KR20010094652A - 인체 과립성 백혈구의 콜로니 자극인자를 분비하는 대장균 - Google Patents

Abstract

본 발명은, 카나마이신 저항유전자, 엔도자일라나제 분비신호서열, 연속된 6개의 히스티딘(histidine) 잔기를 포함한 13개의 아미노산으로 구성된 올리고펩타이드(oligopeptide)를 암호화하는 염기서열, 변형된 hG-CSF 유전자 및 Trc 프로모터를 포함하는 재조합 플라스미드 벡터, 전기 플라스미드 벡터로서 형질전환된 대장균 및 전기 대장균에서 분비되는 hG-CSF 융합단백질로부터 순수한 hG-CSF를 제조하는 방법을 제공한다. 본 발명에 의하면, 종래의 기술에 의하여 hG-CSF 단백질이 세포질 내에 응집하도록 생산되는 대장균에서 hG-CSF 단백질을 정제하는데 요구되는 세포질내 불용성 응집체를 가용화 및 재생하는 복잡한 공정이 요구되지 않고, 대량의 hG-CSF 융합단백질을 주변 세포질로 효율적으로 분비하게 하며, 비교적 간단한 공정을 통하여 전기 hG-CSF 융합단백질로부터 순수한 hG-CSF 단백질을 제조할 수 있으므로, 이들을 유효성분으로 하는 항암 보조치료제의 개발에 널리 이용할 수 있을 것이다.

Description

인체 과립성 백혈구의 콜로니 자극인자를 분비하는 대장균{Escherichia coli Strain Secreting Human Granulocyte Colony Stimulating Factor(G-CSF)}

본 발명은 인체에서 유래한 과립성 백혈구의 콜로니 자극인자(human Granulocyte-Colony Stimulating Factor, hG-CSF)를 생산하고 분비하는 대장균(E. coli)에 관한 것이다. 좀 더 구체적으로, 본 발명은 대장균 내에서 hG-CSF를 분비 하도록 설계된 재조합 플라스미드 및 hG-CSF를 분비하도록 전기 플라스미드로서 형질전환된 대장균 및 전기 형질전환된 대장균을 이용한 인체 과립성 백혈구의 콜로니 자극인자의 제조방법에 관한 것이다.

단구성 대식세포(macrophage), T-세포 및 섬유아세포와 같은 세포에서 생산되는 것으로 알려진 콜로니 자극인자(colony stimulating factor, CSF)는 정상적으로 생체내에서 광범위하게 분포되어 있다. CSF는 크게 과립성 백혈구의 콜로니 자극인자(G-CSF), 단구성 대식세포 콜로니 자극인자(GM-CSF) 및 과립성 백혈구-단구성 대식세포 콜로니 자극인자(GM-CSF)의 3가지로 구분되며, 이중 G-CSF는 조혈성 간세포가 증식 및 분화되어 일어나는 여러가지 혈구 생성에 매우 중요한 역할을 하는 단백질이며, 이의 주요 작용은 과립구 특히 외부 감염으로부터 생체를 보호하는데 중요한 역할을 하는 호중구(neutrophil)의 수적 증가를 촉진시키는 일이다. 증식성 종양에 대해 최근 널리 이용되고 있는 화학적 치료법은 종양의 성장을 억제하는 동시에 호중구 전구체의 성장 또한 억제하므로, 환자로부터 호중구 보호작용의 감소현상을 일으켜 심한 부작용을 유발하게 된다. G-CSF는 이러한 약물치료 환자들에게 투여되었을 때, 호중구의 수적 증가를 촉진시켜 감염성 질환을 예방하고 치료하는데 효과가 있는 것으로 알려졌다.

1986년 인체유래 G-CSF 유전자가 나가타(Nagata) 등에 의해 인체의 편평세포 암종 세포주 CHU-II로부터 분리되어 그 염기서열이 처음 밝혀졌고, 이의 COS 세포내에서의 발현이 보고되었다(참조: Nagata et al., Nature, 319:415-418(1986)). 인체유래 G-CSF(hG-CSF)는 30개의 분비 서열(signal peptide)을 갖는 174개의 아미노산으로 구성된 당단백질(glycoprotein)이다. 5개의 시스테인(cysteine)이 존재하며, 이 중 4개의 시스테인(Cys³⁶-Cys⁴², Cys⁶⁴-Cys⁷⁴)이 두 개의 황이중 결합(disulfide bond)을 형성하여 단백질 접힘(folding) 및 활성(activity)에 중요하게 관여하는 것으로 알려졌다(참조: Hill et al.,Proc. Natl. Acad. Sci.USA,90:5167-5171(1993)). hG-CSF는 N-당부가 반응(N-glycosylation)의 공통서열 (consensus suquence, Asn-X-Thr/Ser)은 존재하지 않으며, 133번 트레오닌에서 O-당부가 반응(O-glycosylation) 만이 존재한다. 그러나, 대장균에서 생성된 재조합 G-CSF가 자연상태의 G-CSF와 동일한 활성을 나타내는 것으로 알려져서, 당부가 반응이 G-CSF 활성에 필요하지는 않은 것으로 여겨지고 있다.

