NO324980B1 - Mikrokapsler, fremgangsmate for fremstilling av slike samt produkt som innbefatter nevnte mikrokapsler. - Google Patents

Mikrokapsler, fremgangsmate for fremstilling av slike samt produkt som innbefatter nevnte mikrokapsler. Download PDF

Info

Publication number
NO324980B1
NO324980B1 NO20034547A NO20034547A NO324980B1 NO 324980 B1 NO324980 B1 NO 324980B1 NO 20034547 A NO20034547 A NO 20034547A NO 20034547 A NO20034547 A NO 20034547A NO 324980 B1 NO324980 B1 NO 324980B1
Authority
NO
Norway
Prior art keywords
pectin
matrix material
microcapsules
substance
treating
Prior art date
Application number
NO20034547A
Other languages
English (en)
Other versions
NO20034547L (no
NO20034547D0 (no
Inventor
Anders Vagno Pedersen
Morten Mohr Hansen
Susanne Lund Madsen
Nina Musaeus Jensen
Carsten Lynggaard Hansen
Annette Strarup Kristensen
Karin Meyer Hansen
Original Assignee
Basf Ag
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Basf Ag filed Critical Basf Ag
Publication of NO20034547D0 publication Critical patent/NO20034547D0/no
Publication of NO20034547L publication Critical patent/NO20034547L/no
Publication of NO324980B1 publication Critical patent/NO324980B1/no

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y301/00Hydrolases acting on ester bonds (3.1)
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23LFOODS, FOODSTUFFS, OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT COVERED BY SUBCLASSES A21D OR A23B-A23J; THEIR PREPARATION OR TREATMENT, e.g. COOKING, MODIFICATION OF NUTRITIVE QUALITIES, PHYSICAL TREATMENT; PRESERVATION OF FOODS OR FOODSTUFFS, IN GENERAL
    • A23L27/00Spices; Flavouring agents or condiments; Artificial sweetening agents; Table salts; Dietetic salt substitutes; Preparation or treatment thereof
    • A23L27/70Fixation, conservation, or encapsulation of flavouring agents
    • A23L27/72Encapsulation
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23LFOODS, FOODSTUFFS, OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT COVERED BY SUBCLASSES A21D OR A23B-A23J; THEIR PREPARATION OR TREATMENT, e.g. COOKING, MODIFICATION OF NUTRITIVE QUALITIES, PHYSICAL TREATMENT; PRESERVATION OF FOODS OR FOODSTUFFS, IN GENERAL
    • A23L29/00Foods or foodstuffs containing additives; Preparation or treatment thereof
    • A23L29/20Foods or foodstuffs containing additives; Preparation or treatment thereof containing gelling or thickening agents
    • A23L29/206Foods or foodstuffs containing additives; Preparation or treatment thereof containing gelling or thickening agents of vegetable origin
    • A23L29/231Pectin; Derivatives thereof
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23LFOODS, FOODSTUFFS, OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES, NOT COVERED BY SUBCLASSES A21D OR A23B-A23J; THEIR PREPARATION OR TREATMENT, e.g. COOKING, MODIFICATION OF NUTRITIVE QUALITIES, PHYSICAL TREATMENT; PRESERVATION OF FOODS OR FOODSTUFFS, IN GENERAL
    • A23L33/00Modifying nutritive qualities of foods; Dietetic products; Preparation or treatment thereof
    • A23L33/10Modifying nutritive qualities of foods; Dietetic products; Preparation or treatment thereof using additives
    • A23L33/15Vitamins
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23PSHAPING OR WORKING OF FOODSTUFFS, NOT FULLY COVERED BY A SINGLE OTHER SUBCLASS
    • A23P10/00Shaping or working of foodstuffs characterised by the products
    • A23P10/30Encapsulation of particles, e.g. foodstuff additives
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01JCHEMICAL OR PHYSICAL PROCESSES, e.g. CATALYSIS OR COLLOID CHEMISTRY; THEIR RELEVANT APPARATUS
    • B01J13/00Colloid chemistry, e.g. the production of colloidal materials or their solutions, not otherwise provided for; Making microcapsules or microballoons
    • B01J13/02Making microcapsules or microballoons
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/04Polysaccharides, i.e. compounds containing more than five saccharide radicals attached to each other by glycosidic bonds
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y302/00Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y304/00Hydrolases acting on peptide bonds, i.e. peptidases (3.4)
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A23FOODS OR FOODSTUFFS; TREATMENT THEREOF, NOT COVERED BY OTHER CLASSES
    • A23VINDEXING SCHEME RELATING TO FOODS, FOODSTUFFS OR NON-ALCOHOLIC BEVERAGES AND LACTIC OR PROPIONIC ACID BACTERIA USED IN FOODSTUFFS OR FOOD PREPARATION
    • A23V2002/00Food compositions, function of food ingredients or processes for food or foodstuffs

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Polymers & Plastics (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Nutrition Science (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Dispersion Chemistry (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Manufacturing Of Micro-Capsules (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)
  • General Preparation And Processing Of Foods (AREA)
  • Coloring Foods And Improving Nutritive Qualities (AREA)
  • Polysaccharides And Polysaccharide Derivatives (AREA)
  • Cosmetics (AREA)
  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
  • Fodder In General (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Jellies, Jams, And Syrups (AREA)

