe, oraz zawierające je diagnostyczne środki kontrastowe, znajdujące zastosowanie w obrazowaniu rentgenowskim.
Środki kontrastowe mogą być podawane w procedurach obrazowania medycznego, na przykład obrazowania rentgenowskiego, obrazowania metodąjądrowego rezonansu magnetycznego i obrazowania ultradźwiękowego, w celu zwiększenia kontrastu obrazu podmiotu, zwykle ciała człowieka lub zwierzęcia nie będącego człowiekiem. Uzyskany zwiększony kontrast umożliwia łatwiejszą obserwację lub identyfikację różnych narządów, rodzajów tkanek lub przedziałów ciała. W obrazowaniu rentgenowskim środek kontrastujący działa poprzez modyfikację charakterystyki absorpcji promieni X przez różne miejsca ciała.
Jednakże użyteczność materiału jako środka kontrastowego jest wyraźnie uwarunkowana jego toksycznością jego skutecznością diagnostyczną innymi działaniami ubocznymi wywieranymi na podmiot, któremu jest podawany i przez łatwość jego przechowywania i podawania.
180 863
Ponieważ środki takie są zwykle stosowane dla celów diagnostycznych, a nie dla osiągnięcia bezpośredniego efektu leczniczego, to przy opracowaniu nowych środków kontrastowych istnieje generalnie zapotrzebowanie na środki mające możliwie najmniejszy wpływ na różne mechanizmy biologiczne komórki lub organizmu, ponieważ zwykle prowadzi to do niższej toksyczności i słabszych klinicznych działań ubocznych.
Do toksyczności i niepożądanych działań biologicznych środka kontrastowego wkład wnoszą składniki tego środka, to jest rozpuszczalnik łub nośnik, jak również substancja kontrastująca i jej składniki (to jest jony, jeśli jest jonowa) i metabolity.
Zidentyfikowano następujące główne czynniki przyczyniające się do toksyczności środka kontrastowego i jego działań ubocznych:
- chemotoksyczność substancji kontrastującej,
- osmolalność środka kontrastowego, i
- skład jonowy (łub jego brak) środka kontrastowego.
Na przykład w angiografii naczyń wieńcowych iniekcja środka kontrastowego do układu krążenia łączy się z ciężkimi działaniami ubocznymi na funkcję serca. Efekty te sąnatyle poważne, że powodują ograniczenia stosowania niektórych środków kontrastowych w angiografii.
W procedurze tej szybki wlew środka kontrastowego zamiast przepływu krwi poprzez układ krążenia oraz różnice w chemicznej i fizykochemicznej naturze środa kontrastowego i krwi, którą on czasowo wypiera, mogą powodować niepożądane działania, na przykład arytmie, przedłużenie odcinka QT, a zwłaszcza zmniejszenie siły kurczliwości mięśnia sercowego i występowanie migotania komór. Prowadzono wiele badań tych negatywnych działań ubocznych na funkcję serca po infuzji środka kontrastowego do układu krążenia, na przykład podczas angiografii, oraz intensywnie poszukiwano środków zredukowania lub eliminacji tych działań.
Wczesnym iniekcyjnym jonowym rentgenowskim środkiem kontrastowym, opartym na solach trijodofenylokarboksyłanowych, towarzyszyły szczególnie efekty osmotyczne, związane z hipertonicznością wstrzykiwanego środka kontrastowego.
Hipertoniczność ta powoduje efekty osmotyczne, takie jak odprowadzanie wody z czerwonych krwinek, komórek śródbłonka oraz komórek mięśni serca i naczyń krwionośnych. Utrata wody powoduje, że czerwone krwinki stają się sztywne, a hipertoniczność, chemotoksyczność i nieoptymalny skład jonowy oddzielnie lub łącznie zmniejszają siłę kurczliwości komórek mięśni i powodują rozszerzenie małych naczyń krwionośnych i w wyniku tego spadek ciśnienia krwi.
Problem osmotoksyczności próbowano rozwiązać przez opracowanie niejonowych monomerów trijodofeny Iowy ch, takichjakjoheksol, które umożliwiająuzyskanie tych samych efektywnych stężeń kontrastowych jodu przy znacznie zmniejszonych efektach osmotoksyczności.
Dążenie do zmniejszenia osmotoksyczności doprowadziło do opracowania niejonowych dimerów bis(trijodofenylowych), takich jak jodiksanol, które zmniejszają problemy związane z osmotoksycznością, nadal jeszcze umożliwiając uzyskanie efektywnych kontrastowych stężeń jodu w roztworach hipotonicznych.
Ta zdolność do uzyskiwania efektywnych kontrastowych stężeń jodu bez podnoszenia osmolalności roztworu do poziomu izotoniczności (około 300 mOsm/kg H2O) dodatkowo umożliwiła rozwiązanie problemu nierównowagi jonowej przyczyniającej się do toksyczności poprzez włączenie różnych kationów z osocza krwi, co omówiono na przykład w publikacjach opisów zgłoszeniowych PCT nr WO90/01194 i WO91/13636.
Jednakże rentgenowskie środki kontrastowe, przy wysokich stężeniach jodu obecnych w preparatach handlowych, równych około 300 mgl/ml, mają stosunkowo wysokie lepkości, w zakresie od około 15 do około 60 mPa w temperaturze pokojowej, przy czym środki dimeryczne generalnie są bardziej lepkie niż środki monomeryczne. Takie lepkości stwarzają problemy osobie podającej środek, zwłaszcza w radiografii pediatrycznej i technikach radiograficznych wymagaj ący ch jednorazowego szybkiego podania wlewu, na przykład w angiografii, ponieważ wymagaj ą stosowania igieł o stosunkowo dużych otworach lub wysokiego ciśnienia.
180 863
Wynalazek rozwiązuje problem lepkości, występujący w przypadku materiałów znanych ze stanu techniki, przez dostarczenie, w pierwszym aspekcie wynalazku, nowych jodowanych związków arylowych, użytecznych jako rentgenowskie substancje kontrastowe.
Nowe jodowane związki arylowe według wynalazku przedstawiono wzorem I
I (w którym n jest równe 0 lub 1, i w którym gdy n jest równe 1, to każde z ugrupowań C6H5 może być takie samo lub różne; każdy podstawnik R oznacza atom wodoru, atom jodu lub ugrupowanie hydrofilowe M lub Mj, przy czym dwa lub trzy nie sąsiadujące ze sobąpodstawniki R w każdym ugrupowaniu C6H5 oznaczają atomy jodu i co najmniej jeden, a korzystnie dwa lub trzy podstawniki R w każdym z ugrupowań C6H5 oznaczają ugrupowania M lub Μμ X oznacza wiązanie lub grupę stanowiącą łańcuch łączący dwie grupy C6H5, mającą 1 do 7 atomów, albo, gdy n jest równe 0, X oznacza podstawnik R; każde M niezależnie oznacza niejonowe ugrupowanie hydrofilowe, a każde Mt niezależnie oznacza grupę CMalkiłową, podstawioną co najmniej jedną grupą hydroksylową i ewentualnie połączoną z pierścieniem fenylowym poprzez grupę karbonylową, sulfonową lub sulfotlenkową, przy czym co najmniej jeden podstawnik R jest ugrupowaniem Mj; pod warunkiem, że gdy njest równe zero, to albo jest obecna co najmniej jedna grupa Mj inna niż hydroksymetyl lub 1,2-dihydroksyetyl, albo jeśli jest obecna jedna grupa Mj hydroksymetylowa lub 1,2-dihydroksyetylowa, to obecnajest także co najmniej jedna grupa M zawierająca hydroksylowany alkil przyłączony do azotu), oraz ich izomery, zwłaszcza stereizomery i rotamery.
Stwierdzono, że związki według wynalazku wykazująkorzystnie niską lepkość w roztworze wodnym. Uważa się, że jest to związane z obecnością grup na grupach fenylowych, asymetrią związku, a w związkach dimerycznych z naturą łącznika X (zwłaszcza gdy X jest łącznikiem o długości poniżej 5 atomów).
Tak więc na przykład wszystkie przetestowane rozpuszczalne w wodzie związki monomeryczne według wynalazku wykazywały lepkości niższe niż joheksol.
. W drugim aspekcie przedmiotem wynalazku jest diagnostyczny środek kontrastowy, charakteryzujący się tym, że zawiera jako substancję czynną związek o wzorze I,
R R R R W (w którym n j est równe 0 lub 1, i w którym gdy n j est równe 1, to każde z ugrupowań C6H5 może być takie samo lub różne; każdy podstawnik R oznacza atom wodoru, atom jodu lub ugru180 863 powanie hydrofilowe M lub Mb przy czym dwa lub trzy nie sąsiadujące ze sobąpodstawniki R w każdym ugrupowaniu C6H5 oznaczają atomy jodu i co najmniej jeden, a korzystnie dwa lub trzy podstawniki R w każdym z ugrupowań C6H5 oznaczają ugrupowania M lub Μμ X oznacza wiązanie lub grupę stanowiącą łańcuch łączący dwie grupy C6H5, mającą 1 do 7 atomów, albo, gdy n j est równe 0, X oznacza podstawnik R; każde M niezależnie oznacza niej onowe ugrupowanie hydrofilowe, a każde Mj niezależnie oznacza grupę C^alkilową podstawioną co najmniej jedną grupą hydroksylową i ewentualnie połączoną z pierścieniem fenylowym poprzez grupę karbonylową, sulfonową lub sulfotlenkową, przy czym co najmniej jeden podstawnik R jest ugrupowaniem pod warunkiem że gdy n jest równe zero, to albo jest obecna co najmniej jedna grupa Mj inna niż hydroksymetyl lub 1,2-dihydroksyetyl, albo jeśli jest obecna jedna grupa M, hydroksymetylowa lub 1,2-dihydroksyetylowa, to obecna jest także co najmniej jedna grupa M zawierająca hydroksylowany alkil przyłączony do azotu), łącznie z jego izomerami, oraz co najmniej jeden tolerowalny fizjologicznie nośnik lub środek pomocniczy.
Związki o wzorze I są korzystnie asymetryczne.
W pierwszym wariancie, dla związków monomerycznych (gdy n = 0) można to osiągnąć przez asymetryczne podstawienie pierścienia fenylowego.
W drugim wariancie, dla dimerów, gdy n= 1, można to osiągnąć przez zastosowanie asymetrycznej grupy X tworzącej łańcuch mającej 2 łub więcej atomów i/lub przez dobór różnych ugrupowań C6H5, to jest niejednakowego podstawienia jodofenylowych grup końcowych. Cząsteczki asymetryczne są korzystne, ponieważ stwierdzono, że mają one lepszą rozpuszczalność w wodzie.
Takie niejednakowe podstawienie końcowych grup fenylowych, ugrupowań C6H5, można uzyskać przez różne liczby lub pozycje podstawienia jodem i/lub różne liczby, pozycje lub znaczenia podstawnika M lub MP Dla zmaksymalizowania obciążenia jodem korzystne sątrijodofenylowe grupy końcowe, na przykład grupy o wzorze:
w którym każda grupa M2 niezależnie jest grupą M lub M1.
Gdy końcowa grupa fenylowa jest dipodstawiona jodem, korzystnie ma ona wzór:
lub
(gdzie każda z grup M2 może być taka sama lub różna i oznacza grupę M] lub M, przy czym korzystnie co najmniej jedna na każdym z pierścieni oznacza grupę MJ.
Generalnie dimery dijodofenylowo-dijodofenylowe są mniej korzystne niż dimery dijodofenylowo-trijodofenylowe lub trijodofenylowo-trijodofenylowe, głównie z powodu ich zmniejszonego obciążenia jodem, to jest 4 a nie 5 lub 6 atomów jodu na cząsteczkę dimeru. Generalnie korzystne są dimery trijodofenylowo-trijodofenylowe z powodu ich wyższego obciążenia j odem.
180 863
W przypadku monomerów korzystne są również związki trijodofenylowe.
Grupą solubilizującą M może być dowolna z niejonowych grup zwykle stosowanych do zwiększenia rozpuszczalności w wodzie. Do odpowiednich grup należą na przykład grupy alkilowe Cj.jo o łańcuchu prostym lub rozgałęzionym, korzystnie grupy C].5, ewentualnie mające jedno lub więcej ugrupowań CH2 lub CH zastąpionych atomami tlenu lub azotu i ewentualnie podstawione jedną lub większąilościągrup wybranych z grup okso, hydroksylowych, aminowych, karboksylowych oraz oksopodstawionych atomów siarki i fosforu. Szczególnymi przykładami są grupy polihydroksyalkilowe, hydroksyalkoksyalkilowe i hydroksypolialkoksyalkilowe oraz takie grupy przyłączone do grupy fenylowej poprzez wiązanie amidowe, jak grupy hydroksyalkiloaminokarbonylowe, N-alkilohydroksyalkiloaminokarbonylowe i bis hydroksyalkiloaminokarbonylowe. Spośród takich grup korzystne są grupy zawierające 1, 2, 3, 4, 5 lub 6, zwłaszcza 1, 2 lub 3 grupy hydroksylowe, na przykład:
