KR20120064072A - 콜라겐 네오에피토프 항체 - Google Patents

콜라겐 네오에피토프 항체 Download PDF

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요시토 누마타
아키라 야마우치
준지 오노다
쇼지 야마네
도모코 마에다
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시오노기세야쿠 가부시키가이샤
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Abstract

콜라겐 프래그먼트의 C말단측의 네오에피토프에 특이적이고, 해당 네오에피토프에 포함되는 프롤린이 비수산화체인 경우에 있어서의 결합 친화성과, 수산화체인 경우에 있어서의 결합 친화성이 실질적으로 동일한 신규한 모노클로날 항체 및 그것을 이용한 면역 어세이, 측정 방법, 키트 등을 제공한다. 네오에피토프 중의 프롤린 수산화체의 유무에 영향받지 않고, 생체 시료 중의 콜라게나제 소화에 기인하는 콜라겐 프래그먼트를 정량할 수 있다.

Description

콜라겐 네오에피토프 항체{COLLAGEN NEOEPITOPE ANTIBODY}
본 발명은 콜라겐의 네오에피토프를 인식할 수 있는 모노클로날 항체, 이것에 기초하는 면역 어세이(assay), 이것에 기초하는 측정 방법, 이것에 기초하는 스크리닝 방법, 이것에 기초하는 환자 선별 방법 및 이것에 기초하는 키트에 관한 것이다.
연골 분해는 변형성 관절증(OA) 및 만성 관절 류마티스(RA) 같은 관절 질환의 주요한 특징이다. 이러한 질환에 있어서 연골 상실의 진행을 모니터하는 것은 질환의 관리(예후, 진단 및 처치를 포함함)에 유용한 정보를 제공한다. 현재, 연골 상실은 X선에 의해서 관절강이 좁아져 있는 것을 검출함으로써 모니터된다. 그러나, X선 진단은 그의 검출 감도ㆍ정밀도를 함께 만족시킬 수 있는 것이 아니다. 또한, X선 진단에서는 과거에 연골 상실이 일어난 것을 나타내는 것에 지나지 않으며, 현재의 연골 분해 상황을 나타내는 것이 아니다. 따라서, 여러 가지 관절 질환에 있어서의 연골 붕괴의 진행을 모니터하는 대체 방법이 매우 유용하다.
현재, 연골에서의 콜라겐 분해가 매트릭스 메탈로프로티나제(MMP)라고 불리는 일군의 효소에 의해서 행해지는 것이 분명해지고 있다. 특히, 콜라게나제(MMP-1, MMP-8 및 MMP-13)만이 미변성 II형 콜라겐의 3중 나선의 절단을 담당하는 점에서, 콜라게나제에 의한 975-976위치의 아미노산 잔기 사이의 절단이 그 후의 젤라티나제 등 여러 가지 프로테아제에 의한 II형 콜라겐의 연골 매트릭스로부터의 탈락을 발생시키는 핵심 사건으로 생각되고 있다. 또한, 여기에서의 아미노산 잔기는 진 뱅크(Genbank) 데이터 베이스: COL2A1(수탁(accession) 번호: NP001835)의 전장 서열을 참조하고 있다.
분해된 세포 밖 매트릭스 단백질의 프래그먼트는 연골로부터 활액(SF)으로 방출되어, 그 후, 혈류를 타고 전신을 순환한다. 따라서, 혈청 중 또는 뇨 중의 연골 매트릭스 단백질 프래그먼트의 레벨은 통상 SF의 경우보다도 낮지만, 이것을 검출할 수 있으면 OA 및 RA에 있어서의 연골 분해를 보다 간편하게 평가하는 것이 가능하다.
전신성 II형 콜라겐 프래그먼트를 측정하는 것에 대해서는 2 개의 주요한 문제가 있다. 첫 번째로, 관절 연골 중의 II형 콜라겐의 턴오버는 정상적으로는 매우 낮기 때문에, 혈청 또는 뇨 중의 II형 콜라겐 프래그먼트의 레벨도 매우 낮다. OA 연골에 있어서 II형 콜라겐의 턴오버의 증대는 있지만, 검출을 현저히 쉽게 할 정도로 충분히 큰 변화가 아니다. 따라서, 매우 감도가 높은 어세이가 필요해진다.
두 번째 문제는 콜라겐을 구성하는 프롤린 및 리신 잔기의 대부분이 수산화 수식되어 있는 것이다. 특히 프롤린은 콜라겐 단백의 약 3할을 차지하는 주요 구성 성분이고, 콜라게나제 절단 부위 근방에도 수산화 프롤린이 존재하기 때문에, 결합 친화성에 크게 영향을 미치는 것으로 알려져 있다.
콜라겐에 포함되는 프롤린의 수산화는 프로릴 4-히드록실라제에 의해 철과 비타민 C 의존적으로 촉매되기 때문에, 그의 정도는 콜라겐 합성시의 영양 상태 등의 영향을 받기 쉽고, 일정하지 않다. 따라서, II형 콜라겐 프래그먼트를 측정하기 위한 항체는 그의 결합 친화성이 프롤린 수산화의 유무에 영향받지 않는 것이 바람직하다.
지금까지 몇 가지의 콜라게나제에 의해서 발생하는 II형 콜라겐 프래그먼트 측정계가 발명되었지만, 어느 것에 있어서도 감도, 정밀도에 있어서 충분하지 않다. 예를 들면, 로빈 풀(Robin Poole) 등의 모노크롬 항체 COL2-3/4C 롱(long)(특허문헌 1)에 의한 경합 엘리사(ELISA)법에 있어서는 콜라게나제 절단단 구조에 대한 특이성이 낮고, 또한 절단 개소 상류 5번째(N말단으로부터 971번째)의 프롤린의 비수산화체에 대해서는 반응성을 거의 갖지 않는다(비특허문헌 1). 또한, 어터니스(Otterness) 등에 의한 모노클로날 항체 9A4(특허문헌 2)를 이용한 샌드위치 엘리사법에 대해서는 콜라게나제 절단 단구조에 대한 특이성은 높지만, 절단단으로부터 5잔기 상류(N말단으로부터 971번째)의 프롤린의 수산화에 의해 그의 결합 친화성은 약 1/90로 저하된다(비특허문헌 2). 그 때문에, 대부분이 수산화체인 II형 콜라겐 프래그먼트에 대한 검출 감도는 저하된다.
이상과 같이, 지금까지의 항체는 모두 콜라게나제 절단 부위 바로 가까이의 프롤린의 수산화 수식의 영향을 받기 쉬운 점에서, 수산화체와 비수산화체가 혼재하는 생체 시료 중의 콜라겐 프래그먼트량을 정확하게는 측정할 수 없었다고 말할 수 있다.
일본 특허 2999416호 일본 특허 제3258630호
J Immunol Methods 294(2004) p145-153 J Immunol Methods 247(2001) p25-34
본 발명이 해결하고자 하는 과제는 생체 시료 중의 콜라게나제 소화에 기인하는 콜라겐 프래그먼트(콜라겐 네오에피토프)의 양을 정확하게 측정하는 것이다.
본 발명자들은 콜라겐의 네오에피토프에 대한 모노클로날 항체의 제작에 대해서 예의 연구한 결과, 네오에피토프의 프롤린이 히드록시체로 변화하더라도 결합 능력이 변화하지 않는 신규한 모노클로날 항체를 제작함으로써 본 발명을 완성하였다.
즉 본 발명은
(1) 콜라겐 네오에피토프 단편에 특이적으로 결합하여, 서열 번호 20으로 나타나는 아미노산 서열의 962위치 내지 975위치에 결합하는 항체이며, 해당 에피토프에 포함되는 프롤린이 비수산화체인 경우에 있어서의 결합 친화성과, 수산화체인 경우에 있어서의 결합 친화성이 실질적으로 동일한 모노클로날 항체,
(2) 상기 (1)에 있어서, 상기 (1) 기재의 프롤린이 서열 번호 20으로 나타나는 아미노산 서열에 있어서 971위치의 프롤린인 모노클로날 항체,
(3) 상기 (1)에 있어서, 에피토프가 서열 번호 20으로 나타나는 아미노산 서열의 957위치 내지 975위치의 영역에 존재하는 모노클로날 항체,
(4) 상기 (2)에 기재된 항체이며, 서열 번호 2로 나타나는 아미노산 서열을 포함하는 펩티드에 대한 상기 항체의 면역 반응이 저해되도록 서열 번호 14, 17 또는 18로 나타나는 아미노산 서열을 포함하는 펩티드를 경합시키는 면역 어세이에 있어서, 상기 면역 반응의 50 % 저해 농도가 어느 쪽의 펩티드에 있어서도 0.04 μM 이하인 항체,
(5) 1) 상보성 결정 영역에 하기 아미노산 서열을 포함하는 중쇄 가변 영역; KYGIN(서열 번호 5), WINTYSGMTT YADDFKG(서열 번호 6) 및 SLGYDYGGFAY(서열 번호 7) 및 2) 상보성 결정 영역에 하기 아미노산 서열을 포함하는 경쇄 가변 영역; RSGQTLVHDNENTYFH(서열 번호 8), KISNRFS(서열 번호 9) 및 SQNTHVPFT(서열 번호 10)를 갖는 모노클로날 항체,
(6) 1) 서열 번호 3의 아미노산 서열을 갖는 중쇄 가변 영역 및 2) 서열 번호 4의 아미노산 서열을 갖는 경쇄 가변 영역을 갖는 모노클로날 항체,
(7) 상기 (1) 내지 (6) 중 어느 하나에 기재한 모노클로날 항체이며 라벨된 모노클로날 항체,
(8) 상기 (1) 내지 (6) 중 어느 하나에 기재한 모노클로날 항체를 이용한 면역 어세이,
(9) 상기 (1) 내지 (6) 중 어느 하나에 기재한 모노클로날 항체를 이용한 콜라겐 네오에피토프 단편의 함유량의 측정 방법,
(10) 상기 (1) 내지 (6) 중 어느 하나에 기재한 모노클로날 항체를 이용하여 측정한 콜라겐 네오에피토프 단편의 함유량을 지표로 하는 콜라게나제 활성의 측정 방법,
(11) 상기 (1) 내지 (6) 중 어느 하나에 기재한 모노클로날 항체를 이용하여 측정한 콜라겐 네오에피토프 단편의 함유량을 지표로 하는 콜라게나제 저해제의 스크리닝 방법,
(12) 상기 (1) 내지 (6) 중 어느 하나에 기재한 모노클로날 항체를 이용하여 생체 시료에 포함되는 콜라겐 네오에피토프 단편의 함유량을 측정하는 공정을 포함하는, 콜라게나제가 관여하는 질환의 환자 선별 방법,
(13) 상기 (1) 내지 (6) 중 어느 하나에 기재한 모노클로날 항체를 포함하는 키트,
(14) 상기 (1) 내지 (6) 중 어느 하나에 기재한 모노클로날 항체를 이용하여 생체 시료에 포함되는 콜라겐 네오에피토프 단편의 함유량을 측정하는 공정을 포함하는, 콜라게나제가 관여하는 질환의 진단 방법 및
(15) 상기 (1) 내지 (6) 중 어느 하나에 있어서, 콜라게나제가 관여하는 질환의 진단에 사용하기 위한 모노클로날 항체
에 관한 것이다.