Description

Foreliggende oppfinnelse vedrører mikrokapsler innbefattende en aktiv substans innleiret i en ny matrisematerialtype, en fremgangsmåte for fremstilling av slike mikrokapsler og produkter innbefattende mikrokapslene.
Oppfinnelsens bakgrunn
Naturlig forekommende og modifiserte polysakkarider og naturlig forekommende hydrokolloider slik som alginat, karagenan, gelatin, pektiner, gummi arabicum og akasiegummi, har utbredt anvendelse som matrisematerialer for mikroinnkapslingen av følsomme aktive substanser slik som vitaminer og aroma- og smaksstoffer i matvarer, matvaretilsetninger, farmasøytika og landbruksprodukter for å beskytte dem mot innvirkninger av oksygen, fuktighet og stråling samt fysiske innvirkninger og således for å unngå kjemisk og/eller fysikalsk nedbrytning av nevnte aktive substanser og for å forbedre deres lagringsstabilitet.
De hydrokolloidene som for tiden anvendes som matrisematerialer er hovedsakelig av animalsk opprinnelse, f.eks gelatinøse materialer fra pattedyr og fisk.
Mikroinnkapslede produkter basert på anvendelsen av matrisematerialer av animalsk opprinnelse er imidlertid uakseptable for bruk i noen produkter slik som vegetarmat-varer, kosher-matvarer og hallal-matvarer. Videre er det sannsynlig at lovgivningen som bestemmer bruken av matvareprodukter av animalsk opprinnelse vil bli strengere i fremtiden.
Det har vært gjort forsøk på å anvende pektinstoffer som potensielle alternativer for matrisematerialer av animalsk opprinnelse, men det er funnet at pektinstoffer slik som sitrus eller sukkerroepektin kun gir en begrenset beskyttelse av mikroinnkapslede aktive substanser mot nedbrytning og således ikke gir mikrokapslede produkter en ønsket lagringsstabilitet.
EP patentsøknad 1 066 761 beskriver innkapslede preparater innbefattende en fettopp-løselig substans innkapslet i et karbohydratmatrise bestående av maltose eller maltose-sirup eller en blanding av karbohydrater av lav molekylvekt slik som maltodekstrin, eventuelt i kombinasjon med et karbohydrat av høy molekylvekt, et emuleringsmiddel og eventuelt et antioksydasjonsmiddel.
US patent 5.998.176 angir en fremgangsmåte for å bevirke geldannelse eller økning av viskositeten til et vandig medium inneholdende et pektinmateriale slik som sukkerroepektin ved behandling av det vandige mediet med en karboksylisk esterhydrolase og en oksydase og/eller en peroksydase i nærvær av et oksydasjonsmiddel for bruk med nevnte oksydase og/eller peroksydase. Det er nevnt at de resulterende geldannede eller viskøse produktene er egnet f.eks som fortykningsmidler og/eller stabiliseringsmidler i matvareanvendelser, som et materiale for legemiddelinnkapsling i medisinske anvendelser og som en vehikkel med langsom frigivningsvirkning i både medisinske og landbruks/hagebruksanvendelser.
DK patentsøknad 1991 01060 angir uforgrenede arabaner, f.eks fra sukkerroe, oppnådd ved behandling av sukkerroearaban med a-L-arabinofuranosidase, og deres anvendelse som geldannelsesmidler, som emulgeringsmidler og som innkapslingsmateriale. Sukkerroearabanene som benyttes som enzymsubstrat i denne prosessen oppnås ved en alkalisk behandling av sukkerroemasse, og de urene sukkerroearabanene innbefatter typisk ca 70 - 85 % arabinose, 5 - 10 % uronsyre, 8 - 15 % D-galaktose, og noen prosent rhamnose og andre monosakkarider.
WO 00/70967 Al angir et preparat innbefattende fargestofflegemer som er i det minste delvis belagt med umodifisert pektin valgt fra sukkerroepektin, og jordskokk, fortrinnsvis med en høy acetyleringsgrad.
WO 00/17368 beskriver en appelsinrfukt-pektinacetylesterase og en fremgangsmåte hvor esterasen bringes i kontakt med et substrat, slik som pektin fra en frukt eller en grønnsak. Forbedrede geldannelsesegenskaper oppnås ved deacetylering av sukkerroepektin med den angitte acetylesterasen.
Formålet med foreliggende oppfinnelse er å tilveiebringe mikrokapsler innbefattende et matrisemateriale av ikke-animalsk opprinnelse og som er i stand til på effektiv måte å beskytte aktive substanser innleiret i matrisematerialet mot kjemiske og fysikalske innvirkninger.
Oppfinnelsen
Mikrokapslene ifølge oppfinnelsen er kjennetegnet ved at matrisematerialet kan oppnås ved behandling av en pektinsubstans med ett eller flere enzymer valgt fra gruppen bestående av esteraser (E.C.3.I.), glukosidaser (E.C.3.2.), peptidaser (E.C.3.4), proteaser (E.C.3.4.) og lyaser (E.C.4).
De forbedrede stabilitetsegenskapene som oppnås med mikrokapslene ifølge oppfinnelsen sammenlignet med mikrokapsler innbefattende et matrisemateriale av ikke-modifisert pektin vil fremgå fra tegningene hvor
Fig 1 viser stabilitetstestresultater oppnådd ved lagring av mikrokapsler ved en
temperatur på 25°C og 60 % RH (relativ fuktighet), og
Fig 2 viser stabilitetstestresultater oppnådd ved lagring av mikrokapsler ved en
temperatur på 40°C og 75 % RH.
Fig 1 og 2 viser kurver som illustrerer virkningsgraden til mikrokapsler inneholdende vitamin A palmitat innleiret i forskjellige matrisematerialer som en tidsfunksjon.
Det fremgår fra nevnte kurver at mikrokapsler ifølge oppfinnelsen, nemlig innbefattende matrisemateriale som er proteasebehandlet pektin, barbert P-pektin, deacetylert . P-pektin, rhamnogalaktouronasebehandlet p-pektin, lyasebehandlet P-pektin, karboksypeptidase A- eller B-behandlet P-pektin, og Flavourzyme 500 L ™ behandlet P-pektin samt lyasebehandlet appelsinpektin, utviser betydelig bedre stabiliteter ved lagring både ved 25°C, 60 % RH og ved 40°C, 75 % RH i perioder opptil minst 20 dager sammenlignet med mikrokapsler innbefattende ikke-modifisert pektin som matrisemateriale.
Den heri benyttede betegnelse "mikrokapsler" betyr partikler som hver innbefatter et matrisemateriale hvori det er innleiret et flertall faste eller flytende mikropartikler.
Pektiner er høymolekylvektige polygalaktouronsyrer sammenkoblet av (1 ^ 4)-o> glykosidiske bindinger hvor noen av karboksylsyregruppene er forestret med metanol og de består av fleksible områder hvor polymerhovedkjeden er rik på rhamnose og har sidekjeder, "hårete områder", av en kompleks natur.
Pektiner innbefatter også "slette områder" som er stive områder hvor hovedkjeden består vesentlig av galaktouronsyre eller galaktouronsyrerester som har meget små sidekjeder slik som metyl- eller etylgrupper.
US patent 5 929 051 inneholder en mer detaljert omtale av den generelle strukturen til pektin og pektinsubstanser slik de forstås.
Som benyttet i foreliggende sammenheng innbefatter betegnelsen "pektinsubstans" pektin, pektinsyre og salter og estere av pektinsyre (pektater) hvorved pektinsubstansen har et galaktouronsyreinnhold på over 40 %.
Galaktouronsyreinnholdet i pektinsubstansen er fortrinnsvis over 50 % og mer foretrukket over 65 %.
Matrisematerialet i foreliggende mikrokapsler består fortrinnsvis av pektin, som er behandlet med ett eller flere enzymer som er i stand til å modifisere de hårete områdene, nemlig sidekj edene i pektinets rhamnogalaktouranan-hovedkjede.
Foretrukne eksempler på slike enzymer er rhamnogalaktouranase, rhamnogalakto-urananacetylesterase, P-galaktosidase, arabinase, galaktanase og a-arabinofuranosidase.
Et annet foretrukket matrisemateriale er et pektin som er behandlet med ett eller flere enzymer som kan modifisere hovedkjeden i pektinets slette områder for derved å danne separate elementer innbefattende hårete områder.
Eksempler på slike enzymer er pektinlyase og kombinasjoner av polygalaktouronase og pektinmetylesterase.
De fleste pektiner inneholder proteiner, f.eks i en mengde på ca 1 - 5 % vekt/vekt og det er overraskende funnet at beskyttelsesegenskapene til slike proteinholdige pektiner forbedres betydelig dersom de behandles med en protease slik som papain, pepsin og trypsin.
Pektinmaterialet som skal modifiseres ifølge oppfinnelsen er fortrinnsvis avledet fra betevekst (Beta vulgaris L. Chenopodiaceae), inkludert sukkerroe, rødbete, bladbete, forbete, spinatbete, sølvbete og forroe, eller fra appelsin, drue, soyabønne, linfrø, jordskokk, selleri og poteter. Sukkerroepektin er en spesielt nyttig pektinsubstans.
Enzymklassifikasjonssystemet som er benyttet i definisjonen av enzymer for bruk for modifisering av pektinsubstanser ifølge foreliggende oppfinnelse er beskrevet i Enzyme Nomenclature 1992, Academic Press, San Diego, California, med supplementer. Esterase (E.C.3.1) som utgjør en underklasse til hydrolaser (E.C.3) er enzymer som katalyserer hydrolysen av estergrupper i pektin. Foretrukne esteraser for bruk for modifikasjonen av pektinsubstanser er deacetyleringsenzymer, slik som rhamnogalakto-uronan-acetylesterase, pektinacetylesterase og pektinmetylesterase.
Glukosidaser (E.C.3.2), som også utgjør en underklasse til hydrolaser (E.C.3) er enzymer som katalyserer hydrolysen av glykosidiske bindinger i pektin. Foretrukne glukosidaser er avgreningsenzymer slik som a-arabinofuranosidase, galaktanase, arabinanase og endo- og ekso-polygalakturonaser. En blanding av a-arabinofuranosidase, galaktanase, rhamnogalakturonase, og arabinanase er særlig nyttig.
Peptidaser og proteaser (E.C.3.4) som også utgjør en underklasse til hydrolaser (E.C.3), katalyserer hydrolysen av peptidbindinger. Foretrukne proteaser er papain, pepsin og trypsin (endopeptidaser) og karboksypeptidase A og B (eksopeptidaser), samt kombinasjoner av endo- og eksopeptidaser, slik som Flavorzyme 500L ™.
Eksempler på egnede kommersielle protaser er Papain 1600 fra Valley Research og Collupulin® fra DSM Gist-Brocades Food Specialities.
Lyaser (E.C.4) er enzymer som katalyserer addisjon til dobbeltbindinger. En foretrukket lyase er pektinase PL lyase.