-CONH-CH2CH2OH
-CONH-CH2CHOHCH2OH
-CONH-CH(CH2OH)2
-CON(CH2CH2OH)2 jak również inne grupy, takie jak
-CONH2
-conhch3
-ococh3
-N(COCH3)H
-N(COCH3)Cj.3-alkil
-N(COCH3)-mono-, bis lub tris-hydroksy-CM-alkil
-N(COCH2OH)-mono-, bis lub tris-hydroksy-CM-alkil
-N(COCH2OH)2
-CON(CH2CHOHCH2OH) (CH2CH2OH)
-CONH-C(CH2OH)3 i
-CONH-CH(CH2OH) (CHOHCH2OH).
Generalnie każda z grup M korzystnie stanowi grupę polihydroksy -CM-alkilową, takąjak l,3-dihydroksyprop-2-yl lub 2,3-dihydroksyprop-l-yl.
Mogą być także zastosowane inne takie grupy M, zwykle stosowane w dziedzinie trijodofenylowych rentgenowskich środków kontrastowych, a wprowadzenie grup M do struktur j odo fenylowych można osiągnąć zwykłymi technikami.
Generalnie grupy Mb korzystnie stanowią grupy CM-alkilowe, podstawione 1,2,3 lub 4 grupami hydroksylowymi (na przykład hydroksymetylowa, 2-hydroksy ety Iowa, 2,3-bishydroksypropylowa, l,3-bishydroksyprop-2-ylowa, 2,3,4-trihydroksybutyIowa, 1,2,4-trihydroksybut-2-ylowa), ewentualnie połączone z pierścieniem fenylowym poprzez grupę CO, SO lub SO2 (na przykład COCH2OH lub SO2CH2OH).
W dimerycznych związkach według wynalazku grupa łącznika, w których η=1, X jest dogodnie wiązaniem lub łańcuchem mającym 1 do 7, na przykład 1,2,3 lub 4 członów, składającym się z atomów węgla, azotu, tlenu lub siarki, na przykład może to być:
wiązanie, jednoatomowy łańcuch O, S, N lub C, dwuatomowy łańcuch NN, NC, NS, CC lub CO, trzyatomowy łańcuch NCN, OCN, CNC, OCO, NSN, CSN, COC, OCC lub CCC, na przykład:
atom tlenu lub grupa NR1, CO, SO2 lub CR2‘;
grupa COCO, CONR1, COCRj1, SOCR^, SO^R1, CR21CR21, CR2INR1 lub CR2'O;
grupa NR1 CONR1, OCONR1, CONR^O, CONR1CR21, OCOO, CR21OCR21, OCR21CO, CR21CONR1, CR21CR2'CR21, COCR^CO, CR2’NR1CR21, CR^SO^R1, CR2OCO lub NR^O^R1;
180 863 gdzie R1 oznacza wodór lub grupę C1.6-alkilową lub alkoksylową, ewentualnie podstawioną grupąhydroksy Iową, alkoksylową, oksa lub okso (na przykład polihydroksyalkilową, formy Iową, acetylową, hydroksylową, alkoksylową lub hydroksyalkoksylową) i gdy R1 jest przyłączony do atomu węgla, to R1 może także oznaczać grupę hydroksylową.
Gdy X stanowi połączenie o 4-7 atomach, to mogą być zastosowane zwykłe grupy łącznikowe, takie jak na przykład sugerowane przez Justes'a w WO93/10078 lub Bracco w USA-A-4348377 i WO94/14478.
Generalnie takie połączenia będą stanowić ewentualnie aza lub oksa podstawione łańcuchy alkilenowe, ewentualnie noszące podstawniki R1, zwłaszcza zakończone azotem iminowym, lub bardziej korzystnie, karbonylowe atomy węgla, korzystnie należące do iminokarbonylowych jednostek funkcjonalnych wewnątrz łańcucha. Szczególnie korzystne są łańcuchy hydroksylowane, takie jak występują w jodiksanolu.
Przykładami takich łańcuchów są łańcuchy NCCN, NCCCN, CNCCCNC i CNCCN, na przykład:
-NR^OCONR1-
- NR^OCR^CONR1-
- NR1CR21CR‘OHCR21NR1-
- CONR^R^CONR1-
- NtCOR^CR^CROHb^COR1)-, na przykład takie jakie występują w jotrolanie,jofratolu, kwasie joksaglowym i jodiksanolu, lub inne wskazane w WO94/14478.
Korzystnie w związkach dimerycznych grupa X nie jest symetryczna. Można to uzyskać na przykład przez asymetryczne podstawienie symetrycznego łańcucha (na przykład N-C-N podstawiony jako NHCONR1) lub przez dobranie asymetrycznego łańcucha (na przykład OCN podstawiony jako OCONR1). W szczególności korzystna jest polarna grupa łącznika X i powinna ona być także hydrofitowa.
Tak więc przykłady korzystnych struktur według wynalazku obejmują następujące struktury:
180 863
180 863 w których każda grupa M2 oznacza Mj lub M, przy czym co najmniej jedna grupa M2 w każdym związku (a korzystnie na każdym pierścieniu) jest to Mj, a w szczególności co najmniej jedna grupa M2 jest grupą CM-alki Iową, podstawioną 1,2,3 lub 4 grupami hydroksylowymi (na przykład grupa hydroksymetylowa, 2-hydroksyetylowa, 2,3-bishydroksypropy Iowa, l,3-bishydroksyprop-2-ylowa, 2,3,4-trihydroksybutylowa i 1,2,4-trihydroksybut-2-ylowa), ewentualnie połączoną z pierścieniem fenylowym poprzez grupę CO, SO lub SO2 (na przykład COCH2OH lub SO2CH2OH), na przykład grupa hydroksyalkilowa lub hydroksyalkilokarbonylowa, w szczególności grupa hydroksymetylowa, hydroksymetylokarbonylowa, 2-hydroksyetylowa lub 2-hydroksyetylokarbonylowa, i w których R1 oznacza wodór, hydroksyl, hydroksyalkil (na przykład 2-hydroksyetyl), acetyl lub hy droksyalkilokarbony 1.
Szczególnymi, korzystnymi związkami są związki o wzorach:
180 863
Związki według wynalazku mogąbyć generalnie wytwarzane w dwóch lub trzech etapach: (a) utworzenie dimeru (gdy potrzebne), (b) jodowanie grup fenylowych i (c) podstawienie grup fenylowych i/lub ewentualnie ugrupowań łącznika przez ugrupowania solubilizujące.
Jakkolwiek teoretycznie etapy (a), (b) i (c) można przeprowadzić w dowolnej kolejności, to generalnie korzystne jest przeprowadzenie etapu tworzenia dimeru przed etapem jodowania, i z powodów ekonomicznych korzystne jest także przeprowadzenie etapu jodowania w jak najpóźniejszym etapie syntezy w celu zmniejszenia strat jodu. Etap tworzenia dimeru może być sam procedurą wieloetapową, w której najpierw do monomeru przyłącza się odpowiedni aktywowany łącznik, a następnie uzyskany koniugat łącznik-monomer poddaje się reakcji z drugim monomerem. Alternatywnie, tworzenie dimeru może przebiegać na drodze reakcji podobnie lub wspólnie podstawionych monomerów, których sprzężenie prowadzi do tworzenia dimeru.
W razie potrzeby grupa łącznika X może być wytworzona przez modyfikację, na przykład podstawienie, utlenienie lub redukcję, prekursora łącznika, na przykład w monomerze prekursorowym.
W przypadku związków monomerycznych, zwłaszcza tych związków monomerycznych, w których pierścień podstawiony jest asymetrycznie, obciążenie jodem generalnie przeprowadza się przed podstawieniem pierścienia fenylowego grupami R lub po jego częściowym podstawieniu tymi grupami.
We wszystkich przypadkach można stosować zwykłe drogi syntezy, dobrze znane z literatury (na przykład metody analogiczne do metod stosowanych i opisanych do wytwarzania związków opisanych w WO94/14478).
Związki według wynalazku mogąbyć stosowane jako rentgenowskie substancje kontrastowe i do tego celu mogąbyć formułowane z konwencjonalnymi nośnikami i zaróbkami z wytworzeniem diagnostycznych środków kontrastowych.
Środek według wynalazku zawiera związek o wzorze I (zdefiniowany jak powyżej) razem z co najmniej jednym tolerowalnym fizjologicznie nośnikiem lub zaróbką, na przykład w roztworze wodnym w wodzie do iniekcji, ewentualnie z dodanymi jonami surowicy krwi lub z rozpuszczonym tlenem.
180 863
Kompozycje środków kontrastowych według wynalazku mogą być w stężeniach gotowych do użycia lub mogą być sporządzane w postaci koncentratów do rozcieńczania przed podaniem. Generalnie kompozycje w postaci gotowej do użycia będą miały stężenia jodu co najmniej 100 mgl/ml, korzystnie co najmniej 150 mgl/ml, przy czym szczególnie korzystne sąstężenia co najmniej 300 mgl/ml, na przykład 320 do 400 mgl/ml. Im wyższe jest stężenie jodu, tym wyższa wartość diagnostyczna, ale również tym wyższa lepkość i osmolalność roztworu. Normalnie maksymalne stężeniejodu dla danego związku będzie ustalane na podstawie jego rozpuszczalności i dolnych tolerowanych granic lepkości i osmolalności.
W przypadku środków kontrastowych podawanych przez iniekcje, pożądany dolny limit lepkości roztworu w temperaturze pokojowej (20°C) wynosi 30 mPa, jednakże mogąbyć tolerowane lepkości do 50 lub nawet do 60 mPa, jakkolwiek ich stosowanie w radiografii pediatrycznej będzie wtedy generalnie przeciwwskazane. Dla środków kontrastowych, które mają być podawane na drodze jednorazowego wlewu, na przykład w procedurach angiograficznych, muszą być brane pod uwagę efekty osmotyczne i korzystnie osmolalność powinna być niższa niż 1 Osm/kg H2O, zwłaszcza poniżej 850 mOsm/kg H2O, zwłaszcza o izotoniczności 50 mOsm lub niższej, korzystnie 10 mOsm (około 300 mOsm/kg H2O).
W przypadku związków według wynalazku takie wymagania co do lepkości, osmolalności i stężenia jodu można łatwo spełnić. W istocie, efektywne stężenia jodu można osiągnąć z roztworami hipotonicznymi. Może być więc pożądane uzupełnienie toniczności roztworu przez dodanie kationów osocza krwi, tak aby zmniejszyć toksyczność związaną z efektem braku równowagi jonowej po podaniu jednorazowego wlewu. Takie kationy będą generalnie wprowadzone w zakresach sugerowanych w opisie publikacji WO90/01194 i WO91/13636.
Korzystne zawartości kationów osocza krwi dla środków kontrastowych według wynalazku są następujące:
sód 2 do 100, zwłaszcza 15 do 75, szczególnie 20 do 70, bardziej szczególnie 25 do 35 mM wapń do 3,0, korzystnie 0,05 do 1,6, zwłaszcza 0,1 do 2, szczególnie 0,15 do 0,7 mM potas do 2, korzystnie 0,2 do 1,5, zwłaszcza 0,3 do 1,2, korzystnie 0,4 do 0,9 mM magnez do 0,8, korzystnie 0,05 do 0,6, zwłaszcza 0,1 do 0,5, w szczególności 0,1 do 0,25 mM.
Kationy osocza mogąbyć obecne w jonowych środkach kontrastowych, w całości lub w części jako przeciwjony. W innym przypadku mogąbyć generalnie dostarczane w postaci soli z tolerowanymi fizjologicznie przeciwjonami, na przykład takimi jak chlorek, siarczan, fosforan, wodorowęglan, etc., przy czym preferowane są zwłaszcza aniony z osocza.
Poza kationami osocza środek kontrastowy może zawierać inne przeciwjony gdy dimer jest jonowy i oczywiście korzystne jest jeśli takie przeciwjony są tolerowane fizjologicznie. Przykładami takich jonów sąjony metali alkalicznych i ziem alkalicznych, jon amoniowy, meglumina, etanoloamina, dietanoloamina, chlorek, fosforan i wodorowęglan. Mogąbyć także zastosowane inne przeciwjony, zwykle stosowane w preparatach farmaceutycznych. Ponadto kompozycje mogą zawierać dodatkowe składniki, typowe dla rentgenowskich środków kontrastowych, na przykład bufory, etc.
Wynalazek ilustrują poniższe nieograniczające przykłady.
Przykład 1. l,3,5-Trijodo-2,4-di(l,2,3-trihydroksy-l-propylo)-6-(3-hydroksy-l-propen-1 -ylo)benzen
a. 1.3.5-Triiodo-2 A6-trimetylobenzen
Jod (19,0 g, 75 mmoli) rozpuszczono w czterochlorku węgla (75 ml). Dodano mezytylen (7,0 ml, 50 mmoli) i jodekbis(trifluoroacetoksy)fenylu (35,5 g, 82 mmole) i mieszano roztwór w temperaturze pokojowej przez 2 godziny. Wytrącony osad odsączono, przemyto zimnym czterochlorkiem węgla i wysuszono. Wydajność: 20,5 g (82%).
*HNMR (CDC13): 3,31 (s).
180 863
b. 1.3.5-Trijodo-2A6-triacetoksymetylobenzen
