KR20180087290A

KR20180087290A - 인플루엔자 바이러스 감염에서 사용하기 위한 복소환식 인돌

Info

Publication number: KR20180087290A
Application number: KR1020187016921A
Authority: KR
Inventors: 팀 휴고 마리아 욘커스; 고완 데이비드 크레이그 맥; 제롬 에밀 조르쥬 길레몽; 루드빅 파울 쿠이만스; 베르너 콘스탄트 요한 엠브레흐츠; 크리스토프 프란시스 로버트 네스토르 뷕; 벤디 미아 알버트 발레만스; 피에르 쟝-마리 베르나르 라보이송
Original assignee: 얀센 사이언시즈 아일랜드 유씨
Priority date: 2015-11-27
Filing date: 2016-11-25
Publication date: 2018-08-01
Also published as: CA3005514A1; JP2019501879A; ES2882671T3; US10626108B2; EP3380467A1; US20180258074A1; WO2017089518A1; AU2016359907B2; AU2016359907A1; MA43298A; HUE055200T2; CN108290869B; JP6903658B2; DK3380467T3; HRP20211223T1; SI3380467T1; EP3380467B1; LT3380467T; CN108290869A; EA201891278A1

Abstract

본 발명은 바이러스성 인플루엔자 감염의 치료 또는 대비에 사용될 수 있는 하기 화학식 I:
[화학식 I]

Description

인플루엔자 바이러스 감염에서 사용하기 위한 복소환식 인돌

인플루엔자는 인간 집단에서 높은 발병률로 잦은 대규모 이환율 및 사망률을 초래하는 심각한 공중 보건 문제이다. 이는 급성 열병(acute febrile illness)을 야기하는 고도로 접촉전염성인 공기매개 질환(highly contagious airborne disease)이다. 전신 증상은 중증도에 있어서 경미한 피로부터 호흡 부전 및 사망에 이르기까지 다양하다. WHO에 따르면, 매년 발생되는 유행병의 평균 전세계 부담은 약 10억 건 정도의 사례일 수 있으며, 3백만 내지 5백만 건의 사례는 심각한 병(severe illness)이고, 300,000 내지 500,000건의 사망건수가 해마다 발생되고 있다. 해마다, 인플루엔자 바이러스는 인간에서 순환하여, 전형적으로 모든 연령 군 내에 있는 인구의 5 내지 20%에 영향을 주는데, 이 숫자는 대유행기에는 최대 30%까지 상승한다. 심각한 병 및 사망의 비율은 65세 초과의 사람, 2세 미만의 어린이, 및 인플루엔자에 의한 합병증에 대한 위험의 증가에 놓이게 하는 의학적 상태, 예컨대 만성 심장, 폐, 신장, 간, 혈액 또는 대사성 질병, 또는 약화된 면역계를 갖는 임의의 연령의 사람 사이에서 최고이다. 사망이 어린이 사이에서 드물기는 하지만, 입원율은 동반이환(co-morbid) 상태의 존재 또는 부재에 따라, 5세 미만의 어린이의 경우 100,000건당 대략 100 내지 500건의 범위이다. 24개월 미만의 어린이 사이에서의 입원율은 65세 초과의 사람 사이에서 보고된 입원율과 비견된다.

미국에서, 매년 발생되는 인플루엔자 유행병은 대략 3000만 외래환자 내원을 초래하며, 그 결과 해마다 100억 달러의 의료 비용이 들게 된다. 병 및 사망으로 인한 상실 수익액(lost earning)은 해마다 150억 달러를 초과하는 비용을 나타내고, 매년 발생되는 인플루엔자 유행병의 미국의 경제적 부담의 총액은 850억 달러를 초과하기에 이른다.

인플루엔자를 야기하는 병원체는, 오르토믹소바이러스과(family Orthomyxoviridae)에 속하는, 네거티브 센스 단일-가닥 RNA 바이러스이다. A형, B형 및 C형의 3가지 유형의 인플루엔자 바이러스가 있다. A형 인플루엔자 바이러스는 가장 일반적인 형태로, 이는 포유동물 및 조류에서 확산될 수 있다. A형 인플루엔자의 아형은 표면 단백질인 혈구응집소(H) 및 뉴라미니다아제(N)의 유형에 따라 명명된다. 18가지의 상이한 혈구응집소 및 11가지의 알려진 뉴라미니다아제가 있다. 인간에서 발견되는 현재의 계절성 인플루엔자 바이러스는 주로 H1N1 및 H3N2 아형이다. B형 인플루엔자 바이러스는 통상 단지 인간에게서 발견된다. 이것은 아형으로 세분되지 않지만, 상이한 주(strain)로 추가로 나누어질 수 있다. 순환성 인플루엔자 바이러스는 매년 고도로 가변적이며, A형 및 B형 인플루엔자 둘 모두 전세계에 걸쳐 계절성 유행병을 야기한다. C형 인플루엔자 바이러스는 훨씬 더 경미한 증상을 나타내며, 이는 유행병을 야기하지 않는다.

3가지 모든 유형의 바이러스는 유사한 게놈 구조를 갖는다. 게놈은 유형에 따라 9 내지 11가지의 단백질을 코딩하는 8개의 절편을 포함한다. A형 인플루엔자는 11가지의 단백질을 코딩하는데, 이는 표면 단백질(혈구응집소(HA) 및 뉴라미니다아제(NA)), 폴리머라아제 복합체(PA, PB1 및 PB2), 핵단백질(NP), 막 단백질(M1 및 M2), 및 기타 단백질(NS1, NS2, NEP)을 포함한다. 3가지 인플루엔자 바이러스 유형 중에서, A형 인플루엔자가 최고의 돌연변이율을 갖는다. B형 인플루엔자는 A형보다는 더 느리게, 그러나 C형보다는 더 빠르게 진화된다. 절편화된 게놈은 유전자가 상이한 주들 사이에서 교환될 수 있게 하며, 이는 인플루엔자 바이러스의 신종 변이체를 발생시킨다.

인플루엔자 바이러스는 감염된 개체 또는 바이러스-오염된 물질과의 직접 접촉에 의해 인간들 사이에서 전염될 수 있다. 사람들은 또한 공기 중에 떠다니는 바이러스 비말(droplet)의 흡입에 의해 감염될 수 있다. 상기 비말은 기침, 재채기에 의해 또는 감염된 개체가 말함에 의해 발생된다. 계절성 인플루엔자는 고열, 기침(통상 마른 기침), 두통, 근육 및 관절 통증, 심각한 불쾌감(찌뿌둥한 느낌), 인후염 및 콧물의 갑작스러운 발생을 특징으로 한다. 기침은 심각할 수 있으며 2주 이상 지속될 수 있다. 대부분의 사람들은 의학적 치료를 필요로 하지 않고서 1주 이내에 열 및 기타 증상으로부터 회복된다. 그러나, 인플루엔자는, 특히 상기 언급된 바와 같은 고위험에 처한 사람들에서 심각한 병 또는 사망을 야기할 수 있다. 잠복기(incubation period)로 알려진, 감염으로부터 병에 이르기까지의 시간은 약 2일이다.

병으로부터의 심각한 결과 및/또는 질환을 예방하는 가장 효과적인 방법은 예방 접종(vaccination)이다. 안전하고 효과적인 백신이 입수가능하고, 60년 넘게 사용되어 왔다. 건강한 성인들 사이에서, 인플루엔자 백신은 합리적인 보호를 제공할 수 있다. 그러나, 예방 접종에는 몇몇 제한이 따른다. 먼저, 인플루엔자 백신은 고령자들 사이에서 병을 예방하는 데 덜 효과적일 수 있고, 단지 질환의 중증도 및 합병증 및 사망의 발생률을 감소시킬 수 있을 뿐이다. 게다가, 인플루엔자의 예방 접종은 순환성 바이러스가 백신 바이러스와 잘 매칭될 때 가장 효과적이며, 대체로 예방 접종의 성공은 그 계절의 가장 우세한 바이러스 유형의 우수한 예측에 의존한다. 현재의 인플루엔자 백신에 대한 백신-유도 면역 반응의 단명 성질과 커플링된, 항원 소변이(antigenic drift)를 통한 인플루엔자 바이러스주의 신속하고 계속적인 진화는, 계절적으로 적절한 주를 이용한 예방 접종이 예방을 위해 해마다 필요함을 의미한다.