Betegnelsen "deacetyleringsenzym" betyr et enzym som er i stand til å fjerne acetyl-grupper, som er kovalent bundet til galakturonsyrerester i hovedkjeden til pektinets hårete områder.
Betegnelsen "barberingsenzym" eller "avgreningsenzym" betyr enzymer som er i stand til å redusere lengden på sidekj edene i pektins hårete områder.
Betegnelsen "pektinesterase" betyr et enzym som er i stand til å fjerne esterrester fra galaktouronsyrerester i pektins hovedkjede.
I praksis kan den enzymatiske modifikasjonen av pektinsubstanser utføres som følger: Temperatur og pH for pektinfremstillingen justeres til det benyttede enzymets henholdsvis arbeidstemperatur og arbeids-pH. Enzym oppløses/fortynnes i ionevekslet vann og tilsettes til pektinfremstillingen. Reaksjon utføres under kontinuerlig omrøring, og pH-verdien blir om nødvendig regulert ved titrering. Etter en viss tid stoppes reaksjonen ved å nedsette pH-verdien. For på irreversibel måte å inaktivere enzymet heves temperaturen til 80°C i 10 min. Oppløsningens temperatur senkes og pektinet utfelles (1:3) i 80 % 2-propanol. Det utfelte pektinet dreneres på en beitepresse og anbringes i et tørkekammer ved 70°C i 24 timer. Etter tørking males pektinet og siktes (DIN 24).
Pektinpreparatet for anvendelse som substrat for enzymbehandling kan være et ekstrakt oppnådd direkte fra råmaterialet f.eks sukkerroeskall eller det kan være en oppløsning av et raffinert pektinprodukt.
Et ekstrakt av sukkerroepektin kan fremstilles som følger:
1) Blanding av tørr granulær sukkerroemasse med en vandig oppløsning av en sterk mineralsyre, fortrinnsvis salpetersyre. 2) Ekstraksjon av massen under kraftig omrøring i ca 1 til 5 timer ved 60-80°C og pH varierende fra 1,5 til 2,5. 3) Separering av den resulterende blandingen i faste avfallstoffer og en væske inneholdende pektin. 4) Behandling av væsken inneholdende pektin med enzymer som beskrevet ovenfor.
En pektinoppløsning tilberedes ved tilsetning av pektinpulver til varmt (70°C) ionevekslet vann. Det preparerte produktet omrøres kontinuerlig inntil pektinet er fullstendig oppløst.
De aktive substansene som inneholdes i mikrokapslene ifølge oppfinnelsen kan være en hvilken som helst substans, som under lagring, transport, håndtering og bruk krever beskyttelse, f.eks overfor oksygen, fuktighet, lysstråling og fyskialske innvirkninger, for å unngå fysikalsk og kjemisk dekomponering av substansen. Disse aktive substansene er ytterligere definert som aktive i enten et kjemisk eller biologisk system. Videre kan en beskyttende matrise anvendes for å hindre den aktive substansen i å reagere med andre stoffer som er tilstede i en sammensetning eller med stoffer med hvilke det kan komme i kontakt ved bruk og som ville ha en skadelig innvirkning på den aktive substnasen ønskede aktivitet. En beskyttende matrise kan også anvendes for å omdanne væsker og andre stoffer, som er vanskelig å håndtere, f.eks på grunn av kleberlighet, til en fast form som er egnet for håndtering og prosessering ved bruk, slik som et pulver av mikrokapsler.
Eksempler på aktive substanser egnet for bruk i foreliggende oppfinnelse er fettopp-løselige stoffer, slik som vitaminer, fettsyrer, f.eks én- og flerumettede fettsyrer, som kan tilsettes i form av fiskeolje inneholdende blant annet (n-3) fettsyrene docosaheksa-ensyre (DHA) og eicosapentaensyre (EPA), og i form av nattlysolje og ricinusolje inneholdende blant annet (n-6) fettsyren y-linolensyre, karotenoider, f.eks P-karoten, lutein, lykopen, P-kryptosantin og zeasantin, oljer og fetter; vannoppløselige stoffer slik som vitamin C; enzymer, f.eks amylase, farmasøytiak, slik som griseofulvin, ibuprofen, benzodiazepiner, fenacetin, hormoner og paracetamol, og andre ernæringstilsetninger, slik som mineraler.
Ytterligere aktive stoffer er aroma- og smaksforbindelser.
Foreliggende mikrokapslers matrisemateriale kan inneholde konvensjonelle additiver
slik som antioksydasjonsmidler, f.eks t-butylhydroksytoluen (BHT), t-butylhydroksy-anisol (BHA), ascorbinsyre, ascorbylpalmitat, natriumascorbat, tocoferoler, TBHQ, etoksykin, propylgallat, og ekstrakter fra urter, blant annet rosmarinekstrakt, pudrings-midler, f.eks stiveler, modifiserte stivelser, trikalsiumfosfat, laktose, mannitol, etyl-cellulose, koagulert albumin, herdet gelatin, kasein, stearat-Ca, stearat-Na, metallsåper, hydrogenert ricinusolje, polyoksyd, talkum, vokser og silikater; antikakedannende midler, f.eks trikalsiumfosfat og silikater, blant annet silisiumdioksyd og natrium-aluminiumsilikat; myknere, f.eks karbohydrater og karbohydratalkoholer, og eksempler på slike er sakkarose, glukose, fruktose, laktose, invertesukker, sorbitol, mannitol, maltodekstrin, glyserin og blandinger derav, fortrinnsvis sakkarose, laktose, maltodekstrin, og blandinger derav.
Oppfinnelsen angår også en fremgangsmåte for fremstilling av mikrokapsler inneholdende en aktiv substans innleiret i en matrise, og denne fremgangsmåten innbefatter trinnene med tilveiebringelse av et vandig medium av en pektinsubstans modifisert ved behandling med ett eller flere enzymer valgt fra gruppen bestående av esteraser (E.C.3.1), glukosidaser (E.C.3.2), peptidaser (E.C.3.4), proteaser (E.C.3.4), og lyaser (E.C.4), tilsetning til nevnte oppløsning av minst én aktiv substans, findeling og tørking av den således oppnådde blandingen for oppnåelse av en masse av partikler som hver inneholder et flertall flytende eller faste mikropartikler av den aktive substansen inn-: leiret i en matrise innbefattende en modifisert pektinsubstans. Sluttrinnet i den ovenfor beskrevne fremgangsmåten kan utføres ved bruk av konvensjonelle metoder slik som sprøytekjøling, sprøytetørking, modifisert sprøyte-tørking eller arktørking og knusing, kfr WO 91/06292.
Foreliggende oppfinnelse angår også produkter innbefattende de ovenfor beskrevne mikrokapslene. Typiske eksempler på slike produkter er matvarer, matvaretilsetninger, drikker, farmasøytiske og veterinærprodukter, for, fortilsetninger, produkter for personlig pleie, og husholdningsprodukter.
Oppfinnelsen vil nå bli beskrevet mer detaljert under henvisning til følgende eksempler.
EKSEMPLER
I eksemplene er molekylvekten (MW) målt ved bruk av kapillærrørmetodeprinsippet som følger: Utløpstiden måles for en pektin/heksametafosfatoppløsning og molekylvekten beregnes deretter ved bruk av en velkjent formel (kfr WO 00/58367 pektin med redusert kalsium-sensitivitet, side 12).
Utløpstiden måles på to utløp. Dersom forskjellen mellom tidene er mer enn 0,4 sekunder gjentas målingen inntil forskjellene er mindre enn den passende verdien. Utløpstiden som benyttes for molekylbestemmelsen er gjennomsnittsverdien for de ovennevnte identiske eller vesentlig identiske måleresultatene.
Fremstilling av enzymatisk modifiserte pektinsubstanser.
Eksempel 1
I dette eksemplet var pektinsubstansen avledet fra sukkerroer (GENU beta-pektin, lot 92455, produsert av CP Kelco ApS, Lille Skensved, Danmark) og enzymet var papain (Collupulin® papain batch R9741, produsert av DSM Gist-Brocades Food Specialities, Delft, Nederland).
10001 av ionevekslet vann ble oppvarmet til 70°C, 0,4 M NaCl ble oppløst og 20 g pektinsubstans ble tilsatt under kontinuerlig omrøring. Etter at pektinet var fullstendig oppløst ble temperaturen senket til 45°C; pH ble justert til 5,50 ved titrering med en 2 %
(vekt/vol) NH3 oppløsning. 240 gram Collupulin ble oppløst i ca 5 ml ionevekslet vann ved omgivelsestemperatur og tilsatt til pektinoppløsningen. Under forsøket ble pH-verdien holdt konstant ved 5,50 ved tritering med 2 % (vekt/vol) NH3. Etter 20 minutter ble 6127 ml av 2 % (vekt/vol) NH3 tilsatt, og reaksjonen ble stoppet ved tilsetning av en 10 % HNO3 oppløsning til pH 2,50. For å sørge for irreversibel inaktivering av enzymet ble temperaturen hevet til 80°C. Etter 10 minutter ved 80°C ble oppløsningen avkjølt til 50°C og det modifiserte pektinet ble utfelt (1:3) i 80 % 2-propanol. Det utfelte pektinet ble drenert på en beitepresse og anbragt i et tørkekammer ved 70°C i 24 timer. Etter tørking ble pektinet malt og siktet (DIN 24). Acetyleringsgraden (%(D(Ac)), forestringsgraden (% DE), galakturonsyreinnhold (% GA) og molekylvekt (MW) for det enzymbehandlede pektinet ble bestemt og de oppnådde resultatene fremgår fra tabell 1.
Eksempel 2
I dette eksemplet var pektinsubstansen avledet fra sukkerroer (GENO® beta-pektin, lot 82899, produsert av CP Kelco ApS, Lille Skensved, Danmark). De benyttede enzymene var a-arabinofuranosidase (a-ARA) (batch sp 580, PPJ 4494), arabinanase (batch sp 564, PPC 4381) og galaktanase (batch sp 518 PPJ 4368), alle produsert av Novo Nordisk, Bagsvaerd, Danmark.
10001 ionevekslet vann ble oppvarmet til 60°C og 10 kg pektinsubstans ble tilsatt under kontinuerlig omrøring. Etter at pektinet var fullstendig oppløst ble temperaturen senket til 45°C og pH ble justert til 4,50 ved titrering med en 2 % (vekt/vol) NH3 oppløsning. 5 gram arabinanase, 35 mg a-arabinofuranosidase, og 35 gram galaktanase ble fortynnet i
ca 11 ionevekslet vann ved omgivelsestemperatur og tilsatt til pektinoppløsningen. Etter 4 timer ble reaksjonen stoppet ved tilsetning av en 10 % (vekt/vol) HNO3 oppløsning til pH 3,00. For å sørge for irreversibel inaktivering av enzymet ble temperaturen hevet til 80°C. Etter 10 minutter ved 80°C ble oppløsningen avkjølt til 20°C og det modifiserte pektinet ble utfelt (1:3) i 80 % 2-propanol. Det utfelte pektinet ble drenert på en beitepresse og anbragt i et tørkekammer ved 70°C i 24 timer. Etter tørking ble pektinet malt og siktet (DIN 24). Acetyleringsgraden (%D(Ac)), forestringsgraden (%DE), galakturonsyreinnholdet (%GA), molekylvekten (MW) og det nøytrale sukkerinnholdet i den enzymbehandlede pektinprøven ble bestemt og de oppnådde resultatene fremgår fra tabell 2.