Do lodowatego kwasu octowego (200 ml) zawierającego bezwodnik octowy (400 ml) i stężony kwas siarkowy (40 ml) dodano trijodomezytylen (19,5 g, 39 mmoli). Następnie w ciągu 3 godzin dodano w małych porcjach stały nadmanganian potasu (24,6 g, 156 mmoli). Mieszano przez 16 godzin, rozpuszczalnik odparowano i dodano wodę (200 ml). Zawiesinę wodną ekstrahowano dichlorometanem (250 ml) i przemyto fazę organiczną wodą (3x50 ml), wysuszono (MgSO4) i odparowano. Stałą pozostałość zawieszono w acetonie, a biały produkt krystalizacji zebrano przez filtrację. Wydajność: 9,3 g (35%).
Ή NMR (CDC13) : 5,66 (s, 6H), 2,20 (s, 9H).
c. 1.3.5-Trijodo-2.4.6-trihydroksymetylobenzen
1,3,5- Trijodo-2,4,6-triacetoksymetylobenzen (9,3 g, 13,8 mmoli) zawieszono w metanolu (120 ml) i dodano K2CO3 (0,32 g, 2,3 mmoli). Mieszaninę mieszano w temperaturze pokojowej przez 16 h, zobojętniono roztwór wodnym 2M roztworem HC1, po czym odparowano rozpuszczalnik organiczny. Pozostałość zawieszono w wodzie, a biały osad odsączono i przemyto wodą metanolem i eterem. Wydajność: 7,1 g (94%).
Ή NMR (DMSO-d6): 5,08 (s, 6H), 3,35 (br s, 3H).
d. 1.3.5-Triiodobenzeno-2.4.6-trialdehyd l,3,5- Trijodo-2,4,6-trihydroksymetylobenzen (4,5 g, 8,2 mmoli) rozpuszczono w DMSO (80 ml). Dodano trietyloaminę (51,7 ml, 371 mmoli) i kompleks pirydyna · SO3 (11,8 g, 74,2 mmole) i mieszano mieszaninę przez dwie godziny. Dwie fazy rozdzielono i fazę niższą ochłodzono do 0°C, wylano do wody(l 50 ml) i mieszano przez 30 minut w 0°C. Biały osad zebrano przez filtracje, przemyto wodą i wysuszono. Wydajność: 3,0 g, (67%).
Ή NMR (DMSO-d6): 9,64 (s).
e. Ester metylowy kwasu 1.3.5-triiodobenzeno-2.4.6-tris(2-prop-l-enowego)
Wodorek sodu (194 mg, 80% w oleju mineralnym, 6,5 mmoli) rozpuszczono w DMSO (13 ml) i dodano fosfonooctan trietylu (1,16 ml, 5,80 mmoli). Roztwór mieszano przez 30 minut, dodano l,3,5-trijodobenzeno-2,4,6-trialdehyd (700 mg, 1,30 mmoli) i mieszano mieszaninę reakcyjnąprzez 16h. Następnie dodano wodę (200 ml) i ustawiono pH na 1 za pomocą 2M wodnego roztworu HC1. Zawiesinę ekstrahowano dichlorometanem (2x200 ml) i połączone fazy organiczne przemyto wodą (3x50 ml), wysuszono (MgSO4) i odparowano. Po oczyszczeniu przez chromatografię kolumnową (żel krzemionkowy CH2Cl2-metanol 99:1) otrzymano czysty produkt w postaci białego osadu. Wydajność: 426 mg (44%).
lHNMR (CDC13): 7,48 (d, 3H, J=16,2Hz), 5,95 (d, 3H, J=16,2Hz), 4,30 (q, 6H, J=7,2Hz), 1,36 (t, 9H, J=7,2Hz).
f. 1.3.5-Trijodo-2,4.6-tris(l-hydroksypropen-3-ylo)benzen
Ester metylowy kwasu l,3,5-trijodobenzeno-2,4,6-tris(2-prop-l-enowego) (650 mg, 0,87 mmoli) rozpuszczono w toluenie (10 ml) i dodano w 0°C wodorek diizobutyloglinowy (5,44 ml 1,2M roztworu w toluenie). Mieszano przez 40 minut w 0°C, wylano roztwór do metanolu (50 ml) a uzyskaną zawiesinę mieszano przez dalsze 45 minut. Osad odsączono, a roztwór odparowano, otrzymując białąstałąpozostałość, którąoczyszczono przez macerację eterem dietylowym. Wydajność: 510 mg (94%).
'HNMR (CD3OD): 6,44 (d, 3H, J=16,0Hz), 5,57 (dt, 3H, Jd=l 6,0Hz, Jt=5,8Hz), 4,23 (m, 6H).
g. 1,3.5-Trijodo-2.4,6-tris(l -acetoksypropen-3-ylo)benzen l,3,5- Trijodo-2,4,6-tris(l-hydroksypropen-3-ylo)benzen (560 mg, 0,90 mmoli) rozpuszczono w mieszaninie pirydyny (8 ml) i bezwodnika octowego (8 ml). Mieszano w temperaturze pokojowej przez 16 godzin, rozpuszczalnik odparowano, a pozostałość oczyszczono za pomocą preparatywnej HPLC (RP-18, CH3CN 80:20). Wydajność: 310 mg (46%).
Ή NMR (CDC13) δ: 6,46 (dt, 3H, Jd=16,2Hz, Jt=l,6Hz), 5,68 (dt, 3H, Jd=16,2Hz, Jt=5,6Hz), 4,83 (dd, 6H, Jj=5,6Hz, J2=l,6Hz), 2,12 (s, 9H).
13C NMR (CDC13) : 170,6, 146,3, 140,9,131,5, 98,7, 63,5, 20,9.
180 863
h. 13,5-Trijodo-2,4-di(l ,2,3-trihydroksy-1 -propylo)-6-(3-hydroksy-1 -propen-1 -ylo)benzen l,3,5-Trijodo-2,4,6-tris(l-acetoksypropen-3-ylo)benzen (100 mg, 0,133 mmoli) rozpuszczono w kwasie mrówkowym (5 ml), zawierającym nadtlenek wodoru (0,054 ml). Mieszaninę mieszano w temperaturze pokojowej przez 21 godzin i odparowano rozpuszczalnik. Dodano metanol (5 ml), następnie stały K2CO3 (195 mg), mieszano przez 1 godzinę, po czym odparowano rozpuszczalnik. Produkt oczyszczono za pomocą preparaty wnej HPLC (CH3CN:H2O 3-97) ’HNMR(D2O): 6,45 (d, 1H, J=16,0Hz), 5,40-5,55 (m, 1H), 4,54-4,90 (m, 11H), 4,23-4,31 (m, 2H), 3,62-3,91 (m, 4H).
MS (ESP) : 692 (M+).
Przykład 2. l,3,5-Trijodo-2,4,6-tri(l,2,3-trihydroksy-l-propylo)benzen l,3,5-Trijodo-2,4,6-tris(l-acetoksypropen-3-ylo)benzen(100 mg, 0,133 mmoli, z przykładu lg) rozpuszczono w kwasie mrówkowym (5 ml), zawierającym nadtlenek wodoru (0,081 ml). Mieszaninę mieszano w temperaturze pokojowej przez 40 godzin i odparowano rozpuszczalnik. Dodano metanol (5 ml), następnie stały K2CO3 (195 mg), mieszano przez 1 godzinę, po czym odparowano rozpuszczalnik. Produkt oczyszczono za pomocąpreparatywnej HPLC (CH3CN:H2O 3:97).
lH NMR (CD3OD): 4,57-4,94 (m, 15H), 3,62-3,99 (m, 6H).
MS (ESP): 744 (M+18).
Przykład 3. N-Acetylo-3-hydroksymetylo-5-(2,3-dihydroksypropyloaminokarbonylo)-N-(2,3-dihydroksypropylo)-2,4,6-trijodoanilina
a. Ester metylowy kwasu l-hydroksymetylo-3-nitro-5-benzoesowego
Ester monometylowy kwasu 1 -nitroizoftalowego (22,5 g, 100 mmoli) rozpuszczono w suchym THF (675 ml) i dodano BF3Et2O (25,2 ml, 200 mmoli). Następnie dodano porcjami w ciągu 1 hNaBH4 (5,1 g, 135 mmoli). Mieszano przez dodatkowe 2 h, dodano powoli etanol (20 ml), następnie wodę (200 ml) i eter dietylowy (400 ml). Fazy rozdzielono, a fazę wodną ekstrahowano raz eterem dietylowym (100 ml). Połączone fazy organiczne przemyto nasyconym wodnym roztworem NaHCO3, wysuszono (Na2SO4) i odparowano. Wydajność: 20 g (96%).
Ή NMR(CDC13) : 8,72 (s, 1H), 8,42 (s, 1H), 8,32 (s, 1H), 4,86 (s, 2H), 3,97 (s, 3H),2,37 (br s, 1H).
b. l-Hydroksymetylo-3-nitro-5-(2,3-dihydroksypropyloaminokarbonylo)benzen
Ester metylowy z przykładu 3a (20,5 g, 97 mmoli) zmieszano z 2,3-dihydroksypropyloaminą(9,6 g, 106 mmoli) i ogrzewano mieszaninę do 90°C. Po 45 minutach zmniejszono ciśnienie do 200 mm Hg i kontynuowano ogrzewanie przez 2 h. Surowy produkt o czystości zgodnie z analizą HPLC >95% używano w następnym etapie bez dodatkowego oczyszczania. Wydajność: 22,8 g (87%).
1HNMR(CD3OD): 8,57 (s, 1H), 8,38 (s, 1H), 8,19 (s, 1H), 4,77 (s, 2H), 3,81-3,88 (m, 1H), 3,39-3,63 (m, 4H).
c. 3-Hydroksymetylo-5-(23-dihydroksypropyloaminokarbonylo)-anilina
3-Hydroksymetylo-3-nitro-5-(2,3- dihydroksypropyloaminokarbonylo)benzen (12,0 g, 44,4 mmoli) uwodorniano w metanolu (150 ml) przy ciśnieniu 60 psig H2, stosując Pd/C (10%, 100 mg) jako katalizator. Katalizator usunięto przez filtrację, a pozostałość odparowano. Dodanie metanolu (10 ml) spowodowało wytrącenie się produktu w postaci białego osadu, który odsączono i wysuszono. Wydajność: 6,6 g (62%).
Ή NMR(CD3OD: 7,05-7,09 (m, 1H), 6,98-7,03 (m, 1H), 6,83-6,87 (m, 1H), 4,53 (s, 2H), 3,77-3,85 (m, 1H), 3,8-3,59 (m, 4H), 3,32-3,42 (m, 1H).
MS (ESP, m/e) : 241 ([M+l]+, 100%).
d. 3-Hydroksymetylo-5-(2,3-dihydroksypropyloaminokarbonylo)-2.4,6-trijodoanilina
3-Hydroksymetylo-5-(2,3-dihydroksypropyloaminokarbonylo)anilinę (500 mg, 2,1 mmoli) rozpuszczono w wodzie (175 ml) i dodano porcjami po 0,1 ml w ciągu 8 h wodny roztwór KIC12 (70%, w/w). Łącznie dodano 1,0 ml roztworu KIC12. Po łącznym czasie reakcji 6 h, roztwór ekstrahowano octanem etylu (1000 ml), który oddzielono i przemyto wodnym roztworem
180 863
Na2S2O3 (0,2M, 100 ml). Po odparowaniu! oczyszczeniu przez preparaty wną HPLC otrzymano 432 mg (33%) czystego produktu.
’H NMR (CD3OD) : 5,10 (s, 2H), 3,90-3,98 (m, 1H), 3,72 (ddd, J^OJHz, J2=4,2Hz, J3=l 1,4Hz, 1H), 3,60 (dd,^=6,0Hz, J2=l 1,4Hz, 1H),3,49 (ddd, J^l,2Hz, J2=6,0Hz, J3=l3,5Hz, 1H), 3,37 (ddd, J^l^Hz, J2=6,1Hz, J3=13,2Hz, 1H), 2,62 (s, 1H), 2,28 i 2,34 (2s, 2H).
MS (ESP, m/e) : 618 (M+, 100%), 640 ([M+Na]+, 55%).
e. N-Acetylo-3-acetoksymetylo-5-(2.3-diacetoksypropyloaminokarbonylo)-2,4.6-trijodoanilina
3-Hydroksymetylo-5-(2,3-dihydroksypropyloaminokarbonylo)-2,4,6-trijodoanilinę (3,3 g, 5,3 mmoli) zawieszono w lodowym kwasie octowym (12 ml), zawierającym bezwodnik octowy (48 ml) i stężony kwas siarkowy (0,08 ml). Mieszaninę mieszano w 60°C przez 3 h, następnie ochłodzono do temperatury pokojowej i dodano CH2C12 (100 ml) i wodę (100 ml). Fazę organicznąprzemyto wodą(3 x 50 ml) i nasyconym wodnym roztworem NaHCO3 (2x50 ml). Po wysuszeniu (MgSO4) i odparowaniu pozostałość rozpuszczono w mieszaninie CH2C12 i metanolu (9:1) i przesączono przez niską warstwę krzemionki i odparowano. Wydajność: 3,0 g (71%).
•HNMRiCDCy : 8,27-8,32 (m, 1H), 5,51 (s, 2H), 5,18-5,22 (m, 1H), 4,17-4,42 (m, 2H), 3,67-3,84 (m, 1H), 3,41-3,60 (m, 1H), 2,56 (s, 3H), 2,04-2,14 (8s, 12H).
MS (ESP, m/e): 786 (M+, 100%), 809 ([M+Na]+, 81%).
f.N-Acetylo-3-hydroksymetylo-5-(2.3-dihydroksypropyloaminokarbonylo)-N-(2.3-dihydroksypropylo)-2,4.6-trijodoanilina
N-Acetylo-3-acetoksymetylo-5-(2,3-diacetoksypropyloaminokarbonylo)-2,4,6-trijodoanilinę (1,0 g, 1,27 mmoli) zawieszono w mieszaninie metanolu (6 ml) i wody (30 ml) i ustawiono pH na 12,0, stosując 2M wodny roztwór NaOH. Mieszano przez 1 h, dodano l-bromo-2,3-propanodiol (0,99 g, 6,4 mmoli) i ustawiono pH na 11,6, stosując 2M wodny roztwór HC1. Po 16 i 18 h dodano ponownie l-bromo-2,3-propanodiol (0,99 g, 6,4 mmoli), a po 24 hpH ustawiono na 6,5 za pomocą 2M wodnego roztworu HC1. Po odparowaniu pozostałość oczyszczono przez preparatywnąHPLC. Wydajność: 0,373 g (40%).
*HNMR (D2O) : 5,20 (s, 2H), 3,23-3,99 (m, 12H), 1,79 (2s, 3H).
MS (ESP, m/e): 734 (M+, 60%), 756 ([M+Na]+, 100%).
Przykład4. Alkohol N,N'-bis(hydroksyacetylo)-3,5-diamino-2,4,6-trijodobenzylowy
a. Alkohol 3,5-diaminobenzylowy
Roztwór alkoholu 3,5-dinitrobenzylowego (2,20 g, 11,1 mmoli) w metanolu (90 ml) i katalizatora Pd/C (10%, 100 mg) uwodorniano w aparacie Parra przy 60 psi. Roztwór odsączono, a rozpuszczalnik usunięto przez odparowanie. Surowy produkt stosowano bez oczyszczania w następnym etapie.
]H NMR (CDC13): 6,12-6,14 (m, 2H), 5,96-5,98 (m, 1H), 4,51 (s, 2H), 3,60 (br s, 4H).
b. Alkohol 3,5-diamino-2,4,6-trijodobenzylowy
Surowy produkt z poprzedniego przykładu rozpuszczono w mieszaninie metanolu (310 ml) i wody (60 ml) i ustawiono pH na 1,5, stosując 4M wodny roztwór HC1. Wkroplono roztwór KIC12 (70%, 11,2 g) z taką szybkością, że po każdym dodaniu zanikał kolor. Mieszano przez dalsze 5 minut, po czym osad odsączono i przemyto wodą (3x50 ml), eterem (3x50 ml) i wysuszono. Wydajność: 4,50 g (80%).
Ή NMR (DMSO-d6) : 5,20 (s, 4H), 4,81-4,94 (m, 3H).
c. Octan 3,5-diamino-2,4.6-trijodobenzylu
Alkohol 3,5-diamino-2,4,6-trijodobenzylowy (4,42 g, 8,56 mmoli) rozpuszczono w mieszaninie pirydyny (50 ml) i bezwodnika octowego (2,5 ml) i mieszano mieszaninę w temperaturze pokojowej przez 16 h. Rozpuszczalniki odparowano, a pozostałość przemyto eterem (3x50 ml), wodą (3x50 ml) i wysuszono.
Wydajność: 4,52 g (95%).
Ή NMR (DMSO-d6) : 5,35 (s, 2H), 5,28 (s, 4H), 2,04 (s, 3H).