최근의 유전자 재조합 기술의 발달은 박테리아, 식물세포 및 동물세포에서 G-CSF의 생산을 가능하게 하여, 다음과 같은 연구결과 들이 보고되어 있다: 수자(Sauza) 등은 인체 방광암 세포주 5637로부터 cDNA를 분리하여 그의 염기서열을 결정하고, 이것이 대장균(E. coli)에서 발현됨을 보고하였다(참조: Souza et al.,Science, 232:61- (1986)); 일본 쥬가이사에서는 대장균, 식물세포 및 동물세포에서 hG-CSF의 생산에 관한 연구를 통하여 특허를 등록하였다(참조: 대한민국 특허 제 57582호); 일본 교와학꼬사에서는 hG-CSF의 유도체의 제작 및 미생물에서의 생산에 관한 특허를 등록하였다(참조: 대한민국 특허 제 114369호); 동아제약에서도 대장균 세포질내에 hG-CSF 생산에 관한 특허를 등록하였다(참조: 대한민국 특허 제 207951호). 이처럼 지금까지 알려진 대장균에서의 hG-CSF 생산방법은 모두 세포질 내에 생산하는 방법으로 대부분 세포질내 불용성 응집체(inclusion body) 형태로 생산한 다음, 다시 가용화(solubilization) 및 재생(renaturation)하는 과정을 통해 활성을 갖는 hG-CSF를 생산하는 방법을 사용하며, 일부 미량의 수용성(soluble) hG-CSF를 직접 분리할 수도 있으나, 수많은 대장균 유래 단백질 내에서 hG-CSF 단백질 활성을 갖는 분획을 얻어야 하기 때문에, 이 방법 역시 단백질 수율 면이나 생산비용 면에서 여러 가지 단점을 갖고 있다.

일반적으로, 대장균에서 주변 세포질로 분비되는 단백질은 분비 신호서열(secretion signal sequence)을 가지고 있는데, 세포질 밖으로 수송 가능한 모든 단백질은 모두 이 신호서열을 가지고 있으며, 이 신호서열은 주변 세포질에서 시그날 펩티데이즈(signal peptidase)에 의해 잘려지게 된다. 따라서, 이 특정 신호서열은 대장균에서 단백질을 분비하는데 있어 필수적인 것이다. 이에, 대장균에서 분비되지 않는 외래 단백질은 공지된 분비 신호서열(OmpA, OmpF, PelB, PhoA, SpA 등)을 외래 단백질의 N-말단에 연결하거나, 혹은 약간 변형된 신호서열을 연결하여 발현시킴으로써, 주변 세포질이나 배양액으로 분비시키고 있다.

이처럼 대장균에서 재조합 단백질을 주변세포질로 분비시키는 방법은 상술한 세포질 내에서 생산시키는 방법에 비해 다음과 같은 여러가지 장점을 가지고 있다: 첫째, 주변 세포질에는 세포질 내에 비해 상당히 적은 단백질이 존재하기 때문에 생산된 재조합 단백질의 고 순도 분리 및 정제가 용이하다(참조: Nossal, N.G. et al.,J. Biol. Chem., 241:3055-3062(1966)); 둘째, 주변 세포질로 분비된 재조합 단백질은 대부분의 단백질분해효소(protease)가 존재하는 세포질로부터 분리되기 때문에, 세포질 내의 단백질분해효소에 의한 분해를 방지할 수 있어, 재조합 단백질의 생산수율을 증가시킬 수 있다(참조: Meerman and Georgiou,Ann. N.Y. Acad. Sci., 721:292-302(1994)); 셋째, 주변 세포질은 세포질 내보다 더욱 산화된 환경이기 때문에 황이중결합(disulfide bond) 형성이 훨씬 용이하게 이루어지고, 결국 생산된 단백질의 올바른 접힘이 가능하여 불용성 응집체의 형성이 현저히줄어든다(참조: Hockney, TIBTECH, 12:456-463(1994)).

이 같은 장점을 지닌 주변 세포질로의 분비방법을 hG-CSF의 대장균에서 생산에 적용한 연구결과가 다음과 같이 보고되었다: 페레즈 등(Perez-Perez et al.)은 대장균에서 이용되는 분비신호서열 중의 하나인 OmpA를 이용하여 hG-CSF의 분비을 시도하였으나 전혀 분비가 일어나지 않았으며, 이를 해결하기 위하여 대장균에 존재하는 샤페론(chaperone) DnaK와 DnaJ 단백질을 동시에 발현시키는 시스템을 이용해서야 겨우 hG-CSF 단백질의 분비을 미량이나마 가능하게 하였다(참조: Perez-Perez et al.,Biochem. Biophys. Res. Commun.,210(2):524-529(1995)); 한국의 정봉현 박사팀은 또 다른 분비신호서열인 PelB를 이용하여 hG-CSF의 분비을 시도하였으나 전혀 분비가 되지 않았으며, 세포질 내에 불용성 응집체 형태로 축적되었다(참조: Chung et al.,J. Fermen. Bioengin.,85(4):443-446(1998)).

