NO174717B - Fremgangsmaate for fremstilling av et fiskeveksthormon-polypeptid fra Oncorhynchus keta samt ekspresjonsvektorer til bruk ved fremgangsmaaten - Google Patents

Fremgangsmaate for fremstilling av et fiskeveksthormon-polypeptid fra Oncorhynchus keta samt ekspresjonsvektorer til bruk ved fremgangsmaaten Download PDF

Info

Publication number
NO174717B
NO174717B NO852568A NO852568A NO174717B NO 174717 B NO174717 B NO 174717B NO 852568 A NO852568 A NO 852568A NO 852568 A NO852568 A NO 852568A NO 174717 B NO174717 B NO 174717B
Authority
NO
Norway
Prior art keywords
dna
growth hormone
polypeptide
escherichia coli
added
Prior art date
Application number
NO852568A
Other languages
English (en)
Other versions
NO174717C (no
NO852568L (no
Inventor
Susumu Sekine
Tamio Mizukami
Moriyuki Sato
Seiga Itoh
Akiko Saito
Original Assignee
Kyowa Hakko Kogyo Kk
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority claimed from JP59134536A external-priority patent/JPS6115699A/ja
Priority claimed from JP59213361A external-priority patent/JPS6193197A/ja
Priority claimed from JP21336084A external-priority patent/JPS6193196A/ja
Priority claimed from JP60050096A external-priority patent/JPS61210100A/ja
Application filed by Kyowa Hakko Kogyo Kk filed Critical Kyowa Hakko Kogyo Kk
Publication of NO852568L publication Critical patent/NO852568L/no
Publication of NO174717B publication Critical patent/NO174717B/no
Publication of NO174717C publication Critical patent/NO174717C/no

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/575Hormones
    • C07K14/61Growth hormone [GH], i.e. somatotropin
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S930/00Peptide or protein sequence
    • Y10S930/01Peptide or protein sequence
    • Y10S930/12Growth hormone, growth factor other than t-cell or b-cell growth factor, and growth hormone releasing factor; related peptides
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S930/00Peptide or protein sequence
    • Y10S930/01Peptide or protein sequence
    • Y10S930/31Linker sequence

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Endocrinology (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Fodder In General (AREA)

