KR20150138236A - 향상된 치료 효능을 위해 비강내로 전달되는 중화 항체에 기반한 조성물 및 방법 - Google Patents

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Abstract

본 발명은 비강내 또는 흡입 투여를 포함하여 호흡관에 직접적으로 작용제, 특히 중화 항체 또는 이의 활성 단편을 투여함으로써 바이러스, 특히 인플루엔자 바이러스를 치료 또는 예방하는 방법을 제공한다. 본 발명은 비강내 또는 흡입 치료 및 투여에 적합한 조성물을 제공한다. 본 발명은 항체의 복강내 또는 정맥내에 의한 비강내 또는 흡입 투여를 조합하는 치료 또는 예방을 위한 방법을 포함한다.

Description

향상된 치료 효능을 위해 비강내로 전달되는 중화 항체에 기반한 조성물 및 방법{COMPOSITION AND METHODS BASED ON NEUTRALIZING ANTIBODIES DELIVERED INTRANASALLY FOR ENHANCED THERAPEUTIC EFFICACY}
본 발명은 일반적으로 비강내 또는 흡입 투여에 의한 것을 비롯하여, 작용제(agent), 특히 항체 또는 이의 활성 단편, 특히 중화 항체를 호흡관에 직접 투여함으로써 호흡기관 감염제, 특히 바이러스, 특히 인플루엔자 바이러스의 치료 또는 예방을 위한 방법에 관한 것이다. 본 발명은 비강내 또는 흡입 치료 및 투여에 적합한 조성물 및 항체(들)의 비강내 또는 흡입 투여 또는 비강내 또는 흡입 투여를 복강내 또는 정맥내 투여와 조합하는 것을 통한 치료 또는 예방을 위한 프로토콜 및 방법에 관한 것이다.
인플루엔자는 사망 및 질병의 주된 원인이며, 상부 및 하부 호흡관에 영향을 미친다. 인플루엔자 바이러스는 심각한 계절 동안에 미국에서 200,000명 이상의 입원 및 36,000명 이상의 사상자를 초래하는 고도의 감염성 호흡기 질환을 야기한다. 전세계적으로, 매년 어린이의 20% 및 성인의 5%에서 증상이 있는 인플루엔자가 발생한다(Nicholson, K. G. et al (2003) Lancet 362: 1733-1745). 이환율 및 사망률은 인플루엔자 바이러스주의 독력 및 숙주의 노출 이력, 연령 및 면역 상태에 기인하여 다르다. 계절성 유행에 추가로, 범유행성 인플루엔자 바이러스주가 일부 규칙성을 지니고 출현한다. 주요 바이러스 항원에 대한 기존의 면역력의 결여 때문에, 범유행 인플루엔자는 빠르게 퍼질 수 있으며, 종종 계절성 인플루엔자보다 더 중증의 질환이 된다(Swartz, K. A. & Luby, J. P. (2007) Tex Med 103 : 31-34). 예를 들어, 1918 내지 1919년의 "스페인 독감" 범유행 바이러스주는 세계 인구의 32%를 감염시키고 2천만명 이상의 사망을 야기한 20세기의 가장 치명적인 전염병이었다(Webster, R. G. (1999) Proc Natl Acad Sci U S A 96: 1164-1166). 최근에, 2009 H1N1 바이러스는 미국에서 6천 1백만영의 사람에게 퍼져서 2009년 4월부터 2010년 4월까지 274,000명으로 추청되는 입원을 야기하였다(Lagace-Wiens, P. R. et al (2010) Crit Care Med 38:el-9). 이런 범유행은 위협에 반응하는 방법의 불확실성에 기인하여 학교 및 상용시설을 휴업시켰다.
세 가지 유형의 인플루엔자 바이러스, 즉 인플루엔자 A, B 및 C가 있다. 인간 인플루엔자 A 및 B 바이러스는 질환의 계절성 유행병을 야기한다. C형 인플루엔자 감염은 약한 호흡기 질병을 야기하며, 유행병을 야기하는 것으로 생각되지 않는다. 인플루엔자 A 바이러스는 바이러스의 표면 상의 2개 단백질: 혈구응집소(H) 및 뉴라미니다제(N)에 기반하여 아형으로 나누어진다. 17종의 상이한 혈구응집소 아형 및 10종의 상이한 뉴라미니다제 아형이 있다. 인플루엔자 A 바이러스는 추가로 상이한 바이러스로 나누어질 수 있다. 사람에서 발견되는 인플루엔자 A 바이러스의 기존의 아형은 인플루엔자 A(H1N1) 및 인플루엔자 A(H3N2) 바이러스이다. 인플루엔자 B 바이러스는 아형으로 나누어지지는 않지만, 2종의 상이한 계통으로 추가로 나누어질 수 있다. 인플루엔자 A(H1N1), A(H3N2) 및 인플루엔자 B 바이러스는 매년 인플루엔자 백신에 포함된다.
현재 5종의 임상적으로 적절한 인플루엔자 바이러스가 인간 집단에서 순환 중이며, 이 중 셋은 인플루엔자 A이고, 또한 둘은 인플루엔자 B이다. 인플루엔자 A형 바이러스는 2개의 별개의 계통발생 그룹 1 및 2로 나누어진다. 그룹 1은 혈구응집소 아형 H1, H2, H5, H6, H8, H9, H11, H13 및 H16을 포함한다. 그룹 2는 H3, H4, H7, H10, H15 및 H14를 포함한다. 그룹 1의 현재 적절한 순환 인플루엔자 A 바이러스는 아형 H1(이는 추가로 인간 및 돼지 유래의 아형으로 나뉨)을 가지며, 그룹 2의 적절한 순환 바이러스는 현재 아형 H3을 가진다. 인플루엔자 A 바이러스는 미국에서 과거 12번의 인플루엔자 계절 중 8번에서 우세했던 H3 바이러스에 의한 대규모 계절성 질환을 초래한다(CDC 계절성 독감; 미국 감시 데이터(United States Surveillance Data)). 1968년에, H3 바이러스는 20세기의 3번의 주된 인플루엔자 범유행 중 한 번을 야기하였고, H3 바이러스는 인간 질환의 유의미한 작용제로서 해당 시점 이후로 지속되었다. 인간에 추가로, H3 인플루엔자 바이러스는 통상적으로 조류, 돼지 및 말을 감염시킨다. 인플루엔자 B 바이러스는 100년 초과 동안 인간에서 순환하였고, 현재의 바이러스주는 두 계통, 즉, 야마가타(Yamagata) 계통과 빅토리아(Victoria)로 나누어진다. 최근에 3가 인플루엔자 백신은 인플루엔자 B뿐만 아니라 H1 바이러스 및 H3 바이러스 계통을 모두 아우르는 4가 백신으로 확장되었다.
인플루엔자에 대한 현재의 치료는 적절하지 않으며, 효과적이지 못하다. 널리 퍼져있는 백신접종에도 불구하고, 인플루엔자에 대한 감수성(susceptibility)이 남아있다. 감수성에 기여하는 인자는, (1) 백신 부족이 널리 만연했을 때인 2009년 H1N1 범유행과 같은 백신접종 보급률, (2) 백신 제형이 순환에서 바이러스주를 불량하게 나타냈을 때인 2008년과 같은 해, (3) 평균 효능은 65세에 40 내지 50%, 70세를 지나서 단지 15 내지 30%의 범위에 있기 때문에, 노인에서의 감소된 백신접종 효능, 및 (4) 계절성 백신에서 나타나지 않은 범유행 바이러스주 의 출현을 포함한다. 추가로, 인플루엔자의 치료에서 현재 이용가능하나 항-바이러스 치료제에 대한 약물 내성은 심각한 문제가 되었다. M2 단백질 상에서 작용하거 바이러스 융합을 저해하는 아다만탄(아만티딘 미치 리만타딘)에 대한 내성은 2004년에 1.9%로부터 2004년 내지 2005년 독감 계절의 처음 6개월 동안 14.5%까지 증가되었고, 현재 90%를 능가하였다(Sheu, T. G. et al (2011) J Infect Dis 203 : 13-17). 인플루엔자 뉴라미니다제 단백질을 저해하는 항바이러스 약물인 타미플루(Tamiflu)에 대한 내성은 2006 내지 2007년 독감 계절 동안 H1N1 바이러스의 1 내지 2%로부터 2007년 내지 2008년에 12%까지 극적으로 증가하였으며, 2009년에 계절성 H1N1바이러스의 99%를 초과하였다. 다행스럽게도, 2009년의 범유행 H1N1 바이러스주는 타미플루에 민감하였고, 범유행동안 보다 소수의 사망을 초래할 가능성이 있었다. 이렇게, 새로운 인플루엔자 치료제에 대한 압도적인 필요가 있다.
혈구응집소(HA) 분자 내에서 보존된 에피토프가 최근에 발견되었기 때문에, 인플루엔자에 대한 치료 항체의 개발은 주목되고 있다. 다수의 인플루엔자 A 바이러스 아형을 인식하고 중화할 수 있는 인간 단클론성 항체(MAb)의 단리 및 특성규명의 몇몇 보고가 있었다. 이들 중 다수는 백신접종 또는 자연적 감염 동안 가장 강한 중화 항체를 유발하는 혈구응집소(HA) 당단백질로 표적화된다. HA는 바이러스 감염에서 중요한 구성성분인 두 서브유닛 HA1 및 HA2로 구성된다. HA1은 숙주 세포 시알산에 대한 부착에 연루되며, HA2는 바이러스 및 엔도솜막의 융합을 매개한다. MAb CR6261은 H1 바이러스에 결합하는 H1 바이러스 및 그룹 1 내의 다른 아형(H5)에 결합하고 HA2 서브유닛 상에 결합하는 제대로 특징화된 항체이다(Throsby M et al (2008) PLoS ONE 3 :e3942; Eckert DC et al (2009) Science 324:246-251; Friesen RHE et al (2010) PLoS ONE 5(2):el906; 미국 특허 제8,192,927호). MAb CR8020은 H3과 그룹 2 바이러스인 다른 아형(H7) 바이러스 둘 다에 대해 HA2의 막-근위 영역에 결합한다(Eckert DC et al (2011) Science 333 :843-850). 스위스에서 연구자로부터의 항체 FI6v3은 그룹 1(H1)과 2(H3) 바이러스 상에 존재하는 에피토프에 결합할 수 있지만, FI6은 마우스에서 제한된 효능을 나타내었다(Corti D et al (2011) Science 333 :850-856). 팔레세(Palese) 및 동료들은 상이한 혈구응집소를 지니는 마우스에서의 순차적 면역법을 이용하는 H3 인플루엔자 바이러스에 대한 광범위하게 보호적인 단클론성 항체를 보고하였다(Wang TT et al (2010) PLoS Pathog 6(2):el000796; 미국 특허 제20110027270호). 이 접근을 이용하여, 광범위한 반응성의 H1 항체가 분리되었다(Tan GS et al (2012) J Virol 86(11):6179-6188).
현재, 보통의 항체 요법 용량은 미국에서 임상 승인된 20종 이상의 단클론성 항체를 포함하는 다수의 재조합 항체에 의해 지금까지 연구 및 임상 경험에 기반하여, 용량당 다수의 ㎎/㎏이 되는 것으로 잘 확립되었다(Newsome BW and Ernstoff MS (2008) Br J Clin Pharmacol 66(1):6-19). 예를 들어, 결장직장암에 대해 승인된 항-EGFR 완전 인간 항체인 파니투무맙은 2주마다 1 내지 1½ 시간에 걸쳐 6㎎/㎏으로 정맥 내로 투여된다. 평균 인간 체중 70㎏를 이용하여, 이는 용량당 420㎎의 항체에 이른다.
인플루엔자에 대해 임상 승인된 단클론성 항체는 아직 없다. 동물에서 인플루엔자 항체에 의한 연구 보고는 치료적 또는 예방적 목적을 위해 정맥내 또는 복강내로 주어질 때 이들 항체의 유효 용량 범위는 1㎎/㎏ 내지 100㎎/㎏의 범위를 필요로 한다는 것을 입증한다. 이들 항체 중 일부(CR6261, CR8020, TCN-032)를 이용하는 미국에서의 I상 임상시험은 2㎎/㎏ 내지 50㎎/㎏의 안전성 및 내약성 연구에서의 용량 상승을 이용한다(clinicaltrials.gov; NCT01390025, NCT01406418, NCT01756950). 이런 다량의 재료는 새로운 계열의 항체 치료의 개발에서의 주된 장애물을 제공한다. 구체적으로, 이 범위에서의 전신 용량은 주사에 수반되는 상당한 재료비 및 인건비를 초래한다. 이와 같이, 인플루엔자에 대한 항체 요법 또는 예방이 가능한 대안이 되는데 필요한 재료의 효능을 증가시키고/시키거나 양을 감소시키기 위한 긴요한 필요가 있다.
본원에서 참고문헌의 인용은 이러한 것이 본 발명에 대한 선행기술이라는 용인으로서 해석되어서는 안 된다.
본 발명은 비강내로 또는 흡입 투여를 포함하여 호흡관 또는 기도에 직접 중화 항체(들)를 투여하는 것에 의한, 특히 인플루엔자 바이러스를 포함하는 바이러스 감염의 효과적인 치료 및 예방을 위한 신규한 방법 및 수단을 제공한다. 본 발명은 흡입(IH) 및/또는 비강내(IN) 전달 및 투여에 의하는 것을 포함하여 호흡관에 중화 항체의 직접 전달이 동일한 양의 동일한 항체의 전신 투여보다 더 낮은 용량에서 우수하고, 더 효능있고 효과적이라는 것을 입증한다. 바이러스 노출 또는 감염 전 또는 심지어 후에 전달되는 IN 또는 IH에 의한 치료 또는 예방은 효과적이다.
본 발명은 하나 이상의 바이러스 중화 단클론성 항체를 포함하는 포유류에서의 바이러스 감염의 치료 또는 예방에 효과적인 흡입 또는 비강내 조성물을 제공한다. 제1 양태에서, 본 발명은 1㎎/㎏ 이하의 단일 단위용량으로 바이러스 중화 단클론성 항체를 포함하는 포유류에서의 바이러스 감염의 치료 또는 예방에 효과적인 흡입 또는 비강내 조성물을 제공한다. 본 발명은 10㎎/㎏ 이하의 단일 단위용량으로 하나 이상의 바이러스 중화 단클론성 항체를 포함하는 포유류에서의 바이러스 감염의 치료 또는 예방에 효과적인 흡입 또는 비강내 조성물을 제공한다. 본 발명은 1㎎/㎏ 미만의 단일 단위용량으로 하나 이상의 바이러스 중화 단클론성 항체를 포함하는 포유류에서의 바이러스 감염의 치료 또는 예방에 효과적인 흡입 또는 비강내 조성물을 제공한다. 본 발명은 0.5㎎/㎏ 미만의 단일 단위용량으로 바이러스 중화 단클론성 항체를 포함하는 포유류에서의 바이러스 감염의 치료 또는 예방에 효과적인 흡입 또는 비강내 조성물을 제공한다. 본 발명은 0.1㎎/㎏ 미만의 단일 단위용량으로 바이러스 중화 단클론성 항체를 포함하는 포유류에서의 바이러스 감염의 치료 또는 예방에 효과적인 흡입 또는 비강내 조성물을 제공한다.
특정 양태에서, 본 발명은 하나 이상의 인플루엔자 바이러스 중화 단클론성 항체를 포함하는 포유류에서의 인플루엔자 바이러스 감염을 포함하는 인플루엔자 바이러스의 치료 또는 예방에 효과적인 흡입 또는 비강내 조성물을 제공한다. 추가 양태에서, 본 발명은 순환 인플루엔자 바이러스주에 대한 인플루엔자 중화 항체들의 조합을 포함하는 포유류에서의 인플루엔자 바이러스의 전염의 치료, 예방 또는 감소에 효과적인 흡입 또는 비강내 조성물을 제공한다. 양태에서, 본 발명은 순환 인플루엔자 바이러스주, 특히 인플루엔자 A 항-H1 항체, 인플루엔자 A 항-H3 항체 및 항-인플루엔자 B 항체로 이루어진 순환 인플루엔자 바이러스주에 대한 인플루엔자 중화 항체들의 조합으로 이루어진 비강내 투여를 위한 조성물을 제공한다. 일 양태에서, 조합물은 H2, H5 및 H7 바이러스주를 포함하지만, 이들로 제한되지 않는 다른 인플루엔자 바이러스주에 대해 효과적이거나 또는 더 효과적인 인플루엔자 A 항체를 포함한다.
조성물은 인플루엔자 바이러스의 사용에 대해 그리고 치료 또는 예방에 대해 적합하고 적용가능하다. 특정 양태에서, 조성물은 호흡기 바이러스의 전염을 감소시키는데 적합하다. 조성물은 인플루엔자 바이러스의 전염을 감소시키는데 적합하다.
일 양태에서, 조성물(들)은 0.5 ㎎/㎏ 이하의 단일 단위용량으로 바이러스 중화 단클론성 항체를 포함한다. 양태에서, 조성물(들)은 0.1㎎/㎏ 이하의 단일 단위용량으로 바이러스 중화 단클론성 항체를 포함한다. 추가 양태에서, 조성물(들)은 0.05㎎/㎏ 이하의 단일 단위용량으로 바이러스 중화 단클론성 항체를 포함한다. 추
일 양태에서, 조성물(들)은 0.5㎎/㎏ 미만의 단일 단위용량으로 바이러스 중화 단클론성 항체를 포함한다. 양태에서, 조성물(들)은 0.1㎎/㎏ 미만의 단일 단위용량으로 바이러스 중화 단클론성 항체를 포함한다. 추가 양태에서, 조성물(들)은 0.05㎎/㎏ 미만의 단일 단위용량으로 바이러스 중화 단클론성 항체를 포함한다.
예시적 양태에서, 조성물은 인플루엔자 바이러스 중화 항체인 하나 이상의 바이러스 중화 항체를 포함할 수 있다. 조성물은 특히 인플루엔자 A에 대한, 특히 인플루엔자 A 그룹 1 및/또는 인플루엔자 A 그룹 2에 대한 하나 이상의 인플루엔자 바이러스 중화 항체를 포함할 수 있다. 조성물은 특히 인플루엔자 B에 대한, 특히 야마가타 계통 및/또는 빅토리아 계통에 대한 하나 이상의 인플루엔자 바이러스 중화 항체를 포함할 수 있다. 조성물은 인플루엔자 A 바이러스에 대해, 특히 H1 바이러스 및/또는 H3 바이러스를 포함하는 그룹 1 및 그룹 2 인플루엔자 A 바이러스에 대해 및/또는 야마가타 계통 및/또는 빅토리아 계통을 포함하는 인플루엔자 B 바이러스에 대해 하나 이상의 인플루엔자 바이러스 항체를 포함할 수 있다. 특정 양태에서, 조성물은 인플루엔자 A 바이러스에 대해, 특히 H1 바이러스 및/또는 H3 바이러스를 포함하는 그룹 1 및 그룹 2 인플루엔자 A 바이러스에 대해 하나 이상의 인플루엔자 항체 및 야마가타 계통 및/또는 빅토리아 계통을 포함하는 인플루엔자 B 바이러스에 대해 하나 이상의 인플루엔자 바이러스 항체를 포함할 수 있다. 조성물은 인플루엔자 A 바이러스에 대해, 특히 H1 바이러스 및/또는 H3 바이러스를 포함하는 그룹 1 및 그룹 2 인플루엔자 A 바이러스에 대해 하나 이상의 인플루엔자 항체 및 인플루엔자 B 바이러스에 대해 하나 이상의 인플루엔자 바이러스 항체를 포함할 수 있다.
본원에 제공된 연구에서 예시된 바를 포함하는 본 발명에 따르면, 수많은 그리고 다양한 중화 항체는 기도 또는 호흡관에, 예컨대 비강내 또는 흡입 투여에 의해 투여될 때 더 낮은 용량으로 향상된 효능을 가진다. 따라서, 본 발명의 조성물은 인플루엔자 바이러스를 중화시킬 수 있고, 인플루엔자 A 및/또는 인플루엔자 B 바이러스를 겨눌 수 있는, 중화 항체, 또는 Fab 단편을 포함하는 이의 단편을 포함할 수 있다. 본 발명의 조성물은 CR6261, CR8020, CR9114, 6F12, GG3, 5A7, Mab53 및 Mab579로부터 선택되는 하나 이상의 인플루엔자 바이러스 중화 항체, 이들의 단편, 이들의 합성 또는 재조합 유도체, 이들의 인간화 또는 키메라 형태, 및 이들의 중쇄 및 경쇄를 갖는 항체를 포함할 수 있다.
조성물은 특히 인플루엔자 중화 항체 6F12, 이의 단편, 이들의 합성 또는 재조합 유도체, 이들의 인간화 또는 키메라 형태 및 이들의 중쇄 및 경쇄를 갖는 항체를 포함할 수 있다. 조성물은 특히 인플루엔자 중화 항체 GG3, 이의 단편, 이들의 합성 또는 재조합 유도체, 이들의 인간화 또는 키메라 형태 및 이들의 중쇄 및 경쇄를 갖는 항체를 포함할 수 있다. 조성물은 특히 인플루엔자 중화 항체 5A7, 이의 단편, 이들의 합성 또는 재조합 유도체, 이들의 인간화 또는 키메라 형태 및 이들의 중쇄 및 경쇄를 갖는 항체를 포함할 수 있다. 조성물은 특히 인플루엔자 중화 항체 Mab53, 이의 단편, 이들의 합성 또는 재조합 유도체, 이들의 인간화 또는 키메라 형태 및 이들의 중쇄 및 경쇄를 갖는 항체를 포함할 수 있다. 조성물은 특히 인플루엔자 중화 항체 Mab579, 이의 단편, 이들의 합성 또는 재조합 유도체, 이들의 인간화 또는 키메라 형태 및 이들의 중쇄 및 경쇄를 갖는 항체를 포함할 수 있다.
조성물은 특히 인플루엔자 A에 대한, 특히 인플루엔자 A 그룹 1 및/또는 인플루엔자 A 그룹 2에 대한 하나 이상의 인플루엔자 바이러스 중화 항체를 포함할 수 있다. 예시적 양태에서, 조성물은 인플루엔자 A에 대한, 특히 인플루엔자 A 그룹 1에 대한, 특히 H1 바이러스 아형에 대한 하나 이상의 인플루엔자 바이러스 중화 항체를 포함할 수 있되, 하나 이상의 항체는 CR6261 또는 CA6261, 6F12, GG3, mAb53, 또는 이의 활성 단편으로부터 선택된다. 조성물은 인플루엔자 A에 대한, 특히 인플루엔자 A 그룹 2에 대한, 특히 H3 바이러스 아형에 대한 하나 이상의 인플루엔자 바이러스 중화 항체를 포함할 수 있되, 하나 이상의 항체는 CR8020 또는 CA8020, mAb579 또는 이의 활성 단편으로부터 선택된다. 양태에서, 조성물은 인플루엔자 바이러스 중화 항체 CR9114 또는 CA9114, 또는 이의 활성 단편을 포함할 수 있으며, 상기 항체는 인플루엔자 A에 대한 및/또는 인플루엔자 B에 대한 인플루엔자 바이러스 중화 항체를 제공한다. 조성물은 인플루엔자 B에 대한, 특히 야마가타 계통 및/또는 빅토리아 계통에 대한 하나 이상의 인플루엔자 바이러스 중화 항체를 포함할 수 있되, 하나 이상의 항체는 5A7, CR9114, CA9114 또는 이의 활성 단편으로부터 선택된다.
바이러스 중화 항체는 특히 중화시킬 수 있는 항체 단편일 수 있다. 양태에서, 항체 단편은 Fc가 없고/없거나 효과기 기능이 없거나 감소되었다. 항체 단편은 Fab, Fab' 및 F(ab')2로부터 선택될 수 있다. 바이러스 중화 항체 또는 단편은 재조합 단백질로부터 유래될 수 있고, 활성 단편을 포함하여 재조합적으로 발현될 수 있거나, 또는 유전자 물질 또는 DNA 또는 DNA 벡터 발현의 방법에 의한 것, 예컨대 중화 항체 또는 이의 단편(들)을 암호화하는 DNA 또는 RNA를 전달에 의한 것을 포함하여 중화 항체 또는 단편(들)을 제공하는 수단 또는 방법을 포함하는 다른 수단 또는 방법에 의해 유래 또는 생성될 수 있다.
본 발명의 조성물은 추가로 약제학적으로 허용가능한 부형제, 담체 또는 희석제를 포함할 수 있다. 조성물은 비강 또는 폐 전달에 대해 그리고 비강내 또는 흡입 투여에 대해 적합 또는 적절한 부형제, 담체, 희석제 또는 첨가제를 포함할 수 있다. 조성물은 면역학적 반응 및/또는 항체-매개 세포 또는 시스템 효과룰 자극 또는 향상시키는데 적합 또는 적절한 부형제, 담체, 희석제 또는 첨가제를 포함할 수 있다. 조성물은 면역 반응의 면역학적 매개체 또는 자극제를 포함할 수 있다.
본 발명은 바이러스, 특히 호흡기 바이러스, 특히 인플루엔자 바이러스의 전염의 치료, 예방 또는 감소 또는 저해를 위한 방법을 제공한다. 본 발명은 비강내로(IN) 또는 흡입을 통해 상기 포유류에게 호흡기 바이러스를 중화시킬 수 있는 하나 이상의 단클론성 항체를 투여하는 단계를 포함하는, 호흡기 바이러스에 노출되거나, 걸리거나 또는 고통받고 있는 포유류에서의 바이러스 감염의 치료 또는 예방을 위한 방법을 제공한다.
상기 방법의 일 양태에서, 단클론성 항체는 IgG 항체이다. 상기 방법의 일 양태에서, 호흡기 바이러스는 인플루엔자 바이러스이다. 호흡기 바이러스는 인플루엔자 바이러스 A형 또는 B형, 또는 알려지지 않거나 또는 결정되지 않은 유형일 수 있다. 일 양태에서, 항체는 인플루엔자 A 또는 B를 중화시키고, 겨눌 수 있는 중화 항체이다. 일 양태에서, 항체는 인플루엔자 A 및 B 바이러스를 중화시킬 수 있고, 겨눌 수 있는 단클론성 항체들의 조합이다.
상기 방법에 따르면, 항체는 감염 후에 또는 추정되는 감염, 노출 또는 임상적 증상의 징후 후에 투여될 수 있다. 이의 양태에서, 항체는 감염 후 8시간까지의 시한까지 투여될 수 있다. 대안적으로는, 항체는 감염 후 24시간까지의 시한까지 투여된다. 추가 대안에서, 항체는 감염 후 48시간까지의 시한까지 투여된다. 또한 추가 대안에서, 항체는 감염 후 72시간까지의 시한까지 투여된다. 항체는 단일 용량으로 또는 감염 후 8 시간(8hpi), 12hpi, 18hpi, 24hpi, 36hpi, 48hpi, 72hpi, 감염 후 1일, 감염 후 2일, 감염 후 3일, 감염 후 4일, 감염 후 5일, 감염 후 6일, 감염 후 7일, 감염 후 1주, 감염 후 10일, 감염 후 2주, 감염 후 3주, 감염 후 4주, 감여 후 1개월, 감염 후 수 개월까지를 포함하는 다회의 순차적 용량으로 투여될 수 있다.
항체는 단일 용량으로 투여될 수 있다. 단일 용량은 10㎎/㎏ 체중 미만, 5㎎/㎏ 체중 미만, 2㎎/㎏ 체중 미만, 1㎎/㎏ 체중 이하일 수 있다. 단일 용량은 1㎎/㎏ 체중 미만, 0.5㎎/㎏ 미만, 0.1㎎/㎏ 미만, 0.05㎎/㎏ 미만일 수 있다. 항체는 다회 용량으로 투여될 수 있다. 용량은 동일한 각각의 용량이거나 각각의 용량에서 다를 수 있거나, 또는 초기에 더 높은 용량 다음에 더 낮은 용량일 수 있다. 단일 용량 또는 용량들 또는 임의의 용량은 1㎎/㎏ 체중 미만, 0.5㎎/㎏ 미만, 0.1㎎/㎏ 미만, 0.05㎎/㎏ 미만일 수 있다. 초기 용량은 1㎎/㎏ 초과일 수 있고, 추가 또는 후속적 용량은 더 낮을 수 있거나, 또는 1㎎/㎏ 미만일 수 있다.
항체는 용량당 1㎎/㎏ 미만의 다회 용량으로 기도 또는 호흡관에 투여될 수 있다. 항체는 용량당 1㎎/㎏ 미만의 다회 용량으로 비강내로 또는 흡입을 통해 투여될 수 있다. 이러한 양태에서, 다회 용량은 적어도 2시간 간격 및 최대 72시간 또는 추정되는 감염, 노출 또는 임상적 증상의 징후 후에 투여될 수 있다. 따라서 항체 용량은 몇 분 또는 몇 시간 또는 며칠 간격으로 투여될 수 있다. 항체 용량은 감염 후 또는 추정되는 감염 또는 노출 후 몇 시간 또는 며칠 간격으로 투여될 수 있다. 항체 용량은 감염 후 또는 추정되는 감염 또는 노출 후 및 최대 2, 4, 6, 8, 12, 24, 36, 48 또는 72시간 후에 투여될 수 있다.
본 발명의 투여 프로토콜 또는 방법은 특히 기도 또는 호흡관, 특히 항체의 흡입 또는 비강내 투여에 의해 기도 또는 호흡관에 대한 제1 투여와 조합으로 또는 이에 후속한 흡입 또는 비강내 경로를 통하지 않는 제2의 또는 1회 이상의 추가적인 투여, 예를 들어 전신 전달, 예컨대 IP 또는 IV 투여(들)를 포함할 수 있다. 따라서 상기 방법은 IP 또는 IV로 추가로 투여되는 바이러스 특이적 단클론성 항체를 포함할 수 있되, 추가로 투여되는 항체는 중화 또는 비-중화 항체이다. IP 또는 IV로 추가로 투여되는 항체는 IN으로 또는 흡입을 통해 투여되는 것과 동일할 수 있거나 또는 IN으로 또는 흡입을 통해 투여되는 것과 상이하거나 또는 변용된 항체일 수 있다. 예를 들어 IP 또는 IV를 통해 추가로 투여되는 항체는 IN 또는 흡입 투여된 항체에 동시에, 순차적으로 또는 후속적으로 투여될 수 있다. 임의의 이러한 후속 투여는 이후의 시간일 수 있고, 2, 4, 6, 8, 12 또는 24시간 이후일 수 있다. 후속 투여는 며칠 이후일 수 있고, 1일, 2일 또는 3일 이후일 수 있다. 후속 투여는 며칠 이후일 수 있고, 최대 7일 이후, 1주 이후 또는 몇 주 후일 수 있다. 후속 투여는 단일 용량 또는 다회 용량으로 수시간 및/또는 며칠 및/또는 몇 주 후일 수 있다.