따라서, 세포질내 불용성 응집체를 가용화 및 재생하는 복잡한 공정이 요구되지 않는 비교적 간단한 공정을 통하여, 대량의 hG-CSF를 주변 세포질로 분비하는 기술을 개발하여야 할 필요성이 끊임없이 대두되었다.

이에, 본 발명자는 대장균에서 대량의 hG-CSF를 주변 세포질로 분비시키는 방법을 개발하고자 예의 노력한 결과, 고초균에서 유래한 엔도자일라나제 분비신호서열 및 연속된 6개의 히스티딘 잔기를 포함한 13개 아미노산으로 구성된 올리고펩타이드(oligopeptide)를 암호화하는 염기서열이 포한된 재조합 플라스미드로 형질전환된 대장균이 hG-CSF 단백질과 올리고펩타이드가 융합되어있는 hG-CSF 융합단백질을 효율적으로 분비하여, 전기 형질전환된 대장균을 이용하여 hG-CSF 단백질을 제조할 수 있음을 확인하고, 본 발명을 완성하게 되었다.

결국, 본 발명의 주된 목적은 대장균에서 hG-CSF 융합단백질을 효율적으로 분비하도록 설계된 재조합 플라스미드를 제공하는 것이다.

본 발명의 다른 목적은 전기 플라스미드를 이용하여 형질전환된 대장균을 제공하는 것이다.

본 발명의 또 다른 목적은 전기 균주를 이용하여 hG-CSF 단백질을 제조하는 방법을 제공하는 것이다.

도 1은 플라스미드 p19CSF에 삽입된 hG-CSF 유전자의 염기서열이다.

도 2은 플라스미드 p19CSFm의 제작과정 및 유전자 지도이다.

도 3은 플라스미드 p19CSFm에 삽입된 hG-CSF 유전자의 염기서열 및 암호화하는 아미노산 서열이다.

도 4는 플라스미드 pEDCSFm의 제작과정 및 유전자 지도이다.

도 5는 플라스미드 pEDCSFm에 삽입된 hG-CSF 유전자의 염기서열 및 아미노산 서열이다.

도 6은 플라스미드 pEDCSFmII의 제작과정 및 유전자 지도이다.

도 7은 플라스미드 pEDCSFmII에 삽입된 hG-CSF 유전자의 N-말단 염기서열 및 아미노산 서열이다.

도 8은 플라스미드 pEDCSFmII로 형질전환된 대장균 BL21(DE3)에서 생산된 hG-CSF 단백질을 SDS-PAGE 상에서 분석한 결과를 나타내는 전기영동 사진이다.

도 9는 플라스미드 pTrcSCSFmII의 제작과정 및 유전자 지도이다.

도 10은 플라스미드 pTrcSCSFmII에 삽입된 hG-CSF 유전자의 N-말단 염기서열및 아미노산 서열이다.

도 11은 플라스미드 pTrcKCSFmII의 제작과정 및 유전자 지도이다.

도 12는 플라스미드 pTHSCSFmII의 제작과정 및 유전자 지도이다.

도 13은 플라스미드 pTHCSFmII에 삽입된 hG-CSF 유전자의 N-말단 염기서열 및 아미노산 서열이다.

도 14는 플라스미드 pTHKCSFmII의 제작과정 및 유전자 지도이다.

도 15는 플라스미드 pTHKCSFmII로 형질전환된 대장균 MC4100에서 생산된 hG-CSF 단백질을 SDS-PAGE 상에서 분석한 결과를 나타내는 전기영동 사진이다.

본 발명의 대장균에서 hG-CSF 융합 단백질을 효율적으로 분비하도록 설계된 재조합 플라스미드는 카나마이신 저항유전자, 엔도자일라나제 분비신호서열, 연속된 6개의 히스티딘 잔기를 포함한 13개의 아미노산으로 구성된 올리고펩타이드 (oligopeptide)를 암호화하는 염기서열, 변형된 hG-CSF 유전자 및 Trc 프로모터를 포함하고, hG-CSF 단백질을 효율적으로 분비하는 대장균은 전기 플라스미드 벡터를 이용하여 대장균을 형질전환시켜서 제조되며, 니켈칼럼(Ni-column)과 단백질 분해효소를 이용하여 형질전환된 대장균으로부터 수득되는 hG-CSF 융합단백질로부터 순수한 hG-CSF 단백질을 제조한다.

이하, 본 발명을 보다 구체적으로 설명하고자 한다.