인플루엔자의 현재의 치료에서는 직접적 항바이러스 약물, 또는 인플루엔자-유도 증상을 풀어주는 의약 중 어느 하나가 사용된다. 시장에서 입수가능한 인플루엔자용 항바이러스 약물의 하기 두 부류가 있다: 뉴라미니다아제 억제제 및 M2 채널 억제제. 뉴라미니다아제 억제제인 오셀타미비르(oseltamivir) 또는 자나미비르(zanamivir)는 인플루엔자의 예방 및 치료용으로 권장되는 일차 항바이러스제이다. 이들은 A형 및 B형 인플루엔자 바이러스 둘 모두에 대해 효과적이다. 이들 항바이러스 약물에 대한 내성의 발생이 계절성 인플루엔자의 치료 동안에, 그리고 산발성 오셀타미비르-내성 2009 H1N1 바이러스에서 확인되었지만, 공중 보건 영향은 지금까지 제한되어 있다. M2 채널 억제제, 예컨대 아만타딘 및 리만타딘(아만타단)은 A형 인플루엔자 주에 대해서는 활성이지만, B형 인플루엔자 주에 대해서는 활성이 아니다. 순환성 A형 인플루엔자 바이러스 사이에서의 아만타단 내성은 2003년-2004년 동안 시작되어 전 세계적으로 급속하게 증가되었다. 따라서, 아만타딘 및 리만타딘은 현재의 순환성 A형 인플루엔자 바이러스주의 항바이러스제 치료 또는 화학적 예방용으로 권장되지 않는다.

2009년에, 신종 돼지(swine) H1N1 주는 인간, 피그(pig), 및 조류의 H1N1 바이러스로부터의 유전자의 재편성(reassortment)의 결과로서 예기치 않은 인플루엔자 대유행(pandemic)을 야기하였다. 이러한 과거의 대유행은, 잠재적으로 인간간의 전파에 맞추어질 수 있는, 중국에서 단리되고 40% 사망률을 갖는 중증 호흡기 질환과 연관된 조류 기원의 신종 재편성체인 H7N9 바이러스의 최근의 출현 및 고병원성 조류 H5N1 주의 계속 진행 중인 순환과 함께, 신종 인플루엔자 주에 대한 전세계 인구의 취약성을 강조하였다. 여전히 예방 접종이 인플루엔자 감염을 제어하기 위한 주요한 예방적 전략이지만, 새로운 백신을 이용할 수 있게 되기 전까지 그 기간을 이어주고 심각한 인플루엔자 사례를 치료할 뿐만 아니라, 바이러스 내성의 문제에 대응하기 위하여, 항-인플루엔자 약물의 더 넓은 선택이 요구되고 있다. 따라서, 새로운 인플루엔자 항바이러스제의 개발은 다시 최우선 순위 및 충족되지 않은 의학적 필요성이 되었다.

본 발명은 바이러스성 인플루엔자 감염의 치료 또는 대비에 사용될 수 있는 하기 화학식 I의 화합물, 이의 입체이성질체 형태, 제약상 허용가능한 염, 용매화물 또는 다형체에 관한 것이다:

[화학식 I]

여기서,

X는 N이며, Y는 N이거나; 또는

X는 -F로 치환된 C이며, Y는 -F, -Cl, -CH₃, 또는 -CN으로 치환된 C이고;

Z는 N이며, Q는 -C-CH₃, -C-COOH, -C-CF_3, -CH-시클로프로필, -CH₂R₁,

또는 -CONR₁R₁로부터 선택되며, M은 CF이거나 (여기서, R₁은 독립적으로 수소,

할로겐, 시아노, 옥소, 알킬, 히드록실, 아미노로부터 선택됨); 또는

Z는 N이며, Q는 N이며, M은 CH이거나; 또는

Z는 C이며, Q는 N이며, M은 CH이고;

R은 카르복실산으로 치환된 C_3-8시클로알킬, 또는 C_1-6알킬 또는 -COOH로 선택적으로 치환된 -N-C(O)-C_3-6-복소환이다.

본 발명에 따른 가장 바람직한 화합물 중 하나는 하기 구조식을 갖는다:

또한, 본 발명의 일부는, 화학식 I의 화합물 또는 이의 입체이성질체 형태, 제약상 허용가능한 염, 용매화물 또는 다형체를 하나 이상의 제약상 허용가능한 부형제, 희석제 또는 담체와 함께 포함하는 제약 조성물이다.

본 제약 조성물은 또한 추가 치료제, 예컨대 또 다른 항바이러스제 또는 인플루엔자 백신, 또는 이들 둘 모두를 포함할 수 있다.

또한, 약제로서 사용하기 위한, 화학식 I의 화합물 또는 이의 입체이성질체 형태, 제약상 허용가능한 염, 용매화물 또는 다형체, 또는 제약 조성물이 본 발명에 속한다.

추가적으로, 본 발명은 인플루엔자의 치료에 사용하기 위한, 화학식 I의 화합물 또는 이의 입체이성질체 형태, 제약상 허용가능한 염, 용매화물 또는 다형체, 또는 제약 조성물에 관한 것이다.

상기 용도는 또한 추가 치료제의 공동 투여를 포함할 수 있으며, 여기서, 상기 추가 치료제는 항바이러스제 또는 인플루엔자 백신, 또는 이들 둘 모두로부터 선택된다.

용어 “알킬”은 명시된 수의 탄소 원자를 함유하는 직쇄 또는 분지쇄 포화 지방족 탄화수소를 나타낸다.

용어 "시클로알킬"은 명시된 수의 탄소 원자를 함유하는 탄소환식 고리를 나타낸다.

용어 "복소환"은 N, O 또는 S로부터, 특히 N 및 O로부터 선택되는 하나 이상의 헤테로원자를 포함하는 포화 또는 부분 포화된 분자를 나타낸다. 상기 복소환은 4, 5, 6 또는 7개의 고리 원자를 가질 수 있다.

화학식 I의 화합물의 제약상 허용가능한 염은 이의 산 부가염 및 염기 염을 포함한다. 적절한 산 부가염은 비독성 염을 형성하는 산으로부터 형성된다. 적절한 염기 염은 비독성 염을 형성하는 염기로부터 형성된다.

본 발명의 화합물은 또한 비용매화 형태 및 용매화 형태로 존재할 수 있다. 본원에서 용어 “용매화물”은 본 발명의 화합물과 하나 이상의 제약상 허용가능한 용매 분자, 예를 들어, 에탄올을 포함하는 분자 복합체를 기술하는 데 사용된다.

용어 “다형체”는, 하나 초과의 형태 또는 결정 구조로 존재하는 본 발명의 화합물의 능력을 나타낸다.

본 발명의 화합물은 결정성 또는 무정형 생성물로서 투여될 수 있다. 본 발명의 화합물은 침전, 결정화, 동결 건조, 분무 건조 또는 증발 건조와 같은 방법에 의해, 예를 들어 고체 플러그, 분말 또는 필름으로서 얻어질 수 있다. 본 발명의 화합물은 단독으로 투여될 수 있거나, 본 발명의 하나 이상의 다른 화합물과 조합되어 또는 하나 이상의 다른 약물과 조합되어 투여될 수 있다. 일반적으로 본 발명의 화합물은 하나 이상의 제약상 허용가능한 부형제와 결부되어 제형으로서 투여될 것이다. 본원에서 용어 “부형제”는 본 발명의 화합물(들) 이외의 임의의 성분을 기술하는 데 사용된다. 부형제의 선택은 주로 특정 투여 방식, 용해도와 안정성에 대한 부형제의 영향, 및 투여 형태의 성질과 같은 요인에 의존한다.

본 발명의 화합물 또는 이의 임의의 하위군(subgroup)은 투여 목적에 따라 다양한 제약 형태로 제형화될 수 있다. 적절한 조성물로는, 전신 투여 약물용으로 통상적으로 사용되는 모든 조성물이 언급될 수 있다. 본 발명의 제약 조성물을 제조하기 위하여, 활성 성분으로서의 특정 화합물 (선택적으로 부가염 형태)의 유효량이 제약상 허용가능한 담체와의 친밀한 혼합물로 조합되며, 이러한 담체는 투여에 요망되는 제제의 형태에 따라 매우 다양한 형태를 취할 수 있다. 이러한 제약 조성물은 바람직하게는 예를 들어 경구 투여, 직장 투여 또는 경피 투여에 적합한 일원화 투여 형태이다. 예를 들어, 조성물을 경구 투여 형태로 제조함에 있어서, 현탁액, 시럽, 엘릭서, 에멀젼 및 용액과 같은 경구용 액상 제제의 경우, 예를 들어 물, 글리콜, 오일, 알코올 등과 같은 임의의 일반적인 제약 매질이 사용될 수 있거나; 또는 산제, 환제, 캡슐 및 정제의 경우, 전분, 당, 카올린, 희석제, 활택제, 결합제, 붕해제 등과 같은 고체 담체가 사용될 수 있다. 투여가 용이하기 때문에, 정제 및 캡슐이 가장 유리한 경구 투여 단위 형태를 대표하는데, 이 경우에는 고형 제약 담체가 명백히 이용된다. 사용 직전에 액체 형태로 전환될 수 있는 고체 형태 제제도 포함된다. 경피 투여에 적합한 조성물에서, 담체는 선택적으로 침투 향상제 및/또는 적합한 습윤제를 포함하며, 이들은 선택적으로, 피부에 유의한 유해 영향을 끼치지 않는 임의의 성질의, 작은 비율의 적합한 첨가제와 배합된다. 상기 첨가제는 피부로의 투여를 용이하게 할 수 있고/있거나 원하는 조성물을 제조하는 데 도움을 줄 수 있다. 이러한 조성물은 다양한 방식으로, 예를 들어 경피 패치로서, 스팟온(spot-on)으로서, 연고로서 투여될 수 있다. 본 발명의 화합물은 또한 흡입 또는 통기를 통한 투여에 대한 당업계에서 사용되는 방법 및 제형에 의해 흡입 또는 통기를 통해 투여될 수 있다. 따라서, 일반적으로 본 발명의 화합물은 용액, 현탁액 또는 건조 분말의 형태로 폐에 투여될 수 있다.

