KR20190085439A - 3-하이드록시프로피온산 회수 방법 - Google Patents

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Abstract

본 발명은, 3-하이드록시프로피온산을 포함하는 배양액을 유기 용매로 액체-액체 추출하여 3-하이드록시프로피온산을 회수하는 단계를 포함하고, 상기 유기 용매는 물과 혼합되지 않아(Immiscible) 상분리되고, 케톤류 용매 및 지방족 알코올류 용매로 이루어진 군에서 선택된 적어도 하나인 3-하이드록시프로피온산 회수 방법에 관한 것이다.

Description

3-하이드록시프로피온산 회수 방법{METHOD FOR RECOVERING 3-HYDROXYPROPIONIC ACID}
본 발명은3-하이드록시프로피온산 생산능을 갖는 미생물을 배양한 배양액으로부터 3-하이드록시프로피온산을 회수하는 방법에 관한 것이다.
3-하이드록시프로피온산(3HP; 3-hydroxypropionic acid)은 젖산, 숙신산과 더불어 바이오매스 유래의 3대 플랫폼 화학원료로 주목을 받고 있는 물질로서, 1,3-프로판디올 (1,3-propanediol), 아크릴산 (acrylic acid), 아크릴아미드 (acrylamide), 말론산 (malonic acid), 바이오폴리머 (poly-hydroxypropionic acid)의 제조를 위한 원료로 활용이 가능하지만, 대량생산 기술의 개발이 매우 중요하다.
3-하이드록시프로피온산을 제조하기 위한 생물학적 방법으로는 위스콘신 대학의 Suthers등이 클렙시엘라 뉴모니아(Klebsiella pneumoniae) 유래의 글리세롤 디하이드라타아제(glycerol dehydratase)유전자와 대장균 혹은 사카로마이세스 세레비지에(Saccharomyces cerevisiae) 유래의 알데하이드 디하이드로게나아제(aldehyde dehydrogenase) 유전자를 과발현한 재조합 대장균을 이용하여 글리세롤로부터 3-하이드록시프로피온산을 생산하는 방법을 보고하였다 (US 6852517). 최근에는 Rathnasingh 등이 글리세롤로부터 3-하이드록시프로피온산 생산량이 향상된 새로운 재조합 대장균을 보고하였다 (Rathnasingh et al., Biotechnol. Bineng. 104:729-39. 2009).
그러나, 3-하이드록시프로피온산은 다른 유기산들과 달리 용해도 및 반응성이 높아 발효액으로부터 3-하이드록시프로피온산을 분리 정제하기가 어려우며, 특히, 3-하이드록시프로피온산(3HP)은 염형태인 Ca(3HP)2의 용해도가 매우 높아 락트산(Lactic Acid)의 분리 정제에 적용되는 침전 공정을 적용하기 어렵다. 따라서, 3-하이드록시프로피온산의 높은 용해도 및 반응성으로 인해 기존의 유기산 분리 정제 공정을 적용하기 어려운 상황이며, 아직 상용화된 3-하이드록시프로피온산의 분리 정제 공정은 없으므로, 미생물 발효 기반 3-하이드록시프로피온산을 통한 바이오 아크릴산, 아크릴아마이드, 말론산 등의 생산 공정의 상업화를 위해서는 이에 대한 기술 개발이 필요한 상황이다.
본 발명은 기존 분리 정제 공정과 달리 고온 공정 및 원심분리 공정 등의 고 에너지 소모 공정이 불필요하며 경제적이고, 3-하이드록시프로피온산을 높은 수율로 제공하는 3-하이드록시프로피온산 회수 방법을 제공하기 위한 것이다.
발명의 일 구현예에 따르면, 3-하이드록시프로피온산을 포함하는 배양액을 유기 용매로 액체-액체 추출하여 3-하이드록시프로피온산을 회수하는 단계를 포함하고, 상기 유기 용매는 물과 혼합되지 않아(Immiscible) 상분리되고, 케톤류 용매 및 지방족 알코올류 용매로 이루어진 군에서 선택된 적어도 하나인 3-하이드록시프로피온산 회수 방법이 제공될 수 있다.
이하 발명의 구체적인 구현예에 따른 3-하이드록시프로피온산 회수 방법에 관하여 보다 상세하게 설명하기로 한다.