13HNMR(): 170,5, 148,1, 139,0,78,0, 73,6,70,0,20,8.
180 863
d. Octan 3.5-bisiacetoksyaceMoamino)-2.4.6-trijodobenzylu
Octan 3,5-diamino-2,4,6-trijodobenzylu (%5,58 g, 10 mmoli) zmieszano z chlorkiem acetoksyacetylu (3,22 ml, 30 mmoli) i dimetyloacetamidem (50 ml) i mieszano mieszaninę przez 17 h. Dodano eter (600 ml) i po 20 minutach zebrano osad, przemyto go wodą (3x50 ml) i wysuszono. Po rekrystalizacji z acetonitrylu otrzymano 3,3 g (44%) czystego produktu.
Ή NMR (DMSO-d6) : 10,27 i 10,19 (2s, 2:1,2H), 5,51 (s, 2H), 4,66 (s, 4H), 21,3 (s, 3H), 2,12 (s, 3H), 2,06 (s, 3H).
e. Alkohol N.N'-bis(hydroksyacetylo)-3.5-diamino-2A6-trijodobenzylowy
Octan 3,5-bis(acetoksyacetyloamino)-2,4,6-trijodobenzylu (152 mg, 0,2 mmoli) rozpuszczono w mieszaninie metanolu (6 ml) i IM wodnego roztworu NaOH (2 ml) i mieszano roztwór przez 2h w temperaturze pokojowej. Zobojętniono 1 M HC1, po czym usunięto rozpuszczalniki przez odparowanie i oczyszczono produkt przez preparatywnąHPLC. Wydajność: 105 mg (83 %).
MS (ESP, m/e) : 655 ([M+Na]+, 100%).
Przykład 5. Alkohol N,N'-bis(hydroksyacetylo)-N-(2-hydroksyetylo)-3,5-diamino-2,4,6-trijodobenzylowy
a. Octan N.N'-bis(acetoksyacetvlo)-N-(2-acetoksyetylo)-3.5-diamino-2.4.6-trijodobenzylu
Octan 3,5-bis(acetoksyacetyloamino)-2,4,6-trijodobenzylu (2,15 g, 2,84 mmoli) rozpuszczono w mieszaninie DMSO (5 ml) i dimetyloacetamidu (5 ml), zawierającej Cs2CO3 (1,0 g, 3,07 mmoli) i octan 2-bromoetylu (0,31 ml, 2,84 ml). Mieszaninę mieszano w temperaturze pokojowej przez 48 godzin, dodano eter (100 ml) i wodny bufor NaH2PO4, przemyto fazę organiczną wodą i wysuszono. Po oczyszczeniu przez preparatywną HPLC otrzymano 520 mg (22%) produktu.
Ή NMR (CDC13): 7,86 (s, 1H), 5,66 (s, 2H), 4,80 (s, 2H), 3,81-4,44 (m, 6H), 2,13-2,27 (m, 12H).
MS (ESP, m/e): 845 ([M+l]+, 100%), 866 ([M+Na]+, 24%).
b. Alkohol N.N'-bis(hydroksyacetylo)-N-(2-hydroksyetylo)-3.5-diamino-2A6-trijodobenzylowy
Octan N,N'-bis(acetoksyacetylo)-N-(2-acetoksyetylo)-3,5-diamino-2,4,6-trijodobenzylu (0,50 g, 0,59 mmoli) rozpuszczono w mieszaninie metanolu (5 ml), wody (5 ml) i wodnego 1M NaOH (1 ml). Roztwór mieszano przez 2 h, pH ustawiono na 2 stosując wodny roztwór HC1 i oczyszczono produkt za pomocą preparaty wnej HPLC. Wydajność: 240 mg (67%).
1H NMR (DMSO-d6) :9,85 (brs, lH),5,77(brs, 1H), 4,79-5,26 (m,3H), 3,20-3,71 (m,6H).
MS (ESP, m/e): 676 (M+, 57%), 698 ([M+Na]+, 100%).
Przykładó. Alkohol N,N'-bis(hydroksyacetylo)-N,N'-bis(2-hydroksyetylo)-3,5-diamino-2,4,6-trijodobenzylowy
Octan 3,5-bis(acetoksyacetyloamino)-2,4,6-trijodobenzylu (190 mg, 0,25 mmoli), otrzymany według przykładu 4, rozpuszczono w dimetyloacetamidzie (5 ml) w atmosferze argonu. Dodano octan 2-bromoetylu (0,22 ml, 2,0 mmoli) i K2CO3 (138 mg, 1,0 mmoli). Po 16 h dodano DMSO (1,5 ml), octan 2-bromoetylu (0,22 ml, 2,0 mmoli) i K2CO3 (138 mg, 1,0 mmoli) i mieszano zawiesinę przez następne 24 h. Dodano wodny roztwór NaH2PO4 i ekstrahowano uzyskany roztwór eterem (3x25 ml). Połączone fazy organiczne przemyto wodą(4x20 ml), po czym wysuszono (MgSO4). Rozpuszczalnik usunięto przez odparowanie, a pozostałość w postaci bezbarwnego oleju rozpuszczono w mieszaninie metanolu (3 ml) i IM wodnego NaOH (3 ml). Roztwór mieszano przez 1 h, ustawiono pH na 6 stosując wodny HC1 i usunięto rozpuszczalniki przez odparowanie. Po oczyszczeniu zapomocąpreparatywnej HPLC otrzymano 60 mg (33%) produktu.
MS (ESP, m/e): 720 (M+, 100%), 742 ([M+Na]+, 36%).
Przykład 7. Alkohol N,N'-bis(hydroksyacetylo)-N-(2,3-dihydroksypropylo)-3,5-diamino-2,4,6-trijodobenzylowy
a. Octan N,N'-bis(acetoksyacetylo)-N-[(2.2-dimetylo-1.3-dioksolan-4-ylo)metylo]-3.5-diamino-2.4.6-trijodobenzylu
Octan 3,5-bis(acetoksyacetyloamino)-2,4,6-trijodobenzylu (90 mg, 0,12 mmoli), otrzymany zgodnie z przykładem 4, rozpuszczono w mieszaninie dimetyloacetamidu (3 ml) i
180 863
DMSO (3 ml). Dodano 4-bromoetylo-2,2-dimetylo-l ,3-dioksolan (0,097 g, 0,5 mmoli) i Cs^Oj (0,10 g, 0,3 mmoli) i mieszano roztwór w temperaturze pokojowej przez 48 h. Dodano wodny roztwór NaH2PO4 i ekstrahowano roztwór eterem (3x25 ml). Połączone fazy organiczne przemyto wodą (3x15 ml), wysuszono (MgSO4) i odparowano. Po oczyszczeniu za pomocą preparaty wnej HPLC otrzymano 36 mg (35%) czystego produktu.
Ή NMR (DMSO-d6): 10,30 (br s, 1H), 5,53 (s, 2H), 3,61-4,68 (m, 9H), 2,13 (s, 3H), 2,07 (s, 3H), 2,06 (s, 3H), 1,17-1,34 (m, 6H).
MS (ESP, m/e) : 894 ([M+Na]+, 100%), 910 ([M+K]+, 11%).
b. Alkohol N.N'-bis(hydroksyacetylo)-N-r2.3-dihydroksypropylol-3.5-diamino-2.4.6-trijodobenzylowy
Octan N,N'-bis(acetoksyacetylo)-N-[(2,2-dimetylo-l,3-dioksolan-4-ylo)metylo]-3,5-diamino-2,4,6-trijodobenzylu (36 mg, 0,042 mmoli) rozpuszczono w mieszaninie metanolu (3 ml) i wody (4 ml) i ustawiono pH na 12, stosując IM wodny roztwór NaOH. Mieszano przez 2 h, ustawiono pH na 1, stosując IM wodny roztwór HC1 i kontynuowano mieszanie przez 16 h. Roztwór zobojętniono wodnym buforem NaH2PO4, rozpuszczalniki usunięto przez odparowanie i pozostałość oczyszczono za pomocą preparaty wnej HPLC, otrzymując 24 mg (81%) czystego produktu.
MS (ESP, m/e): 704 (M+, 100%), 726 ([M+Na]+, 34%).
Przykład 8. Alkohol N,N'-bis(2-hydroksypropionylo)-3,5-diamino-2,4,6-trijodobenzylowy
a. Octan N.N'-bis(2-acetoksypropionylo)-3,5-diamino-2,4.6-trijodobenzylu
Octan 3,5-diamino-2,4,6-trijodobenzylu (2,79 g, 5,0 mmoli) rozpuszczono w dimetyloacetamidzie (25 ml) i ochłodzono do 0°C. Wkroplono chlorek 2-acetoksypropionylu (3,73 g, 25 mmoli) i mieszano mieszaninę w temperaturze pokojowej przez 17 h. Rozpuszczalniki odparowano, a pozostałość macerowano z eterem dietylowym. Następnie stałą pozostałość oczyszczono przez chromatografię flash na żelu krzemionkowym, stosując mieszaninę CH2C12 i acetonitrylu (5:1) jako eluent. Wydajność: 2,21 g (56%).
>HNMR(DMSO-d6): 10,20-10,23 (m, 2H), 5,52 (s, 2H), 5,21-5,24 (m, 2H), 2,06-2,13 (m, 9H), 1,51 (d, J=6,9Hz, 6H).
b. Alkohol N.N'-bis(2-hydroksypropionylo)-3.5-diamino-2.4.6-trijodobenzylowy
OctanN,N'-bis(2-acetoksypropionylo)-3,5-diamino-2,4,6-trijodobenzylu (0,16 g, 0,2 mmoli) rozpuszczono w mieszaninie metanolu (5 ml) i wody (5 ml) i ustawiono pH na 12, stosując IM roztwór wodny NaOH. Mieszano przez 15 h, zobojętniono roztwór IM HC1 i usunięto rozpuszczalniki przez odparowanie. Po oczyszczeniu przez preparatywną HPLC otrzymano 61 mg (46%) czystego produktu.
MS (ESP, m/e): 660 (M+, 5%), 682 ([M+Na]+, 100%), 698 ([M+K]+, 17%).
Przykład9. Alkohol N,N'-bis(2-hydroksypropionylo)-N-(2-hydroksyetylo)-3,5-diamino-2,4,6-trij odobenzylowy
a.OctanN.N'-bis(2-acetoksypropionylo)-N-(2-acetoksyetylo)-3.5-diammo-2.,4.6-tiijodobenzylu
OctanN,N’-bis(2-acetoksypropionylo)-3,5-diamino-2,4,6-trijodobenzylu (393 mg, 0,50 mmoli) rozpuszczono w mieszaninie dimetyloacetamidu (4 ml) i DMSO (4 ml), zawierającej octan 2-bromoetylu (0,083 g, 0,50 mmoli) i Cs2CO3 (244 mg, 0,75 mmoli). Mieszaninę mieszano przez 17 h, dodano wodę (20 ml) i ekstrahowano mieszaninę eterem (3x25 ml). Połączone fazy organiczne przemyto wodą(3x20 ml), wysuszono (MgSO4) i odparowano. Pozostałość oczyszczono za pomocą preparaty wnej HPLC, otrzymując 80 mg (18%) czystego produktu.
‘HNMR (CD3OD) : 5,72-5,82 (m, 2H), 5,20-5,42 (m, 2H), 3,55-4,48 (m, 4H), 1,90-2,24 (m, 12H), 1,66 (d, J=7,lHz, 6H).
MS (ESP, m/e): 1004 ([M+Cs]+, 100%).
180 863
b. Alkohol N,N'-bis(2-hydroksypropionyloi-N-(2-hydroksy etylo)-3.5-diami no-2 Aó-trijodobenzylowy
Octan N,N'-bis(2-acetoksypropionylo)-N-(2-acetoksyetylo)-3,5-diamino-2,4,6-trijodobenzylu (120 mg, 0,14 rnrnoli) rozpuszczono w mieszaninie wody (7 ml) i metanolu (7 ml) i ustawiono pH na 12, stosując IM wodny roztwór NaOH. Mieszaninę mieszano przez 2 h, ustawiono pH na 7 wodnym roztworem HC1 i odparowano rozpuszczalniki. Produkt oczyszczono za pomocą preparatywnej HPLC. Wydajność: 70 mg (72%).
Ή NMR (CD3OD) : 5,27-5,34 (m, 2H), 4,31-4,41 (m, 1H), 3,82-4,12 (m, 4H), 3,55-3,73 (m, 1H), 1,51-1,60 (m, 3H), 1,23-1,32 (m, 3H).
MS (ESP, m/e) : 726 ([M+Na]+, 100%).
Przykład 10. Alkohol N,N'-bis(2-hydroksypropionylo)-N,N'-bis(2-hydroksyetylo)-3,5-diamino-2,4,6-trijodobenzylowy
a. Octan N,N'-bis(2-acetoksypropionylo)-N.N,-bis(2-acetoksyetylo)-3,5-diamino-2.4.6-trijodobenzylu
Octan N,N'-bis(2-acetoksypropionylo)-3,5-diamino-2,4,6-trijodobenzylu (197 mg, 0,25 mmoli) rozpuszczono w mieszaninie dimetyloacetamidu (5 ml) i DMSO (1,5 ml), zawierającej octan 2-bromoetylu (0,11 g, 1,0 mmoli) i Cs2CO3 (162 mg, 0,50 mmoli). Mieszaninę mieszano przez 67 h, dodano wodę (20 ml) i ekstrahowano mieszaninę eterem (2x75 ml). Połączone fazy organiczne przemyto wodą (5x75 ml), wysuszono (Na2SO4) i odparowano. Pozostałość oczyszczono za pomocą preparatywnej HPLC, otrzymując 35 mg (15%) czystego produktu.
*HNMR(DMSO-d6): 5,49-5,73 (m, 2H), 4,97-5,22 (m, 2H), 3,49-4,00 (m, 6H), 1,86-2,08 (m, 15H), 1,09-1,58 (m, 6H).
b. Alkohol N.N'-bis(2-hydroksypropionylo)-N,N'-bis(2-hydroksyetylo)-3,5-diamino-2.4,6-triiodobenzylowv
OctanN,N'-bis(2-acetoksypropionylo)-N,N'-bis(2-acetoksyetylo)-3,5-diamino-2,4,6-trijodobenzylu (175 mg, 0,18 mmoli) rozpuszczono w mieszaninie wody (8 ml) i metanolu (8 ml) i ustawiono pH na 12, stosując IM wodny roztwór NaOH. Roztwór mieszano przez 3 h, zobojętniono wodnym roztworem HC1. Po oczyszczeniu za pomocą preparaty wnej HPLC otrzymano 50 mg (37%) czystego produktu.
*HNMR (CD3OD): 5,26-5,38 (m, 2H), 3,44-4,08 (m, 6H), 1,32-1,59 (m, 6H).
MS (ESP, m/e): 770 ([M+Na]+, 100%).
Przykład 11. Alkohol N,N'-bis(2-hydroksypropionylo)-N-(2,3-dihydroksypropylo)-3,5-diamino-2,4,6-trijodobenzylowy
a. Octan N,N'-bisi2-acetoksypropionylo)-N-[(2.2-dimetylo-L3-dioksolan-4-ylo)metylo1-3,5-diamino-2.4.6-trijodobenzylu
Octan N,N'-bis(2-acetoksypropionylo)-3,5-diamino-2,4,6-trijodobenzylu (393 mg, 0,50 mmoli) rozpuszczono w mieszaninie DMSO (4 ml) i dimetyloacetamidu (4 ml), zawierającej Cs2ĆO3 (1,80 g, 5,52 mmoli) i 4-bromometylo-2,2-dimetylo-l,3-dioksolan (1,0 ml). Mieszaninę mieszano przez 7 dni, po czym poddano obróbce takiej jak w przykładzie 7a. Po oczyszczeniu za pomocąpreparatywnej HPLC otrzymano 115 mg (26%) czystego produktu.
Ή NMR (CD3OD): 5,61-5,75 (m, 2H), 5,03-5,44 (m, 2H), 3,47-4,55 (m, 6H), 1,98-2,23 (m, 9H), 1,30-1,71 (m, 12H).
MS (ESP, m/e): 922 ([M+Na]+, 100%).
b. Alkohol N.N'-bis(2-hydroksypropionylo)-N-(2,3-dihydroksypropylo)-3.5-diamino-2,4.6-triiodobenzylowy
Octan N,N'-bis(2-acetoksypropionylo)-N-[(2,2-dimetylo-l,3-dioksolan-4-ylo)metylo]-3,5-diamino-2,4,6-trijodobenzylu (115 mg, 0,13 mmoli) rozpuszczono w mieszaninie metanolu (8 ml) i wody (8 ml) i ustawiono pH na 12 za pomocą 1M wodnego roztworu NaOH. Po 2,5 hustawiono pH na 1 zapomocą2M wodnego HC1. Mieszano przez 17 h, roztwór zobojętniono wodnym buforem NaH2PO4 i usunięto rozpuszczalniki przez odparowanie. Po oczyszczeniu za pomocą preparatywnej HPLC otrzymano 65 mg (69%) czystego produktu.
