NO883935L - Fremgangsmaate for fremstilling av en mikroorganismecellemasse, samt maaleutstyr for anvendelse ved fremgangsmaaten. - Google Patents
Fremgangsmaate for fremstilling av en mikroorganismecellemasse, samt maaleutstyr for anvendelse ved fremgangsmaaten.Info
- Publication number
- NO883935L NO883935L NO88883935A NO883935A NO883935L NO 883935 L NO883935 L NO 883935L NO 88883935 A NO88883935 A NO 88883935A NO 883935 A NO883935 A NO 883935A NO 883935 L NO883935 L NO 883935L
- Authority
- NO
- Norway
- Prior art keywords
- fermenter
- methane
- concentration
- ejector
- measuring equipment
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 20
- VNWKTOKETHGBQD-UHFFFAOYSA-N methane Chemical group C VNWKTOKETHGBQD-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 70
- QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-O Ammonium Chemical compound [NH4+] QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-O 0.000 claims description 30
- QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N atomic oxygen Chemical compound [O] QVGXLLKOCUKJST-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 23
- 239000001301 oxygen Substances 0.000 claims description 22
- 229910052760 oxygen Inorganic materials 0.000 claims description 22
- 239000007788 liquid Substances 0.000 claims description 20
- QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-N Ammonia Chemical group N QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 19
- 238000000855 fermentation Methods 0.000 claims description 15
- 230000004151 fermentation Effects 0.000 claims description 15
- IOVCWXUNBOPUCH-UHFFFAOYSA-M Nitrite anion Chemical compound [O-]N=O IOVCWXUNBOPUCH-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 14
- IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N Atomic nitrogen Chemical compound N#N IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 12
- 229910021529 ammonia Inorganic materials 0.000 claims description 8
- 239000003345 natural gas Substances 0.000 claims description 8
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 claims description 7
- 239000012528 membrane Substances 0.000 claims description 7
- 230000001105 regulatory effect Effects 0.000 claims description 7
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 claims description 6
- 229910052757 nitrogen Inorganic materials 0.000 claims description 6
- 238000000502 dialysis Methods 0.000 claims description 4
- 150000002500 ions Chemical class 0.000 claims description 4
- 244000005700 microbiome Species 0.000 claims description 4
- 230000001450 methanotrophic effect Effects 0.000 claims description 3
- OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N Carbon Chemical compound [C] OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 2
- 229910052799 carbon Inorganic materials 0.000 claims description 2
- 238000004949 mass spectrometry Methods 0.000 claims description 2
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims 1
- 239000007789 gas Substances 0.000 description 30
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 21
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 19
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 9
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 9
- 239000002028 Biomass Substances 0.000 description 8
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 6
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 4
- 238000004401 flow injection analysis Methods 0.000 description 4
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 4
- 238000009826 distribution Methods 0.000 description 3
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 3
- 230000002503 metabolic effect Effects 0.000 description 3
- 238000010521 absorption reaction Methods 0.000 description 2
- 238000007664 blowing Methods 0.000 description 2
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 description 2
- 230000002401 inhibitory effect Effects 0.000 description 2
- 230000003647 oxidation Effects 0.000 description 2
- 238000007254 oxidation reaction Methods 0.000 description 2
- 238000005086 pumping Methods 0.000 description 2
- 230000002829 reductive effect Effects 0.000 description 2
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 2
- 239000002912 waste gas Substances 0.000 description 2
- -1 Ammonium ions Chemical class 0.000 description 1
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 1
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 1
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 1
- 238000013019 agitation Methods 0.000 description 1
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 1
- 239000012736 aqueous medium Substances 0.000 description 1
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 1
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 1
- 230000002860 competitive effect Effects 0.000 description 1
- 239000000498 cooling water Substances 0.000 description 1
- 238000010586 diagram Methods 0.000 description 1