본 발명자들은, 물과 혼합되지 않아 상분리 가능한 케톤류 용매 및/또는 지방족 알코올류 용매를 이용한 액체-액체 추출 공정을 통해서, 3-하이드록시프로피온산을 포함하는 배양액으로부터 3-하이드록시프로피온산을 회수하는 경우, 기존 분리 정제 공정과 달리 고 에너지 소모 공정이 불필요하면서도 높은 수율로 3-하이드록시프로피온산을 회수할 수 있다는 점을 실험을 통해서 확인하고 발명을 완성하였다.
구체적으로, 3-하이드록시프로피온산은 하이드록시기(-OH) 및 카르복실기(-COOH)를 가지며 극성을 띠기 때문에, 배양액으로부터 3-하이드록시프로피온산을 회수 효율을 높이기 위해서는 물과 혼합되지 않아 상분리되면서도 극성이 높은 유기 용매를 사용하는 것이 바람직하다.
상기 유기 용매는, 예를 들어, 1.5D 내지 3.0D, 1.55D 내지 2.9D, 또는 1.6D 내지 2.8D의 쌍극자 모먼트(Dipole Moment)를 갖고, 3.5 내지 5.0, 3.6 내지 4.9, 또는 3.7 내지 4.8의 극성도(Polarity Index)를 갖는 케톤류/지방족 알코올류 유기 용매를 사용할 수 있다. 이러한 유기 용매를 사용하는 경우 상기 배양액으로부터 3-하이드록시프로피온산을 회수하는 액체-액체 추출 공정을 수행하면 저에너지 및 고수율로 3-하이드록시프로피온산을 회수할 수 있다.
상기 유기 용매와 물의 용해도 파라미터 차이(△δ) 는 20 내지 40일 수 있다. 상기 유기 용매와 물의 용해도 파라미터 차이가 지나지게 작으면 액체-액체 추출 공정 시 유기 용매와 물이 상분리되지 않을 수 있으며, 상기 유기 용매와 물의 용해도 파라미터 차이가 지나지게 크면 유기 용매로 3-하이드록시프로피온산이 용해되지 않을 수 있다.
상기 용해도 파라미터 차이(△δ)는 하기 수학식 1에 의해 계산될 수 있다.
[수학식 1]
△δ = ㅣδ1-δ2 ㅣ= (△Hm/(Vmφ1φ2))1/2
상기 수학식 1에서, △Hm 는 혼합 엔탈피이고, Vm은 혼합물 체적이고, φ1은 물 또는 3HP의 체적분율(volume fraction) 이고, φ2는 유기 용매의 체적분율이고, δ1는 물 또는 3HP의 용해도 파라미터이고, δ2는 유기 용매의 용해도 파라미터이다.
또한, 상기 용해도 파라미터 δ 는 한센 용해도 공간에 따른 것일 수 있으며, 이는 파라미터 문헌 ["Polymer Handbook", 3rd Edition, Chapter VII, pp. 519-559] 중 Eric　A.　Grulke 의 논문 "Solubility parameter values" 에서 다음의 관계식으로 정의되어 있다:
δ = (δ2 = δD 2 + δP 2 +δH 2)1/2
상기 관계식 중 상기 δD 는 분자 충격 동안 유도되는 쌍극자의 형성으로부터 유도되는 런던 분산력을 특징짓는 것으로, 5 내지 20, 10 내지 18, 또는 15 내지 17일 수 있다. 상기 δP 는 영구 쌍극자 사이의 디바이 상호작용력을 특징짓는 것으로, 1 내지 20, 5 내지 15, 또는 5 내지 10일 수 있다. 상기 δH 는 특정 상호작용력 (예컨대 수소 결합, 산/염기, 공여체/수용체 등)을 특징짓는 것으로, 2 내지 50, 5 내지 30, 또는 5 내지 20일 수 있다.
한편, 한센 3 차원 용해도 공간에서의 용매의 정의는 문헌 [C.M.　Hansen: "The three-dimensional solubility parameters", J. Paint Technol. 39, 105 (1967)] 에 기재되어 있다.