추가 양태에서, 본 발명은 중화 항체의 제1 비강내 또는 흡입 용량을 투여하는 단계 및 후속적으로 또는 동시에 호흡관에 투여되지 않고, 복강내로 또는 정맥내로 투여될 수 있는 항체의 제2 용량, 또는 1회 이상의 추가적인 용량(들)을 투여하는 단계를 포함하는, 호흡기 바이러스, 특히 인플루엔자 바이러스에 대한 단클론성 항체의 투여를 위한 프로토콜을 제공하되, 제2 용량 또는 추가적인 용량(들)의 항체는 제1 용량의 항체와 동일 또는 상이한 항체이다. 제2 용량 또는 추가적인 용량(들)의 항체는 더 효과적이거나 또는 효능있는 IV 또는 IP가 되도록 변용 또는 변형된 변용 또는 변형 항체일 수 있다. 양태에서, 제1 용량의 항체는 효과기 기능이 없을 수 있고(예컨대 Fab 항체), 제2 용량의 항체는 효과기 기능을 가지거나, Fc를 가질 수 있거나, 혹은 향상된 효과기 기능을 갖도록 변형될 수 있다.
프로토콜은 흡입 또는 비강내 경로를 통한 항체의 다회 용량을 포함할 수 있고, IP 또는 IV 경로를 통한 동일 또는 대안의 항체의 다회 용량을 포함할 수 있다. 프로토콜의 양태에서, 항체가 투여 중인 대상 또는 환자는, 예컨대 질환 또는 바이러스 감염의 임상적 징후에 대해 모니터링될 수 있고, 용량 또는 용량들은 변용, 감소 또는 향상되거나, 또는 환자 또는 대상의 상태 및 감염 또는 질병의 상태에 따라서 가깝게 또는 더 간격을 두고 투여될 수 있다.
프로토콜의 일 양태에서, 호흡기 바이러스는 인플루엔자 바이러스일 수 있고, 인플루엔자 A 또는 인플루엔자 B 또는 알려지지 않은 또는 결정되지 않은 인플루엔자 바이러스일 수 있다. 호흡관에 투여되지 않는 제2 용량의 항체는 중화 또는 비-중화 항체일 수 있고, 효과기 기능 또는 향상된 효과기 기능을 가질 수 있다.
프로토콜의 일 양태에서, 제1 비강내 또는 흡입 용량은 1㎎/㎏ 미만, 0.5 ㎎/㎏ 미만, 0.1㎎/㎏ 미만일 수 있다. 제2 또는 추가적인 IP 또는 IV 용량은 특히 제1 비강내 또는 흡입 용량보다 더 고용량으로 투여된다. 제2 또는 추가적인 IP 또는 IV 용량은 특히 제1 비강내 또는 흡입 용량보다 적어도 10배 더 높은 항체의 양의 용량으로 투여된다. 제2 또는 추가적인 IP 또는 IV 용량은 적어도 1㎎/㎏, 적어도 5 ㎎/㎏, 적어도 10 ㎎/㎏, 적어도 15 ㎎/㎏, 또는 10㎎/㎏ 초과, 또는 20 ㎎/㎏ 초과, 또는 50 ㎎/㎏ 초과일 수 있다.
프로토콜의 추가 양태에서, 제1 비강내 또는 흡입 용량은 1㎎/㎏ 미만일 수 있고, 제2 IP 또는 IV 용량은 제1 비강내 용량보다 ㎎/㎏으로 적어도 10배 더 높을 수 있다. 프로토콜의 추가 양태에서, 제1 비강내 또는 흡입 용량은 1㎎/㎏ 미만일 수 있고, 제2 IP 또는 IV 용량은 제1 비강내 용량보다 ㎎/㎏으로 적어도 50배 더 높을 수 있다. 추가 양태에서, 제1 비강내 또는 흡입 용량은 0.5㎎/㎏ 미만일 수 있고, 제2 IP 또는 IV 용량은 적어도 5 ㎎/㎏일 수 있다.
제1 비강내 또는 흡입 용량은 1㎎/㎏ 미만일 수 있고, 추정되는 감염, 노출 또는 임상적 증상의 징후 후 24시간 내에 투여될 수 있다. 제1 비강내 또는 흡입 용량은 1㎎/㎏ 미만일 수 있고, 추정되는 감염, 노출 또는 임상적 증상의 징후 후 48시간 내에 투여될 수 있다. 제1 비강내 또는 흡입 용량은 1㎎/㎏ 미만일 수 있고, 추정되는 감염, 노출 또는 임상적 증상의 징후 후 72시간 내에 투여될 수 있다.
본 발명의 다른 양태는 호흡기 바이러스에 의한 감염에 노출되었거나 노출될 위험에 있거나 또는 호흡기 바이러스에 의한 감염의 임상 징후를 나타내는 대상에게 바이러스 중화 항체를 1㎎/㎏ 이하의 단일 단위용량으로 비강내로 또는 흡입을 통해 투여하는 단계를 포함하는, 호흡기 바이러스의 전염을 저해하는 방법이다. 단일 단위용량은 10㎎/㎏ 미만 또는 1㎎/㎏ 미만일 수 있다. 상기 방법의 단일 단위용량은 0.5 ㎎/㎏ 미만 또는 0.1㎎/㎏ 미만 또는 0.05 ㎎/㎏ 미만일 수 있다.
바이러스는 특히 인플루엔자 바이러스일 수 있고, 인플루엔자 A 또는 B 바이러스 또는 알려지지 않은 또는 결정되지 않은 인플루엔자 바이러스, 항체 IgG 항체일 수 있다.
상기 방법의 바이러스 중화 항체는 추정되는 감염, 노출 또는 임상적 증상의 징후 후 48시간 내에 투여될 수 있다. 바이러스 중화 항체는 추정되는 감염, 노출 또는 임상적 증상의 징후 후 24시간 내에 투여될 수 있다. 바이러스 중화 항체는 추정되는 감염, 노출 또는 임상적 증상의 징후 후 12시간 내에 투여될 수 있다. 바이러스 중화 항체는 추정되는 감염, 노출 또는 임상적 증상의 징후의 24시간 초과 후에 그리고 72시간 내에 투여될 수 있다. 바이러스 중화 항체는 임상적 증상의 초기 징후 시 또는 초기 징후 후에 투여될 수 있다.
전염을 억제하기 위한 방법에 따르면, 항체는 0.5 ㎎/㎏ 미만의 용량, 0.1㎎/㎏ 미만의 용량, 0.05 ㎎/㎏ 미만의 용량으로 투여될 수 있다.
다른 목적 및 이점은 다음의 예시적 도면을 참고로 하여 진행하는 다음의 설명의 개요로부터 당업자에게 명백하게 될 것이다.
도 1은 중화 및 비-중화 MAb가 효과적인 감염 후 IP임을 도시한 도면. 동물을 H3 인플루엔자 바이러스(본원에서 Vic/11 MA로서 지칭되는 마우스-적합화된 A/Victoria/361/2011)의 10XLD50으로 접종하고 나서, 10㎎/㎏ IP로 다양한 잘 알려져 있는 항체 - 6P15, IP 19, 1K17(모두 비-중화) 및 CA8020 (중화)- 및 대조군으로서 PBS 또는 무바이러스로 감염 후 24시간(24hpi)에 처리하였다. 동물을 감염 후 14일 동안 매일 체중에 대해 모니터링하였고, 본래의 제0일 체중의 백분율 체중을 플롯팅한다.
도 2는 중화 및 비-중화 MAb의 IP전달이 예방적으로 효과적임을 도시한 도면. 동물을 H3 인플루엔자 바이러스 VIC/ 11 MA의 10XLD50으로 접종하고 나서, 감염 1시간 전에(-1hpi) 10㎎/㎏ IP로 다양한 잘 알려져 있는 항체 -1K17, 1P19, 1H16(모두 비-중화) 및 CA8020(중화)- 및 PBS 또는 아이소타입 대조군 항체 대조군으로 처리하였다. 동물(각각의 그룹에서 10마리 동물)을 감염 후 14일 동안 매일 체중에 대해 모니터링하였고, 본래의 제0일 체중의 백분율 체중을 플롯팅한다.
도 3은 IV 또는 IP로 주어진 항체가 유사한 효능을 나타낸다는 것을 도시한 도면. 동물을 H3 인플루엔자 바이러스 VIC/11 MA의 10XLD50으로 접종하고 나서, 감염 1시간 후(1hpi) 10㎎/㎏의 항체 CA8020 IP 또는 IV로 대조군으로서 PBS로 접종하였다. 동물을 감염 후 14일 동안 매일 체중에 대해 모니터링하였고, 본래의 제0일 체중의 백분율 체중을 플롯팅한다.
도 4는 중화 항체 및 비-중화 항체의 비강내(IN) 투여 대 복강내(IP) 투여의 비교를 도시한 도면. 동물을 H3 인플루엔자 바이러스 VIC/11 MA의 10XLD50으로 접종하고 나서, 24hpi에 10㎎/㎏의 중화 항체 CA8020으로 IN 또는 IP에 의해 또는 비-중화 항체 6P15로 IN 또는 IP에 의해 처리하고, 대조군으로서 PBS로 처리하였다. IN으로 중화 Mab를 제공하였을 때, 치료 효능은 동일한 항체의 동일 용량의 IP 투여에 비해 증가되었다. 대조적으로, IN으로 비-중화 Mab를 제공하였을 때, 치료 효능은 동일한 용량에서의 IP에 비해 감소되었다. 동물을 감염 후 14일 동안 매일 체중에 대해 모니터링하였고, 본래의 제0일 체중의 백분율 체중을 플롯팅한다.
도 5는 H1 바이러스에 대한 치료 효능에서 CA6261 항체의 항체 단편 Fab의 IN 대 IP 투여를 비교하는 결과를 제공하는 도면. 동물을 H1 인플루엔자 바이러스의 10XLD50으로 접종하고 나서, 24hpi에 IN 또는 IP로 투여하는 10㎎/㎏, 1㎎/㎏ 및 0.1㎎/㎏의 중화 CA6261 Fab, 대조군으로서 PBS 처리 및 무바이러스로 처리하였다. 동물을 감염 후 14일 동안 매일 체중에 대해 모니터링하였고, 본래의 제0일 체중의 백분율 체중을 플롯팅한다. IN으로 투여한 Fab CA6261 항체의 모든 용량은 임의의 IP 용량보다 더 큰 효능을 입증하였다. 중화 Fab IP의 투여는 더 고용량, 즉, 10㎎/㎏에서조차 검출가능한 효능을 입증하지 못하였다.
도 6은 H3 바이러스에 대한 치료 효능에서 CA8020 항체의 Fab 대 비-중화 6P15의 Fab의 IN 투여를 비교하는 결과를 제공한다. 동물을 H3 인플루엔자 바이러스의 10XLD50으로 접종하고 나서, 24hpi에 IN으로 10㎎/㎏의 중화 CA8020 Fab, 비-중화 6P15 Fab로, 또는 H1 바이러스에 대한 Fab로, 및 대조군으로서 무바이러스로 처리하였다. 동물을 감염 후 14일 동안 매일 체중에 대해 모니터링하였고, 본래의 제0일 체중의 백분율 체중을 플롯팅한다. IN으로 투여한 Fab CA8020 항체는 효능을 입증하였지만, Fab 6P15는 효능을 입증하지 못하였다.
도 7은 비슷한 용량에서의 IN과 IP 비교를 도시하며, IN에 의한 Mab가 IP로 투여한 동일한 Mab보다 10 내지 100배 더 강하다는 것을 나타내는 도면. 동물을 H1 인플루엔자 바이러스(A/Puerto Rico/8/1934)의 10XLD50으로 접종하고 나서, IN 또는 IP로 24hpi에 10㎎/㎏, 1㎎/㎏ 및 0.1㎎/㎏의 중화 CA6261 Mab, 대조군으로서 PBS 및 무바이러스로 처리하였다. 동물을 감염 후 14일 동안 매일 체중에 대해 모니터링하였고, 본래의 제0일 체중의 백분율 체중을 플롯팅한다.
도 8은 비슷한 용량에서의 IN과 IP 비교를 도시하며, IN에 의한 Mab가 IP로 투여한 동일한 Mab보다 10 내지 100배 더 강하다는 것을 나타내는 도면. 동물을 H3 인플루엔자 바이러스의 10XLD50으로 접종하고 나서, IN 또는 IP로 24hpi에 10㎎/㎏, 1㎎/㎏ 및 0.1㎎/㎏의 중화 CA8020 Mab, 대조군으로서 PBS 및 무바이러스로 처리하였다. 동물을 감염 후 14일 동안 매일 체중에 대해 모니터링하였고, 본래의 제0일 체중의 백분율 체중을 플롯팅한다.
도 9는 비슷한 용량에서의 IN 대 IP 비교를 도시하며, 48hpi에 투여할 때 IN에 의한 Mab가 IP로 투여한 동일한 Mab보다 여전히 10 내지 100배 더 강하다는 것을 나타내는 도면. 동물을 H1 인플루엔자 바이러스의 10XLD50으로 접종하고 나서, IN 또는 IP로 48hpi에 10㎎/㎏, 1㎎/㎏ 및 0.1㎎/㎏의 중화 CA6261 Mab, 대조군으로서 PBS 및 무바이러스로 처리하였다. 동물을 감염 후 14일 동안 매일 체중에 대해 모니터링하였고, 본래의 제0일 체중의 백분율 체중을 플롯팅한다.
도 10은 초-저용량이 보호 IN을 제공할 수 있음을 도시한 도면. IN으로 8hpi에 주어진 CA8020 항체는 0.005㎎/㎏만큼 낮은 용량에서 H3 바이러스의 10LD50에 대해 보호적이다. 동물을 H3 인플루엔자 바이러스의 10XLD50으로 접종하고 나서, IN로 8hpi에 0.1㎎/㎏, 0.05㎎/㎏, 0.01㎎/㎏ 및 0.005㎎/㎏의 중화 CA8020 Mab로, IP로 8hpi에 0.1㎎/㎏ CA8020 Mab로, 대조군으로서 PBS 및 무바이러스로 처리하였다. 0.1㎎/㎏으로 IP 투약은 PBS와 동일하였으며, 이는 효과가 없음을 나타낸다. IN에 의한 모든 용량은 효능을 나타내었다. 동물을 감염 후 14일 동안 매일 체중에 대해 모니터링하였고, 본래의 제0일 체중의 백분율 체중을 플롯팅한다.
도 11은 중화 항체의 반복된 초저 투약의 효능 연구를 도시한 도면. 동물을 H3 인플루엔자 바이러스의 10XLD50으로 접종하고 나서, 8hpi, 32hpi 및 또한56hpi에 CA8020 Mab의 반복된 IN 투약으로 처리하였다. 용량당 0.005㎎/㎏으로 그리고 중화 CA8020 Mab의 0.001㎎/㎏에서, 대조군으로서 PBS 및 무바이러스를 이용하여 반복 투약을 수행하였다. 반복 투약 요법은 둘 다 효능을 나타내었다. 동물을 감염 후 14일 동안 매일 체중에 대해 모니터링하였고, 본래의 제0일 체중의 백분율 체중을 플롯팅한다.
도 12는 비강내 대 전신 투여 경로의 모델을 도시한 도면. 바이러스 클리어런스는 전신 투여(IP 및 IV 투여를 포함)의 경우에 기저측에 대한 효과기 기능(EF)을 통해, 그리고 기도에 대한 투여의 경우에(비강내 및 흡입 투여를 포함) 기도에 노출된 정점측에 대한 중화에 의해 주로 매개된다.
도 13a 내지 도 13d는 예시적인 항체 CA6261을 이용하는, IN 또는 IP 투여 단독 대 IN 및 IP 경로에 의한 조합 투여의 항체 투여 연구를 도시한 도면. 2㎎/㎏의 총 항체 투여 용량을 a 및 b에서 도시한다(A에서 0.3㎎/㎏의 IN 기준 및 B에서 0.1㎎/㎏의 IN 투여). 5㎎/㎏의 총 투여를 C 및 D에 도시한다(C에서 0.3㎎/㎏의 IN 기준 및 D에서 0.1㎎/㎏의 IN 투여). 모든 경우에, IN + IP 투여는 IP 단독보다 훨씬 우수하였고, IN 단독에 비해 개선되었다. 1.7㎎/㎏ IP로 그리고 0.3㎎/㎏ CA6261 IN의 투여 또는 4.7㎎/㎏ IP로 0.3㎎/㎏ CA6261의 투여는 본질적으로 바이러스 감염 효과가 없음을 나타내며, 무바이러스와 동일하였다.
도 14는 H1 바이러스에 대한 치료 효능에서 6F12 항체의 IN 대 IP 투여를 비교하는 결과를 도시한 도면. 동물을 H1 인플루엔자 바이러스 PR8의 10XLD50으로 접종하고 나서, 24hpi에 IN 또는 IP로 투여한 10㎎/㎏, 1㎎/㎏ 및 0.1㎎/㎏의 6F12, 대조군으로서 PBS 및 무바이러스로 처리하였다. 동물을 감염 후 14일 동안 매일 체중에 대해 모니터링하였고, 본래의 제0일 체중의 백분율 체중을 플롯팅한다. IN으로 투여한 동일한 용량의 Mab 6F12 항체는 비슷한 IP 용량보다 더 큰 효능을 입증하였다. 1㎎/㎏ 용량에서 24hpi에 IN으로 투여한 6F12는 동물을 감염으로부터 완전히 보호하였다.
도 15는 비슷한 용량에서 IN과 IP 비교를 도시하며 IN에 의한 Mab가 IP로 투여한 동일한 Mab보다 10 내지 100배 더 강하다는 것을 나타내는 도면. 동물을 H1 인플루엔자 바이러스(A/Puerto Rico/8/1934)의 10XLD50으로 접종하고 나서, IN 또는 IP로 24hpi에 10㎎/㎏, 1㎎/㎏ 및 0.1㎎/㎏의 중화 GG3 Mab로, 대조군으로서 PBS 및 무바이러스로 처리하였다. 동물을 감염 후 14일 동안 매일 체중에 대해 모니터링하였고, 본래의 제0일 체중의 백분율 체중을 플롯팅한다.
도 16은 비슷한 용량에서 IN과 IP 비교를 도시하며 IN에 의한 Mab가 IP로 투여한 동일한 Mab보다 10 내지 100배 더 강하다는 것을 나타내는 도면. 동물을 H1 인플루엔자 바이러스(A/Puerto Rico/8/1934)의 10XLD50으로 접종하고 나서, IN 또는 IP로 24hpi에 10㎎/㎏, 1㎎/㎏ 및 0.1㎎/㎏의 중화 CA9114 Mab로, 대조군으로서 PBS 및 무바이러스로 처리하였다. 동물을 감염 후 14일 동안 매일 체중에 대해 모니터링하였고, 본래의 제0일 체중의 백분율 체중을 플롯팅한다.
도 17은 비슷한 용량에서 IN과 IP 비교를 도시하며 IN에 의한 Mab가 IP로 투여한 동일한 Mab보다 10 내지 100배 더 강하다는 것을 나타내는 도면. 동물을 H1 인플루엔자 바이러스(A/California/07/09-마우스 적합화)의 10XLD50으로 접종하고 나서, IN 또는 IP로 24hpi에 10㎎/㎏, 1㎎/㎏ 및 0.1㎎/㎏의 중화 CA6261 Mab로, 대조군으로서 PBS 및 무바이러스로 처리하였다. 동물을 감염 후 14일 동안 매일 체중에 대해 모니터링하였고, 본래의 제0일 체중의 백분율 체중을 플롯팅한다.
도 18은 비슷한 용량에서 IN과 IP 비교를 도시하며 IN에 의한 Mab가 IP로 투여한 동일한 Mab보다 10 내지 100배 더 강하다는 것을 나타내는 도면. 동물을 H1 인플루엔자 바이러스(A/Puerto Rico/8/1934)의 10XLD50으로 접종하고 나서, IN 또는 IP로 72hpi에 20㎎/㎏, 10㎎/㎏ 및 5㎎/㎏의 중화 CA6261 Mab로, 대조군으로서 PBS 및 무바이러스로 처리하였다. 동물을 감염 후 14일 동안 매일 체중에 대해 모니터링하였고, 본래의 제0일 체중의 백분율 체중을 플롯팅한다.
도 19는 24hpi에 H3 바이러스 10XLD50의(빅토리아/11)로 IN 및 IP 경로에 의한 항체 CA8020 또는 6P 15의 IN 또는 IP의 단독 대 조합 투여의 조합 투여 연구를 도시한 도면. 0.6 ㎎/㎏의 총 투여 용량이 투여되며, IP로 0.5㎎/㎏이고 IN으로 0.1㎎/㎏이다. 두 경우에서, 중화 항체에 의한 IN 투여는 비-중화 항체의 IN 투여보다 우수하였다.
도 20은 24 hpi에 인플루엔자 B 바이러스(B/말레이시아)로 CA9114 항체의 용량을 달리하는 IN 및 IP 투여를 도시한 도면. CA9114 항체를 IN 또는 IP로 10㎎/㎏, 1㎎/㎏ 또는 0.1㎎/㎏로 투여하였다. 항체 CA8020 및 무바이러스를 대조군으로서 도시한다. 동물을 감염 후 14일 동안 매일 체중에 대해 모니터링하였고, 본래의 제0일 체중의 백분율 체중을 플롯팅한다.
도 21은 인플루엔자 B에 대한 일련의 항체의 효능을 평가하기 위한 인플루엔자 B 바이러스(B/플로리다)에 의한 마우스 내 연구를 제공한다. 모든 항체를 B 바이러스의 10X LD50에 의해 IN으로 24 hpi에 1㎎/㎏로 투여하였다. 시험한 항체는 표시한 바와 같이 43K16, 59G1, 112A22, 11G23, 114022, CA9114 및 40J7이었다. PBS 및 무 바이러스를 대조군으로서 나타낸다. 동물을 감염 후 14일 동안 매일 체중에 대해 모니터링하였고, 본래의 제0일 체중의 백분율 체중을 플롯팅한다.
도 22는 B/말레이시아 바이러스에 대한 효능에 대해 시험한 인플루엔자 B에 대한 다양한 항체를 도시한 도면. 모든 항체를 B 바이러스의 10XLD50에 의해 1 mg/kg으로 IN에 의해 24hpi에 투여하였다. 시험한 항체는 43K16, 59G1, 112A22, 114G23, 114022 및 CA9114였다. 대조군은 아이소타입 대조군 Mab, PBS 및 무바이러스였다. 동물을 감염 후 14일 동안 매일 체중에 대해 모니터링하였고, 본래의 제0일 체중의 백분율 체중을 플롯팅한다.
도 23은 8hpi에 B/말레이시아 바이러스를 투여한 다양한 인플루엔자 B 항체에 의한 동물 효능 연구를 도시한 도면. 모든 항체를 10XLD50 바이러스에 의해 1㎎/㎏으로 8hpi에 투여하였다. 시험한 항체는 CA9114, 54H5, 110C16, 43K16, 59G1, 114G23, 43J23, 112A22, 5808, 55K6, 114D22 및 40J7이었다. PBS 및 무바이러스는 대조군이었다. 동물을 감염 후 14일 동안 매일 체중에 대해 모니터링하였고, 본래의 제0일 체중의 백분율 체중을 플롯팅한다.
도 24는 H1 항체, H3 항체 및 인플루엔자 B 바이러스 항체를 포함하는 항체 칵테일을 이용하는 동물 효능 연구를 도시한 도면. 항체의 칵테일은 H1 항체 GG3, H3 항체 CA8020 및 B 항체 43J23을 사용한다. 칵테일에서, 각각의 항체를 B/플로리다(야마가타 B 바이러스)의 10xLD50에 의해 1㎎/㎏으로 단일 50㎕ 용적 용량 IN에 의해 24hpi에 투여한다. 비교를 위해, B 항체 43J23을 B/플로리다 바이러스(1㎎/㎏ 43J23 IN에 의해 24 hpi에 투여함)에 대해 단독으로 시험하였다. CA9114 항체를 B/플로리다에 의해 IP에 의해 1㎎/㎏으로 24 hpi에 투여하였다. PBS 및 무바이러스를 대조군으로서 사용하였다. 동물을 감염 후 14일 동안 매일 체중에 대해 모니터링하였고, 본래의 제0일 체중의 백분율 체중을 플롯팅한다.
도 25는 H1 항체 GG3, H3 항체 CA8020 및 인플루엔자 B 바이러스 항체 43J23의 항체 칵테일을 이용하는 동물 효능 연구를 도시한 도면. 각각의 항체를 B/말레이시아 바이러스에 의해 1㎎/㎏의 IN에 의해 감염 후 24시간에(24hpi) 투여하였다. 비교를 위해, B 항체 43J23을 IN에 의해 24 hpi에 투여한 1㎎/㎏ 43J23과 함께 B/말레이시아 바이러스에 대해 단독으로 시험하였고, CA9114 항체를 IP에 의해 1㎎/㎏으로 24 hpi에 B/말레이시아와 함께 투여하였다. PBS 및 무바이러스를 대조군으로서 사용하였다. 동물을 감염 후 14일 동안 매일 체중에 대해 모니터링하였고, 본래의 제0일 체중의 백분율 체중을 플롯팅한다.
도 26은 각각 1㎎/㎏으로, 총 3㎎/㎏ 항체와 50㎕로, 24hpi에 인플루엔자 A H1 바이러스 PR8과 조합하여 비강내로 투여한 항체 칵테일(H1 항체 GG3, H3 항체 CA8020 및 인플루엔자 B 바이러스 항체 43J23)의 효능을 도시한 도면. 칵테일을 IN에 의한 GG3 항체 단독, IP에 의해 투여한 항체 CA6261 및 PBS와 비교한다. 동물을 감염 후 14일 동안 매일 체중에 대해 모니터링하였고, 본래의 제0일 체중의 백분율 체중을 플롯팅한다.
도 27은 H3 바이러스 Vic/11에 대한 조합 항체 칵테일 연구를 도시한 도면. 항체 GG3, CA8020 및 43J23를 칵테일 중에서 각각 1㎎/㎏로 24hpi에 투여하였다. 동물을 감염 후 14일 동안 매일 체중에 대해 모니터링하였고, 본래의 제0일 체중의 백분율 체중을 플롯팅한다. IN 또는 IP 중 하나에 의해 1㎎/㎏에서 단독으로 투여한 항체 CA8020과 PBS를 이 연구에서 비교하였다.
도 28은 각각 인플루엔자 A H1 아형 바이러스, 인플루엔자 A H3 아형 바이러스, B(야마가타) 바이러스 및 B(빅토리아) 바이러스로 감염시킨 후에 24hpi에 투여한 인플루엔자 항체 GG3, CA8020 및 43J23의 칵테일(각각의 항체는 총 칵테일 3㎎/㎏ 모든 항체 중에서 1㎎/㎏임) 대 PBS의 결과를 도시한 도면. 동물을 감염 후 14일 동안 매일 체중에 대해 모니터링하였고, 본래의 제0일 체중의 백분율 체중을 플롯팅한다. 3종의 항체 칵테일은 시험한 모든 바이러스에 대해, 특히 각각의 및 모든 H1, H3, B(야마가타) 및 B(빅토리아) 바이러스에 대해 효과적이었다.
도 29는 사망 대용으로 체중을 이용하는 독감 아형으로부터의 마우스에서의 보호를 위한 3종의 항체 칵테일의 평가를 도시한 도면. 마우스를 인플루엔자 A H1 또는 H3 아형 또는 야마가타 또는 빅토리아 계통으로부터의 인플루엔자 B 바이러스의 10XLD50으로 처리하고 나서, 24시간 후에(24hpi) 각각 1㎎/㎏으로 3종의 항체(항체 5A7, CA6261 및 CA8020)를 포함하는 보편적인 인플루엔자 칵테일로 처리하였다. 3종의 항체 칵테일은 시험한 임의의 바이러스에 의한 감염(H1, H3, B(야마가타) 및 B(빅토리아) 바이러스 감염)에 대해 효과적이었다.
도 30은 항체 TRL579(Mab579)에 의한 감염 후 24시간에 H3 아형 인플루엔자 바이러스의 치료를 도시한 도면. 항체 579를 H3 Vicl1 바이러스에 의해 IN으로 24hpi에 1㎎/㎏으로 또는 IP으로 감염 후 24시간에 10㎎/㎏으로 투여하였다. 대조군은 PBS 및 무바이러스였다. 동물(5마리 마우스/그룹)을 감염 후 14일 동안 매일 체중에 대해 모니터링하였고, 본래 제0일 체중의 백분율 체중을 플롯팅한다.
도 31은 항체 TRL53(Mab53)의 감염 후 24시간에 H1 인플루엔자 바이러스의 치료를 도시한 도면. 항체 53을 H1 Cal09 바이러스의 10XLD50에 의해 24 hpi에 IN에 의해 1㎎/㎏로 또는 감염 후 24시간에 IP에 의해 10㎎/㎏로 투여하였다. 동물(5마리 마우스/그룹)을 감염 후 14일 동안 매일 체중에 대해 모니터링하였고, 본래 제0일 체중의 백분율 체중을 플롯팅한다.
도 32는 바이러스에 의한 감염의 3 또는 4일전에 예방적인 IN 및 IP 투여의 연구를 도시한 도면. 항체 CA6261을 H1 인플루엔자 바이러스 A/Puerto Rico/8/1934(PR8로 정의함)의 3XLD50으로 시험감염의 3 또는 4일 전에 IN 또는 IP로 투여하였다. CA6261 항체를 H1 인플루엔자 바이러스에 의한 감염 3일전(-3dpi) 또는 감염 4일전(-4dpi) 및 시험감염에서 IN(0.1㎎/㎏) 또는 IP(0.1㎎/㎏ 및 1㎎/㎏)로 투여하였다. 대조군은 무바이러스 및 처리없음이었다. 동물을 감염 후 14일 동안 매일 체중에 대해 모니터링하였고, 본래의 제0일 체중의 백분율 체중을 플롯팅한다.
도 33은 바이러스에 의한 감염 5, 6 또는 7일 전에 예방적인 IN 및 IP 투여의 연구를 도시한 도면. 항체 CA6261을 H1 인플루엔자 바이러스 PR8의 3XLD50으로 시험감염의 5, 6 또는 7일 전에 IP(1㎎/㎏로) 또는 IN(0.1㎎/㎏로)로 투여하였다. 대조군은 타미플루(5일 동안 1일 2회 경구로 10㎎/㎏ 제공), 처리없음 및 무바이러스였다. 동물을 감염 후 14일 동안 매일 체중에 대해 모니터링하였고, 본래의 제0일 체중의 백분율 체중을 플롯팅한다.
도 34는 바이러스에 의한 감염 5, 6 또는 7일 전에 예방적인 IN 및 IP 투여의 연구를 도시한 도면. 항체 CA6261을 H1 인플루엔자 바이러스 PR8의 3XLD50으로 시험감염의 5, 6 또는 7일 전에 IP(1㎎/㎏로) 또는 IN(1㎎/㎏로)로 투여하였다. 대조군은 타미플루(5일 동안 1일 2회 경구로 10㎎/㎏ 제공), 처리없음 및 무바이러스였다. 동물을 감염 후 14일 동안 매일 체중에 대해 모니터링하였고, 본래의 제0일 체중의 백분율 체중을 플롯팅한다.