Eksempel 3
I dette eksemplet var pektinsubstansen avledet fra sukkerroer, GENU® beta-pektin, lot 92455 produsert av CP Kelco ApS, Lille Skensved, Danmark) og enzymet var rhamnogalaktouronanacetylesterase (batch PPJ 4456, produsert av Novo Nordisk, Bagsvaerd, Danmark).
501 ionevekslet vann ble oppvarmet til 70°C, og 1 kg pektinsubstans ble tilsatt under kontinuerlig omrøring. Temperaturen ble senket til 50°C, og pH ble justert til 4,50 ved titrering med en 2 % (vekt/vol) NH3 oppløsning. 10 gram rhamnogalakturonanacetyl-esterase ble tilsatt til pektinoppløsningen. Etter 24 timer ved 50°C under kontinuerlig
omrøring ble reaksjonen stoppet ved tilsetning av en 10 % (vekt/vol) HNO3 opp-løsningen til pH 2,50. For å sørge for irreversibel inaktivering av enzymet ble temperaturen hevet til 80°C. Etter 10 minutter ved 80°C ble oppløsningen avkjølt til 50°C og det modifiserte pektinet ble utfelt (1:3) i 80 % 2-propanol. Det utfelte pektinet ble drenert på en beitepresse og anbragt i et tørkekammer ved 70°C i 24 timer. Etter tørking ble pektinet malt og siktet (DIN 24). Acetyleringsgraden (%D(Ac)), forestringsgraden (% DE), galakturonsyreinnholdet (% GA) og molekylvekten (MW) ble bestemt og de oppnådde resultatene fremgår fra tabell 3.
Eksempel 4
I dette eksemplet var pektinsubstansen avledet fra sukkerroer (GENU® beta-pektin, lot 82899 produsert av CP Kelco ApS, Lille Skensved, Danmark) og enzymet var rhamnogalakturonase (batch PPJ 4478, produsert av Novo Nordisk, Bagsvaerd, Danmark).
501 ionevekslet vann ble oppvarmet til 70°C og 1 g pektinsubstans ble tilsatt under kontinuerlig omrøring. Temperaturen ble senket til 50°C og pH ble justert til 4,50 ved nitering med en 2 % (vekt/vol) NH3 oppløsning. 3125 gram rhamnogalakturonase ble oppløst i ca 50 ml ionevekslet vann og tilsatt til pektinoppløsningen. Etter 4 timer ved 50°C ble reaksjonen stoppet ved tilsetning av en 10 % (vekt/vol) HNO3 oppløsning til pH 2,50. For å sørge for irreversibel inaktivering av enzymet ble temperaturen hevet til 80°C. Etter 10 minutter ved 80°C ble oppløsningen avkjølt til 50°C og det modifiserte pektinet ble utfelt (1:3) i 80 % 2-propanol. Det utfelte pektinet ble drenert på en beitepresse og anbragt i et tørkekammer ved 70°C i 24 timer. Etter tørking ble pektinet malt og til slutt ble pektinet siktet (DIN 24). Acetyleringsgraden (% D(Ac)), forestrings-
graden (% DE), galakturonsyreinnholdet (% GA) og molekylvekten (MW) ble bestemt og de oppnådde resultatene fremgår fra tabell 4.
Eksempel 5
I dette eksemplet var pektinsubstansen avledet fra sukkerroe (batch nr 30003, type SF H-25, produsert av CPKelco, Germany GmbH, Grossenbrode, Tyskland) og enzymet var Enzeco Pectinase PL lyase fra Enzyme Development Corporation, batch nr S-11677, aktivitet 26 U/ml. 55 1 ionevekslet vann ble oppvarmet til 70°C og 2,75 kg pektinsubstans ble tilsatt under kontinuerlig omrøring. Etter at pektinet var fullstendig oppløst ble temperaturen senket til 45°C; pH ble justert til 4,50 ved titrering med en 10 % (vekt/vol) sodaoppløsning. 1,63 ml Enzeco Pectinase PL lyase ble tilsatt til pektinoppløsningen. Under forsøket ble pH-verdien holdt konstant ved 5,5 ved titrering med 5 % (vekt/vol) soda. Etter 6 timer (viskositetskonstant, 9 cP) ble reaksjonen stoppet ved tilsetning av en 10 % (vekt/vol) sodaoppløsning til pH 2,50. For å sørge for irreversibel aktivering av enzymet ble temperaturen hevet til 80°C. Etter 10 minutter ved 80°C ble oppløsningen avkjølt til 50°C, inndampet til halve mengden ved følgende prosedyre: oppløsningen ble overført til et fordarnpningsapparat. Varme ble tilført under vakuum ved 0,8 bar, og oppløsningen vil nå kokepunktet (ca 60°C). Oppløsningen ble avkjølt til 50°C og det modifiserte pektinet ble utfelt (1:3) i 80 % 2-propanol. Det utfelte pektinet ble drenert på en beitepresse og anbragt i et tørkekammer ved 70°C i 24 timer. Etter tørking ble pektinet malt og siktet (DIN 24). Acetyleringsgraden (% D(Ac)), forestringsgraden (% DE), galakturonsyren (% GE) og molekylvekten (MW) for det enzymbehandlede pektinet ble bestemt og resultatet fremgår fra tabell 5.
Eksempel 6
I dette eksemplet var pektinsubstansen avledet fra sukkerroer (GENU beta pektin, lot 30003, produsert av CP Kelco, Germany GmbH, Grossenbrode, Tyskland) og enzymet var karboksypeptidase B fra Sigma, batch nr 108H7406, aktivitet 176 u/mg.
401 ionevekslet vann ble oppvarmet til 70°C og 1,6 kg pektinsubstans ble tilsatt under kontinuerlig omrøring. Etter at pektinet var fullstendig oppløst ble temperaturen senket til 45°C; pH ble justert til 7,50 ved titrering med en 10 % (vekt/vol) sodaoppløsning. 21 mg karboksypeptidase B ble tilsatt til pektinoppløsningen. Under forsøket ble pH-verdien holdt konstant ved 7,5 ved nitering med 5 % (vekt/vol) soda. Etter 24 timer ble reaksjonen stoppet ved tilsetning av en 10 % (vekt/vol) sodaoppløsning til pH 2,50. For på irreversibel måte å inaktivere enzymet ble temperaturen hevet til 80°C. Etter 10 minutter ved 80°C ble oppløsningen avkjølt til 50°C og det modifiserte pektinet ble utfelt (1:3) i 80 % 2-propanol. Det utfelte pektinet ble drenert på en beitepresse og anbragt i et tørkekammer ved 70°C i 24 timer. Etter tørking ble pektinet malt og siktet (DIN 24). Acetyleringsgrad (% D(Ac)), forestringsgrad (% DE), galakturonsyre (% GA) og molekylvekt (MW) for det enzymbehandlede pektinet ble bestemt og resultatene fremgår fra tabell 6.
Eksempel 7
I dette eksemplet var pektinsubstansen avledet fra sukkerroer (GENU beta pektin, lot 30003, produsert av CPKelco, Germany GmbH, Grossenbrode, Tyskland) og enzymet var karboksypeptidase A fra Sigma, batch nr 127H7445, aktivitet 50 u/mg.
401 ionevekslet vann ble oppvarmet til 70°C og 1,6 kg pektin ble tilsatt under kontinuerlig omrøring. Etter at pektinet var fullstendig oppløst ble temperaturen senket til 45°C; pH ble justert til 7,50 ved tritering med en 10 % (vekt/vol) sodaoppløsning. 21 mg karboksypeptiase A ble tilsatt til pektinoppløsningen. Under forsøket ble pH-verdien holdt konstant ved 7,5 ved tritering med 5 % (vekt/vol) soda. Etter 24 timer ble reaksjonen stoppet ved tilsetning av en 10 % (vekt/vol) sodaoppløsning til pH 2,50. For på irreversibel måte å inaktivere enzymet ble temperaturen hevet til 80°C. Etter 10 minutter ved 80°C ble oppløsningen avkjølt til 50°C og det modifiserte pektinet ble utfelt (1:3) i 80 % 2-propanol. Det utfelte pektinet ble drenert på en beitepresse anbragt i et tørkekammer ved 70°C i 24 timer. Etter tørking ble pektinet malt og siktet (DIN 24). Acetyleringsgrad (% D(Ac)), forestringsgrad (% DE), galakturonsyre (% GA) og molekylvekt (MW) for det enzymbehandlede pektinet ble bestemt og resultatet er angitt i tabell 7.
Eksempel 8
I dette eksemplet var pektinsubstansen avledet fra sukkerroer (GENU beta pektin, lot 30003, produsert av CPKelco, Germany GmbH, Grossenbrode, Tyskland) og enzymet var Flavorzyme 500L™ fra Novozymes, Danmark, batch nr HPNO1200 med en aktivitet på 500 LAPU/g.
501 ionevekslet vann ble oppvarmet til 70°C og 2 kg pektinsubstans ble tilsatt under omrøring. Etter at pektinet var fullstendig oppløst ble temperaturen senket til 45°C; pH ble justert til 5,50 ved titrering med en 10 % (vekt/vol) sodaoppløsning. 15 1 Flavorzyme 500L ble tilsatt til pektinoppløsningen. Under forsøket ble pH-verdien holdt konstant ved 5,5 ved titrering med 5 % (vekt/vol) soda. Etter 4 timer ble reaksjonen stoppet ved tilsetning av en 10 % (vekt/vol) sodaoppløsning til pH 2,50. For på irreversibel måte å inaktivere enzymet ble temperaturen hevet til 80°C. Etter 10 minutter ved 80°C ble oppløsningen avkjølt til 50°C og det modifiserte pektinet ble utfelt (1:3) i 80 % 2-propanol. Det utfelte pektinet ble drenert på en beitepresse og anbragt i et tørke-kammer ved 70°C i 24 timer. Etter tørking ble pektinet malt og siktet (DIN 24). Acetyleringsgrad (% D(Ac)), forestringsgrad (% DE), galakturonsyre (% GA) og molekylvekt (MW, kapillærrørmetode) for det enzymbehandlede pektinet ble bestemt og resultatet er angitt i tabell 8.
Eksempel 9
I dette eksemplet var pektinsubstansen avledet fra appelsin (batch nr 1001-69-1, produsert av CPKelco, Limeira, Brasil) og enzymet var Enzeco Pectinase PL lyase fra Enzyme Development Corporation, batch nr S-l 1677, aktivitet 26 U/ml.
55 1 ionevekslet vann ble oppvarmet til 70°C og 940 gram pektinsubstans ble tilsatt under kontinuerlig omrøring. Etter at pektinet var fullstendig oppløst ble temperaturen senket til 45°C; pH ble justert til 4,50 ved titrering med en 10 % sodaoppløsning. 0,50
ml Enzeco Pectinase PL lyase ble tilsatt til pektinoppløsningen. Under forsøket ble pH-verdien holdt konstant ved 5,5 ved titrering med 5 % (vekt/vol) soda. Etter 1,5 timer ble reaksjonen stoppet ved tilsetning av en 10 % (vekt/vol) sodaoppløsning til pH 2,50. For å irreversibel måte å inaktivere enzymet ble temperaturen hevet til 80°C. Etter 10 minutter ved 80°C ble oppløsningen avkjølt til 50°C, inndampet til halve mengden ved følgende prosedyre: oppløsningen ble overført til evaporatoren. Varme ble tilført under vakuum ved 0,8 bar og oppløsningen vil nå kokepunktet (ca 60°C). Oppløsningen ble avkjølt til 50°C og det modifiserte pektinet ble utfelt (1:3) i 80 % 2-propanol. Det utfelte pektinet ble drenert på en beitepresse og anbragt i et tørkekammer ved 70°C i 24 timer. Etter tørking ble pektinet malt og siktet (24 DIN). Acetyleringsgrad (% D(Ac)), forestringsgrad (% DE), galakturonsyre (% GA) og molekylvekt (MW) for det enzymbehandlede enzymet ble bestemt og resultatet fremgår fra tabell 9:
Fremstilling av mikrokapsler
Mikrokapslene ble fremstilt ifølge nedenstående oppskrift.
1.000,00 gram vann
92,9 gram (modifisert) pektin
797,0 gram sukker
12,6 gram natriumascorbat
400,0 gram vitamin A palmitatolje
20,40 gram a-tocoferol.
Sammenligningseksempel
92,9 gram sukkerroepektin (GENU® beta-pektin type BETA, lot HF 72-097-0 fra CP Kelco ApS, Lille Skensved, Danmark) og 797,0 gram sakkarose ble oppløst i 1,01 vann ved 65°C i en emulsjonstank og 12,6 gram natriumascorbat tilsatt. En blanding av 400,0 gram vitamin A palmitat 1,7 million IU/g og 20,4 gram DL-a-tocoferol ble oppvarmet til 65°C i et begerglass. Den oljeholdige blandingen ble tilsatt til den vandige oppløs-ningen av pektin, sukker og natriumascorbat under langsom omrøring og deretter utsatt for sterk omrøring ved 10.000 omdr/min ved bruk av Ultra Turrax (Ultra Turrax T50) i 60 minutter ved 65°C. Den sluttelige emulsjonen ble fortynnet med 975 ml 65°C vann til en viskositet på 150 cP (målt med Brookfield Viscometer type HAT, spindel HAI). Den gjennomsnittlige oljedråpestørrelsen ble målt til å være 1,40 um (Malvern Mastersizer Long bed ver. 2.19, brennvidde 45 mm, strålelengde 2,4 mm). Deretter ble emulsjonen forstøvet i et sprøytetårn, hvor dråpene ble dekket med stivelse og tørket. Bare en del av
emulsjonen ble sprøytet. Etter sortering på mesh 30/120 ga dette ca 1 kg partikkelformig produkt med en virkningsgrad på 105.000 IU/g (Prøven ble forsåpet med 50 % KOH, 96 % etanol og en 10 % natriumascorbatoppløsning og ekstrahert med heptan.
Mengden av vitamin A ble målt ved HPLC, Hichrom LiChrosorb CN 5,5 ul, 250 mm x 4,0 mm mot en ekstern standard).
Produktets stabilitet ble undersøkt som følger: ca 0,2 gram produkt ble veiet og anbragt i en liten åpen glassbeholder (15 x 10 mm) og holdt ved 25°C/60 % R.H. og ved 40°C/ 75 % R.H. i 3 uker. Prøver ble analysert ved start, etter 7,14 og 21 dager med henblikk på virkningsgrad. De oppnådde resultatene er angitt nedenfor:
Eksempel 10
92,9 gram Collupulin-modifisert sukkerroepektin fremstilt som beskrevet i eksempel 1 og 797,0 gram sakkarose ble oppløst i 1,01 vann ved 65°C i en emulsjonstank og 12,6 gram natriumascorbat tilsatt. En blanding av 400,0 gram vitamin A palmitat 1,7 million IU/g og 20,4 gram DL-cc-tocoferol ble oppvarmet til 65°C i et begerglass. Den oljeholdige blandingen ble tilsatt til den vandige oppløsningen av modifisert pektin, sukker og natriumascorbat under langsom omrøring og deretter ble den utsatt for sterk omrøring ved 10.000 omdr/min ved bruk av Ultra Turrax (Ultra Turrax T50) i 60 minutter ved 65°C. Sluttemlusjonen ble fortynnet med 10.000 ml 65°C vann til en viskositet på 155 cP (målt med Brookfield Ciscometer type HAT, spindel HAI). Den gjennomsnittlige oljedråpestørrelsen ble målt til å være 1,09 nm (Malvern Mastersizer Long bed ver 2.19, brennvidde 45 mm, strålelengde 2,4 mm). Deretter ble oppløsningen forstøvet i et sprøytetårn, hvor dråpene ble dekket med stivelse og tørket. Bare en del av emulsjonen ble sprøytet. Etter sortering på mesh 30/120 ga dette ga 1 kg partikkelformig produkt med en virkningsgrad på 278.000 IU/g (prøvene ble forsåpet med 50 % KOH, 96 % etanol og 10 % natriumascorbatoppløsning og ekstrahert med heptan).
Mengden av vitamin A ble målt ved HPLC (Hichrom LiChrosorb CN-5, 5 ul, 250 mm x 4,0 mm mot en ekstern standard).
Produktets stabilitet ble undersøkt som følger: ca 0,2 gram produkt ble veiet og anbragt i en liten åpen glassbeholder (15x10 mm) og holdt ved 25°C/60 % R.H. og ved 40°C/ 75 % R.H. i 3 uker. Prøver ble analysert ved start, etter 7,14 og 21 dager med henblikk på virkningsgrad. De oppnådde resultatene er angitt i det nedenstående:
Som det fremgår fra disse resultatene var foreliggende preparats virkningsgrad og stabilitet langt mer overlegen enn disse egenskapene for det tidligere kjente preparatet i sammenligningseksemplet.
Eksempel 11
92,9 gram ct-ARA, arabinanase, og galaktanase-modifisert sukkerroepektin fremstilt som beskrevet i eksempel 2 og 797,0 gram sakkarose ble oppløst i 1,01 vann ved 65°C i en emulsjonstank og 12,6 gram natriumascorbat tilsatt. En blanding av 400,0 gram vitamin A palmitat 1,7 million IU/g og 20,4 gram DL-a-tocoferol ble oppvarmet til 65°C i et begerglass. Den oljeholdige blandingen ble tilsatt til den vandige oppløsningen av modifisert pektin, sukker og natriumascorbat under langsom omrøring deretter utsatt for sterk omrøring ved 10.000 omdr/min ved bruk av Ultra Turrax (Ultra Turrax T50) i 60 minutter ved 65°C. Sluttemulsjonen ble fortynnet med 1050 ml 65°C vann til en viskositet på 155 cP (målt med Brookfield Viscometer type HAT, spindel HAI). Den gjennomsnittlige dråpestørrelsen ble målt til å være 1,28 um (Malvern Mastersizer Long bed ver. 2.19, brennvidde 45 mm, strålelengde 2,4 mm). Deretter ble emulsjonen forstøvet i et sprøytetårn hvor dråpene ble dekket med stivelse og tørket. Bare en del av emulsjonen ble sprøytet. Etter sikting på mesh 30/120 ga dette ca 1 kg partikkelformig produkt med en virkningsgrad på 224.000 IU/g (prøven ble forsåpet med 50 % KOH, 96 % etanol og 10 % natriumascorbatoppløsning og ekstrahert med heptan. Mengden av
vitamin A ble målt ved bruk av HPLC, Hichrom LiChrosorb CN-5, 5 ul,250 mm x 4,0 mm mot en ekstern standard).
Produktets stabilitet ble undersøkt som følger: ca 0,2 gram produkt ble veiet og anbragt i en liten åpen glassbeholder (5x10 mm) og holdt ved 25°C/60 % R.H. og ved 40°C/45 % R.H. i 3 uker. Prøver ble analysert ved start, etter 7,14 og 21 dager med henblikk på virkningsgrad. De oppnådde resultatene er angitt i det nedenstående:
Som det fremgår fra disse resultatene var foreliggende preparats virkningsgrad og stabilitet langt overlegen i forhold til disse egenskapene for det tidligere kjente preparatet i sammenligningseksemplet.
Eksempel 12
92,9 gram rhamnogalaktouronanacetylesterase-modifisert sukkerroepektin fremstilt som beskrevet i eksempel 3 og 797,0 gram sakkarose ble oppløst i 1,01 vann ved 65°C i en emulsjonstank og 12,6 gram natriumascorbat tilsatt. En blanding av 400,0 gram vitamin A palmitat 1,7 millium IU/ g og 20,4 gram DL-a-tocoferol ble oppvarmet til 65°C i et begerglass. Den oljeholdige blandingen ble tilsatt til den vandige oppløsningen av modifisert pektin, sukker og natriumascorbat under langsom omrøring og deretter sterkt omrørt ved 10.000 omdr/min med Ultra Turrax (Ultra Turrax T50) i 60 minutter ved 65°C. Sluttemulsjonen ble fortynnet med 800 ml 65°C vann til en visositet på 150 cP (målt med Brookfield Viscometer type HAT, spindel HAI). Den gjennomsnittlige olje-dråpestørrelsen ble målt til å være 1,59 um (Malvern Mastersizer Long bed ver. 2,19, brennvidde 45 mm, strålelengde 2,4 mm). Deretter ble emulsjonen forstøvet i et sprøytetårn hvor dråpene ble dekket med stivelse og tørket. Bare en del av emulsjonen ble sprøytet. Etter sikting på mesh 30/120 ga dette ca 1 kg partikkelformig produkt med en virkningsgrad på 252.000 KJ/g (prøven ble forsåpet med 50 % KOH, 96 % etanol og en 10 % natriumascorbatoppløsning og ekstrahert med heptan. Mengden av vitamin A
ble målt med HPLC, Hichrom LiCrosorb CN-5, 5 fil, 250 mm x 4,0 mm mot en ekstern standard).
Produktets stabilitet ble undersøkt som følger: ca 0,2 gram produkt ble veiet og anbragt i en liten åpen glassbeholder (15x10 mm) og holdt ved 25°C/60 % R.H. og ved 40°C/ 75 % R.H. i 3 uker. Prøver ble analysert ved start, etter 7,14 og 21 dager med henblikk på virkningsgrad. De oppnådde resultatene er angitt nedenfor:
Som det fremgår fra disse resultatene var foreliggende preparats virkningsgrad og stabilitet langt overlegen i forhold til disse egenskapene til det tidligere kjente preparatet i sammenligningseksemplet.
Eksempel 13
92,9 gram rhamnogalaktouronase-modifisert sukkerroepektin fremstilt som beskrevet i eksempel 4 og 797,0 gram sakkarose ble oppløst i 1,0 1 vann ved 65°C i en emulsjonstank og 12,6 gram natriumascorbat tilsatt. En blanding av 400,0 gram vitamin A palmitat 1,7 million RJ/g og 20,4 gram DL-a-tocoferol ble oppvarmet til 65°C i et begerglass. Den oljeholdige blandingen ble tilsatt til den vandige oppløsningen av modifisert pektin, sukker og natriumascorbat under langsom omrøring og deretter gitt sterk omrøring ved 10.000 omdr/min med Ultra Turrax (Ultra Turrax T50) i 60 minutter ved 65°C. Sluttemulsjonen ble fortynnet med 980 ml 65°C vann til en viskositet på 150 cP (målt med Brookfield viskometer type HAT, spindel HAI). Den gjennomsnittlige oljedråpestørrelsen ble målt til å være 1,64 um (Malvern Mastersizer Long bed ver. 2,19, brennvidde 45 mm, strålelengde 2,4 mm). Deretter ble emulsjonen forstøvet i et spraytårn, hvor dråpene ble dekket med stivelse og tørket. Bare en del av emulsjonen ble sprayet. Etter sikting på mesh 30/120 ga dette ca 1 kg partikkelformig produkt med en virkningsgrad på 218.000 R7/g (prøven ble forsåpet med 50 % KOH, 96 % etanol og en 10 % natriumascorbatoppløsning og ekstrahert med heptan. Mengden av vitamin A
ble målt med HPLC, Hichrom LiChrosorb CN-5 5 ni, 250 mm x 4,0 mm mot en ekstern standard).
Produktets stabilitet ble undersøkt som følger: ca 0,2 gram produkt ble veiet og anbragt i en liten åpen glassbeholder (15x10 mm) og holdt ved 25°C/60 % R.H. og ved 40°C/ 75 % R.H. i 3 uker. Prøver ble analysert ved start, etter 7,14 og 21 dager med henblikk på virkningsgrad. De oppnådde resultatene er angitt nedenfor:
Det fremgår fra disse resultatene at foreliggende preparats virkningsgrad og stabilitet var langt overlegen i forhold til disse egenskapene for det tidligere kjente preparatet i sammenligningseksemplet.
Eksempel 14
92,9 gram Pectinase PL lyase-modifisert sukkerroepektin frerristilt som beskrevet i eksempel 5 og 797,0 gram sakkarose ble oppløst i 1,01 vann ved 65°C i en emulsjonstank og 12,6 gram natriumascorbat tilsatt. En blanding av 400,0 gram vitamin A palminat 1,7 million HJ/g og 20,4 gram DL-a-tocoferol ble oppvarmet til 65°C i et begerglass. Den oljeholdige blandingen ble tilsatt til den vandige oppløsningen av modifisert pektin, sukker og natriumascorbat under langsom omrøring. Deretter ble det foretatt sterk omrøring ved 10.000 omdr/min med Ultra Turrax (Ultra Turrax T50) i 60 minutter ved 65°C. Sluttemulsjonen viste en viskositet på 155 cP (målt ved Brookfield
viskometer type HAT, spindel HAI). Den gjennomsnittlige oljedråpestørrelsen ble målt til å være 0,83 um (Malvern Mastersizer Long bed ver. 2,19, brennvidde 45 mm, strålelengde 2,4 mm). Deretter ble emulsjonen forstøvet i et sprøytetårn, hvor dråpene ble dekket med stivelse og tørket. Bare en del av emulsjonen ble sprayet. Etter sikting på mesh 30/120 ga dette ca 1 kg partikkelformig produkt med en virkningsgrad på 349.000 RJ/g (prøven ble forsåpet med 50 % KOH, 96 % etanol og en 10 % natriumascorbat-oppløsning og ekstrahert med heptan. Mengden av vitamin A ble målt ved bruk av HPLC, Hichrom LiChrosorb CN-5, 5 ul, 250 mm x 4,0 mm mot en ekstern standard).
Produktets stabilitet ble undersøkt som følger: ca 0,2 gram produkt ble veiet og anbragt i en liten åpen glassbeholder (15x10 mm) og holdt ved 25°C/60 % R.H. og ved 40°C/ 75 % R.H. i 3 uker. Prøver ble analysert ved start, etter 7,14 og 21 dager med henblikk på virkningsgrad. De oppnådde resultatene er angitt nedenfor:
Det fremgår fra disse resultatene at foreliggende preparats virkningsgrad og stabilitet var langt overlegen i forhold til disse egenskapene for det tidligere kjente preparatet i sammenligningseksemplet.
Eksempel 15
92,9 gram karboksypeptidase B-modifisert sukkerroepektin fremstilt som beskrevet i eksempel 6 og 797,0 gram sakkarose ble oppløst i 1,01 vann ved 65°C i en emulsjonstank og 12,6 gram natriumascorbat tilsatt. En blanding av 400,0 gram vitamin A palmitat 1,7 million RJ/g og 20,4 gram DL-cc-tocoferol ble oppvarmet til 65°C i et begerglass. Den oljeholdige blandingen ble tilsatt til den vandige oppløsningen av modifisert pektin, sukker og natriumascorbat under langsom omrøring og deretter utsatt for sterk omrøring ved 10.000 omdr/min ved bruk av Ultra Turrax (Ultra Turrax T50) i 60 minutter i 65°C. Sluttemulsjonen ble fortynnet med 1151 ml 65°C vann til en viskositet på 155 cP (målt med Brookfield viskometer type HAT, spindel HAI). Den gjennomsnittlige oljedråpestørrelsen ble målt til å være 0,83 um Malvern Mastersizer Long bed ver. 2,19, brennvidde 45 mm, strålelengde 2,4 mm). Deretter emulsjonen forstøvet i et sprøytetårn hvor dråpene ble dekket med stivelse og tørket. Bare en del av emulsjonen ble sprøytet. Etter sortering på mesh 30/120 ga dette ca 1 kg partikkelformig produkt med en virkningsgrad på 222.000 RJ/g. Prøven ble forsåpet med 50 % KOH, 96 % etanol, og en 10 % natriumascorbatoppløsning og ekstrahert med heptan. Mengden av vitamin A ble målt med HPLC, Hichrom LiChrosorb CN-5, 5 ni, 250 mm x 4,0 mm mot en ekstern standard.
Produktets stabilitet ble undersøkt som følger: ca 0,2 gram produkt ble veiet og anbragt i en liten åpen glassbeholder (15x10 mm) og holdt ved 25°C/60 % R.H. og ved 40°C/ 75 % R.H. i 3 uker. Prøver ble analysert ved start, etter 7,14 og 21 dager med henblikk på virkningsgrad. De oppnådde resultatene er angitt nedenfor:
Det fremgår fra disse resultatene at foreliggende preparats virkingsgrad og stabilitet var langt overlegen i forhold til disse egenskapene for det tidligere kjente preparatet i sammenligningseksemplet.
Eksempel 16
92,9 gram karboksypeptidase A-modifisert sukkerroepektin fremstilt som beskrevet i eksempel 7 og 797,0 gram sakkarose ble oppløst i 1,01 vann ved 65°C i en emulsjonstank og 12,6 gram natriumascorbat tilsatt. En blanding av 400,0 gram vitamin A palmitat 1,7 million RJ/g og 20,4 gram DL-a-tocoferol ble oppvarmet til 65°C i et begerglass. Den oljeholdige blandingen ble tilsatt til den vandige oppløsningen av modifisert pektin, sukker og natriumascorbat under langsom omrøring og det hele ble utsatt for sterk omrøring ved 10.000 omdr/min ved bruk av Ultra Turrax (Ultra Turrax T50) i 60 minutter ved 65°C. Sluttoppløsningen viste en viskositet på 100 cP (målt med Brookfield viskometer type HAT, spindel HAI). Den gjennomsnittlige oljedråpe-størrelsen ble målt til å være 1,77 um (Malvern Mastersizer Long bed ver. 2,19, brennvidde 45 mm, strålelengde 2,6 mm). Deretter ble emulsjonen forstøvet i et spraytårn, hvor dråpene ble dekket med stivelse og tørket. Bare en del av emulsjonen ble sprayet. Etter sikting på mesh 30/120 ga dette ca 1 kg partikkelformig produkt med en virkningsgrad på 331.000 RJ/g (prøven ble forsåpet med 50 % KOH, 96 % etanol og en 10 % natriumascorbatoppløsning og ekstrahert med heptan. Mengden av vitamin A ble målt med HPLC, Hichrom LiChrosorb CN-5, 5 ul, 250 mm x 4,0 mm mot en ekstern standard.
Produktets stabilitet ble undersøkt som følger: ca 0,2 gram produkt ble veiet og anbragt i en liten åpen glassbeholder (15 x 10 mm) og holdt ved 25°C/60 % R.H. og ved 40°C/ 75 % R.H. i 3 uker. Prøver ble analysert ved start, etter 7,14 og 21 dager med henblikk på virkningsgrad. De oppnådde resultatene er angitt nedenfor:
Som det fremgår fra disse resultatene var foreliggende preparats virkningsgrad og stabilitet langt overlegen i forhold til disse egenskapene til det tidligere kjente preparatet i sammenligningseksemplet.
Eksempel 17
92,9 gram Flavorzyme-modifisert sukkerroepektin fremstilt som beskrevet i eksempel 8 og 797,0 gram sakkarose ble oppløst i 1,01 vann ved 65°C i en emulsjonstank og 12,6 gram natriumascorbat tilsatt. En blanding av 400,0 gram vitamin A palmitat 1,7 million RJ/g og 20,4 gram DL-a-tocoferol ble oppvarmet til 65°C i et begerglass. Den oljeholdige blandingen ble tilsatt til den vandige oppløsningen av modifisert pektin, sukker og natriumascorbat under langsom omrøring og deretter utsatt for sterk omrøring ved 10.000 omdr/min med Ultra Turrax (Ultra Turrax T50) i 60 minutter ved 65°C. Sluttemulsjonen ble fortynnet med 1093 ml 65°C vann til en viskositet på 155 cP (målt med Brookfield viskometer type HAT, spindel HAI). Den gjennomsnittlige oljedråpe-størrelsen ble målt til å være 1,50 um (Malvern Mastersizer Long bed ver. 2,19, brennvidde 45 mm, strålelengde 2,4 mm). Deretter ble emulsjonen forstøvet i et sprøytetårn hvor dråpene ble dekket med stivelse og tørket. Bare en del av emulsjonen ble sprøytet. Etter sikting på mesh 30/120 ga dette ca 1 kg partikkelformig produkt med en virkningsgrad på 203.000 RJ/g (prøven ble forsåpet med 50 % KOH, 96 % etanol og en 10 % natriumascorbatoppløsning og ekstrahert med heptan. Mengden av vitamin A ble målt med HPLC, Hichrom LiChrosorb CN-5, 5 ul, 250 mm x 4,0 mm mot en ekstern standard).
Produktets stabilitet ble undersøkt som følger: ca 0,2 gram produkt ble veiet og anbragt i en liten åpen glassbeholder (15 x 10 mm ) og holdt ved 25°C/60 % R.H. og ved 40775 % R.H. i 3 uker. Prøver ble analysert ved start, etter 7,14 og 21 dager med henblikk på virkningsgrad. De oppnådde resultatene er angitt nedenfor:
Det fremgår fra disse resultatene at foreliggende preparats virkningsgrad og stabilitet var langt overlegen i forhold til disse egenskapene for det tidligere kjente preparatet i sammenligningseksemplet.
Eksempel 18
92,9 gram Pectinase PL lyase-modifisert appelsinpektin fremstilt som beskrevet i eksempel 9 og 797,0 gram sakkarose ble oppløst i 1,08 1 vann ved 65°C i en emulsjonstank og 12,6 gram natriumascorbat tilsatt. En blanding av 400,0 gram vitamin A palmitat 1,7 million IU/g og 20,4 DL-a-tocoferol ble oppvarmet til 65°C i et begerglass. Den oljeholdige blandingen ble tilsatt til den vandige oppløsningen av modifisert pektin, sukker og natriumascorbat under langsom omrøring og deretter ble sterk omrøring utført ved 10.000 omdr/min med Ultra Turrax (Ultra Turrax T50) i 60 minutter ved 65°C. Sluttemulsjonen ble fortynnet med 37 ml 65°C vann til en viskositet på 155 cP (målt med Brookfield viskometer type HAT, spindel HAI). Den gjennomsnittlige oljedråpestørrelsen ble målt til å være 1,84 um (Malvern Mastersizer Long bed ver. 2,19, brennvidde 45 mm, strålelengde 2,4 mm). Deretter ble emulsjonen forstøvet i et sprøytetårn hvor dråpene ble dekket med stivelse og tørket. Bare en del av emulsjonen ble sprøytet. Etter sortering på mesh 30/120 ga dette ca 1 kg partikkelformig produkt med en virkningsgrad på 313.000 IU/g. Prøven ble forsåpet med 50 % KOH, 96 % etanol og en 10 % natriumascorbatoppløsning og ekstrahert med heptan. Mengden av vitamin A måles ved HPLC, Hichrom LiChrosorb CN-5, 5 ul, 250 mm x 4,0 mm mot en ekstern standard.
Produktets stabilitet ble undersøkt som følger: ca 0,2 gram produkt ble veiet og anbragt i en liten åpen glassbeholder (15x10 mm) og holdt ved 25°C/60 % R.H. og ved 40°C/ 75 % R.H. i 3 uker. Prøver ble analysert ved start, etter 7,14 og 21 dager med henblikk på virkningsgrad. De oppnådde resultatene er angitt nedenfor:
Fra disse resultatene fremgår det at foreliggende preparats virkningsgrad og stabilitet var langt overlegen i forhold til disse egenskapene for det tidligere kjente preparatet i sammenligningseksemplet.