- 239000006185 dispersion Substances 0.000 description 1
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 1
- 235000021321 essential mineral Nutrition 0.000 description 1
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 1
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 1
- 239000008240 homogeneous mixture Substances 0.000 description 1
- 239000003112 inhibitor Substances 0.000 description 1
- 238000010907 mechanical stirring Methods 0.000 description 1
- 230000017066 negative regulation of growth Effects 0.000 description 1
- 229910000069 nitrogen hydride Inorganic materials 0.000 description 1
- 238000005457 optimization Methods 0.000 description 1
- 230000036961 partial effect Effects 0.000 description 1
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 1
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 1
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 1
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 1
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 1
- 231100000331 toxic Toxicity 0.000 description 1
- 230000002588 toxic effect Effects 0.000 description 1
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M29/00—Means for introduction, extraction or recirculation of materials, e.g. pumps
- C12M29/06—Nozzles; Sprayers; Spargers; Diffusers
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M29/00—Means for introduction, extraction or recirculation of materials, e.g. pumps
- C12M29/14—Pressurized fluid
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
- C12N1/26—Processes using, or culture media containing, hydrocarbons
- C12N1/28—Processes using, or culture media containing, hydrocarbons aliphatic
- C12N1/30—Processes using, or culture media containing, hydrocarbons aliphatic having five or less carbon atoms
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02E—REDUCTION OF GREENHOUSE GAS [GHG] EMISSIONS, RELATED TO ENERGY GENERATION, TRANSMISSION OR DISTRIBUTION
- Y02E50/00—Technologies for the production of fuel of non-fossil origin
- Y02E50/30—Fuel from waste, e.g. synthetic alcohol or diesel
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Zoology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Sustainable Development (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
- Oil, Petroleum & Natural Gas (AREA)
- Virology (AREA)
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Treatment Of Sludge (AREA)
- Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
Description
Oppfinnelsen angår en fremgangsmåte for fremstilling av en mikroorganismecellemasse i en fermenteringstank, hvor de dyrkede bakterier er metanotrofe, hvor karbon- og energikilden er naturgass, hvor oksygenkilden er luft, hvor nitrogenkilden er ammoniakk og hvor dyrkningen kan foregå under septiske betingelser, hvilken fermenteringsprosess reguleres ved hjelp av en computer, samt midler for utøvelse av fremgangsmåten.
Fra beskrivelsen av blant andre engelsk patent nr.
1 270 006 er det kjent å fremstille biomasse i en fermenteringstank ved dyrkning av mikroorganismer i et flytende vekstmedium som inneholder assimilerbare nitrogenkilder og essensi-elle mineralsalter i nærvær av metangass, hvilke organismer utvinnes fra det flytende vekstmedium.
Disse hittil kjente fremgangsmåter har imidlertid ikke fungert tilfredsstillende, idet det er særdeles vanskelig under septiske betingelser å unngå vekst av uønskede giftige og/eller veksthemmende organismer, liksom det er vanskelig å oppnå en helt ren og ensartet biomasse.
Derfor har det hittil ikke lykkes å oppnå en lønnsom kon-tinuert biomasseproduksjon.
Det er oppfinnelsens formål å gjøre denne biomasseproduksjon lønnsom, og dette oppnås ved en fremgangsmåte hvor konsentrasjonen av oppløst metan og oksygen i fermentoren holdes konstant over hele fermentoren.
Herved oppnås en hittil ukjent grad av stabilitet og dermed ensartede optimale vekstbetingelser for bakteriekulturen. Denne optimering av prosessen gir mulighet for en stor celletetthet i væsken, nemlig helt opp til over 4,5%. Dette er en fordobling i forhold til det hittil kjente nivå, og betyr en besparelse i den etterfølgende tørkeprosess, hvor man derfor bare behøver fjerne halvdelen av vannet.
Dette muliggjør en ensartet høy produksjon, som i praksis har vist seg å være opp til ti ganger større enn det de hittil kjente fremgangsmåter har kunnet produsere.
Hertil kommer at det kun tilføres den mengde gass som er nødvendig for å opprettholde kulturens optimale aktivitet.
Dette medfører et betydelig lavere gassforbruk i forhold til de hittil kjente fremgangsmåter, som har et betydelig gasstap på grunn av den store mengde avgangsgass som ledes ut av fermentoren.
Dette er medvirkende til at prosessen blir lønnsom, idet gassprisen utgjør ca. 75% av produksjonsomkostningene.
Ved å anvende massespektrometri, som omtalt i krav 2, kan kontrollen skje i drift ("on-line").
Ved å anvende et massespektrometer med membran-inntak, som omtalt i krav 3, kan målingene utføres hurtig og pålitelig.