본 발명의 모노클로날 항체는 네오에피토프 말단 구조를 특이적으로 인식할 수 있어, 프롤린 수산화 수식의 영향을 받지 않기 때문에, 생체에 있어서의 콜라겐 네오에피토프 단편량을 정확하게 검출ㆍ정량할 수 있다.
도 1은 3량체 헬릭스 구조를 취하는 섬유성 콜라겐(I형, II형 및 III형)의 모식도 중의 아미노 말단으로부터 2/3의 위치에 콜라게나제 절단 부위를 나타낸다. 하단에 각종 동물의 II형 콜라겐의 콜라게나제 절단 부위 및 전후의 아미노산 서열을 나타낸다. 위에서부터 인간, 소, 개, 래트, 마우스의 순이다. 인간 II형 콜라겐의 954-980 부분에 상당하며, 절단 부위인 975-976 아미노산 잔기 사이를 별표로 나타내었다.
도 2는 20A10의 여러 가지 C말단 구조를 갖는 펩티드 단편에 의한 경합 면역 어세이의 결과를 나타낸다.
도 3의 상단의 도면은 20A10의 콜라게나제 소화 및 미소화된 콜라겐에 의한 경합 면역 어세이의 결과를 나타낸다. 하단의 표는 콜라게나제 소화에 의한 특이성의 변화와 I형, II형 및 III형 콜라겐 단편 사이의 교차 반응성을 나타낸다.
도 4는 II형 콜라겐 특이적 모노클로날 항체와의 조합에 의한 샌드위치 면역 어세이의 결과를 나타낸다.
도 5는 1.2 ng/웰 MMP-13 첨가에 의한 II형 콜라겐 분해 반응에 있어서, 여러 가지 농도의 MMP 저해제를 첨가한 경우의 콜라겐 네오에피토프 단편 농도의 측정값을 나타낸다.
도 6은 1 ng/ml 인간 인터루킨 1 존재하에서의 소 연골 외식편 배양에 있어서, 여러 가지 농도의 MMP 저해제를 첨가한 경우에 있어서의 콜라겐 네오에피토프 단편 농도의 측정값을 나타낸다.
도 7은 20A10의 가변 영역의 아미노산 서열을 나타낸다. 상단은 중쇄에 대한, 하단은 경쇄에 대한 가변 영역이다. 또한, 각각에 있어서 밑줄 친 서열은 상보성 결정 영역의 위치를 나타내고 있다.
I 항체
섬유성 콜라겐인 I형, II형 및 III형 콜라겐은 3 개의 펩티드쇄가 나선형으로 꼬여져 구성되어 있고, 콜라게나제(예를 들면, MMP-1, MMP-8 및 MMP-13)는 이들 섬유성 콜라겐 3중쇄를 미변성된 상태에서 N말단으로부터 3:1의 위치(975-976 아미노산 잔기 사이)에서 절단한다. 또한, N말단측 4분의 3 단편의 C말단 및 C말단측 4분의 1 단편의 N말단이 새롭게 생기는 말단 구조를 「네오에피토프」라 한다(도 1). 또한, 절단에 의해 생긴 콜라게나제 단편을 「콜라겐 네오에피토프 단편」이라고 한다. 그 중에서도, 인간 II형 콜라겐(수탁 번호 NP_001835)의 C말단측의 네오에피토프 부분(969-975위에 해당; 이하, C말단 네오에피토프라고도 함)의 7 아미노산 잔기 Gly-Pro-Pro-Gly-Pro-Gln-Gly(서열 번호 1)는 인간에서 마우스까지 동물종 사이에서 보존되어 있는 것이 알려져 있다. 또한, 콜라겐은 높은 히드록시프롤린 함유율로 특징지어지는 단백질의 하나이고, 이 서열의 C말단측으로부터 5번째(또는 N말단측으로부터 971번째)의 프롤린 잔기도 대부분의 경우 수산화체(이하, 히드록시체 또는 히드록시프롤린이라고도 함)로 되어 있고, (서열 번호 2, Gly-Pro-Hyp-Gly-Pro-Gln-Gly, Hyp는 수산화 프롤린)그 비율은 콜라겐 합성시의 건강 상태나 영양 상태에 의한 영향을 받기 쉽고 일정하지 않은 점에서, 콜라겐 네오에피토프 단편의 정확한 정량을 방해하고 있다고 생각된다. 따라서, 콜라겐의 분해를 면역학적으로 측정하는 경우라면, 네오에피토프를 검출하는 항체의 특성으로는 수산화체와 비수산화체(프롤린)를 동일한 정도로 면역 특이적으로 인식할 수 있는 것이 본래는 바람직하다.
본 발명의 모노클로날 항체는 C말단측에 네오에피토프를 갖는 II형 콜라겐 네오에피토프 단편(서열 번호 20)에 포함되는 프롤린이 히드록시체로 변화하더라도, 그의 결합 친화성이 변화하지 않는 것에 의해 특징지어진다. 여기서 「결합 친화성이 변화하지 않는다」함은 네오에피토프를 구성하는 아미노산 잔기가 프롤린(비수산화체)인 경우 및 히드록시프롤린(수산화체)인 경우의 결합 친화성이 실질적으로 동일한 것도 의미한다.
「결합 친화성」이라 함은 일반적으로 면역 글로불린 분자와, 이 면역 글로불린이 특이적인 항원과의 사이에서 발생하는 타입의 비공유결합적인 상호 작용의 강도 또는 친화성을 가리키며, 종종 해리 상수(Kd)로서 표현될 수 있다.
「실질적으로 동일하다」라 함은 구체적으로는 수산화체(히드록시프롤린)의 결합 친화성이 비수산화체의 결합 친화성 값의 80 % 내지 120 %의 범위 내에 있는 것, 바람직하게는 90 % 내지 110 %의 범위 내에 있는 것, 더 바람직하게는 95 % 내지 105 %의 범위 내에 있는 것을 의미한다. 또한, 비수산화체(프롤린)인 경우와 수산화체인 경우의 교차 반응성이 80 % 이상, 바람직하게는 90 % 이상, 더 바람직하게는 95 % 이상인 것을 의미한다. 항체의 결합 친화성은 기지의 방법에 의해, 예를 들면 엘리사 어세이를 이용한 스캐차드 분석(예를 들면, 캠벨(Campbell), 1991; 시걸(Segel), 1976)에 의해 결정될 수 있다.
이러한 모노클로날 항체의 대표예로는 20A10을 들 수 있다. 20A10의 가변 영역의 아미노산 서열은 도 6에 나타내었다. 상단이 중쇄(서열 번호 3)를, 하단이 경쇄(서열 번호 4)의 서열을 나타낸다. 또한, 하선부는 상보성 결정 영역(CDR)을 나타낸다.(서열 번호 5 내지 10)
본 발명의 모노클로날 항체의 제작에 이용되는 면역원은 예를 들면 문헌[Antibodies: A Laboratory Manual(1989년, 콜드 스프링 하버 래보래토리 프레스)] 등에 기재되어 있는 방법에 의해 제작할 수 있다.
면역 방법은 일반적 방법에 의해, 예를 들면 면역원을 포유 동물에게 정맥내, 피내, 피하, 복강내 주사 등에 의해 투여함으로써 행할 수 있다. 보다 구체적으로는 예를 들면 면역원을 생리 식염수 함유 인산 완충액(PBS), 생리 식염수 등으로 적당한 농도로 희석하고, 원하는 바에 따라 통상의 아쥬반트와 병용하여, 공시 동물에게 2 내지 3주 간격으로 수회 투여한다. 마우스를 이용하는 경우에는 1 회의 투여량을 한 마리당 50 내지 100 ㎍ 정도로 한다. 여기서 상기 아쥬반트라 함은 항원과 함께 투여했을 때, 비특이적으로 항원에 대한 면역 반응을 증강시키는 물질을 말한다. 통상 이용되는 아쥬반트로는 백일해 백신, 프로인트 아쥬반트 등을 예로 들 수 있다. 최종 면역 후 3 내지 10일째에 포유 동물의 채혈을 행함으로써, 항혈청을 얻을 수 있다.
모노클로날 항체의 제조 방법은 면역원으로 면역한 포유 동물의 형질 세포(면역 세포)와 포유 동물의 형질세포종 세포(미엘로마 세포)의 융합 세포(하이브리도마)를 제작하여, 이것으로부터 원하는 5'-디옥시-5'-메틸티오아데노신을 인식하는 모노클로날 항체를 생산하는 클론을 선택하고, 상기 클론을 배양함으로써 실시할 수 있다. 이 모노클로날 항체의 제조는 기본적으로는 통상법에 따를 수 있다.