도 35는 고용량의 10XLD50에서 바이러스 시험감염과 함께 바이러스에 의한 감염 3 또는 4일 전에 예방적인 IN 및 IP 투여의 연구를 도시한 도면. 항체 CA6261을 H1 인플루엔자 바이러스 PR8의 10XLD50으로 시험감염의 3 또는 4일 전에 0.1㎎/㎏으로 IN 또는 IP에 의해 투여하였다. 대조군은 무바이러스 및 처리없음이었다. 동물을 감염 후 14일 동안 매일 체중에 대해 모니터링하였고, 본래의 제0일 체중의 백분율 체중을 플롯팅한다.
도 36은 고용량의 10XLD50에서 바이러스 시험감염과 함께 바이러스에 의한 감염 5, 6 또는 7일 전에 예방적인 IN 및 IP 투여의 연구를 도시한 도면. 항체 CA6261을 H1 인플루엔자 바이러스 PR8의 10XLD50으로 시험감염의 5, 6 또는 7일 전에 IP(1㎎/㎏로) 또는 IN(1㎎/㎏로)로 투여하였다. 대조군은 타미플루(5일 동안 1일 2회 경구로 10㎎/㎏ 제공), 처리없음 및 무바이러스였다. 동물을 감염 후 14일 동안 매일 체중에 대해 모니터링하였고, 본래의 제0일 체중의 백분율 체중을 플롯팅한다.
도 37은 10XLD50 인플루엔자 B 바이러스(B/말레이시아/2506/2004)에 의해 24hpi에 항체 5A7, CR8033 및 mAb809의 IN 투여를 도시한 도면. 각각의 인플루엔자 B 항체를 1㎎/㎏으로 IN에 의해 투여하였다. PBS를 대조군으로서 도시한다. 동물을 감염 후 14일 동안 매일 체중에 대해 모니터링하였고, 본래의 제0일 체중의 백분율 체중을 플롯팅한다.
도 38은 10XLD50 인플루엔자 B 바이러스(B/플로리다/05/2006)에 의한 24hpi에 항체 5A7, CR8033 및 mAb809의 IN 투여를 도시한 도면. 각각의 인플루엔자 B 항체를 1㎎/㎏으로 IN에 의해 투여하였다. PBS를 대조군으로서 도시한다. 동물을 감염 후 7일 동안 매일 체중에 대해 모니터링하였고, 본래의 제0일 체중의 백분율 체중을 플롯팅한다.
본 발명에 따르면, 당업계의 기술 내에서 통상적인 분자 생물학, 미생물학 및 재조합 DNA 기법을 사용할 수 있다. 이러한 기법은 문헌에서 충분히 설명된다. 예를 들어, 문헌[Sambrook et al, "Molecular Cloning: A Laboratory Manual" (1989); "Current Protocols in Molecular Biology" Volumes I-III [Ausubel, R. M., ed. (1994)]; "Cell Biology: A Laboratory Handbook" Volumes I-III [J. E. Celis, ed. (1994))]; "Current Protocols in Immunology" Volumes I-III [Coligan, J. E., ed. (1994)]; "Oligonucleotide Synthesis" (M.J. Gait ed. 1984); "Nucleic Acid Hybridization" [B.D. Hames & S.J. Higgins eds. (1985)]; "Transcription And Translation" [B.D. Hames & S.J. Higgins, eds. (1984)]; "Animal Cell Culture" [R.I. Freshney, ed. (1986)]; "Immobilized Cells And Enzymes" [IRL Press, (1986)]; B. Perbal, "A Practical Guide To Molecular Cloning" (1984)] 참조.
따라서, 본원에 나타난다면, 다음의 용어들은 이하에 제시하는 정의를 가질 것이다.
본원에서 사용되고 언급되는 항체는 보고되고 공공연하게 공지된 것과 같은 아미노산 서열을 갖는 것을 포함하며, 항체, 단백질, 공지된 또는 공공연한 아미노산 서열에 대한 변형을 갖고 실질적으로 동일한 활성(표적 중화 또는 인식 및 결합 활성을 포함)을 보유하거나 또는 나타내는 폴리펩타이드를 포함한다. 따라서, 실질적으로 동일한 또는 변용된 활성을 나타내는 단백질이 마찬가지로 고려된다. 이들 변형, 예를 들어 부위 지정 돌연변이유발을 통해 얻어지는 변형이 숙고될 수 있으며, 또는 예컨대 복합체의 생산자 또는 그의 명명된 서브유닛인 숙주 내 돌연변이를 통해 얻어진 것은 우연일 수 있다. 항체는 본원에 구체적으로 열거된 그들의 범주 단백질뿐만 아니라 모든 실질적으로 상동성인 유사체 및 대립유전자 변이를 포함하는 것으로 의도된다.
다음은 다양한 그룹의 아미노산의 예이다: 비극성 R기를 지니는 아미노산: 알라닌, 발린, 류신, 아이소류신, 프롤린, 페닐알라닌, 트립토판, 메티오닌; 비하전 극성 R을 지니는 아미노산: 글라이신, 세린, 트레오닌, 시스테인, 티로신, 아스파라긴, 글루타민; 하전된 극성 R기를 지니는 아미노산(Ph 6.0에서 음으로 하전됨): 아스파르트산, 글루탐산; 염기성 아미노산(pH 6.0에서 양으로 하전됨): 리신, 아르기닌, 히스티딘(pH 6.0에서); 다른 그룹화는 페닐기를 지니는 해당 아미노산일 수 있다: 페닐알라닌, 트립토판, 티로신
다른 그룹화는 분자량에 따를 수 있다(즉, R기의 크기)
글라이신 75 글루타민 146
알라닌 89 리신 146
세린 105 글루탐산 147
프롤린 115 메티오닌 149
발린 117 히스티딘(pH 6.0에서) 155
트레오닌 119 페닐알라닌 165
시스테인 121 아르기닌 174
류신 131 티로신 181
아이소류신 131 트립토판 204
아스파라긴 132
아스파르트산 133
특히 바람직한 치환은 다음과 같다:
- 양전하가 유지될 수 있도록 Lys을 Arg으로 그리고 그 반대;
- 음전하가 유지될 수 있도록 Glu을 Asp으로 그리고 그 반대;
- 유리 -OH가 유지될 수 있도록 Ser을 Thr으로; 그리고
- 유리 H2가 유지될 수 있도록 Gin을 Asn으로.
아미노산 치환은 또한 특히 바람직한 특성을 지니는 아미노산을 치환하기 위해 도입될 수 있다. 예를 들어, Cys은 다른 Cys을 지니는 이황화 브릿지에 대해 가능한 부위에 도입될 수 있다. His은 특히 "촉매적" 부위로서 도입될 수 있다(즉, His은 산 또는 염기로서 작용할 수 있고, 생화학적 촉매로서 가장 흔한 아미노산이다). Pro은 단백질 구조에서 -회전을 유도하는 그의 특히 평면 구조 때문에 도입될 수 있다.
2개의 아미노산 서열은, 적어도 약 70%의 아미노산 잔기(바람직하게는 적어도 약 80%, 및 가장 바람직하게는 적어도 약 90 또는 95%)가 동일할 때 또는 보존적 치환을 나타낼 때, "실질적으로 상동성"이다.
본 출원에 따라서 사용되고, 본 발명에서 사용되는 항체를 암호화하는 핵산은 본 발명에서 사용되는 항체 또는 이의 활성 단편의 제조 및/또는 생성에서 사용될 수 있다. 이러한 핵산을 포함하는 벡터는 본원에서 제공되고 사용되는 바와 같은 발현 또는 분리에서 사용될 수 있다.
"레플리콘"은 생체내 DNA 레플리콘의 자율적 단위로서 기능하는; 즉, 그 자신의 제어 하에서 복제할 수 있는 임의의 유전자 구성요소(예를 들어, 플라스미드, 염색체, 바이러스)이다.
"벡터"는 부착 세그먼트의 복체를 초래하도록 다른 DNA 세그먼트가 부착될 수 있는 플라스미드, 파지 또는 코스미드와 같은 레플리콘이다.
"DNA 분자"는 그의 단일 가닥 형태 또는 이중 가닥 나선 중 하나에서의 데옥시리보뉴클레오타이드(아데닌, 구아닌, 티민 또는 사이토신)의 중합체 형태를 지칭한다. 이 용어는 분자의 1차 및 2차 구조만을 지칭하며, 그것을 임의의 특정 3차 형태로 제한하지 않는다. 따라서, 이 용어는 특히, 선형 DNA 분자(예를 들어, 제한 단편), 바이러스, 플라스미드 및 염색체에서 발견되는 이중-가닥 DNA를 포함한다. 특정 이중-가닥 DNA 분자의 구조를 논의함에 있어서, 서열은 DNA의 비전사 가닥(즉, mRNA에 상동성인 서열을 갖는 가닥)을 따라서 5'에서 3' 방향으로 서열만을 제공하는 정상적인 방식에 따라 본원에서 기재될 수 있다.
"레플리콘의 유래"는 DNA 합성에 참여하는 해당 DNA 서열을 지칭한다.
DNA "암호화 서열"은 적절한 조절 서열의 제어 하에 위치될 때, 생체 내 폴리펩타이드로 전사 및 번역되는 이중-가닥 DNA 서열이다. 암호화 서열의 경계는 5'(아미노) 말단에서의 시작 코돈 및 3'(카복실) 말단에서의 번역 정지 코돈에 의해 결정된다. 암호화 서열은 원핵생물 서열, 진핵생물 mRNA로부터의 cDNA, 진핵생물(예를 들어, 포유류) DNA로부터의 게놈 DNA 서열 및 심지어 합성 DNA 서열을 포함할 수 있지만, 이들로 제한되지 않는다. 폴리아데닐화 신호 및 전사 종결 서열은 보통 암호화 서열에 대해 3'에 위치될 것이다.
전사 및 번역 대조군 서열은 숙주 세포에서 암호화 서열의 발현을 제공하는 DNA 조절 서열, 예컨대 프로모터, 인핸서, 폴리아데닐화 신호, 종결자 등이다.
"프로모터 서열"은 세포 내 RNA 중합효소에 결합할 수 있고, 하류(3' 방향) 암호화 서열의 전사를 개시할 수 있는 DNA 조절 영역이다. 본 발명을 정의하는 목적을 위해, 프로모터 서열은 전사 개시 부위에 의해 그의 3' 말단에 결합되고, 상기 배경을 검출할 수 있는 수준에서 전사를 개시하는데 필요한 최소 수의 염기 또는 구성요소를 포함하도록 상류(5' 방향)로 연장된다. 프로모터 서열 내에서 전사 개시 부위(뉴클레아제 SI에 의한 맵핑으로서 편리하게 정의됨)뿐만 아니라 RNA 중합효소와 결합을 초래하는 단백질 결합 도메인(공통 서열)이 발견될 것이다. 진핵생물 프로모터는, 항상은 아니지만 종종 "TATA" 박스 및 "CAT" 박스를 포함할 것이다. 원핵생물 프로모터는 -10 및 -35 공통 서열에 추가로 샤인-달가노(Shine-Dalgarno) 서열을 포함한다.
"발현 대조군 서열"은 다른 DNA 서열의 전사 및 번역을 제어 및 조절하는 DNA 서열이다. 암호화 서열은, RNA 중합효소가 암호서열을 mRNA로 전사시킨 다음서 암호화 서열에 의해 암호화되는 단백질로 번역될 때, 세포 내에서 전사 및 번역 제어 서열의 "제어 하에" 있다.
이러한 DNA가 세포 내부에 도입되었을 때 세포는 외인성 또는 이종성 DNA에 의해 "형질전환"되었다. 형질전환 DNA는 세포 게놈을 구성하는 염색체 DNA 내로 통합(공유적으로 연결)될 수도 있고 통합되지 않을 수도 있다. 예를 들어, 원핵생물, 효모 및 포유류 세포에서, 형질전환 DNA는 플라스미드와 같은 에피손 구성요소 상에서 유지될 수 있다. 진핵생물 세포에 대해, 안정하게 형질전환된 세포는 형질전환 DNA가 염색체 내로 통합되어 그것이 염색체 복제를 통해 딸 세포에 의해 물려지는 것이다. 이 안정성은 형질전환 DNA를 포함하는 딸 세포 집단을 포함한 세포주 또는 클론을 확립하는 진핵생물 세포의 능력에 의해 입증된다. "클론"은 유사분열에 의해 단일 세포 또는 공통 조상으로부터 유래된 세포집단이다. "세포주"는 다수의 세대에 대해 시험관내에서 안정하게 성장할 수 있는 1차 세포의 클론이다.
뉴클레오타이드의 적어도 약 75%(바람직하게는 적어도 약 80%, 및 가장 바람직하게는 적어도 약 90 또는 95%)가 DNA 서열의 정해진 길이에 걸쳐 매칭될 때 두 DNA 서열은 "실질적으로 상동성"이다. 실질적으로 상동성인 서열은 서열 데이터 뱅크에서 입수가능한 표준 소프트웨어를 이용하여 또는 예를 들어, 해당 특정 시스템에 대해 정해진 바와 같은 엄격한 조건 하의 사우던(Southern) 혼성화 실험에서 서열을 비교함으로써 확인될 수 있다. 적절한 혼성화 조건을 정하는 것은 당업자의 기술 내에 있다. 예를 들어, 문헌[Maniatis et al, 상기 참조; DNA Cloning, Vols. I & II, 상기 참조; Nucleic Acid Hybridization, 상기 참조] 참조.
항체, 폴리펩타이드 또는 동일한 아미노산 서열을 갖는 이들의 활성 단편에 대해 암호화하지만, 본래의 또는 공지된 암호화 서열을 축퇴시키는 본 발명의 또는 본 발명에서 사용되는 항체를 암호화하는 DNA 서열이 또한 본 발명의 범주 내인 것으로 인식되어야 한다. "에 대한 축퇴"는 상이한 3글자 코돈이 특정 아미노산을 구체화하기 위해 사용되는 것을 의미한다. 다음의 코돈이 각각의 특이적 아미노산에 대한 암호에 대해 상호 호환적으로 사용될 수 있다는 것은 잘 공지되어 있다:
페닐알라닌(Phe 또는 F) UUU 또는 UUC
류신(Leu 또는 L) UUA 또는 UUG 또는 CUU 또는 CUC 또는 CUA 또는 CUG
아이소류신(He 또는 I) AUU 또는 AUC 또는 AUA
메티오닌(Met 또는 M) AUG
발린(Val 또는 V) GUU 또는 GUC 또는 GUA 또는 GUG
세린(Ser 또는 S) UCU 또는 UCC 또는 UCA 또는 UCG 또는 AGU 또는 AGC
프롤린(Pro 또는 P) CCU 또는 CCC 또는 CCA 또는 CCG
트레오닌(Thr 또는 T) ACU 또는 ACC 또는 ACA 또는 ACG
알라닌(Ala 또는 A) GCU 또는 GCG 또는 GCA 또는 GCG
티로신(Tyr 또는 Y) UAU 또는 UAC
히스티딘(His 또는 H) CAU 또는 CAC
글루타민(Gin 또는 Q) CAA 또는 CAG
아스파라긴 (Asn 또는 N) AAU 또는 AAC
리신(Lys 또는 K) AAA 또는 AAG
아스파르트산(Asp 또는 D) GAU 또는 GAC
글루탐산(Glu 또는 E) GAA 또는 GAG
시스테인(Cys 또는 C) UGU 또는 UGC
아르기닌(Arg 또는 R) CGU 또는 CGC 또는 CGA 또는 CGG 또는 AGA 또는 AGG
글라이신(Gly 또는 G) GGU 또는 GGC 또는 GGA 또는 GGG
트립토판 (Trp 또는 W) UGG
종결 코돈 UAA(오커) 또는 UAG(앰버) 또는 UGA(오팔)
위에서 특정된 코돈은 RNA 서열에 대한 것임을 이해하여야 한다. DNA에 대한 대응하는 코돈은 T를 U로 치환시킨다.
돌연변이는 특정 코돈이 상이한 아미노산을 암호화하는 코돈으로 변화되도록 서열을 암호화하는 항체 또는 활성 단편으로 이루어질 수 있다. 이러한 돌연변이는 일반적으로 가장 소수의 가능한 뉴클레오타이드 변화를 만드는 것에 의해 생성된다. 이 부류의 치환 돌연변이는 비-보존적 방식으로(즉, 특정 크기 또는 특징을 갖는 아미노산의 그룹에 속하는 아미노산으로부터 다른 그룹에 속하는 아미노산으로의 코돈을 변화시킴으로써) 또는 보존적 방식으로(즉, 특정 크기 또는 특징을 갖는 아미노산의 그룹에 속하는 아미노산으로부터 동일 그룹에 속하는 아미노산으로 코돈을 변화시킴으로써) 얻어진 단백질 내의 아미노산을 변화시킬 수 있다. 이러한 보존적 변화는 일반적으로 얻어진 단백질의 구조 및 기능에서의 더 적은 변화를 야기한다. 비-보존적 변화는 얻어진 단백질의 구조, 활성 또는 기능을 더 변용시킬 가능성이 있다. 본 발명은 얻어진 단백질의 활성 또는 결합 특징을 상당히 변경시키지 않는 보존적 변화를 포함하는 서열을 포함하는 것으로 고려되어야 한다.
위에서 언급한 바와 같이, 항체, 폴리펩타이드 또는 이의 활성 단편을 암호화하는 DNA 서열은 클로닝보다는 합성적으로 제조될 수 있다. 항체 또는 단편 아미노산 서열에 대해 적절한 코돈을 지니는 DNA 서열이 설계될 수 있다. 일반적으로, 서열이 발현을 위해 사용된다면, 의도된 숙주에 대해 바람직한 코돈을 선택할 것이다. 완전한 서열은 표준 방법에 의해 제조되는 중복 올리고뉴클레오타이드로부터 조립되고, 완전한 암호화 서열 내로 조립된다. 예를 들어, 문헌[Edge, Nature, 292:756 (1981); Nambair et al, Science, 223: 1299 (1984); Jay et al, J. Biol. Chem., 259:6311 (1984)] 참조. 합성 DNA 서열은 유사체 또는 "뮤테인(mutein)"을 발현시킬 유전자의 구성을 편리하게 한다. 대안적으로는, 뮤테인을 암호화하는 DNA는 천연 유전자 또는 cDNA의 부위 지정 돌연변이유발에 의해 만들어질 수 있고, 뮤테인은 통상적인 폴리펩타이드 합성을 이용하여 직접 만들어질 수 있다.
DNA 작제물(construct)의 "이종성" 영역은 자연에서 거대 분자와 결합되는 것으로 발견되지 않은 더 큰 DNA 분자 내의 DNA의 식별가능한 세그먼트이다. 따라서, 이종성 영역이 포유류 유전자를 암호화할 때, 유전자는 보통 공급원 유기체의 게놈 내 포유류 게놈 DNA에 측접하지 않은 DNA에 측접할 것이다. 이종성 암호화 서열의 다른 예는 암호화 서열 그 자체가 자연에서 발견되지 않는 작제물이다(예를 들어, 게놈 암호화 서열이 인트론을 포함하거나 또는 천연 유전자와 상이한 코돈을 갖는 합성 서열을 포함하는 cDNA). 대립유전자 변이 또는 자연적으로 생기는 돌연변이 사건은 본원에 정의된 바와 같은 DNA의 이종성 영역을 생기게 하지 않는다.
DNA 서열은 발현 제어 서열이 해당 DNA 서열의 전사 및 번역을 제어 및 조절할 때 발현 제어 서열에 "작동가능하게 연결(operatively linked)"된다. 용어 "작동가능하게 연결된"은 발현될 DNA 서열의 앞에서 적절한 시작 신호(예를 들어, ATG)를 갖고, 발현 제어 서열의 제어 및 DNA 서열에 의해 암호화되는 목적으로 하는 산물의 생성 하에서 DNA 서열을 발현시키는 정확한 리딩 프레임을 유지하는 것을 포함한다. 재조합 DNA 분자 내로 삽입될 것이 요망되는 유전자가 적절한 시작 신호를 포함하지 않는다면, 이러한 시작 신호는 유전자 앞에 삽입될 수 있다.
용어 "표준 혼성화 조건"은 혼성화와 세척 둘 다에 대해 5 x SSC 및 65℃로 실질적으로 동일한 염 및 온도 조건을 지칭한다. 그러나, 당업자는 이러한 "표준 혼성화 조건"이 완충제 중의 나트륨 및 마그네슘 농도, 뉴클레오타이드 서열 길이 및 농도, 백분율 미스매치, 백분율 폼아마이드 등을 포함하는 특정 조건에 의존한다는 것을 인식할 것이다. 또한 "표준 혼성화 조건"의 결정에서 두 서열 혼성화가 RNA-RNA, DNA-DNA 또는 RNA-DNA인지의 여부는 중요하다. 이러한 표준 혼성화 조건은 잘 공지된 식에 따라서 당업자에 의해 용이하게 결정되되, 혼성화는 전형적으로는 필요하다면 더 높은 엄격성의 세척물에 의해 예측 또는 결정된 Tm 미만의 10 내지 20NC이다.
주요 양태에서, 본 발명은 기도 또는 호흡관에 대한 중화 항체의 투여에 의해, 예컨대 중화 항체(들)의 비강내 또는 흡입 투여에 의해, 특히 인플루엔자 바이러스를 포함하는 바이러스 감염의 효과적인 치료 및 예방을 위한 신규한 방법, 프로토콜 및 수단의 확인에 관한 것이다. 중화 항체(들), 특히 인플루엔자 바이러스 중화 항체의 비강내 또는 흡입 투여는 대안의 투여 수단, 예컨대 IP 투여보다 치료적으로 또는 예방적으로 바이러스를 치료 또는 차단하는데 더 효과적이다. 그의 주요 양태에서, 본 발명은 중화 항체(들)의 비강내 투여에 의해 특히 인플루엔자 바이러스를 포함하는 바이러스 감염의 효과적인 치료 및 예방을 위한 신규한 방법 및 수단의 확인에 관한 것이다. 흡입 및/또는 비강내 전달 및 투여는 동일한 양으로 동일한 항체의 전신 투여(IV 또는 IP)보다 더 낮은 용량에서 우수하고, 더 효능있으며, 더 효과적이다. 바이러스 노출 또는 감염 전에 또는 심지어 후에 IN으로 전달된 항체에 의한 치료 또는 예방이 효과적이다.
항체의 비강내 용량과 항체의 IP 용량을 조합하는 방법 또는 프로토콜은 바이러스, 특히 인플루엔자 바이러스에 대해 치료적으로 또는 예방적으로 특히 효과적이다. 이러한 방법 또는 프로토콜이 포함되되, 1회 이상의 비강내 또는 흡입 용량의 항체는 1회 이상의 IP 또는 IV 용량의 항체와 조합된다. 비강내 또는 흡입 용량은 IP 또는 IV 용량 전에, 후에, 동시에 또는 순차적으로 투여될 수 있다. 1회 이상의 비강내, 흡입, IP 또는 IV 용량(들)이 투여될 수 있다. 비강내로 투여되는 항체는 Fc 또는 효과기 기능, 예컨대 Fab가 없는 항체 단편일 수 있는 반면, IP 투여된 항체는 효과기 기능 또는 향상된 효과기 기능을 가질 수 있다.
본 발명에 따르면, 중화 항체는 바이러스, 특히 인플루엔자 바이러스에 대해 향상된 효능을 위해 기도 또는 호흡관에 투여된다. 기도 또는 호흡관에 대한 투여는 임의의 인식 또는 공지된 수단에 의할 수 있고, 흡입 투여 또는 비강내 투여를 포함할 수 있다. 향상된 유효성을 위해, 중화 항체는 상기도관 및 하기도관 중 하나 이상에 전달되며, 비강, 코, 부비강, 인후, 인두, 후두, 기관, 기관지 및 폐를 포함할 수 있다.
흡입은 항체 또는 이의 활성 단편을 포함하는 작용제 또는 화합물, 또는 이들을 포함하는 조성물을 특히 취하거나 또는 투여 중이거나/투여될 것과 관련하여 취함으로써, 조성물에 포함되는 작용제, 화합물, 항체, 단편이 호흡관에 전달된다. 호흡관은 상부 호흡관 및, 또는, 및/또는 하부 호흡관을 포함할 수 있다. 상부 호흡관은 코, 비강, 부비강, 후두, 기관을 포함한다. 하부 호흡관은 폐, 기도(기관지 및 세기관지) 및 공기 주머니(폐포)를 포함한다. 흡입은 코를 통해 또는 입을 통해 또는 기관내 투여와 같은 하부 호흡관에 직접 투여를 통해 일어날 수 있다. 따라서, 흡입은 코만을 또는 주로 비강내, 입을 통한 흡입, 경구 흡입, 기관내 흡입, 기관내 점적주입을 포함할 수 있다. 따라서 흡입은 임의의 투여수단을 준비하고 고려함으로써, 약물, 작용제, 조성물, 항체, 단편은 상부 및/또는 하부 호흡관을 포함하여 배타적으로, 특이적으로 또는 우선적으로 호흡관에 또는 호흡관 내에 도달 또는 침착된다.
본원에 사용되는 바와 같은 용어 비강내는 코 또는 비강 구조 내에서 또는 이들을 통해 투여하는 것, 투여 또는 일어나는 것을 포함하지만, 이들로 제한되지 않는다. 본원에 사용되고 실시예에서 구현예로서 예시되는 바와 같은 용어 비강내는 특히 다른 투여 수단을 제외하는 역할을 함에 있어서, 코 또는 비강을 통한 직접적 또는 특이적 또는 단독의 투여로 제한하거나 또는 제한을 나타내도록 의도되지 않으며, 이에 의해 약물, 작용제, 항체, 단편, 조성물은 호흡관 내에 또는 호흡관에서 전달되거나, 또는 달리 제공되거나, 침착되거나 또는 달리 분포된다.
호흡관 또는 기도(들)에 대한 투여 또는 전달을 위한 장치는 당업자에게 그리고 임상 또는 의학적 실행에서 공지되고 인식되고 있으며, 본 발명의 방법, 프로토콜 및 조성물에 적용가능하다. 장치는 정량 흡입기, 정량 스프레이 펌프, 핸드-벌브 아토마이저(hand-bulb atomizer), 소량 또는 다량 네뷸라이저, 초음파 네뷸라이저 및 건조 분말 흡입기를 포함한다.
본 발명은 특히 호흡관을 표적화하거나, 감염시키거나 또는 영향을 미치는 작용제 또는 병원균의 치료 또는 예방에서의 적용 및 용도를 가진다. 따라서, 본 발명은 호흡기 감염, 특히 호흡기 바이러스 및 호흡기 질병과 관련되거나 또는 원인이 되는 것으로 관련된 작용제의 치료 또는 예방에서의 적용 및 용도를 가진다. 통상적인 바이러스 호흡기 질환은 유사한 특성을 가지며 상부 호흡관에 영향을 미치는 다양한 바이러스에 의해 야기되는 질병이다. 연루된 바이러스는 인플루엔자 바이러스, 호흡기 세포융합 바이러스(SV), 파라인플루엔자 바이러스 및 호흡기 아데노바이러스일 수 있다. 파라인플루엔자 바이러스는 유아에서의 상기도막힘증의 주된 원인이며, 기관지염, 폐렴 및 세기관지염을 야기할 수 있다. 아데노바이러스는 주로 호흡관 및 위장관, 및 눈의 결막을 침범한다. 아데노바이러스는 인후염으로부터 폐렴, 결막염 및 설사에 이르는 다양한 질병을 야기할 수 있다. 증상은 바이러스에 노출 후 1 내지 10일에 나타날 수 있다.
병태(암, 염증성 병태, 항바이러스, 항-감염성)의 치료 또는 경감을 위한 항체의 임상적 투여는 배타적으로 전신성 투여 및 일반적으로 IV 투여를 사용하였는데, 이는 다량 및 값비싼 양의 항체, 의료진의 보조 및 투여를 위한 상당한 시간(전형적인 IV 투약은 2시간 동안이다)을 필요로 한다. 다른 투여 수단, 예컨대 비강내가 언급될 수 있지만, 특히 이들 항체를 아우르는 특허 또는 출원에서, 비강내 투여는 완전히 무시되는 잘해야 동등한 대안으로 여겨지거나, 덜 이해되고, 그것이 덜 매력적이거나 효능이 덜한 것으로 생각되는 가능성이 있기 때문에 추구되지 않으며, IP 또는 IV 투여 경로보다 간접적으로 또는 덜 직접적으로 면역학적 시스템을 추루하는 것으로 여겨진다. 그러나, 본 발명 및 본원에 제공된 주목할 만한 연구는 비강내 투여가, 특히 중화 항체에 대해 사실 바람직하고 더 효능있는 대안이라는 것을 입증한다. 특히, 초기 병원균 공격 또는 노출의 부위 또는 위치에서 비강내에서 작용할 수 있는 중화 항체는 대안의 투여 방식보다 더 효과적이다.
따라서 본 발명에 따르면, 항체의 비강내 전달은 IV 또는 IP 경로와 같은 전신 경로에 비해 효능의 현저한 그리고 상당한 개선을 제공한다. 더 나아가, 향상된 비강내 효능은 중화 항체에 의해 입증된다. 중화 또는 바이러스 차단의 허용되는 또는 공지된 분석을 이용하여, 비중화 항체, 특히 호흡 작용제 또는 바이러스, 특히 인플루엔자 바이러스의 직접 저해 또는 차단을 입증하지 않은 항체는 전신 또는 IP 투여에 비해 비강내로 전달될 때 손상된 효능을 나타낸다. 본 연구는 중화 항체의 비강내(IN) 전달이 허용되고 공지된 인플루엔자 마우스 모델을 이용하는 복강내(IP) 또는 정맥내(IV) 경로의 전달에 비해 10배 초과만큼 치료 및 예방적 효능을 극적으로 증가시킨다는 것을 입증한다. 비슷한 효능은 IV 또는 IP 경로 대신 IN으로 주어질 때 동일한 용량의 1/10 미만을 이용하여 달성될 수 있다. 비강내로 투여되는 중화 항체는 10배만큼 치료 효능을 극적으로 증가시킬 수 있다. 비강내로 투여된 중화 항체는 최소 10 내지 100배만큼 치료 효능을 극적으로 증가시킬 수 있다. 비강내로 투여된 중화 항체는 유사한 조건 하의 동일한 항체의 복강내(IP) 투여에 비해 적어도 10배, 적어도 50배 초과, 10배 초과, 50배 초과, 100배, 최대 100배만큼 치료효능을 극적으로 증가시킬 수 있다. 중화 항체의 비강내 투여는 특히 인플루엔자 감염을 포함하는 감염의 예방 및 치료에 대해 신규하고 예상치 못한 접근을 제공한다. IN 투여는 이제 효과적으로 실행될 수 있고, 치료 및 예방에 대해 더 효과적이고 덜 비용이 드는 접근을 제공하도록 다른 투여 형태와 조합될 수 있다.