상기 유기 용매의 부피는 상기 3-하이드록시프로피온산을 포함하는 배양액 부피의 2배 이상, 3배 내지 15배, 또는 4배 내지 13배일 수 있다. 상기 유기 용매의 부피가 2배 미만이면 3-하이드록시프로피온산의 추출 수율이 낮아 용액-용액 추출 공정이 다수 반복 진행되어 비경제적일 수 있다. 한편, 상기 유기 용매는 극성 용매이므로 물과 상분리가 가능하더라도 일정 부분 섞이는데, 상기 유기 용매의 부피가 지나치게 높으면, 예를 들어, 배양액 부피의 15배 초과하면 물과 상분리가 일어나지 않고 배양액과 섞여 3-하이드록시프로피온산를 추출할 수 없는 문제점이 발생할 수 있다.
상기 유기 용매는 이로써 한정하는 것은 아니나, 예를 들어, 용매는 n-부탄올, 메틸에틸케톤 또는 이들의 혼합물일 수 있다. 이를 통해 추출공정을 수행하는 경우 고수율의 메틸에틸케톤은 3-하이드록시프로피온산을 회수할 수 있다. 특히, 메틸에틸케톤은 극성이 매우 높으면서도 물과 상분리가 가능하여 3-하이드록시프로피온산의 추출 수율이 매우 높으며, 또한, 끓는점도 낮아 회수가 용이한 장점이 있다.
상기 일 실시예에 따른 3-하이드록시프로피온산 회수 방법은, 액체-액체 추출 공정 전에, 3-하이드록시프로피온산 생산능을 가진 미생물을 배양액에서 배양하여 3-하이드록시프로피온산을 생산할 수 있다.
상기 3-하이드록시프로피온산 생산능을 가진 미생물은 E.coli 등이 3-하이드록시프로피오네이트로의 발효 생산을 위한 효소의 유전자로 형질전환된 것일 수 있다.
구체적으로, 상기 3-하이드록시프로피온산 생산능을 가진 미생물에 형질전환되어 포함된 효소의 유전자는 이로써 한정하는 것은 아니나, 예를 들어, 비시날 데하이드라테이즈(vicinal dehydratase), 알데하이드 데하이드로게네이즈(aldehyde dehydrogenase, ADH), 1, 3-프로판디올 옥시도뉴클레오리덕테이즈(1,3-propanediol oxydonucleoreductase), 글리세롤 데하이드로게네이즈(glycerol-3-phosphate dehydrogenase), 3-히드록시프로피온알데히드 데히드로게나제(3-hydroxypropionaldehyde hydrogenase), 글리세롤-3-포스파테이즈(glycerol-3-phosphatase) 및 글루코오스 데하이드로게네이즈(glucose dehydrogenase, GDH)로 이루어진 군으로부터 선택되는 1종 이상일 수 있다.
상기 글리세롤 데하이드로게네이즈는 글리세롤을 3-히드록시프로피온알데히드로 전환시키는 효소를 의미하며, 글리세롤 데하이드라타제(Glycerol dehydratase) 또는 디올 데하이드라타제(Diol dehydratases) 등이 포함될 수 있다.
한편, 상기 3-히드록시프로피온알데히드는 상기 3-히드록시프로피온알데히드 데히드로게나제를 통해 3-히드록시프로피온산으로 전활될 수 있다. 상기 3-히드록시프로피온알데히드 데히드로게나제에는 3-히드록시프로피온알데히드를 3-히드록시프로피온산으로 전환시키는 활성을 가지는 효소라면 어느 효소라도 포함할 수 있으며, 예를 들어, 조효소로서 NAD+ 또는 NADP+를 사용할 수 있다. 나아가, 상기 미생물은 3-하이드록시프로피온알데히드 데히드로게나제를 암호화하는 폴리뉴클레오타이드를 추가로 포함할 수 있다.
또한, 상기 배양액은 탄소원으로 글루코오스, 슈크로오스, 락토오스, 갈락토오스, 말토오스, 자일로오스, 글리세롤, 프럭토오스, 몰라세, 전분, 셀룰로오스 및 슈가 케인(sugar cane)으로 구성된 군에서 선택되는 1 이상을 포함할 수 있다.
본 발명에 따르면, 고온 공정 및 원심분리 공정 등의 고 에너지 소모 공정이 불필요하며, 단순한 교반을 통한 상분리 후 분리 정제가 가능하다는 점에서 경제적이고, 높은 수율로 3-하이드록시프로피온산을 회수할 수 있는 3-하이드록시프로피온산 회수 방법이 제공될 수 있다.