Description

Foreliggende oppfinnelse vedrører fremgangsmåte for fremstilling av et fiskeveksthormon-polypeptid fra Oncorhynchus keta samt ekspresjonsvektorer til bruk ved fremgangsmåten.
Pattedyrveksthormoner fremstilles i hypofysen. Aktiviteten og strukturen til pattedyrveksthormoner er kjent. F.eks. har humanveksthormoner blitt rapportert i J. A. Chem. Soc, 80, 4429 (1958) av U.J. Lewis et al., Biochem. J., 100, 754
(1966) av A.S. Hartree; og Arch. Biochem. Biophys. (Suppl.), 1, 327 (1962) av C.H. Li, et al.
Mange rapporter angående isolering av fiskeveksthormoner har blitt publisert som følger.
Isolering fra Tilapia
S.W. Farmer, et al., Gen. Comp. Endocrin, 30, 91 (1976)
Isolering fra stør
S.W. Farmer, et al., Endocrinology, 108, 377 (1981)
Isolering fra karpe
A.F. Cook, et al., Gen. Comp. Endocrin., 50, 335 (1983)
På den annen side, som for pattedyrveksthormongener er rotteveksthormon [P.H. Seeburg, et al., Nature 270, 486
(1977)], bovin- og svineveksthormongener [P.H. Seeburg, et al., DNA, 2, 37 (1983)] og humanveksthormongen [J.A. Martial, et al., Science, 205, 602 (1979 )] allerede kjent. Det er imidlertid ingen rapport om fiskeveksthormongener og en fremgangsmåte for fremstilling av et fiskeveksthormon-polypeptid ved rekombinant DNA-teknologi ved bruk av genet.
Fiskeveksthormoner har en stimulerende effekt på veksten av fisk, og er nyttig som en komponent i agn for fiskeoppdrett. Mengden av fiskeveksthormon som tilveiebringes ved utvinning fra fiskehypofysen, er begrenset. Det har derfor vært ønsket å utvikle en fremgangsmåte for tilveiebringelse av en stor mengde fiskeveksthormoner til lav pris.
I sammenheng med foreliggende oppfinnelse har man studert metoder for fremstilling av fiskeveksthormoner ved rekombinant DNÅ-teknikker. Som resultat har man på vellykket måte utvunnet en DNA som er komplementær til et fiskeveksthormon-polypeptid og anvendbart i fremstillingen av fiskeveksthormoner, og produsert en rekombinant DNA inneholdende DNA'en. Det vil si, mRNA ble ekstrahert fra laksehypofysen og en DNA (cDNA) komplementær til mRNA'en ble syntetisert. Deretter ble en DNA-probe tilsvarende aminosyresekvensen omkring N-terminalen i lakseveksthormonet syntetisert, og et lakseveksthormongen ble klonet ved seleksjon av en cDNA som hybridiserte med DNA-proben. Videre ble basesekvensen til cDNA'en bestemt.
I sammenheng med foreliggende oppfinnelse har man videre studert og funnet at en stor mengde av lakseveksthormon-polypeptidet dannes og akkumuleres i et medium ved dyrkning av en mikroorganisme inneholdende en rekombinant DNA hvori en cDNA som koder for lakseveksthormonet, er inkorporert. Fig. 1, (1) og (2) er et flytskjema for syntetisering av cDNA ved metoden ifølge Akayama-Berg og for konstruksjon av et rekombinant plasmid inneholdende cDNA'en. Fig. 2 illustrerer restriksjonsenzymkartene for cDNA'en i pSGHl, pSGH3 og pSGH14. Fig. 3 er et flytskjema for konstruksjon av det rekombinante plasmid pSGHIB2. Skjønt mange MboII-seter er til stede i pSGHl og pSGEIB2, er bare de seter som er nødvendig for konstruksjon av plasmidet referert til i fig. 3. Fig. 4 er et flytskjema for konstruksjon av de rekombinante plasmidene pSGHIIB9 og pSGHIIC2.
Ifølge foreliggende oppfinnelse tilveiebringes ekspresjons-vektorene pSGHIB2 (fig. 3) og pSGHIIC2 (fig. 4), som er kjennetegnet ved at de inneholder og kan uttrykke en DNA-sekvens som koder for et fiskeveksthormon av Oncorhynchus keta, hvilken DNA-sekvens henholdsvis er den som er vist i krav 1 transformert til Escherichia coli FERM BP-612, og den som er vist i krav 2 transformert til Escherichia coli FERM BP-708.
Videre er det ifølge oppfinnelsen tilveiebragt fremgangsmåter for fremstilling av et fiskeveksthormon av Oncorhynchus keta som har polypeptidsekvensen som vist i krav 3 henholdsvis polypeptidsekvensen vist i krav 4, kjennetegnet ved dyrking i et naeringsmedium av en Escherichia col i-stamme som er transformert med ekspresjonsvektoren ifølge krav 1, henholdsvis ifølge krav 2, akkumulering av fiskeveksthormon-polypeptidet i mediet og utvinning av polypeptidet derfra.
Polypeptidet kan fremstilles ved rekombinante DNA-teknikker som følger. Det vil si, en mRNA fra fiskeveksthormon isoleres fra hypofysen hos fisk og benyttes som en templat for å fremstille et rekombinant plasmid som innbefatter cDNA'en. Det rekombinante plasmid inkorporeres i en vertmikroorga-nisme. DNA'en og det rekombinante plasmid kan benyttes for ekspresjon av fiskevektshormongen i bakterier slik som Escherichia coli. Fiskevektshormoner fremstilles ved dyrking av mikroorganismer som bærer det rekombinante plasmidet.
Det rekombinante plasmid ifølge oppfinnelsen fremstilles ved følgende generelle metode.
Hel RNA fremstilles fra hypofysen fra laks (Oncorhynchus keta) og føres gjennom en oligo dT-cellulosekolonne for å isolere RNA som har polyadenylsyre [poly(A)RNA]. En dobbeltkjedet DNA syntetiseres ved bruk av poly(A)RNA'en som en templat og en revers transkriptase. Foreliggende ekspresjonsvektor (i det følgende også betegnet rekombinant DNA) oppnås ved bruk av in vitro rekombinante DNA-teknikker ved innføring av den syntetiske DNA i en vektor DNA slik som Escherichia coli plasmid DNA.
Fremstilling av DNA'en og rekombinant DNA forklares i detalj i det nedenstående.
Hypofysen utskjæres fra innfangede laks og nedfryses umid-delbart i flytende nitrogen. Guanidiniumtiocyanat tilsettes til den nedfryste hypofysen, og hypofysen opprives og oppløseliggjøres. Deretter anbringes den oppløseliggjorte hypofysen på CsCl-oppløsningslag og underkastes ultrasentri-fugering for oppnåelse av hel cytoplasmisk RNA som et bunnfall. Alternativt tilsettes LiCl til det oppløseliggjorte materiale med guanidiniumtiocyanat for å utvinne bare RNA som et bunnfall.
Den ekstraherte RNA oppløses i en NaCl eller KC1 hypertonisk oppløsning (f.eks. 0,5 M) og føres gjennom en oligo (dT)-cellulosekolonne for å la mRNA som har polyadenylsyre [poly(A)] bli adsorbert på kolonnen. Eluering utføres med vann eller en hypotonisk saltoppløsning slik som 10 mM Tris-HCl buffer for å isolere mRNA'en som har poly(A).
Syntese av cDNA og innføring av cDNA'en i en vektor foretas ifølge metoden til Okayama-Berg [Okayama & Berg; Mol. Cell. Biol. 2, 161 (1982)] som følger.
Først syntetiseres en vektor-primer. En vektor, f.eks. pCDVl, behandles med Kpnl i en passende oppløsning slik som en oppløsning bestående av Tris-HCl buffer (f.eks. pH 7,5, 10 mM), MgCl2 (f.eks. 6 mM) og NaCl (f.eks. 10 mM) for å spalte pCDVl ved Kpnl-setet. DNA'en inkuberes med terminal deoksynukleotidyl transferase ved en passende temperatur (f.eks. 37°C) i et passende tidsrom (f.eks. 20 min.) i en oppløsning bestående av Tris-HCl buffer (f.eks. pH 6,8, 30 mM), natriumcacodylat (f.eks. 140 mM), C0CI2 (f.eks. 1 mM), ditiotreitol (f.eks. 0,1 mM) og dTTP (f.eks. 0,25 mM) for å addere ca. 60 tymidylrester til begge 3'-endene i vektor-DNA'en. Deretter spaltes DNA'en med EcoRI i en oppløsning bestående av Tris-HCl buffer (f.eks. pH 7,5, 10 mM), MgCl2 (f.eks. 6 mM) og NaCl (f.eks. 100 mM. Ned-brytningsoppløsningen fraksjoneres ved lavgeleringstempera-tur-agarosegelelektroforese (i det følgende betegnet LGT-metoden [Lars Wieslander: Analytical Biochemistry, 98, 305 (1979 )] for å utvinne et DNA-fragment på ca. 3,1 Kb. Deretter oppløses DNA'en i en NaCl eller KC1 hypertonisk oppløsning (f.eks. 0,5 M) og føres gjennom en poly(dA)— cellulosekolonne for å la bare vektor-primermolekyler som har poly(T) bli adsorbert på kolonnen. Eluering utføres med vann eller en hypotonisk saltoppløsning slik som 10 mM Tris-HCl buffer for å isolere kun vektor-primermolekylet med poly(T).