투여의 용이성 및 투여량의 균일성을 위해 상기 제약 조성물을 단위 투여 형태로 제형화하는 것이 특히 유리하다. 본원에서 사용되는 바와 같이 단위 투여 형태는 일원화 투여형으로 적합한 물리적으로 분리된 단위를 나타내며, 각 단위는 필요한 제약 담체와 결부되어 원하는 치료 효과를 생성하도록 계산된 소정량의 활성 성분을 함유한다. 이러한 단위 투여 형태의 예로는 정제(분할(scored) 또는 코팅 정제를 포함), 캡슐, 환제, 산제 패킷, 웨이퍼, 좌제, 주사가능한 용액 또는 현탁액 등, 및 이들의 분리형 멀티플(segregated multiple)이 있다.

감염성 질환의 치료에서의 숙련자는 이하에 제시되는 테스트 결과로부터 유효량을 결정할 수 있을 것이다. 일반적으로 일일 유효량은 체중 1 kg 당 0.01 mg 내지 50 mg, 더 바람직하게는 체중 1 kg 당 0.1 mg 내지 10 mg임이 고려된다. 요구되는 용량을 하루 전체에 걸쳐 2, 3, 또는 4회 이상의 하위-용량(sub-dose)으로 적절한 간격으로 투여하는 것이 적절할 수 있다. 상기 하위-용량은, 예를 들어 단위 투여 형태당 1 내지 1000 mg, 그리고 특히 5 내지 200 mg의 활성 성분을 함유하는 단위 투여 형태로서 제형화될 수 있다.

당업자에게 잘 알려진 바와 같이, 정확한 투여량 및 투여 빈도는 사용되는 화학식 I의 특정 화합물, 치료되는 특정 병태, 치료되는 병태의 중증도, 특정 환자의 연령, 체중 및 종합적인 건강 상태뿐만 아니라 개체가 복약 중일 수 있는 다른 약에도 의존한다. 더욱이, 유효량은 치료받는 대상체의 반응에 따라, 및/또는 본 발명의 화합물을 처방하는 의사의 평가에 따라 저하 또는 증가될 수 있음이 명백하다. 따라서, 위에 언급된 유효량 범위는 단지 지침일 뿐이고, 본 발명의 범주 또는 용도를 임의의 정도로 제한하는 것으로 의도되지 않는다.

본 발명은 또한 본 발명의 화합물에 존재하는 원자의 임의의 동위원소를 포함하도록 의도된다. 예를 들어, 수소의 동위원소는 삼중수소 및 중수소를 포함하고 탄소의 동위원소는 C-13 및 C-14를 포함한다.

본 발명에 사용되는 본 화합물은 또한, 동일한 시퀀스의 결합에 의해 결합된 동일한 원자로 구성되지만 상호교환될 수 없는 상이한 3차원 구조를 갖는 모든 가능한 화합물로 정의되는, 이들의 입체화학적 이성질체 형태로 존재할 수 있다. 달리 언급되거나 표시되는 것이 아닌 한, 화합물의 화학적 표기는, 상기 화합물이 보유할 수 있는 모든 가능한 입체화학적 이성질체 형태의 혼합물을 포함한다.

상기 혼합물은 상기 화합물의 기본적인 분자 구조의 모든 부분입체 이성질체 및/또는 거울상 이성질체를 포함할 수 있다. 임의의 라세미 혼합물 또는 라세미체를 비롯하여 순수한 형태이거나 상호 혼합물 형태의 본 발명에 사용되는 화합물의 모든 입체화학적 이성질체 형태는 본 발명의 범주 내에 포함되는 것으로 의도된다.

본원에 언급되는 화합물 및 중간체의 순수 입체 이성질체 형태는, 상기 화합물 또는 중간체와 동일한 기본적 분자 구조의 다른 거울상 이성질체 또는 부분입체 이성질체 형태가 실질적으로 없는 이성질체로서 정의된다. 특히, '입체 이성질체로서 순수한"이라는 용어는 적어도 80%의 입체 이성질체 과잉률(즉, 최소 90%의 한 이성질체 및 최대 10%의 다른 가능한 이성질체) 내지 100%까지의 입체 이성질체 과잉률(즉, 한 이성질체가 100%이고 다른 것은 없음)을 갖는 화합물 또는 중간체, 더욱 특히는 90% 내지 100%까지의 입체 이성질체 과잉률을 갖는, 훨씬 더 특히는 94% 내지 100%까지의 입체 이성질체 과잉률을 갖는, 그리고 가장 특히는 97% 내지 100%까지의 입체 이성질체 과잉률을 갖는 화합물 또는 중간체와 관련된다. '거울상 이성질체로서 순수한' 및 '부분입체 이성질체로서 순수한'이라는 용어는 유사한 방식으로, 그러나 각각 당해 혼합물의 거울상 이성질체 과잉률, 부분입체 이성질체 과잉률과 관련된 것으로 이해되어야 한다.

본 발명에서 사용되는 화합물 및 중간체의 순수 입체 이성질체 형태는 본 기술 분야에 공지된 절차의 적용에 의해 얻어질 수 있다. 예를 들어, 거울상 이성질체는 광학 활성 산 또는 염기로 이들의 부분입체 이성질체 염을 선택적으로 결정화하는 것에 의해 서로 분리될 수 있다. 이의 예로는 타르타르산, 디벤조일타르타르산, 디톨루오일타르타르산 및 캄포술폰산이 있다. 대안적으로, 거울상 이성질체는 키랄 고정상을 사용하여 크로마토그래피 기술에 의해 분리될 수 있다. 상기 순수한 입체화학적 이성질체 형태는 또한, 반응이 입체특이적으로 일어난다면, 적절한 출발 물질의 상응하는 순수한 입체화학적 이성질체 형태로부터 유도될 수 있다. 바람직하게는, 특정 입체이성질체가 요망될 경우, 상기 화합물은 입체특이적 제조 방법에 의해 합성될 것이다. 이들 방법은 유리하게는 거울상 이성질체로서 순수한 출발 물질을 사용할 것이다.

실시예

반응식 1. 화합물 6의 제조

1의 제조

톨루엔 (500 mL) 중 5,7-디플루오로-1H-인돌 (30 g, 195.91 mmol)의 용액을 질소 하에 교반시켰다. TBAHS (5 g, 14.7 mmol), 이어서 NaOH (H₂O 중 50%) (105 mL)를 첨가하고, 혼합물을 격렬하게 교반시켰다. p-톨루엔술포닐 클로라이드 (63.5 g, 333.05 mmol)를 첨가하고, 혼합물을 하룻밤 교반시켰다. 상기 용액을 250 mL의 톨루엔으로 희석시키고, 물을 이용하여 2회 세척하였다. 유기 층을 MgSO₄로 건조시키고, 고형물을 여과에 의해 제거하고, 여과액의 용매를 감압 하에 제거하였다. 조 물질을 메탄올에서 미분화하고, 하룻밤 교반시켰다. 침전물을 여과에 의해 수집하고, 진공에서 건조시켜 5,7-디플루오로-1-토실-1H-인돌, 1을 생성하였다.

2의 제조

DMF (330 mL) 중 5,7-디플루오로-1-토실-1H-인돌, 1, (50.85 g, 165.46 mmol)의 용액에 NBS (35.34 g, 198.56 mmol)를 일부씩 첨가하였다. 교반을 50℃에서 1시간 동안 계속하였다. 상기 혼합물을 얼음물 (1 L) 중 NaOH (1 N, 200 mL)의 교반 용액에 적가하고, 하룻밤 교반시켰다. 침전물을 여과에 의해 수집하고, 진공에서 건조시켜 3-브로모-5,7-디플루오로-1-토실-1H-인돌, 2를 생성하였다.

3의 제조

1,4-디옥산 (1500 mL) 중 3-브로모-5,7-디플루오로-1-토실-1H-인돌, 2, (60 g, 155.35 mmol), 4,4,4′,4′,5,5,5′,5′-옥타메틸-2,2′-비-1,3,2-디옥사보롤란 (118.35 g, 466.06 mmol), Pd(dppf)Cl₂ (22.74 g, 31.07 mmol) 및 KOAc (45.74 g, 466.06 mmol)의 혼합물을 N₂-분위기 하에 90℃까지 하룻밤 가열하였다. 전체 혼합물을 90℃에서 18시간 동안 교반시켰다. 여과 및 농축 후, 조 물질을 CH₂Cl₂에서 헵탄까지의 구배를 이용하여 실리카 겔 크로마토그래피를 통하여 정제하였다. 순수 생성물을 함유하는 분획을 풀링하고(pooled), 용매를 감압 하에 제거하여 5,7-디플루오로-3-(4,4,5,5-테트라메틸-1,3,2-디옥사보롤란-2-일)-1-토실-1H-인돌, 3을 생성하였다.