상기 방법에 있어서, 면역원으로 면역되는 포유 동물은 세포 융합에 사용하는 형질세포종 세포와의 적합성을 고려하여 선택하는 것이 바람직하고, 마우스, 래트 등이 이용된다. 면역 방법에 대해서는 폴리클로날 항체 제작의 경우와 마찬가지로 한다. 단, 최종 면역 후 3 내지 10일째에 면역 동물로부터 비장 세포를 채취한다.
얻어진 면역 세포로부터 하이브리도마를 얻기 위해서는 예를 들면 「분자 세포 생물학 기초 실험법」(난코도 호리에 다케이치 등 1994년 발행) 등에 기재되어 있는 방법에 의해, 계체 배양 가능한 세포로 하는 것을 목적으로서, 예를 들면 센다이 바이러스나 폴리에틸렌글리콜 존재하, 형질세포종 세포와 항체를 생산하는 면역 세포를 융합시켜, 하이브리도마를 얻을 수 있다. 여기서 이용되는 형질세포종 세포는 동일한 항온 동물이라도 동종의 항온 동물 유래의 형질세포종 세포를 이용하는 것이 바람직하고, 예를 들면 마우스를 면역 동물로서 얻어진 비장 세포와 융합시키는 경우, 마우스 미엘로마 세포를 이용하는 것이 바람직하다. 형질세포종 세포는 p3x63-Ag8.UI 등의 공지된 것을 이용할 수 있다.
하이브리도마는 HAT 배지(히포크산틴, 아미노프테린, 티미딘 첨가 배지)로부터 선택하여, 콜로니가 확인된 단계에서, 배양 상청으로 분비되는 항체와 항원의 결합을 조사함(스크리닝함)으로써 목적으로 하는 항체를 생산하는 하이브리도마를 얻을 수 있다.
스크리닝하는 방법으로는 예를 들면 스폿법, 응집 반응법, 웨스턴 블롯법, 엘리사법 등의 일반적으로 항체의 검출에 이용되고 있는 여러 가지 방법을 들 수 있지만, 바람직하게는 예를 들면 후술하는 실시예에 상술하는 바와 같이, 하이브리도마의 배양 상청에 대해서, 네오에피토프 펩티드와의 반응성을 지표로 하는 엘리사법에 따라서 실시된다. 이 스크리닝에 의해서, 네오에피토프 펩티드와 특이적으로 반응하는 목적 항체 생산주를 스크리닝할 수 있다. 이 공정에 기초하여, 얻어진 클론으로서, 클론 20A10을 예시한다.
스크리닝 결과 얻은 목적으로 하는 항체를 생산할 수 있는 주의 클로닝은 통상의 한계 희석법, 연한천법 등에 의해 실시할 수 있다. 클로닝된 하이브리도마는 필요에 따라서, 혈청 배지 또는 무혈청 배지에서 대량 배양할 수 있다. 이 배양에 의하면, 비교적 고순도의 원하는 항체를 배양 상청으로서 얻을 수 있다. 또한, 하이브리도마와 적합성이 있는 포유 동물, 예를 들면 마우스 등의 복강에 하이브리도마를 접종하여, 원하는 항체를 마우스 복수로서 대량으로 회수할 수도 있다.
본 발명의 모노클로날 항체를 생산하는 하이브리도마를 함유하는 배양 상청 및 마우스의 복수는 정제 또는 수식하지 않고 조제 항체액으로서 사용할 수 있다. 또한, 모노클로날 항체의 단리, 정제는 상술한 배양 상청 또는 복수를 포화 황산암모늄, 이온 교환 크로마토그래피(DEAE 또는 DE52 등), 항면역 글로불린 칼럼 또는 프로테인 A 칼럼 등의 어피니티 컬럼 크로마토그래피에 제공하는 것 등에 의해 행할 수 있다.
또한, 본 발명의 모노클로날 항체로서, 항체 유전자를 클로닝하여, 적당한 벡터에 조립하고, 이것을 숙주에 도입하여, 유전자 재조합 기술을 이용하여 생산시킨 재조합형 항체를 이용할 수 있다(예를 들면, 문헌[칼(Carl) 등, THERAPEUTIC MONOCLONAL ANTIBODIES, 1990년 발행]).
구체적으로는 목적으로 하는 항체(예를 들면, 20A10)의 가변 영역(예를 들면, 20A10이면 서열 번호 3 및 4)을 코딩하는 cDNA를 합성한다. cDNA의 합성 및 증폭을 행하기 위해서는 5'-Ampli FINDER RACEKit(클론테크 제조) 및 PCR을 이용한 5'-RACE법(문헌[프로먼(Frohman), M.A. 등, Proc. Natl. Acad. Sci.USA 1988년, 제85권, 8998페이지 등])을 사용할 수 있다. 얻어진 PCR 산물로부터 목적으로 하는 DNA 단편을 정제하여, 벡터 DNA와 연결한다. 추가로, 이것으로부터 재조합 벡터를 제조하고, 대장균 등에 도입하여 콜로니를 선택하여 원하는 재조합 벡터를 제조한다. 목적으로 하는 DNA의 염기 서열을 공지된 방법, 예를 들면 디디옥시법에 의해 확인한다.
목적으로 하는 항체의 V영역을 코딩하는 DNA가 얻어지면, 이것을 원하는 항체 정상 영역(C영역)을 코딩하는 DNA와 연결하고, 이것을 발현 벡터에 조립한다. 또는, 항체의 V영역을 코딩하는 DNA를 항체 C영역의 DNA를 포함하는 발현 벡터에 조립할 수도 있다. 본 발명에서 사용되는 항체를 제조하기 위해서는 항체 유전자를 발현 제어 영역, 예를 들면 인핸서/프로모터의 제어하에서 발현하도록 발현 벡터에 조립한다. 다음으로, 이 발현 벡터에 의해 숙주 세포를 형질 전환하여, 항체를 발현시킬 수 있다.
항체 유전자의 발현은 항체의 중쇄(H쇄) 또는 경쇄(L쇄)를 각각 발현 벡터에 조립하여 숙주를 동시에 형질 전환시킬 수도 있고, 또는 H쇄 및 L쇄를 코딩하는 DNA를 단일의 발현 벡터에 조립하여 숙주를 형질 전환시킬 수도 있다 (WO94/11523 참조).
항체를 이용하여 하기에 설명하는 면역 어세이(면역학적 측정법) 등을 행하는데 있어서, 통상은 항체의 거동을 검출 가능하게 하기 위해서 항체 그 자체가 여러 가지 물질로 표지될 수 있다. 본 발명의 모노클로날 항체의 바람직한 양태로는 표지한 모노클로날 항체를 들 수 있다. 항체를 표지하기 위해서는 예를 들면 「분자 세포 생물학 기초 실험법」(난코도 호리에 다케이치 등 1994년) 등에 기재되어 있는 통상법을 이용함으로써 행할 수 있다. 여러 가지 물질로는 화학 발광 물질, 효소, 형광 물질, 착색 비드, 방사성 동위 원소, 원소, 금속류, 비오틴을 들 수 있다. 이하에 구체예를 나타내지만 이들에 한정되는 것은 아니다. 화학 발광 물질이라 함은 예를 들면 루미놀이나 아크리디늄에스테르 등을 가리킨다. 효소라 함은 예를 들면 β-갈락토시다아제나 알칼리 포스파타아제나 퍼옥시다아제 등을 가리킨다. 형광 물질이라 함은 예를 들면 유로퓸크립테이트나 FITC나 RITC 등을 가리킨다. 착색 비드라 함은 예를 들면 프로테인 A 비드, 소맥 배아 응집소(wheat germ agglutinin(WGA)) 비드, 스트렙트아비딘 비드 등을 가리킨다. 방사성 동위 원소라 함은 예를 들면 14C나 125I나 3H 등을 가리킨다. 원소라 함은 예를 들면 유로퓸 등의 란타나이드 원소를 가리킨다. 금속류라 함은 예를 들면 페리틴이나 금 콜로이드 등을 가리킨다.
II 면역 어세이
본 발명의 모노클로날 항체는 콜라겐 네오에피토프 단편의 C말단 네오에피토프 구조를 특이적으로 인식할 수 있다. 또한, 이 네오에피토프는 콜라겐 타입에 비의존적이다. 그 때문에, 예를 들면 각종 콜라겐에 특이적인 에피토프를 인식할 수 있는 항체(제작 방법에 대해서는 상기 참조)와 조합한 샌드위치 어세이를 행함으로써, 임의의 콜라겐에 대해서 콜라겐 네오에피토프 단편을 정량할 수 있다. 각 타입의 콜라겐에 특이적 서열은 이 분야에 있어서의 당업자에 있어서는 공지되어있다. 예를 들면 이하의 서열을 들 수 있다.
I형 콜라겐 특이적 서열: Gly-Ser-Pro-Gly-Ala-Asp-Gly-Pro-Ala(서열 번호 11)
II형 콜라겐 특이적 서열: Gly-Glu-Pro-Gly-Asp-Asp-Gly-Pro-Ser(서열 번호 12)
III형 콜라겐 특이적: Gly-Glu-Lys-Gly-Ser-Pro-Gly-Ala-Gln(서열 번호 13)
본 발명의 모노클로날 항체는 표지된 것이더라도, 표지된 것이 아니더라도 면역 어세이(면역학적 측정법)에 유용하다. 본 발명의 모노클로날 항체를 이용한 면역 어세이으로는 경합적인 측정일 수도 비경합적인 측정일 수도 있다. 「경합 면역 어세이에 있어서 항체의 면역 반응의 50 % 저해 농도가 0.04 μM 이하이다」라 함은 예를 들면 서열 번호 14, 17 또는 18로 나타나는 아미노산 서열을 포함하는 펩티드를 0.04 μM 첨가했을 때, 서열 번호 2로 나타나는 아미노산 서열을 포함하는 펩티드와 항체와의 결합의 저해율이 50 % 이상인 것을 의미한다(실시예 2). 50 % 저해 농도는 바람직하게는 0.04 μM 이하이고, 보다 바람직하게는 0.022 μM 이하이다. 또한, 호모지니어스 어세이법(균일계에 의한 측정)일 수도 헤테로지니어스 어세이법(불균일계에 의한 측정)일 수도 있다. 구체적으로는 예를 들면 효소 면역 측정법(EIA), 고상 효소 면역 측정법(ELISA), 형광 면역 측정법(FIA), 방사선 면역 측정법(RIA), 시간 분해 형광 면역 측정(TR-FIA), 화학 발광 면역 측정법, 면역 블로트법, 웨스턴 블롯법, 면역 염색법, SPA법, 형광 편광 측정법(FP), 형광 공명 에너지 전이(FRET) 등을 들 수 있다.