Ved å holde ammoniumkonsentrasjonen konstant over hele fermentoren, som omtalt i krav 4, sikres hurtig vekst av bakteriene.
Ved å anvende en ioneselektiv elektrode, som omtalt i krav 5, kan målingen skje kontinuerlig.
Ved ytterligere å anvende en nitritt-måler, som omtalt i krav 6, kan man kontrollere at nitrittdannelsen i fermentoren ikke blir for stor og veksten dermed hemmet.
Ved å blande metan og luft i ejektorer, som omtalt i krav 7, kan man oppnå særdeles høye gassoverføringskonstanter på grunn av den betydelige oksygenabsorpsjon som oppnås i ejektoren.
Ved å anvende væske under trykk som pumpemedium, som omtalt i krav 8, sikres det en høy dispergering uten bruk av mekaniske omrøringsinnretninger.
Ved å anvende innstillbare dyser, som omtalt i krav 9, kan disse gis en hver ønsket strømningsretning inne i fermentoren.
Endelig er det hensiktsmessig å innstille dysens retning ved å kunne dreie denne, som omtalt i krav 10.
Oppfinnelsen vil i det følgende bli nærmere beskrevet under henvisning til tegningen, hvor
Fig. 1 i skjematisk form viser et anlegg for utførelse av
fremgangsmåten,
Fig. 2 viser et utsnitt av fermentorens nedre del med
et rørsystem og en ejektor sett i retning II-II på fig. 4, Fig. 3 viser et snitt av fermentoren sett i retningen III-III på fig. 2 og 4 og Fig. 4 viser et snitt av fermentoren sett i retningen
IV-IV på fig. 2 og 3.
Fig. 5 viser i diagramform hvordan fortynningshastigheten
varierer med metankonsentrasjonen.
På fig. 1 er det vist en utførelsesform for et anlegg hvor fermentoren er en såkalt "air-lift"-fermentor, omfattende en fermenteringstank 1.
Fermentoren kan utføres med lukket topp som en trykkbehol-der, hvorved løseligheten av næringsgassene kan økes. Løselig-heten av gassene er proporsjonal med deres partialtrykk.
Tilføringen av naturgass 11 og oksygen 13 skjer via regu-lerbare ventiler henholdsvis 10 og 12 til tankens underside gjennom fordelerrørene 3 og 4, mens en næringsoppløsning 23 tilføres til tankens topp via reguleringsventiler 24 og 20.
Naturgass og oksygen innføres hver for seg via to forde-lerrør 3 og 4 i bunnen av fermentoren. Hvert fordelerrør består av et rørarrangement som er fordelt jevnt over bunnarea-let. I rørene er det øverst 0,5 - 1 mm huller, gjennom hvilke gassen strømmer ut.
Fordelersystemet frembringer gassbobler med en diameter på under 1 cm ved 0,5 mm hulldiameter jevnt fordelt over fermentorens tverrsnittsareal.
Overføringen av den tilførte naturgass og oksygen til fermenteringsmediet skjer i tanken, når gassene blåses inn fra tankens bunn. Tanken kan være oppdelt i en første seksjon, hvor væsken beveger seg oppover som følge av et stort luftinnhold, og en andre seksjon, hvor væsken beveger seg nedad som følge av et mindre luftinnhold. For å sikre en homogen blan-ding av kulturen og en optimal utnyttelse av de innblåste gasser, skal fermentoren ha en betydelig høyde, siden gassene skal passere opp til femti meter væske før de er helt utnyttet.
For å redusere denne lange væskepassasje og dermed bringe omkostningene ned, kan fermentoren som vist på tegningen, forsynes med et omløp, som forbinder tankens nedre rør 3a med dens topp via 2a ved hjelp av en ytre omløpskanal med en sirku- lasjonspumpe 14a. På denne måte kan man tvangssirkulere gassene gjennom mediet i tanken, inntil det ønskede opptak har funnet sted.
Antallet resirkulasjoner og innblåsing av nye gasser 11 og 13 reguleres avhengig av restinnholdet av gasser i den resirkulerte luft.
For bestemmelse av metan- og oksygeninnholdet i sirkulasjonen er det innskutt et massespektrometer 15a.