4의 제조

무수 1,4-디옥산 (35 mL) 중 3,5-디클로로-1,2,4-트리아진 (250 mg, 1.67 mmol)의 용액에 DIPEA (0.58 mL, 3.33 mmol) 및 (+/-)-(트랜스)-메틸 3-아미노비시클로[2.2.2]옥탄-2-카르복실레이트 (366 mg, 1.66 mmol)를 첨가하였다. 반응 혼합물을 실온에서 4시간 동안 교반시켰다. 에틸 아세테이트 (100 mL)를 첨가하고, 유기 용액을 포화 NH₄Cl 수용액, 물, 및 염수로 세척하였다. 유기 층을 MgSO₄로 건조시키고, 고형물을 여과에 의해 제거하고, 여과액의 용매를 감압 하에 제거하였다. 조 물질을 에틸 아세테이트에서 헵탄 까지의 구배를 이용하여 실리카 겔 크로마토그래피에 의해 정제하였다. 원하는 분획을 수집하고, 용매를 감압 하에 제거하여 (+/-)-(트랜스)-메틸 3-((3-클로로-1,2,4-트리아진-5-일)아미노)비시클로[2.2.2]옥탄-2-카르복실레이트, 4를 생성하였다.

5의 제조

250 mL 둥근 바닥 플라스크에서, H₂O (1 mL) 및 1,4-디옥산 (9 mL) 중 5,7-디플루오로-3-(4,4,5,5-테트라메틸-1,3,2-디옥사보롤란-2-일)-1-토실-1H-인돌, 3, (550 mg, 1.269 mmol), (+/-)-(트랜스)-메틸 3-((3-클로로-1,2,4-트리아진-5-일)아미노)비시클로[2.2.2]옥탄-2-카르복실레이트, 4, (313 mg, 1.06 mmol) 및 Na₂CO₃ (187 mg, 1.77 mmol)의 혼합물을 N₂ 스트림을 이용하여 10분 동안 탈기시켰다. Pd(PPh₃)₄ (61 mg, 0.053 mmol)를 첨가하고, 혼합물을 80℃에서 12시간 동안 가열하였다. 상기 혼합물을 감압 하에 농축시키고, 조 물질 5를 추가 정제 없이 다음 단계에서 사용하였다.

6의 제조

100 mL 플라스크에서, 5 (300 mg, 0.53 mmol)를 실온에서 1,4-디옥산 (9 mL) 중에서 교반하는 한편 증류수 (1 mL) 중 LiOH (13 mg, 0.53 mmol)의 용액을 첨가하였다. 상기 혼합물을 80 내지 90℃로 가열하고, 4시간 동안 교반시켰다. 1,4-디옥산을 감압 하에 제거하고, 조 물질을 분취용 HPLC (고정상: RP 엑스브리지 프렙(XBridge Prep) C18 OBD-10 ㎛, 30 x 150 mm, 이동상: 0.25% 수성 NH₄HCO₃, CH₃CN)를 통하여 정제하였다. 원하는 분획을 수집하고, 용매를 감압 하에서 제거하였다. 원하는 분획을 수집하고, 용매를 감압 하에서 제거하여 6을 생성하였다. LC-MS ES⁺ m/z = 400.1; Rt: 1.41분, 방법 D.

반응식 2. 13의 제조

7의 제조

Et₃N (70 mL, 503 mmol) 및 DPPA (78 mL, 362 mmol)를 톨루엔 (1 L) 중 시스 -3-[(tert-부톡시카르보닐)아미노]시클로헥산카르복실산 (78 g, 321 mmol)의 교반 용액에 첨가하고, 혼합물을 실온에서 4시간 동안 교반시켰다. 벤질 알코올 (66.4　mL, 641.2 mmol)을 첨가하고, 혼합물을 100℃까지 가열하였다. 12시간 후, 반응 혼합물을 실온까지 냉각시키고, EtOAc로 희석시켰다. 유기 층을 MgSO₄로 건조시키고, 고형물을 여과에 의해 제거하고, 여과액의 용매를 감압 하에 제거하였다. 조 물질을 헵탄에서 에틸 아세테이트까지의 구배를 이용하여 실리카 컬럼 크로마토그래피를 통하여 정제하였다. 순수 생성물을 함유하는 분획을 풀링하고, 용매를 감압 하에 제거하여 라세미 혼합물을 수득하였다. 키랄 분리 (고정상: 크로마실 아미코트(Kromasil Amycoat) 10 μm, 이동상: 80% CO₂, 20% 메탄올로부터 80% CO₂, 20% 메탄올까지). 원하는 분획을 수집하고, 용매를 감압 하에 제거하여 7a, (-)-벤질 tert-부틸 ((시스)-시클로헥산-1,3-디일)디카르바메이트, [α]_D ²⁰-10.9 (c　0.47, DMF), 및 7b, (+)-벤질 tert-부틸 ((시스)-시클로헥산-1,3-디일)디카르바메이트, [α]_D ²⁰+10.9 (c 0.52, DMF)를 수득하였다.

8의 제조

자기 교반 막대가 갖추어진 500 mL 둥근 바닥 플라스크 내에 7a (10 g, 28.7 mmol), CH₂Cl₂ (100 mL), 및 메탄올 (100 mL)을 첨가하였다. 실온에서 교반하면서 이소프로판올 중 6 M HCL을 서서히 첨가하고, 교반을 48시간 동안 계속하였다. 용매를 감압 하에 제거하고, 조 물질을 이소프로판올을 함유하는 디이소프로필에테르에서 교반시켰다. 백색 침전물을 여과에 의해 단리하고, 진공에서 건조시켜 8을 생성하였다. ¹H NMR (360 MHz, DMSO-d ₆ ) δ ppm 1.01 - 1.13 (m, 1 H) 1.16 - 1.36 (m, 3 H) 1.66 - 1.80 (m, 2 H) 1.86 - 1.99 (m, 1 H) 2.14 (m, 1 H) 2.95 - 3.17 (m, 1 H) 3.28 - 3.51 (m, 1 H) 4.95 - 5.08 (m, 2 H) 7.27 - 7.45 (m, 5 H) 8.21 (s, 3 H). LC-MS ES⁺ m/z = 249.3; Rt: 1.48분, 방법 B.

9의 제조

자기 교반 막대가 갖추어진 100 mL 둥근 바닥 플라스크 내에 2,4　디클로로-5-플루오로-6-메틸피리미딘 (1 g, 5.53 mmol), ACN (35 mL), DIPEA (2.86　mL, 16.58 mmol), 및 8 (1.6 g, 5.53 mmol)을 넣었다. 반응 혼합물을 실온에서 2일 동안 교반시켰다. 용매를 감압 하에서 제거하였다. 조 물질을 n-헵탄에서 에틸 아세테이트까지의 구배를 이용하여 실리카 컬럼 크로마토그래피를 통하여 정제하였다. 최상의 분획의 용매를 감압 하에 제거하여 9를 수득하였다. ¹H NMR (400 MHz, DMSO-d ₆ ) δ ppm 1.08 (m, 2.5 Hz, 1 H) 1.18 - 1.39 (m, 3 H) 1.68 - 1.83 (m, 3 H) 1.93 - 2.07 (m, 1 H) 2.21 (m, 3 H) 3.35 - 3.44 (m, 1 H) 3.82 - 3.93 (m, 1 H) 5.01 (s, 2 H) 7.28 - 7.39 (m, 6 H) 7.85 (m, 1 H). LC-MS ES⁺ m/z = 393.2; Rt: 2.03분, 방법 B.

10의 제조

자기 교반 막대가 갖추어진 50 mL 둥근 바닥 플라스크 내에 3 (500 mg, 1.15 mmol), 9 (378 mg, 0.96 mmol), 탄산나트륨 (210 mg, 1.98 mmol), 물 (1 mL) 및 1,4-디옥산 (10 mL)의 혼합물을 넣었다. 황색 현탁물을 N₂ 스트림을 이용하여 10분 동안 탈기시켰다. Pd(PPh₃)₄ (57 mg, 0.05 mmol)를 첨가하고, 혼합물을 80℃에서 24시간 동안 가열하였다. 고형물을 여과에 의해 제거하고, 여과액의 용매를 감압 하에 제거하였다. 조 물질을 n-헵탄에서 에틸 아세테이트까지의 구배를 이용하여 실리카 겔 컬럼 크로마토그래피를 통하여 정제하였다. 최상의 분획의 용매를 감압 하에 제거하여 10을 수득하였다. LC-MS ES⁺ m/z = 664.5; Rt: 2.65분, 방법 B.