당업계에서 정의되거나 또는 허용되고 본원에서 지칭되며 이용되는 바와 같은 바이러스의 항체 매개 중화는 다양한 분석에서 시험될 수 있다. 중화 분석의 예는 배양물 내 세포에 대한 바이러스 세포변성효과(cytopathic effect: CPE)의 저해에 기반한 통상적인 중화 분석을 포함한다. 예를 들어, 인플루엔자 중화는 인플루엔자로 감염된 MDCK 세포 내 CPE의 형성을 감소 또는 차단함으로써 시험될 수 있다. 바이러스 및 중화제는 세포에 첨가 전에 사전혼합되고, 이후에 바이러스 유입의 차단을 측정할 수 있다. 혈구응집소 저해(HI)는 시험관내에서 시험될 수 있고, 적혈구 세포에 결합하는 바이러스 능력의 차단을 검출할 수 있다. 예시적인 공지되고 허용되는 중화 분석은 동물 인플루엔자에 대한 WHO 매뉴얼(who/cds/csr/ncs/2002.5, 48 내지 54 페이지)에 제공된다. 시알산 수용체 결합 부위를 차단하는 항체는 세포에 대한 바이러스 결합을 중화시킴으로써, 감염을 차단시킬 것이다. 대조적으로 중화 분석은 타미플루와 같은 뉴라미니다제 저해제의 경우와 같이 바이러스 탈출(egress)의 차단을 검출할 수 있다. 최근에, 바이러스 탈출을 방지함으로써 유사한 방식으로 작용하는 중화 항체가 확인되었으며, 이런 중화의 예는 인플루엔자 B 바이러스에 대한 CR9114 항체를 포함한다(Dreyfus et al (2012) Science 337: 1343-1348). 또한, 마이크로중화 분석이 이용되되, 바이러스 핵단백질(NP)은 ELISA와 조합하여 마이크로역가 플레이트를 이용하여 감염 세포 내에서 검출된다. 바이러스 단백질을 측정하기 위한 정량적 PCR 분석이 기재되었다(Dreyfus C et al (2012) Emerging Inf Diseases 19(10: 1685-1687).
비중화 항체는 바이러스와 임의의 직접 상호작용 또는 결합을 보여주지 못하는 항체이며, 또는 그것이 감염시키는 세포 상의 바이러스 표적은 비중화로서 이해될 수 있다. 비중화 항체는 바이러스에 결합할 수 있지만, 임의의 위에서 언급한 또는 인식된 중화 분석에서 바이러스 또는 바이러스 복제를 중화 또는 저해하지 않는다. 비중화 항체는 보존된 단백질 또는 바이러스 내 단백질 상의 에피토프에 결합될 수 있다. 예를 들어, 임상 시험 TCN-032에서 M2 항체는 넓은 범위의 인플루엔자 A 바이러스에 결합할 수 있지만, 통상적인 중화 분석에서의 중화를 보여주지 않는다. 유사하게, HA에 결합하는 중화하지 않는 항체가 확인될 수 있다.
본 발명자들은 비중화이지만 HA에 대해 광범위 반응성인 항체를 확인하였다. 이들은 CPE 저해, HI, 마이크로중화 및 플라크 감소 분석을 포함하는 중화 분석에서 음성인 항체 6P15, 1P19 및 1K17을 포함한다. 본원의 실시예에서 입증하는 바와 같이, 이들 항체는 복강내 투여에 비해 비강내 투여에 의해 개선된 치료 효능을 나타내지 않는다.
본 발명의 일 양태에서, 바이러스 결합 항체 또는 이의 결합 단편(특히 항체 또는 단편은 중화임)은 작용제 또는 약물과 조합되어 본 발명에서 사용하기 위한 흡입 또는 비강내 투여를 포함하는 호흡관 또는 기도 투여를 위한 항체-약물 또는 항체-작용제 컨쥬게이션을 형성할 수 있다. 항체 또는 단편과 조합 또는 컨쥬게이션된 약물 또는 작용제는 바이러스 중화 약물 또는 작용제일 수 있다.
특정 그리고 추가 양태에서, 항체 IP 또는 IV의 투여와 함께 중화 항체 IN의 조합 및 연속적 투여는 바이러스 감염의 치료 및/또는 예방을 위한 효과적이며 향상된 상승적 수단을 제공한다. IP 또는 IV를 포함하는 전신으로 투여되는 항체는 중화 또는 비-중화일 수 있고, 이에 의해 IN로 투여되는 것과 동일한 항체 일 수 있고, 또는 변형된 항체 또는 별개의 항체일 수 있다. 따라서, 비강내 전달을 위한 항체인 중화 항체는 다른 수단을 통한 전달, 특히 IP 또는 IV 전달을 포함하는 전신 전달을 위해 조합하여 사용되는 항체와 별도의 또는 상이한 항체일 수 있다.
본 발명은 중화 항체의 Fc 기능 및 Fc 부분, 이에 따른 효과기 기능이 비강내에서 향상된 효능을 필요로 하지 않는다는 것을 입증한다. 따라서, 항체 및 단편, 예컨대 Fab 단편, 또는 Fc가 없거나 또는 효과기 기능이 없는 항체는 비강내에서 효과적이다. 대조적으로, 항체(중화 또는 비-중화)의 Fab 단편 또는 Fc가 없거나 또는 효과기 기능이 없는 항체는 효과적인 IP 또는 IV가 아니다.
항체
용어 "항체"는 자연적 생성되었든 또는 부분적으로 생성되었든 또는 전체로 합성에 의해 생성되었든 면역글로불린을 만든다. 이 용어는 또한 항체 결합 도메인인 또는 항체 결합 도메인에 상동성인 결합 도메인을 갖는 임의의 폴리펩타이드 또는 단백질을 아우른다. CDR 접합 항체가 또한 이 용어에 의해 고려된다. "항체"는 특이적 에피토프에 결합하는 항체 및 이의 단편을 포함하는 임의의 면역글로불린이다. 이 용어는 다클론성, 단클론성 및 키메라 항체를 포함하며, 키메라 항체는 미국 특허 제4,816,397호 및 제4,816,567호에서 추가로 상세하게 기재된다. 용어 "항체(들)"는 일반적으로 4개의 전장 폴리펩타이드 쇄, 즉, 2개의 중(H) 쇄 및 2개의 경(L)쇄 또는 이의 등가의 Ig 상동체(예를 들어, 중쇄만을 포함하는 카멜리드 나노바디)를 포함하고; Ig 분자의 필수적 에피토프 결합 특징을 보유하는 이의 전장 기능성 돌연변이체, 변이체, 또는 유도체를 포함하며, 이중 특이적, 이중 특이성, 다중 특이성 및 이중 변이성 도메인 항체를 포함하는, 야생형 면역글로불린(Ig) 분자를 포함하고; 면역글로불린 분자는 임의의 부류(예를 들어, IgG, IgE, IgM, IgD, IgA 및 IgY), 또는 하위부류(예를 들어, IgG1, IgG2, IgG3, IgG4, IgA1 및 IgA2)일 수 있다. 바람직한 항체는 IgG 부류이다. 또한 용어 "항체"의 의미 내에 임의의 "항체 단편"이 포함된다.
"항체 조합 부위"는 항체 분자의 구조적 부분이 항원에 특이적으로 결합하는 중쇄 및 경쇄 가변 및 초가변 영역을 포함하는 것이다.
본원에 사용되는 바와 같은 이의 다양한 문법적 형태에서 어구 "항체 분자"는 무결함 면역글로불린 분자와 면역글로불린 분자의 면역적으로 활성인 부분을 둘 다 고려한다.
본원에 사용되는 되는 바와 같은 용어 "단클론성 항체(monoclonal antibody)"는 실질적으로 균질한 항체의 집단으로부터 얻어진 항체를 지칭하며, 즉, 집단을 포함하는 개개 항체는 자연적으로 생기는 돌연변이를 포함하거나 또는 단클론성 항체 제조의 생성 동안 일어나는 가능한 변이체 항체를 제외하고 동일하고/하거나 동일한 에피토프에 결합하고, 이러한 변이체는 일반적으로 소량으로 존재한다. 단클론성 항체는 특정 항원과 면역반응할 수 있는 부위를 조합하는 한 종의 항체를 갖는 항체이다. 따라서 단클론성 항체는 전형적으로 그것이 면역반응하는 임의의 항체에 대해 단일 결합 친화도를 보여준다. 상이한 결정소(에피토프)로 향하는 상이한 항체를 전형적으로 포함하는 다클론성 항체 제제와 대조적으로, 단클론성 항체 제제의 각각의 항원 상의 단일 결정소로 향한다. 단클론성 항체는, 그것이 복수의 항체 조합 부위를 갖는 항체 분자를 포함한다면 다중 특이적일 수 있으며, 각각은 상이한 항원에 대해 면역특이적이고; 예를 들어, 이중특이성(키메라) 단클론성 항체이다. 수식어 "단클론성"은 실질적으로 동종의 항체 집단으로부터 얻어진 바와 같은 항체의 특징을 포함하며, 임의의 특정 방법에 의한 항체의 생성을 필요로 하는 것으로 해석되어서는 안 된다. 예를 들어, 본 발명에 따라 사용될 단클론성 항체는 혼성세포 방법, 재조합 DNA 방법, 파지-디스플레이 방법, 및 모든 또는 부분적 인간 면역글로불린 좌위를 포함하는 유전자이식 동물을 이용하는 방법, 본원에 기재된 단클론성 항체를 제조하기 위한 이러한 방법 및 다른 예시적인 방법을 포함하지만, 이들로 제한되지 않는, 다양한 기법에 의해 생성될 수 있다.
"항체 단편(antibody fragment)"은 무결함 항체에 결합하는 항체와 결합하는 무결함 항체의 부분을 포함하는 무결함 항체 이외의 분자를 지칭한다. 항체 단편의 예는 Fv, Fab', Fab'-SH, F(ab')2; 다이아바디; 선형 항체; 단일-쇄 항체 분자(예를 들어 scFv); 및 항체 단편로부터 형성된 다중특이성 항체를 포함하지만, 이들로 제한되지 않는다. 추가로, 항체 단편은 VH 도메인의 특징을 갖는, 즉 VL 도메인과 함께 조립할 수 있는, 또는 VL 도메인의 특징을 갖는, 즉, 기능성 항원 결합 부위에 VH 도메인과 함께 조립함으로써, 전장 항체의 항원 결합 특성을 제공하는 단일쇄 폴리펩타이드를 포함한다. "항체 단편"은 (i) 가변 경쇄(VL), 가변 중쇄(VH), 불변 경쇄(CL) 및 불변 중쇄 1(CH1) 도메인으로 이루어진 1가 단편인, Fab 단편; (ii) 힌지 영역에서 이황화 브릿지 의해 연뎔된 2개의 Fab 단편을 포함하는 2가 단편인 F(ab')2 단편; (iii) VH 및 CH1 도메인으로 이루어진 Fab(Fd) 단편 단편의 중쇄 부분; (iv) 항체의 단일 암의 VL 및 VH 도메인으로 이루어진 가변 단편(Fv) 단편, (v) 단일 가변 도메인을 포함하는 도메인 항체(dAb) 단편(Ward, E.S. et al, Nature 341, 544-546 (1989)); (vi) 카멜리드(camelid) 항체; (vii) 분리된 상보성 결정 영역(complementarity determining region: CDR); (viii) 단일 쇄 Fv 단편(여기서, VH 도메인과 VL 도메인은 2개의 도메인이 항원 결합 부위를 형성하도록 연결되게 하는 펩타이드 링커에 의해 연결됨)(Bird et al, Science, 242, 423-426, 1988; Huston et al, PNAS USA, 85, 5879-5883, 1988); (ix) VH 및 VL 도메인이 단일 폴리펩타이드쇄 상에서 발현되지만, 동일쇄 상의 2개의 도메인 사이에 짝지어지기에는 너무 짧은 링커를 이용함으로써, 도메인이 다른 쇄의 상보성 도메인과 짝지어지게 하고, 2개의 항원 결합 부위를 생성하는 2가의 이중특이성 항체인, 다이아바디(WO94/13804; P. Holliger et al Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90 6444-6448, (1993)); 및 (x) 상보성 경쇄 폴리펩타이드와 함께 항원 결합 영역의 쌍을 형성하는 종열(tandem) Fv 세그먼트의 쌍(VH-CH1-VH-CH1)을 포함하는 선형 항체; (xi) 다가 항체 단편(scFv 이량체, 삼량체 및/또는 사량체(Power and Hudson, J Immunol. Methods 242: 193-204 9 (2000)); (xii) 불변 면역글로불린 도메인인 CH3 또는 CH4에 융합되는 scFv를 포함한 2가 분자인 미니바디(불변 CH3 또는 CH4 도메인은 이량체화 도메인으로서 작용함)(Olafsen T et al (2004) Prot Eng Des Sel 17(4):315-323; Hollinger P and Hudson PJ (2005) Nature Biotech 23(9): 1126-1136); 및 (xiii) 중쇄 및/또는 경쇄의 다른 비-전장 부분, 또는 이의 돌연변이체, 변이체 또는 유도체를 포함하는, 전장이 아닌 적어도 하나의 폴리펩타이드쇄를 포함하는 분자를 단독으로 또는 임의의 조합으로 포함한다. 미국 특허 제20070274985호에 포함된 단일쇄 Fab(scFAb)는 공지되어 있고 기재되어 있다.
항체는 다수의 방법에서 변형될 수 있기 때문에, 용어 "항체"는 필요한 특이성 및 본원에 따라 적용될 수 있는 중화 능력을 지니는 결합 도메인을 갖는 임의의 특이적 결합 구성원 또는 물질을 아우르는 것으로 해석되어야 한다. 따라서, 이 용어는 자연적이든 또는 전체적이든 또는 부분적으로 합성이든 면역글로불린 결합 도메인을 포함하는 임의의 폴리펩타이드를 포함하는, 항체 단편, 항체의 유도체, 기능성 동등물 및 상동체를 아우른다. 따라서, 면역글로불린 결합 도메인, 또는 다른 폴리펩타이드에 융합된 동등물을 포함하는 키메라 분자가 포함된다. 키메라 항체의 클로닝 및 발현은 유럽 특허 제0120694호 및 유럽 특허 제0125023호 및 미국 특허 제4,816,397호 및 제4,816,567호에 기재된다.
본원에 사용되는 바와 같이, "Fab 단편"은 VL 도메인과 경쇄(CL)의 불변 도메인을 포함하는 경쇄 단편 및 중쇄의 VH 도메인과 제1 불변 도메인(CH1)을 포함하는 항체 단편을 지칭한다. 항체 분자의 Fab 및 F(ab')2 부분은 잘 공지된 방법에 의해 실질적으로 무결함인 항체 분자 상에서 각각 파파인 및 펩신의 단백질 분해 반응에 의해 제조될 수 있고, 또는 합성적으로 또는 재조합적으로 제조될 수 있다. Fab' 항체 분자 부분은 또한 잘 공지되어 있고, F(ab')2 부분으로부터, 다음에 머캅토에탄올에 의하는 것과 같이 두 중쇄 부분을 연결하는 이황화 결합의 환원, 다음에, 요오도아세트아마이드와 같은 시약을 이용하는 얻어진 단백질 머캅탄의 알킬화로부터 생성될 수 있다.
본원에서 용어 "Fc 도메인"은 불변 영역의 적어도 일부를 포함하는 면역글로불린 중쇄의 C-말단 영역을 정의하기 위해 사용된다. 예를 들어, 천연 항체에서, Fc 도메인은 IgG, IgA 및 IgD 아이소타입에서 항체의 2개의 중쇄의 제2 및 제3 불변 도메인으로부터 유래된 2개의 동일한 단백질 단편으로 구성되고; IgM 및 IgE Fc 도메인은 각각의 폴리펩타이드쇄에서 3개의(CH 도메인 2 내지 4)을 포함한다.
예시적인 항체 분자는 무결함 면역글로불린 분자, 실질적으로 무결함인 면역글로불린 분자, 및 Fab, Fab', F(ab')2 및 F(v)로서 당업계에 공지된 해당 부분을 포함하는 파라토프를 포함하는 면역글로불린 분자의 해당 부분이되, 부분은 본원에 기재된 치료적 방법에서의 사용에 바람직하다.
본 발명에서 교시되는 바와 같은 특정 예에서, 중화 활성의 일부 수준 또는 양이 필요로 되며, 사용을 위한, 특히 비강내 또는 흡입 투여를 위한 항체의 특징은 필수적이다. 따라서, 본 발명에 따른 비강내 사용을 위한 임의의 단편, 변이체, 유도체, 합성 또는 항체 부분은 표적 바이러스 또는 병원균, 양태에서 인플엔자 바이러스에 대해 중화 능력 및 활성을 보유할 필요가 있다. 반면에, 복강내 또는 정맥내를 포함하는 대안의 전신 경로를 통해 투여될 항체는 표적 바이러스 또는 병원균, 양태에서 인플루엔자 바이러스에 결합하거나 또는 인식하여야 하지만, 그러나, 중화는 필요하지 않다. 따라서, 예로서, 중화를 보유하는 항체(들)의 Fab 단편은 비강내로 이용될 수 있다. Fc를 통해 매개된 효과기 기능은 비강내 효능 및 중화를 필요로 하지 않는다. 대조적으로, 전신으로 전달된 항체는 효과기 기능을 통해 그들의 효능을 유의성 있게 매개할 것이다.
용어 "항원 결합 도메인"은 항원의 일부 또는 모두에 특이적으로 결합하고 상보성인 면적을 포함하는 항원 결합 분자의 부분을 지칭한다. 항원이 큰 경우, 항원 결합 분자는 에피토프로 지칭되는 부분인 항원의 특정 부분에만 결합할 수 있다. 항원 결합 도메인은, 예를 들어, 하나 이상의 항체 가변 도메인(또한 항체 가변 영역으로 불림)에 의해 제공될 수 있다. 바람직하게는, 항원 결합 도메인은 항체 경쇄 가변 영역(VL) 및 항체 중쇄 가변 영역(VH)을 포함한다.
용어 "가변 영역" 또는 "가변 도메인"은 항원에 항체를 결합하는데 수반되는 항체 중쇄 또는 경쇄의 도메인을 지칭한다. 천연 항체의 중쇄 및 경쇄(각가 VH 및 VL)의 가변 도메인은 일반적으로 유사한 구조를 가지며, 각각의 도메인은 4개의 보존된 프레임워크 영역(FR) 및 3개의 초가변 영역(HVR)을 포함한다. (예를 들어, 문헌[Kindt et al. Kuby Immunology, 6.sup.th ed., W.H. Freeman and Co., 91 페이지(2007).) 단일 VH 또는 VL 도메인은 항원-결합 특이성을 부여하는데 충분할 수 있다. 더 나아가, 특정 항원에 결합하는 항체는 각각 상보성 VL 또는 VH 도메인의 라이브러리를 선별하기 위해 항원에 결합하는 항체로부터의 VH 또는 VL 도메인을 이용하여 분리될 수 있다. 예를 들어, 문헌[Portolano et al, J. Immunol. 150:880-887 (1993); Clarkson et al, Nature 352:624-628 (1991)] 참조.
용어 "항체의 항원-결합 부위"는 본원에서 지칭될 때 항원-결합을 초래하는 항체의 아미노산 잔기를 지칭한다. 항체의 항원-결합 부분은 "상보성 결정 영역" 또는 "CDR"로부터의 아미노산 잔기를 포함한다. "프레임워크" 또는 "FR" 영역은 본원에 정의된 바와 같은 초가변 영역 이외의 해당 가변 도메인 영역이다. 따라서, 항체의 경쇄 및 중쇄 가변 도메인은 N- 내지 C-말단의 도메인 FR1, CDR1, FR2, CDR2, FR3, CDR3 및 FR4를 포함한다. 특히, 중쇄의 CDR3은 대부분 항원 결합에 기여하며 항체의 특성을 정하는 영역이다. 항체는 그들의 중쇄 및 경쇄 CDR에 따라 아미노산 서열에서 충분히 정해질 수 있고, 특히 그들의 중쇄 가변 영역 CDR1, CDR2 및 CDR3 서열 및 그들의 경쇄 가변 영역 CDR1, CDR2 및 CDR3 서열에 따라 기재되고 특성규명될 수 있다. 항체는 중쇄 및 경쇄를 포함하는 항체 또는 단편으로서 정의되거나 또는 특성규명될 수 있되, 중쇄 가변 영역은 특이적 CDR1, CDR2 및 CDR3 서열을 포함하고, 경쇄 가변 영역은 특이적 CDR1, CDR2 및 CDR3 서열을 포함한다. 항체의 CDR 및 FR 영역은 당업자에게 이용가능하고 공지되어 있는 표준 방법 및 분석에 따라서 결정될 수 있다. 따라서, CDR 및 FR 영역은 문헌[Kabat et al, Sequences of Proteins of Immunological Interest, 5th ed., Public Health Service, National Institutes of Health, Bethesda, Md. (1991)의 표준 정의에 따라 또는 문헌[International ImmunoGeneTics information system (IMGT) (imgt.org; LeFranc, M-P (1999) Nucl Acids Res 27:209-212; LeFranc, M-P (2005) Nucl Acids Res 33 :D539-D579)]에 따라 결정될 수 있다.
용어 "에피토프"는 항체에 특이적으로 결합할 수 있는 임의의 폴리펩타이드 결정소를 포함한다. 특정 구현예에서, 에피토프 결정소는 분자의 화학적으로 활성인 표면 그룹, 예컨대 아미노산, 당 측쇄, 포스포릴 또는 설포닐을 포함하고, 특정 구현예에서, 특이적인 3차원의 구조적 특징 및 또는 특이적인 하전 특징을 가질 수 있다. 에피토프는 항체에 의해 결합되는 항원의 영역이다.
혼성세포 또는 다른 수단 및 접근에 의해 단클론성 항체를 제조하기 위한 방법 및 방법론은 잘 공지되어 있다. 병원균, 바이러스 또는 인플루엔자 펩타이드에 대해 생성된 단클론성 항체의 패널은 다양한 특성; 즉, 중화, 아이소타입, 에피토프, 친화도 등에 대해 선별될 수 있다. 바이러스 또는 그의 서브유닛의 활성을 중화시키는 단클론성 항체에 특히 관심이 있다. 이러한 단클론성은 중화 활성 분석에서 용이하게 확인될 수 있다. 고 친화도 항체는 또한 효과적인 결합 및/또는 중화에 대해, 또는 천연 또는 재조합 바이러스의 면역친화도 정제가 요망되거나 또는 관심대상일 때, 유용하다.
본 발명을 실행하는데 유용한 단클론성 항체는 적절한 항원 특이성의 항체 분자를 분비하는 혼성세포를 포함하는 영양소 배지를 포함하는 단클론성 혼성세포 배양을 개시함으로써 생성된다. 배양은 혼성세포가 항체 분자를 배지 내로 분비하기에 충분한 조건 및 시간 기간 동안 유지된다. 이어서, 항체-포함 배지가 수집된다. 이어서, 항체 분자는 잘-공지된 기법에 의해 추가로 분리될 수 있다.
이들 조성물의 제조에 유용한 배지는 당업계에 잘 공지되어 있고 상업적으로 입수가능하며, 합성 배양 배지, 근교계(inbred) 마우스 등을 포함한다. 예시적인 합성 배지는 4.5 gm/ℓ 글루코스, 20 mm 글루타민, 및 20% 소 태아 혈청으로 보충한 둘베코 최소 필수 배지(DMEM; Dulbecco et al, Virol. 8:396 (1959))이다. 예시적인 근교계 마우스 바이러스주는 Balb/c이다.
단클론성 항-바이러스 항체를 생성하기 위한 방법이 또한 당업계에 잘 공지되어 있다. 문헌[Niman et al, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 80:4949-4953 (1983)] 참조. 전형적으로, 바이러스, 바이러스 단백질 또는 펩타이드 유사체는 단클론성 항체를 생성하기 위한 면역원으로서 단독으로 또는 면역원성 담체에 컨쥬게이션되어서 사용된다. 혼성세포는 바이러스, 단백질 또는 펩타이드 유사체와 면역상호작용하는 항체를 생성하는 능력에 대해 선별된다.
항체는 또한 이중특이성일 수 있되, 예를 들어 항체의 하나의 결합 도메인은 본 발명의 용도의 바이러스 중화 항체이고, 다른 하나의 결합 도메인은, 예를 들어 세포의 정점 표면과 결합 또는 연결되고 기도 상피 세포 등에 결합되도록 상이한 특이성을 가진다. 본 발명의 이중특이성 항체가 포함되되, 항체의 하나의 결합 도메인은 본 발명에서 사용하는 중화제(이의 단편을 포함)이며, 다른 결합 도메인은 대안의 중화 항체 또는 비-중화 항체를 비롯한 별도의 항바이러스 특이적 항체를 포함하는 별도의 항체 또는 이의 단편이다. 다른 결합 도메인은 폐 상피, 폐포 대식세포, 중성 또는 교세포-특이적 항체에서와 같은 특정 세포 유형을 인식 또는 표적화하는 항체일 수 있다. 본 발명의 이중특이성 항체에서, 본 발명의 항체의 하나의 결합 도메인은특정 방식으로, 예를 들어 면역 조절자(예를 들어, 인터류킨(들)), 성장 조절자 또는 사이토카인 또는 독소(예를 들어, 리친(ricin)) 또는 항-유사분열제 또는 세포자멸사제 또는 인자에서와 같이 특정 세포 수용체를 인식하고/하거나 세포를 조절하는 다른 결합 도메인 또는 분자와 조합될 수 있다. 따라서, 본 발명의 항체는 감염, 염증 등과 같은 적응증에서 작용제, 표지, 다른 분자 또는 화합물 또는 항체를 보내거나 또는 표적화하기 위해 이용될 수 있다.
본 발명에서 사용하기 위한 이중특이성 항체는 적어도 2개의 Fab 단편을 포함할 수 있되, 일 예에서, 제2 Fab 단편의 중쇄 및 경쇄의 가변 영역 또는 불변 영역은 교환된다. 가변 영역 또는 불변 영역 중 하나의 교환에 기인하여, 상기 제2 Fab 단편은 또한 "교차-Fab 단편" 또는 "xFab 단편" 또는 "크로스오버 Fab 단편"으로서 지칭된다. 이러한 이중특이성은 미국 특허 제2013006011호에 기재되어 있다.
본 발명에서 사용하는 항체, 항체 분자, 또는 이의 단편은 다른 분자 또는 작용제에 컨쥬게이션 또는 부착되는, 본 발명의 면역컨쥬게이트 또는 항체 융합 단백질은 추가로 화학적 제거제(ablation agent), 독소, 면역조절제, 사이토카인, 세포독성제, 화학치료제, 항바이러스제, 항미생물제 또는 펩타이드, 세포벽 및/또는 세포막 방해제 또는 약물에 컨쥬게이션된 이러한 항체, 분자, 또는 단편을 포함하지만, 이들로 제한되지 않는다. 양태에서, 면역조절제 또는 항체 융합은 항바이러스제, 특히 항-인플루엔자 작용제에 컨쥬게이션된 항체, 분자, 또는 단편을 포함할 수 있다. 항-인플루엔자 작용제는 뉴라미니다제 저해제일 수 있다. 항-인플루엔자 작용제는 타미플루 및 리렌자(Relenza)로부터 선택될 수 있다. 항-인플루엔자 작용제는 M2 저해제, 예컨대 아만타딘 또는 리만타딘일 수 있다. 항-인플루엔자 작용제는 바이러스 복제 저해제일 수 있다.
임의의 이러한 항-인플루엔자 작용제는 본원에 제공되는 조성물의 부분으로서 조제 또는 조합될 수 있거나 또는 항체 또는 이의 활성 단편과 함께 또는 개별적으로 투여될 수 있다. 항-인플루엔자 작용제는 본 발명의 항체 또는 이의 단편 또는 흡입 또는 비강내 조성물과 동일 또는 대안의 수단을 통해(예컨대, 흡입을 통해 또는 경구(예를 들어, 알약) 수단을 통해) 투여될 수 있다. 따라서, 본 발명의 항체 및 본 발명의 흡입 또는 비강내 조성물은 항-인플루엔자 작용제 또는 항바이러스제, 예를 들어 타미플루 및 리렌자로부터 선택되는 작용제를 포함하는 뉴라미니다제 저해제와 조합하여 또는 순차적으로 또는 이전에 추가로 포함되거나 또는 투여될 수 있다. 수많은 항체가 특성규명되었고, 바이러스의 보존된 에피토프에 기반하는 것을 포함하여 인플루엔자에 대한 치료적 항체로서 개발 중에 있다. 일부 교차 반응성 항체는 백신접종 또는 중화 감염 동안 가장 강한 중화 항체를 유발하는 혈구응집소(HA) 당단백질을 표적화한다. HA는 바이러스 감염에서 중요한 구성성분인 두 서브유닛 HA1 및 HA2로 구성된다. MAb CR6261는 그룹 1 내에서 H1 바이러스 및 다른 아형(H5)에 결합하고 HA2 서브유닛 상에 결합하는 잘 특성규명된 항체이다(Throsby M et al (2008) PLOS ONE 3 :e3942; Eckert DC et al (2009) Science 324:246-251; Friesen RHE et al (2010) PLoS ONE 5(2):el906; 미국 특허 제8, 192,927호). MAb CR8020은 그룹 2 바이러스인 H3 과 다른 아형(H7) 바이러스 둘 다에 대해 HA2의 막-근위 영역에 결합한다(Eckert DC et al (2011) Science 333 :843-850). 스위스에서의 연구자로부터의 항체 FI6v3는 그룹 1(H1) 및 2(H3) 바이러스 둘 다에 대해 존재하는 에피토프에 결합할 수 있지만, FI6은 마우스에서 제한된 효능을 나타내었다(Corti D et al (2011) Science 333 :850-856). 팔레세와 동료들은 상이한 혈구응집소를 지니는 마우스에서의 순차적 면역화를 이용하여 H3 인플루엔자 바이러스에 대한 광범위 보호성 단클론성 항체를 보고하였다(Wang TT et al (2010) PLoS Pathog 6(2):el000796; US Application 20110027270). 이 접근을 이용하여, 광범위 반응성 H1 항체가 분리되었다(Tan GS et al (2012) J Virol 86(11):6179-6188).
다양한 공지된 인플루엔자 항체의 목록을 이하의 표 1에 제공한다. 특히 비강내 또는 흡입 투여를 통해 향상된 효능을 위해 본 발명의 방법 및 조성물에서 표 1의 다양한 항체를 평가하는 예시적인 연구가 본원에서 제공된다. 표 1에 열거된 것을 포함하는 공지된 항체는 본 발명의 방법 및 조성물에서 평가 및 적용하는데 적합하다. 중화가 공지 또는 평가되지 않는 경우, 이는 본원에 기재 및 언급된 것을 포함하는 당업자에게 공지되고 이용가능한 방법을 이용하여 평가될 수 있다.
표 2는 본원에서 본 발명에 적용가능한 것으로 입증된 일부 항체에 대한 중쇄 및 경쇄 CDR 서열을 제공하는 예시적인 항체 서열의 예시적 표를 제공한다. CDR 서열은 표 1에서 언급되는 바와 같은 공개를 포함하여 공개되거나 또는 입수가능한 서열에 기반하고 이들로부터 유래된다.