도 1은 실시예 1 내지 7, 참고예 1 내지 3, 및 비교예 1 내지 15의 추출 수율 결과값을 그래프로 나타낸 것이다.
도 2는 실시예 8 내지 16, 참고예 4, 및 비교예 16 내지 30의 추출 수율 결과값을 그래프로 나타낸 것이다.
발명을 하기의 실시예에서 보다 상세하게 설명한다. 단, 하기의 실시예는 본 발명을 예시하는 것일 뿐, 본 발명의 내용이 하기의 실시예에 의하여 한정되는 것은 아니다.
실시예 1
증류수에 용해된 3-하이드록시프로피온산(3HP) 용액(농도: 53.29g/L) 1mL를 바이알에 담고, 추출 용매인 n-부탄올을 바이알에 공급하였다. 이때, n-부탄올은 3HP 용액 부피와 동일한 부피로 공급했다. 이후, 상온에서 바이알을 볼텍싱(Vortexing)하고 진탕 배양기(Shaking Incubator)에서 2시간 교반하여 용액-용액 추출 공정을 수행하였다. 이후, 상분리가 된 것을 확인하고, 각각 상층과 하층을 HPLC(High Performance Liquid Chromatography)를 이용하여 분석하고, 유기 용매층에 3HP가 추출된 추출 수율을 계산한 후 그 결과를 하기 표 2에 나타냈다. 이때, HPLC의 분석 조건은 하기 표 1에 기재된 바와 같다.
구분 특질(Quality)
검출기 RI / UV detector
컬럼 Bio-Rad Aminex HPX-87H Ion Exclusion Column 300 mmⅹ7.8 mm
이동상(Mobile Phase) 0.5 mM H2SO4
유량(Flow Rate) 0.4 mL/min
실행 시간(Run Time) 35 min
컬럼 온도 35℃
검출기 온도 35℃
주입 부피(Injection Volume) 10 μL
실시예 2 내지 7, 참고예 1 내지 3, 및 비교예 1 내지 15
추출 용매의 종류 및 추출 용매의 부피를 하기 표 2에 기재된 추출 용매 및 추출 용매의 부피로 사용했다는 점을 제외하고는, 실시예 1과 동일한 방법으로 3HP용액으로부터 3HP를 용액-용액 추출하고, HPLC 분석한 후 그 결과를 이용해 3HP의 추출 수율을 계산하여 하기 표 2에 나타냈다.
이때, 상기 실시예 및 비교예에서 사용한 추출 용매의 물성은 하기 표 3에 나타내었다. 한편, 도 1은 실시예 1 내지 7, 참고예 1 내지 3, 및 비교예 1 내지 15의 추출 수율 결과값을 그래프로 나타낸 것이다.
구분 추출 용매 3HP 용액의 부피에 대한 추출 용매의 부피 추출 수율
실시예 1 n-부탄올 1배 41.78%
실시예 2 2배 65.87%
실시예 3 3배 81.99%
참고예 1 4배 -
참고예 2 5배 -
참고예 3 메틸에틸케톤 1배 20.62%
실시예 4 2배 42.40%
실시예 5 3배 59.44%
실시예 6 4배 71.68%
실시예 7 5배 80.90%
비교예 1 에틸아세테이트 1배 8.40%
비교예 2 2배 16.27%
비교예 3 3배 23.08%
비교예 4 4배 29.50%
비교예 5 5배 35.49%
비교예 6 메틸 tert-부틸 에테르 1배 4.16%
비교예 7 2배 7.56%
비교예 8 3배 11.53%
비교예 9 4배 14.42%
비교예 10 5배 17.31%
비교예 11 디에틸 에스터 1배 0.05%
비교예 12 2배 6.71%
비교예 13 3배 5.80%
비교예 14 4배 8.54%
비교예 15 5배 11.42%
에틸아세테이트 n-부탄올 메틸에틸케톤 메틸 tert-부틸 에테르 디에틸 에테르 물
중량평균 분자량 88.11 74.12 72.11 88.15 74.12 18.02
용해도 (g/L) 83
(at 20℃)		 73
(at 25℃)		 255
(at 20℃)		 42
(at 20℃)		 69
(at 20℃)		 -
물과 혼화성 여부(Miscibility with H2O) 물과 상분리 (Immiscible) Immiscible Immiscible Immiscible Immiscible -
δTotal 18.1 23.2 19.1 7.4 15.8 47.8
δD 15.8 16.0 16.0 6.7 14.5 15.6
δP 5.3 5.7 9.0 1.7 2.9 16.0
δH 7.2 15.8 5.1 2.5 4.6 42.3
끓는점 (℃) 77.1 117.7 79.6 55.2 34.6 100.0
밀도 (g/cm3) 0.90 0.81 0.81 0.74 0.71 1.00
쌍극자 모먼트 (Dipole Moment) 1.78D 1.66D 2.76D - 1.15D 1.85D
극성도(Polarity Index) 4.4 4.0 4.7 2.5 2.8 10.2
상기 표 2 에 따르면, 실시예 1 내지 7은, 비교예 1 내지 15에 비하여, 3HP의 추출 수율이 현저히 높다는 점을 확인했다. 한편, 참고예 1 및 2의 경우 부탄올이 물과 상분리가 되지 않아 3HP를 회수할 수 없음을 확인했고, 참고예 3을 통해 메틸에틸케톤이 3HP와 동일한 부피로 사용하는 경우 높은 추출 수율의 효과가 나타나지 않음을 확인했다.