11의 제조

자기 교반 막대가 갖추어진 50 mL 둥근 바닥 플라스크 내에 10 (270　mg, 0.407 mmol), CH₂Cl₂ (5 mL), 및 TFA (10 mL)를 넣었다. 반응 혼합물을 실온에서 24시간 동안 교반시켰다. 추가의 TFA (10 mL)를 첨가하고, 혼합물을 50℃까지 24시간 동안 가열하였다. 용매를 감압 하에 제거하여 조 물질 11을 수득하고, 이를 추가 정제 없이 다음 단계에서 사용하였다. LC-MS ES⁺ m/z = 530.2; Rt: 1.13분, 방법 A.

12의 제조

자기 교반 막대가 갖추어진 50 mL 둥근 바닥 플라스크 내에 1-메틸-1H-이미다졸-4-카르복실산 (121 mg, 0.93 mmol), DMF (10 mL), ACN (20 mL), DIPEA (0.321 mL, 1.864 mmol), 및 HATU (378 mg, 0.99 mmol)를 넣었다. 이 혼합물을 실온에서 5분간 교반시키고, 그 후 11 (400 mg, 0.621 mmol)을 첨가하였다. 플라스크를 밀봉하고, 실온에서 24시간 동안 교반시켰다. 반응 혼합물의 부피를 감소시키고, 그 후 물 (400 mL)에 붓고, 에틸 아세테이트 (3 x 100 mL)를 이용하여 분배시켰다. 유기 층을 합하고, 황산나트륨으로 건조시키고, 고형물을 여과에 의해 제거하고, 여과액의 용매를 감압 하에 제거하였다. 조 물질을 n-헵탄에서 에틸 아세테이트까지의 구배를 이용하여 실리카 겔 컬럼 크로마토그래피로 정제하였다. 최상의 분획을 풀링하고 용매를 감압 하에 제거하여 12를 수득하였다. LC-MS ES⁺ m/z = 638.5; Rt: 2.34분, 방법 B.

13의 제조

100 mL 플라스크에서, 12 (230 mg, 0.361 mmol)를 60℃에서 1,4-디옥산 (9 mL) 중에서 교반시키는 한편, 물 (1 mL) 중 LiOH (86 mg, 3.61 mmol)의 용액을 첨가하였다. 상기 혼합물을 1시간 동안 환류되게 하고, 주위 온도에서 하룻밤 교반시켰다. 1,4-디옥산을 증발시키고, 조 물질을 에틸 아세테이트 (20 mL)에서 재구성하고, 교반시키고, 진한 HCl로 중화시켰다. 용매를 감압 하에서 제거하였다. 조 물질을 분취용 HPLC (고정상: RP 엑스브리지 프렙 C18 ODB 5 ㎛, 30 x 250 mm, 이동상: 물 중 0.25% NH₄HCO₃ 용액, CH₃OH)를 통하여 정제하였다. 원하는 분획을 수집하고 건조 상태까지 증발시켰다. CH₃OH의 첨가 후, 용액을 두 번째로 농축시켜 13을 수득하였다. ¹H NMR (360 MHz, DMSO-d ₆ ) δ ppm 1.26 - 1.57 (m, 4 H) 1.84 (m, 2 H) 2.07 (m, 2 H) 2.32 (d, J=2.6 Hz, 3 H) 3.67 (s, 3 H) 3.92 (m, 1 H) 4.08 - 4.20 (m, 1 H) 7.05 (m, 1 H) 7.35 (d, J=7.3 Hz, 1 H) 7.60 - 7.67 (m, 2　H) 7.72 (d, J=8.4 Hz, 1 H) 8.05 (m, 1 H) 8.11 (d, J=2.2 Hz, 1 H) 12.17 (s, 1 H). LC-MS ES⁺ m/z = 484.2; Rt: 1.87분, 방법 B. [α]_D ²⁰ -137.6° (c 0.8, DMF)

14의 제조

단계 1. (+)-7b (7 g, 20.09 mmol)를 CH₃OH에 용해시키고, 그 후 Pd/C (855 mg)를 첨가하였다 (불활성 분위기 하에). 반응기의 상기 분위기를 제거하고 그 후 수소로 대체하였다. 상기 혼합물을 H₂ (10 bar) 하에 25℃에서 18시간 동안 교반시켰다. H₂를 제거하고, 그 후 혼합물을 셀라이트(Celite)를 통하여 여과하고, 용매를 감압 하에 제거하여 오일을 수득하였다. LC-MS ES⁺ m/z = 215.1; Rt: 0.727분, 방법 F.

단계 2. 이소프로판올 (150 mL) 중 14a (3.08 g, 14.36 mmol)의 용액에 DIPEA (3.33 mL, 19.15 mmol), 및 그 후 2,4-디클로로-5-플루오로-6-메틸-피리미딘 (2.89 g, 15.96 mmol)을 첨가하였다. 상기 혼합물을 3시간 동안 80℃까지 가열하였다. 용매를 감압 하에서 제거하고, 조 물질을 CH₂Cl₂에서 재구성하였다. 유기 층을 물로 세척하고, MgSO₄로 건조시키고, 고형물을 여과에 의해 제거하고, 여과액의 용매를 감압 하에 제거하였다. 조 물질을 n-헵탄에서 에틸 아세테이트까지의 구배를 이용하여 실리카 겔 크로마토그래피를 통하여 정제하였다. 순수 생성물을 함유하는 분획을 풀링하고, 용매를 감압 하에 제거하여 14b를 수득하였다. LC-MS ES⁺ m/z = 359.1; Rt: 0.963, 방법: E. [α]_D ²³ -72.5° (c 0.14, CH₃OH)

단계 3. 1,4-디옥산 (10 mL, N₂를 이용하여 탈기시킴) 및 물 (1 mL) 중 3 (2.8 g, 6.46 mmol), 14b (2.32 g, 6.46 mmol), PdCl₂(dppf) (421 mg, 0.65 mmol) 및 K₃PO₄ (4.12 g, 19.39 mmol)의 혼합물을 2시간 동안 100℃까지 가열하였다. 반응 혼합물을 셀라이트로 여과시키고, 여과액의 용매의 부피를 감압 하에 감소시켰다. 조 물질을 물과 CH₂Cl₂ 사이에 분배시켰다. 유기 층을 MgSO₄로 건조시키고, 고형물을 여과에 의해 제거하고, 여과액의 용매를 건조 상태까지 증발시켰다. 조 물질을 헵탄에서 에틸 아세테이트까지의 구배를 이용하여 실리카 겔 컬럼 크로마토그래피를 통하여 정제하였다. 순수 생성물을 함유하는 분획을 풀링하고, 용매를 감압 하에 제거하여 14c를 수득하였다. LC-MS ES⁺ m/z = 630.2; Rt: 1.45, 방법: E. [α]_D ²³ -57.6° (c 0.13, CH₃OH).

단계 4. 14c (3.25 g, 5.16 mmol)를 1,4-디옥산 (50 mL)에 용해시키고, 그 후, 디옥산 (7.74 mL) 중 4 M HCl을 서서히 첨가하였다. 그 후, 진한 HCl (1.5 mL)을 첨가하였다. 상기 용액을 실온에서 1시간 동안 교반시켰다. 그 후, 상기 반응물을 NaHCO₃ (포화 수성, 5 mL)의 첨가에 의해 켄칭하였다. 상기 현탁물을 CH₂Cl₂로 세척하였다. 유기 층을 건조 상태까지 증발시켜 14d를 수득하고, 이를 추가 정제 없이 사용하였다. LC-MS ES⁺ m/z = 530.2; Rt: 0.982, 방법: E.

단계 5. 불활성 분위기 하에 실온에서 5분 동안 THF (14 mL) 중 1-메틸-1H-피라졸-4-카르복실산 (188 mg, 1.49 mmol)을 포함하는 플라스크에 HBTU (1.074 g, 2.83 mmol)를 첨가하고, 그 후 DMSO 중 14d 및 DIPEA (0.62 mL, 3.54　mmol)의 용액을 첨가하였다. 상기 혼합물을 실온에서 1시간 동안 교반시켰다. 그 후 물로 희석하고, 에틸 아세테이트로 추출하였다. 유기 층을 감압 하에 농축시켜 14e를 수득하고, 이를 추가 정제 없이 사용하였다. LC-MS ES⁺ m/z = 638.2; Rt: 1.21, 방법: E.

단계 6. 60℃에서 1,4-디옥산 (9 mL) 중 (-)-14e (230 mg, 0.36 mmol)를 100 mL 플라스크 내에 넣는 한편 물 (1 mL) 중 LiOH (86 mg, 3.6 mmol)의 용액을 첨가하고, 혼합물을 실온에서 하룻밤 교반시켰다 (불활성 분위기 하에). 그 후, 용매를 진공 하에 제거하고, 잔사를 물과 에틸 아세테이트 사이에 분배시켰다. 유기 층을 건조 상태까지 증발시켰다. 조 물질을 등용매 에틸 아세테이트를 이용하여 실리카 겔 크로마토그래피를 통하여 정제하여 (-)-14를 수득하였다. LC-MS ES⁺ m/z = 438.9; Rt: 2.28, 방법: C. [α]_D ²³ -202.3° (c 0.14, CH₃OH). MP >300℃.