본 발명은 공지된 항체 및 새로 분리된 항체를 포함하는 수많은 별개의 중화 항체에 대해 저용량으로 비강내 효능을 입증한다. 특히, 예시적인 비강내 효능은 항체 CR6261, CR8020, CR9114, 6F12, GG3, 5A7, mAb53 및 mAb579를 포함하는 예시적인 항체로서 수많은 별도의 그리고 공지된 항체에 대해 제공된다. 전임상 시험을 포함하여, 예를 들어 CR6261 및 CR8020의 이런 수많은 연구에도 불구하고, 이러한 활성 및 효능은 이들 특정 항체에 대해 입증되지 않았다. 공지되고 새로 분리된 항체를 포함하는 수많은 별도의 항체는 본원에서 평가되며, 유사하게 효능이 있다. 본 발명에 따라 활성이며 효과적인 항체는 여러가지의 에피토프에 관한 것이며, 인플루엔자 A 바이러스의 아형 H1, H3, H5를 포함하는 별도의 아형 및 또한 인플루엔자 B를 인식한다. 따라서, 본 발명은 일반적으로 적용가능한 현상을 제공하되, 바이러스를 중화시킬 수 있는 항체가 바이러스에 대한 하나 이상의 항체, 특히 하나 이상의 단클론성 항체를, 특히 인플루엔자 바이러스에 대해 비강내로 투여함으로써 바이러스, 감염 및/또는 전염의 비강내 투여 및 치료 또는 예방을 위한 방법 및 조성물에서 이용될 수 있다. 제공된 항체는 중화시킬 수 있으며, 그의 표적 또는 에피토프 및 그의 아이소타입(IgG 아이소타입)은 적절하게 나타나지 않는다. 따라서 유사한 또는 비슷한 능력 및 중화 능력을 갖는 추가적인 항체는본 발명에서의 용도를 가진다. 항체 단편, 유도체 또는 변이체가 고려된다. Fab를 포함하는 항체 단편은 본 발명에 따라 효과적이 되는 것으로 본원에서 입증된다. 본 발명의 일 양태에서, 항체 Fab 단편은 비강내로 또는 흡입을 통해 투여될 때 활성이고 효능이 있으며, IP 또는 IV로 투여될 때 비효과적이다.
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IN 전달 및 투여에 유용한 중화 항체는 비-중화 항체와 조합될 수 있다. 본 출원은 IN 투여가 IP 또는 IV 투여를 포함하는 대안의 투여 경로와 조합되어 전반적이고 조합물의 향상된 효능을 제공한다는 것을 입증한다. 본원에 제공되는 바와 같은 항체의 조합된 IN 및 IP 투여는 IN 또는 IP 단독에 비해 향상된 상승 효과 및 효능을 제공한다. 대체 또는 대안적 투여 또는 치료 방법을 제공하는 것에 더하여, 본 발명은 항체-매개 요법 및 예방에 대해 향상된 조합을 제공하되, IN 투여는 최상의 효능을 위해 IP 투여를 포함하는 전신 투여와 조합된다.
투약의 대안의 수단, 더 적은 투약, 더 낮은 용량의 제형 및 신규한 투여방법이 본 발명에 의해 제공된다.
조성물
본 발명에 따르면, 조성물은 비강내로 사용 및 투여를 위해 제공된다. 조성물은 특히 중화 항체, 특히 단클론성 항체 또는 이의 활성 단편, 특히 항바이러스 항체, 특히 인플루엔자 항체를 포함한다. 조성물은 하나 이상의 중화 항체, 특히 하나 이상의 단클론성 항체 또는 이의 활성 단편, 특히 항바이러스 항체, 특히 인플루엔자 항체를 포함한다. 조성물은 특히 하나 이상의 중화 항체, 특히 단클론성 항체 또는 이의 활성 단편, 특히 항바이러스 항체, 특히 인플루엔자 항체를 포함한다. 중화 항체는 하나 이상의 유형 또는 아형의 인플루엔자를 중화시킬 수 있고, 또는 인플루엔자의 유형 또는 그룹과 별도의 중화 항체와 조합될 수 있다. 본 발명의 조성물은 특히 순환 인플루엔자 바이러스주에 대한 인플루엔자 중화 항체들의 조합을 포함한다. 조성물(들)은 특히 순환 인플루엔자 바이러스주, 특히 항-인플루엔자 A 및 항-인플루엔자 B 항체에 대한 인플루엔자 중화 항체의 조합을 포함할 수 있다. 조성물(들)은 특히 순환 인플루엔자 바이러스주, 특히 하나 이상의 항-인플루엔자 A 바이러스 및 하나 이상의 항-인플루엔자 B 항체에 대한 인플루엔자 중화 항체들의 조합을 포함할 수 있다. 조성물(들)은 특히 조합물이 적합하고 적절한 순환 인플루엔자 바이러스주를 총괄적으로 겨누고, 특히 인플루엔자 A H1 및 H3 아형을 그리고 야마가타 및 빅토리아 계통의 인플루엔자 B를 총괄적으로 겨누는 인플루엔자 중화 항체들의 조합을 포함할 수 있다. 조성물(들)은 1, 2, 3종 이상의 중화 항체를 포함할 수 있되, 단, 인플루엔자 바이러스 A 및 B는 조합물 또는 항체에 의해 중화된다.
조성물(들)은 특히 순환 인플루엔자 바이러스주, 특히 인플루엔자 A 항-H1 항체, 인플루엔자 A 항-H3 항체 및 항-인플루엔자 B 항체에 대한 인플루엔자 중화 항체들의 조합을 포함할 수 있다. 조성물(들)은 인플루엔자 H5 및 H7 바이러스주에 대해 효과적이거나 또는 더 효과적인 인플루엔자 A 항체를 포함할 수 있다. 인플루엔자 항체는 바이러스주 특이적 또는 비특이적 또는 전체 특이적일 수 있고, H1 아형 및/또는 H3 아형 및/또는 H5 및/또는 H7 또는 다른 인플루엔자 A 바이러스주 또는 아형을 포함하는 인플루엔자 A를 중화시킬 수 있고/있거나, 야마가타 및/또는 빅토리아 계통을 포함하는 인플루엔자 B를 중화시킬 수 있다. 조성물은 예컨대 항체의 IV 또는 IP에 의해 대안의 투여 조성물로서 동일한 구성성분 또는 별도의 또는 추가적인 구성성분을 가질 수 있다.
본 발명은 비강내 투여에 적합하고 비강내 투여를 위해 선택된 비강내 항체 조합 조성물, 또는 항체들, 특히 인플루엔자 항체들 및 특히 단클론성 인플루엔자 항체들의 조합의 조성물을 제공하되, 항체들의 조합은 순환 바이러스 바이러스주에 대한 항체를 포함(comprise)하거나, 포함(include)하거나 또는 구성(consist of)된다. 따라서, 인플루엔자 순환 바이러스주만큼 많이 현재 인플루엔자 B (야마가타), 인플루엔자 B(빅토리아), 인플루엔자 A H1 아형 및 인플루엔자 A H3 아형이 있으며, 인플루엔자 B(야마가타), 인플루엔자 B(빅토리아), 인플루엔자 A H1 아형 및 인플루엔자 A H3 아형 각각에 대한 항체(들)를 갖는 또는 포함하는 본 발명의 조합 조성물이 제공된다.
조합된 항체는 표 1에 나타내고 본원에서 입증하는 것 같은 하나 이상의 인플루엔자 바이러스주 또는 아형에 대한 것임을 주목할 수 있다. 따라서, 본원에서 입증하는 바와 같이, 본원에 이용되는 바와 같은 항체 CR9114 또는 CA9114는 인플루엔자 A 및 인플루엔자 B 바이러스주에 대해 효과적이다. 본원에 이용되는 바와 같은 항체 CR6261 또는 CA6261은 H1, H5 등을 포함하는 다양한 그룹 1 인플루엔자 A 아형에 대해 효과적이다. 본원에 이용되는 바와 같은 항체 CR8020 또는 CA8020은 H3 및 H7을 포함하는 다양한 그룹 2 인플루엔자 A 아형에 대해 효과적이다. 항체 Mab53은 그룹 1 및 2의 인플루엔자 A H1, H9, H7 및 H5 아형에 대해 효과적이다. 항체 Mab579는 H3 및 H7 아형에 대해 효과적이다. 따라서, 현재 순환 인플루엔자 바이러스주는 H1, H3 및 B 유형이지만, 새로운 또는 한번의 독감 계절에 발생 및 출현할 수 있는 아형을 포함하는 아형들 및 추가적인 균주에 대해 효능을 갖는 조합물이 만들어지고, 본원에 제공될 수 있다.
조성물은 특히 임의의 대안의 투약량 또는 투여 형태, 예컨대 IP 또는 IV보다 더 낮은 용량 또는 양의 항체를 포함하거나 또는 제형화될 수 있다. 따라서, 본 발명에서 사용되는 조성물은 대안의 투여, 특히 IP 또는 IV 투여를 위한 조성물에 대해 또는 비해 5배, 10배, 20배, 50배, 100배, 10배 초과, 100배 초과량의 중화 항체를 포함할 수 있다.
본 발명의 조성물은 포유류 체중을 기준으로 1㎎/㎏ 미만의 양으로 특히 비강내로 투여용으로 의도되는 항체의 용량을 포함할 수 있다. 특정 양태에서 이의 조성물은 인간 체중을 기준으로 1㎎/㎏ 미만의 투여에 이르는 항체를 포함한다. 본 발명의 조성물은 특히 임상적으로 적절한 포유류를 포함하는 포유류, 예컨대 마우스, 개, 말, 고양이 또는 인간의 체중을 기준으로 1㎎/㎏ 미만, 0.5 ㎎/㎏ 미만, 0.1㎎/㎏ 미만, 0.05 ㎎/㎏ 미만, 0.01㎎/㎏ 미만, 0.005 ㎎/㎏ 미만, 0.0025 ㎎/㎏ 미만, 0.001㎎/㎏ 미만의 양으로 특히 비강내로 투여를 위한 것으로 의도되는 항체의 용량을 포함할 수 있다.
당업자는 동물 모델에서의 효능을 기준으로 그리고 임상 및 생리학적 반응, 바이러스 부하 및 바이러스 전염률, 인간을 포함하는 포유류에서의 적절하고 효능있는 용량을 고려하는 것을 포함하여 결정할 수 있다. 따라서, 본 발명 및 투약 파라미터는 본원에 제공된 예 및 예시된 구체적 용량으로 제한되지 않는다. 본 발명은 흡입 또는 비강내 투약이 효능 면에서 그리고 인플루엔자 바이러스 감염을 포함하는 바이러스 감염의 임상적으로 나타나는 효과를 감소, 제한 또는 차단함에 있어서 바람직한 대안이라는 것을 입증한다. 중화 항체의 흡입 또는 비강내 투여는 예상 또는 예측되지 않은 IP 또는 IV를 포함하는 다른 투여 경로에 비해 개선 및 향상된 효능을 제공한다. IN 또는 흡입 경로를 통한 투약의 양 및 시간은 추가로 평가되고 당업자에 의해 결정될 수 있다. 본원에 제공된 연구는 IN 또는 흡입 투여가 IP 또는 IV에 비해 더 낮은 용량에서 더 효능있으며, 해당 투여는 감염 며칠에 일어날 수 있고 여전히 효능을 보유한다는 것을 입증한다.
마우스 모델에서 본원에서 적용 및 입증되는 용량 범위 및 용량은 적절하게 그리고 당업자 및 임상 또는 의학적 전문가에 의해 당업계에 공지된 파라미터를 이용하여 전환 또는 적용될 수 있다. 따라서, 마우스에서의 ㎎/㎏ 투약은 인간 또는 다른 동물에 대해 비슷한 또는 합리적으로 동등한 투약으로 추정될 수 있다. 예를 들어, 실험실 동물의 평균 체중은 20g인 반면, 인간의 평균 체중은 70㎏이다.
동물 용량을 인간 용량으로 전환시키기 위한 임상 연구에서의 일상적인 실행이 있으며, 당업자는 이러한 전환 용량(들)이 인간에서 성공적이었다는 강한 예상을 할 것이다. 인간에서의 종간 척도 및 예측 약동학적 파라미터는 기재되어 있다(예를 들어, Mahmood et al. (2003) J Clin Pharmacol 43 : 692-697; Mordenti (1986) Journal of Pharmaceutical Sciences, 75: 1028-1040). 예를 들어, 치료 수준은 종종 독성과 병행하여 추정되며, 따라서 동물 독성을 인간 독성으로 전환시키는데 적용되는 전환 인자는 동물에서의 최소 유효 용량을 인간에서의 최소 유효 용량으로 전환시키기 위해 흔히 사용된다. 추가로, FDA는 동물(마우스) 용량을 인간 용량으로 전환시키기 위해 사용되는 인자(예컨대, 일 예에서 마우스 용량 곱하기 0.08)를 포함하여, 치료를 위한 임상 시험에서 최대 안전 시작 용량을 추정하기 위한 전환인자를 제공하는 "산업용 가이드"를 제공한다.
어구 "약제학적으로 허용가능한"은 생리적으로 용인가능하고, 인간에게 투여될 때 알레르기 또는 유사한 뜻밖의 반응, 예컨대 위산역류, 현기증을 전형적으로 생성하지 않는 분자 독립체 및 조성물을 지칭한다.
'치료적 유효량'은 의사 또는 다른 임상의에 의해 추구되는 대상의 생물학적 또는 의학적 반응을 유발하는 약물, 화합물, 항미생물제, 항체 또는 약제의 양을 의미한다. 특히, 바이러스 감염 및 바이러스의 증식에 대해, 용어 "유효량"은 바이러스 복제 또는 발병의 양 또는 정도의 생물학적으로 유의미한 감소 및 또는 대상에서 질병(열, 관절 통증, 불편함) 길이의 감소 또는 감염된 개체에서 체중 손실의 감소를 초래할 화합물 또는 작용제의 유효량을 포함하는 것으로 의도된다. 어구 "치료적 유효량"은 체중, 바이러스 부하, 바이러스 복제, 바이러스 전염 또는 병리의 다른 특징, 예를 들어 열, 또는 백혈구의 존재 및 활성을 수반할 수 있는 백혈구 수에서의 임상적으로 상당한 변화를 예방하고, 바람직하게는 바람직하게는 적어도 약 30%만큼, 더 바람직하게는 적어도 50%만큼, 가장 바람직하게는 적어도 90%만큼 감소시키기에 충분한 양을 의미하기 위해 본원에서 사용된다.
특정 구현예에서, 대상에 대한 요법의 투여와 관련하여 "유효량"은 다음의 효과 중 1, 2, 3, 4 또는 그 이상을 달성하는데 충분한 요법의 양을 지칭한다: (i) 인플루엔자 바이러스 감염, 인플루엔자 바이러스 질환 또는 이와 관련된 증상의 중증도의 감소 또는 개선; (ii) 인플루엔자 바이러스 감염, 인플루엔자 바이러스 질환 또는 이와 관련된 증상의 지속기간의 감소; (iii) 인플루엔자 바이러스 감염, 인플루엔자 바이러스 질환 또는 이와 관련된 증상의 진행의 예방; (iv) 인플루엔자 바이러스 감염, 인플루엔자 바이러스 질환 또는 이와 관련된 증상의 퇴보; (v) 인플루엔자 바이러스 감염, 인플루엔자 바이러스 질환 또는 이와 관련된 증상의 발생 또는 개시의 예방; (vi) 인플루엔자 바이러스 감염, 인플루엔자 바이러스 질환 또는 이와 관련된 증상의 재발의 예방; (vii) 한 세포로부터 다른 세포로, 한 조직으로부터 다른 조직으로 또는 한 기관으로부터 다른 기관으로의 인플루엔자 바이러스의 퍼짐의 감소 또는 예방; (viii) 한 대상로부터 다른 대상로의 인플루엔자 바이러스의 퍼짐/전염의 예방 또는 감소; (ix) 인플루엔자 바이러스 감염 또는 인플루엔자 바이러스 질환과 관련된 기관 부전의 감소; (x) 대상 입원의 감소; (xi) 입원 길이의 감소; (xii) 인플루엔자 바이러스 감염 또는 이와 관련된 질환을 지니는 대상 생존의 증가; (xiii) 인플루엔자 바이러스 감염 또는 이와 관련된 질환의 제거; (xiv) 인플루엔자 바이러스 복제의 저해 또는 감소; (xv) 숙주 세포(들)에 대한 인플루엔자 바이러스의 결합 또는 융합의 저해 또는 감소; (xvi) 숙주 세포(들) 내로 인플루엔자 바이러스 유입의 저해 또는 감소; (xvii) 인플루엔자 바이러스 게놈 복제의 저해 또는 감소; (xviii) 인플루엔자 바이러스 단백질 합성의 저해 또는 감소; (xix) 인플루엔자 바이러스 입자 조립체의 저해 또는 감소; (xx) 숙주 세포(들)로부터 인플루엔자 바이러스 입자 방출의 저해 또는 감소; (xxi) 인플루엔자 바이러스 역가의 감소; (xxii) 인플루엔자 바이러스 감염 또는 인플루엔자 바이러스 질환과 관련된 증상 수의 감소; (xxiii) 다른 요법의 예방적 또는 치료적 효과의 향상, 개선, 보충, 실행 또는 증대; (xxiv) 인플루엔자 바이러스 감염과 관련된 2차 감염의 개시 또는 진행의 예방; 및/또는 (xxv) 인플루엔자 바이러스 감염에 대해 2차적으로 생기는 박테리아 폐렴의 질환 중증도의 개시의 예방 또는 축소. 일부 구현예에서, 요법의 "유효량"은 유리한 효과를 가지지만, 인플루엔자 바이러스 감염 또는 이와 관련된 질환을 치유하지는 않는다. 특정 구현예에서, 요법의 "유효량"은 예방적 및/또는 치료적 효과를 갖는 요법의 양을 달성하기 위해 특정 빈도로 요법의 다회 용량의 투여를 포함할 수 있다. 다른 상황에서, 요법의 "유효량"은 특정양으로 요법의 단일 용량의 투여를 포함할 수 있다.
증상, 또는 특히 인플루엔자 감염, 질환 또는 노출을 포함하는 바이러스 감염과 관련된 증상은 100℉ 이상의 열, 열감, 기침 및/또는 인후통, 콧물 또는 코막힘, 두통 및/또는 몸살, 오한, 피로, 전신허약감, 구역, 구토 및/또는 설사, 통증 및 관절통 및 근육통 및/또는 안구통을 포함할 수 있지만, 이들로 제한되지 않는다.
용어 '예방하는' 또는 '예방'은 질환 원인제에 노출되거나 또는 질환 개시에 앞서 질환의 성향을 가질 수 있는 대상에서 질환 또는 장애를 획득하거나 또는 발생할 위험의 감소(즉, 질환의 임상적 증상 중 적어도 하나가 발생하지 않도록 야기함)를 지칭한다.
용어 '예방'은 용어 '방지'에 관련되고 포함되며, 질환을 치료 또는 치유하는 것보다는 막기 위한 목적의 측정 또는 절차를 지칭한다. 예방적 측정의 비제한적 예는 항-감염제 또는 백신의 투여; 예를 들어, 부동화(immobilization)에 기인하는 혈전증의 위험에 있는 병원 환자에게 저분자량 헤어핀의 투여; 및 말라리아가 유행하거나 말라리아에 걸릴 위험이 높은 지리적 영역에 방문하기 전에 클로로퀸과 같은 항-말라리아제의 투여를 포함할 수 있다.
임의의 질환 또는 감염을 '치료하는(treating)' 또는 '치료(treatment)'라는 용어는 일 구현예에서, 질환 또는 감염을 개선하는 것을 지칭한다(즉, 감염제 또는 바이러스의 질환 또는 성장을 저지하거나 또는 이들의 임상적 증상 중 적어도 하나의 징후, 정도 또는 중증도를 감소시킴). 다른 구현예에서, '치료하는' 또는 '치료'는 대상에 의해 인식되지 않을 수 있는 적어도 하나의 생리적 파라미터를 개선시키는 것을 지칭한다. 또 다른 구현예에서, '치료하는' 또는 '치료'는 신체적으로(예를 들어, 인식할 수 있는 증상의 안정화), 생리적으로(예를 들어, 생리적 파라미터의 안정화) 중 하나 또는 둘 다로 질환 또는 감염을 조절하는 것을 지칭한다. 추가 구현예에서, '치료하는' 또는 '치료'는 질환의 진행, 질환의 전염을 늦추거나 또는 감염을 감소시키는 것에 관한 것이다.
본원에 사용되는 바와 같은, "pg"는 피코그램을 의미하고, "ng"은 나노그램을 의미하며, "ug" 또는 "㎍"은 마이크로그램을 의미하고, "㎎"은 밀리그램을 의미하며, "ul" 또는 "㎕"은 마이크로리터를 의미하고, "㎖"는 밀리리터를 의미하며, "ℓ"는 리터를 의미한다.
본 발명은 추가로 본 발명의 치료방법을 실행하는데 유용한 치료 조성물을 고려한다. 대상 치료 조성물은 활성성분으로서 본원에서 기재되는 바와 같은 약제학적으로 허용가능한 부형제(담체) 및 이의 하나 이상의 항체 또는 활성 단편, 특히 이의 중화 항체, 폴리펩타이드 유사체 또는 이의 단편을 혼합하여 포함한다. 바람직한 구현예에서, 조성물은 표적 세포 내에서 또는 대상 또는 환자에서 바이러스, 특히 인플루엔자 바이러스를 중화시킬 수 있는 항체 또는 단편을 포함한다.
활성 성분으로서 항체, 폴리펩타이드, 유사체 또는 활성 단편을 포함하는 치료 조성물의 제조는 당업계에서 잘 이해되고 있다. 전형적으로, 이러한 조성물은 액체 용액 또는 현탁액으로서 투여를 위해 제조되며, 그러나, 투여 전 액체인 용액에 적합한 고체 형태 또는 현탁액이 제조될 수 있다. 제제는 또한 유화될 수 있다. 활성 치료 성분은 종종 약제학적으로 허용가능하고 활성 성분과 양립가능한 부형제화 혼합된다. 적합한 부형제는, 예를 들어, 물, 식염수, 덱스트로스, 글라이세롤, 에탄올 등 및 이들의 조합물이다. 추가로, 요망된다면, 조성물은 활성 성분의 유효성을 향상시키는 소량의 보조 물질, 예컨대 습윤제 또는 유화제, pH 완충제를 포함할 수 있다.
항체, 폴리펩타이드, 유사체 또는 활성 단편은 중화된 약제학적으로 허용가능한 염 형태로서 치료 조성물로 제형화될 수 있다. 약제학적으로 허용가능한 염은 산부가염(폴리펩타이드 또는 항체 분자의 유리 아미노기에 의해 형성됨)을 포함하며, 무기산, 예를 들어, 염산 또는 인산, 또는 유기산, 예컨대 아세트산, 옥살산, 타르타르산, 만델산 등에 의해 형성된다. 유리 카복실기로부터 형성된 염은 또한 무기염기, 예컨대 나트륨, 칼륨, 암모늄, 칼슘 또는 수산화철, 및 유기 염기, 예컨대 아이소프로필아민, 트라이메틸아민, 2-에틸아미노 에탄올, 히스티딘, 프로카인 등으로부터 유도될 수 있다.
치료 항체-, 폴리펩타이드-, 유사체- 또는 활성 단편-포함 조성물은, 예를 들어 단위 용량의 투여에 의해 통상적으로 투여된다. 본 발명의 치료 조성물과 관련하여 사용될 때 용어 "단위 용량"은 인간에 대한 단일의 투약량으로서 적합한 물리적으로 별도의 단위를 지칭하며, 각각의 단위는 필요한 희석제(즉, 담체 또는 비히클)와 관련하여 목적으로 하는 치료적 효과를 생상하도록 계산된 활성 물질의 사전결정된 양을 포함한다.
본원에 제공되는 바와 같은 바이러스, 특히 인플루엔자 바이러스에 효과적이고 유용한 비강내 투여를 위한 중화 항체의 단위 용량은 대안의 투여에 대해 지시되거나 또는 필요한 것, 예컨대 IP 또는 IV 투여에 필요한 것에 비해 상대적으로 감소된다. 따라서 이들의 양태에서, 투여, 특히 비강내 투여를 위한 항체 조성물이 제공되되, 단위 용량은 대안의 투여에 대해 지시되거나 또는 필요한 것, IP 또는 IV 투여에 필요한 것에 비해 10의 몇 제곱배, 특히 10의 수제곱배 또는 다수 제곱배만큼 감소된다. 따라서 이의 양태에서, 투여, 특히 비강내 투여를 위한 항체 조성물이 제공되되, 단위 용량은 적어도 10배, 10배, 20배, 25배, 50배, 적어도 100배, 100배, 500배, 1000배까지 감소된다. 이렇게 해서 특히 조성물은, 특히 동일 또는 비슷한 적응증 또는 효과 및/또는 활성에 대해 IP 또는 IV 투여에 대한 동일한 단위 용량에 비해 감소된다. IN 단위 용량은 개선된 효능을 위해 IP 또는 IV 용량과 조합될 수 있다.
조성물은 투약 제형과 양립가능한 방식으로 치료적 유효량으로 투여된다. 투여될 양은 치료될 대상, 활성 성분을 이용하는 대상의 면역계의 능력 및 요망된느 바이러스의 저해 또는 중화 정도에 의존한다. 투여되도록 필요한 활성 성분의 정확한 양은 실행자의 판단에 의존하며, 각각의 개체에 특유한다. 그러나, 적합한 투약량은 활성 성분의 약 0.001 내지 10, 바람직하게는 약 0.005 내지 약 1 미만, 1 미만, 0.5 미만, 0.1 미만, 0.05 미만, 0.01 미만, 더 바람직하게는 1 미만, 0.5 미만, 0.1 미만의 밀리그램/개체의 킬로그램 체중/비강내 투여를 위한 용량의 범위에 있을 수 있다. 초기 투여 및 후속 투여를 위한 적합한 요법은 또한 가변적이다. 일 요법에서, 초기 투여 다음에 후속 주사 또는 다른 투여가 1시간 이상의 간격으로 반복 후속 용량(들), 단일 또는 다회 후속 용량이 있다.
초기의 투여 IN에 이어서 IP 또는 IV 또는 다른 적합한 경로에 의한 더 고용량의 항체가 후속될 수 있다. 본 발명의 양태에서, 신규한 투약 접근 또는 파라미터가 제공되되, 환자 또는 대상는 비강내 중화 항체로 투여되고, 동시에, 후속적으로 또는 이후에 IP 또는 IV 투여에 의해 중화 또는 비-중화 항체가 투여된다.
치료 조성물, 특히 비강내 조성물은 유효량의 중화 항체 또는 이의 단편 및 다음의 활성 성분 중 하나 이상을 추가로 포함할 수 있다: 항생제, 항바이러스제, 스테로이드, 항염증제. 특정 양태에서, 조성물은 항바이러스제를 포함한다. 조성물은 항-인플루엔자 작용제를 포함할 수 있다. 항-인플루엔자 작용제는 타미플루 및 리렌자로부터 선택되는 작용제를 포함하는 뉴라미니다제 저해제일 수 있다.
본원에서 사용되는 바와 같은 "pg"는 피코그램을 의미하고, "ng"은 나노그램을 의미하며, "ug" 또는 "㎍"은 마이크로그램을 의미하고, "㎎"은 밀리그램을 의미하며, "ul" 또는 "㎕"은 마이크로리터를 의미하고, "㎖"는 밀리리터를 의미하며, "ℓ"는 리터를 의미한다.
조성물은 당업계에서 그리고 의학 분야 및 임상적 실행에서 공지되고 허용가능한 접근을 이용하여 비강 스프레이 또는 흡입 용액 또는 현탁액으로 제형화될 수 있다. FDA는 fda.gov에서 입수가능한 산업 문서에 대한 가이드(Guidance for Industry documents)를 포함하여 이러한 스프레이, 용액 및 현탁액 및 스프레이 약물 제품에 관한 가이드라인 및 가이드를 제공한다. 명칭이 [Nasal Spray and Inhalation Solution, Suspension and Spray Drug Products -Chemistry, Manufacturing and Controls Documentation]인 산업 문서에 대한 예시적인 2002년 7월의 가이드는 제형 성분 및 조성물에 관한 상세한 설명, 그에 따라서 제조 및 폐쇄되는 용기 시스템의 명세서를 포함한다.
비강 스프레이는다른 부형제를 포함할 수 있고 비강 흡입에 의한 용도로 의도되는 전형적으로 수계인 제형으로 용해 또는 현탁된 활성 성분을 포함하는 약물 제품이다. 비강 스프레이용 용기 폐쇄 시스템은 환자에 대해 제형의 정량화, 원자화 및 전달을 초래하는 용기 및 모든 구성성분을 포함한다. 비강 스프레이 약물 제품은 활성 성분의 정량 용량을 포함하는 스프레이를 전달하는 비가압 디스펜서 내에 용액 또는 부형제(예를 들어, 보존제, 점도 개질제, 유화제, 완충제)의 혼합물 중에서 용해 또는 현탁된 치료적으로 활성인 성분(약물 물질)을 포함한다. 용량은 스프레이 펌프에 의해 정량화될 수 있고 또는 제조 동안 사전측정되었다. 비강 스프레이 단위는 단위 투약을 위해 설계될 수 있고, 또는 약물 물질을 포함하는 제형의 수많은 정량 스프레이를 방출할 수 있다. 비강 스프레이는 국소 및/또는 전신 효과를 위해 비강에 적용된다.
흡입 용액 및 현탁액 약물 제품은 전형적으로 치료적으로 활성인 성분을 포함하고 또한 추가적인 부형제를 포함할 수 있는 수계 제형이다. 수계 경구 흡입 용액 및 현탁액은 멸균이어야 한다(21 CFR 200.51). 흡입 용액 및 현탁액은 국소 및/또는 전신 효과를 위해 경구 흡입에 의해 폐에 전달되도록 의도되며, 구체화된 네뷸라이저를 이용하여 사용되어야 한다. 흡입 스프레이 약물 제품은 제형 및 용기 밀폐 시스템으로 이루어진다. 제형은 전형적으로 수계이며, 임의의 추진제를 포함하지 않는다.
흡입 스프레이 약물 제품에 대한 현재의 용기 밀폐 시스템 설계는 기계적 또는 전력 보조 및/또는 스프레이 플룸(plume)의 생성을 위한 환자 흡기로부터의 에너지를 이용하여 사전정량화되고 장치 정량화된 제시를 둘 다 포함한다. 사전 정량화된 제시는 제조 동안 또는 사용전 환자에 의해 장체 내로 후속적으로 삽입된 일부 유형의 단위(예를 들어, 단일 또는 다중 블리스트 또는 다른 공동)를 포함한다. 전형적인 장치-정량화 단위는 환자에 의해 활성화될 때 정량화된 스프레이로서 장치 그 자체에 의해 전달되는 다회 용량에 충분한 제형을 포함하는 저장소를 가진다.
비강 내에서의 연장된 체류 시간은 또한 생체접착 중합체, 마이크로스피어, 키토산을 이용함으로써 또는 제형의 점도를 증가시킴으로써 달성될 수 있다. 비강 점막섬모 클리어런스는 또한 약물, 부형제, 보존제 및/또는 흡수 인핸서에 의해 자극 또는 저해될 수 있고, 따라서 흡수 부위에 대한 약물 전달에 영향을 미친다.