Gassenes oppholdstid i fermentoren økes ved å sirkulere væsken i motsatt retning av gasstrømmen. Fra tankens nedre ende uttas en væskestrøm via rør 4a, som ved hjelp av en sirku-lasjonspumpe 14 ledes til fermentorens topp, hvor den sammen med tilført næringsvæske innføres via rør 2. •Væskesirkulasjon er også med på å gi god oppblanding i fermentoren. Den sirkulerende væske kan sammen med de tilførte næringsvæsker innføres i fermentorens topp via en dusj eller en rist, hvorved det oppnås en skumdempende virkning.
Alternativt kan den sirkulerende væske innføres sammen med den resirkulerte gass under trykk via en nedadrettet dyse som er plassert i fermenteringsmediet. Det kan oppnås en særlig god overførsel av gassene til væsken.
Et massespektrometer 6 er forbundet med tanken 1 for bestemmelse av metan- og oksygeninnholdet i mediet inne i fermentoren l. Ved anvendelse av et massespektrometer 6 i fermentoren og et massespektrometer 15 for måling i den sirkulerte væske og med kjennskap til transporttiden i sirkulasjonen, kan den metabolske aktivitet beregnes ut fra forskjellen i de regist-rerte verdier i og utenfor fermentoren.
Det anvendes et massespektrometer med membran-inntak for kontinuerlig måling av oppløst metan og oksygen i fermentoren. Gasstilførselen reguleres ut fra de massespektrometriske målinger, slik at konsentrasjonen av oppløst metan og oksygen i mediet er konstant.
I sirkulasjonen er det dessuten innskutt et spektrofotometer 18 for bestemmelse av celletettheten i mediet. Dette skjer ved hjelp av en tilledet kjent lysmengde, som sendes inn gjennom mediet og spredes av bakteriene, hvoretter mengden av lys gjennom mediet bestemmes som et mål for celletettheten. Denne metode påvirkes av luftbobler, som virker lysspredende liksom bakterier. Problemet kan imidlertid løses ved at en del av fermenteringsmediet pumpes gjennom et spektrofotometer med et sylindrisk glassrør som sitter loddrett som kyvette. Pumpe-strømmen gjennom den loddrette sylinder stoppes ved passende tidsintervaller. Etter få sekunder vil luftboblene ha steget opp i den øvre ende av sylinderen, og en måling av de mikroorganismer som er tilstede, kan foregå i den nedre ende av sylinderen uten påvirkning av opprinnelig gassinnhold. Når målingen er foretatt, startes pumpestrømmen igjen, hvorved nytt fermenteringsmedium bringes til målecellen. Pumpen og regist-rering av måleresultatet styres av en computer 27 og er således automatisert.
Dersom fermenteringen ønskes utført ved konstant celletetthet, kan det pumpes nytt medium 17 inn i sirkulasjonen og i fermentoren i takt med at cellene vokser, hvorved celletettheten kan holdes konstant. Ved å registrere hastigheten ved hvilken nytt medium 17 tilsettes til fermenteringen, kan fermenterings-hastigheten og dermed den spesifikke veksthastighet fastslås.
Den metabolske aktivitet kan på tilsvarende måte som celletettheten styre fortynningshastigheten via ventilen 16, slik at kulturens aktivitet kan holdes helt konstant.
Nitrogenkilden i form av ammoniakk 25 tilføres via en ventil 2 6 til mediet. En styrt tilføring av ammoniakk er nødven-dig for oppnåelse av optimal vekst, siden ammoniakk virker hem-mende på metanoksydasjonen. Ammoniakk (NH3) vil i et vandig medium være i likevekt med ammoniumionet (NH4<+>). Ved pH 6,8, hvor metanotrofe bakterier trives godt, vil det meste av ammo-niakken være i ammoniumform. Ammonium-ioner kan måles med en ioneselektiv elektrode 19.
Elektroden kan plasseres i selve fermentoren 1 eller, som vist, eksternt i forbindelse med den sirkulerende strøm fra fermentoren. Ammonium-selektive elektroder kan ikke tåle auto-klavering, og kan derfor ikke umiddelbart anvendes i aseptiske fermenteringer. En computer 27 kan ut fra målingen av ammoniumkonsentrasjonen styre tilsetningen av ammoniakk 25. Denne tilsetning er et uttrykk for ammoniumforbruket og altså også et mål for kulturens metabolske aktivitet.