Deretter syntetiseres en linker-DNA som følger. F.eks. behandles pLl DNA med Pstl i en passende oppløsning slik som en oppløsning bestående av Tris-HCL buffer (f.eks. 7,5, 10 mM), MgCl2 (f.eks. 6 mM) og NaCl (f.eks. 10 mM) for å spalte pLl ced Pstl-setet. DNA behandles ved den samme metoden som i syntesen av vektor-primeren med unntagelse for at dGTP tilsettes istedenfor dTTP, og ca. 15 oligo (dG)--kjeder adderes. DNA'en spaltes med HindiII i en passende oppløsning slik som en oppløsning bestående av Tris-HCl buffer (f.eks. pH 7,5, 10 mM), MgCl2, (f.eks. 6 mM) og NaCl (f.eks. 60 mM). Et DNA-fragment på ca. 0,5 Kb fraksjoneres ved agarosegel-elektroforese og utvinnes med DEAE-papir. Det oppnås dermed en linker-DNA.
Således oppnådd poly(A)RNA, vektor-primer og linker DNA benyttes for å syntetisere cDNA som følger. Poly(A)RNA'en og vektor-primer-DNA'en reageres med en revers transkriptase ved en passende temperatur (f.eks. 37°C) i et passende tidsrom (f.eks. 40 min.) i en oppløsning bestående av Tris-HCl buffer (f.eks. pH 8,3, 50 mM), MgCl2 (f.eks. 80 mM), KC1 (f.eks. 30 mM), ditiotreitol (f.eks. 0,3 mM), og dATP, dTTP, dCTP og dGTP (f.eks. 2 mM av hver). Ca. 15 oligo (dC)-kjeder adderes ved 3'-endene til den således oppnådde RNA-DNA--dobbeltkjeden under de samme betingelser som tilfellet er for addisjonen av (dT)-kjeder til vektor-primeren med unntagelse for at dTTP erstattes med dCTP. DNA'en spaltes med Hindlll i en oppløsning bestående av Tris-HCl buffer (f.eks. pH 7,5, 10 mM), MgCl2 (f.eks. 6 mM) og NaCl (f.eks. 60 mM). Den tidligere fremstilte linker-DNA blandes med DNA'en og blandingen inkuberes med Escherichia coli DNA-ligase ved en passende temperatur (f.eks. 12°C) i et passende tidsrom (f.eks. 16 timer) i en oppløsning bestående av Tris-HCl buffer (f.eks. pH 7,5, 20 mM), MgCl2 (f.eks. 4 mM), (NH4)2S04 (f.eks. 10 mM), KCl (f.eks. 0,1 M) og (3-nikotin-amidadenindinukleotid (g<->NAD) (f.eks. 0,1 mM) for å fremstille en ring av cDNA'en og linker-DNA'en. Til reaksjons-oppløsningen tilsettes 40 pM (sluttkonsentrasjon) hver av dATP, dTTP, dGTP og dCTP. Escherichia coli DNAligase, Escherichia coli DNA-polymerase I og Echerichia coli ribonuklease H tilsettes for å erstatte RNA-delen med DNA og for å oppnå et rekombinant plasmid inneholdende en komplett dobbeltkjedet cDNA.
En Escherichia coli stamme, f.eks. Escherichia coli C600SF8, transformeres med det således oppnådde rekombinante plasmid, f.eks. ved metoden ifølge Scott, et al. [Katsuya Shigesada: Saibo Kogaku (Cell Engineering), 2, 616 (1983)]. Siden et ampicillin-resistent gen eksisterer i det ovennevnte rekombinante plasmid, er Escherichia coli-transformanten resistent overfor ampicillin.
Valg av en mikroorganismestamme som bærer en ny rekombinant plasmid-DNA som har et gen komplementært til mRNA'en i fiskeveksthormon fra ampicillin-resistente (Ap<R>) stammer, utføres som følger. Således blir de ovenfor oppnådde trans-formanter fiksert på et nitrocellulosefilter og en syntetisk DNA-probe som har en DNA-sekvens som er antatt ut fra aminosyresekvensen til et kjent lakseveksthormon-polypeptid, hybridiseres dertil for å selektere den transformanten som viser sterk hybridisering (The Method of Grunstein-Hogness, Proe. Nati. Acad. Sei., USA, 72, 3961 (1975 )§. Probe-DNA'en syntetiseres ved en konvensjonell triestermetode [J. Am. Chem. Soc., 97, 7327 (1975)]. Seleksjon av den syntetiserte DNA-proben blir mer bestemt utført ved metoden ifølge Southern, et al. [J. Mol. Biol., 98,503 (1975)] og et rekombinant plasmid med genet som er komplementært til en lakseveksthormon-mRNA identifiseres ved den samme metoden som nevnt ovenfor.
pSGHl og pSGH14 er eksempler på de således oppnådde rekombinante plasmider. Plasmidet kan anvendes som en kilde for den DNA som koder for lakseveksthormon.
Fremstilling av lakseveksthormon-polypeptid ved ekspresjon av den DNA som koder for lakseveksthormon i en mikroorganisme : Den DNA som koder for lakseveksthormon utspaltes fra plasmidet som bærer DNA'en og innføres i en ekspresjonsvektor-DNA. Den således oppnådde rekombinante DNA transformeres til en mikroorganisme, og den således oppnådde transformant dyrkes for å akkumulere lakseveksthormon-polypeptid i et medium. Deretter utvinnes lakseveksthormon fra kulturen.
Som plasmid inneholdende den DNA som koder for lakseveksthormon er ovennevnte pSGHl og pSGE14 foretrukne eksempler.
Som vektor-DNA kan en hvilken som helst vektor anvendes så lenge som den DNA som er inkorporert deri kan uttrykkes i en mikroorganisme. En vektor-DNA hvori en fremmed DNA kan innsettes nedstrøms fra en egnet promotor slik som trp--promotor, lac-promotor eller PL-promotor og lengden mellom Shine-Dalgarno-sekvens (i det følgende betegnet SD-sekvens) og initieringskodon (ATG) er justert, f.eks. til 6-18 base-par, blir fortrinnsvis benyttet. Foretrukket eksempel på vektor-DNA er plasmid pGELl. pGELl er et plasmid som illustrert på fig. 3 og fig. 4 og en mikroorganisme inneholdende plasmidet ble deponert hos Fermentation Research Institute, Agency of Industrial Science and Technology (i det følgende betegnet FRI) som Escherichia coli IGEL1 under FERM BP-629 den 6. oktober 1984.
Rekombinasjon av den DNA som koder for polypeptidet og vektor-DNA'en kan utføres ved hjelp av konvensjonelle rekombinante DNA-teknikker, hvori begge DNA'er nedbrytes med restriksjonsenzymer og religeres med T4 DNA-ligase.
I tilfellet for pSGHl og pGELl, som illustrert på fig. 3, blir MboII-Sall-nedbrytningsfragment som koder for lakseveksthormon og Sall-BamHI-nedbrytningsfragment, separat fremstilt fra PSGHl og HindiII-BamHI-nedbrytningsfragment inneholdende tryptofan-promotor fremstilles fra pGELl. På den annen side fremstilles den syntetiske DNA-linker som angi 11 nedenfor.
DNA-fragmentene og den syntetiske DNA-linkeren som beskrevet ovenfor, ligeres med T4 DNA-ligase for oppnåelse av det rekombinante plasmid pSGHIB2 som illustrert på fig. 3. Plasmidet koder for et modent lakseveksthormon.
I tilfellet for pSGH14 og pGELl, som illustrert på fig. 4, utføres en totrinnskonstruksjon. Det vil si, MboII-PvuII--nedbrytningsfragment som koder for nærheten av N-terminalen i det modne lakseveksthormon-peptidet og PvuII-Hindlll-
-nedbrytningsfragment inneholdende den resterende cDNA og vektordelen, fremstilles separat fra pSGHl. På den annen side fremstilles den nedenfor angitte syntetiske DNA-linkeren.
DNA-fragmentene og den syntetiske DNA-linkeren som beskrevet ovenfor, ligeres med T4 DNA-ligase for oppnåelse av det rekombinante plasmidet pSGHIIB9 som illustrert på fig. 4. Deretter oppnås HindiII-BamEI-nedbrytningsfragment som koder for det modne lakseveksthormon-peptidet fra pSGHIIB9 og HindiII-BamHI-nedbrytningsfragment inneholdende tryptofan-promotor oppnås fra pGELl. De to DNA-fragmentene ligeres med T4 DNA-ligase for oppnåelse av det rekombinante plasmid pSGHIIC2 som illustrert på fig. 4. Plasmidet har en konstruksjon hvori et område som koder for modent lakseveksthormon er ligert nedstrøms fra tryptofan-promotor.
Reaksjonsbetingelser som er nødvendige for de rekombinante DNA-teknikkene beskrevet ovenfor, er generelt som følger.
Nedbrytning av DNA'en med restriksjonsenzymer utføres vanligvis ved å reagere 0,1-20 >jg DNA med 0,1-100 enheter, for trinnsvis 1-3 enheter restriksjonsenzym pr. 1 pg DNA i en blanding av 2-200 mM, fortrinnsvis 10-40 mM Tris-HCl (pH 6,0-9,5, fortrinnsvis pH 7,0-8,0), 0-200 mM NC1 og 2-30 mM, fortrinnsvis 5-10 mM MgCl2 ved 20-70°C) optimal temperatur avhenger av benyttede restriksjonsenzymer) ifra 15 min. til 24 timer. Reaksjonen stoppes vanligvis ved oppvarming ved 55-75°C i 5-30 min. eller alternativt ved å inaktivere restriksjonsenzymet med en reagens slik som fenol og dietyl-pyrokarbonat.