본 발명의 면역 어세이의 바람직한 양태로서, 엘리사법을 들 수 있다. 엘리사법이라 함은 효소에서 표지된 항체 또는 항원을 이용하여, 항체 또는 항원의 양을 표지 효소의 활성도에 의해 정량하는 방법이다. 효소에서 표지된 항원 항체 결합물과 유리형의 표지 항원, 또는 항체를 분리하는데에 고상화된 항체나 항원이 이용된다. 고상은 아가로스, 마이크로타이터 플레이트의 내면, 라텍스 입자 등을 이용할 수 있다. 엘리사법으로서 구체적으로는 경합법 면역 어세이이나 샌드위치 면역 어세이 등을 들 수 있다. 또한, 표지 효소로는 서양 고추냉이 유래의 퍼옥시다아제(이하 HRP라고도 함)나 알칼리 포스파타아제 등을 들 수 있다.
III 유용성
본 발명의 모노클로날 항체나 면역 어세이는 여러 가지 용도에 있어서 유용하다. 예를 들면, 본 발명의 모노클로날 항체나 면역 어세이는 MMP 등의 콜라게나제의 활성 측정에 유용하다. 섬유성 콜라겐인 I형, II형, III형 콜라겐의 3중쇄를 미변성된 상태에서 절단할 수 있는 것은 3종류의 콜라게나제(문헌[펜다스(Pendas) AM 등, Genomics 1995; 26: 615-8. 및 미첼(Mitchell) PG 등, J Clin Invest 1996; 97: 761-8])인 것이 알려져 있다. 본 발명의 모노클로날 항체는 콜라게나제 절단에 의해 생긴 네오에피토프 단편을 특이적으로 인식할 수 있기 때문에, 그 양을 측정할 수 있고, 콜라게나제의 활성 평가가 가능하다.
또한, 본 발명의 모노클로날 항체나 면역 어세이는 콜라겐 네오에피토프 단편의 함유량을 지표로 하는 스크리닝 방법에 유용하다. 이러한 스크리닝은 피검 물질의 존재하, 발현 벡터 등에 의해 제조한 재조합의 콜라게나제(정제 또는 부분 정제품)를 이 효소의 기질(콜라겐)과의 결합을 가능하게 하는 조건하(예를 들면 0.1 M 인산 완충액 pH 7.4, 실온)에서 유지하여, 피검 물질이 이 효소의 기질의 결합을 저해하는지의 여부를 조사하는 것, 즉 콜라겐 네오에피토프 단편을 정량한다. 이때 피검 물질은 펩티드, 단백질, 비펩티드성 화합물, 합성 화합물(저분자 화합물 등), 발효 생산물, 세포 추출액, 식물 추출액, 동물 조직 추출액 등 중 어느 것일 수도 있다. 또한, 이들을 포함하는 시료일 수도 있다.
스크리닝에 의해, 콜라게나제 저해제로서 선별된 후보 물질은 콜라게나제가 관여하는 것으로 알려져 있는 질환(예를 들면 변형성 관절증, 암을 비롯한 증식성 질환, 골다공증, 알츠하이머병, 고혈압증)의 예방ㆍ치료제가 될 수 있는 것이다.
또한, 본 발명의 모노클로날 항체나 면역 어세이는 생체 시료에 포함되는 콜라겐 네오에피토프 단편의 함유량을 측정하는 공정을 포함하는 질환 환자 선별 방법으로 유용하다. 예를 들면, 본 발명의 면역 어세이는 환자로부터의 생체 시료(임상 샘플에 있어서 일반적으로 시험되는 임의의 생물학적 액체. 예를 들면, 혈액, 뇨, 타액 및 땀 등의 체액 및 세포 및/또는 조직의 추출물 및 상청을 포함함) 중의 콜라겐 에피토프 단편의 함유량을 측정할 수 있다. 또한, 생체 시료는 환자에 대한 위험 없이 용이하게 얻어지며, 측정은 간단 및 저렴하다. 따라서, 콜라겐 네오에피토프 단편의 함유량이 진행도의 지표가 될만한 질환(예를 들면, 골다공증, 변형성 관절증, 만성 관절 류마티스 및 뼈의 양성 종양 및 악성 종양이나 연골 파괴가 생기는 다른 질환)에 대해서의 집단의 일상적인 진단에 가능하다. 또한, 본 발명의 모노클로날 항체나 면역 어세이는 상이한 타입의 변형성 관절증 또는 만성 관절 류마티스를 갖는 환자에 있어서 진행 중인 연골 콜라겐 분해의 정도를 결정하기 위해서 사용될 수 있다.
또한, 본 발명의 키트는 피검 시료 중의 콜라겐 네오에피토프 단편을 검출하기 위한 결합제로서 본 발명의 모노클로날 항체를 포함하는 것을 특징으로 한다. 이러한 키트는 더 일반적으로 어세이를 실행하기 위해서 필요한 1 개 이상의 구성 요소를 포함한다. 구성 요소는 표준품, 시약(희석액, 완충액 등), 용기 및/또는 장치일 수도 있다. 예를 들면, 키트내의 1 개의 용기는 콜라겐의 타입에 특이적인 서열(예를 들면, 서열 번호 11 내지 13)에 결합하는 모노클로날 항체를 포함할 수도 있다. 이러한 항체는 당업자에 공지된 임의의 지지 재료(예를 들면, 마이크로타이터 플레이트에 있어서의 웰이나 니트로셀룰로오스 등의 적절한 막)에 부착되어 제공될 수 있다. 또한, 어세이에 있어서 사용되어야하는 구성 요소(예를 들면, 시약 또는 완충액)를 포함할 수도 있다. 이러한 키트는 또한, 또는 항체 결합의 직접적 검출 또는 간접적 검출에서 적절한 상기한 물질에 의해 표지될 수 있다.
이하, 실시예를 나타내어 본 발명을 구체적으로 설명하지만, 본 발명은 하기실시예에 제한되는 것이 아니다. 또한, 항체 제작 수법으로서, 특별한 언급이 없는 한, 문헌[Immunochemistry in Practice(블랙웰 사이언티픽 퍼블리케이션즈)]에 기재되어 있는 방법을 이용하였다. 또한, 유전자 공학적 수법으로서, 특별한 언급이 없는 한, 문헌[Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 2nd Edition(콜드 스프링 하버 래보래토리)]에 기재되어 있는 방법을 이용하였다.
<실시예 1>
콜라겐 네오에피토프 항체 제작
(1) 항원의 면역:
Gly-Pro-Hyp-Gly-Pro-Gln-Gly(서열 번호: 2)로 나타내는 히드록시프롤린을 포함하는 네오에피토프 펩티드를 합성하였다(그라이너 바이오-원(Greiner Bio-one)사 제조). 합성 네오에피토프 펩티드 10 mg을 1 ml의 5 mM EDTA를 포함하는 0.1 M 인산 완충액(pH 6.0)에 용해한 것과, 10 mg의 자이언트 키홀 림펫츠(giant keyhole limpets) 헤모시아닌(말레이미드화 KLH, 피어스(PIERCE)사 제조)을 1 ml의 정제수에 용해한 것을 혼합하여, 실온에서 4시간, 추가로 4 ℃에서 밤새 반응시켰다. 상기한 혼합액을 증류수에 대하여 투석한 후에, 동결 건조하여, 네오에피토프 펩티드-KLH 복합체 13 mg을 얻었다.
이 펩티드-KLH 복합체 0.1 mg을 프로인트 완전 아쥬반트와 함께 4주간 A/J Jms Slc 암컷 마우스 7 마리에 복강내 투여하고, 첫 회 면역으로 하였다. 그 후, 21일 후, 42일 후 및 63일 후에 펩티드-KLH 복합체 0.1 mg을 프로인트 불완전 아쥬반트와 함께 추가 면역하고, 추가로 71일 후에 펩티드-KLH 복합체 0.1 mg을 생리 식염수 0.1 ml에 현탁한 용액을 복강내 투여하여, 최종 면역으로 하였다.
(2) 네오에피토프 펩티드의 비오틴 표지:
합성 네오에피토프 펩티드 0.2 mg을 0.4 ml의 5 mM EDTA를 포함하는 0.1 M 인산 완충액(pH 6.0)에 용해한 것과, 0.60 mg의 PEO-말레이미드 활성화 비오틴(피어스사 제조)을 0.1 ml의 증류수에 용해한 것을 혼합하여, 실온에서 2시간 반응 후에 역상 HPLC로 비오틴 표지 네오에피토프 펩티드를 정제하였다.
(3) 하이브리도마의 제작:
최종 면역 3일 후에 비장을 적출하고, 비장 세포를 회수하였다. 비장 세포와 마우스 미엘로마 세포(p3×63-Ag8. U1, 도쿄 슈류 켄큐죠)를 50 %의 폴리에틸렌글리콜 4000을 이용하여 융합시켜, 히포크산틴, 아미노프테린 및 티미딘을 포함하는 배지에서 선택하였다.