Det anvendes en ioneselektiv elektrode 19 for kontinuerlig måling av ammonium i fermentoren. Dessuten anvendes det en nitrittsensor 28 bygget etter det velkjente FIA-(Flow Injection Analysis)-prinsipp for måling av nitritt i fermentoren. Til-førselen av medium og ammonium reguleres ut fra ammonium-målinger, slik at konsentrasjonen av ammonium i fermentoren holdes konstant. Det er meget viktig at ammoniumkonsentrasjonen ikke varierer. Ammonium er en forutsetning for bakterienes hurtige vekst, men er samtidig en hemmer av veksten. Det siste skyldes at ammonium er et kompetitivt substrat for det metanoksyderende enzym, som kan oksydere ammonium til nitritt. Dannelse av nitritt avhenger av ammonium- og metankonsentrasjonen i mediet.
En prosess uten kontroll av ammoniumtilførselen viser ustabilitet. En ganske liten stigning i ammoniumkonsentrasjonen hemmer metanoksydasjonen og derved cellene. Det fører til et redusert ammoniumforbruk, og hvis tilførselen av ammonium ikke straks reduseres eller stoppes, blir resultatet en økning i ammoniumkonsentrasjon, dannelse av nitritt og ytterligere hemning av veksten o.s.v.
Ukontrollert fører den innbygde ustabilitet i en like-vektskultur til selvødeleggelse. Kun ved en kontinuerlig måling og kontroll av ammoniumkonsentrasjonen kan denne selv-ødeleggelse hindres.
Målingen av ammoniumkonsentrasjonen anvendes for å holde en konstant biomasse i fermentoren og for å regulere fortynningshastigheten, slik at produktiviteten blir optimal. Bio-massens innhold av nitrogen bundet i form av proteiner er ganske konstant omkring 11% eller mindre, og forholdet mellom tilførselsstrømmens nitrogeninnhold i form av ammonium og ammoniumkonsentrasjonen under likevekt i fermentoren, bestemmer biomassekonsentrasjonen i fermentoren.
Det anvendes et modifisert FIA-(Flow Injection Analysis)-system til nitrittmålinger. Prøven tas ut fra fermentoren over en dialysemembran som er selektiv overfor mindre molekyler og ikke tillater celler å passere. Membranen holdes ren på fer-mentorsiden ved en kraftig strømning. På analysesiden tas nitritten opp i en dialysestrøm som langsomt ledes over membranen. Strømmen blandes deretter med et fargereagens som reage- rer spesifikt med nitritt, og absorpsjon måles, som uttrykk for mengden av nitritt i mediet. For kalibrering av signalet, veksles det mellom måling av dialysestrøm og av en kjent standard.
Dannelsen av nitritt er et uttrykk for at prosessen ikke forløper optimalt. Det kan skyldes at ammoniumkonsentrasjonen er blitt for høy, at metankonsentrasjonen er for lav eller at det ikke er tilstrekkelig god omrøring i fermentoren.
Målingene kan kombineres med metan- og oksygenopptakshas-tighetsmålingene og cellemassemålingene til en integrert styring av, fermenteringsprosessen.
Kulturens pH kan kontrolleres ut fra en pH-elektrode 5 som er plassert i fermentoren 1 og tilførsel av syre eller base 21 via en ventil 22.
Temperaturen i fermentoren bestemmes med en temperatursensor 7 i fermentoren 1 og regulerer tilførselen av kjølevann 9 til fermentoren 1 via en ventil 8.
På fig. 2-4 er det vist en annen utførelsesform av midler for tilføring av metan og oksygen. Disse midler omfatter to rørsystemer, som går rundt fermentoren 1, og som omfatter rør 3, 4 og 29 for metan 11 og luft 13, og hermed forbundne forde-lerrør 37, som munner ut i hver sin ejektor 33.
Videre er det en væsketilførselsledning 2a og 30, som leder væske under trykk på omkring 4 atm. til fordelingsrør 31, som munner ut i ejektordysen 32. Gassene suges herved inn i mediet under stor turbulens.
Utmunning i fermentoren skjer via dysemunninger 36, som er dreibart koplet til hver sitt justerbare samleorgan 35, som er fast forbundet med forbindelsesrør 34. Herved kan hver enkelt dyse 36, som vist på fig. 4, innstilles i den retning som gir den beste oppblanding av gassen i tanken.