Claims (15)

1. Mikrokapsler innbefattende en aktiv substans innleiret i et matrisemateriale, karakterisert ved at matrisematerialet kan oppnås ved behandling av en pektinsubstans med ett eller flere enzymer valgt fra gruppen bestående av esteraser (E.C.3.1), glukosidaser (E.C.3.2), peptidaser (E.C.3.4), proteaser (E.C.3.4) og lyaser (E.C.4).
2. Mikrokapsler ifølge krav 1, karakterisert ved at matrisematerialet kan oppnås ved behandling av en pektinsubstans med ett eller flere enzymer som kan modifisere de hårete områdene.
3. Mikrokapsler ifølge krav 1 eller 2, karakterisert ved at matrisematerialet kan oppnås ved behandling av en pektinsubstansn med ett eller flere enzymer som kan modifisere de slette områdenes hovedkjede for derved å danne separate elementer innbefattende hårete områder.
4. Mikrokapsler ifølge krav 1, karakterisert ved at matrisematerialet kan oppnås ved behandling av en pektinsubstans med papain, pepsin eller trypsin.
5. Mikrokapsler ifølge krav 4, karakterisert ved at matrisematerialet kan oppnås ved behandling av pektinsubstansen med papain, slik som Collupulin©.
6. Mikrokapsler ifølge krav 1, karakterisert ved at matrisematerialet kan oppnås ved behandling av pektinsubstansen med en eksopepti-dase, slik som karboksypeptidase.
7. Mikrokapsler ifølge krav 1-3, karakterisert ved at matrisematerialet kan oppnås ved behandling av en pektinsubstans med et deacetylerende enzym.
8. Mikrokapsler ifølge krav 1-3, karakterisert ved at matrisematerialet kan oppnås ved behandling av en pektinsubstans med et avgreningsenzym.
9. Mikrokapsler ifølge krav 1-3, karakterisert ved at matrisematerialet kan oppnås ved behandling av en pektinsubstans med en blanding av a-arabinofuranosidase, galaktanase og arabinanase.
10. Mikrokapsler ifølge krav 1-3, karakterisert ved at matrisematerialet kan oppnås ved behandling av pektinsubstansen med en lyase, slik som pektinase PL lyase.
11. Mikrokapsel ifølge hvilket som helst av krav 1-10, karakterisert ved at pektinsubstansen er avledet fra et vegetabilsk materiale.
12. Mikrokapsel ifølge hvilket som helst av krav 1-10, karakterisert ved at pektinsubstansen er avledet rfa appelsin, drue, sukkerroe, soyabønne, linfrø, jordskokk, selleri, poteter og rødbeter.
13. Fremgangsmåte for fremstilling av mikrokapsler inneholdende en aktiv substans innleiret i et matrisemateriale, karakterisert ved at den innbefatter trinnene med tilveiebringelse av et vandig medium av en pektinsubstans modifisert ved behandling med ett eller flere enzymer valgt fra gruppen bestående av esteraser (E.C.3.1), glukosidaser (E.C.3.2), peptidaser (E.C.3.4), proteaser (E.C.3.4) og lyaser (E.C.4), tilsetning til nevnte oppløsning av minst én aktiv substans, findeling og tørking av den således oppnådde blandingen til oppnåelse av en masse av partikler som hver inneholder et flertall væskeformige eller faste mikrokapsler av den aktive substansen innleiret i en matrise innbefattende den modifiserte pektinsubstansen.
14. Produkt, karakterisert ved at det innbefatter mikrokapsler ifølge hvilke som helst av krav 1-12.
15. Produkt ifølge krav 14, karakterisert ved at det er en matvare, et matvareadditiv, en drikk, et farmasøytisk eller veterinærprodukt, et for eller foradditiv, et produkt for personlig pleie eller et husholdningsprodukt.
NO20034547A 2001-04-10 2003-10-09 Mikrokapsler, fremgangsmate for fremstilling av slike samt produkt som innbefatter nevnte mikrokapsler. NO324980B1 (no)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DKPA200100594 2001-04-10
PCT/DK2002/000238 WO2002082924A1 (en) 2001-04-10 2002-04-10 Microcapsules