마이크로스피어 기법은 비강 제품을 설계하기 위해 이용 중인 전문화된 시스템 중 하나이다. 마이크로스피어는 비강 점막과 더 장기적인 접촉을 제공할 수 있고, 따라서 흡수 또는 효능을 향상시킨다. 비강 적용을 위한 마이크로스피어는 생체양립성 물질, 예컨대 녹말, 알부민, 덱스트란 및 젤라틴을 이용하여 제조되었다(Bjork E, Edman P (1990) Int J Pharm 62: 187-192).
비강 제형의 pH는 비강 점막의 자극을 피하며, 약물에 흡수의 비이온화된 형태로 이용가능하게 하고 비강 통과 시 병원성 박테리아의 성장을 방지하며, 보존제와 같은 부형제의 기능성을 유지하고, 정상적인 생리적 섬모 운동을 지속하는데 중요하다. 약물 또는 활성 성분의 물리화학적 특성을 유념해 두고 pH를 4.5 내지 6.5에서 유지하는 제형을 유지하는 것이 바람직하다. 비강 제형은 일반적으로 25 내지 200㎕의 범위에서 소용적으로 투여되며, 100㎕이 가장 통상적인 용량 용적이다.
약물의 수성 용해도는 용액으로 비강 약물 전달을 위한 적절한 파라미터 제한일 수 있다. 통상적인 용매 또는 공용매, 예컨대 글라이콜, 소량의 알코올, 트랜스쿠톨(Transcutol)(다이에틸렌 글라이콜 모노에틸 에테르), 중쇄 글라이세ㅔ라이드 및 라브라솔(Labrasol)(포화 폴리글라이콜화된 C8 내지 C10 글라이세라이드)가 약물의 용해도를 향상시키기 위해 사용될 수 있다. 다른 선택사항은 계면활성제 또는 사이클로덱스트린, 예컨대 친유성 흡수 인핸서와 조합되어 생체에 적합한 용해제 및 안정제로서 작용하는 HP-β-사이클로덱스트린의 사용을 포함한다. 이러한 경우에, 비강 자극에 대한 그들의 영향이 고려되어야 한다.
대부분의 비강 제형은 수계이며 미생물 성장을 방지하기 위한 보존제를 필요로 한다. 파라벤, 염화벤즈알코늄, 페닐에틸 알코올, EDTA 및 벤조일 알코올은 비강 제형에서 일부 통상적으로 사용되는 보존제이다. 수은-포함 보존제는 섬모 운동에 대한 빠르고 비가역적인 효과를 가지며, 비강 시스템용으로 권장되지 않는다.
약물 산화를 방지하기 위해 소량의 항산화제가 필요할 수 있다. 통상적으로 사용되는 항산화제는 메타중아황산나트륨, 아황산수소나트륨, 부틸화된 하이드록시톨루엔 및 토코페롤이다. 보통, 항산화제는 약물 흡수에 영향을 미치지 않거나 또는 비강 자극을 야기한다. 약물, 부형제, 제조 장비 및 포장 성분과의 항산화제 및 보존제의 화학적/물리적 상호작용은 제형 개발 프로그램의 부분으로서 고려되어야 한다.
다수의 알레르기성 및 만성 질환은 종종 점막의 가피(crust) 및 건조와 관련된다. 특정 보존제/항산화제, 특하 부형제는 또한 더 고량으로 사용될 때 비강 자극을 야기할 가능성이 있다. 적절한 비강내 수분은 탈수를 방지하는데 필수적이다. 따라서, 습윤제는 특히 겔기반 비강 제품에 첨가될 수 있다. 습윤제는 비강 자극을 피하며, 약물 흡수에 영향을 미칠 가능성이 없다. 통상적인 예는 글라이세린, 솔비톨 및 만니톨을 포함한다.
전달 시스템의 선택은 사용 중인 약물, 제안된 적응증, 환자 집단 및 마지막으로 시판 선호도에 따른다. 일부 이들 전달 시스템은 비강 점적, 비강 스프레이, 비강 겔 및 비강 분말을 포함한다.
투여
또한 정상 및 합리적으로 예측된 항체 요법 용량은 ㎎ 범위의 IV 또는 IP 용량이 되도록 잘 확립된다는 것을 주목한다. 이는 지금까지 수많은 재조합 항체에 의한 연구 및 임상 경험에 기반한다. 지금까지 스물(20) 이상의 단클론성 항체가 미국에서 임상적으로 승인되었다(예를 들어, 문헌[Newsome BW and Ernstoff MS (2008) Br J Clin Pharmacol 66(1):6-19] 참조). 현재 이용 중인 임상 승인된 항체는 모두 이용되며, ㎎/㎏ 범위에서 IP 또는 IV로 투여된다.
인플루엔자 단클론성 항체는 지금까지 임상적으로 승인되지 않았다. 진행 중이거나 또는 보고된 모든 시험은 표준으로서 정맥내 전달을 이용한다. 특히, 테라클론 사이언시즈(TheraClone Sciences) 항체 TCN-023를 1 내지 40㎎/㎏의 범위에서 단일 용량-상승으로 평가하였다 (NCT01390025, clinical trails.gov). TCN-032 항체는 인플루엔자 기질 단백질(M2)의 아미노-말단 세포외 도메인(M2e)의 보존된 에피토프에 결합하는 인간 항체이다 (Grandea AG et al (2010) PNAS USA 107(28): 12658-12663; Epub 2010 Jul 1). 항체 CR6261 및 CR8020는 2시간에 걸쳐 IV로 투여한 2㎎/㎏으로부터 50 ㎎/㎏으로의 상승 용량을 이용하는 안전성 및 내약성 연구에서 유사하게 평가되고 있다(각각 크루셀 홀랜드(Crucell Holland) BV 임상 시험 NCT01406418 및 NCT01756950).
인플루엔자 백신은 주사에 의해 투여된다. 인플루엔자 백신에서 하나의 예외는 비강내로 투여되는 플루미스트(FluMist) 생 인플루엔자 백신(메들뮨(Medlmmune))이다. 플루미스트는 3종의 생 독감 바이러스주(A/HINI 바이러스주, A/H3N2 바이러스주 및 B 바이러스주)의 조합물이며, 단일 용량의 사전 충전된 비강내 스프레이로 공급되는 현탁액을 이용하여 0.2㎖ 용량으로 투여된다. 바이러스주에 추가적으로, 각각의 용량은 또한 글루탐산일나트륨, 가수분해된 돼지 젤라틴, 아르기닌, 수크로스, 이염기성 인산칼륨 및 일염기성 인산칼륨을 보존제 없이 포함한다(FluMist Highlights of Prescribing Information, 2012-2013 Formula, Medlmmune, RAL-FLUV12, Component No. : 11294).
본 발명은 바이러스 감염, 특히 호흡 경로를 통해 감염 또는 전달되는 바이러스, 특히 인플루엔자 바이러스의 치료 및 예방을 위한 항체(들) 투여의 신규하고 효능있는 방식 및 항체 투여 프로토콜을 제공한다. 따라서 본 발명은 바이러스를 중화시킬 수 있는 항체의 비강내 투여에 의해 바이러스 감염, 특히 인플루엔자 바이러스의 치료, 예방 또는 경감을 제공한다. 하나 이상의 중화 항체는 동시에, 조합으로 또는 순차적으로 또는 별개를 포함하여 비강내로 투여될 수 있다. 항체는 단일 IN 용량에 의해 투여될 수 있거나, 또는 다회의 개개 용량으로 주어질 수 있다. 개개 용량은 잇따라서 투여될 수 있으며, 각각의 투여는 수분, 수시간 또는 며칠로 분리된다.
특정 양태에서, 본 발명은 인플루엔자의 순환 바이러스에 대한 항체 조합물의 비강내 투여에 의해 바이러스 감염, 특히 인플루엔자 바이러스의 치료, 예방 또는 경감을 제공한다. 따라서, 바이러스 감염, 특히 인플루엔자 바이러스의 치료, 예방 또는 경감은 인플루엔자 B 및 순환 인플루엔자 A 바이러스에 대한 항체들의 조합, 특히 이들의 양태에서, 항-인플루엔자 B 항체, 항-그룹 1 인플루엔자 A 항체, 예컨대 항-H1 항체 및 항-그룹 2 인플루엔자 A 항체, 예컨대 항-H3 항체들의 조합의 비강내 투여에 의해 본 발명에 따라 제공되고 달성된다. 본 발명에 따르면, 항-인플루엔자 B 항체, 항-그룹 1 인플루엔자 A 항체, 예컨대 항-H1 항체, 및 항-그룹 2 인플루엔자 A 항체, 예컨대 항-H3 항체들의 조합의 비강내 투여는 인플루엔자 B 또는 인플루엔자 A 바이러스에 의한 인플루엔자 감염을 예방하거나 치료하는데 효과적이다. 해당 항체를 이용가능한고 본원에서 시험되며 입증되는 정도로, 바이러스의 하나 이상의 하위 유형 또는 바이러스주를 겨누며 이들에 효과적이되도록, 본원에서 제공되고 고려되는 조합물은 공지되고 순환하는 바이러스주 또는 아형, 출현한 바이러스주 또는 아형 및 알려지지 않고 예기치 않은 변이체 바이러스주 또는 아형을 포함하는 바이러스, 특히 인플루엔자 바이러스의 수많은 바이러스주 및/또는 아형에 대해 효과적인 보편적인 칵테일 또는 조합물로서 작용한다.
본 발명에서 사용하는 항체는 비강내로 또는 흡입에 의해 투여되고, 이어서 또는 동시를 포함하여 함께, 조합하여, 또는 순차적으로 또는 별개로, 다른 또는 동일한 항체의 전신 투여, 특히 IP 또는 IV 투여로 투여될 수 있다. 따라서, 조합 투여 프로토콜 또는 방법이 본원에서 고려되고, 제공되되, 비강내 및 IP(또는 IV) 투여는 작용제, 특히 바이러스, 특히 인플루엔자 바이러스에 대해 향상된 효능을 위해 조합된다. 사실, 본원에서 제공되는 연구는 대안제의 투여(IP 또는 IV)와 함께 비강내 조합 투여를 이용할 때 조합된 효능이 상승적이고 예로서 IN과 IP의 저용량이 이용될 수 있다는 것을 입증한다.
본 발명은 상기 포유류에게 호흡기 바이러스를 중화시킬 수 있는 단클론성 항체를 비강내로(IN) 또는 흡입을 통해 투여하는 단계를 포함하는, 호흡기 바이로스에 노출되거나, 노출 위험에 있거나, 걸렸거나, 임상적으로 증상을 제시하거나 또는 고통받는 포유류에서의 바이러스 감염의 치료 또는 예방을 위한 방법을 제공한다. 단클론성 항체는 특히 특히 IgG 항체일 수 있다. 호흡기 바이러스는 인플루엔자 바이러스 또는 의심되는 인플루엔자 바이러스, 또는 미공지 호흡기 바이러스일 수 있다.
항체는 감염 후에 또는 추정되는 감염 후에 투여될 수 있다. 이들의 양태에서, 항체는 감염 후(hpi) 최대 8시간의 시간 기간(2hpi, 4hpi, 6hpi, 8hpi를 포함)에 투여될 수 있다. 대안적으로는, 항체는 4hpi, 8hpi, 12hpi, 18hpi, 24hpi를 포함하여 감염 후 최대 24시간의 시한까지 투여된다. 추가 대안에서, 항체는 12hpi, 24hpi, 36hpi, 48hpi를 포함하여 감염 후 최대 48시한까지 투여된다. 또한 추가 대안에서, 항체는 24hpi, 36hpi, 48hpi, 60hpi, 72hpi를 포함하여 감염 후 최대 72시한까지 투여된다. 항체는 감염 후 또는 추정되는 감염 후에 또는 임상적 증상, 예컨대 열, 통증, 관절통, 무기력의 제시 후에 투여될 수 있다. 항체는 감염 후 1일, 감염 후 2일, 감염 후 3일, 감염 후 4일, 감염 후 5일, 감염 후 6일, 감염 후 7일, 감염 후 10일, 감염 후 12일, 감염 후 14일에 투여될 수 있다. 항체는 1주 후, 2주 후, 3주 후, 4주 후, 1개월 후를 포함하여 감염 또는 추정되는 감염 후 몇 주에 투여될 수 있다.
항체는 전염을 감소 또는 예방하기 위해 감염 전에 또는 질병, 질환 또는 감염의 임의의 임상적 적응증 전에 투여될 수 있다. 이들의 양태에서, 항체는 감염 전의 또는 예방제로서 가능한 또는 추정되는 노출, 또는 노출 위험 전의 며칠의 시간의 기간에 투여될 수 있다. 항체는 1일 전에 또는 앞서, 2일 전에 또는 앞서 , 3일 전에 또는 앞서, 4일 전에 또는 앞서, 5일 전에 또는 앞서, 6일 전에 또는 앞서, 7일 전에 또는 앞서, 1주 전에 또는 앞서, 7일 이상 전에 또는 앞서, 1주 초과 전에 또는 앞서, 최대 9일 전에 또는 앞서, 최대 10일 전에 또는 앞서 투여될 수 있다. 항체는 1회 이상의 용량 전에 또는 앞서 1회 이상 몇 시간, 며칠 또는 몇 주의 간격을 두고 투여된다.
항체는 단일 용량으로 또는 다회 용량으로 투여될 수 있다. 각각의 용량은 단위 또는 ㎎/㎏ 양이 동일할 수 있거나 또는 양은 상이할 수 있다. 예를 들어, 초기 용량은 포유류에 대해 투여되는 것보다 더 높은 상대적 용량, 예를 들어, 약 1㎎/㎏, 1㎎/㎏ 초과, 1㎎/㎏ 미만 또는 약 최대 또는 거의 최대 내약 용량, 또는 최대 내약 용량의 1/2일 수 있지만, 이들로 제한되지 않는다. 후속적 용량은 초기 용량과 동일할 수 있거나 또는 초기 용량 미만 또는 초과일 수 있고, 대상 또는 환자에서의 반응 또는 반응 또는 임상적 증상의 경감 또는 정도에 의존할 수 있다.
동일 또는 상이한 양의 각각 또는 임의의 용량의 다회 용량은 수시간, 수분, 며칠 또는 몇주 간격으로 투여될 수 있다. 시점은 변할 수 있으며, 반응 및 증상에 따라서 단축 또는 연장될 수 있다. 용량, 예를 들어 제한 없이, 적어도 2시간 간격, 적어도 4시간 간격, 적어도 6시간 간격, 적어도 8시간 간격, 적어도 24시간 간격, 적어도 48시간 간격, 적어도 72시간 간격일 수 있다. 항체 용량 또는 용량들은 감염 후 또는 추정되는 감염 후 최대 2, 4, 6, 8, 12, 24, 36, 48, 72시간 후에, 최대 1일, 2일, 3일, 4일, 5일, 6일, 7일, 1주, 2주, 3주, 4주, 1개월 이상에 투여될 수 있다.
상기 방법은 바이러스 특이적 단클론성 항체의 추가적인 투여 IP 또는 IV를 포함할 수 있되, 추가로 투여되는 항체는 중화 또는 비-중화 항체이다. IP 또는 IV에 의해 추가로 투여되는 항체는 IN으로 또는 흡입을 통해 투여되는 것과 동일한 항체일 수 있다. IP 또는 IV로 추가로 투여되는 항체는 IN 또는 흡임으로 투여되는 항체와 동시에, 순차적으로 또는 후속적으로 투여될 수 있다. 임의의 이러한 후속 투여는 몇 시간 후일 수 있고, 2, 4, 6, 8, 12, 24, 36, 48, 72 시간 이상 후일 수 있다. 후속적 투여는 며칠 후일 수 있고, 1일, 2일, 3일, 4일, 5일, 6일, 7일 후일 수 있다. 후속적 투여는 이후 몇 주일 수 있고, 1, 2, 3, 4 또는 5주 후일 수 있다.
흡입 또는 비강내 용량은 초기 IN 또는 IP 또는 IV 또는 조합된 용량 후에 특히 아프거나 또는 감염 또는 질병의 증상을 보이는 것이 계속되는 환자 또는 대상에서의 반응 또는 효능을 촉진시키기 위해 사용될 수 있다.
추가 양태에서, 본 발명은 제1 비강내 또는 흡입 용량의 중화 항체를 투여하는 단계 및 후속적으로 또는 동시에 복강내 또는 정맥내로 또는 다시 비강내 또는 흡입에 의해 제2 용량의 항체를 투여하는 단계를 포함하는 호흡기 바이러스에 대해 단클론성 항체를 투여하기 위한 프로토콜을 제공하되, 제2 용량의 항체는 제1 용량의 항체와 동일 또는 상이한 항체이다. 제2 용량의 항체 또는 임의의 추가 용량은 중화 또는 비-중화 항체일 수 있다.
본 발명은 본 발명의 예시로서 제공되는 다음의 비제한적 실시예를 참고로 하여 더 양호하게 이해될 수 있다. 다음의 실시예는 본 발명의 바람직한 구현예를 더 완전히 설명하기 위해 제공되지만, 그러나 결코 본 발명의 광범위한 범주를 제한하는 것으로 해석되어서는 안 된다.
실시예 1
HA에 대해 단클론성 항체를 이용하는 인플루엔자의 치료적 치료는 용량 의존적이며, 또한 감염 후 몇 시간에 더 고용량을 필요로 한다. 광범위 반응성 HA 특이적 항체의 IP 또는 IV로 제공한 전형적인 치료적 용량은 치명적 시험감염으로부터의 보호를 알아보기 위해 2㎎/㎏ 내기 50㎎/㎏ 범위의 용량을 필요로 한다. 감염 후 이후의 시간에, 동일한 효과는 10㎎/㎏ 초과의 범위에서의 투약을 필요로 한다. 북미에서 평균 성인 체중은 대략 80.7㎏이며, 10㎎/㎏로 제공된다면 807mgs의 항체를 필요로 할 것이다. 크루셀 홀랜드(Crucell Holland) BV에 의한 인플루엔자 단클론성 항체 CR6261 및 CR8020의 현재의 두 가지의 1상 연구를 1㎎/㎏으로부터 50㎎/㎏까지 단일 용량을 상승시키면서 안전성 및 내약성을 평가한다(각각 시험 NCT01406418 및 NCT01756950; clinical trials.gov). 마우스에서, 마우스를 죽음으로부터 보호하기 위해 이들 항체 15㎎/㎏이 필요하였다(Friesen, RHE et al (2010) PLoS ONE 5(2):el906); Ekiert DC et al (2011) Science 333 :843-850). 이와 같이, 환자 당 항체의 양(그램)에서 또는 근처에서의 인간 체중(약 70 ㎏)을 기준으로 현재 적용가능한 접근을 이용하는 것이 필요할 것이다. 이는 필요에 따라, 다중 인플루엔자 아형에서 관련된 임의의 요법으로 하나 이상의 항체에 대해 조제되어 순환 중인 인플루엔자의 3가지 상이한 유형(인플루엔자 A H3, 인플루엔자 A H1 및 인플루엔자 B)을 치료하고, 따라서 각각의 항체를 약 1그램이라고 가정하면, 총 약 3그램의 항체의 필요로 할 수 있다. 이 다량의 항체는 비용이 터무니 없으며, 인플루엔자에 대한 치료 항체의 개발에서 다수의 장애물이 존재한다.
본 발명자들은 10배 초과만큼 상당히 항체의 양을 감소시키는 한편, 효능을 현저히 유지하고 심지어 개선시켰음을 확인하였다. 본 발명자들은 항체의 비강내 전달이 IV 또는 IP 경로에 비해 효능에서 현저하고 상당한 개선을 제공한다는 것을 발견하였다. 더 나아가, 이 비강내 효능 현상은 이 경로에 의해 전달될 때 비-중화 항체가 손상된 효능을 나타내기 때문에 중화 항체에 특이적이다.
본 발명자들의 연구는 중화 항체의 비강내(IN) 전달은 허용되고 공지된 인플루엔자 마우스 모델을 이용하여 복강내(IP) 또는 정맥내(IV) 경로의 전달에 비해 10배 초과만큼 치료 효능을 극적으로 증가시킬 수 있다. IV 또는 IP 경로에 의하는 대신 IN으로 제공할 때 동일 용량의 1/10 미만을 이용하여 비슷한 효능을 달성할 수 있다. 인플루엔자를 치료하기 위한 견재의 치료 설계는 표준으로서 정맥내 전달을 이용한다(ClinicalTrials.gov Identifier: NCT01390025, NCT01756950, NCT01406418). 항체의 중화 특징을 활용하는 능력은 알려져 있지 않기 때문에 해당 분야에서 이 전달 접근은 표준이다. 항체 치료에 대한 항체의 방대한 다수의 연구는 IV 또는 IP 전달을 이용하며, 호흡 병원균에 대한 중화 항체의 IN 전달이 IV 또는 IP 전달에 비해 효능을 개선시킨다는 것을 인식하지 못한다. 대조적으로, 해당 분야는 HA에 대한 비-중화 항체가 중화 항체와 유사하게 효과적이기 때문에 전신으로 전달되는 항체가 필수적이지 않을 수도 있다는 것을 인식하지 못한다. 이와 관련하여, 더 광범위 반응성일 수 있는 항체는 항체의 중화 능력보다 더 이상적으로 적절할 것이다.
IN 전달의 이전의 보고는 다클론성 혈청 감마 글로불린 IVIG 또는 IgA 부류의 항체를 평가하였다(IgA 항체는 본래 폐에 대해 가장 흔하다)(Akerfeldt S et al (1973) Biochem Pharmacol 22:2911-2917; Ramisse F et al (1998) Clin Exp Immmunol 111 :583-587; Ye J et al (2010) Clin Vaccine Immunol 17(9): 1363). 하나의 그룹은 IN 경로에 의해 항체(C179)의 복수액 제제를 시험하였고, 보호적 IN 전달(사전-시험감염)은 IP와 유사하다는 것을 설명하였다(Sakabe S et al (2010) Antiviral Res 88(3):249-255). C179는 2009년 범유행 H1N1 바이러스에 대해 낮은 중화 활성을 나타내지만, 마우스를 감염으로부터 보호할 수 있었다.
이와 대조적으로, 본 발명자들은 증가된 효능이 단순히 교차-반응성 항-인플루엔자 항체, 예컨대 교차-반응성 항-HA 항체에 대해 일어나지 않으며, 사실 IN으로 주어질 때 중화되지 않는 항체는 인플루엔자에 대해 효능을 나타내지 않는다는 것을 발견하였다. 선행기술 및 더 조기의 연구는 이 효과가 항체의 바이러스 에피토프 또는 단백질 표적과 관계없이 시험관내 중화 활성을 나타내는 항체에 대해 더 광범위하게 적용될 수 있다는 것을 인식하지 못하였다. 더 나아가, 항체는 중화할 수 있는 바이러스주 특이적 항체가 IN으로 제공될 때 증가된 효능을 나타낼 것이기 때문에, HA에 대해 교차-반응성이 될 필요가 없다. 본 발명자들은 중화 항체(단순히 교차-반응성 항-HA 항체는 아님)가 투여 경로에 따라 유사한 효능을 달성하는데 필요한 항체의 양을 상당히 감소시키기 위해 필수적이다른 것을 발견하였다. 사실, 본 발명자들은 중화가 아닌 교차-반응성 항-HA 항체를 이용할 때 정반대가 일어난다는 것을 발견하였다. 이들 교차-반응성 비-중화 항-HA 항체의 치료적 용도는 IP 또는 IV 전달 경로를 이용하는 이들 항체에 비교할 때 유사한 효능을 나타냄에도 불구하고, 비강내로 마우스를 처리할 때의 치료 효능의 현저한 감소를 초래한다.
본 발명자들은 비강내 전달이 항체의 중화 능력을 이용할 수 있는 기도 내 IgG 항체 수준을 달성하는 반면, 항체의 IV 또는 IP 전달이 Fc 의존적이라는 사실에 이 현상 뒤의 메커니즘이 존재한다는 결론을 내린다. 도 12에 예시를 나타낸다. 기도에서, 저해 메커니즘은 항체의 중화 특징에 의존하며, Fc 의존적 효과는 심하게 제한된다. IP 또는 IV에 의해 IgG 항체를 제공할 때, 기도 내 이 공간에 도달하는 항체의 양은 너무 적어도 항체의 중화 효과를 이용할 수 없다. 예를 들어, 중화 항체를 IP 또는 IV로 투여할 때, 주로 관찰되는 치료 효과는 항체 효과기 기능으로부터 나온다. 본 발명자들은 IP 또는 IV(IN에 의하지 않음)으로 주어질 때의 중화 또는 비-중화 항체의 비슷한 효능 수준을 발견하였다. 이 효과가 중화에 의존한다는 것을 추가로 설명하기 위해, M2 단백질에 대한 항체는 시험관내 중화를 나타내지 않으며, Fc 매개 효과만을 나타낼 수 있다. M2 이온 채널로 보내지는 항체(HA보다 더 유전자 보존된 분자)를 이용한 이전의 작업은 전임상 모델에서 가능성을 나타내었고, I상 연구를 완료하였다(테라클론사(Theraclone)제의 TN-032; NCT01390025, NCT01719874; Grandea AG et al (2010) Proc Natl Acad Sci USA 107(28): 12658-12663). M2 단백질에 대한 항체는 바이러스를 중화시킬 수 없지만, 효과기 기능을 통해 매개된 잘 기록된 치료 효능을 가질 수 있다(Wang, R. et al. (2008) Antiviral research 80: 168-177; Grandea, A. G, 3rd et al. (2010) Proc Natl Acad Sci USA 107(28): 12658-12663). 본 발명자들은 IP 또는 IV로 주어질 때 중화 항체와 비-중화 항체가 둘 다 주로 M2 표적화된 항체와 유사한 효과기 기능을 통해 기능한다는 것을 믿는다. 본 발명자들은 M2 단백질이 HA보다 상당히 덜 풍부하며, 또한 표면으로부터 돌출되지 않는다는 것이 알려진 것을 주목한다. HA에 대한 항체는 추가의 개선된 효능에 대한 가능성을 제공하는 바이러스를 중화시킬 수 있다. 이와 같이, 전형적으로 HA에 대한 항체는 항-M2 항체보다 더 치료적으로 유효하다. 그렇더라도, 중화제가 아니며 여전히 HA를 표적화하는 항체는 IP로 제공될 때 중화 항체와 유사한 수준의 효능을 나타낼 수 있는데, 이는 이 전달 경로가 IN으로 제공될 때 이용할 수 있는 강력한 효과를 활용하지 못한다는 것을 시사한다. 더 나아가, IN을 통하지만 IP를 통하지 않는 중화 Fab의 전달은 치료 효능을 초래한다. IN으로 제공한 비-중화 Fab는 치료 효능을 나타내지 않는다. 동시에, IN으로 제공한 중화 항체만이 이런 증가된 효능을 나타낸다. 이런 관찰을 연장시키면, 이 현상은 다른 단백질을 표적화하는 중화 항체(예를 들어, 뉴라미니다제)에 대해 그리고 다른 호흡 병원체에 대한 중화 항체(예를 들어, RSV에 대한 팔리비주맙)에 대해 일어날 것이다. IN과 IP/IV 경로 둘 다에 의한 항체의 전달은 그 자체에 대해 상이한 방법으로 효과적일 수 있기 때문에, 본 발명자들은 조합으로 경로 둘 다의 사용이 중화 항체의 최대 치료 가능성을 이용할 것이라는 것을 믿는다. 이 접근은 IN 경로를 통해 증가된 중화 활성 및 IP/IV 경로에 의해 증가된 Fc 의존적 활성을 이용함으로써 최대 효능을 허용할 것이다.
재료 및 방법
다음은 본원에서 제공되는 실시예에 대한 재료 및 방법을 제공한다.
항체: Mabs 6P15, IP19 및 1K17를 이하에 기재하는 바와 같은 파지 디스플레이를 이용하여 분리시켰는데, 이는 광범위 반응성 항-H3 항체이며, 마이크로중화 분석, 플라크 감소 분석, 또는 HI에 의해 바이러스를 중화시키지 않는다. Mab CR8020 및 CR6261은 각각 그룹 2 및 그룹 1 바이러스에 대해 잘 특성규명된 광범위 반응성 항체이다(Throsby M et al (2008) PL0S ONE 3 :e3942; Eckert DC et al (2009) Science 324:246-251; Friesen RHE et al (2010) PLoS ONE 5(2):el906; US Patent 8, 192,927; Eckert DC et al (2011) Science 333 :843-850). 항체 CR9114는 HA 스템에서 보존된 에피토프에 결합하며, IV로 투여될 때 인플루엔자 A 및 B 바이러스에 의한 치명적 시험감염에 대해 보호한다(Dreyfus C et al (2012) Science Express 9 August 2012 10.1126/science.1222908). 이들 중화 항체는 가변 영역을 합성함으로써 본 발명자들의 손으로 클로닝시키고 나서, 마우스 IgG2a 발현 벡터 내로 서브클로닝시켰다. CR8020의 가변 영역을 공개된 중쇄 GI: 339779688 및 경쇄 GI: 339832448를 이용하여 클로닝시켰다. CR6261의 가변 영역을 공개된 중쇄 GI: 313742594 및 경쇄 GI: 313742595를 이용하여 클로닝시켰다. CR9114의 가변 영역을 젠뱅크(Genbank) 서열 중쇄 등록번호 JX213639 및 경쇄 등록번호 JX213640을 이용하여 클로닝시켰다. 이 연구에서 이용한 모든 Mab를 마우스 IgG2a에 융합된 인간 가변 영역을 포함하는 IgG 발현 벡터 내로 클로닝시킨다. 마우스 항체 CR6261, CR8020 및 CR9114에 대한 키메라 항체를 각각 본원에서 CA6261, CA8020 및 CA9114로서 언급한다. Mab 6F12 및 GG3은 그룹 1 및 항-H1 바이러스에 결합하고 중화시키는 마우스 혼성세포로부터 유래된다(Wang TT et al (2010) PLoS Pathog 6(2):el000796; Tan GS et al (2012) J Virol 86(11):6179-6188; 미국 출원 제20110027270호). Mab 5A7은 B 바이러스 HA 상에허 통상적인 에피토프에 결합하며, 바이러스를 중화시키고, IP로 제공할 때 치명적인 시험감염으로부터 마우스를 보호한다(Yasugi M et al (2013) PLoS Pathog 9(2): el003150, doi: 10.1371/journal.ppat. l003150). 인간 항체 Mab53(또한 TRL53으로 나타냄)은 미국 특허 제2012/0020971호 및 WO2011/160083호에 기재되어 있으며, 중화 그룹 1 및 2 H1, H9, H7 및 H5 아형에서 효과적이었다. 항체 Mab579(또한 TRL579로 나타냄)는 WO2013/086052호에 기재되어 있으며, 중화 H3 및 H7에서 효과적이다. 특히 CR6261, CR8020, CR9114, 5A7, Mab53 및 Mab579를 포함하여, 본원에서 위에서 언급하고 예시한 항체의 항체 중쇄 및 경쇄 가변 영역 서열 및 특히 중쇄 및 경쇄 CDR 도메인(CDR1, CDR2 및 CDR3) 서열을 포함하는 공개된 서열은 공지되어 있고, 공공연하게 이용가능하며, 위에서 언급하고 본원에 참고로 포함되는 참고문헌에 포함된다.