I det følgende skal det omtales tre eksempler på anvendelse av fremgangsmåten ifølge oppfinnelsen.
Eksempel 1
Den metan-oksyderende kultur dyrkes i en 2 liters fermentor under omrøring (1500 rpm). Tilførselen av naturgass og oksygen reguleres ut fra massespektrometriske målinger av oppløst metan og oksygen. Ammoniumkonsentrasjonen måles ved en ammoniumselektiv elektrode og holdes konstant på omkring 1 mM. Medium og ammonium tilføres hele tiden i samme forhold, slik at celletettheten holdes konstant. Ved at det brukes forskjellige likevektskonsentrasjoner av oppløst oksygen og metan, oppnås varierende veksthastighet og tap av metan/oksygen i avgangsgas-sen.
Fig. 5 viser hvordan fortynningshastigheten varierer mediets metankonsentrasjon i et forsøk hvor det er anvendt 1 g/l NH3NO3og en likevekst-celletetthet på ca. 3 g tørrstoff pr. liter. Den optimale fortynningshastighet på 0,37 pr. time oppnås ved metankonsentrasjoner på 60 jjM og over dette. Tilsvarende kreves det kun noen få jjM oksygen i mediet for å oppnå maksimal fortynningshastighet. Tabell 1 viser fortynningshastigheten og tapet til avgangsluften av metan og oksygen ved forskjellige fortynningshastigheter. Det vil sees at for å redusere tapet mest mulig, er det viktig å holde så lave kon-sentrasjoner som mulig av oppløst metan og oksygen.
Eksempel 2
Det anvendes en injektordyse for oppblanding av naturgass og luft i en 700 liters fermentor, massespektrometer til kontroll av gasstilførselen og ammoniumselektiv elektrode og nitrittsensor for kontroll av medietilførselen. Dette system har gitt en produktivitet som er 3-4 ganger høyere enn det som er oppnådd i en tilsvarende "air-lift"-fermentor. Med en celletetthet på 25 g tørrstoff pr. liter og en fortynningshastighet på 0,2 pr. time krever kulturen tilførsel av knapt 6 m<3>natur gass og42m<3>luft pr. time. På grunn av den dårlige løselighet av metan og oksygen, kan dette store gassbehov kun imøtekommes hvis det anvendes enten en spesiell injektordyse som beskrevet her, eller et stystem hvor fermentoren opererer under flere atmosfærers trykk. Det siste gir sikkerhetsmessige problemer.
Eksempel 3
Det anvendes 8 dyser plassert i en ytterring omkring en
50 000 liters fermentor for oppblanding av metangass og luft, kfr. fig. 2-4. Innblåsingen i fermentoren kan reguleres ved en munning av dysene som kan dreies utenfra. Derved kan dysene justeres til å gi den optimale gassoverføringskonstant og omrø-ring i den 50 000 liter store tank. På grunn av den effektive oppblanding av gasser i tanken og den anvendte styring av gass-og medietilførselen, kan det oppnås en høy produktivitet, omkring 6 g biomasse/l/time.
Claims (10)
1. Fremgangsmåte for fremstilling av en mikroorganismecellemasse i en fermenteringstank, hvor de dyrkede bakterier er metanotrofe, hvor karbon- og energikilden er naturgass, hvor oksygenkilden er luft, hvor nitrogenkilden er ammoniakk og hvor dyrkningen kan foregå under septiske betingelser, hvilken fermenteringsprosess reguleres ved hjelp av en computer, karakterisert ved at konsentrasjonen av opp-løst metan (11) og oksygen (13) overalt i fermentoren (1) holdes konstant.
2. Fremgangsmåte ifølge krav 1, karakterisert ved at konsentrasjonen måles ved massespektrometri.
3. Måleutstyr for utførelse av fremgangsmåten ifølge krav 2, karakterisert ved at det består av et massespektrometer (6, 15, 15a) med membran-inntak.
4. Fremgangsmåte ifølge krav 1 og 2, karakterisert ved at ammoniumkonsentrasjonen overalt i fermentoren (1) holdes konstant.
5. Måleutstyr for utførelse av fremgangsmåten ifølge krav 4, karakterisert ved at det omfatter en ioneselektiv måleelektrode (19).