MS (ESP, m/e): 756 ([M+Na]+, 100%).
180 863
Przykład 12. Alkohol N,N'-bis(2,3-dihydroksypropionylo)-3,5-diamino-2,4,6-trijodobenzylowy
a. Octan N,N'-bis(2,2-dimetylo-L3-dioksolan-4-karbonylo)-3.5-diamino-2,4,6-trijodobenzylu
Octan 3,5-diamino-2,4,6-trijodobenzylu (3,54 g, 6,3 mmoli) i chlorek kwasu 2,2-dimetylo-l,3-dioksolano-4-karboksylowego (3,13 g, 19 mmoli) rozpuszczono w dimetyloacetamidzie (40 ml) i mieszano roztwór przez 3,5 h. Usunięto rozpuszczalnik przez odparowanie i potraktowano pozostałość wodnym roztworem NaHCO3. Krystalicznąpozostałość odsączono, przemyto wodą i wysuszono. Po oczyszczeniu przez chromatografię flash przy użyciu mieszaniny CH2C12 i CH3CN (3:1) jako eluenta otrzymano 1,90 g (37%) czystego produktu.
ΉNMR (DMSO-d6): 9,93-10,02 (m, 2H), 5,30 (s, 2H), 4,58 (t, J=6,2Hz, 1H), 4,29 (t, J=7,3Hz, 1H), 4,10 (t, J=6,lHz, 1H), 2,06 (s, 3H), 1,54 (s, 3H), 1,38 (s, 3H).
MS (ESP, m/e): 902 ([M+dimetyloacetamid]+, 100%).
b. Alkohol N,N'-bis(2,3-dihydroksypropionylo)-3,5-diamino-2,4.6-trijodobenzylowy
Octan N,N'-bis(2,2-dimetylo-l,3-dioksolan-4-karbonylo)-3,5-diamino-2,4,6-trijodobenzylu (1,25 g, 1,55 mmoli) rozpuszczono w mieszaninie wody (50 ml), metanolu (25 ml) i stężonego HC1 (0,5 ml). Mieszano przez 4h, zobojętniono roztwór wodnym NaH2PO4 i usunięto rozpuszczalniki przez odparowanie. Pozostałość rozpuszczono w wodzie (10 ml) i ustawiono pH na 12 za pomocą wodnego roztworu NaOH. Po 30 min. roztwór zobojętniono ponownie i odparowano rozpuszczalnik. Produkt oczyszczono za pomocąpreparatywnej HPLC. Wydajność: 483 mg (45%).
’H NMR 9,65-9,83 (m, 2H), 5,77 (s, 2H), 5,20 (s, 1H), 4,95-5,03 (m, 2H), 4,81 (s, 2H), 4,00-4,08 (m, 2H), 3,72-3,82 (m, 2H), 3,50-3,63 (m, 2H).
MS (ESP, m/e) : 692 (M+, 62%), 714 ([M+Na]+, 100%).
Przykład 13. Alkohol N,N'-bis(2,3-dihydroksypropionylo)-N-(2-hydroksyetylo)-3,5-diamino-2,4,6-trijodobenzylowy
Octan N,N'-bis(2,2-dimetylo-l,3-dioksolano-4-karbonyło)-3,5-diamino-2,4,6-trijodobenzylu (204 mg, 0,25 mmoli) rozpuszczono w mieszaninie DMSO (2,5 ml) i dimetyloacetamidu (4 ml), zawierającej Cs2CO3 (650 mg, 2,0 mmoli) i octan 2-bromoetylu (0,035 ml, 0,31 mmoli). Mieszano przez 1 tydzień, dodano eter (150 ml) i bufor NaH2PO4 (100 ml), oddzielono fazę organicznąi ekstrahowano fazę wodną eterem (150 ml). Następnie połączone fazy organiczne przemyto wodą (6x100 ml), wysuszono (Na2SO4) i odparowano. Pozostałość rozpuszczono w mieszaninie metanolu (20 ml) i wody (20 ml) i ustawiono pH na 12 za pomocą wodnego roztworu NaOH. Mieszano przez 1 h, ustawiono pH na 1,5 za pomocą stężonego HC1 i mieszano przez następne 16 h. Roztwór zobojętniono wodnym roztworem NaH2PO4 i odparowano rozpuszczalniki. Po preparatywnej HPLC otrzymano 55 mg (30%) czystego produktu.
MS (ESP, m/e): 736 (M+, 28%), 758 ([M+Na]+, 100%).
Przykład 14. Alkohol N,N'-bis(2,3-dihydroksypropionylo)-N,N'-bis(2-hydroksyetylo)-3,5-diamino-2,4,6-trijodobenzylowy
Octan N,N'-bis(2,2-dimetylo-l,3-dioksolano-4-karbonylo)-3,5-diamino-2,4,6-trijodobenzylu (204 mg, 0,25 mmoli) rozpuszczono w mieszaninie DMSO (1,5 ml) i dimetyloacetamidu (5 ml), zawierającej K2CO3 (276 mg, 2,0 mmoli) i octan 2-bromoetylu (0,44 ml, 4,0 mmoli). Mieszano przez 48 h, dodano wodny roztwór NaH2PO4 i ekstrahowano mieszaninę eterem (2x150 ml). Następnie połączone fazy organiczne przemyto wodą (6x100 ml), wysuszono (Na2SO4) i odparowano. Stałąpozostałość rozpuszczono w mieszaninie metanolu (12 ml) i wody (12 ml) i ustawiono pH na 12 za pomocą wodnego roztworu NaOH. Mieszano przez 18 h, zakwaszono roztwór stężonym HC1 (0,70 ml) i kontynuowano mieszanie przez 3 h. Roztwór zobojętniono i odparowano rozpuszczalniki. Produkt oczyszczono za pomocą preparatywnej HPLC. Wydajność: 98 mg (50%).
MS (ESP, m/e): 802 ([M+Na]+n, 100%).
180 863
Przykład 15. Alkohol N,N'-bis(2,3-dihydroksypropionylo)-N-(2,3-dihydroksypropylo)-3,5-diamino-2,4,6-trijodobenzylowy
Octan N,N'-bis(2,2-dimetylo-l,3-dioksolano-4-karbonylo)-3,5-diamino-2,4,6-trijodobenzylu (408 mg, 0,50 mmoli) rozpuszczono w mieszaninie DMSO (4 ml) i dimetyloacetamidu (4 ml), zawierającej Cs2CO3 (1,80 g, 5,52 mmoli) i chlorek kwasu 2,2-dimetylo-l,3-dioksolano-4-karboksylowego (2,0 ml). Mieszano przez 8 dni, dodano wodny roztwór NaH2PO4 (100 ml) i ekstrahowano mieszaninę eterem dietylowym (2x150 ml). Następnie połączone fazy organiczne przemyto wodą (6x100 ml), wysuszono (Na2SO4) i odparowano. Pozostałość rozpuszczono w mieszaninie metanolu (10 ml) i wody (10 ml) i ustawiono pH na 12 za pomocą wodnego roztworu NaOH. Mieszano przez 2 h, dodano stężony HC1 (1,0 ml) i mieszano przez następne 16 h. Po zobojętnieniu odparowano rozpuszczalniki, apozostałość oczyszczono za pomocąpreparatywnej HPLC. Wydajność: 149 mg (39%).
MS (ESP, m/e) : 766 (M+, 60%), 788 ([M+Na]+, 100%).
Przykład 16. Bis[3-hydroksymetylo-5-(2,3-dihydroksypropyloaminokarbonylo)-2;4,6-trijodobenzenoamid kwasu szczawiowego
a. 3-Acetoksymetylo-5-(2.3-diacetoksypropyloaminokarbonylo)-2,4,6-trijodoanilina
3-Hydroksymetylo-5-(2,3-dihydroksypropyloaminokarbonylo)-2,4,6-trijodoanilinę (1,89 g, 3,06 mmoli), otrzymaną według przykładu 3d, rozpuszczono w mieszaninie bezwodnika octowego (5 ml) i pirydyny (5 ml). Mieszaninę mieszano w temperaturze pokojowej przez 24 h, dodano CH2C12 (100 ml) i przemyto roztwór wodą (3x25 ml), nasyconym roztworem NaHCO3, wysuszono (Na2SO4) i odparowano. Produkt oczyszczono za pomocą chromatografii flash na żelu krzemionkowym, stosując mieszaninę CH2C12 i metanolu (98:2) jako eluent. Wydajność: 1,30 g (57%).
ΉΝΜΚ (CDCL3): 6,10-6,25 (m, 1H), 5,48 (s, 2H), 5,20-5,28 (m, 1H),4,22-4,43 (m, 2H), 3,53-3,89 (m, 2H), 2,06-2,13 (m, 9H).
MS (ESP, m/e) : 744 (M+, 100%).
b. Bis[3-hydroksymetylo-5-(2,3-dihydroksypropyloaminokarbonylo)-2,4,6-trijodobenzenoamid] kwasu szczawiowego
3-Acetoksymetylo-5-(2,3-diacetoksypropyloaminokarbonylo)-2,4,6-trijodoanilinę (100 mg, 0,134 mmoli) rozpuszczono w dioksanie (1,0 ml) i ogrzano roztwór do 90°C. Dodano chlorek kwasu szczawiowego (0,096 mmoli) i mieszano mieszaninę w 78°C przez 17 h. Po ochłodzeniu do temperatury pokojowej dodano wodę (1,0 ml) i ustawiono pH na 12 za pomocą wodnego roztworu NaOH. Mieszano przez 4 h, po czym roztwór zobojętniono, rozpuszczalniki odparowano, a pozostałość oczyszczono za pomocą preparatywnej HPLC. Wydajność: 14 mg (16%).
lHNMR (CD3OD) : 5,24 (s, 2H), 3,38-4,03 (m, 10H).
MS (ESP, m/e): 1290 (M+, 33%), 1312 ([M+Na]+, 100%).
Przykład 17. Bis[3-hydroksymetylo-5-(2,3-dihydroksypropyloaminokarbonylo)-2,4,6-trijodobenzenoamid] kwasu malonowego
3-Acetoksymetylo-5-(2,3-diacetoksypropyloaminokarbonylo)-2,4,6-trijodoanilinę (100 mg, 0,134 mmoli), otrzymaną według przykładu 16a, rozpuszczono w dioksanie (1,0 ml) i dodano chlorek kwasu malonowego (0,097 mmoli). Mieszano mieszaninę w 90°C przez 2 h i pozostawiono roztwór do ostygnięcia do temperatury pokojowej. Dodano wodę (1,0 ml) i ustawiono pH na 12 za pomocą wodnego roztworu NaOH. Mieszano przez 18 h w 60°Ć, po czym roztwór zobojętniono a rozpuszczalniki odparowano. Pozostałość oczyszczono za pomocą preparatywnej HPLC. Wydajność: 34 mg (39%).
MS (ESP, m/e): 1304 (M+, 68%), 1326 ([M+Na]+, 100%).
Przykład 18. N,N'-diacetylo-N,N'-bis[3-hydroksymetylo-5-(2,3-dihydroksypropyloaminokarbonylo)-2,4,6-trijodofenylo]-l,3-diamino-2-hydroksypropan
N-acetylo-3-acetoksymetylo-5-(2,3-acetoksypropyloaminokarbonylo)-2,4,6-trijodoanilinę (300 mg, 0,38 mmoli), otrzymaną według przykładu 3e, rozpuszczono w mieszaninie wody (1,2 ml) i metanolu (0,2 ml) i ustawiono pH na 12 za pomocą wodnego roztworu NaOH. Dodano epichlorohydrynę (0,28 mmoli) i mieszano mieszaninę w temperaturze pokojowej przez 65 h.
180 863
Roztwór zobojętniono, a produkt oddzielono za pomocąpreparatywnej HPLC. Wydajność: 60 mg (20%).
MS (ESP, m/e): 1398 ([M+Na]+, 100%).
Przykład 19. N-[3-Hydroksymetylo-5-(2,3-dihydroksypropyloaminokarbonylo)-2,4,6-trijodofenylo]-N'[3,5-bis(2,3-dihydroksypropyloaminokarbonylo)-2,4,6-trijodofenylo] mocznik
a. N-[3-Acetoksymetylo-5-i2.3-diacetoksypropyloaminokarbonylo)-2.4,6-trijodofenylo]-N'[3,5-bis(2.3-diacetoksypropyloaminokarbonylo)-2.4.6-trijodofenylo]mocznik
3,5-Bis(2,3-diacetoksypropyłoaminokarbonylo)-2,4,6-trijodoanilinę (260 mg, 0,30 mmoli) rozpuszczono w dioksanie (1,0 ml) i dodano roztwór fosgenu w toluenie (1,93M, 1,8 ml).Kolbę szczelnie zatopiono, po czym ogrzewano do 60 °C przez 17 h. Ochłodzono do temperatury pokojowej i oddestylowano rozpuszczalnik pod zmniejszonym ciśnieniem. Dodano dioksan (3 ml) i ponownie oddestylowano. Procedurę tę powtórzono dwukrotnie. Dodano dioksan (1 ml), następnie 3-acetoksymetylo-5-(2,3-diacetoksypropyloaminokarbonylo)-2,4,6-trijodoanilinę (0,245 g, 0,31 mmoli), otrzymaną według przykładu 16a, i Hg(OCOCF3)2 (20 mg). Mieszaninę mieszano przez 16 h w temperaturze pokojowej, odparowano rozpuszczalnik i oczyszczono pozostałość za pomocą preparatywnej HPLC. Wydajność: 0,192 g (39%).
MS (ESP, m/e): 1643 (M+, 100%), 1655 ([M+Na]+, 34%).
b. N-[3-Hydroksymetylo-5-(2.3-dihydroksypropyloaminokarbonylo)-2.4,6-trijodofenylo1-NT3,5-bis(2.3-dihydroksypropyloaminokarbonylo)-2.4,6-trijodofenylo]mocznik
Produkt z przykładu 19a rozpuszczono w mieszaninie metanolu (5 ml) i wody (5 ml) i ustawiono pH na 12, stosując 2M wodny roztwór NaOH. Mieszano przez 2 h, ustawiono pH na 6,5, stosując wodny roztwór HC1 i odparowano rozpuszczalniki. Produkt oczyszczono stosując preparatywnąHPLC. Wydajność: 68 g (44%).
MS (ESP, m/e) : 1349 (M+, 15%), 1372 ([M+Na]+, 100%).
Przykład 20. N-Hydroksyacetylo-3-(l,2-dihydroksyetylo)-5-(2,3-dihydroksypropyloaminokarbonylo)-2,4,6-trijodoanilina
a. Ester metylowy kwasu 3-nitro-5-(2-trimetylosililowinylo)benzoesowego
Mieszaninę estru metylowego kwasu 3-jodo-5-nitrobenzoesowego (307 mg, 1,0 mmoli), Pd(OAc)2 (67 mg, 0,30 mmoli), trifenylofosfiny (0,032 g, 0,60 mmoli), AgNO3 (170 mg, 1,0 mmoli), trietyloaminy (0,167 ml, 1,2 mmoli) i winylotrimetylosilanu (0,309 ml, 2,0 mmoli) rozpuszczono w acetonitrylu (10 ml) i ogrzewano roztwór do 60°C w zamkniętym naczyniu przez 48 h. Wytrącone sole odsączono, a przesącz zatężono. Pozostałość chromatografowano na żelu krzemionkowym, stosując mieszaninę octanu etylu i heptanu (1:11) jako eluent. Wydajność: 210 mg (75%).
Ή NMR (CDC13): 8,70-8,73 (m, 1H), 8,36-8,47 (m, 2H), 6,93 (d, J=19,2Hz, 1H), 6,75 (d, J=19,2Hz, 1H), 3,99 (s, 3H), 0,20 (s, 9H).
MS (APci, m/e): 279 (M+, 100%).
b. Ester metylowy kwasu 3-nitro-5-winylobenzoesowego
Ester metylowy kwasu 3-nitro-5-(2-trimetylosililowinylo)benzoesowego (2,44 g, 8,71 mmoli) rozpuszczono w acetonitrylu (150 ml), roztwór ogrzewano do temperatury wrzenia, przepuszczając przez roztwór gazowy HC1 aż do zaniku materiału wyjściowego, zgodnie z analiząHPLC. Roztwór pozostawiono do ochłodzenia i usunięto rozpuszczalnik przez odparowanie. Według HPLC czystość pozostałości wynosiła>95% i stosowano ją bez dalszego oczyszczania. Wydajność: 2,02 g (89%).