16의 제조

0℃에서 DMF (50 mL) 중 브롬 (11.8 g, 73.84 mmol)의 용액을 DMF (350 mL) 중 7H-피롤로[2,3-d]피리미딘 (11.5 g, 73.92 mmol)의 교반 용액에 첨가하였다. 냉각조를 제거하고, 반응물을 20℃에서 8시간 동안 교반시키고, 그 후 반응 혼합물을 얼음물에 붓고, Na₂CO₃을 이용하여 염기성화하였다. 상기 혼합물을 에틸 아세테이트로 추출하였다. 합한 유기 층을 10% Na₂S₂O₃ 수용액, 염수로 세척하고, MgSO₄로 건조시키고, 고형물을 여과에 의해 제거하고, 여과액을 감압 하에서 농축시켜 5-브로모-7H-피롤로[2,3-d]피리미딘, 16을 황색 고형물로서 수득하였으며, 이를 추가 정제 없이 다음 단계에서 사용하였다. ¹H NMR (400 MHz, DMSO-d ₆) δ ppm 7.84 (s, 1 H), 8.84 (s, 1 H), 8.92 (s, 1 H), 12.57 (br, 1 H).

17의 제조

질소 하에서 0℃에서 NaH (4.48 g, 112.01 mmol)를 THF 중 5-브로모-7H-피롤로[2,3-d]피리미딘 (12.8 g, 55.11 mmol)의 교반 용액에 일부씩 첨가하였다. 상기 혼합물을 5℃에서 1시간 동안 교반하고, 그 후 p-톨루엔술포닐 클로라이드 (11.6 g, 60.85 mmol)를 일부씩 첨가하였다. 반응 혼합물을 20℃까지 가온되게 하고, 3시간 동안 교반하였다. 반응 혼합물을 교반하면서 얼음과 1 M 수성 HCl의 혼합물에 부었다. 상기 혼합물을 에틸 아세테이트로 추출하였다. 합한 유기 층을 염수로 세척하고, MgSO₄로 건조시키고, 고형물을 여과에 의해 제거하고, 여과액을 감압 하에서 농축시켰다. 조 물질을 에틸 아세테이트로부터의 결정화에 의해 정제하여, 백색 고형물로서 5-브로모-7-토실-7H-피롤로[2,3-d]피리미딘, 17을 수득하였다. ¹H NMR (400 MHz, DMSO-d ₆) δ ppm 2.36 (s, 3 H), 7.47 (d, J=8.0 Hz, 2 H), 8.06 (d, J=8.0　Hz, 2 H), 8.31 (s, 1 H), 9.03 (s, 1 H), 9.06 (s, 1 H). LC-MS ES⁺ m/z = 351.8; Rt: 2.02분, 방법 D.

18의 제조

1,4-디옥산 (170 mL, 질소로 탈기시킴) 중 5-브로모-7-토실-7H-피롤로[2,3-d]피리미딘 (10 g, 28.39 mmol), 비스(피나콜라토)디보론 (14.42 g, 56.79 mmol), 아세트산칼륨 (8.36 g, 85.18 mmol), Pd(dppf)Cl₂ (1 g, 1.37 mmol)의 혼합물을 환류 응축기가 갖추어진 500 mL 둥근 바닥 플라스크에서 질소 하에서 80℃에서 16시간 동안 가열하였다. 반응 혼합물을 실온까지 냉각시키고, 패킹된 셀라이트(packed Celite)를 통해 여과하고, 고형물을 에틸 아세테이트로 헹구었다. 여과액을 감압 하에서 농축시키고, 잔사를 n-헵탄에서 에틸 아세테이트까지의 구배를 이용하여 실리카 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다. 원하는 분획을 수집하고, 감압 하에서 농축시켜 5-(4, 4, 5, 5-테트라메틸-1,3,2-디옥사보롤란-2-일)-7-토실-7H-피롤로[2,3-d]피리미딘, 18을 수득하였다. ¹H NMR (400 MHz, DMSO-d ₆ ) δ ppm 1.33 (s, 12 H) 2.37 (s, 3 H) 7.47 (d, J=8.36 Hz, 2 H) 8.11 (d, J=8.58 Hz, 2 H) 8.14 (s, 1 H) 9.00 (s, 1 H) 9.10 (s, 1 H). LC-MS ES⁺ m/z = 318.1; Rt: 0.74분, 방법 A.

19의 제조

밀봉 튜브에서, DME (24 mL) 중 18 (1.525 g, 3.82 mmol), 9 (1.6 g, 4.073 mmol), 및 K₂CO₃ (5.73 mL, 2 M, 11.46 mmol)의 용액을 N₂로 5분 동안 퍼지하고, 그 후 Pd(dppf)Cl₂.CH₂Cl₂ (313 mg, 0.38 mmol)를 첨가하였다. 상기 혼합물을 교반시키고, 오토클레이브에서 110℃에서 60분 동안 가열하고, 그 후 디칼라이트(dicalite)로 여과시키고, 여과액을 감압 하에 농축시켰다. 조 물질을 n-헵탄에서 n-헵탄 중 25% EtOAc까지의 구배를 이용하여 실리카 컬럼 크로마토그래피를 통하여 정제하였다. 최상의 분획의 용매를 감압 하에 제거하여 고형물을 수득하였다. LC-MS ES⁺ m/z = 630.2; Rt: 1.28분, 방법 A.

20의 제조

Pd/C (10%) (173 mg, 0.163 mmol)를 N₂ 분위기 하에 CH₃OH (15 mL) 및 THF (15 mL)의 혼합물에 첨가하였다. 그 후, 19 (410 mg, 0.651 mmol)를 첨가하고, 반응 혼합물을 1 당량의 수소가 소비될 때까지 H₂ 분위기 하에 25℃의 온도에서 교반시켰다. 촉매를 디칼라이트에서의 여과에 의해 제거하였다. 여과액을 감압 하에 농축시켰다. 잔사를 CH₂Cl₂에 용해시키고, 이소프로판올 중 6 N HCl로 처리하였다. 침전물을 진공에서 건조시켜 20을 수득하였다.

21의 제조

실온에서 피콜린산 (93 mg, 0.76 mmol)을 THF (3 mL) 중 HBTU (478 mg, 1.26 mmol)를 포함하는 플라스크에 첨가하였다. 상기 혼합물을 불활성 분위기 하에서 5분 동안 교반시켰다. 그 후, DMSO (1 mL) 중 N,N-디이소프로필에틸아민 (0.22 mL, 1.261 mmol) 및 20 (250 mg, 0.504 mmol)의 용액을 첨가하였다. 상기 혼합물을 실온에서 1시간 동안 교반시켰다. 그 후, 반응 혼합물을 물로 희석시키고 CH₂Cl₂로 추출하였다. 유기 층을 건조시키고 (MgSO₄), 고형물을 여과에 의해 제거하고, 여과액을 감압 하에서 농축시켰다. 조 물질을 분취용 HPLC (RP 선파이어 프렙(SunFire Prep) C18 OBD-10 ㎛, 30 x 150 mm, 이동상: 0.25% 수성 탄산암모늄에서 아세토니트릴까지)에 의해 정제하였다. 최상의 분획을 풀링하고, 용매를 감압 하에서 제거하여 21을 생성하였다. MP:225.1 LC-MS ES⁺ m/z = 447.1; Rt: 2.18분, 방법 C. [α]_D ²³ -175.6° (c 0.13, CH₃OH ). ¹H NMR (300 MHz, 메탄올-d ₄) δ ppm 1.28 - 1.59 (m, 3 H) 1.61 - 1.75 (m, 1 H) 1.94 - 2.25 (m, 3 H) 2.38 (d, J=2.9 Hz, 3 H) 2.39 - 2.47 (m, 1 H) 4.08 - 4.20 (m, 1 H) 4.26 - 4.37 (m, 1 H) 7.53 (m, 1　H) 7.94 (t, J=7.5 Hz, 1 H) 8.08 (d, J=7.8 Hz, 1 H) 8.20 (s, 1 H) 8.61 (m, 1 H) 8.79 (s, 1 H) 9.73 (s, 1 H)

22의 제조

THF (250 mL) 중 (+/-)-시스-3-(boc-아미노)사이클로헥산카르복실산 (9.51 g, 39.09 mmol), 디페닐 포스포릴 아지드 (12.61 mL, 58.63 mmol) 및 Et₃N (7.61 mL, 54.72 mmol)의 혼합물을 2시간 동안 환류시켰다. 상기 용액을 실온에 도달하게 하고, 그 후 피롤리딘 (9.81 mL, 117.26 mmol)을 첨가하고, 용액을 1시간 동안 환류시켰다. 상기 혼합물을 0℃까지 냉각시키고, 침전물을 여과에 의해 단리하고, THF로 세척하고, 진공에서 건조시켜, 백색 분말로서 t-부틸 (+/-)-(시스-3-(피롤리딘-1-카르복스아미도)시클로헥실)카르바메이트, 22a를 수득하였다.