(4) 네오에피토프 항체의 선택:
세포 융합 10일 후에 특이 항체 생산 세포의 스크리닝을 이하에 설명하는 엘리사를 이용하여 행하였다. 384 웰 마이크로타이터 플레이트(눈크사 제조)의 각 웰에 0.35 ㎍의 항마우스 IgG 항체(시바야기사 제조)를 포함하는 트리스 완충액(50 mM 트리스(Tris)-HCl, pH 7.5) 35 ㎕를 가하여 4 ℃에서 16시간 고정하였다. 이들 웰을 90 ㎕의 세정액(0.01 % 트윈(Tween) 20을 포함하는 생리 식염수)으로 1 회 세정한 후, 블록에이스(다이니폰 세야꾸샤 제조)를 90 ㎕ 가하고 실온에서 2시간 방치하여, 블록킹을 행하였다(항마우스 IgG 항체 고상화 플레이트). 각 웰을 90 ㎕의 세정액으로 1 회 세정한 후, 15 ㎕의 하이브리도마 배양 상청을 포함하는 10 ㎕의 완충액 A(0.5 % 소 혈청 알부민, 0.01 % 트윈 80, 0.05 % 프로클린(Proclin) 150, 0.15 M NaCl을 포함하는 50 mM 트리스 완충액, pH 7.4) 및 0.05 ng의 비오틴 표지 네오에피토프 펩티드와 2 ng의 스트렙타비딘(Streptavidin)-HRP(피어스사 제조)를 포함하는 10 ㎕의 완충액 A를 혼합하여, 4 ℃에서 16시간 반응시켰다.
다음으로 각 웰을 90 ㎕의 세정액으로 3 회 세정한 후에, 25 ㎕의 TMB-서브스트레이트 크로모겐(Substrate Chromogen)(다코사 제조)을 첨가하고 실온에서 30분간 발색시킨 후에, 25 ㎕의 0.05 M 황산을 첨가하여 반응을 정지하고, 450 nm에 있어서의 흡광도를 측정하였다.
스크리닝 결과로부터, 히드록시프롤린을 포함하는 네오에피토프 펩티드와 반응하는 하이브리도마 클론 9 개 중, 히드록시프롤린을 포함하지 않는 네오에피토프 펩티드와도 친화성을 나타낸 하이브리도마 클론을 3 개 선택하였다. 획득된 클론 중, 수산화의 유무에 상관없이 네오에피토프 펩티드에 대하여 강한 친화성을 나타내고, 또한 상기 네오에피토프 펩티드와의 결합이 콜라게나제 소화한 II형 콜라겐에 의해서 저해되는 클론을 1 개 선택하여, 20A10으로 명명하였다. 20A10의 아이소 타입에 대해서 마우스 모노클로날 항체 아이소 타이핑 엘리사 키트(BD 바이오 사이언스사 제조)를 이용하여 조사한 결과, IgG1/κ이었다.
<실시예 2>
합성 펩티드를 이용한 네오에피토프 항체(20A10)의 에피토프 해석
네오에피토프 항체(20A10)의 네오에피토프 인식 특이성을 조사하기 위해서 이하의 아미노산 서열을 갖는 네오에피토프 펩티드를 이용하여 이하의 방법으로 행하였다.
Asp-Gly-Pro-Ser-Gly-Ala-Glu-Gly-Pro-HyP-Gly-Pro-Gln-Gly(서열 번호 20으로 나타나는 아미노산 서열의 962-975위치에 해당, 서열 번호: 14)
Gly-Pro-Gln-Gly(972-975위치에 해당, 서열 번호: 15)
Gly-Pro-Pro-Gly-Pro-Gln-Gly-Leu-Ala-Gly-Gln-Arg(서열 번호 20으로 나타나는 아미노산 서열의 969-980위치에 해당, 서열 번호: 16)
Gly-Glu-Pro-Gly-Asp-Asp-Gly-Pro-Ser-Gly-Ala-Glu-Gly-Pro-HyP-Gly-Pro-Gln-Gly(서열 번호 20으로 나타나는 아미노산 서열의 957-975위치에 해당, 서열 번호: 17)
Gly-Glu-Pro-Gly-Asp-Asp-Gly-Pro-Ser-Gly-Ala-Glu-Gly-Pro-Pro-Gly-Pro-Gln-Gly(서열 번호 20으로 나타나는 아미노산 서열의 957-975위치에 해당, 서열 번호: 18)
96 웰 마이크로타이터 플레이트(눈크사 제조)에 1.5 ㎍의 항마우스 IgG 항체(시바야기사 제조)를 포함하는 트리스 완충액(50 mM 트리스-HCl, pH 7.5)을 150 ㎕ 가하여 4 ℃에서 밤새 고정하였다. 각 웰을 0.3 ml의 세정액(0.01 % 트윈 20을 포함하는 생리 식염수)으로 1 회 세정한 후, 블록에이스(다이니폰 세야꾸샤 제조)를 0.3 ml 가하고 실온에서 2시간 방치하여 블록킹을 행하였다.(항마우스 IgG 항체 고상화 플레이트) 각 웰을 0.3 ml의 세정액으로 1 회 세정한 후, 0.001-125 μM의 상기한 각 네오에피토프 펩티드를 포함하는 50 ㎕의 완충액 A와 0.1 ng의 비오틴 표지 네오에피토프 펩티드(서열 번호: 2)와 4 ng의 스트렙타비딘-HRP를 포함하는 50 ㎕의 완충액 A 및 0.5 ng의 네오에피토프 항체(20A10)를 포함하는 50 ㎕의 완충액 A를 각각 혼합하고, 4 ℃에서 16시간 반응시켰다. 다음으로 각 웰을 0.3 ml의 세정액으로 3 회 세정한 후에, 0.1 ml의 TMB-서브스트레이트 크로모겐을 첨가하여 실온에서 30분간 발색시키고, 0.1 ml의 0.05 M 황산으로 반응을 정지하여, 450 nm에 있어서의 흡광도를 측정하였다.
그 결과, 항네오에피토프 항체 20A10과의 결합에는 네오에피토프 펩티드의 975번째의 글리신 잔기의 카르복시 말단이 필수인 것 및 이 말단으로부터 상류 5잔기 이상이 필수이었다(도 2의 상단의 그래프 및 하단의 표).
또한, 19잔기를 포함하는 II형 콜라겐의 C말단측의 네오에피토프 부분의 펩티드에서, 971위가 히드록시프롤린인 펩티드 및 프롤린인 펩티드를 이용한 경합 면역 어세이을 상기한 방법에 따라서 행하였다. 그 결과, 비수산화체의 교차 반응성은 91 %이고, 말단으로부터 상류 5번째의 프롤린 잔기의 수산화의 유무에는 거의 영향을 받지 않는 것이 확인되었다(도 2의 중단의 그래프 및 하단의 표). 인간 연골 콜라겐에 있어서 971번째의 프롤린 잔기는 81 %의 비율로 수산화 수식을 받고 있는 예가 보고되어 있다. 또한, 선행 기술로서 보고가 있는 네오에피토프 항체의 9A4는 동일한 위치의 프롤린의 수산화체에 대한 친화성이 비수산화체에 비교하여 90배 이상 낮은 것이 보고되어 있다(문헌[다운(Downs) JT 등, Journal of Immunological methods 247(2001) 25-34]). 이에 비하여, 20A10은 비수산화체, 수산화체 중 어느 것에 있어서도 동일한 친화성으로 결합할 수 있기 때문에, 네오에피토프 단편의 검출 감도는 높고, 수산화 수식의 비율이 변화하더라도 정확하게 정량하는 것이 가능하다고 말할 수 있다.
<실시예 3>
네오에피토프 항체(20A10)의 콜라겐의 타입에 의한 특이성 평가
인간 I형, II형 또는 III형 콜라겐 용액(콘드렉스(Chondrex)사 제조) 10 ㎍/10 ㎕에 2×효소 반응 버퍼(0.3 M NaCl, 10 mM CaCl2, 0.005 % Brij 35를 포함하는 50 mM 트리스 완충액, pH 7.6)를 10 ㎕ 첨가하여 중화하고, 인간 활성화 MMP13(인간 Pro-MMP13(칼바이오켐(Calbiochem)사 제조)을 1 mM APMA에서 37 ℃, 2시간 인큐베이트하여 활성화한 것) 0.2 ㎍을 첨가하여 37 ℃에서 밤새 반응시켰다. 그 후, 정지액(EDTA, 최종 농도 5 mM)을 가하여 천연형 네오에피토프 용액으로 하였다.
384 웰 마이크로타이터 플레이트(눈크사 제조)에 0.35 ㎍의 항마우스 IgG-Fc 항체(잭슨 이뮤노 리서치(Jackson Immuno Research)사 제조)를 포함하는 트리스 완충액(50 mM 트리스-HCl, pH 7.5)을 35 ㎕ 가하여 4 ℃에서 밤새 고정하였다. 각 웰을 90 ㎕의 세정액(0.01 % 트윈 20을 포함하는 생리 식염수)으로 1 회 세정한 후, 블록에이스(다이니폰 세야꾸샤 제조)를 0.1 ml 가하고 실온에서 2시간 방치하여 블록킹을 행하였다.(항마우스 IgG 항체 고상화 플레이트)
각 웰을 90 ㎕의 세정액으로 1 회 세정한 후, 6.4-250 nM의 천연형 네오에피토프 용액을 포함하는 10 ㎕의 완충액 A와 1 ng/ml의 비오틴 표지 네오에피토프 펩티드(서열 번호: 2)와 200 ng/ml의 스트렙타비딘-HRP를 포함하는 10 ㎕의 완충액 A 및, 15 ng/ml의 네오에피토프 항체(20A10)를 포함하는 10 ㎕의 완충액 A를 각각 혼합하여, 4 ℃에서 16시간 반응시켰다.