Publications (3)

Publication Number Publication Date
NO20034547D0 NO20034547D0 (no) 2003-10-09
NO20034547L NO20034547L (no) 2003-12-10
NO324980B1 true NO324980B1 (no) 2008-01-14

Family

ID=8160431

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
NO20034547A NO324980B1 (no) 2001-04-10 2003-10-09 Mikrokapsler, fremgangsmate for fremstilling av slike samt produkt som innbefatter nevnte mikrokapsler.

Country Status (10)

Country Link
US (1) US20040170693A1 (no)
EP (1) EP1377180B1 (no)
JP (1) JP2004529760A (no)
CN (1) CN1236692C (no)
AT (1) ATE371376T1 (no)
DE (1) DE60222106T2 (no)
DK (1) DK1377180T3 (no)
ES (1) ES2288558T3 (no)
NO (1) NO324980B1 (no)
WO (1) WO2002082924A1 (no)

Families Citing this family (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2006516396A (ja) * 2003-01-31 2006-07-06 デーエスエム アイピー アセッツ ベー. ヴェー. カロテノイドを含む新規な組成物
JP4918859B2 (ja) * 2004-08-11 2012-04-18 味の素株式会社 カプシノイド含有マイクロカプセルの製造法
JP2006050946A (ja) * 2004-08-11 2006-02-23 Ajinomoto Co Inc ペクチンを壁材とするマイクロカプセル
SI22342A (sl) * 2007-10-04 2008-02-29 Vitiva Proizvodnja In Storitve D.D. Antioksidativna in antimikrobioloska zascita mascob in mascobo-vsebujocih živil z mesanico ekstrakta ustnatic in zelenega caja
EP2213715A1 (en) 2009-02-02 2010-08-04 The Procter & Gamble Company Liquid hand dishwashing detergent composition
CN103221070B (zh) 2010-08-30 2019-07-12 哈佛大学校长及研究员协会 用于狭窄病变和溶解血栓疗法的切变控制释放
US20130251855A1 (en) * 2012-03-21 2013-09-26 Pepsico, Inc. Aqueous product comprising oil-containing microcapsules and method for the manufacture thereof
CN107594597B (zh) * 2017-07-31 2020-05-12 浙江新和成股份有限公司 一种脂溶性营养素微胶囊及其制备方法
CN110742278B (zh) * 2019-10-26 2022-09-13 大连医诺生物股份有限公司 植物蛋白体系油脂微囊粉及其制备方法
CN110801021A (zh) * 2019-11-15 2020-02-18 江苏独角兽生物科技有限公司 一种利用改性果胶包埋肠道复合益生菌的方法

Family Cites Families (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4977252A (en) * 1988-03-11 1990-12-11 National Starch And Chemical Investment Holding Corporation Modified starch emulsifier characterized by shelf stability
DK42092D0 (no) * 1992-03-27 1992-03-27 Novo Nordisk As
EP0580252A2 (en) * 1992-07-20 1994-01-26 Quest International B.V. Improvements in or relating to pectin methyl esterase
IL107791A (en) * 1992-11-30 1997-04-15 Gist Brocades Nv Use of pectinesterase in the treatment of fruit and vegetables
DK81193D0 (da) * 1993-07-06 1993-07-06 Novo Nordisk As Enzym
CN1089345C (zh) * 1996-01-26 2002-08-21 诺沃奇梅兹有限公司 含果胶的材料的酶促凝胶化及其所得产品和用途
ATE221325T1 (de) * 1996-12-11 2002-08-15 Dsm Nv Trübe fruchtsäfte und verfahren zu ihrer herstellung
US5929051A (en) * 1998-05-13 1999-07-27 Carrington Laboratories, Inc. Aloe pectins
GB9820817D0 (en) * 1998-09-24 1998-11-18 Danisco Enzyme
AU3915000A (en) * 1999-03-31 2000-10-16 Hercules Incorporated Pectin having reduced calcium sensitivity
WO2000070967A1 (en) * 1999-05-21 2000-11-30 Chr. Hansen A/S A colouring substance composition and a method of manufacturing same

Also Published As

Publication number Publication date
DK1377180T3 (da) 2007-12-27
JP2004529760A (ja) 2004-09-30
US20040170693A1 (en) 2004-09-02
DE60222106T2 (de) 2007-12-27
ATE371376T1 (de) 2007-09-15
EP1377180A1 (en) 2004-01-07
NO20034547L (no) 2003-12-10
CN1501776A (zh) 2004-06-02
EP1377180B1 (en) 2007-08-29
CN1236692C (zh) 2006-01-18
WO2002082924A1 (en) 2002-10-24
DE60222106D1 (de) 2007-10-11
ES2288558T3 (es) 2008-01-16
NO20034547D0 (no) 2003-10-09

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Ćujić et al. Chokeberry (Aronia melanocarpa L.) extract loaded in alginate and alginate/inulin system
EP1713575B1 (en) Aqueous dispersion and its use
Estevinho et al. Application of biopolymers in microencapsulation processes
Sampaio et al. Encapsulation of a lycopene-rich watermelon concentrate in alginate and pectin beads: Characterization and stability
US20230338298A1 (en) Plant protein-based microcapsules
EP1377180B1 (en) Microcapsules
US20070141165A1 (en) Method for Manufacturing Microcapsules Containing Capsinoid
HU220197B (hu) Eljárás fenolpolimerek viszkozitásának növelésére vagy gélezésére lakkáz enzimmel
Gallotti et al. Application of Pleurotus ostreatus β-glucans for oil–in–water emulsions encapsulation in powder
WO2004018650A1 (ja) 脱色酵母細胞壁画分
JPH04281836A (ja) ポリサッカライド製品およびその用途
Norcino et al. Development of alginate/pectin microcapsules by a dual process combining emulsification and ultrasonic gelation for encapsulation and controlled release of anthocyanins from grapes (Vitis labrusca L.)
US6146671A (en) Method and protecting heat-or oxygen-labile compounds to preserve activity and bioavailability
Jamdar et al. Physicochemical properties and enzymatic activity of wheat germ extract microencapsulated with spray and freeze drying
Wardhani et al. Preparation of degraded alginate as a pH-dependent release matrix for spray-dried iron and its encapsulation performances
Yadav et al. Pectin as natural polymer: an overview
Matavire Extraction and Modification of hemicellulose from Wheat bran to produce entrapment materials for the controlled release of chemicals and bioactive substances
EP1105099A2 (en) Fish gelatinous composition for use as an ingredient in tablets
Distantina et al. Microencapsulation of rice bran oil by complex coacervation using chitosan–k-carrageenan: Influence of glutaraldehyde and tween 20
WO2014159051A1 (en) Stable bioactive substances and methods of making
AU758534B2 (en) Method of protecting heat- or oxygen-labile compounds to preserve activity and bioavailability
Ling et al. In vitro release study of freeze-dried and oven-dried microencapsulated kenaf seed oil.
Solano et al. Nanoencapsulation by ionic gelation of polyphenols from artichoke (Cynara scolymus L.) residues using ultrasound
da Cruz et al. Microencapsulated ascorbic acid: Development, characterization, and release profile in simulated gastrointestinal fluids
Pertiwi et al. Microencapsulation of Ruellia tuberosa L. Extracts Using Alginate: Preparation, Biological Activities, and Release