^NMRiCDCy: 8,64 (s, 1H), 8,54 (s, 1H), 8,45 (s, 1H), 6,96 (dd, ^=10,8¾ J2= 17,4Hz, 1H), 6,11 (d, J=17,4Hz, 1H), 5,59 (d, J=10,8Hz, 1H), 4,40 (s, 3H).
c. Ester metylowy kwasu 3-nitro-5-(L2-dihydroksyetylo)-benzoesowego
Ester metylowy kwasu 3-nitro-5-winylobenzoesowego (2,02 g, 9,76 mmoli) rozpuszczono w mieszaninie acetonu i wody (200 ml, 9:1), ochłodzono do 0°C i dodano OsO4 (60 mg, 0,24 mmoli), a następnie N-tlenek N-metylomorfoliny (2,34 g, 20,0 mmoli). Mieszano przez 46 h w temperaturze pokojowej, dodano wodny roztwór Na2S2O5 (3,7 g) w wodzie (150 ml), po czym zakwaszo
180 863 no roztwór rozcieńczonym wodnym roztworem HC1. Zmniejszono objętość roztworu do 150 ml przez odparowanie i ekstrahowano pozostałość octanem etylu (3x100 ml). Połączone fazy organiczne odparowano i oczyszczono pozostałość przez chromatografię kolumnową na żelu krzemionkowym, stosując octan etylu jako eluent. Wydajność: 1,60 g (60%).
'HNMR (CD3CN): 8,62-8,66 (m, 1H), 8,44-8,48 (m, 1H), 8,36-8,40 (m, 1H), 4,88-4,94 (m, 1H), 3,98 (s, 3H), 3,60-3,79 (m, 4H).
d. 1 -(2,3-Dihydroksypropyloaminokarbonylo)-3-nitro-5-( 1,2-dihydroksyetylo)benzen
Ester metylowy kwasu 3-nitro-5-( 1,2-dihydroksyetylo)-benzoesowego (0,40 g, 1,69 mmoli) i 2,3-dihydroksypropyloaminę (0,17 g, 1,86 mmoli) rozpuszczono w metanolu (2 ml) i mieszano roztwór w 75°C przez 1 h. Następnie obniżono ciśnienie do 200 mm Hg i kontynuowano mieszanie w 95°C przez 2 ,h. Surową mieszaninę reakcyjną oczyszczono za pomocą preparatywnej HPLC. Wydajność: 0,40 g (78%).
MS (ESP, m/e) 299 ([M-l]+, 100%).
e. 3-(2,3-Dihydroksypropyloaminokarbonylo)-5-(l,2-dihydroksyetylo)anilina l-(2,3-Dihydroksyptopyloaminokarbonylo)-3-nitro-5-(l,2-dihydroksyetylo)benzen (0,40 g, 1,32 mmoli) rozpuszczono w mieszaninie metanolu (40 ml) i wody (20 ml). Roztwór uwodorniano przy 60 psi, stosując katalizator Pd/C (10%, 50 mg). Roztwór przesączono przez celit i usunięto rozpuszczalniki przez odparowanie. Analiza HPLC wykazała czystość produktu >95%. Stosowano go w dalszych-etapach bez oczyszczania.
MS (ESP, m/e): 271 ([M+l]+, 100%), 293 ([M+Na]+, 45%).
f. 3-(2.3-Dihydroksypropyloammokarbonylo)-5-(L2-dihydroksyetylo)-2,4.6-triiodoanilina 3-(2,3-Dihydroksypropyloaminokarbonylo)-5-(l,2-dihydroksyetylo)anilinę (0,37 g, 1,35 mmoli) rozpuszczono w mieszaninie metanolu (30 ml) i wody (90 ml). Dodano KIC12 (1,37 g, 4,05 mmoli) i mieszano roztwór w 35°C przez 24 h. Dodano dodatkową ilość KIC12(1,0 mmoli) i kontynuowano mieszanie w 60°C przez 72 h. Dodano wodny roztwór Na2S2O5 (1,0 g w 50 ml) i usunięto rozpuszczalniki przez odparowanie. Po oczyszczeniu za pomocą preparatywnej HPLC otrzymano 87 mg (10%) czystego produktu.
'HNMR (CD3OD): 8,60 (m, 1H), 5,38-5,47 (m, 1H), 3,96-4,26 (m,3H), 3,30-3,84 (m, 10H).
MS (ESP, m/e): 648 (M+, 15%), 670 ([M+Na]+, 100%).
g. N-Hydroksyacetylo-3-(2,3-dihydroksypropyloaminokarbonylo)-5-(L2-dihydroksyetyło)-2.4,6-trijodoanilina
3-(2,3-Dihydroksypropyloaminokarbonylo)-5-(l,2-dihydroksyetylo)-2,4,6-trijodoanilinę (0,059 g, 0,091 mmoli) zmieszano z chlorkiem acetoksyacetylu (1,0 ml) zawierającym N,N-dimetyloacetamid (0,4 ml) i mieszano mieszaninę w 60°C przez 48 h. Mieszaninę pozostawiono do ochłodzenia do temperatury pokojowej, dodano wodę i usunięto rozpuszczalniki przez odparowanie. Pozostałość rozpuszczono w mieszaninie metanolu (10 ml) i wody (5 ml) i dodano wodny roztwór NaOH(5M, 1 ml).Roztwór mieszano w temperaturze pokojowej przez 1 h, zobojętniono wodnym HC1 i odparowano rozpuszczalniki. Po oczyszczeniu przez HPLC otrzymano czysty produkt.
MS (ESP, m/e): 706 (M+, 100%).
Przykład 21. 3,5-Di(hydroksyacetyloamino)-2,4,6-trijodoacetofenon
a. l,3-Diamino-5-(l-hydroksyetylo)benzen
3,5- Dinitroacetofenon (2,02 g, 9,5 mmoli), otrzymany zgodnie z procedurą literaturową (Y. Nagase i współpr., Macromol. Chem. Rapid Comm. (1990) 11,185-191) rozpuszczono w metanolu (100 ml) i uwodorniano przy 60 psi, stosując katalizator Pd/C (5%, 100 mg). Katalizator odsączono i usunięto rozpuszczalnik przez odparowanie. Produkt stosowano bez oczyszczania w następnym etapie. Wydajność: 1,22 g (84%).
Ή NMR (CDC13): 6,20 (d, J=2,0Hz, 2H), 6,08 (t, J=2,0Hz, 1H), 4,90 (br s, 4H), 4,62 (q, J=7,0Hz, 1H), 3,37 (d, J=7,0Hz, 3H).
MS (ESP, m/e): 151 ([M-l]+, 100%).
180 863
b. l,3-Diamino-2.4,6-trijodoacetofenon l,3- Diamino-5-(l-hydroksyetylo)benzen (1,18 g, 7,72 mmoli) rozpuszczono w mieszaninie metanolu i wody (5:1,168 ml), zawierającej 1M wodny roztwór HC1 (16 ml). Dodano szybko wodny roztwór KIĆ12 (7,31 g, 30,9 mmoli), mieszano przez 50 minut, osad odsączono, przemyto wodąi wysuszono. Analiza TLC i *H NMR wykazała, że produkt jest czysty. Wydajność: 3,62 g (89%).
*H NMR (CDC13) : 4,86 (br s, 4H), 2,62 (s, 3H).
13C NMR(CDC13) : 204,7, 151,1, 146,8, 28,7.
MS (APci, m/e): 528 (M+, 100%).
c. l,3-Di(acetoksyacetyloamino)-2,4.6-trijodoacetofenon l,3- Diamino-2,4,6-trijodoacetofenon (1,8 g, 3,41 mmoli) rozpuszczono w dimetyloacetamidzie (15 ml) zawierającym chlorek acetoksyacetylu (1,1 ml, 10,2 mmoli) i mieszano roztwór przez 65 h w temperaturze pokoj owej. Rozpuszczalniki usunięto przez odparowanie i oczyszczono pozostałość za pomocą preparatywnej HPLC. Wydajność: 1,69 g (68%).
Ή NMR (DMSO-d6): 10,13-10,27 (m, 2H), 4,65 (s, 4H), 2,56 (s, 3H), 2,12 (s, 6H).
MS (ESP, m/e): 750 ([M+Na]+, 100%). 766 ([M+K]+, 26%).
d. l,3-Di(hydroksyacetyloamino)-2,4,6-trijodoacetofenon
1,3 -Di(acetoksy acety loamino)-2,4,6-trijodoacetofenon (0,171 g, 0,23 mmoli) rozpuszczono w mieszaninie metanolu (30 ml) i wody (5 ml), zawierającej 2M wodny roztwór NaOH (3 ml). Roztwór mieszano przez 90 min., po czym zobojętniono stosując silnie kwasową żywicę kationowymienną. Rozpuszczalniki usunięto przez odparowanie i oczyszczono pozostałość za pomocą preparatywnej HPLC. Wydajność: 98 mg (54%).
MS (ESP, m/e) : 644 (M+, 100%), 666 ([M+Na]+, 95%).
Przykład 22.3,5-Di(hydroksyacetyloamino)-1 -hydroksyacetylo-2,4,6-trijodobenzen
a. 3,5-Di(acetoksyacetyloamino)-l-bromoacetylo-2,4,6-trijodobenzen l,3-Di(acetoksyacetyloamino)-2,4,6-trijodoacetofenon (0,20 g, 0,279 mmoli) rozpuszczono w lodowatym kwasie octowym i dodano brom (0,0444 g, 0,28 mmoli). Mieszano mieszaninę reakcyjnąprzez 2,5 h w 75°C, po czym pozostawiono do ochłodzenia. Usunięto rozpuszczalniki przez odparowanie, a pozostałość stosowano bezpośrednio w następnym etapie.
MS (ESP, m/e): 806 (M+, 100%), 808 (M+, 98%).
b. 3.5-Di(acetoksyacetyloamino)-l-acetoksyacetylo-2,4,6-trijodobenzen
3,5-Di(acetoksyacetyloamino)-l-bromoacetylo-2,4,6-trijodobenzen (10 mg, 1,2 mmoli) przekształcono w odpowiadający octan przez ogrzewanie do 110°C w lodowatym kwasie octowym (5 ml), zawierającym octan sodu (1 ml) i AgOCOCF3 (0,11 g, 0,5 mmoli) przez 16 h. Produkt oczyszczono za pomocą preparatywnej HPLC. Wydajności nie oznaczono.
MS (ESP, m/e) : 786 (M+, 100+).
c. 3,5-Di(hydroksyacetyloamino)-l-acetoksyacetylo-2.4.6-trijodobenzen
3,5-Di(acetoksyacetyloamino)-l-acetoksyacetylo-2,4,6-trijodobenzen hydrolizowano w sposób analogiczny jak w przykładzie 4e. Surowy produkt oczyszczono za pomocąpreparatywnej HPLC. Wydajności nie oznaczono.
MS (ESP, m/e) : 687 ([M+HCOOH]+, 100%).
Przykład 23. 3,5-Di(hydroksyacetyloamino)-l-(l,2-dihydroksyetylo)-2,4,6-trijodobenzen
a. 3,5-Dinitrofenyloetanol)
3,5- Dinitroacetofenon (3,27 g, 0,0156 moli) rozpuszczono w mieszaninie absolutnego etanolu (75 ml) i THF (37,5 ml) i ochłodzono mieszaninę do -10°C. Dodano NaBH4 (0,30 g, 7,9 mmoli) i mieszano mieszaninę przez 1 h w -10°C. Dodano wodę (80 ml) i octan etylu, fazy rozdzielono i przemyto fazę organiczną wodą (80 ml) i wysuszono (Na2SO4). Rozpuszczalniki usunięto przez odparowanie, a pozostałość oczyszczono przez chromatografię na obojętnym tlenku glinku, stosując mieszaninę pentanu i octanu etylu (1:1) jako eluent. Wydajność: 2,52 g (76%).
Ή NMR (CDC13) : 8,95 (t, J=2,0Hz, 1H), 8,60 (d, J=2,0Hz, 1H), 8,59 (d, J=2,0Hz, 1H), 5,15 (q, J=7,5Hz, 1H), 1,61 (d, J=7,5Hz, 3H).
180 863
b. 3.5-Dinitrostyren
3,5-Dinitrofenyloetanol (1,0 g, 4,7 mmoli) zmieszano z P2O5(l,0 g, 0,71 mmoli) i mieszaną mieszaninę ogrzewano do 100°C. Po 3 h mieszaninę pozostawiono do ostygnięcia do temperatury pokojowej i dodano wodę (0,4 ml). Ustawiono pH na 9, stosując IM wodny roztwór NaOH i ekstrahowano eterem dietylowym (2x25 ml). Połączone fazy organiczne wysuszono (Na2SO4) i odparowano. Surowy produkt stosowano dalej w następnym etapie bez dodatkowego oczyszczania.
Ή NMR (CDC13) : 8,92 (t, J=2,0Hz, 1H), 8,56 (d, J=2,0Hz, 2H), 6,86 (dd, ^=18,4¾ J2=10,9Hz, 1H), 6,08 (d, J=18,0Hz, 1H), 5,67 (d, J=10,9Hz, 1H).
c. 1 -(L2-Dihydroksyetylo)-3,5-dinitrobenzen
3,5-Dinitrostyren (0,50 g, 2,58 mmoli) rozpuszczono w mieszaninie acetonu i wody (8:1,70 ml) i ochłodzono roztwór do 0°C. Dodano OsO4 (0,046 g, 0,18 mmoli) i NMO (0,60 g, 5,15 mmoli) i mieszano roztwór w temperaturze pokojowej przez 16h. Dodano roztwór Na2S2O5 (1,5 g) w wodzie (120 ml) i usunięto rozpuszczalnik organiczny przez odparowanie. Fazę wodną ekstrahowano octanem etylu (2x70 ml), a połączone fazy organiczne wysuszono (Na2SO4) i odparowano. Produkt oczyszczono przez preparatywnąHPLC. Wydajność: 0,44 g (75%).
*H NMR (CD3CN): 8,87 (t, J=2,0Hz, 1H), 8,63 (t, J=2,0Hz, 2H), 4,98 (t, J=6,0Hz, 1H), 3,64-3,79 (m, 2H), 2,34 (s, 2H).
MS (ESP, m/e) : 227 (M', 50%), 197 ([M-CH2O]-, 100%).
d. l-(1.2-Dihydroksyetylo)-3,5-diaminobenzen
-(1,2-Dihydroksyetylo)-3,5-dinitrobenzen (0,10 g, 0,44 mmoli) rozpuszczono w metanolu (35 ml) i uwodorniano przy 60 psi na katalizatorze Pd/C (10%, 50 mg). Katalizator odsączono a roztwór odparowano. Wydajność: 0,074 g (100%).
1HNMR(CD3OD): 6,14 (d, J=2,0Hz, 2H), 6,06 (t, J=2,0Hz, 1H), 4,98 (br s, 6H), 4,43-4,50 (m, 1H), 3,52-3,57 (m, 2H).
MS (ESP, m/e) : 170 (M+, 100%), 210 ([M+K]+, 18%).
e. l-(1.2-Dihydroksyetylo)-3.5-diamino-2,4.6-trijodobenzen
-(1,2-Dihydroksyetylo)-3,5-diaminobenzen (0,0584 g, 0,242 mmoli) rozpuszczono w mieszaninie metanolu (5 ml) i wodnego 2M HC1 (1,2 ml) i dodano w jednej porcji roztwór KIC12 (70% w wodzie, 0,97 mmoli). Mieszano przez 20 min w temperaturze pokojowej, dodano 10% wodny roztwór NaHSO3 (0,2 ml), usunięto rozpuszczalniki przez odparowanie, a pozostałość oczyszczono przez preparatywnąHPLC. Wydajność: 31,4 g (24%).
^NMR^D^D): 5,56-5,63 (m, 1H), 4,03-4,12 (m, 1H), 3,79-3,87 (m, 1H),5,O6 (brs,4H).
f. l-(L2-Dihydroksyetylo)-3.5-di(hydroksyacetyloamino)-2.4.6-trijodobenzen l-(l,2-Dihydroksyetylo)-3,5-diamino-2,4,6-trijodobenzen acylowano chlorkiem acetoksyacetylu, stosując na przykład procedurę takąjak opisano w przykładzie 4d. Następnie surowy produkt hydrolizowano analogicznie jak w przykładzie 4e, otrzymując produkt finalny. Oczyszczenie surowego produktu prowadzono, stosując preparatywnąHPLC.
180 863
Departament Wydawnictw UP RP. Nakład 70 egz. Cena 4,00 zł.