본 발명자들이 hG-CSF 융합단백질을 생산하고 주변 세포질로 분비하는 형질전환된 대장균을 제조하기 위하여 제조한 플라스미드 벡터 pTHKCSFmII는 hG-CSF 단백질을 암호화(coding)하는 cDNA, hG-CSF 단백질의 분비를 위한 엔도자일라나제 (endoxylanase) 분비 신호서열, 유도가능한 강력한 프로모터인 Trc 프로모터, 분비과정이 일어나지 않는 카나마이신 저항 유전자(kanamycin resistance gene) 및 엔도자일라나제 분비신호서열과 hG-CSF 단백질 사이에 위치하는 연속된 6개의 히스티딘 잔기가 있는 13개의 아미노산으로 구성된 올리고펩타이드(oligopeptide)를 암호화하는 염기서열를 포함한다: 이때, hG-CSF 단백질을 암호화(coding)하는 cDNA는 인간의 유방암세포(human breast carcinoma)의 cDNA 라이브러리(library)로 부터 얻어진 3번째 액손이 결여(deletion)되어 있는 hG-CSF cDNA와 합성된 3번째 액손의 재조합을 통하여 수득하고, 대장균에서 hG-CSF 단백질의 분비를 위해 고초균(Bacillussp.)에서 유래한 엔도자일라나제 분비 신호서열을 이용하며, 균주의 선별을 위하여 카나마이신 저항 유전자를 이용한다. 더욱이, hG-CSF 단백질이 대장균에서 분비될 때 발생하는 세포의 용해(lysis)를 방지하기 위하여, 엔도자일라나제 분비신호서열과 hG-CSF 단백질 사이에 연속된 6개의 히스티딘 잔기를 포함한 13개의 아미노산으로 구성된 올리고펩타이드(oligopeptide)를 암호화하는 염기서열을 삽입하였으며 그 아미노산 서열은 N'-Ala-Gly-Pro-His-His-His-His-His-His-His-Ile-Glu-Gly-Arg-C'(서열번호 1)이다.

다음으로, 대장균에 전기 제조된 플라스미드 벡터 pTHKCSFmII를 도입하고, 형질전환시켜 hG-CSF 융합단백질이 분비되는 재조합 대장균을 제조한다: 이때, 사용된 대장균 균주는 BL21(DE3), HB101, MC4100, W3110 및 XL1-Blue을 사용할 수 있으며, 가장 바람직하게는 MC4100을 사용한다. 전기 제조된 플라스미드 벡터 pTHKCSFmII로 형질전환된 대장균 MC4100을 대장균 MC4100/pTHKCSFmII (Escherichia coliMC4100/pTHKCSFmII)라 명명하고, 이를 2000년 3월 13일 국제기탁기관인 한국과학기술연구원 부설 생명공학연구소 유전자은행(KCTC)에 기탁번호 KCTC 0754BP로 기탁하였다.

끝으로, 니켈칼럼(Ni-column)과 단백질 분해효소를 이용하여 전기 균주로 부터 분비되는 hG-CSF 융합단백질로 부터 hG-CSF 단백질을 제조한다: 전기 균주는 hG-CSF 단백질의 N-말단에 연속된 6개의 히스티딘을 포함하는 13개의 아미노산으로 구성된 올리고펩타이드가 연결된 형태의 hG-CSF 융합단백질을 분비한다. 분비된 hG-CSF 융합단백질은 올리고펩타이드에 존재하는 연속된 6개의 히스티딘 잔기에 의해 니켈칼럼(Ni-column)으로 분리될 수 있고, 분리된 hG-CSF 융합단백질에 단백질 분해효소를 처리함으로써, 전기 올리고펩타이드를 절단하여 hG-CSF 단백질을 제조할 수 있다. 이때, 단백질 분해효소는 hG-CSF 단백질을 분해하지 않아야 하므로, 단백질 분해효소로 절단되는 올리고펩타이드의 C-말단의 아미노산 서열이 hG-CSF 단백질을 분해하지 않는 단백질 분해효소에 의하여 절단될 수 있도록 올리고펩타이드의 아미노산 서열을 구성해야만 한다. 그의 일 실시예로서, 본 발명에서는 아미노산서열을 올리고펩타이드의 C-말단이 이소류신-글루탐산-글리신-아르기닌(Ile-Glu-Gly-Arg)의 아미노산 서열을 갖도록 구성하였는 바(서열번호 1), 전기 아미노산서열은 hG-CSF 단백질을 절단하지 않는 단백질 분해효소인 팩터 Xa(Factor Xa)에 의하여 인식되고 절단된다.

이하, 실시예를 통하여 본 발명을 보다 상세히 설명하고자 한다. 이들 실시예는 오로지 본 발명을 보다 구체적으로 설명하기 위한 것으로, 본 발명의 요지에 따라 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되지 않는다는 것은 당업계에서 통상의 지식을 가진 자에게 있어서 자명할 것이다.