파지 디스플레이: 항체 단편은 인플루엔자 또는 수크로스 쿠션 정제된 인플루엔자 바이러스의 재조합 혈구응집소(HA)(Immune Technologies Corp, New York)에 대한 다회의 패닝(panning) 라운드에 의해 선택하였다. 요약하면, 항원을 PBS 중에서 희석시키고 나서, 밤새 4℃에서 MaxiSorp Nunc-Immuno 플레이트(Nunc) 상에서 인큐베이션시켰다. 플레이트를 PBS로 2회 세척하였다. 플레이트를 PBS 중에서 5% 우유와 함께 실온에서 2시간 동안 계속적으로 진탕시키면서 인큐베이션시켰다. 파지 라이브러리를 2.5% 소 태아 혈청 및 0.005% 트윈(tween)을 지니는 PBS 중의 2.5% 우유 중에서 차단시켰다. 차단시킨 파지를 대략 400rpm에서 진탕 플랫폼 상에서 실온에서 2시간 동안 차단 플레이트에 첨가하였다. 플레이트를 PBST로 세척하고 나서, 결합된 파지를 DTT 용리 완ㄴ충제로 용리시켰다. 용리된 파지를 37℃에서 45분 동안 TGI 세포와 함께 인큐베이션시켰다. 세포를 LB, 클로람페니콜(Cam) 및 글루코스(Glc)를 포함하는 15cm 배양 플레이트 상에 플레이팅시키고 나서 밤새 30℃에서 인큐베이션시켰다. 플레이트로부터 콜로니를 긁어내고, 후속 패닝 라운드 동안 폴리에틸렌 글라이콜을 이용하여 침전시켰다. 3 또는 4회의 패닝 라운드를 동일한 바이러스주로부터의 HA 항원을 이용하여 또는 상이한 바이러스주의 HA 상에서 수행하였다. 최종 패닝 라운드를 384 웰 플레이트 내로 Q-pix 콜로니 채집을 위해 더 큰 Q 트레이 상에 플레이팅시켰다.
Fab 확인: Fab 암호화 파지 용해물을 재조합 HA에 대한 ELISA에 의해 선별하였다. 2XYT/Cam/Glc 배지를 포함하는 384 웰 플레이트 내로 채집한 단일 콜로니를 밤새 30℃에서 성장시켰다. 384 웰 플레이트 내 TG1 세포를 Qpix를 이용하여 저 글루코스와 함께 2XYT/Cam을 포함하는 384 웰 발현 플레이트 내로 복제하였다. 플레이트를 30℃ 및 400rpm에서 2 내지 4시간 동안 성장시켰다. 0.5mM IPTG를 이용하여 Fab 발현을 유도하고 나서 22℃ 및 400rpm에서 밤새 성장시켰다. Fab-포함 세포를 22℃ 및 400rpm에서 1시간 동안 벤조나제를 포함하는 BEL 완충제를 이용하여 용해시켰다. Fab-포함 용해물을 400rmp 및 22℃에서 30분 동안 12.5% MPBST를 이용하여 차단시켰다. 용해물을 HA-코팅 ELISA 플레이트에 실온에서 1시간 동안 첨가하였다. 플레이트를 PBST를 이용하여 5회 세척하고, 이어서, 실온에서 1시간 동안 알칼리 포스파타제에 컨쥬게이션시킨 항-Fab IgG와 함께 인큐베이션시켰다. 플레이트를 TBST를 이용하여 5회 세척하고 나서, 오토포스(AutoPhos)(뉴저지주에 소재한 로슈(Roche))를 이용하여 연구하였다. 인피니트 프로(Infinite Pro) F200을 이용하여 플레이트를 판독하였다. 양성 파지 분해물을 시퀀싱하고 나서, 독특한 Fab를 추가 특성규명을 위해 c-myc 및 his 태그를 포함하는 Fab 발현 작제물로 서브클로닝시켰다.
Fab 발현: Fab 발현 플라스미드를 TGI F-세포 내로 전기천공시키고 나서, LB/Cam 한천 플레이트 상에 플레이팅하였다. 플레이트를 37℃에서 밤새 인큐베이션시켰다. 5㎖의 2XYT/Cam/Glc를 단일 콜로니와 함께 인큐베이션시키고 나서, 밤새 30℃ 및 350rpm에서 성장시켰다. 500㎖의 2XYT/Cam/저 Glc를 2㎖의 밤새 배양물로 접종시키고 나서, 0.5의 OD600㎚가 도달될 때까지, 30℃ 및 180rpm에서 진탕시켰다. 0.75mM의 최종 농도로 IPTG를 첨가함으로써 Fab 발현을 유도하였다. 배양물을 30℃ 및 160rpm에서 밤새 진탕시켰다. 배양물을 5,000g 및 4℃에서 30분 동안 원심분리시켰다. 박테리아 펠렛을 -80℃에서 적어도 2시간 동안 냉동시켰다. 세포를 용해시키고 나서, 0.22um 필터 상에서 여과시키고, IMAC 정제 및 크기 배제 단계를 실시하였다.
항체의 클로닝 및 발현: Fab 암호화 파지를 시퀀싱시키고 나서, 각각 중쇄 및 경쇄에 대한 IgG 발현 플라스미드로 서브클로닝시켰다. IgG를 진탕 플라스크 내 인비트로젠(Invitrogen) 293F 또는 인비트로젠 293Expi 세포 내에서 생성하였다. 세포를 중쇄 및 경쇄에 대한 발현 플라스미드로 형질감염시켰다. 배양 상청액을 형질감염 후 6일에 채취하고 나서, 단백질 A 친화도 크로마토그래피 및 완충제 교환 단계를 이용하여 정제하였다.
마우스에서의 치료 효능 연구: 6 내지 7주령의 암컷 BALB/c 마우스를 모든 실험에서 사용하였다. 모든 마우스를 실험 시작의 적어도 3일 전 기간 동안 순응시키고 유지시켰다. 마우스를 바이러스 시험감염일에, 이어서 2주 동안 매일 체중을 쟀다. 임상 분류 시스템을 임상 종점을 위한 기준으로서 사용하였고, 연구로부터 제거하였다. 임상증상을 다음과 같이 스코어링하였다: 구부린 자세=3, 털세움= 3, 섭식 또는 음용 없음 =2, 30% 초과의 체중감소 =10, 신경학적 증상=10. 마우스를 연구로부터 제거하고 나서, 스코어가 16이상에 도달되었을 때 안락사시켰다. 승인된 동물실험윤리위원회(Institutional Animal Care and Use Committee) 프로토콜에 따라 동물 연구를 수행하였다. 마우스의 치료적 치료를 감염 후 지시된 일자에 수행하였다. 마우스 당 50㎕의 용적으로 바이러스, Mab 또는 Fab의 비강내 투여 전에 케타민/자일라진 혼합물로 마우스를 우선 마취시켰다. Mab 또는 Fab의 복막 투여를 100㎕ 용적으로 제공하였다. 평균 체중을 14일 연구 기간 동안 매일 결정하고 나서, 제0일에 평균 체중에 대해 나타낸다.
바이러스: 인플루엔자 바이러스의 바이러스주(A/캘리포니아/7/09, A/빅토리아/11을 포함)를 코티(Cottey), 로우(Rowe) 및 벤데르(Bender)(Current Protocols in Immunology, 2001)에 따라 마우스 적합화시켰다. 마우스 적합화의 3회 라운드를 수행하고 나서, 발육란(embryonated egg) 내에서 바이러스 증식의 1회 라운드를 수행하였다. 요약하면, 3마리의 6 내지 8주령 마우스를 마취시키고 나서, 20㎕의 바이러스로 비강내로 감염시켰다. 감염 후 3일에 마우스를 안락사시키고 나서, 폐를 제거하였다. 폐를 기계로 균질화시키고 나서, 정화하고 나서, 원심분리시켜 큰 파편 조각을 제거하였다. 나이브(naive) 마우스의 20㎕의 폐 세포분쇄액 내로 추가로 통과시켜 3회 라운드를 수행하였다.
참고문헌
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실시예 2
중화 항체는 효과적인 비강내 실험 연구이다
전신으로 전달된 항체의 치료 효능은 단지 중화 능력에 의존하지 않는데, IP 경로에 의해 제공한 중화 항체와 비-중화 항체가 둘 다 치명적 감염을 치료 및 예방함에 있어서 유사한 효과를 나타내기 때문이다. 중화 항체와 비-중화 항체는 감염 후 24시간에(24hpi) IP 10㎎/㎏으로 투여될 때 유사하게 효과적이었다(도 1). 도 1에 나타내는 결과는 HA에 대해 전신으로 전달되는 항체가 효과기 기능을 통해 강한 치료 효능을 발휘할 수 있다는 것을 입증하는데, 몇몇 비-중화 항체(6P15, IP19 및 1K17)가 중화 항체 CA8020과 유사한 정도로 치명적 시험감염으로부터 마우스를 보호하기 때문이다. 중화 항체와 비-중화 항체는 바이러스에 의한 감염 1시간 전에(-1hpi) IP로 주어질 때 유사하게 예방적으로 효과적이었다(도 2). 유사한 결과를 1hpi에 상이한 바이러스를 이용하여 볼 수 있었다(데이터 미제시). 이들 결과는 중화가 전신 전달 동안 치료 효능에 상당하게 기여하는지 여부의 의문을 갖게 한다. IV 또는 IP 경로에 의한 항체의 전달은 상당한 효능 차이를 초래하지 않았다(도 3 및 데이터 미제시).
대조적으로, 중화 항체의 IN 전달은 전신 전달에 비해 그들의 치료 효능이 상당히 향상되었다(도 4). 치료 효능에서의 이 상승은 중화 항체에 특이적인데, 비-중화 항체가 유사한 향상된 치료 효능을 나타내지 않기 때문이다. 도 4는 IN 전달에 의해 향상된 효능을 나타내는 Mab(CA8020)의 능력이 그의 중화 능력에 의존한다는 것을 나타낸다. H3 바이러스에 특이적인 중화 Mab는 IN 경로에 의해 증가된 효능을 나타내지만, 비-중화 Mab는 이러한 효능을 나타내지 않는다. 도 1에서 보이는 IP 전달과 달리, 중화 항체의 IN 전달은 비-중화 항체에 비해 상당한 치료적 이점을 제공한다. IN 요법의 이런 향상된 효능은 중화시키는 항체의 능력과 상관관계가 있는데, 6P15, 1K17 및 IP19와 같은 비-중화 항체가 개선된 치료 효능 IN을 나타내지 않기 때문이다. 대조적으로, 비- 중화 Mab는 IP에 비해 IN에 의해 투여할 때 현저하게 감소된 효능을 나타낸다. 도 4에서 알 수 있는 바와 같이, IP로 10㎎/㎏에서 제공한 비-중화 항체(예시적인 항체 6P15)는 중화 항체에 대해 유사하게 24hpi에 유사한 용량에서 10xLD50으로부터 마우스를 보호할 수 있다. 그러나, 비-중화 항체는 IN 경로에 의해 투여될 때 증가된 치료 효능을 입증하지 못한다. 비-중화 항체 6P15의 대표적인 데이터를 예로서 나타낸다. 항체 1K17 및 IP19를 포함하는 다른 비-중화 항체에 대해 유사한 결과를 알 수 있다(데이터 미제시).
IN에 의해 향상된 효능은 또한 H1 바이러스 CA6261에 대한 항체(HA2 서브유닛의 짧은 나선에 결합하는 IgG2a 항체)(도 7)를 광범위하게 인식함으로써 입증되고, 항체 6F12(HA의 부착병(stalk) 영역을 표적화하는 IgG2b 항체)(도 14) 및 GG3 항체(도 15)에 의해 수많은 별개의 항체에 대한 효과를 입증하며 IN 효능이 다수의 인플루엔자 바이러스 표적 및 아형에 대한 중화 항체에 걸쳐 일치된다는 것을 확립한다. IN효과를 추가로 확립하여, 본 발명자들은 다른 교차 보호적 항체 CR9114를 평가하였고, 그것이 고도로 효과적인 IN이 된다는 것을 나타내었다(도 16). CR9114는 HA 스템에서 보존된 에피토프에 결합하며, IV로 투여될 때 인플루엔자 A 및 B 바이러스에 의한 치명적 시험감염에 대해 보호한다(Dreyfus C et al (2012) Science Express 9 August 2012 10.1126/science.1222908).
본 발명자들은 비강내 투여에 관한 한 별개의 항체 아이소타입을 갖는 항체에 대해 상당한 차이를 관찰하지 못하였다. IP 투약에서 아이소타입 차이를 관찰하였는데, 이는 효과기 기능이 적절할 수 있다는 것을 시사한다. 또한, 단일 중화 항체는 그들의 표적 H1 또는 H3 바이러스의 다중 바이러스주에 대해 감염을 차단하는데 효과적인데, 이는 효능이 바이러스주 특이적이 아니거나 제한된다는 것을 나탄내다. 본 발명자들은 중화 항체 CR6261이 2개의 별도의 H1 바이러스, 구체적으로는 PR8(도 5, 도 7 및 도 9) 및 마우스 적합화된 Cal/09(도 17)에 대해 IP보다는 IN에 의해 10배 초과로 더 강력하다는 것을 입증하였다. 따라서, IN 투여는 인플루엔자 바이러스에 대한 중화 항체에 대해 실행가능하며 사실 더 효과적인 대안을 제안한다.
실시예 3
중화 Fab는 비강내에 의해 효과적이다
본 발명자들은 다음에 Fc의 제거가 IP 또는 IN으로 투여된 중화 및 비-중화 Fab의 치료 효능을 없애는지의 여부를 시험하였다. 도 5에서 알 수 있는 바와 같이, IP 투여한 Fab(CA6261 항체 Fab)는 10㎎/㎏ 이하에서 H1 바이러스에 대한 치료 효능을 제공하지 않는다. Fab IP로 처리한 마우스는 모두 PBS 처리 마우스와 유사한 감염에 굴복하였다. 대조적으로, 10 ㎎/㎏ 및 1㎎/㎏의 용량에서 중화 Fab로 IN에 의해 처리한 마우스는 치명적 감염에 대해 생존할 수 있었다(도 5). IN으로 투여한 모든 용량(심지어 0.1㎎/㎏까지)은 임의의 IP 투여 용량보다 더 큰 효능을 나타내었다. 동일한 실험에서 CA6261 Fab IN 대 IP 또는 IV를 비교하여 비슷한 결과를 관찰하였고, 여기서 Fab CA6261는 IP 또는 IV로 투여할 때 보호적이거나 또는 효능있는 것으로 나타나지 않았지만, 동일 용량(5㎎/㎏)을 IN으로 투여할 때(데이터 미제시) 상당한 효능을 나타내었다(동물은 95% 이상의 체중을 보유함). 이들 데이터는 Fab가 중화 항체에 대해 비강내로 바이러스 감염을 차단하거나 또는 치료하는데 효과적이라는 것을 입증한다. 데이터는 추가로 Fab가 비효과적이었기 때문에 전신 Mab 전달이 치료 효능을 위한 Fc 효과기 기능을 필요로 한다는 것을 나타낸다.
비-중화 항체로부터의 Fab는 IN 또는 IP 경로 중 하나에 의해 투여할 때 치료 효능을 보유하지 않는다. 도 6에서, H3 바이러스로 감염시킨 마우스를 예시적인 항체 CA8020 및 6P15의 정제된 Fab의 IN 전달로 처리한다. 중화 Fab는 치료 효능을 나타낼 수 있지만, 비-중화 Fab는 치명적 시험감염으로부터 마우스를 보호할 수 없다. 이들 데이터는 비-중화 항체로부터의 Fab가 IN으로 투여될 때 치료효능을 나타내지 않는다는 것을 입증한다.
실시예 4
IN 전달은 IP보다 10 내지 100배 더 강하다
본 발명자들은 현저하게는 중화 항체의 비강내(IN) 전달이 복강내(IP) 전달보다 10 내지 100배 더 강하다는 것을 발견하였다. 마우스를 PR8 바이러스(H1 바이러스)의 10xLD50로 감염시키고, 24hpi에 항체로 처리하였다(도 7). 중화 항체 CA6261를 10배 단계희석시키고 나서, IN 또는 IP 경로 중 하나에 의해 투여하였다(도 7A). IN 경로에 의해 처리한 마우스는 체중 손실에 의해 나타나는 바와 같은 더 적은 질환 중증도를 나타내었고, 모든 희석에서 치명적 감염으로부터 100% 보호되었다. 비교에서, 가장 고용량(10㎎/㎏)으로 IP에 의해 처리한 마우스만이 치명적 감염으로부터 일시적 체중손실 및 보호를 나타내었다. 모든 더 낮은 희석은 IP로 투여될 때 마우스를 보호하지 못하였다. 대조적으로, 0.1㎎/㎏의 용량에 의한 IN 치료는 마우스의 일시적 체중손실 및 생존을 초래하였다. 10㎎/㎏ 및 1㎎/㎏의 용량으로 IN 전달에 의해 처리한 마우스를 감염 후에 항상 검출가능한 체중손실로부터 보호하였다. 모든 용량에서 IP 경로로 제공한 항체는 일부 체중손실 정도를 나타내었고, 가장 고용량의 10㎎/㎏으로 처리한 마우스만이 감염에서 생존하였다.
본 발명자들은 중화 항체의 비강내 전달이 H3 바이러스에 대해 향상된 치료 효능을 초래한다는 것을 확인하였다. 마우스를 H3 바이러스로 감염시키고 나서, 24hpi로 처리하였다(도 8). 중화 항체 CA8020을 10배 단계 희석시키고 나서, IN 또는 IP에 의해 투여하였다. H1 바이러스에 의해 본 발명자들의 연구에서 관찰한 바와 같이, IN 경로에 의해 투여한 항체는 H3 바이러스에 대한 모든 희석에서 100% 생존을 제공하였고, IP 경로에 의해 투여한 항체보다 더 적은 체중 손실을 나타내었다.
이들 데이터는 함께 중화가 IN으로 전달될 때 향상된 치료 효능에 필수적이라는 것을 입증한다. 더 나아가, 전신으로 전달된 항체의 치료 효능은 중화에 의존하지 않는데, 유사한 효능수준이 중화 항체와 비중화 항체 둘 다에 대해 관찰될 수 있기 때문이다. 이 관찰을 뒷받침하여, 중화 Fab의 치료 효능은 IP로 투여될 때 없어지지만, 중화 Fab는 IN으로 전달될 때 효능을 나타낸다. IN으로 투여한 중화 Fab는 그들의 전체 Mab 상대의 IN 전달로서 IP 투여에 비해 유사한 개선된 효능을 나타낸다.
실시예 5
감염 후에 유지되는 비강내 효능
IN 전달된 중화 항체의 향상된 효능은 감염 후 시점에 유지된다. 도 8에서, 마우스를 IN 또는 IP에 의해 48hpi에 처리한다. 중화 항체의 IN 전달은 또한 IP 전달보다 더 치료적으로 유효하다. 치명적 시험감염으로부터의 완전한 보호는 IN 경로에 의해 투여할 때 1㎎/㎏에 달성된 반면, IP 전달은 10㎎/㎏의 용량에서 치명적 시험감염에 대해 완전한 보호를 제공한다. IN 투약은 72hpi에 상당히 감소된 효능을 나타내었지만, 72hpi에 동일한 양의 IP 투약에 비해 상당히 개선된 채로 남아있었다. IN으로 72hpi에 투여할 때 CA6261의 효능을 입증하는 생존 차트 및 동일한 용량에서 IP에 비해 매우 상당히 향상된 생존을 도 18에 제공한다.
실시예 6
저용량에서 효과적인 투여에서
중화 항체의 비강내 전달은 감염 후 투여할 때 매우 낮은 용량에서의 치명적 시험감염에 대해 완전한 보호를 제공할 수 있다. 도 10에서 입증한 바와 같이, 8hpi에 제공한 0.005㎎/㎏만큼 낮은 CA8020 항체의 IN 용량은 바이러스의 10XLD50에 대해 100% 생존을 초래한다. 이들 용량은 감염 후 IV 또는 IP치료에 대해 표준 용량보다 1000배 더 낮다. 이들 결과는 IN으로 제공할 때 놀랍게도 더 낮은 용량이 치료 효능을 달성할 수 있다는 것을 나타낸다.
반복된 IN 투약의 효능을 평가하였다. 8hpi, 32hpi 및 또한 56hpi에 CA8020 Mab의 반복된 IN 투약은 용량당 0.005㎎/㎏에서 낮은 반복 투약을 이용하여 그리고 또한 0.001㎎/㎏의 반복된 투약에서 효능을 제공하였다(도 11). 효능은 8hpi에 단일 투약에 비해 다소 개선되었다. 추가적인 연구는 8hpi에 제공한 항체 CA6261을 이용하는 보호가 0.045 ㎎/㎏에서 보호적이며 더 낮은 용량이 평가된다는 것을 나타낸다(데이터 미제시).
이들 결과는 함께 중화가 증가된 IN 효능에 필수적이라는 것을 나타내는데, 비중화제가 향상된 효능을 나타내지 않기 때문이다. 이와 같이, IN 경로를 통해 투여될 때 중화 항체의 Fab는 향상된 효능을 보유하는 반면, 비-중화 항체로부터의 Fab는 주목할 만한 효능을 나타내지 않는다. 대조적으로, 중화 Fab도 비중화 Fab도 IP에 의해 투여될 때 효능을 나타내지 않았는데, 이는 중화 Mab와 비-중화 Mab가 둘 다 IP로 투여될 때 Fc 영역 효과기 기능에 의존한다는 것을 시사한다. 도 12에 나타낸 감염 모델은 IN 투여에 의해 향상된 효능이 항체 중화 의존적인 반면, 전신 전달이 효과기 기능에 분명히 의존한다는 것을 도시한다.
실시예 7
조합 IN/IP 프로토콜은 향상된 효능을 제공한다
도 12에 도시한 바와 같은 모델에 기반하여, 본 발명자들은 IN 및 IP 전달된 항체가 별도의 불필요하지 않은 기능을 나타낸다는 가설을 조사하였다. 참이라면, 조합된 IN과 IP 경로에 의해 투여한 항체는 투여 단독의 단일 경로에 비해 증가된 효능을 나타낼 것있다. 도 13a 내지 도 13d에서, 본 발명자들은 다양한 조합된 투약 요법 하에서 조합된 IN과 IP 전달이 IP 전달 단독보다 더 효과적이라는 것을 나타낸다(이 연구에서 총 항체 용량은 5㎎/㎏ 또는 2㎎/㎏였다). IP 또는 IN 그룹에 비해 IN과 IP 투여의 조합을 이용하여 제공된 개선된 효능은 IN과 IP에 의해 투여되는 Mabdml 작용 및 필요의 메커니즘이 별개이고 불필요하지 않을 수 있다는 것을 입증한다. 향상된 항바이러스 효능은 IN과 IP 투여의 조합 요법을 이용하며, IN에 대해 중화 항체를 이용하고, 조합된 IP 투여 방식에 대해 중화 또는 비-중화 항체를 이용하여 제공된다. 추가 연구는 동일한 중화 항체 또는 별도의 비-중화 항체(예시적인 6P15)의 IP 투여와 조합한 중화 항체(예시적인 CA8020 항체)의 IN 투여가 단지 0.6㎎/㎏이 투여된 총 항체에 대해 저용량의 0.1㎎/㎏ IN 및 0.5㎎/㎏ IP를 이용할 때 조차 유사하게 효능이 있다는 것을 입증한다(도 19). IN 투여를 실행하는 것은 항체 IP의 상대적으로 낮은 용량과 조합할 때조차 효능에 필요한 전체 항체를 감소시킬 수 있다. IN 투여한 항체에 대한 작용 메커니즘은 주로 바이러스의 퍼짐을 제한할 수 있는 반면, IP 투여한 항체는 주로 효과기 기능을 통해 바이러스를 생성하는 감염 세포의 수를 감소시킬 수 있다.
작용 메커니즘을 IN 또는 IP에 의해 투여된 중화 항체의 아이소타입 전환에 의해 탐구하였다. 마우스 IgG1은 마우스 IgG2a에 비해 감소된 효과기 기능을 가진다. IN 전달된 항체는 CA6261 및 CA8020에 대해 알 수 있는 것과 같은 아이소타입과 독립적인 유사한 효능 수준을 나타내었다. IP 투여한 항체는 아이소타입에 pEk라서 치료 효능의 현저한 차이를 나타내었다. IgG2a 아이소타입의 항체는 CA6261과 CA8020 둘 다에 대한 마우스 IgGl 항체보다 상당히 더 효과적이었다(데이터 미제시). 이는 상승적으로 전달된 항체의 주된 작용 방식이 효과기 기능을 통한다는 것을 시사한다. 이와 같이, 다양한 수단을 통해 효과기 기능을 향상시키기 위한 공지된 방법(예를 들어, Fc 변형 또는 a-푸코실화로 제한되지 않음)은 전신으로 전달된 항체에서 효능을 개선시켰고, 비강내 또는 흡입 방법에 의해 전달되는 항체에 포함될 수 있다. 비강내 또는 흡입 경로에 의해 전달되는 항체는 완전히 활성화 될 수 있고/있거나, 폐포 대식세포에 맞물리고/맞물리거나, 효과기 기능의 맞물림이 개선된 효능을 제공할 수 있는 경우 기저 외측연으로 제한된 퍼짐을 가진다.
실시예 8
인플루엔자 B 바이러스에 대한 항체 효능
항체 CR9114는 상기 나타내고 표 1에서 언급하며, 앞서 보고한 바와 같은 인플루엔자 A형 또는 B형 바이러스에 결합하며, 이에 대해 효과적이다(Dreyfus C et al (2012) Science 337(6100): 1343-1348). 키메라 항체 CA9114(마우스 IgG2a에 융합된 인간 가변 영역을 갖는 것으로 상기 기재)를 인플루엔자 B/말레이시아 바이러스주에 대한 효능에 대한 마우스 모델에서 시험하였다. 10 ㎎/㎏, 1㎎/㎏ 및 0.1㎎/㎏에서 IN 및 IP 투약을 B/말레이시아(B/Mal로 나타냄)의 10XLD50에 대한 효능에 대해 24 hpi에 시험하였다. 결과를 도 20에 제공한다. IN 투여는 시험한 모든 용량에서 IP보다 더 효과적이었다. 인플루엔자 B 바이러스에 의한 감염 후 1일에 비강내로 전달한 CA9114 항체는 동물을 치료하는데 효과적이며, 인플루엔자 바이러스에 의한 체중 손실을 제거한다.
상기 기재한 바와 같은 파지 디스플레이를 이용하여 분리시킨 수많은 B 항체 및 또한 항체 CA9114를 포함하는 시험관내 인플루엔자 B형 바이러스에 결합하고 중화시키는 능력을 입증한 일련의 단클론성 항체를 B/플로리다 및 B/말레이시아 바이러스에 대해 비강내로 시험하였다. 각각의 항체를 IN에 의해 1㎎/㎏ 24 hpi에 10xLD50 인플루엔자 B 바이러스로 투여하였다. 결과를 도 21 및 도 22에 도시하며, CA9114 항체에 비해 인플루엔자 B B/플로리다 및 B/말레이시아에 대한 다양한 단클론성 항체의 비강내 투여 효능을 나타낸다. 1㎎/㎏에서 8hpi에 투여한 B/Mal에 대해 CA9114 및 다양한 항체를 이용하여 유사한 연구를 수행하였다(도 23). 모든 시험 항체는 B 바이러스 유형 둘 다에 대해 효과적이었다. 이들 연구는 감염 후 8 또는 24시간을 포함하여 인플루엔자 B 바이러스에 대해 비강내로 투여되는 항-인플루엔자 항체의 효능을 확인하였다.
추가적인 인플루엔자 B 항체를 B/플로리다 또는 B/말레이시아 바이러스로 감염시킨 동물에서의 효능에 대해 시험하였다. 항체 5A7, CR8033 및 mAb809를 B 바이러스, B/말레이시아 바이러스 또는 B/플로리다 바이러스 중 하나의 10XLD50을 이용하여 1㎎/㎏으로 24hpi에 IN으로 투여에 의해 평가하였다(각각 도 37 및 도 38). 모든 IN 투여한 항-인플루엔자 B 항체는 10XLD50 용량에서 B 계통 바이러스에 의한, 100% 체중을 보유하는 항체-처리 감염 동물에 의한 감염에 대해 완전히 효능이 있었다.
실시예 9
조합 항체 연구
현재의 인플루엔자 백신은 인간 집단에서 순환 인플루엔자 바이러스주에 대한 면역성을 유도하는 항원을 포함한다. 4가 인플루엔자 백신은 인플루엔자 A 바이러스, 특히 아형 H1 바이러스 및 H3 바이러스, 및 또한 인플루엔자 B 바이러스 야마가타 및 빅토리아 계통을 아우른다. 인플루엔자 A 아형 및 또한 인플루엔자 B에 대해 비강내로 투여된 항체에 대해 상기 주어진 효능이 입증되었고, 다수의 항체는 조합에서 효능이 있었으며, 항체 조합에 의한 연구에 착수하였다. 이들 조합은 현재 사용 중인 확립된 3가 및 4가 백신을 모방하고 이들에 비교할 수 있는 조합물을 포함하였다. 따라서, 인플루엔자를 치료하고, 감염을 예방하거나 또는 전염을 예방하기 위한 노력에서, 조합 비강내 항체 조성물을 동물 모델에서 생체내에서 평가하였고, 인플루엔자 A 및 인플루엔자 B 바이러스에 대해 평가하였다.
두 인플루엔자 A 항체 및 인플루엔자 B 항체, 특히 항체 43J23(파지 디스플레이에 의해 분리된 항-인플루엔자 B 단클론성 항체), 항체 GG3(인플루엔자 A 항-H1 항체) 및 CA8020(인플루엔자 A 항-H3 항체)의 칵테일을 인플루엔자 A H1, H3 및 인플루엔자 B에 의한 감염에 대해 효능에 대한 조합에서 평가하였다. 3㎎/㎏ 총 항체, 1㎎/㎏의 각각의 항체 43J23, GG3 및 CA8020의 칵테일을 인플루엔자 바이러스에 의한 감염 후 24시간(24hpi)에 50㎕ 총 용적으로 비강내로 투여하였다. 도 24에서, 인플루엔자 B/플로리다(야마가타 계통) 바이러스에 의한 감염 후 칵테일을 이용하는 효능 연구의 결과를 나타낸다. B 바이러스 감염에 대한 칵테일의 효능은 1㎎/㎏에서 B 항체 43J23 단독의 효능과 비슷하였다. 체중 백분율에 의해 평가하는 바와 같이 1㎎/㎏에서 항체 CA9114의 IP 투여는 B 바이러스 감염으로부터 동물을 보호하지 않았다. 상기 실시예는 비강내로(IN) 1㎎/㎏에서 투여될 때 CA9114 항체가 B 바이러스에 대해 효능있다는 것을 입증한 것에 주목할 만하다. 도 25는 B/말레이시아 바이러스에 대한 항체 43J23, GG3 및 CA8020의 칵테일에 의해 유사한 연구를 도시한다. 동일한 칵테일은 인플루엔자 A 바이러스에 대해 유사하게 효능이 있으며, 칵테일은 H1 바이러스에 의한 감염 후 동물에서 체중을 유지한다는 것을 확립한다(도 26). 이 연구에서 칵테일의 효능(도 26)은 1㎎/㎏에서 IN 단독으로 투여한 항-H1 항체 GG3의 효능과 유사하였다. 항체의 칵테일은 인플루엔자 A H3 아형 바이러스에 대해 유사하게 효과적이었으며(도 27), 또한 CA8020의 IP 투여가 동일한 용량에서 효과적이지 않은 조건 하에서 단일 항-H1 항체(CA8020) 단독에 의한 비강내 투약에 비해 칵테일에서 다시 효과적이었다. 도 28은 단일 실험에서 H1, H3, B(야마가타) 및 B(빅토리아)에 대해 효능을 나타내는 순환 인플루엔자 바이러스의 각각 4종의 아형에 대한 비강내 항체 칵테일(항-B 항체 43J23, 항-A H1 항체 GG3 및 항-인플루엔자 A H3 항체 CA8020)의 연구를 도시한다.