Claims (16)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Jodowane związki arylowe o wzorze I
    (w którym n jest równe 0 lub 1, i w którym gdy n jest równe 1, to każde z ugrupowań C6H5 może być takie samo lub różne; każdy podstawnik R oznacza atom wodoru, atom jodu lub ugrupowanie hydrofitowe M lub Mb przy czym dwa lub trzy nie sąsiadujące ze sobąpodstawniki R w każdym ugrupowaniu C6H5 oznaczają atomy jodu i co najmniej jeden, a korzystnie dwa lub trzy podstawniki R w każdym z ugrupowań C6H5 oznaczają ugrupowania M lub X oznacza wiązanie lub grupę stanowiącą łańcuch łączący dwie grupy C6H5, mającą 1 do 7 atomów, albo, gdy n jest równe 0, X oznacza podstawnik R; każde M niezależnie oznacza niejonowe ugrupowanie hydrofilowe, a każde Mj niezależnie oznacza grupę CMalkilową, podstawioną co najmniej jedną grupą hydroksylową i ewentualnie połączoną z pierścieniem fenylowym poprzez grupę karbonylową, sulfonową lub sulfotlenkową, przy czym co najmniej jeden podstawnik R jest ugrupowaniem Mt; pod warunkiem, że gdy n jest równe zero, to albo jest obecna co najmniej jedna grupa M] inna niż hydroksymetyl lub 1,2-dihydroksyetyl, albo jeśli jest obecna jedna grupa Mj, hydroksymetylowa lub 1,2-dihydroksyetylowa, to obecna jest także co najmniej jedna grupa M zawierająca hydroksylowany alkil przyłączony do azotu), oraz ich izomery.
  2. 2. Związki według zastrz. 1, w których n jest równe 0, a pierścień fenylowy jest podstawiony asymetrycznie.
  3. 3. Związki według zastrz. 1, w których n jest równe 1.
  4. 4. Związki według zastrz. 3, w których co najmniej jeden z podstawników R w każdym ugrupowaniu C6H5 jest ugrupowaniem Mr
  5. 5. Związki według zastrz. 3, w których X jest grupą asymetryczną.
  6. 6. Związki według zastrz. 3, w których dwa ugrupowania C6H5 są różne.
  7. 7. Związki według zastrz. 3, w których jedno z ugrupowań C6H5 ma wzór:
    w którym każde M2 niezależnie jest grupą M lub M1.
    180 863
  8. 8. Związki według zastrz. 3, w których jedno z ugrupowań C6H5 ma wzór:
    w którym każde M2 niezależnie jest grupą M lub M1.
  9. 9. Związki według zastrz. 3, w których jedno z ugrupowań C6H5 ma wzór:
    w którym każde M2 niezależnie jest grupą M lub M1.
  10. 10. Związki według zastrz. 1, w których grupami M są grupy alkilowe Ci.lo o łańcuchu prostym lub rozgałęzionym, mające jedno lub więcej ugrupowań CH2 lub CH zastąpionych atomami tlenu lub azotu i ewentualnie podstawione jedną lub większąilościągrup wybranych z grup okso, hydroksylowych, aminowych, pochodnych karboksylowych oraz oksopodstawionych atomów siarki i fosforu.
  11. 11. Związki według zastrz. 1, w których grupy M są grupami wybranymi z grup:
    -CONH-CH2CH2OH
    -CONH-CH2CHOHCH2OH
    -CONH-CH(CH2OH)2
    -CON(CH2CH2OH)2
    -conh2
    -conhch3
    -ococh3
    -N(COCH3)H
    -N(COCH3)C1.3-alkil
    - N(COCH3)-mono-, bis lub tris-hydroksy-CM-alkil
    - N(COCH2OH)-mono-, bis lub tris-hydroksy-CM-alkil
    -N(COCH2OH)2
    - CON(CH2CHOHCH2OH) (CH2CH2OH)
    - CONH-C(CH2OH)3 i
    - CONH-CH(CH2OH) (CHOHCH2OH).
  12. 12. Związki według zastrz. 1, w których grupy M] sąwybranezgrup: C]_4 alkilowych, podstawionych 1,2,3 lub 4 grupami hydroksylowymi, i ewentualnie połączonych z pierścieniem fenylowym poprzez grupę CO, SO lub SO2.
  13. 13. Związki według zastrz. 1, w których grupy Mj są wybrane z grup hydroksymetylowej, 2-hydroksyetylowej, 2,3-bishydroksypropylowej, l,3-bishydroksyprop-2-ylowej, 2,3,4-trihydroksybutylowej, l,2,4-trihydroksybut-2-ylowej, COCH2OH i SO2CH2OH.
  14. 14. Związki według zastrz. 1, w których n jest równe 1, a X oznacza wiązanie, atom tlenu lub grupę NR1, CO, SO2, CR2’, COCO, CONR1, COCR2*,SOCR2 1, SO2NR’, CR2! CR2’, CR^NR1, CR2 lO, NR^ONR1, OCONR1, CONR‘CO, CONR^Rj1, OCOO, CR^OCRj1,
    180 863
    OCR2’CO, CR2 1CONR1, CR21CR21CR21, COCR‘RlCO, CR^NR^1 , CR21SO2NRI, CR21OCO lub NR1 SO2NR', gdzie R1 oznacza wodór lub grupę C ^-alkilową lub alkoksylową ewentualnie podstawioną grupą hydroksylową alkoksylową oksa lub okso i gdy jest przyłączona do atomu węgla, to R1 może także oznaczać grupę hydroksylową
  15. 15. Związki według zastrz. 1, w których n jest równe 1, a X oznacza -NR^OCONR1-, -NR1COCR2'CONR1-, -NR1CR21CR1OHCR21NR1-, -CONR1CR21CONR1-, lub -N(COR1)CR21CRlOHN(COR1)-, gdzie R1 oznacza wodór lub grupę Cj.6-alkilową lub alkoksylową ewentualnie podstawioną grupą hydroksylową alkoksylową oksa lub okso i gdy jest przyłączona do atomu węglą to R1 może także oznaczać grupę hydroksylową.
  16. 16. Diagnostyczny środek kontrastowy, znamienny tym, że zawiera jako substancję czynną związek o wzorze I,
    , (w którym n jest równe 0 lub 1, i w którym gdy n jest równe 1, to każde z ugrupowań C6H5 może być takie samo lub różne; każdy podstawnik R oznacza atom wodoru, atom jodu lub ugrupowanie hydrofitowe M lub Mb przy czym dwa lub trzy nie sąsiadujące ze sobą podstawniki R w każdym ugrupowaniu C6H5 oznaczają atomy jodu i co najmniej jeden, a korzystnie dwa lub trzy podstawniki R w każdym z ugrupowań C6H5 oznaczają ugrupowania M lub Μμ X oznacza wiązanie lub grupę stanowiącą łańcuch łączący dwie grupy C6H5, mającą 1 do 7 atomów, albo, gdy n jest równe 0, X oznacza podstawnik R; każde M niezależnie oznacza niejonowe ugrupowanie hydrofitowe, a każde Mj niezależnie oznacza grupę Cj^alkilową podstawioną co najmniej jedną grupą hydroksylową i ewentualnie połączoną z pierścieniem fenylowym poprzez grupę karbonylową sulfonową lub sulfotlenkową przy czym co najmniej jeden podstawnik R jest ugrupowaniem Mj; pod warunkiem, że gdy njest równe zero, to albo jest obecna co najmniej jedna grupa Mj inna niż hydroksymetyl lub 1,2-dihydroksyetyl, albo jeśli jest obecna jedna grupa Mj hydroksymetylowa lub 1,2-dihydroksy etylowa, to obecna jest także co najmniej jedna grupa M zawierająca hydroksylowany alkil przyłączony do azotu), łącznie z jego izomerami, oraz co najmniej jeden tolerowalny fizjologicznie nośnik lub środek pomocniczy.
    * * *
PL95319341A 1994-09-23 1995-09-22 Jodowane związki arylowe oraz zawierające je diagnostyczne środki kontrastowe PL180863B1 (pl)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GB9419203A GB9419203D0 (en) 1994-09-23 1994-09-23 Contrast media
PCT/GB1995/002265 WO1996009282A1 (en) 1994-09-23 1995-09-22 Iodinated x-ray contrast media