HCl (1,4-디옥산 중 4 M, 344 mL) 중 (+/-)-t-부틸 (시스-3-(피롤리딘-1-카르복스아미도)시클로헥실)카르바메이트 (23.77 g, 76.33 mmol)의 용액을 실온에서 4시간 동안 교반하였다. 상기 용액을 감압 하에 농축시키고, 그 후 진공에서 건조시켜 백색 고형물로서 (+/-)-N-((시스)-3-아미노시클로헥실)피롤리딘-1-카르복스아미드 HCl, 22를 수득하고, 이를 추가 정제 없이 다음 단계에서 사용하였다.

23의 제조

2,6-디클로로피라진 (2.76 g, 18.65 mmol)의 용액을 에탄올 (70 mL) 및 THF (70 mL)에서 실온에서 교반시켰다. (+/-)-시스-N-(3-아미노시클로헥실)피롤리딘-1-카르복스아미드 (4.1 g, 19.41 mmol) 및 DIPEA (8.56 mL, 49 mmol)를 반응 혼합물에 적가하고, 70℃에서 1시간 동안, 그리고 그 후 주위 온도에서 하룻밤 교반시켰다. 용매를 감압 하에서 제거하고, 물에서 재구성하고, CH₂Cl₂을 이용하여 2회 추출하였다. 합한 유기 층을 물로 세척하고, MgSO₄로 건조시키고, 고형물을 여과에 의해 제거하고, 여과액의 용매를 감압 하에 제거하였다. 조 물질을 CH₂Cl₂에서 CH₂Cl₂/메탄올까지의 구배를 이용하여 실리카 겔 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다. 원하는 분획을 풀링하고 건조 상태까지 증발시켜 23을 수득하였다.

24의 제조

1,4-디옥산 (10 mL) 및 H₂O (1 mL) 중 3 (350 mg, 0.81 mmol), 23 (157 mg, 0.485 mmol), 1,1'-비스(디-tert-부틸포스피노)페로센 팔라듐 디클로라이드 (53 mg, 0.08 mmol) 및 제3인산칼륨 (514 mg, 2.42 mmol)의 혼합물을 마이크로웨이브 조사 하에 45분 동안 100℃까지 가열하였다. 반응 혼합물을 농축시키고, 잔존 분획을 CH₂Cl₂에 용해시키고, 여과시켰다. 여과액을 CH₂Cl₂에서 CH₂Cl₂/메탄올까지의 구배를 이용하여 실리카 겔 컬럼 크로마토그래피에 의해 정제하였다. 원하는 분획을 수집하고, 감압 하에서 농축시켜 24를 생성하였다. LC-MS ES⁺ m/z = 595.3; Rt: 2.09분, 방법 B.

25의 제조

13을 제조하는 방법에 따라 화합물 25를 제조하였다. ¹H NMR (400 MHz, DMSO-d ₆ ) δ ppm 1.01 - 1.12 (m, 1 H) 1.15 - 1.26 (m, 1 H) 1.28 - 1.48 (m, 2 H) 1.74 - 1.91 (m, 2 H) 1.74 - 1.91 (m, 4 H) 2.13 (m, 2 H) 3.15 - 3.27 (m, 4 H) 3.59 (m, 1 H) 3.78 - 3.88 (m, 1 H) 5.81 (m, 1 H) 6.92 (m, 1 H) 7.05 (m, 1 H) 7.66 (s, 1 H) 8.05 (m, 1 H) 8.25 (s, 1 H) 8.21 - 8.28 (m, 1 H) 12.16 (s, 1 H). LC-MS ES⁺ m/z = 441.4; Rt: 1.77분, 방법 B.

26의 제조

23을 제조하는 방법에 따라 중간체 26을 제조하였다.

27의 제조

24를 제조하는 방법에 따라 중간체 27을 제조하였다. LC-MS ES⁺ m/z =596.3; Rt: 2.09분, 방법 B.

28의 제조

25를 제조하는 방법에 따라 화합물 28을 제조하였다. ¹H NMR (400 MHz, DMSO-d ₆ ) δ ppm 1.09 - 1.36 (m, 3 H) 1.44 (m, 1 H) 1.73 - 1.86 (m, 2 H) 1.73 - 1.86 (m, 4　H) 2.08 (m, 2 H) 3.14 - 3.25 (m, 4 H) 3.56 - 3.66 (m, 1 H) 3.93 - 4.04 (m, 1 H) 5.82 (m, 1　H) 6.99 - 7.07 (m, 1 H) 7.99 (d, J=9.9 Hz, 2 H) 8.27 (s, 2 H). LC-MS ES⁺ m/z =442.4; Rt: 1.62분, 방법 B.

29의 제조

하기 절차를 이용하여, 최종 단계에서 에스테르 가수분해가 요구된다는 것을 제외하고는 실험 섹션에서 설명한 것과 유사한 방법을 이용하여 29를 제조하였다. 29a 및 메탄올 (2.5 mL)을 포함하는 둥근 바닥 플라스크 내에 NaOCH₃ (1.55 mL, 메탄올 중 25 중량%)을 첨가하고, 혼합물을 실온에서 4시간 동안 교반시켰다 (불활성 분위기 하에). 유기 층을 진공 하에 농축시키고, 혼합물을 역상 크로마토그래피에 의해 정제하였다. (70%[25 mM NH₄HCO₃] - 30%[ACN:CH₃OH (1:1)]에서 시작하여 27% [25 mM NH₄HCO₃]- 73% [ACN:CH₃OH (1:1)]에서 끝남).

30의 제조

DBU (2.58 mL, 17.2 mmol)를 DMF (10 mL) 중 5-플루오로오로트산 (3 g, 17.2　mmol)의 용액에 첨가하였다. 30분 동안 교반시킨 후, 요오도에탄 (2.69 g, 17.2 mmol)을 상기 용액에 첨가하고, 혼합물을 60℃에서 2시간 동안 가열하였다. 물 (100 ml)을 상기 혼합물에 첨가하고, 침전물을 여과에 의해 수집하고, 물로 세척하고, 건조시켜 에틸 5-플루오로오로테이트, 30을 제공하였다. LC-MS ES^- m/z =200.9; Rt: 0.91분, 방법 D.

31의 제조

에틸 5-플루오로오로테이트 30 (2.13 g, 10.54 mmol)을 90℃에서 N,N-디에틸아닐린 (1.09 mL, 7.16 mmol) 및 POCl₃ (2.64 mL, 28.45 mmol)의 혼합물에 첨가하고, 혼합물을 4시간 동안 가열 환류시켰다. 상기 용액을 얼음물에 붓고, 그 후 중탄산나트륨을 첨가하여 혼합물을 pH 8까지 되게 하였다. 반응 혼합물을 에틸 아세테이트로 추출하고, 5% 수성 중황산칼륨 및 염수로 세척하였다. 유기 층을 황산나트륨으로 건조시키고, 진공에서 농축시켰다. 조 물질을 n-헵탄에서 n-헵탄/EtOAc (8/2)까지의 구배를 이용하여 실리카 겔 컬럼 크로마토그래피로 정제하였다. 원하는 분획을 풀링하고, 건조 상태까지 증발시켜 에틸 2,6-디클로로-5-플루오로피리미딘-4-카르복실레이트, 31을 수득하였다.

32의 제조

9를 제조하는 방법에 따라 화합물 32를 제조하였다. LC-MS ES⁺ m/z =451.2; Rt: 1.09분, 방법 A

33의 제조

10을 제조하는 방법에 따라 화합물 33을 제조하였다. LC-MS ES⁺ m/z =722.4; Rt: 2.56분, 방법 B

34의 제조

250 mL 플라스크에서, 33 (1000 mg, 1.56 mmol)을 실온에서 1,4-디옥산 (45 mL) 중에서 교반시키는 한편, 물 (5 mL) 중 LiOH (374 mg, 15.63 mmol)의 용액을 첨가하였다. 상기 혼합물을 80 내지 90℃로 4시간 동안 가열하였다. 반응 혼합물을 진한 HCl을 이용하여 중화시키고, 용매를 감압 하에서 제거하였다. 수층을 EtOAc로 추출하고, MgSO₄로 건조시키고, 고형물을 여과에 의해 제거하고, 여과액의 용매를 감압 하에 제거하여 34를 수득하였다. LC-MS ES⁺ m/z =540.2; Rt: 0.83분, 방법 A

35의 제조

Pd/C (10%) (172 mg, 0.16 mmol)를 N₂ 분위기 하에 CH₃OH (15 mL) 및 THF (15 mL)의 혼합물에 첨가하였다. 34 (580 mg, 1.08 mmol)를 첨가하고, 반응 혼합물을 1 당량의 H₂가 소비될 때까지 H₂ 분위기 하에 25℃에서 교반시켰다. 촉매를 디칼라이트에서의 여과에 의해 제거하였다. 여과액을 감압 하에 농축시켜 35를 수득하였다. LC-MS ES⁺ m/z = 406.3; Rt: 1.03분, 방법 B.