Rensing av DNA-fragmentene dannet ved nedbrytning med restriksjonsenzymer utføres ved LGT-metoden eller poly-akrylamid-gelelektroforese.
Ligering av DNA-fragmentene utføres med 0,3-10 enheter T4 DNA-ligase i en blanding av 2-200 mM, fortrinnsvis 10-40 mM Tris-HCl (pH 6,1-9,5, fortrinnsvis 7,0-8,0), 2-20 mM, fortrinnsvis 5-10 mM MgCl2, 0,1-10 mM, fortrinnsvis 0,5-2,0 mM ATP og 1-50 mM, fortrinnsvis 5-10 mM ditiotreitol ved 1-37°C, fortrinnsvis 3-20°C ifra 15 min. til 72 timer, fortrinnsvis 2-20 timer.
Den rekombinante plasmid DNA dannet ved ligeringsreaksjonen innsettes i Escherichia coli ved transformasjonsmetoden ifølge Cohen et al. [S.N. Cohen, et al.: Proe. Nati, Acad. Sei, USA, 69, 2110 (1972)].
Isolering av den rekombinante plasmid-DNA fra Escherichia coli som bærer DNA'en, utføres ved metoden beskrevet i eksempel 1 eller metoden ifølge Birnboim, et al. [H.C. Birnboim, et al.: Nucleic Acids Res. 7, 1513 (1979)].
Plasmid DNA ligeres med 1-10 typer av restriksjonsendonukleaser og spaltningssetene undersøkes ved agarosegel-elektroforese. Videre blir om nødvendig basesekvensen for DNA'en bestemt ved metoden ifølge Maxam-Gilbert [Proe. Nati. Acad. Sei 74, 560 (1977)] eller metoden ifølge Sanger [Sanger, et al., Proe. Nati. Acad. Sei. USA, 74, 5463 (1977); Amersham Co., M13 cloning and sequencing handbook].
En rekombinant plasmid-DNA kan fremstilles som omtalt ovenfor.
Fiskeveksthormon-polypeptidet fremstilles ved følgende metode.
Escherichia coli K-12 HB101 transformeres med et plasmid slik som pSGHIB2 og pSGHIIC2 og en Escherichia coli stamme som inneholder pSGHIB2 eller pSGEIIC2 velges fra ampicillin--resistente kolonier. Den Escherichia coli stammen som inneholder pSGHIB2 eller pSGHIIC2, dyrkes i et medium for produksjon av fiskevektshormon-polypeptidet i de dyrkede cellene.
Som medium kan enten et syntetisk medium eller et naturlig medium anvendes, så lenge som det er egnet for vekst av Escherichia coli og produksjon av fiskeveksthormon-polypeptidet.
Som karbonkilde kan glukose, fruktose, laktose, glycerol, mannitol, sorbitol osv. benyttes.
Som nitrogenkilde kan NH4CI, (NE^^SC^, casaminosyre, gjærekstrakt, polypepton, kjøttekstrakt, baktotrypton, eller maisstøpevæske osv. anvendes.
I tillegg kan næringsmidler slik som K2HPO4, KH2PO4, NaCl, MgS04, vitamin B^ og MgCl2 anvendes.
Dyrking utføres ved pH 5,5-8,5 og ved 18-40°C under beluft-ning og omrøring.
Etter dyrking i 5-90 timer akkumuleres lakseveksthormon--polypeptidet i dyrkede celler. De oppsamlede cellene behandles med lysozym, brytes ved gjentatt frysing og tining og underkastes sentrifugering. Den således oppnådde super-natantvæske underkastes ekstrasjon ifølge en konvensjonell metode for ekstraksjon av polypeptider for å utvinne polypeptidet.
Detektering av polypeptidet utføres ved varmeoppløsnning av de dyrkede cellene direkte i Sample-buffer ifølge Laemmli [Laemmli, Nature, 227, 680 (1979)] og ved bruk av SDS-polyakrylamidgel (metoden ifølge Laemmli: den ovenfor refererte metode) og ved farging med Coomassie Brilliant Blue.
Visse spesifikke utførelser av oppfinnelsen illustreres ved følgende representative eksempler.
Eksempel 1
Fremstilling av poly( A) RNA fra hypofysen hos laks
En RNA med poly(A) ble fremstilt fra hypofysen fra laks ifølge guanidiniumtiocyanat-ceciumklorid-metoden [utgitt av Maniatis, et al. Molecular Cloning, pl96, publisert av Cold Spring Harbour; Katsuya Shigesada, Saibo Kogaku (Cell Engineering), 2, 616, (1983)] som følger.
I dette trinnet ble 2 g av den nedfryste hypofysen fra laks (tilsvarende ca. 30 individer) oppbrutt og oppløseliggjort ved hjelp av en "Teflon"-homogenisator (5 omdr./min.) i 10 ml av en oppløsning bestående av 4M guanidiniumtiocyanat, 0, 5% sarkosin, 5 mM natriumcitrat (pH 7) og 0,1 M p<->merkapto-etanol. Eomogenatet ble ført gjennom 18 g injektor for å spalte DNA'en og anbragt på et lag av 1,2 ml hver av 5,7M CsCl og 0,1M EDTA (pE 8) i et ultrasentrifuger ingsrør. Sentrifugering ble utført ved 35.000 omdr./min. i 15 timer i Eitachi RPS40 rotor for å utvinne RNA'er somet bunnfall. RNA-bunnfallet ble oppløst i 10 ml Tris-ECl-oppløsning (pE 8,0) inneholdende 1 mM EDTA. Etter ekstraksjon med fenol--kloroform ble RNA'en utvunnet med etanol som et bunnfall. Ca. 1 mg av den således oppnådde RNA ble oppløst i 1 ml av en oppløsning bestående av 10 mM Tris-ECl (pE 8,0) og 1 mM EDTA. Oppløsningen ble inkubert ved 65°C i 5 min og 0,1 ml 5M NaCl ble tilsatt. Blandingen ble underkastet kromatografi i en oligo (dT)-cellulosekolonne (kolonnevolum 0,5 ml). mRNA'en med poly(A) adsorbert på kolonnen ble eluert med en oppløsning bestående av 10 mM Tris-HCl (pH 7,5) og IM EDTA og fraksjonert ved 0,2 ml porsjoner for oppnåelse av ca. 10 pg av mRNA'en med poly(A) i tredje til femte fraksjoner.
Eksempel 2
Syntese av en cDNA og innføring av cDNA' en i en vektor
Syntese av en cDNA og konstruksjon av et rekombinant plasmid som bærer cDNA'en, ble utført ifølge metoden til AkayamaBerg [Mol. Cell. Biol., 2, 161 (1982)] som følger. Prosessen er illustrert på fig. 1.
I dette trinnet ble 400 pg pCDVl [Okayama & Berg: Mol. Cell. Biol., 3, 280 (1983)] tilsatt til 300 pl av en oppløsning bestående av 10 mM Tris-HCl (pH 7,5), 6 mM MgCl2 og 10 mM NaCl, og ytterligere 500 enheter Kpnl ble tilsatt. Reaksjonen ble utført ved 37°C i 6 timer for å spalte plasmidet ved Kpnl-setet. Etter fenol-kloroformekstraksjon ble en DNA fjernet ved etanolutfelling. Ca. 200 pg av DNA'en spaltet med Kpnl ble tilsatt til 200 pl av en oppløsning fremstilt ved tilsetning av 0,25 mM dTTP til en buffer (i det følgende referert til som TdT-buffer) bestående av 40 mM natrium-kakodylat, 30 mM Tris-HCl (pH 6,8), 1 mM CaCl2 og 0,1 mM ditiotreitol (i det følgende betegnet DTT). Videre ble 81 enheter terminal deoksynukleotidyl-transferase (i det følgende betegnet TdT) tilsatt og reaksjon utført ved 37°C i 11 min. Derved ble ca. 67 poly(dT )-kjeder addert ved 3'-endene til pCDVl spaltet med Kpnl. Ca. 100 pg pCDVl DNA som var tilknyttet poly(dT)-kjeder ble utvunnet fra oppløs-ningen ved fenol-kloroformekstraksjon og etanolutfelling. DNA'en ble tilsatt til 150 pl av en buffer bestående av 100 mM Tris-HCl (pH 7,5), 6 mM MgCl2 og 100 mM NaCl. Videre ble 360 enheter EcoRI tilsatt, og reaksjon utført ved 37°C i to timer. Reaksjonsproduktet ble underkastet LGT-metoden for oppnåelse av et DNA-fragment på ca. 3,1 Kb, hvilket er ca. 60 pg av pCDVl med poly(dT)-kjeder. DNA'en ble oppløst i 500 pl av en oppløsning bestående av 10 mM Tris-HCl (pH 8,0) og 1 mM EDTA. Oppløsningen ble inkubert ved 65°C i 5 min., og 50 pl 5M NaCl ble tilsatt under isavkjøling. Blandingen ble underkastet kromatografi på oligo(dA)-cellulosekolonne. DNA'en med tilstrekkelig poly(dT )-kjeder ble adsorbert på kolonnen. Eluering ble utført med en oppløsning bestående av 10 mM Tris-HCl (pH 8,0) og 1 mM EDTA for oppnåelse av 27 pg pCDVl med poly(dT)-kjeder (i det følgende betegnet som vektor-primer ) .
Deretter ble en linker-DNA fremstilt som følger.
Omkring 14 pg pLl [Okaya & Berg: Mol.Cell. Biol., 3, 280
(1983)] ble tilsatt til 200 pl av en buffer bestående av 10 mM Tris-HCl (pH 7,5), 6 mM MgCl2 og 50 mM NaCl. Videre ble 50 enheter Pstl tilsatt, og reaksjon ble utørt ved 37°C i 4 timer for å spalte pLl DNA ved Pstl-setet. Reaksjonsproduktet ble underkastet fenol-kloroformekstraksjon og etanolutfelling for å utvinne ca. 13 pg pLl DNA spaltet ved Pstl-setet. Ca. 13 pg av DNA'en ble tilsatt til 50 pl TdT-buffer inneholdende 0,25 mM (sluttkonsentrasjon) dGTP. Videre ble 54 enheter TdT tilsatt, og inkubering ble utført ved 37°C i 13 min. for å addere ca. 14 (dG)-kjeder ved 3'-endene til pLl spaltet ved Pstl. En DNA ble utvunnet ved fenol-kloroformekstraksjon og etanolutfelling. DNA'en ble tilsatt til 100 pl av en buffer bestående av 100 mM Tris-HCl (pH 7,5), 6 mM MgCl2 og 60 mM NaCl. Videre ble 80 enheter Hindlll tilsatt og inkubering utført ved 37°C i 3 timer for å spalte pLl DNA ved Hindlll-setet. Reaksjonsproduktet ble fraksjonert ved agarosegel-elektroforese, og et DNA-fragment på ca. 0,5 Kb ble utvunnet ved DEAE-papirmetoden [Dretzen, et al., Anal. Biochem., 112, 295(1981)]. DNA'en var linker-DNA med oligo(dG )-kjede (i det følgende betegnet linkerDNA).