6. Måleutstyr ifølge krav 5, karakterisert ved at det ytterligere omfatter en nitrittmåler (28) med dialysemembran.
7. Fremgangsmåte ifølge krav 1, 2 og 4, karakterisert ved at metan (11) og luft (13) blandes i én eller flere ejektorer (33) før blandingen tilføres til fermentoren (1) (fig. 2-4).
8. Ejektor for utførelse av fremgangsmåten ifølge krav 7, karakterisert ved at væske under trykk tilfø-res til ejektordysen (32) som drivmedium.
9. Ejektor iføolge krav 8, karakterisert ved at avgangen skjer gjennom en dyse (34, 35, 36), hvis utløpsret-ning i fermentoren (1) kan innstilles.
10. Ejektor ifølge krav 9, karakterisert ved at dysens munningsdel (36) er forskjøvet i forhold til tilgangs-røret (34) og dreibart montert (35) på dette.
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DK463587A DK157884C (da) | 1987-09-04 | 1987-09-04 | Fremgangsmaade til fremstilling af mikroorganismecellemasse |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
NO883935D0 NO883935D0 (no) | 1988-09-02 |
NO883935L true NO883935L (no) | 1989-03-06 |
Family
ID=8135328
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
NO88883935A NO883935L (no) | 1987-09-04 | 1988-09-02 | Fremgangsmaate for fremstilling av en mikroorganismecellemasse, samt maaleutstyr for anvendelse ved fremgangsmaaten. |
Country Status (7)
Country | Link |
---|---|
EP (1) | EP0306466A3 (no) |
JP (1) | JPH01139199A (no) |
CN (1) | CN1032190A (no) |
AU (1) | AU2179588A (no) |
BR (1) | BR8804505A (no) |
DK (1) | DK157884C (no) |
NO (1) | NO883935L (no) |
Families Citing this family (17)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5827701A (en) * | 1996-05-21 | 1998-10-27 | Lueking; Donald R. | Method for the generation and use of ferric ions |
US5798254A (en) * | 1996-09-13 | 1998-08-25 | Praxair Technology, Inc. | Gas driven fermentation method using two oxygen-containing gases |
US20050118702A1 (en) * | 2001-07-31 | 2005-06-02 | Ursula Erhardt | Bio-reactor |
ATE500315T1 (de) | 2001-08-16 | 2011-03-15 | Statoil Asa | Verfahren zum vergaren |
GB0226020D0 (en) | 2002-11-07 | 2002-12-18 | Glaxo Group Ltd | A holder |
GB0301366D0 (en) | 2003-01-21 | 2003-02-19 | Glaxo Group Ltd | A fixation device |
JP4835398B2 (ja) * | 2006-11-15 | 2011-12-14 | トヨタ自動車株式会社 | 混入推定装置及び方法、並びにエンジンオイル回復装置 |
JP5061329B2 (ja) * | 2008-05-09 | 2012-10-31 | トヨタ紡織株式会社 | 内燃機関の油中希釈燃料分離装置 |
US10184103B2 (en) | 2008-12-15 | 2019-01-22 | Unibo A/S | U-shape and/or nozzle U-loop fermentor and method of fermentation |
CN101538525B (zh) * | 2009-04-08 | 2013-04-17 | 日照金禾博源生化有限公司 | 一种采用物料外循环的发酵工艺及其设备 |
GB2507109A (en) * | 2012-10-19 | 2014-04-23 | Advanced Technology And Engineering Ltd Atel | Fermenter comprising gas and liquid re-circulation loops |
US9267158B2 (en) | 2013-03-14 | 2016-02-23 | Intrexon Corporation | Biological production of multi-carbon compounds from methane |
WO2017195103A1 (en) | 2015-05-09 | 2017-11-16 | String Bio Private Limited | Processes for fermentation and purification of value added products from gaseous substrates |
GB201712459D0 (en) | 2017-08-02 | 2017-09-13 | Norges Miljø-Og Biovitenskapelige Univ | Treatment or prevention of gastrointestinal dysbiosis |