36의 제조

실온에서 1H-1,2,3-트리아졸-5-카르복실산 (50　mg, 0.44 mmol)을 DMF (10 mL) 중 HBTU (140 mg, 0.37 mmol) 및 N,N-디이소프로필에틸아민 (0.26　mL, 1.48 mmol)을 포함하는 플라스크에 첨가하였다. 상기 혼합물을 불활성 분위기 하에서 10분 동안 교반시키고, 그 후 35 (150 mg, 0.37 mmol)를 첨가하고, 교반을 실온에서 18시간 동안 계속하였다. 반응 혼합물을 농축시키고, 조 물질을 분취용 HPLC (RP 엑스브리지 프렙 C18 ODB- 5 ㎛, 30 x 250 mm, 이동상: 0.25% 수성 NH₄HCO₃에서 아세토니트릴까지)에 의해 정제하였다. 최상의 분획을 풀링하고, 용매를 감압 하에서 제거하여 36을 생성하였다. LC-MS ES⁺ m/z =501.2; Rt: 1.16분, 방법 A. ¹H NMR (400 MHz, DMSO-d ₆ ) δ ppm 1.22 - 1.68 (m, 1 H) 1.80 - 1.91 (m, 2 H) 1.95 - 2.07 (m, 1 H) 2.12 - 2.23 (m, 1 H) 3.87 - 4.08 (m, 2 H) 4.10 - 4.30 (m, 1 H) 6.89 - 7.12 (m, 1 H) 7.50 (br s, 1 H) 8.07 (m, 1 H) 8.14 (s, 1 H) 8.30 (br s, 1 H) 8.38 (br d, 1 H) 12.16 (br s, 1H).

고성능 액체 크로마토그래피(HPLC) 측정은 LC 펌프, 다이오드-어레이(DAD) 또는 UV 검출기 및 각각의 방법에 명시된 컬럼을 사용하여 수행하였다. 필요할 경우, 추가의 검출기를 포함시켰다(하기의 방법에 대한 표를 참조).

컬럼으로부터의 유동물을 대기압 이온 공급원으로 구성된 질량 분광계(MS)로 가져왔다. 화합물의 공칭 단일동위원소(monoisotopic) 분자량(MW)의 확인을 가능하게 하는 이온을 얻기 위하여 조정 파라미터(예를 들어, 스캐닝 범위, 드웰 시간(dwell time) 등)를 설정하는 것은 숙련자의 지식 내에 있다. 적절한 소프트웨어로 데이터 획득을 수행하였다. 화합물은 이들의 실험적 체류 시간(Rt) 및 이온에 의해 설명된다. 데이터의 표에 상이하게 명시되어 있지 않다면, 보고된 분자 이온은 [M+H]⁺(양성자화된 분자) 및/또는 [M-H]^-(탈양성자화된 분자)에 상응한다. 화합물이 직접적으로 이온화가능한 것이 아닌 경우, 부가 생성물의 유형이 명시된다(즉, [M+NH₄]⁺, [M+HCOO]^- 등).다수의 동위원소 패턴을 갖는 분자(Br, Cl 등)에 있어서, 보고된 값은 최저 동위원소 질량에 대하여 얻어진 것이다. 모든 결과는 사용된 방법과 일반적으로 연관되어 있는 실험적 불확실성을 가지고서 얻어졌다.

화학식 I의 화합물의 생물학적 활성

세포-기반 항바이러스 분석을 사용하여 화합물의 시험관 내 항바이러스 활성을 결정하였다. 이 분석에서, A형 인플루엔자 바이러스/타이완(Taiwan)/1/86(H1N1)에 의해 감염된 마딘-다비 개 신장(Madin-Darby canine kidney, MDCK) 세포에서의 세포변성 효과(cytopathic effect, CPE)를 화합물의 존재 또는 부재 하에서 모니터링하였다. 백색의 384웰 미세적정 분석 플레이트(그라이너(Greiner))를 에코 리퀴드 핸들러(echo liquid handler)(미국 캘리포니아주 서니베일 소재의 랩사이트(Labcyte))를 사용하여 음향 액적 분사(acoustic drop ejection)를 통해 충전하였다. 200 나노리터의 화합물 스톡 용액(100% DMSO)을 분석 플레이트로 옮겼다. MDCK 세포를 25,000 또는 6,000개의 세포/웰의 최종 밀도로 플레이트에 분배하였다. 그 후, A형 인플루엔자/타이완/1/86(H1N1) 바이러스를 각각 0.001 또는 0.01의 감염 다중도로 첨가하였다. 웰은 부피당 0.5% DMSO를 포함한다. 바이러스- 및 모의(mock)-감염 대조구를 각각의 테스트에 포함시켰다. 플레이트를 5% CO₂에서 37℃에서 인큐베이션하였다. 바이러스 노출 3일 후에, ATPlite™ 키트(벨기에 자벤템 소재의 퍼킨엘머(PerkinElmer))를 제조업체의 사용설명서에 따라 사용하여 ATP 수준의 감소를 측정함으로써 세포변성 효과를 정량화하였다. IC₅₀을 50% 억제 농도로 정의하였다. 이와 동시에, 백색 384웰 미세적정 플레이트에서 3일 동안 화합물을 인큐베이션하고, MDCK 세포에서의 화합물의 시험관 내 세포독성을, ATPlite™ 키트(벨기에 자벤템 소재의 퍼킨엘머)를 제조업체의 사용설명서에 따라 사용하여 세포의 ATP 함량을 측정함으로써 결정하였다. 세포독성은 세포 생존력의 50% 감소를 야기하는 농도인 CC₅₀으로 기록하였다.

Claims

하기 화학식 I의 화합물, 이의 입체이성질체 형태, 제약상 허용가능한 염, 용매화물 또는 다형체:
[화학식 I]

[여기서,
X는 N이며, Y는 N이거나; 또는
X는 -F로 치환된 C이며, Y는 -F, -Cl, -CH₃, 또는 -CN으로 치환된 C이고;
Z는 N이며, Q는 -C-CH₃, -C-COOH, -C-CF_3, -CH-시클로프로필,-CH₂R₁,
또는 -CONR₁R₁로부터 선택되며, M은 CF이거나 (여기서, R₁은 독립적으로 수소, 할로겐, 시아노, 옥소, 알킬, 히드록실, 아미노로부터 선택됨); 또는
Z는 N이며, Q는 N이며, M은 CH이거나; 또는
Z는 C이며, Q는 N이며, M은 CH이고;
R은 카르복실산으로 치환된 C_3-8시클로알킬, 또는 C_1-6 알킬 또는 -COOH로 선택적으로 치환된 -N-C(O)-C_3-6 복소환임].
제1항에 있어서, 하기 구조식을 갖는 화합물:

.
제1항에 따른 화학식 I의 화합물 또는 이의 입체이성질체 형태, 제약상 허용가능한 염, 용매화물 또는 다형체를 하나 이상의 제약상 허용가능한 부형제, 희석제 또는 담체와 함께 포함하는 제약 조성물.
약제로서 사용하기 위한, 제1항에 따른 화학식 I의 화합물 또는 이의 입체 이성질체 형태, 제약상 허용가능한 염, 용매화물 또는 다형체 또는 제3항에 따른 제약 조성물.
인플루엔자의 치료에 사용하기 위한, 제1항에 따른 화학식 I의 화합물 또는 이의 입체이성질체 형태, 제약상 허용가능한 염, 용매화물 또는 다형체 또는 제3항에 따른 제약 조성물.
생물학적 샘플 또는 환자에서의 인플루엔자 바이러스(들)의 복제의 억제에 있어서의, 하기 화학식 I의 화합물, 이의 입체이성질체 형태, 제약상 허용가능한 염, 용매화물 또는 다형체의 용도:
[화학식 I]

[여기서,
X는 N이며, Y는 N이거나; 또는
X는 -F로 치환된 C이며, Y는 -F, -Cl, -CH₃, 또는 -CN으로 치환된 C이고;
Z는 N이며, Q는 -C-CH₃, -C-COOH, -C-CF_3, -CH-시클로프로필,-CH₂R₁, 또는 -CONR₁R₁로부터 선택되며, M은 CF이거나 (여기서, R₁은 독립적으로 수소, 할로겐, 시아노, 옥소, 알킬, 히드록실, 아미노로부터 선택됨); 또는
Z는 N이며, Q는 N이며, M은 CH이거나; 또는
Z는 C이며, Q는 N이며, M은 CH이고;
R은 카르복실산으로 치환된 C_3-8시클로알킬, 또는 C_1-6 알킬 또는 -COOH로 선택적으로 치환된 -N-C(O)-C_3-6 복소환임].
제6항에 있어서, 추가 치료제를 공동-투여하는 것을 추가로 포함하는 용도.
제7항에 있어서, 추가 치료제는 항바이러스제 또는 인플루엔자 백신, 또는 이들 둘 모두로부터 선택되는 용도.