실시예 1: 인체유래 과립성 백혈구의 콜로니 자극인자(hG-CSF) cDNA의 준비

hG-CSF 유전자를 얻기 위하여 인간의 유방암 세포 cDNA 라이브러리를 표적 DNA로 하여 PCR을 수행하였다. 유전자은행(GenBank)을 이용하여 hG-CSF 유전자의 염기서열을 검색한 다음, 프라이머 1: 5' GCGAATTCATGGCTGGACCTGCCACCCAG 3'(서열번호 2)과 프라이머 2: 5' GCGGATCCTTATTAGGGCTGGGCAAGGTGGCG 3'(서열번호 3)를 합성하였다. 합성된 프라이머를 PCR로 증폭한 후, 클로닝하기 쉽게 각기 제한 효소인EcoRI과BamHI의 절단위치(site)를 삽입하였다. PCR 반응은 고도의 PCR 시스템(High Fidelity PCR System, Boehringer Mannheim Co., 독일)을 이용하여 다음과 같이 수행되었다: 첫 번째 변성(denaturation)은 94℃에서 7분간 한번 하였으며, 두 번째 변성은 94℃에서 1분, 교잡(annealing)은 50℃에서 1분, 연장(extension)은 72℃에서 1분씩 수행하는 과정을 30회 반복하였다. 이후 72℃에서 7분간 마지막 연장(extension)을 한번 수행하였다. 이 PCR 방법으로 얻어진 DNA를 아가로즈 겔 전기영동법(agarose gel electroporesis)으로 약 530bp 크기의 DNA 절편을 분리하였으며, 이를 두 가지의 제한효소인EcoRI과BamHI으로 절단하여 DNA 절편을 수득하였다.

전기 수득한 DNA 절편을 클로닝하기 위하여, 플라스미드 pUC19(참조: Yanisch-Perron et al.,Gene, 33:109-119(1985))를 두 가지 제한효소EcoRI과BamHI으로 절단한 뒤, 이를 전기 DNA 절편과 혼합하여 T4 DNA 리가아제(T4 DNA ligase)로 연결(ligation)시키고, 이를 일렉트로포레이션(electroporation) 방법을 이용하여 대장균 XL1-Blue(supE44 hsdR17 recA1 endA1 gyrA96 thi relA1 lacF'(proAB+ lacIqlacZΔM15Tn(tet ^r )))(참조: Bullock, W. O. et al.,BioTechniques, 5:376-378(1987))에 도입함으로써, 형질전환된 균주를 수득하였다. 형질전환된 균주는 항생제 엠피실린(ampicillin, 50㎍/ℓ)이 첨가된 LB 평판배지에서 선별되었고, 이로부터 재조합 플라스미드 p19CSF를 수득하였다. 재조합 플라스미드 p19CSF에 클로닝된 유전자의 염기서열을 자동염기서열 분석기(automatic DNA sequencer, ABI Prism model 377, Perkin Elmer Co., U.S.A.)로 확인하여 본 결과, 공지된 hG-CSF 유전자와 비교하였을 때 중간에 108bp가 결여(deletion)되었음을 확인하였으며, 이를 제외한 나머지 부분(508bp)은 공지된 염기서열과 일치하였다(참조: 도 1). 중간에 결여된 108bp를 hG-CSF의 제노믹 DNA와 비교하여 보았을 때, 총 5개의 액손으로 구성된 hG-CSF 유전자에서 정확히 세 번째 액손에 해당하는 부분이 결여되었음을 알 수 있었다.

온전한 형태의 hG-CSF 유전자를 확보하기 위하여, 세 번째 액손에 해당하는 프라이머 3: 5' TCCTCGGGGTGGCACAGCTTGTAGGTGGCACACAGCTTCTCCTGGAGCGC 3'(서열번호 4), 프라이머 4: 5' GCTGTGCCACCCCGAGGAGCTGGTGCTGCTCGGACACTCTCTGGGCATCC 3'(서열번호 5), 프라이머 5: 5' CTGGCTGGGGCAGCTGCTCAGGGGAGCCCAGGGGATGCCCAGAGAGTGTC 3' (서열번호 6), 및 프라이머 6: 5' AGCAGCTGCCCCAGCCAGGCCCTGCAGCTGGCAGGCTGCTTGAG CCAA 3'(서열번호 7)의 4개의 프라이머를 제작하고, 이를 이용하여 PCR 반응을 수행하며, 여기서 얻어진 PCR 산물과 프라이머 1과 함께 p19CSF를 표적 DNA로 하여 PCR 반응을 수행하였으며, 이와 동시에 동일한 방법으로 프라이머 2와의 PCR 반응을 수행하였다. 각각의 PCR 산물을 이용하여 다시 한번 PCR 반응을 수행하였으며, 그 결과의 PCR 산물을 두 개의 제한효소EcoRI과BamHI으로 절단하여 pUC19의 동일한 위치에 클로닝하였다. 형질전환 대장균(XL1-Blue)은 항생제 엠피실린(50㎍/ℓ)이 첨가된 LB 평판배지에서 선별되었고, 이로부터 재조합 플라스미드 p19CSFm를 수득하였다(참조: 도 2). 플라스미드 p19CSFm에 삽입된 유전자 염기서열을 확인한 결과, 공지된 hG-CSF의 유전자 염기서열과 동일한 유전자를 획득하였음을 알 수 있었다(참조: 도 3).