다음으로 각 웰을 90 ㎕의 세정액으로 3 회 세정한 후에, 25 ㎕의 TMB-서브스트레이트 크로모겐(다코사 제조)을 첨가하고 실온에서 30분간 발색시킨 후에, 25 ㎕의 0.05 M 황산을 첨가하여 반응을 정지하고, 450 nm에 있어서의 흡광도를 측정하였다.
그 결과, 항네오에피토프 항체 20A10은 MMP13 미소화된 콜라겐과는 반응하지 않지만, 네오에피토프 말단을 포함하는 MMP13 소화 콜라겐과는 특이적으로 반응하는 것이 확인되었다. 또한, 20A10은 I형, II형 또는 III형 콜라겐의 어느 쪽의 네오에피토프와도 거의 동등한 친화성을 갖고 결합하는 것을 확인할 수 있었다.(도 3) 따라서, 해당 항체는 대량의 미소화 콜라겐이 공존하더라도 백그라운드가 되지 않고, 고감도로 콜라겐의 소화 단편을 검출할 수 있기 때문에, 콜라게나제 활성을 정확하게 정량할 수 있다. 또한, 샌드위치 항체(캡쳐(capture) 항체)로서 I형 또는 III형 콜라겐의 특이적인 부위를 인식할 수 있는 항체와 조합함으로써 I형 및 III형 콜라겐의 분해도 측정하는 것이 가능하다.
<실시예 4>
II 형 콜라겐 특이적 네오에피토프 측정계의 구축
II형 콜라겐의 측정을 행하기 위해서, C말단측에 네오에피토프를 갖는 II형 콜라겐 네오에피토프의 일부(서열 번호 20으로 나타나는 아미노산 서열의 957-965위에 상당)에 해당하는 Gly-Glu-Pro-Gly-Asp-Asp-Gly-Pro-Ser(서열 번호 12)의 합성 펩티드를 면역원으로 하여, 아미노 말단에 시스테인 링커 부가, 카르복실 말단에 아미드화를 실시하였다. 이 합성 펩티드 2.1 mg을 1 ml의 5 mM EDTA를 포함하는 0.1 M 인산 완충액(pH 6.0)에 용해한 것과, 8 mg의 자이언트 키홀 림펫츠 헤모시아닌(말레이미드화 KLH, 피어스사 제조)을 3 ml의 5 mM EDTA를 포함하는 0.1 M 인산 완충액(pH 6.0)에 용해한 것과 혼합하여, 실온에서 3시간 반응시켰다.
상기한 혼합액을 증류수에 대하여 투석한 후에, 동결 건조하여, II형 콜라겐 특이적 내부 서열 펩티드-KLH 복합체 8 mg을 얻었다. 이 펩티드-KLH 복합체 0.004 mg을 프로인트 완전 아쥬반트와 함께 4주간 A/J Jms Slc 및 Balb/c 암컷 마우스 각 4 마리에게 복강내 투여하여, 첫 회 면역으로 하였다.
그 후, 21일 후, 42일 후 및 63일 후에 펩티드-KLH 복합체 0.1 mg을 프로인트 불완전 아쥬반트와 함께 추가 면역하고, 추가로 71일 후에 펩티드-KLH 복합체 0.1 mg을 생리 식염수 0.1 ml에 현탁한 용액을 복강내 투여하여, 최종 면역으로 하였다. 합성 펩티드 0.2 mg을 0.1 ml의 5 mM EDTA를 포함하는 0.1 M 인산 완충액(pH 6.0)에 용해한 것과, 0.25 mg의 HPDP-비오틴(피어스사 제조)을 0.1 ml의 디메틸포름아미드에 용해한 것을 혼합하여, 4 ℃에서 밤새 반응한 후에 역상 HPLC로 비오틴 표지펩티드를 정제하였다.
최종 면역 3일 후에 비장을 적출하고, 비장 세포를 회수하였다.
비장 세포와 마우스 미엘로마 세포(p3×63-Ag8.U1, 도쿄 슈류 켄큐죠)를 50 %의 폴리에틸렌글리콜 4000을 이용하여 융합시키고, 히포크산틴, 아미노프테린 및 티미딘을 포함하는 배지에서 선택하였다. 세포 융합 10일 후에 특이 항체 생산 세포의 스크리닝을 이하에 설명하는 엘리사를 이용하여 행하였다. 384 웰 마이크로타이터 플레이트(눈크사 제조)의 각 웰에 0.35 ㎍의 항마우스 IgG 항체(시바야기사 제조)를 포함하는 트리스 완충액(50 mM 트리스-HCl, pH 7.5) 35 ㎕를 가하여 4 ℃에서 16시간 고정하였다. 이들 웰을 90 ㎕의 세정액(0.01 % 트윈 20을 포함하는 생리 식염수)으로 1 회 세정한 후, 블록에이스(다이니폰 세야꾸샤 제조)를 90 ㎕ 가하고 실온에서 2시간 방치하여, 블록킹을 행하였다.(항마우스 IgG 항체 고상화 플레이트) 각 웰을 90 ㎕의 세정액으로 1 회 세정한 후, 15 ㎕의 하이브리도마 배양 상청을 포함하는 10 ㎕의 완충액 A(0.5 % 소 혈청 알부민, 0.01 % 트윈 80, 0.05 % 프로클린 150, 0.15 M NaCl을 포함하는 50 mM 트리스 완충액, pH 7.4) 및 0.05 ng의 비오틴 표지 펩티드와 2 ng의 스트렙타비딘-HRP(피어스사 제조)를 포함하는 10 ㎕의 완충액 A를 혼합하여, 4 ℃에서 16시간 반응시켰다.
다음으로 각 웰을 90 ㎕의 세정액으로 3 회 세정한 후에, 25 ㎕의 TMB-서브스트레이트 크로모겐(다코사 제조)을 첨가하여 실온에서 30분간 발색시킨 후에, 25 ㎕의 0.05 M 황산을 첨가하여 반응을 정지하고, 450 nm에 있어서의 흡광도를 측정하였다. 스크리닝 결과로부터, II형 콜라겐의 면역원 펩티드(서열 번호 12)에 강한 친화성을 나타내지만, 그 밖의 타입의 콜라겐과는 반응하지 않는 하이브리도마 클론을 4 개 선택하였다. 획득된 클론 중, 천연 II형 콜라겐과 반응하고, I형, III형 콜라겐과는 반응하지 않는 클론을 1 개 선택하여, 6G4로 명명하였다. 6G4는 미변성 II형 콜라겐과는 반응하지 않고, 콜라게나제 소화 후의 변성 II형 콜라겐과 반응하였다.
샌드위치 엘리사법에 의한 II 형 콜라겐 네오에피토프 정량 측정계의 구축:
네오에피토프 및 콜라겐 타입 특이적 내부 서열을 포함하는 22잔기를 포함하는 합성 펩티드 Gly-Glu-Lys-Gly-Glu-Pro-Gly-Asp-Asp-Gly-Pro-Ser-Gly-Ala-Glu-Gly-Pro-Hyp-Gly-Pro-Gln-Gly(954-975위치에 상당, 서열 번호 19)를 검량 표준 펩티드로서 합성하였다. HRP 표지 20A10을 제조하였다. 즉, 20A10의 IgG 분획 1 mg을 포함하는 5 mM EDTA 함유 0.1 M 인산 완충액(pH 6.0) 0.5 ml에 0.1 M 머캅토에틸아민 수용액 0.05 ml를 가하여 37 ℃에서 1.5시간 반응시킨 후, PD-10 칼럼(GE 헬스케어사 제조)에 의한 겔 여과를 행하여 환원 IgG 분획을 분취하였다. 퍼옥시다제(Peroxidase)(고추냉이(Horse radish) 유래, 로슈(Roche)사 제조, HRP) 1 mg을 포함하는 5 mM EDTA 함유 0.1 M 인산 완충액(pH 6.0) 0.2 ml에 술포-SMCC(피어스사 제조)를 가하여 실온에서 2시간 반응시킨 후, PD-10 칼럼(GE 헬스케어사 제조)에 의한 겔 여과를 행하여 말레이미드화 HRP 분획을 분취하였다. 이것에 상기 20A10의 환원 IgG 분획을 가하여 4 ℃에서 하룻밤 반응시키고, 고속 겔 여과(5 mM EDTA 함유 0.1 M 인산 완충액, pH 6.0으로 평형화한 TSK-GEL G3000 칼럼(도소사 제조)을 부속한 LC-6A 시스템(시마즈사 제조))를 행하고 HRP 표지 20A10 분획 약 0.5 mg을 분취하였다. 96 웰 마이크로타이터 플레이트(눈크사 제조)의 각 웰에 1.5 ㎍의 II형 콜라겐 내부 서열 특이적 항체 6G4를 포함하는 트리스 완충액(50 mM 트리스-HCl, pH 7.5) 150 ㎕를 가하여 4 ℃에서 16시간 고정하였다. 이들 웰을 300 ㎕의 세정액(0.01 % 트윈 20을 포함하는 생리 식염수)으로 1 회 세정한 후, 블록에이스(다이니폰 세야꾸샤 제조)를 150 ㎕ 가하고 실온에서 2시간 방치하여, 블록킹을 행하였다. 각 웰을 300 ㎕의 세정액으로 1 회 세정한 후, 10-500 pM 표준 펩티드 또는 피검 시료를 포함하는 50 ㎕의 완충액 A(0.5 % 소 혈청 알부민, 0.01 % 트윈 80, 0.05 % 프로클린 150, 0.15 M NaCl을 포함하는 50 mM 트리스 완충액, pH 7.4) 및 0.05 ng의 HRP 표지 네오에피토프 항체 20A10을 포함하는 100 ㎕의 완충액 A를 혼합하여, 4 ℃에서 16시간 반응시켰다. 다음으로 각 웰을 300 ㎕의 세정액으로 3 회 세정한 후에, 100 ㎕의 TMB-서브스트레이트 크로모겐(다코사 제조)을 첨가하여 실온에서 30분간 발색시키고, 100 ㎕의 0.05 M 황산을 첨가하여 반응을 정지하고, 450 nm에 있어서의 흡광도를 측정하였다.