Ca. 2 pg poly(A)RNA og ca. 1,4 pg vektor-pr imer fremstilt ovenfor ble oppløst i 22,3 pl av en oppløsning bestående av
50 mM Tris-HCl (pH 8,3), 8 mM MgCl2, 30 mM HC1, 0,3 mM DDT, 2 mM dNTP (dATP, dTTP, dGTP og dCTP) og 10 enheter ribonuklease-inhibitor. 10 enheter revers transkriptase ble tilsatt og inkubering ble utført ved 37°C i 40 min. for å syntetisere en DNA komplementær til mRNA. Reaksjonsproduktet ble underkastet fenol-kloroformekstraksjon og etanolutfelling for å utvinne en vektor-primer-DNA forbundet med RNA-DNA— dobbeltkjede. DNA'en ble oppløst i 20 ml TdT-buffer inneholdende 66 pM dCTP og 0,2 pg poly(A). 14 enheter TdT ble tilsatt og inkubering ble utført ved 37°C i 8 min. for å addere 12 (dC)-kjeder ved 3'-enden til cDNA'en. Reaksjonsproduktet ble underkastet fenol-kloroformekstraksjon og etanolutfelling for å utvinne en cDNA-vektorprimer-DNA forbundet med (dC)-kjeder. DNA'en ble oppløst i 400 pl av en oppløsning bestående av 10 mM Tris-HCl (pH 7,5), 6 mM MgCl2 og 60 mM NaCl. 20 enheter Hindlll ble tilsatt og inkubering utført ved 37°C i to timer for å spalte DNA' en ved Hindlll--setet. Reaksjonsproduktet ble underkastet fenol-kloroformekstraksjon og etanolutfelling for å oppnå 0,5 pmol av en cDNA-vektorprimer-DNA forbundet med (dC)-kjeder. Deretter ble 0,08 pmol av DNA'en og 0,16 pmol av linkeren nevnt ovenfor, tilsatt til 40 pl av en oppløsning bestående av 10 mM Tris-HCl (pH 7,5), 0, IM NaCl, 0, IM NaCl og 1 mM EDTA og inkuberinger ble utført ved 65°C, 42°C og 0°C i 10 min., 25 min. og 30 min., respektivt. Reaksjonsoppløsningen ble justert til 400 pl (totalvolum) av en oppløsning som hadde en sammensetning av 20 mM Tris-HCl (pH 7,5), 4 mM MgCl2, 10 mM (NH4)2S04, 0,IM HC1 og 0,1 mM g-NAD. 10 enheter Escherichia coli DNA-ligase ble tilsatt til reaksjons-oppløsningen og inkubering ble utført ved 11°C natten over. Reaksjonsoppløsningen ble justert til en oppløsning inneholdende 40 pm dNTP og 0,15 mM p-NAD. 5 enheter Escherichia coli DNA-ligase, 7 enheter Escherichia coli DNA-polymerase I og 2 enheter Escherichia coli ribonuklease H ble tilsatt og inkubering ble utført ved 12°C i 1 time, og suksessivt ved 25°C i 1 time. Ved den ovennevnte reaksjon ble en rekombinant DNA inneholdende cDNA ringsluttet, RNA-delen i RNA-DNA--dobbeltkjeden ble erstattet med DNA, og et rekombinant plasmid med komplett dobbeltkjedet DNA ble dannet.
Eksempel 3
Seleksjon av en rekombinant DNA inneholdende en lakseveksthormon- cDNA
Escherichia coli c600SF8 [Cameron: Proe. Nati. Acad. Sei. USA, 72, 3426 (1975)] ble transformert under anvendelse av det rekombinante plasmidet ble oppnådd i eksempel 2 ved metoden ifølge Scott et a!. [Katsuya Shigesada: Saibo Kogaku (Cell Engineering) 2, 616 (1983)]. Blant ca. 10.000 kolonier oppnådd på denne måten ble 4800 kolonier fiksert på nitro-cellulose. Det ble valgt 8 stammer som hybridiserte sterkt ved 40°C med proben hvori en syntetisk DNA tilsvarende fra den 23. til den 28. aminosyresekvensen fra N-terminalen i lakseveksthormonet, dvs. (3. base er A eller G, den 9. er T eller C, den 12. er C eller T, den 15. er C eller T og kombinasjon av basene ut-gjør 16 typer av syntetiske DNA'er) er merket med <32>P [metoden ifølge Grunstein-Hogness, Proe. Nati. Acad. Sei., USA, 72, 3961 (1975)]. Det ble bekreftet ved metoden ifølge Southern [J. Mol. Biol., 98, 503 (1975 )] at de 8 stammene hybridiserte med den ovennevnte probe og den syntetiske DNA-proben tilsvarende aminosyresekvensen omkring C-terminalen
(den 3. basen er C eller T, den 6. er Å eller G, den 9. er A, T, G eller C, den 12. er G eller A og kombinasjon av basene utgjør 32 typer av syntetiske DNA'er. Plasmidene betegnet pSGH 1, 3, 6, 8, 9, 10, 14 og 17, respektivt, har den DNA-sekvens som er antatt fra aminosyresekvensen i det kjente lakseveksthormonet og antas å inneholde en vekst-hormon-cDNA.
Eksempel 4
Basissekvensen i plasmider pSGHl og PSGH14
De 8 plasmidene oppnådd ovenfor ble nedbrutt med forskjellige restriksjonsendonukleaser og spaltningskart over cDNA-delene ble bestemt. Plasmidene ble klassifisert i 3 grupper, dvs. gruppen av pSGHl, 6, 9, 10 og 17, gruppen av pSGH3 og gruppen av pSGH8 og 14 fra stillingene til restriksjonsendonuklease-seter. Restriksj onsendonukleasekart over hver gruppe er illustrert på fig. 2.
Hele nukleotidsekvensen i translasjonsområdet til plasmidene som hybridiserte sterkest med den syntetiske DNA-proben som foretatt i eksempel 3 og antas å inneholde nesten komplett cDNA, spesielt pSGHl, ble bestemt ved metoden ifølge Sanger ved bruk av zzml3 fag [Sanger, et al., Proe. Nati. Acad. Sei., USA, 74, 5463 (1977): Amersham, M13 cloning and sequencing handbook]. Sekvensen er illustrert i tabell 1. I tabell 1 koder basenumrene 1-66 for signalpeptid og 67-630 koder for det modne lakseveksthormon-polypeptidet.
Videre, blant pSGH 8 og pSGH14 som adskiller seg fra den pSGHl-innbefattende gruppen i restriksjonsseter, underkastes pSGH14 som antas å inneholde den cDNA som er lengre og har nesten fullstendig lengde, for metoden ifølge Sanger ved bruk av M13 fag. I tabell 2 koder basenumrene 1-66 for signalpeptid og 67-630 koder for det modne lakseveksthormon-polypeptidet.
Polypeptidet som er kodet av cDNÅ'en overensstemmer fullstendig med det polypeptid som er kodet av pSGHl i 11 aminosyrer i signalpeptidet, men adskiller seg med hensyn til 12 aminosyrer i det modne peptid i 188 aminosyrer som illustrert i tabell 2 ved understrekninger. Videre, så lenge som det refereres til den ZN-terminale 40 aminosyresekvensen bestemt fra lakseveksthormon-polypeptidet, er 5 aminosyrer klart forskjellige. Det anses derfor at cDNA'en som innehol-des i pSGH14 koder for et fiskehormon som adskiller seg fra pSGHl. Escherichia coli inneholdende pSGHl og pSGH14 ble deponert hos FRI som Escherichia coli ESGH1 (FERM BP-551) og ESGH14 (FERM BP-611) den 23. juni 1984 og 20. september 1984, respektivt.
Eksempel 5
Konstruksjon av rekombinant plasmid pSGH IB2 som koder for det modne lakseveksthormon- polypeptidet
I dette eksempel ble 5 pg plasmid pSGHl inneholdende en DNA som koder for lakseveksthormon-polypeptidet, oppløst i 40 pl av en oppløsning inneholdende 20 mM Tris-HCl (pH 7,5), 10 mM MgCl2 og 10 mM NaCl (i det følgende betegnet "Y-10 buffer-oppløsning". Deretter ble 10 enheter av restriksjonsenzymet MboII tilsatt, og nedbrytningsreaksjon ble utført ved 37°C i 3 timer. Konsentrasjonen av NaCl i oppløsningen ble justert til 175 mM, og 10 enheter Sali ble tilsatt. Nedbrytningsreaksjon ble utført ved 37°C i 3 timer. Ca. 0,2 pg DNA--fragment med 163 Bp tilsvarende N-terminalområdet ble oppnådd fra reaksjonsoppløsningen ved LGT-metoden.
Deretter ble 5 pg pSGHl oppløst i 40 pl av en oppløsning bestående av 20 mM Tris-HCl (pH 7,5), 10 mM MgCl2 og 100 mM
NaCl (i det følgende betegnet "Y-100 bufferoppløsning"). 10 enheter BamEI ble tilsatt, og nedbrytningsreaksjon utført ved 37°C i 3 timer. Deretter ble konsentrasjonen av NaCl i reaksjonsoppløsningen justert til 175 mM og enheter Sali ble tilsatt. Nedbrytningreaksjon ble utført ved 37°C i 3 timer. Ca. 0 ,5 pg av et DNA-fragment på ca. 900 bp inneholdende C-terminalområdet og 3'-ikke-translasjonsområdet ble oppnådd fra reaksjonsoppløsningen ved LGT-metoden.