실시예 8
발효를 위한 균주로서 GDH(글루코오스 데하이드로게네이즈) 및 ADH(알데하이드 데하이드로게네이즈) 효소 유전자를 갖는 E. coli W3110를 사용하고, 배지로는 M9를 사용하고, 글리세롤 70g/L를 기질로 사용하여 발효시켜 3HP를 생산하였다. 이후, 상기 발효를 통해 생산된 3HP 발효 산물을 원심분리하여 미생물 세포를 제거한 배양액을 준비했다.
상기 3HP 를 포함하는 배양액 1mL를 바이알에 담고, 추출 용매인 n-부탄올을 바이알에 공급하였다. 이때, n-부탄올은 3HP 용액 부피와 동일한 부피로 공급했다. 이후, 상온에서 바이알을 볼텍싱(Vortexing)하고 진탕 배양기(Shaking Incubator)에서 2시간 교반하여 용액-용액 추출 공정을 수행하였다. 이후, 상분리가 된 것을 확인하고, 각각 상층과 하층을 HPLC(High Performance Liquid Chromatography)를 이용하여 분석하고, 유기 용매층에 3HP가 추출된 추출 수율을 계산한 후 그 결과를 하기 표 4에 나타냈다. 이때, HPLC의 분석 조건은 상기 표 1에 기재된 바와 같다.
실시예 9 내지 16, 참고예 4, 및 비교예 16 내지 30
추출 용매의 종류 및 추출 용매의 부피를 하기 표 4에 기재된 추출 용매 및 추출 용매의 부피로 사용했다는 점을 제외하고는, 실시예 8과 동일한 방법으로 3HP용액으로부터 3HP를 용액-용액 추출하고, HPLC 분석한 후 그 결과를 이용해 3HP의 추출 수율을 계산하여 하기 표 4에 나타냈다.
이때, 상기 실시예 및 비교예에서 사용한 추출 용매의 물성은 상기 표 3과 같으며, 도2는 실시예 8 내지 16, 참고예 4, 및 비교예 16 내지 30의 추출 수율 결과값을 그래프로 나타낸 것이다.
구 분 추출 용매 3HP 용액의 부피에 대한 추출 용매의 부피 추출 수율
실시예 8 n-부탄올 1배 41.61
실시예 9 2배 41.61%
실시예 10 3배 52.64%
실시예 11 4배 60.36%
실시예 12 5배 69.26%
참고예 4 메틸에틸케톤 1배 14.42%
실시예 13 2배 27.58%
실시예 14 3배 35.93%
실시예 15 4배 42.17%
실시예 16 5배 46.99%
비교예 16 에틸아세테이트 1배 5.39%
비교예 17 2배 10.29%
비교예 18 3배 14.50%
비교예 19 4배 18.63%
비교예 20 5배 22.46%
비교예 21 메틸 tert-부틸 에테르 1배 2.79%
비교예 22 2배 5.39%
비교예 23 3배 8.12%
비교예 24 4배 10.05%
비교예 25 5배 12.08%
비교예 26 디에틸 에테르 1배 1.79%
비교예 27 2배 3.39%
비교예 28 3배 5.03%
비교예 29 4배 6.76%
비교예 30 5배 8.29%
상기 표 4에 따르면, 실시예 8 내지 16은, 비교예 16 내지 30에 비하여 3HP의 추출 수율이 현저히 높다는 점을 확인했다. 한편, 실시예 11 및 12는 부피가 높음에도 상기 표 2의 참고예 1 및 2와 달리 배양액과 상분리가 가능하여 3HP를 회수할 수 있음을 확인했고, 참고예 4를 통해 메틸에틸케톤이 3HP와 동일한 부피로 사용하는 경우 높은 추출 수율의 효과가 나타나지 않음을 확인했다.