실시예 2: 재조합 플라스미드 pEDCSFm의 제조

실시예 1에서 준비한 hG-CSF 유전자로부터 hG-CSF 단백질을 발현하기 위하여, p19CSFm의 유전자로부터 분비서열을 제거한 성숙한(mature) hG-CSF 유전자를 클로닝하였다(참조: 도 5). 성숙한 hG-CSF 유전자를 클로닝하기 위하여, 프라이머 7: 5' GCGAATTCATATGACCCCCCTGGGCCCTGCCAGC 3'(서열번호 8)을 제작하였다. 프라이머 7과 프라이머 2를 이용하여 p19CSFm을 표적 DNA로 한 PCR 반응을 수행하였으며, 이를 두 개의 제한 효소NdeI과BamHI으로 절단하였다. 이와 동시에, T7 프로모터(promoter)를 갖고 있는 플라스미드 pET21c(Novagen Co. U.S.A.)를 두가지의 제한효소NdeI과BamHI으로 절단한 뒤, 전기 DNA 절편을 클로닝하였다. 이를 일렉트로포레이션방법으로 대장균 XL1-Blue를 형질전환시켰으며, 형질전환된 균주는 엠피실린(50 ㎍/ℓ)이 첨가된 LB 평판배지에서 선별되었고, 이로부터 재조합 플라스미드 pEDCSFm을 수득하였다(참조: 도 4).

대장균에서 hG-CSF 생산을 위하여, 대장균(E. coli) BL21(DE3)(F- ompT hsdSB(rB- mB-) gal dcm (DE3)a prophage carrying the T7 RNA polymerase gene)을 재조합 플라스미드 pEDCSFm으로 형질전환시켰다. 형질전환된 재조합 대장균을 LB 액체 배지 50㎖가 담긴 250㎖ 플라스크에 접종하여 37℃에서 배양하고, 분광광도계로 600nm 파장에서 측정한 광학밀도(O.D.)가 0.7일 때 1mM의 IPTG(isopropyl-β-thiogalactoside)를 첨가하여, 유전자 발현을 유도(induction)시킨 후, 4시간 후에 배양액 1㎖씩을 분주하였다. 분주된 배양액을 4℃에서 6000rpm으로 5분 동안 원심분리하여 세포만을 수득한 후, 이를 0.5㎖ TE 완충용액(Tris-HCl 10mM; EDTA1mM, pH 8.0)으로 한번 세척한 다음, 다시 4℃에서 6000rpm으로 5분 동안 원심분리하여 침전시키고, 이를 TE 완충용액 0.2㎖ 용액에 현탁하였다. 현탁액 64㎕을 SDS-PAGE 시료용 완충용액(sample buffer, Tris-HCl 60mM: 25% glycerol (v/v): 2% SDS(v/v): 2-mercaptoethanol 14.4mM: 0.1% bromophenol blue) 16㎕와 섞고 100℃에서 10분간 가열한 후, 12%(w/v) 분리용 젤(separating gel)에서 SDS-PAGE(sodium-dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis) 젤 전기영동을 수행하였다. 전기 영동이 끝난 젤을 염색용액(coomassie brilliant blue R 0.25g/ℓ: 메탄올 40%(v/v), 아세트산 7%(v/v))에 2시간 동안 담가두어 염색한 후, 탈색용액(메탄올 40%(v/v): 아세트산 7%(v/v))에 2시간 동안 2회 담가두어 탈색시켰다. SDS-PAGE 분석결과, hG-CSF에 해당하는 단백질을 확인할 수 없었다.

실시예 3: 재조합 플라스미드 pEDCSFmII의 제조

데블린(Devlin) 등은 hG-CSF 유전자의 N-말단에 존재하는 높은 G+C 함량이 대장균에서 hG-CSF 유전자의 전사(transcription) 및 번역(translation)과정을 저해하는 효과가 있다고 보고하였으므로(참조: Devlin et al.,Gene, 65:13-22 (1988)), hG-CSF 유전자의 N-말단 유전자 염기서열에서 G+C 함량을 낮추고 대장균에서 번역이 용이한 유전자 염기서열로 전환하기 위하여 프라이머 8: 5' GCGAATTCATATGACTCCGTTAGGTCCAGCCAGC 3'(서열번호 9)을 제작하였다.