Separat ble 5 pg pGELl oppløst i 40 pl Y-100 bufferoppløs-ning, og 10 enheter hver av BamEI og Eindlll ble tilsatt. Nedbrytningsreaksjon ble utført ved 30°C i 3 timer. Ca. 1 pg av et DNA-fragment på 2,7 Kb inneholdende en tryptofan-promotor ble oppnådd fra reaksjonsoppløsningen.
For å addere et translasjon-initieringskodon ATG som er nødvendig for ekspresjon av den DNA som koder for det modne lakseveksthormon-polypeptidet og å ligere en vektor-DNA og den ovennevnte DNA, ble en DNA-linker syntetisert som angitt nedenfor.
To enkeltkjedede DNA'er på 17-mer og 9-mer ble syntetisert ved en konvensjonell triestermetode [R. Crea, et al.: Proe. Nati. Acad. Sei., 75, 5765 (1978)]. Deretter ble 12 pmol hver av 17-mer og 12-mer DNA'ene oppløst i 20 pl av en oppløsning bestående av 50 mM Tris-ECl (pE 7,5), 10 mM MgCl2, 10 mM ditiotreitol og 1 mM ATP. 6 enheter T4 polynukleotidkinase ble tilsatt, og fosforyleringsreaksjon ble utført ved 37°C i 60 min.
Deretter ble 0,1 pmol MbolI-SalI-fragment (163 bp) ipSGHl, 0,006 pmol Sal I-BamHI-fragment (ca. 900 bp)i pSGHl og 0,02 pmol Hindi 11-BamHI-fragment (ca. 2,7 Kb) i pGELl oppnådd som angitt ovenfor, oppløst i 30 pl av en oppløsning bestående av 50 mM Tris-HCl (pH 7,5), 10 mM MgCl2, 10 mM ditiotreitol og 1 mM ATP. 5 pl av den syntetiske DNA-fosfor-yleringsreaksjonsoppløsningen oppnådd ovenfor ble tilsatt. 6 enheter T4 DNA-ligase ble tilsatt til blandingen, og 1igeringsreaksjon utført ved 4°C i 18 timer.
Escherichia coli HB101 [Bolivar, et al., Gene, 2, 75 (1977)] ble transformert ved anvendelse av reaksjonsoppløsningen for oppnåelse av en Ap<R->koloni. Et plasmid DNA pSGHIB2 som illustrert på fig. 3 ble utvunnet fra kolonien. Strukturen til pSGHIB2 ble erkjent ved spalting med EcoRI, Hindlll, Clal, Bgllll, Sali og BamHI og agarosegel-elektroforese. Sekvensen til den DNA som koder for N-terminalområdet i lakseveksthormon-polypeptidet i pSGHIB2 ble bestemt ifølge metoden til Sanger [Sanger, et al.: Proe. Nati. Acad. Sei. USA, 74, 5463 (1977 ); Amersham Co., M13 cloning and sequencing handbook] ved anvendelse av M13 fag som illustrert nedenfor.
Som resultat ble det bekreftet at pSGHIB2 inneholder den DNA som koder for det modne lakseveksthormon-polypeptidet. Escherichia coli inneholdende plasmid pSGHIB2 ble deponert hos FRI som Escherichia coli ESGHIB2 som FERM BP-612 den 20. september 1984.
Eksempel 6
( 1) Konstruksjon av rekombinant plasmid PSGHIIB9 som koder for det modne lakseveksthormon- polypeptidet fra pSGH14
I dette eksempelet ble 5 pg plasmid pSGH14 inneholdende en DNA som koder for et lakseveksthormon-polypeptid, oppløst i 100 pl av en oppløsning inneholdende 20 mM Tris-HCl (pH 7,5), 109@ mM MgCl2 og 10 mM NaCl. Deretter ble 10 enheter av restriksjonsenzym MboII tilsatt, og nedbrytningsreaksjon ble utført ved 37°C i 3 timer. Konsentrasjonen av NaCl i oppløsningen ble justert til 50 mM og 10 enheter PvuII ble tilsatt. Nedbrytningsreaksjon ble utført ved 37°C i 3 timer. Ca. 0,05 pg DNA-fragment på 108 bp tilsvarende til N-terminalområdet ble oppnådd fra reaksjonsoppløsningen ved polyakrylamidgel-elektroforese og DEAE-papirmetode.
Deretter ble 5 pg pSGH14 oppløst i 40 pl av en oppløsning bestående av 20 mM Tris-HCl (pH 7,5), 10 mM MgCl2 og 50 mM NaCl (i det følgende betegnet "Y-50 bufferoppløsning"). 10 enheter hver av PvuII og Hindlll ble tilsatt, og nedbrytningsreaksjon ble utført ved 37°C i 3 timer. Ca. 0,5 pg av et DNA-fragment på ca. 3,3 kb inneholdende C-terminalområdet og 3'-ikke-translasjonsområdet i veksthormonet av-ledet fra pSGH14 og en del av vektoren, ble oppnådd fra reaksjonsoppløsningen ved LGT-metoden.
For å addere et translasjonsinitieringskodon ATG som er nødvendig for ekspresjon av den DNA som koder for det modne lakseveksthormon-polypeptidet og for å ligere en vektor-DNA og den ovennevnte DNA, ble en DNA-linker som angitt nedenfor syntetisert.
To enkeltkjedede DNA'er på 14-mer og 9-mer ble syntetisert ved en konvensjonell triestermetode [R. Crea, et al.: Proe. Nati. Acad. Sei., USA, 75, 5765 (1978)]. Deretter ble 39 pmol hver av 14-mer og 9-mer DNA'ene oppløst i 20 pl av en oppløsning bestående av 50 mM Tris HC1 (pH 7,5), 10 mM MgCl2, 10 mM ditiotreitol og 1 mM ATP. 6 enheter T4-polynukleotidkinase ble tilsatt og fosforyleringsreaksjon utført ved 37°C i 60 min.
Deretter ble 0,08 pmol MbolI-PvuII-fragment (108 bp) i pSGH14 og 0,02 pmol pvuII-Hindlll-fragment (ca. 3,7 kb) i pSGH14 oppnådd som angitt ovenfor, oppløst i 30 pl av en oppløsning bestående av 50 mM Tris-HCl (pH 7,5), 10 mM MgCl2, 10 mM ditiotreitol og 1 mM ATP. 5 pl av den syntetiske DNA-fosforyleringsreaksjonsoppløsningen oppnådd ovenfor, ble tilsatt. 6 enheter T4 DNA-ligase ble tilsatt til blandingen, og ligeringsreaksjon ble utført ved 4°C i 18 timer.
Escherichia coli HB101 [Bolivar, et.al., Gene, 2, 75 (1977)] ble transformert ved anvendelse av reaksjonsoppløsningen for oppnåelse av en Ap<R->koloni. Et plasmid DNA pSGHIIB9 som illustrert på fig. 4 ble utvunnet fra kolonien. Strukturen til pSGHIIB9 ble erkjent ved spaltning med Hindlll, Xbal, Bglll og BamHI og agarosegel-elektroforese.
(2) Innsetning av et område som koder for det modne lakseveksthormon- polypeptidet i PSGEIIB9 i en ekspresjonsvektor pGELl
I dette trinnet ble 5 pg pSGHIIB9 oppløst i 40 pl Y-50--bufferoppløsning og 10 enheter hver av BamHI og Hindlll ble tilsatt. Nedbrytningsreaksjon ble utført ved 37°C i 3 timer. Ca. 0,1 pg av et DNA-fragment på ca. 1200 bp som koder for hele det modne lakseveksthormon-polypeptidet ble oppnådd fra reaksjonsoppløsningen ved LGT-metoden.
Separat ble 5 pg pGELl oppløst i 40 pl Y-50-bufferoppløs-ning, og 10 enheter hver av BamHI og Hindlll ble tilsatt. Nedbrytningsreaksjon ble utført ved 37°C i 3 timer. Ca. 0,1 pg av et DNA-fragment på ca. 2,7 kb inneholdende en tryptofanpromotor ble oppnådd fra reaksjonsoppløsningen ved LGT-metoden.
Deretter ble 0,01 pg Hindi 11-BamHI-fragment (ca. 1200 bp) i pSGHIIB9 og 0,015 pg HindiII-BamHI-fragment (ca. 2,7 Kb) i pGELl, oppløst i 30 pl av en oppløsning bestående av 50 mM Tris-HCl (pH 7,5), 10 mM MgCl2, 10 mM ditiotreitol og 1 mM ATP og 6 enheter T4 DNA-ligase ble tilsatt. Ligeringsreaksjonen ble utført ved 4°C i 18 timer.
Escherichia coli HB101 ble transformert ved anvendelse av reaksjonsoppløsningen for oppnåelse av en Ap^-koloni. Et plasmid DNA pSGHIIC2 som illustrert på fig. 4, ble utvunnet fra kolonien. Strukturen til pSGHIIC2 ble erkjent ved spaltingen med EcoRI, Hindlll, Clal, Bglll og BamHI og agarosegel-elektroforese.
Escherichia coli stammer inneholdende plasmider pSGHIIB9 og pSGHIIC2 ble deponert hos FRI som Escherichia coli ESGHIIB9 og ESGHIIC2 under FERM BP-707 og 708, respektivt, den 8. februar 1985.
Eksempel 7
Fremstilling av det nve lakseveksthormon- polypeptidet med Escherichia coli inneholdende pSGHIB2 og pSGHIIC2
Escherichia coli W3110 (FERM BP-732) ble transformert med rekombinantplasmidet pSGHIB2 eller pSGHIIC2 oppnådd i eksempel 5 eller eksempel 6, ved en konvensjonell metode. En oppnådd Ap-R-koloni ble inokulert i 8 ml av MCG-medium (pH 7,2) bestående av 0, 6% Na2HP04, 0, 3% KH2P04, 0,5$ NaCl, 0,156 NH4C1, 0,5$ glukose, 0,5$ Kasaminosyre, 1 mM MgS04 og 4 jjg/ml vitamin Bl, og dyrking ble utført ved 30°C i 18 timer. Kulturen ble sentrifugert ved 8000 omdr./min. i 10 min. for å utvinne celler. Cellene ble suspendert i prøvebufferen til Laemmli og underkastet SDS-polyakrylamidgel-elektroforese og farging med Coomassie Brilliant Blue for å detektere et polypeptidbånd ved delen med en molekylvekt på ca. 25.000. Båndet ble ikke observert i tilfelle for bruk av Escherichia coli som ikke inneholder plasmidet. Som resultat ble det bekreftet at Escherichia coli inneholdende pSGHIB2 eller pSGHIIC2 produserte lakseveksthormon-polypeptidet i en stor mengde.