그 결과, 콜라게나제 소화한 II형 콜라겐에만 반응하고, 최저 검출 한계는 10 pM이었다.(도 4) 상술한 수산화체에 대한 친화성이 낮은 네오에피토프 항체 9A4와 상이하게 해당 항체 20A10은 비수산화체, 수산화체 중 어느 것에 있어서도 동일한 친화성으로 결합하는 점에서 측정값을 프롤린/수산화 프롤린 비율로 환산할 필요가 없고, 또한 수산화 수식의 영향을 받지 않고 네오에피토프 농도를 정확하게 정량하는 것이 가능하다.
<실시예 5>
시험관내 ( In vitro ) 콜라게나제 활성 측정계
5 ng/ml의 인간 II형 콜라겐 용액(콘드렉스사 제조)을 96 웰 맥시소프 플레이트(눈크사 제조)에 첨가하고, 4 ℃에서 밤새 인큐베이트한 후, 세정 버퍼(0.05 M 트리스-HCl, pH 7.6)로 2 회 세정하여 콜라겐 코팅 플레이트로 한다. 프리 인큐베이트용 플레이트(코스타사 제조)에 효소 반응 버퍼(0.3 M NaCl, 10 mM CaCl2, 0.005 % 브리즈(Brij) 35를 포함하는 50 mM 트리스 완충액, pH 7.6)와 인간 II형 콜라게나제의 일종인 인간 활성화 MMP13 및 MMP 저해제를 가하여 실온에서 30분간 프리 인큐베이트한 후, 효소 반응 용액 중의 콜라겐 네오에피토프량을 상기 실시예 4에서 설명한 샌드위치 엘리사계에 의해 측정하였다.
그 결과, 첨가한 MMP13의 용량 의존적으로 네오에피토프 측정값은 증대하고, 그의 MMP13에 의한 네오에피토프 생산은 MMP 저해제에 의해 용량 의존적으로 저해되었다.(도 5)
<실시예 6>
인간 연골 세포 배양계에 있어서의 콜라게나제 활성 측정계
10 ng/ml의 인간 II형 콜라겐 용액을 96 웰 배양 플레이트(스미또모 베이크라이트사 제조)에 첨가하고, 4 ℃에서 밤새 인큐베이트한 후, 배양 미디움(0.1 mg/ml BSA, ITS, 50 μM L-아스코르브산을 포함하는 DMEM 배지)에서 1 회 세정하여 콜라겐 코팅 플레이트로 한다.
정상 인간 유래 연골 세포(콘드렉스 사)를 코팅 플레이트에 웰당 4×104 개 파종하고, 배양 미디움을 이용하여 37 ℃, 5 % CO2 조건하에서 배양한다. 1일 후에 배양액을 교환하고, 1 ng/ml 인간 인터루킨 1β(젠자임사(Genzyme) 제조) 및 10 ng/ml 온코스타틴(Oncostatin) M(시그마(Sigma)사 제조)과 피검 대상의 MMP 저해제를 여러 가지 농도로 첨가하여 추가로 2일간 배양한다. 4일 후에 반응 정지액(EDTA, 최종 농도 5 mM)을 첨가한 후 배양 상청을 회수하고, 이 중에 포함되는 콜라겐 네오에피토프 농도를 상기 실시예 4에 기재한 샌드위치 엘리사계에 의해 측정함으로써, MMP 저해제의 활성을 측정하였다.
그 결과, 배양 연골 세포로부터 IL-1β 자극에 의해 MMP13 발현이 유도되어 II형 콜라겐 분해를 촉진하고, MMP 저해제는 용량 의존적으로 연골 세포에 의한 콜라겐 분해를 저해하고 있는 것이 확인되었다.(도 6) 이 점에서, 본 측정계는 피검 대상의 MMP 저해제의 측정에 유용한 것을 알 수 있다.
<실시예 7>
20A10의 아미노산 서열의 해석
수립된 하이브리도마 세포로부터 RN이지 미니 키트(RNeasy Mini Kit)(퀴아젠(QIAGEN)사 제조)를 이용하여, RNA의 추출을 행하였다. 추출한 RNA를 1 ㎍으로부터 cDNA 말단의 고속 증폭용 5'RACE 시스템(5'RACE System for Rapid Amplification of cDNA Ends), 버전 2.0(인비트로젠사 제조)을 이용하여, DNA 단편의 증폭을 행하였다. 증폭된 단편은 TOPO TA 클로닝 키트(Cloning Kit)(인비트로젠사 제조)에서 클로닝되고, 어플라이드 바이오시스템스 3130 유전자 분석기(Applied Biosystems 3130 Genetic Analyzer)(어플라이드 바이오시스템스사 제조)로 염기 서열을 해석하였다. 그에 따라, 가변 영역의 아미노산 서열을 특정하였다(도 7).
본 발명에 의해, I형, II형, III형 콜라겐의 콜라겐 타입별로 네오에피토프를 건강ㆍ영양 상태에 따라 변화되는 프롤린 수산화 수식의 영향을 받지 않고 정확하게 검출ㆍ정량할 수 있다. 특히 II형 콜라겐의 콜라게나제에 의한 절단은 연골 대사의 지표가 되어, 변형성 관절증 등의 연골 병변에 있어서는 병의 용태 진행이나 치료 효과를 평가하는 진단 방법이나 키트로서 유용하다. 또한, I형 콜라겐의 콜라게나제에 의한 절단은 전신의 결합 조직의 세포외 기질 대사의 지표가 되어, 각종 장기의 섬유화 진행이나 항섬유화 치료의 효과를 평가하는 진단 방법이나 키트로서 유용하다.
SEQUENCE LISTING <110> Shionogi&Co.,LTD <120> A collagen neoepitope antibody <130> 10P00078WO <160> 20 <170> PatentIn version 3.1 <210> 1 <211> 7 <212> PRT <213> Artificial <220> <223> collagen neopeptide <400> 1 Gly Pro Pro Gly Pro Gln Gly 1 5 <210> 2 <211> 7 <212> PRT <213> Artificial <220> <223> collagen neopeptide <220> <221> misc_feature <222> (3)..(3) <223> Hydroxyproline <400> 2 Gly Pro Xaa Gly Pro Gln Gly 1 5 <210> 3 <211> 141 <212> PRT <213> Artificial <220> <223> VH of Antibody 20A10 <400> 3 Phe Leu Met Ala Ala Ala Gln Gly Ile Gln Ala Gln Ile Gln Leu Val 1 5 10 15 Gln Ser Gly Pro Glu Leu Lys Glu Pro Gly Glu Thr Val Arg Ile Ser 20 25 30 Cys Lys Ala Ser Gly Tyr Thr Phe Thr Lys Tyr Gly Ile Asn Trp Val 35 40 45 Lys Gln Ala Pro Gly Lys Gly Leu Glu Trp Met Ala Trp Ile Asn Thr 50 55 60 Tyr Ser Gly Met Thr Thr Tyr Ala Asp Asp Phe Lys Gly Arg Phe Ala 65 70 75 80 Phe Ser Leu Glu Thr Ser Ala Asn Thr Ala Tyr Leu Gln Ile Asn His 85 90 95 Leu Lys Asn Asp Asp Thr Ala Thr Tyr Phe Cys Ala Arg 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<223> collagen neoepitope <220> <221> MISC_FEATURE <222> (18)..(18) <223> Hydroxyproline <400> 19 Gly Gln Leu Gly Gln Pro Gly Ala Ala Gly Pro Ser Gly Ala Gln Gly 1 5 10 15 Pro Xaa Gly Pro Gln Gly 20 <210> 20 <211> 975 <212> PRT <213> Homo sapiens <400> 20 Met Ile Arg Leu Gly Ala Pro Gln Thr Leu Val Leu Leu Thr Leu Leu 1 5 10 15 Val Ala Ala Val Leu Arg Cys Gln Gly Gln Asp Val Gln Glu Ala Gly 20 25 30 Ser Cys Val Gln Asp Gly Gln Arg Tyr Asn Asp Lys Asp Val Trp Lys 35 40 45 Pro Glu Pro Cys Arg Ile Cys Val Cys Asp Thr Gly Thr Val Leu Cys 50 55 60 Asp Asp Ile Ile Cys Glu Asp Val Lys Asp Cys Leu Ser Pro Glu Ile 65 70 75 80 Pro Phe Gly Glu Cys Cys Pro Ile Cys Pro Thr Asp Leu Ala Thr Ala 85 90 95 Ser Gly Gln Pro Gly Pro Lys Gly Gln Lys Gly Glu Pro Gly Asp Ile 100 105 110 Lys Asp Ile Val Gly Pro Lys Gly Pro Pro Gly Pro Gln Gly Pro Ala 115 120 125 Gly Glu Gln Gly Pro Arg Gly Asp Arg Gly Asp Lys Gly Glu Lys Gly 130 135 140 Ala Pro Gly Pro Arg Gly Arg Asp Gly Glu Pro Gly Thr Pro Gly Asn 145 150 155 160 Pro Gly Pro Pro Gly Pro Pro Gly Pro Pro Gly Pro Pro Gly Leu Gly 165 170 175 Gly Asn Phe Ala Ala Gln Met Ala Gly Gly Phe Asp Glu Lys Ala Gly 180 185 190 Gly Ala Gln Leu Gly Val Met Gln Gly Pro Met Gly Pro Met Gly Pro 195 200 205 Arg Gly Pro Pro Gly Pro Ala Gly Ala Pro Gly Pro Gln Gly Phe Gln 210 215 220 Gly Asn Pro Gly Glu Pro Gly Glu Pro Gly Val Ser Gly Pro Met Gly 225 230 235 240 Pro Arg Gly Pro Pro Gly Pro Pro Gly Lys Pro Gly Asp Asp Gly Glu 245 250 255 Ala Gly Lys Pro Gly Lys Ala Gly Glu Arg Gly Pro Pro Gly Pro Gln 260 265 270 Gly Ala Arg Gly Phe Pro Gly Thr Pro Gly Leu Pro Gly Val Lys Gly 275 280 285 His