플라스미드 p19CSFm을 표적 DNA로 하고 프라이머 8과 프라이머 2를 이용하여PCR 반응을 수행하였으며, PCR 산물을NdeI과BamHI으로 절단하여 다시 플라스미드 pET21c의 같은 위치에 클로닝하였으며, 이를 대장균 XL1-Blue에 형질전환하였다. 형질전환 균주는 엠피실린(50㎍/ℓ)이 첨가된 LB 평판배지에서 선별되었고, 여기로부터 재조합 플라스미드 pEDCSFmII를 수득하였다(참조: 도 6). 플라스미드 pEDCSFmII는 실시예 2의 pEDCSFm과 비교하여 N-말단쪽에 아미노산 서열에는 차이가 없지만, 6개의 염기서열에서 차이를 보이고 있dj(참조: 도 7), 총 5개의 코돈(dodon)에 변화를 주었다(ACC CCC CTG GGC CCT → ACT CCG TTA GGT CCA).

플라스미드 pEDCSFmII를 대장균 BL21(DE3)에 형질전환하여 단백질 발현정도를 확인하였다. 재조합 대장균 배양, 전체단백질 획득 및 분석방법은 실시예 2와 동일한 방법으로 수행하였으며, 불용성 응집체의 분획은 다음과 같은 방법으로 수행하였다. 세포 배양액 1㎖을 원심분리하여 수득한 균체를 0.5㎖의 TE 완충용액(Tris-HCl 10mM; EDTA 1mM, pH 8.0)에 현탁한 후, 다시 4℃에서 3000 x g로 5분 동안 원심분리하고, TE 완충용액 0.2㎖ 용액에 현탁하였다. 초음파분쇄기 (Ultra-sonicator, Branson Ultrasonics Co., U.S.A.)를 이용하여 균체를 파쇄하고, 4℃에서 10,000 x g로 10분 동안 원심분리하여, 상층액(supernatant)을 수용성 단백질(soluble protein)로 분류한 후, 침전물(pellet)은 TE 완충용액 0.2㎖ 용액에 현탁하여 불용성 단백질(insoluble protein)로 분류하였다. 플라스미드 pEDCSFmII로 형질전환된 대장균 BL21(DE3)에서 hG-CSF 단백질 생성정도를 확인한 결과, 전체단백질에 대하여 약 40%에 해당하는 매우 높은 수준의 hG-CSF 단백질이 발현되었음을 알 수 있었고, 생성된 대부분의 hG-CSF는 생물학적 활성을 갖지 않는불용성 응집체를 형성하고 있음을 SDS-PAGE 상에서 분석하였다. 도 8에서, 레인 M은 단백질 표준 분자량(94, 67, 43, 30, 20 및 14.4kDa)을 나타내며; 레인 1은 유도 발현 후 4시간이 경과한 다음 pEDCSFmII로 형질전환된 대장균 BL21(DE3)의 총 단백질을 나타내며; 레인 2는 수용성 단백질 분획; 및, 레인 3은 불용성 응집체 분획을 나타낸다. 또한, 화살표(←)는 19kDa 크기를 가진 hG-CSF 단백질을 나타낸다. 본 결과를 통하여, hG-CSF의 N-말단에서 유전자 변화가 유전자 발현에 매우 큰 영향을 주었음을 확인할 수 있었으므로, 전기 변화된 유전자를 이후의 hG-CSF 단백질의 분비실험에서 계속 이용하였다.

실시예 4: 재조합 플라스미드 pTrcSCSFmII의 제조

대장균에서 hG-CSF의 분비를 위한 분비신호서열(secretion signal sequence)로서 고초균(Bacillussp.)에서 유래한 엔도자일라나제(endoxylanase) 분비신호서열을 이용하였다. 엔도자일라나제 분비신호서열을 hG-CSF의 N-말단에 융합시키기 위하여 PCR 방법을 이용하였으며, 이를 위하여 프라이머 9: 5' GGAATTCACATGTTTAAG TTTAAAAAGAAATTC 3'(서열번호 10), 프라이머 10: 5' GGCTGGACCTAACGGAGTTGCAGAGG CGG 3'(서열번호 11) 및 프라이머 11: 5' GCAACCGCCTCTGCAACTCCGTTAGGTCCAGCC 3'(서열번호 12)을 제작하였다. 엔도자일라나제 유전자가 클로닝 되어있는 pKJX4(참조: Jeong et al.,Enzyme Microb Technol.22(7):599-605(1998))를 표적 DNA로 이용하여 프라이머 9 및 10과 함께 PCR 반응을 수행하였으며, 그 결과 엔도자일라나제 분비신호서열을 갖는 PCR 산물을 얻을 수 있었고, pEDCSFmII를 표적 DNA로 이용하여 프라이머 2 및 프라이머 11과 함께 PCR 반응을 수행하였으며, 그 결과 hG-CSF 유전자를 갖는 PCR 산물을 얻을 수 있었다. 전기 2개의 PCR 산물, 프라이머 2 및 프라이머 9를 이용하여 PCR 반응을 수행한 결과, 엔도자일라나제 분비 신호서열이 융합된 hG-CSF 유전자를 얻을 수 있었으며, 이 PCR 산물을 두 개의 제한효소AflIII와BamHI으로 절단하였다. 이와 동시에 강력한 유도가능 프로모터인 trc 프로모터를 갖고 있는 플라스미드 pTrc99A(Pharmacia Biotech Co., U.S.A.)를 두 개의 제한효소NcoI과BamHI으로 절단하고, 이 플라스미드와 전기 PCR 산물을 혼합하여 연결한 후, 이를 대장균 XL1-Blue에 도입하여 대장균을 형질전환시켰다. 형질전환된 균주는 엠피실린(50㎍/ℓ)이 첨가된 LB 평판배지에서 선별되었고 이로부터 재조합 플라스미드 pTrcSCSFmII를 수득한 다음(참조: 도 9), 재조합 플라스미드 pTrcSCSFmII에 클로닝된 hG-CSF 유전자의 N-말단 염기서열을 자동염기서열 분석기(automatic DNA sequencer, ABI Prism model 377, Perkin Elmer Co., U.S.A.)로 확인하였다(참조: 도 10).