Claims (4)

1. Ekspresjonsvektor pSGHIB2 (fig. 3), karakterisert ved at den inneholder og kan uttrykke følgende DNÅ-sekvens som koder for et fiskeveksthormon av Oncorhynchus keta: transformert til Escherichia coli FERM BP-612.
2 . Ekspresjonsvektor pSGHIIC2 (fig. 4), karakterisert ved at den inneholder og kan uttrykke følgende DNA-sekvens som koder for et fiskeveksthormon av Oncorhynchus keta: transformert til Escherichia coli FREM BP-708.
3. Fremgangsmåte for fremstilling av et fiskeveksthormon av Oncorhynchus keta som har følgende polypeptidsekvens: karakterisert ved at man i et næringsmedium dyrker en Escherichia coli-stamme som er transformert med ekspresjonsvektoren ifølge krav l, akkumulerer fiskeveksthormon-polypeptidet i mediet og utvinner polypeptidet derfra.
4 . Fremgangsmåte for fremstilling av et fiskeveksthormon av Oncorhynchus keta som har følgende polypeptidsekvens: karakterisert ved at man i et næringsmedium dyrker en Escherichia coli-stamme som er transformert med ekspresjonsvektoren ifølge krav 2, akkumulerer fiskeveksthormon-polypeptidet i mediet og utvinner polypeptidet derfra.
NO852568A 1984-06-29 1985-06-26 Fremgangsmåte for fremstilling av et fiskeveksthormon-polypeptid fra Oncorhynchus keta samt ekspresjonsvektorer til bruk ved fremgangsmåten NO174717C (no)