Arg Gly Tyr Pro Gly Leu Asp Gly Ala Lys Gly Glu Ala Gly Ala 290 295 300 Pro Gly Val Lys Gly Glu Ser Gly Ser Pro Gly Glu Asn Gly Ser Pro 305 310 315 320 Gly Pro Met Gly Pro Arg Gly Leu Pro Gly Glu Arg Gly Arg Thr Gly 325 330 335 Pro Ala Gly Ala Ala Gly Ala Arg Gly Asn Asp Gly Gln Pro Gly Pro 340 345 350 Ala Gly Pro Pro Gly Pro Val Gly Pro Ala Gly Gly Pro Gly Phe Pro 355 360 365 Gly Ala Pro Gly Ala Lys Gly Glu Ala Gly Pro Thr Gly Ala Arg Gly 370 375 380 Pro Glu Gly Ala Gln Gly Pro Arg Gly Glu Pro Gly Thr Pro Gly Ser 385 390 395 400 Pro Gly Pro Ala Gly Ala Ser Gly Asn Pro Gly Thr Asp Gly Ile Pro 405 410 415 Gly Ala Lys Gly Ser Ala Gly Ala Pro Gly Ile Ala Gly Ala Pro Gly 420 425 430 Phe Pro Gly Pro Arg Gly Pro Pro Gly Pro Gln Gly Ala Thr Gly Pro 435 440 445 Leu Gly Pro Lys Gly Gln Thr Gly Glu Pro Gly Ile Ala Gly Phe Lys 450 455 460 Gly Glu Gln Gly Pro Lys Gly Glu Pro Gly Pro Ala Gly Pro Gln Gly 465 470 475 480 Ala Pro Gly Pro Ala Gly Glu Glu Gly Lys Arg Gly Ala Arg Gly Glu 485 490 495 Pro Gly Gly Val Gly Pro Ile Gly Pro Pro Gly Glu Arg Gly Ala Pro 500 505 510 Gly Asn Arg Gly Phe Pro Gly Gln Asp Gly Leu Ala Gly Pro Lys Gly 515 520 525 Ala Pro Gly Glu Arg Gly Pro Ser Gly Leu Ala Gly Pro Lys Gly Ala 530 535 540 Asn Gly Asp Pro Gly Arg Pro Gly Glu Pro Gly Leu Pro Gly Ala Arg 545 550 555 560 Gly Leu Thr Gly Arg Pro Gly Asp Ala Gly Pro Gln Gly Lys Val Gly 565 570 575 Pro Ser Gly Ala Pro Gly Glu Asp Gly Arg Pro Gly Pro Pro Gly Pro 580 585 590 Gln Gly Ala Arg Gly Gln Pro Gly Val Met Gly Phe Pro Gly Pro Lys 595 600 605 Gly Ala Asn Gly Glu Pro Gly Lys Ala Gly Glu Lys Gly Leu Pro Gly 610 615 620 Ala Pro Gly Leu Arg Gly Leu Pro Gly Lys Asp Gly Glu Thr Gly Ala 625 630 635 640 Ala Gly Pro Pro Gly Pro Ala Gly Pro Ala Gly Glu Arg Gly Glu Gln 645 650 655 Gly Ala Pro Gly Pro Ser Gly Phe Gln Gly Leu Pro Gly Pro Pro Gly 660 665 670 Pro Pro Gly Glu Gly Gly Lys Pro Gly Asp Gln Gly Val Pro Gly Glu 675 680 685 Ala Gly Ala Pro Gly Leu Val Gly Pro Arg Gly Glu Arg Gly Phe Pro 690 695 700 Gly Glu Arg Gly Ser Pro Gly Ala Gln Gly Leu Gln Gly Pro Arg Gly 705 710 715 720 Leu Pro Gly Thr Pro Gly Thr Asp Gly Pro Lys Gly Ala Ser Gly Pro 725 730 735 Ala Gly Pro Pro Gly Ala Gln Gly Pro Pro Gly Leu Gln Gly Met Pro 740 745 750 Gly Glu Arg Gly Ala Ala Gly Ile Ala Gly Pro Lys Gly Asp Arg Gly 755 760 765 Asp Val Gly Glu Lys Gly Pro Glu Gly Ala Pro Gly Lys Asp Gly Gly 770 775 780 Arg Gly Leu Thr Gly Pro Ile Gly Pro Pro Gly Pro Ala Gly Ala Asn 785 790 795 800 Gly Glu Lys Gly Glu Val Gly Pro Pro Gly Pro Ala Gly Ser Ala Gly 805 810 815 Ala Arg Gly Ala Pro Gly Glu Arg Gly Glu Thr Gly Pro Pro Gly Pro 820 825 830 Ala Gly Phe Ala Gly Pro Pro Gly Ala Asp Gly Gln Pro Gly Ala Lys 835 840 845 Gly Glu Gln Gly Glu Ala Gly Gln Lys Gly Asp Ala Gly Ala Pro Gly 850 855 860 Pro Gln Gly Pro Ser Gly Ala Pro Gly Pro Gln Gly Pro Thr Gly Val 865 870 875 880 Thr Gly Pro Lys Gly Ala Arg Gly Ala Gln Gly Pro Pro Gly Ala Thr 885 890 895 Gly Phe Pro Gly Ala Ala Gly Arg Val Gly Pro Pro Gly Ser Asn Gly 900 905 910 Asn Pro Gly Pro Pro Gly Pro Pro Gly Pro Ser Gly Lys Asp Gly Pro 915 920 925 Lys Gly Ala Arg Gly Asp Ser Gly Pro Pro Gly Arg Ala Gly Glu Pro 930 935 940 Gly Leu Gln Gly Pro Ala Gly Pro Pro Gly Glu Lys Gly Glu Pro Gly 945 950 955 960 Asp Asp Gly Pro Ser Gly Ala Glu Gly Pro Pro Gly Pro Gln Gly 965 970 975

Claims (15)

  1. 콜라겐 네오에피토프 단편에 특이적으로 결합하여, 서열 번호 20으로 나타나는 아미노산 서열의 962위치 내지 975위치에 결합하는 항체이며, 해당 에피토프에 포함되는 프롤린이 비수산화체인 경우에 있어서의 결합 친화성과, 수산화체인 경우에 있어서의 결합 친화성이 실질적으로 동일한 모노클로날 항체.
  2. 제1항에 있어서, 제1항 기재의 프롤린이 서열 번호 20으로 나타나는 아미노산 서열에 있어서 971위치의 프롤린인 모노클로날 항체.
  3. 제1항에 있어서, 에피토프가 서열 번호 20으로 나타나는 아미노산 서열의 957위치 내지 975위치의 영역에 존재하는 모노클로날 항체.
  4. 제2항에 기재된 항체이며, 서열 번호 2로 나타나는 아미노산 서열을 포함하는 펩티드에 대한 상기 항체의 면역 반응이 저해되도록 서열 번호 14, 17 또는 18로 나타나는 아미노산 서열을 포함하는 펩티드를 경합시키는 면역 어세이(assay)에 있어서, 상기 면역 반응의 50 % 저해 농도가 어느 쪽의 펩티드에 있어서도 0.04 μM 이하인 항체.
  5. 1) 상보성 결정 영역에 하기 아미노산 서열을 포함하는 중쇄 가변 영역; KYGIN(서열 번호 5), WINTYSGMTT YADDFKG(서열 번호 6) 및 SLGYDYGGFAY(서열 번호 7) 및 2) 상보성 결정 영역에 하기 아미노산 서열을 포함하는 경쇄 가변 영역; RSGQTLVHDN ENTYFH(서열 번호 8), KISNRFS(서열 번호 9) 및 SQNTHVPFT(서열 번호 10)
    를 갖는 모노클로날 항체.
  6. 1) 서열 번호 3의 아미노산 서열을 갖는 중쇄 가변 영역 및 2) 서열 번호 4의 아미노산 서열을 갖는 경쇄 가변 영역을 갖는 모노클로날 항체.
  7. 제1항 내지 제6항 중 어느 한 항에 기재한 모노클로날 항체이며, 라벨된 모노클로날 항체.
  8. 제1항 내지 제6항 중 어느 한 항에 기재한 모노클로날 항체를 이용한 면역 어세이.
  9. 제1항 내지 제6항 중 어느 한 항에 기재한 모노클로날 항체를 이용한 콜라겐 네오에피토프 단편의 함유량의 측정 방법.
  10. 제1항 내지 제6항 중 어느 한 항에 기재한 모노클로날 항체를 이용하여 측정한 콜라겐 네오에피토프 단편의 함유량을 지표로 하는 콜라게나제 활성의 측정 방법.
  11. 제1항 내지 제6항 중 어느 한 항에 기재한 모노클로날 항체를 이용하여 측정한 콜라겐 네오에피토프 단편의 함유량을 지표로 하는 콜라게나제 저해제의 스크리닝 방법.
  12. 제1항 내지 제6항 중 어느 한 항에 기재한 모노클로날 항체를 이용하여 생체 시료에 포함되는 콜라겐 네오에피토프 단편의 함유량을 측정하는 공정을 포함하는, 콜라게나제가 관여하는 질환의 환자 선별 방법.
  13. 제1항 내지 제6항 중 어느 한 항에 기재한 모노클로날 항체를 포함하는 키트.
  14. 제1항 내지 제6항 중 어느 한 항에 기재한 모노클로날 항체를 이용하여 생체 시료에 포함되는 콜라겐 네오에피토프 단편의 함유량을 측정하는 공정을 포함하는, 콜라게나제가 관여하는 질환의 진단 방법.
  15. 제1항 내지 제6항 중 어느 한 항에 있어서, 콜라게나제가 관여하는 질환의 진단에 사용하기 위한 모노클로날 항체.
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