Claims (9)

  1. 3-하이드록시프로피온산을 포함하는 배양액을 유기 용매로 액체-액체 추출하여 3-하이드록시프로피온산을 회수하는 단계를 포함하고,
    상기 유기 용매는 물과 혼합되지 않아(Immiscible) 상분리되고, 케톤류 용매 및 지방족 알코올류 용매로 이루어진 군에서 선택된 적어도 하나인, 3-하이드록시프로피온산 회수 방법.
  2. 제1항에 있어서,
    상기 유기 용매는 1.5D 내지 3.0D의 쌍극자 모먼트(Dipole Moment) 및 3.5 내지 5.0의 극성도(Polarity Index)를 갖는, 3-하이드록시프로피온산 회수 방법.
  3. 제1항에 있어서,
    상기 유기 용매와 물의 용해도 파라미터 차이(△δ) 는 20 내지 40이고,
    상기 용해도 파라미터 차이(△δ)는 하기 수학식 1에 의해 계산되는, 3-하이드록시프로피온산 회수 방법:
    [수학식 1]
    △δ = ㅣδ1-δ2 ㅣ= (△Hm/(Vmφ1φ2))1/2
    상기 수학식 1에서, △Hm 는 혼합 엔탈피이고, Vm은 혼합물 체적이고, φ1은 물 또는 3HP의 체적분율(volume fraction) 이고, φ2는 유기 용매의 체적분율이고, δ1는 물 또는 3HP의 용해도 파라미터이고, δ2는 유기 용매의 용해도 파라미터이다.
  4. 제1항에 있어서,
    상기 유기 용매는, 한센 용해도 공간에서의 용해도 파라미터가 δD는 5 내지20이고, δH는 1 내지 20이고, δP는 2 내지 50인, 3-하이드록시프로피온산 회수 방법.
  5. 제1항에 있어서,
    상기 유기 용매의 부피는 상기 배양액 부피의 2배 이상인, 3-하이드록시프로피온산 회수 방법.
  6. 제1항에 있어서,
    상기 유기 용매는 n-부탄올, 메틸에틸케톤 또는 이들의 혼합물인, 3-하이드록시프로피온산 회수 방법.
  7. 제1항에 있어서,
    상기 3-하이드록시프로피온산을 회수하는 단계 전에,
    3-하이드록시프로피온산 생산능을 가진 미생물을 배양액에서 배양하여 3-하이드록시프로피온산를 생산하는 단계를 더 포함하는, 3-하이드록시프로피온산 회수 방법.
  8. 제7항에 있어서,
    상기 3-하이드록시프로피온산 생산능을 가진 미생물은, 비시날 데하이드라테이즈(vicinal dehydratase), 알데하이드 데하이드로게네이즈(aldehyde dehydrogenase, ADH), 1, 3-프로판디올 옥시도뉴클레오리덕테이즈(1,3-propanediol oxydonucleoreductase), 글리세롤 데하이드로게네이즈(glycerol-3-phosphate dehydrogenase), 3-히드록시프로피온알데히드 데히드로게나제(3-hydroxypropionaldehyde hydrogenase), 글리세롤-3-포스파테이즈(glycerol-3-phosphatase) 및 글루코오스 데하이드로게네이즈(glucose dehydrogenase, GDH)로 이루어진 군으로부터 선택되는 1종 이상의 효소의 유전자를 포함하는, 3-하이드록시프로피온산 회수 방법.
  9. 제7항에 있어서,
    상기 배양액은 글루코오스, 슈크로오스, 락토오스, 갈락토오스, 말토오스, 자일로오스, 글리세롤, 프럭토오스, 몰라세, 전분, 셀룰로오스 및 슈가 케인(sugar cane)으로 구성된 군에서 선택되는 1 이상의 탄소원을 포함하는, 3-하이드록시프로피온산 회수 방법.
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