다른 비강내 칵테일을 항-인플루엔자 B와 항-인플루엔자 A 항체의 상이한 조합을 이용하는 비슷한 연구에서 평가하였다. 이 연구에서, CA8020 항-H3 항체를 항-H1 항체 CA6261과 항-B 항체 5A7의 조합에서 이용하였다. 5A7 항체는 야마가타와 빅토리아 계통에 속하는 1985년으로부터 2006년에 분리시킨 광범위 중화 인플루엔자 B 바이러스주로서 최근에 보고되었다(Yasugi M et al (2013) PLoS Pathog 9(2): el003150, doi: 10.1371/journal.ppat. l003150). 보고된 바와 같은 항체 중쇄 및 경쇄 가변 영역을 마우스 IgG2a에 융합된 가변영역을 포함하는 IgG 발현 벡터 내로 클로닝시켰다(상기에 그리고 실시예 1에 기재한 것과 유사함). 항체 5A7, CA6261 및 CA8020 각각의 1㎎/㎏을 인플루엔자 바이러스로 감염 후 24시간에 동물에게 비강내로 총 3㎎/㎏ 항체로 투여하였다. 이 칵테일을 H1 바이러스, H3 바이러스, B(야마가타) 및 B(빅토리아) 계통 바이러스에 대해 시험하였고, 시험한 임의의 및 모든 바이러스에 대해 효능이 있었다(도 29).
실시예 10
인플루엔자 H1 및 H3 바이러스에 대한 대안의 항체 효능
비강내 투여를 이용하는 기도에 대한 투여 효능을 추가적인 대안의 인플루엔자 항체로 평가하였다. 인간 단클론성 항체를 그룹 1과 그룹 2 인플루엔자 A 바이러스에 대해 중화시키고 효능을 갖는 인간 대상로부터 직접 분리시켰다. 인간 항체 Mab53(또한 TRL53으로 나타냄)은 미국 특허 제2012/0020971호 및 WO2011/160083호에 기재되어 있고, 중화 그룹 1 및 2 H1, H9, H7 및 H5 아형에서 효과적이었다. 항체 Mab579(또한 TRL579로 나타냄)는 WO2013/086052에 기재되어 있고, 중화 H3 및 H7에서 효과적이었다. Mab579 및 53 항체를 인플루엔자 A 바이러스 감염에 대한 치료 효능을 위한 마우스 모델에서 시험하였다. Mab579를 H3 인플루엔자에 대해 시험하고 나서, Mab53을 H1 인플루엔자에 대해 시험하였다. IN과 IP 투약을 비교하고, IN 투약은 1㎎/㎏이며 IP 투약은 10배 더 높은 10㎎/㎏이었다. 항체 Mab579를 H3 인플루엔자 바이러스 Vicl1의 10XLD50에 대한 치료 효능을 위해 감염 후 24시간(24hpi)에 투여하였다(도 30). 항체 Mab53을 H1 인플루엔자 바이러스 Cal09의 10XLD50에 대한 치료 효능을 위해 감염 후 24시간(24hpi)에 투여하였다(도 31). IN 투여는 IP 투여보다 더 효과적이었고, 심지어 IP 투여는 동일한 실험에서 용량이 10배 더 높았다.
실시예 11
비강내로 투여한 항체에 의한 예방 연구
감염 후 중화 항체의 비강내 투여의 현저한 연구를 제공하며, 바이러스에 의한 감염 전에 예방적으로 비강내 투여의 효능을 평가하는 연구에 착수하였다. 이들 연구는 개체가 인플루엔자 바이러스에 노출된 예에서 그리고 노출된 또는 위험 집단 내에서 전염을 예방 또는 감소시키기 위한 효과적인 접근으로서 또는 감염 또는 질병이 전반적인 더 큰 건강 위험이 되는 환자에서 임상적으로 비강내 투여의 적용가능성을 평가하고 입증하는 역할을 한다. 그룹 1(H1) 항체 CA6261을 마우스 동물 모델에서 인플루엔자 바이러스 감염에 대한 투여일 전에 평가하였다. CA6261 의 투여를 감염 시험감염의 3, 4, 5, 6 및 7일 전에 평가하고, 상이한 용량에서의 IN 및 IP 투약을 직접 비교하였다.
첫 번째 연구에서, 항체 CA6261을 IN 또는 IP로 투여하였고, 이어서, 마우스를 H1 PR8 바이러스의 3XLD50 용량으로 시험감염시켰다. 도 32는 바이러스에 의한 감염의 3 또는 4일 전에 예방적으로 IN 및 IP 투여의 연구를 도시한다. 항체 CA6261을 3XLD50 PR8에 의한 시험감염의 3 또는 4일 전에 IN 또는 IP로 투여하였다. CA6261 항체를 IN(0.1㎎/㎏) 또는 IP(0.1㎎/㎏ 및 1㎎/㎏)로 투여하였다. 감염에 대해 최대 4일 전(-4dpi)에 IN 투여(0.1㎎/㎏에서 평가)는 바이러스 시험감염으로부터 마우스를 보호하였다. 동일한 용량(0.1㎎/㎏)에서 감염에 대해 3 또는 4일 전에 IP 투여는 완전히 비효과적이었다. 감염 전 3 또는 4일에 IP 투여는 1㎎/㎏에서 효과적이었다. -3dpi 및 -4dpi에 IN(0.1㎎/㎏)과 IP(1㎎/㎏) 투여를 비교하면, 두 가지 예 모두에서, 10배 더 낮은 IN 용량은 IP보다 더 효과적이었다.
이어서, 예방적 효능을 바이러스 감염에 대한 5, 6 및 7일 전에 평가하였고, 결과를 도 33에서 도시한다. IN 투여에 비해 10배 더 높은 용량의 IP를 평가하였다. 항체 CA6261을 H1 인플루엔자 바이러스 PR8의 3XLD50로 시험감염 5, 6 또는 7일 전에 IP(1㎎/㎏에서) 또는 IN(0.1㎎/㎏에서) 투여하였다. 타미플루 투여(10㎎/㎏ 경구로, 5일 동안 1일 2회)를 또한 비교를 위해 평가하였다. -5dpi에 0.1㎎/㎏ IN 투여로 효능을 입증하였다. 바이러스 시험감염의 6 또는 7일 전에 0.1㎎/㎏ IN 투여에 의해 모든 마우스가 생존하지는 않았다. 10배 더 높은 IP 용량(10㎎/㎏)은 시험감염 5, 6 또는 7일 전에 효과적이었다. 시험감염에 대해 0.1㎎/㎏에서 5일 전에 항체 IN의 투여는 적어도 시험감염에 대해 7일 전에 10배 더 높은 1㎎/㎏의 IP 투여만큼 효과적이었다.
이어서, 1㎎/㎏으로 더 높은 IN 용량을 바이러스 시험감염에 대해 5, 6 및 7일 전에 평가하였다. 도 34는 3XLD50 바이러스 PR8에 의한 시험감염 5, 6 또는 7일 전에 1㎎/㎏으로 IP 또는 IN에 의해 투여한 항체 CA6261에 의한 IP 투여에 비해 IN의 연구를 도시한다. 1㎎/㎏ 항체의 IN 투여는 바이러스 시험감염의 최대 7일 전에 예방적으로 효과적이었으며, 각각의 예에서, IN은 IP로 투여한 동일한 양의 항체보다 더 효과적이었다. 사실, 임의의 시점에(시험감염 5, 6 또는 7일 전에) IN 투여는, IP가 바이러스 시험감염에 더 가깝게 투여된다고 하더라도, 임의의 IP 투여보다 더 효과적이었다. 모든 예에서, 항체는 타미플루보다 더 효과적이었다.
상기 연구는 IN 투여가 예방적 보호를 위해 IP 투여보다 더 우수하다는 사실을 입증한다. 0.1㎎/㎏ 항체의 IN 투여는 감염 전 5일(-5dpi)까지의 시험감염(3xLD50)에 대해 보호적이다. 임의의 3 내지 7일 전 바이러스 감염에서 IP로 투여한 동일한 용량 0.1㎎/㎏는 동물을 보호하지 못하였다(바이러스의 동일한 3xLD50 용량에 대해). 더 고용량의 IN으로 투여된 항체에서(1㎎/㎏을 평가함), IN 투여한 항체는 미리 적어도 7일까지 투여된다면, 시험감염에 대해 보호할 수 있다. 미리 7일 초과의 IN 투여는 평가하지 않았지만, 효능이 있을 것이다.
추가로, 시험감염 전 IN 투여에 의한 다회 투약은 잠재적으로 더 효능있는 것으로 예측된다(상기 실시예 및 도 11을 참조). 도 11에서 나타낸 바와 같이, 감염 후 반복적인 투약은 효능이 있으며, 비강내로 더 낮은 용량은 다회 용량 시간 간격(8시간, 32시간, 52시간)일 때 효과적이었다. 유사하게, 바이러스 감염 또는 노출 전에 반복된 투약은 효과적인 것으로 예측되며, 더 낮은 IN 예방 투약을 허용할 수 있다.
더 고용량의 바이러스 시험감염에서, 특히 H1 바이러스 PR8의 10xLD50에 의한 시험감염 며칠 전에 CA2621 항체를 투여하여 예방적 효능을 평가하였다. PR8 H1 아형 바이러스의 10xLD50에 의한 시험감염 3 및 4일 전에 IN 또는 IP 중 하나로 0.1㎎/㎏ CA6261 항체를 투여하였다(도 35). 바이러스 시험감염의 3 또는 4일 전에 0.1㎎/㎏ 항체의 IP 투여는 완전히 비효과적이었으며, IP로 처리한 동물은 처리가 없었던 동물과 유사하게 바이러스 감염에 굴복하였다. 대조적으로, 고역가 바이러스 시험감염에 대한 3 또는 4일 전에 비강내로 0.1㎎/㎏ 항체를 투여한 동물을 감염으로부터 보호하였다.
고역가 시험감염에 대한 항체 투여 5, 6 및 7일 전에 평가하였고, 항체는 IN 또는 IP에 의해 1㎎/㎏에서 투여하였다(도 36). 이 연구에서, 기도에 항체를 투여한 동물만이(비강내 투여를 통해) 바이러스 시험감염에서 완전히 생존하였다. 바이러스 시험감염에 대해 5, 6 또는 7일 전에 투여한 1㎎/㎏의 항체로 처리한 마우스는 완전히 보호되지 않았고, 마우스는 감염으로 죽었다. 타미플루는 보호에서 완전히 비효과적이었다. 감염시키지 않은 대조군 마우스뿐만 아니라 바이러스 감염에 대해 5 또는 6일 전에 비강내로 0.1㎎/㎏ 항체로 처리한 마우스는 거의 바이러스 시험감염에서 생존하였다.
따라서, 항-인플루엔자 항체의 비강내 투여는 항체 감염에 대한 효과적인 프로토콜 및 예방 방법이다. 바이러스 감염에 대해 적어도 최대 7일 전에 비강내로 투여한 인플루엔자 중화 항체는 바이러스 시험감염에 대해 보호적이었다. 미리 적어도 7일만큼 비강내 투여를 통한 보호는, 훨씬 더 높은 고역가 바이러스에 대해 바이러스에 대한 인간의 노출을 나타내도록 합리적으로 예상될 수 있다는 것을 입증하였다. 따라서, 이 연구에서 관찰한 보호 수준은 비강내 항체 투여가 바이러스 시험감염에 대한 보호를 위해 그리고 바이러스 전염을 차단 또는 감소시키기 위해 인간 대상에서 효과적일 것이라는 것을 나타낸다. 비강내로 투여한 항체는 IP가 비효과적인 조건 및 예에서 보호적이다.
본 발명은 이의 정신 또는 필수적 특징으로부터 벗어나는 일 없이 다른 형태로 구현될 수 있거나 또는 다른 방법으로 수행될 수 있다. 따라서 본 개시내용은 모든 양태에서 예시하고 제한하지 않는 것과 같이 고려되어야 하며, 본 발명의 범주는 첨부하는 특허청구범위에 의해 나타내고, 균등론의 의미 및 범위 내인 이의 모든 변화는 본 발명에 포함되는 것으로 의도된다.
다양한 참고문헌을 본원 전체적으로 인용하며, 이득 각각은 그의 전문이 참고로 본원에 포함된다.
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Ala Leu Thr 1 5 10 <210> 19 <211> 8 <212> PRT <213> Homo sapiens <220> <221> DOMAIN <222> (1)..(8) <223> heavy chain CDR1 <400> 19 Gly Tyr Thr Phe Thr Ser Phe Gly 1 5 <210> 20 <211> 8 <212> PRT <213> Homo sapiens <220> <221> DOMAIN <222> (1)..(8) <223> heavy chain CDR2 <400> 20 Ile Ser Ala Tyr Asn Gly Asp Thr 1 5 <210> 21 <211> 15 <212> PRT <213> Homo sapiens <220> <221> DOMAIN <222> (1)..(15) <223> heavy chain CDR3 <400> 21 Ala Arg Glu Pro Pro Leu Phe Tyr Ser Ser Trp Ser Leu Asp Asn 1 5 10 15 <210> 22 <211> 7 <212> PRT <213> Homo sapiens <220> <221> DOMAIN <222> (1)..(7) <223> light chain CDR1 <400> 22 Gln Ser Val Ser Met Asn Tyr 1 5 <210> 23 <211> 3 <212> PRT <213> Homo sapiens <220> <221> DOMAIN <222> (1)..(3) <223> light chain CDR2 <400> 23 Gly Ala Ser 1 <210> 24 <211> 9 <212> PRT <213> Homo sapiens <220> <221> DOMAIN <222> (1)..(9) <223> light chain CDR3 <400> 24 Gln Gln Tyr Gly Thr Ser Pro Arg Thr 1 5 <210> 25 <211> 8 <212> PRT <213> Homo sapiens <220> <221> DOMAIN <222> (1)..(8) <223> heavy chain CDR1 <400> 25 Gly Tyr Thr Phe Thr Ala Tyr Thr 1 5 <210> 26 <211> 8 <212> PRT <213> Homo sapiens <220> <221> DOMAIN <222> (1)..(8) <223> heavy chain CDR2 <400> 26 Ile Asn Ala Gly Asn Gly His Thr 1 5 <210> 27 <211> 25 <212> PRT <213> Homo sapiens <220> <221> DOMAIN <222> (1)..(25) <223> heavy chain CDR3 <400> 27 Ala Arg Gly Pro Glu Thr Tyr Tyr Tyr Asp Lys Thr Asn Trp Leu Asn 1 5 10 15 Ser His Pro Asp Glu Tyr Phe Gln His 20 25 <210> 28 <211> 6 <212> PRT <213> Homo sapiens <220> <221> DOMAIN <222> (1)..(6) <223> light chain CDR1 <400> 28 Gln Thr Ile Asn Asn Tyr 1 5 <210> 29 <211> 3 <212> PRT <213> Homo sapiens <220> <221> DOMAIN <222> (1)..(3) <223> light chain CDR2 <400> 29 Lys Ala Ser 1 <210> 30 <211> 10 <212> PRT <213> Homo sapiens <220> <221> DOMAIN <222> (1)..(10) <223> light chain CDR3 <400> 30 Gln Glu Tyr Asn Asn Asp Ser Pro Leu Thr 1 5 10 <210> 31 <211> 8 <212> PRT <213> Homo sapiens <220> <221> DOMAIN <222> (1)..(8) <223> heavy chain CDR1 <400> 31 Gly Phe Thr Phe Asn Asn Tyr Gly 1 5 <210> 32 <211> 8 <212> PRT <213> Homom sapiens <220> <221> DOMAIN <222> (1)..(8) <223> heavy chain CDR2 <400> 32 Val Trp Tyr Asp Gly Leu Ile Lys 1 5 <210> 33 <211> 15 <212> PRT <213> Homo sapiens <220> <221> DOMAIN <222> (1)..(15) <223> heavy chain CDR3 <400> 33 Ala Arg Asp Leu Gln Pro Pro His Ser Pro Tyr Gly Met Asp Val 1 5 10 15 <210> 34 <211> 8 <212> PRT <213> Homo sapiens <220> <221> DOMAIN <222> (1)..(8) <223> light chain CDR1 <400> 34 Ser Ser Asn Ile Gly Ser Asn Asp 1 5 <210> 35 <211> 3 <212> PRT <213> Homo sapiens <220> <221> DOMAIN <222> (1)..(3) <223> light chain CDR2 <400> 35 Asn Asn Asn 1 <210> 36 <211> 10 <212> PRT <213> Homo sapiens <220> <221> DOMAIN <222> (1)..(10) <223> light chain CDR3 <400> 36 Ala Ala Trp Asp Asp Ser Leu Thr Val Ser 1 5 10 <210> 37 <211> 8 <212> PRT <213> Homo sapiens <220> <221> DOMAIN <222> (1)..(8) <223> heavy chain CDR1 <400> 37 Gly Phe Ser Phe Asp Glu Tyr Thr 1 5 <210> 38 <211> 8 <212> PRT <213> Homo sapiens <220> <221> DOMAIN <222> (1)..(8) <223> heavy chain CDR2 <400> 38 Ile Asn Trp Lys Gly Asn Phe Met 1 5 <210> 39 <211> 20 <212> PRT <213> Homo sapiens <220> <221> DOMAIN <222> (1)..(20) <223> heavy chain CDR3 <400> 39 Ala Lys Asp Arg Leu Glu Ser Ser Ala Met Asp Ile Leu Glu Gly Gly 1 5 10 15 Thr Phe Asp Ile 20 <210> 40 <211> 7 <212> PRT <213> Homo sapiens <220> <221> DOMAIN <222> (1)..(7) <223> light chain CDR1 <400> 40 Gln Ser Val Ser Ser Ser Tyr 1 5 <210> 41 <211> 3 <212> PRT <213> Homo sapiens <220> <221> DOMAIN <222> (1)..(3) <223> light chain CDR2 <400> 41 Gly Ala Ser 1 <210> 42 <211> 9 <212> PRT <213> Homo sapiens <220> <221> DOMAIN <222> (1)..(9) <223> light chain CDR3 <400> 42 Gln Gln Tyr Gly Ser Ser Pro Trp Thr 1 5 <210> 43 <211> 8 <212> PRT <213> Homo sapiens <220> <221> DOMAIN <222> (1)..(8) <223> heavy chain CDR1 <400> 43 Gly Tyr Ile Phe Thr Glu Ser Gly 1 5 <210> 44 <211> 8 <212> PRT <213> Homo sapiens <220> <221> DOMAIN <222> (1)..(8) <223> heavy chain CDR2 <400> 44 Ile Ser Gly Tyr Ser Gly Asp Thr 1 5 <210> 45 <211> 15 <212> PRT <213> Homo sapiens <220> <221> DOMAIN <222> (1)..(15) <223> heavy chain CDR3 <400> 45 Ala Arg Asp Val Gln Tyr Ser Gly Ser Tyr Leu Gly Ala Tyr Tyr 1 5 10 15 <210> 46 <211> 8 <212> PRT <213> Homo sapiens <220> <221> DOMAIN <222> (1)..(8) <223> light chain CDR1 <400> 46 Ser Ser Asn Ile Gly Thr Asn Tyr 1 5 <210> 47 <211> 3 <212> PRT <213> Homo sapiens <220> <221> DOMAIN <222> (1)..(3) <223> light chain CDR2 <400> 47 Arg Ser Tyr 1 <210> 48 <211> 11 <212> PRT <213> Homo sapiens <220> <221> DOMAIN <222> (1)..(11) <223> light chain CDR3 <400> 48 Ala Thr Trp Asp Asp Ser Leu Asp Gly Trp Val 1 5 10 <210> 49 <211> 8 <212> PRT <213> Homo sapiens <220> <221> DOMAIN <222> (1)..(8) <223> heavy chain CDR1 <400> 49 Gly Gly Thr Ser Asn Asn Tyr Ala 1 5 <210> 50 <211> 8 <212> PRT <213> Homo sapiens <220> <221> DOMAIN <222> (1)..(8) <223> heavy chain CDR2 <400> 50 Ile Ser Pro Ile Phe Gly Ser Thr 1 5 <210> 51 <211> 14 <212> PRT <213> Homo sapiens <220> <221> DOMAIN <222> (1)..(14) <223> heavy chain CDR3 <400> 51 Ala Arg His Gly Asn Tyr Tyr Tyr Tyr Ser Gly Met Asp Val 1 5 10 <210> 52 <211> 8 <212> PRT <213> Homo sapiens <220> <221> DOMAIN <222> (1)..(8) <223> light chain CDR1 <400> 52 Asp Ser Asn Ile Gly Arg Arg Ser 1 5 <210> 53 <211> 3 <212> PRT <213> Homo sapiens <220> <221> DOMAIN <222> (1)..(3) <223> light chain CDR2 <400> 53 Ser Asn Asp 1 <210> 54 <211> 11 <212> PRT <213> Homo sapiens <220> <221> DOMAIN <222> (1)..(11) <223> light chain CDR3 <400> 54 Ala Ala Trp Asp Asp Ser Leu Lys Gly Ala Val 1 5 10

Claims (39)

  1. 비강내 또는 흡입 투여용으로 제형화되고 포유류에서의 인플루엔자 바이러스 감염의 치료 또는 예방에 효과적인 조성물로서, 1㎎/㎏ 이하의 단일 단위용량으로 하나 이상의 인플루엔자 바이러스 중화 단클론성 항체를 포함하는, 조성물.
  2. 제1항에 있어서, 각각 0.5㎎/㎏ 미만의 단일 단위용량으로 하나 이상의 인플루엔자 바이러스 중화 단클론성 항체를 포함하는, 조성물.
  3. 제1항에 있어서, 각각 0.1㎎/㎏ 미만의 단일 단위용량으로 하나 이상의 인플루엔자 바이러스 중화 단클론성 항체를 포함하는, 조성물.
  4. 제1항에 있어서, 각각 0.05㎎/㎏ 미만의 단일 단위용량으로 하나 이상의 인플루엔자 바이러스 중화 단클론성 항체를 포함하는, 조성물.
  5. 제1항에 있어서, 하나 이상의 인플루엔자 바이러스 중화 항체는 중화시킬 수 있는 항체 단편이고, Fab, Fab' 및 F(ab')2로부터 선택되는, 조성물.
  6. 제1항에 있어서, 비강 또는 폐 전달을 위한 약제학적으로 허용가능한 부형제, 담체 또는 희석제, 첨가제 또는 면역반응의 면역학적 매개체 또는 자극제를 더 포함하는, 조성물.
  7. 제1항에 있어서, 인플루엔자 A H1 바이러스를 중화시킬 수 있는 항체, 인플루엔자 A H3 바이러스를 중화시킬 수 있는 항체 및 인플루엔자 B 바이러스를 중화시킬 수 있는 항체를 포함하는 인플루엔자 중화 항체들의 조합을 포함하는, 조성물.
  8. 제1항에 있어서, 인플루엔자 바이러스에 노출되었거나 또는 노출의 위험에 있거나 또는 호흡기 바이러스 감염의 임상적 증상을 나타내는 포유류에서 인플루엔자 바이러스의 치료 또는 예방에 사용하기 위한, 조성물.
  9. 인플루엔자 바이러스에 노출되었거나 또는 노출의 위험에 있거나 또는 호흡기 바이러스 감염의 임상적 증상을 나타내는 포유류에서 인플루엔자 바이러스의 치료 또는 예방을 위한 방법으로서, 상기 포유류에게 상기 인플루엔자 바이러스를 중화시킬 수 있는 하나 이상의 단클론성 항체를 비강내로(IN) 또는 흡입을 통해 투여하는 단계를 포함하는, 방법.
  10. 제9항에 있어서, 상기 단클론성 항체는 IgG 항체인, 방법.
  11. 제9항에 있어서, 인플루엔자 A 바이러스를 중화시킬 수 있는 하나 이상의 단클론성 항체 및 인플루엔자 B 바이러스를 중화시킬 수 있는 하나 이상의 단클론성 항체를 투여하는 단계를 포함하는, 방법.
  12. 제9항에 있어서, 인플루엔자 A H1 바이러스를 중화시킬 수 있는 항체, 인플루엔자 A H3 바이러스를 중화시킬 수 있는 항체 및 인플루엔자 B 바이러스를 중화시킬 수 있는 항체를 투여하는 단계를 포함하는, 방법.
  13. 제9항에 있어서, 상기 항체는 감염 후 최대 24시간의 시한까지 투여되는, 방법.
  14. 제9항에 있어서, 상기 항체는 감염 후 최대 48시간의 시한까지 투여되는, 방법.
  15. 제9항에 있어서, 상기 항체는 감염 후 최대 72시간의 시한까지 투여되는, 방법.
  16. 제9항에 있어서, 상기 항체는 바이러스에 대한 감염 또는 노출 전에 또는 이와 관련된 바이러스 질환 또는 증상의 임상적 징후 전에 1회 이상의 용량으로 투여되는, 방법.
  17. 제9항에 있어서, 상기 항체는 1㎎/㎏ 체중 미만의 단일 용량으로 각각 투여되는, 방법.
  18. 제9항에 있어서, 상기 항체는 0.5㎎/㎏ 미만의 단일 용량으로 각각 투여되는, 방법.
  19. 제9항에 있어서, 상기 항체는 0.1㎎/㎏ 미만의 단일 용량으로 각각 투여되는, 방법.
  20. 제9항에 있어서, 상기 항체는 0.05㎎/㎏ 미만의 단일 용량으로 각각 투여되는, 방법.
  21. 제9항에 있어서, 상기 항체는 용량당 1㎎/㎏ 미만의 다회 용량으로 비강내로 또는 흡입을 통해 투여되되, 다회 용량은 적어도 2시간 간격으로 투여되고, 추정되는 감염, 노출 또는 임상적 증상의 징후 후 72시간까지 처음 투여되는, 방법.
  22. 제9항에 있어서, IP 또는 IV에 의해 바이러스 특이적 단클론성 항체의 추가적인 투여를 더 포함하되, 상기 추가적으로 투여되는 항체는 중화 항체 또는 비-중화 항체인, 방법.
  23. 제22항에 있어서, 상기 IP 또는 IV에 의해 추가로 투여되는 항체는 IN 또는 흡입을 통해 투여되는 것과 동일한 항체인, 방법.
  24. 제22항에 있어서, 상기 IP 또는 IV에 의해 추가로 투여되는 항체는 IN 또는 흡입을 통해 투여되는 항체 전에, 동시에, 순차적으로 또는 후속적으로 투여되는, 방법.
  25. 인플루엔자 항체를 복강내 또는 정맥내로 1회 이상 투여하는 단계와 조합하여 인플루엔자 바이러스 중화 항체의 1회 이상의 비강내 또는 흡입 용량을 투여하는 단계를 포함하는, 인플루엔자 바이러스에 대항하여 단클론성 항체를 투여하기 위한 프로토콜로서, 상기 비강내 또는 흡입 용량의 상기 항체는 1㎎/㎏ 이하의 용량으로 투여되고, 상기 복강내 또는 정맥내 용량의 항체는 1㎎/㎏ 이상의 용량으로 투여되며, 비강내 또는 흡입 용량의 항체와 동일 또는 상이한 항체인, 프로토콜.
  26. 제25항에 있어서, 상기 복강내 또는 정맥내 용량의 상기 항체는 비-중화 항체인, 프로토콜.
  27. 제25항에 있어서, 상기 비강내 또는 흡입 용량은 1㎎/㎏ 미만이고, 상기 IP 또는 IV 용량은 적어도 5 ㎎/㎏인, 프로토콜.
  28. 제25항에 있어서, 상기 비강내 또는 흡입 용량은 1㎎/㎏ 미만이고, 상기 IP 또는 IV 용량은 비강내 용량보다 ㎎/㎏으로 적어도 10배 더 높은, 프로토콜.
  29. 제25항에 있어서, 상기 비강내 또는 흡입 용량은 0.5㎎/㎏ 미만이고, 상기 IP 또는 IV 용량은 적어도 5 ㎎/㎏인, 프로토콜.
  30. 제25항에 있어서, 상기 비강내 또는 흡입 용량은 1㎎/㎏ 미만이고, 추정되는 감염, 노출 또는 임상적 증상의 징후 후 24시간 내에 투여되는, 프로토콜.
  31. 제25항에 있어서, 상기 비강내 또는 흡입 용량은 1㎎/㎏ 미만이고, 추정되는 감염, 노출 또는 임상적 증상의 징후 후 48시간 내에 투여되는, 프로토콜.
  32. 호흡기 바이러스에 의한 감염에 노출되었거나, 노출될 위험에 있거나 또는 감염의 임상적 징후를 나타내는 대상에게 하나 이상의 인플루엔자 바이러스 중화 항체를 1㎎/㎏ 이하의 단일 단위용량으로 비강내로 또는 흡입을 통해 투여하는 단계를 포함하는, 인플루엔자 바이러스의 전염을 저해하는 방법.
  33. 제32항에 있어서, 상기 항체는 IgG 항체인, 방법.
  34. 제32항에 있어서, 상기 바이러스 중화 항체는 추정되는 감염, 노출 또는 임상적 증상의 징후 후 48시간 내에 투여되는, 방법.
  35. 제32항에 있어서, 상기 바이러스 중화 항체는 추정되는 감염, 노출 또는 임상적 증상의 징후 후 24시간 내에 투여되는, 방법.
  36. 제32항에 있어서, 상기 바이러스 중화 항체는 추정되는 감염, 노출 또는 임상적 증상의 징후 후 24시간 초과 그리고 72시간 내에 투여되는, 방법.
  37. 제32항에 있어서, 상기 바이러스 중화 항체는 임상적 증상의 노출 또는 징후 전에 1회 이상 투여되는, 방법.
  38. 제32항에 있어서, 상기 항체는 0.5 ㎎/㎏ 미만의 용량으로 투여되는, 방법.
  39. 제32항에 있어서, 상기 항체는 0.1㎎/㎏ 미만의 용량으로 투여되는, 방법.
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