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL319341A1 PL319341A1 (en) 1997-08-04
PL180863B1 true PL180863B1 (pl) 2001-04-30

Family

ID=10761798

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL95319341A PL180863B1 (pl) 1994-09-23 1995-09-22 Jodowane związki arylowe oraz zawierające je diagnostyczne środki kontrastowe

Country Status (24)

Country Link
US (2) US5882628A (pl)
EP (1) EP0782564B1 (pl)
JP (1) JP3591840B2 (pl)
CN (1) CN1069633C (pl)
AT (1) ATE183998T1 (pl)
AU (1) AU710330B2 (pl)
CA (1) CA2200753A1 (pl)
CZ (1) CZ89597A3 (pl)
DE (1) DE69511883T2 (pl)
DK (1) DK0782564T3 (pl)
EE (1) EE03350B1 (pl)
ES (1) ES2137541T3 (pl)
FI (1) FI971201A (pl)
GB (1) GB9419203D0 (pl)
GR (1) GR3031712T3 (pl)
HK (1) HK1002359A1 (pl)
HU (1) HUT76894A (pl)
MX (1) MX9702082A (pl)
NO (1) NO971319L (pl)
NZ (1) NZ292975A (pl)
PL (1) PL180863B1 (pl)
RU (1) RU2145955C1 (pl)
SK (1) SK35697A3 (pl)
WO (1) WO1996009282A1 (pl)

Families Citing this family (25)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6310243B1 (en) * 1994-09-23 2001-10-30 Nycomed Imaging As Iodinated x-ray contrast media
US6278893B1 (en) 1998-01-05 2001-08-21 Nycomed Imaging As Method of magnetic resonance imaging of a sample with ex vivo polarization of an MR imaging agent
GB9828103D0 (en) * 1998-12-18 1999-02-17 Nycomed Imaging As Process
ATE298320T1 (de) * 1999-04-30 2005-07-15 Amersham Health As Kontrastmittel
US6685733B1 (en) * 2002-04-10 2004-02-03 Radiant Medical, Inc. Methods and systems for reducing substance-induced renal damage
US7083516B2 (en) 2003-07-14 2006-08-01 Schering Ag Process for the production of triiodotrimesic acid
US7166740B2 (en) * 2003-07-14 2007-01-23 Schering Ag Process for the production of triiodotrimesic acid
DE10332552B3 (de) * 2003-07-14 2005-03-24 Schering Ag Verfahren zur Herstellung von Triiodtrimesinsäure
DE10332574B3 (de) * 2003-07-14 2005-04-14 Schering Ag Verfahren zur Herstellung von Triiodtrimesinsäure
US20080050408A1 (en) * 2004-11-26 2008-02-28 Discus Dental, Llc Dental Whitening Compositions
US20060115437A1 (en) * 2004-11-26 2006-06-01 Robert Hayman Dental whitening compositions
US8066974B2 (en) * 2006-05-11 2011-11-29 Ge Healthcare As Contrast agents
AU2008273037B2 (en) * 2007-07-12 2012-11-15 Ge Healthcare As Contrast agents
WO2009106552A2 (en) * 2008-02-27 2009-09-03 Ge Healthcare As Contrast agents
EP2245004A2 (en) * 2008-02-27 2010-11-03 GE Healthcare AS Contrast agents
CN102067024B (zh) * 2008-06-17 2013-08-07 日产化学工业株式会社 液晶取向处理剂及使用了该处理剂的液晶显示元件、以及新的二胺
WO2010060941A2 (en) * 2008-11-27 2010-06-03 Ge Healthcare As Contrast agents
NZ598540A (en) * 2009-10-29 2014-03-28 Ge Healthcare As Diagnostic composition comprising plasma cations having superior safety profile
WO2012136813A2 (en) 2011-04-07 2012-10-11 Universitetet I Oslo Agents for medical radar diagnosis
BR112014017008A8 (pt) * 2012-01-11 2017-07-04 Ge Healthcare As composição de raio x, e, método de exame por raio x
CA2881707C (en) * 2012-11-12 2021-01-12 Ge Healthcare As Preparation of intermediates of x-ray contrast agents
CN103274910B (zh) * 2013-05-27 2015-03-18 陕西师范大学 一种合成均苯三甲醛类化合物的方法
CN106366015B (zh) * 2015-07-22 2019-01-25 正大天晴药业集团股份有限公司 一种碘普罗胺的制备方法及其中间体
CN106366016B (zh) * 2015-07-22 2019-03-05 连云港润众制药有限公司 一种碘普罗胺的制备方法及其中间体
CN108191695B (zh) * 2017-12-08 2019-03-08 牡丹江医学院 一种用于ct的新型造影剂

Family Cites Families (19)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4021481A (en) * 1969-06-27 1977-05-03 Nyegaard & Co. A/S Amido derivatives of 2,4,6-triiodobenzoic acids containing at least one N-hydroxyalkyl and at least two hydroxyl groups
CH576255A5 (pl) * 1972-11-17 1976-06-15 Bracco Ind Chimica Spa
US4314055A (en) * 1975-09-29 1982-02-02 Mallinckrodt, Inc. 3,5-Disubstituted-2,4,6-triiodoanilides of polyhydroxy-monobasic acids
DE2909439A1 (de) * 1979-03-08 1980-09-18 Schering Ag Neue nichtionische roentgenkontrastmittel
IT1207226B (it) * 1979-08-09 1989-05-17 Bracco Ind Chimica Spa Derivati dell'acido 2,4,6-triiodo-isoftalico, metodo per la loro preparazione e mezzi di contrasto che li contengono.
DE3001292A1 (de) * 1980-01-11 1981-07-16 Schering Ag Berlin Und Bergkamen, 1000 Berlin Nichtionische 5-c-substituierte 2,4,6-trijod-isophthalsaeure-derivate
NZ224743A (en) * 1987-05-22 1991-07-26 Bracco Ind Chimica Spa 5-acylamino-2,4,6-tribromo- or triiodo-benzoic acid derivatives and intermediate compounds used in their preparation
GB8906130D0 (en) * 1989-03-17 1989-05-04 Nycomed As Compositions
US5075502A (en) * 1989-12-13 1991-12-24 Mallinckrodt, Inc. Nonionic x-ray contrast agents, compositions and methods
GB9020091D0 (en) * 1990-09-14 1990-10-24 Nycomed As Contrast media
FR2673180B1 (fr) * 1991-02-25 1994-03-04 Guerbet Sa Nouveaux composes non ioniques poly-iodes, procede de preparation, produit de contraste les contenant.
WO1993010078A1 (es) * 1991-11-18 1993-05-27 Centro Investigacion Justesa Imagen S.A. Nuevos agentes yodados no ionicos de contraste a los rayos x, metodo para su preparacion y composiciones galenicas que los contienen
FR2695125B1 (fr) * 1992-08-25 1994-12-23 Guerbet Sa Nouveaux composés poly-iodés, procédé de préparation, produit de contraste les contenant.
NZ250063A (en) * 1992-12-14 1996-03-26 Eastman Kodak Co Iodinated aromatic acid ester derivatives; x-ray contrast compositions
IT1256248B (it) * 1992-12-24 1995-11-29 Bracco Spa Formulazioni iniettabili acquose per radiodiagnostica comprendenti miscele di composti aromatici iodurati utili come agenti opacizzanti ai raggi x
US5308607A (en) * 1993-02-04 1994-05-03 Sterling Winthrop Inc. Compositions of alkylbenzenes for visualization of the gastrointestinal tract using X-ray contrast
DE69414129T2 (de) * 1993-12-03 1999-04-08 Bracco Spa Biphenyl jodierte derivate und ihre verwendung als diagnostikum
GB9419206D0 (en) * 1994-09-23 1994-11-09 Nycomed Innovation Ab Contrast media
IT1271134B (it) * 1994-12-01 1997-05-26 Bracco Spa Derivati iodurati del bifenile e loro impiego diagnostico

Also Published As

Publication number Publication date
RU2145955C1 (ru) 2000-02-27
SK35697A3 (en) 1997-11-05
CZ89597A3 (en) 1997-10-15
FI971201A0 (fi) 1997-03-21
DE69511883T2 (de) 2000-02-24
EP0782564B1 (en) 1999-09-01
HUT76894A (en) 1997-12-29
EP0782564A1 (en) 1997-07-09
NO971319L (no) 1997-08-11
MX9702082A (es) 1997-06-28
NO971319D0 (no) 1997-03-20
AU710330B2 (en) 1999-09-16
JPH10505857A (ja) 1998-06-09
PL319341A1 (en) 1997-08-04
FI971201A (fi) 1997-03-21
JP3591840B2 (ja) 2004-11-24
CN1166826A (zh) 1997-12-03
US5993780A (en) 1999-11-30
DE69511883D1 (de) 1999-10-07
ES2137541T3 (es) 1999-12-16
ATE183998T1 (de) 1999-09-15
EE03350B1 (et) 2001-02-15
GR3031712T3 (en) 2000-02-29
CN1069633C (zh) 2001-08-15
US5882628A (en) 1999-03-16
GB9419203D0 (en) 1994-11-09
CA2200753A1 (en) 1996-03-28
HK1002359A1 (en) 1998-08-21
NZ292975A (en) 1999-02-25
WO1996009282A1 (en) 1996-03-28
DK0782564T3 (da) 1999-12-13
AU3529495A (en) 1996-04-09

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US5882628A (en) Contrast media
MXPA97002082A (es) Medios de contraste de rayos x yodados
EP1989179A1 (en) Contrast agents
US5958376A (en) Iodinated X-ray contrast media
US6310243B1 (en) Iodinated x-ray contrast media
EP1175392B1 (en) Contrast media
US8323619B2 (en) Contrast agents
MXPA97002088A (en) X-ray contrast media, yoda
JP2011506286A (ja) 造影剤
US8066970B2 (en) Contrast agents
EP2016046B1 (en) Contrast agents
EP2203189B1 (en) Contrast agents
US20080260651A1 (en) Contrast agents
US20100111875A1 (en) Trisubstituted triazamacrocyclic compounds and their use as contrast agents
US5356613A (en) X-ray contrast agents, compositions and methods
WO2007055580A1 (en) Contrast agents and diagnostic compositions based on iodine-containing cyanuric acid derivatives

Legal Events

Date Code Title Description
LAPS Decisions on the lapse of the protection rights

Effective date: 20050922