CN108715810B (zh) * | 2018-06-19 | 2023-05-09 | 汇森生物设备镇江有限公司 | 一种高性能的植物细胞全自动发酵罐 |
RU2762273C2 (ru) * | 2019-04-15 | 2021-12-17 | Акционерное Общество "Вента" (Ао "Вента") | Установка для получения биомассы аэробных микроорганизмов |
KR102086617B1 (ko) * | 2019-08-16 | 2020-03-09 | 주식회사 바이오프린 | 호기성 미생물의 바이오매스 생산방법 |
Family Cites Families (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
FR1526746A (fr) * | 1967-06-13 | 1968-05-24 | Oxydation du méthane par voie microbiologique | |
DE2308087A1 (de) * | 1973-02-19 | 1974-08-22 | Kellner Maximilian Dipl Braur | Fermentationsverfahren |
-
1987
- 1987-09-04 DK DK463587A patent/DK157884C/da active
-
1988
- 1988-09-01 BR BR8804505A patent/BR8804505A/pt unknown
- 1988-09-01 AU AU21795/88A patent/AU2179588A/en not_active Abandoned
- 1988-09-01 EP EP88850289A patent/EP0306466A3/en not_active Withdrawn
- 1988-09-02 NO NO88883935A patent/NO883935L/no unknown
- 1988-09-03 JP JP63219652A patent/JPH01139199A/ja active Pending
- 1988-09-05 CN CN88107049A patent/CN1032190A/zh active Pending
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
EP0306466A2 (en) | 1989-03-08 |
DK463587A (da) | 1989-03-05 |
DK463587D0 (da) | 1987-09-04 |
DK157884C (da) | 1990-07-23 |
EP0306466A3 (en) | 1989-12-13 |
NO883935D0 (no) | 1988-09-02 |
CN1032190A (zh) | 1989-04-05 |
BR8804505A (pt) | 1989-04-04 |
AU2179588A (en) | 1989-03-09 |
DK157884B (da) | 1990-02-26 |
JPH01139199A (ja) | 1989-05-31 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
NO883935L (no) | Fremgangsmaate for fremstilling av en mikroorganismecellemasse, samt maaleutstyr for anvendelse ved fremgangsmaaten. | |
US4426450A (en) | Fermentation process and apparatus | |
CN204490886U (zh) | 一种生物纤维素发酵系统 | |
CN103698541B (zh) | 谷氨酸发酵在线检测系统及采用该系统在线检测的方法 | |
RU2771462C2 (ru) | Реактор для ферментации и процесс ферментации | |
JP2019141056A (ja) | 大規模混合栄養生産システム | |
CN106399113B (zh) | 一种膜光生物反应器中利用市政污水高密度培养微藻的方法 | |
DK156852B (da) | Fremgangsmaade og indretning til registrering af biologisk nedbrydelige og toxiske indholdsstoffer i vandige oploesninger, fx spildevand | |
CN108249574A (zh) | 一种利用微藻处理猪场养殖废水并生产藻粉的装置及其工艺 | |
EP0828157B1 (en) | Continuous quick measurement of biochemical oxygen demand and apparatus therefor | |
JP2022536668A (ja) | 発酵方法を制御するための方法 | |
Sikyta et al. | Growth of Streptomyces aureofaciens in continuous culture | |
Dworschack et al. | Fermentor for small-scale submerged fermentations | |
Strand et al. | Concurrent denitrification and oxygen uptake in microbial films | |
RU2596396C1 (ru) | Биореактор с мембранным устройством газового питания микроорганизмов | |
Mukherjee et al. | Fluorescence monitoring during cultivation of Enterobacter aerogenes at different oxygen levels | |
CN109943479A (zh) | 一种耐高盐菌的自动富集培养装置及方法 | |
CN109251847A (zh) | 利用阳光培养光合微生物的装置及方法 | |
CN207828309U (zh) | 一种耐高盐菌的自动富集培养装置 | |
CN210458198U (zh) | 一种实验室用微好氧微生物培养装置 | |
KR101181370B1 (ko) | 하천 정화용 미생물 배양기 | |
CN209702484U (zh) | 一种模拟ic塔的水处理试验装置 | |
Gebauer et al. | Growth of E. coli in a stirred tank and in an air lift tower reactor with an outer loop | |
RU2801249C2 (ru) | Реактор для ферментации и процесс ферментации | |
JPS61293380A (ja) | 微生物の培養方法及び培養装置 |