Applications Claiming Priority (4)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP59134536A JPS6115699A (ja) 1984-06-29 1984-06-29 魚類の成長ホルモン遺伝子
JP59213361A JPS6193197A (ja) 1984-10-12 1984-10-12 魚類の成長ホルモンポリペプチド
JP21336084A JPS6193196A (ja) 1984-10-12 1984-10-12 魚類の成長ホルモン遺伝子
JP60050096A JPS61210100A (ja) 1985-03-13 1985-03-13 魚類の新規成長ホルモンポリペプチド

Publications (3)

Publication Number Publication Date
NO852568L NO852568L (no) 1985-12-30
NO174717B true NO174717B (no) 1994-03-14
NO174717C NO174717C (no) 1994-06-22

Family

ID=27462444

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
NO852568A NO174717C (no) 1984-06-29 1985-06-26 Fremgangsmåte for fremstilling av et fiskeveksthormon-polypeptid fra Oncorhynchus keta samt ekspresjonsvektorer til bruk ved fremgangsmåten

Country Status (5)

Country Link
US (2) US4689402A (no)
EP (1) EP0166444B1 (no)
AU (1) AU575961B2 (no)
CA (1) CA1272144A (no)
NO (1) NO174717C (no)

Families Citing this family (17)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4894362A (en) * 1985-07-10 1990-01-16 Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. Eel growth hormone
JPS62224297A (ja) * 1986-03-25 1987-10-02 Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd 魚類の成長ホルモンポリペプチドの製造法
DE3751144D1 (de) * 1986-12-31 1995-04-13 Lucky Ltd Verfahren zur herstellung eines lachswachstumshormons mittels eines kunstgens.
US5270180A (en) * 1986-12-31 1993-12-14 Lucky, Ltd. Method for the production of salmon growth hormone using a synthetic gene
US5366876A (en) * 1986-12-31 1994-11-22 Lucky Ltd. Method for production of bovine growth hormone using a synthetic gene
US4985544A (en) * 1987-08-04 1991-01-15 Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. Process for renaturing fish growth hormone
SE8901264L (sv) * 1988-04-11 1989-10-12 Phillips Petroleum Co Uttryck av laxtillvaexthormon i metylotropisk jaest av slaektet pichia
EP0387457A1 (en) * 1989-01-06 1990-09-19 Eurogentec S.A. Recombinant fish hormone proteins
JPH03240800A (ja) * 1990-02-19 1991-10-28 Nippon Oil Co Ltd 成長ホルモン様糖タンパク質
US5232708A (en) * 1990-06-20 1993-08-03 Monsanto Company Coated veterinary implants
IS3778A7 (is) * 1990-10-31 1992-05-02 Amgen Inc. Aðferð til að gefa dýrum vaxtarhormón, þar sem gefnu magni er stýrt
US5122513A (en) * 1991-03-19 1992-06-16 Monsanto Company Fish growth using bovine placental lactogen
EP0524360B1 (en) * 1991-07-22 1994-11-30 Eurogentec S.A. A somatotropin-based improved process for the farming of salmonids, particularly in seawater
FR2686606A1 (fr) * 1992-01-23 1993-07-30 Tsumura Co Nouveaux peptides, adn recombinants codant ces peptides et microorganismes transformes avec ces adn recombinants.
WO1993023552A1 (en) * 1992-05-21 1993-11-25 Government Of The United States As Represented By Secretary Department Of Health And Human Services Targeting gene expression to living tissue using jet injection
US5476779A (en) * 1992-09-30 1995-12-19 University Of Maryland At College Park DNA encoding insulin-like growth factor II isolated from rainbow trout
US5476762A (en) * 1993-12-21 1995-12-19 Konica Corporation Silver halide photographic light-sensitive material

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4342832A (en) * 1979-07-05 1982-08-03 Genentech, Inc. Method of constructing a replicable cloning vehicle having quasi-synthetic genes
JPS60214798A (ja) * 1984-04-06 1985-10-28 Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd 魚類の成長ホルモン
CA1267615A (en) * 1984-08-27 1990-04-10 Dan Hadary Method for recovering purified growth hormones from genetically engineered microorganisms

Also Published As

Publication number Publication date
AU4419585A (en) 1986-01-02
CA1272144A (en) 1990-07-31
AU575961B2 (en) 1988-08-11
EP0166444B1 (en) 1990-11-28
EP0166444A2 (en) 1986-01-02
US4849359A (en) 1989-07-18
EP0166444A3 (en) 1987-08-19
US4689402A (en) 1987-08-25
NO174717C (no) 1994-06-22
NO852568L (no) 1985-12-30

Similar Documents

Publication Publication Date Title
NO174717B (no) Fremgangsmaate for fremstilling av et fiskeveksthormon-polypeptid fra Oncorhynchus keta samt ekspresjonsvektorer til bruk ved fremgangsmaaten
AU648670B2 (en) A-C-B Proinsulin, method of manufacturing and using same, and intermediates in insulin production
CA1299507C (en) Grf analogs
CA1340830C (en) Process for production of physiologically active peptide containing cysteine residue
NO301483B1 (no) Fremgangsmåte for fremstilling av humaninsulinanaloger
EP0104920B1 (en) Dna sequences, recombinant dna molecules and processes for producing swing growth hormone-like polypeptides
NO308667B1 (no) FremgangsmÕte for fremstilling av fusjonsproteiner
NO177009B (no) Analogifremgangsmåte ved fremstilling av insulinanaloger
US5599792A (en) Bone-stimulating, non-vasoactive parathyroid hormone variants
EP0209068B1 (en) Eel growth hormone
EP0259891B1 (en) [Leu 13] motilin, DNAs coding for same and methods for producing same
FI93125C (fi) Kasvuhormonia vapauttavan tekijän sekvenssin sisältävien hybridipolypeptidien ilmentäminen E. colissa
AU643194B2 (en) Recombinant fish hormone proteins
EP0239075A2 (en) Process for producing fish growth hormone polypeptide
EP0534705A2 (en) Expression of low molecular weight recombinant polypeptides
EP0201882A2 (en) Fish prolactin polypeptide and derivatives thereof
US5420113A (en) [Leu13]motilin, DNAs coding for same and methods for producing same
JPH051800B2 (no)
RU1825376C (ru) Способ получени ДНК, кодирующей гормон роста лосос , способ конст-ни промежуточной рекомбинантной плазмидной ДНК, содержащей ДНК-фрагмент, кодирующий гормон роста лосос , дл получени плазмид pS GH1, pS GH3, pS GH9, pS GH10, pS GH14 и pS GH17, способ получени реком-ной плазмидной ДНК pS GH1B2, кодирующей гормон роста лосос , способ получени реком-ной плазмидной ДНК pSGH II С2, кодирующей гормон роста лосос , способ получени реком-ного гормона роста лосос
JPH0695938B2 (ja) 魚類の新規成長ホルモンポリペプチド
JPH05268969A (ja) 魚類の新規成長ホルモンポリペプチド
JPH051799B2 (no)
JPH062065B2 (ja) 魚類の成長ホルモン遺伝子および該遺伝子のコ−ドするポリペプチド
JPS61257999A (ja) 魚類のプロラクチンポリペプチド
NO875114L (no) Fremgangsmaate for fremstilling av et forloeperpolypeptid inneholdende et spesifikt polypeptid.

Legal Events

Date Code Title Description
MM1K Lapsed by not paying the annual fees