재조합 플라스미드 pTrcSCSFmII로부터 hG-CSF 단백질의 분비를 조사하기 위하여, 플라스미드 pTrcSCSFmII를 대장균 BL21(DE3), 대장균 HB101(F- hsdS20 (rk-, mk-) recA13 ara-14 proA2 lacY1 galK2 rpsL20(str ^r ) xyl1-5 mtl-1 supE44 λ-), 대장균 MC4100(F- araD139 Δ(argF-lac)U169 rpsL150(str ^r ) relA1 flbB5301 deoC1 ptsF25 rbsR) 및 대장균 W3110(derived fromE. coliK-12, λ-, F-,prototrophic)에 도입하여 대장균들을 형질전환시켰다. 각각의 형질전환된 대장균을 엠피실린이 첨가된 LB 배지(50㎖)에 접종하고, 실시예 2에서와 동일한 방법으로 유도발현 및 단백질 분석실험을 수행하였으나, 1mM IPTG를 이용한 유도발현 후 세포의 용해가 매우 급격히 발생하여, 약 2시간이 경과하면 거의 모든 세포가 용해됨을 알 수 있었다. 배양액을 원심분리하여 재조합 대장균을 수득한 다음, 단백질을 SDS-PAGE로 분석하여 보았을 때, hG-CSF에 해당하는 단백질은 확인할 수 없었다.

실시예 5: 재조합 플라스미드 pTrcKCSFmII의 제조

재조합 플라스미드 pTrcSCSFmII에 포함된 항생제 엠피실린 저항 유전자(Ap^r)는 대장균에서 주변세포질로 분비되는 단백질인 베타-락타마제(β-lactamase)를 암호화한다는 것을 고려한다면, 하나의 대장균 내에서 hG-CSF 단백질과 베타-락타마제 단백질의 분비작용이 동시에 발생하여 분비과정에서 경쟁을 일으킬 수 있고, 이 경쟁이 세포의 용해를 유발하여 실시예 4의 결과를 얻었다는 가정 할 수 있다. 전기 가정에 근거하여, 엠피실린 저항 유전자(Ap^r) 대신 선택마커(selection marker)로서 이용 가능하면서 분비되지 않는 카나마이신 저항 유전자(kanamycin resistance gene)를 사용하였다. 항생제 엠피실린 저항 유전자(Ap^r)를 카나마이신 저항 유전자(Km^r)로 치환하기 위하여, 플라스미드 pACYC177를 표적 DNA로 이용하고프라이머 12: 5' GCGAATTCTTTAAAGCCACGTTGTGTCCTCAAA 3'(서열번호 13) 및 프라이머 13: 5' GCGAATTCTTTAAATTAGAAAAACTCATCGAGCATC 3'(서열번호 14)를 이용하여 PCR 반응을 수행하였다. 그 결과, 카나마이신 저항 유전자를 포함한 PCR 산물을 얻을 수 있었으며, 이를 제한효소DraI 으로 절단하였다. 플라스미드 pTrcSCSFmII를 제한효소DraI으로 부분 절단하여 엠피실린 저항 유전자를 제거한 것과 앞의 카나마이신 저항 유전자를 가진 PCR 산물을 혼합하여 연결한 후, 이를 대장균 XL1-Blue에 도입하여 형질전환하였다. 형질전환된 균주를 항생제 카나마이신(25㎍/ℓ)이 첨가된 LB 평판배지에서 선별하고, 이로부터 재조합 플라스미드 pTrcKCSFmII를 수득하였다(참조: 도 11).

재조합 플라스미드 pTrcKCSFmII로부터 hG-CSF 단백질의 분비여부를 측정하기 위하여, 플라스미드 pTrcKCSFmII를 4개의 대장균, 대장균 BL21(DE3), 대장균 HB101, 대장균 MC4100, 대장균 W3110에 도입하고 형질전환하였다. 형질전환된 각각의 재조합 대장균을 카나마이신이 첨가된 LB 배지(50mL)에 접종하여, 실시예 2에서와 같은 방법으로 유도발현 및 단백질 분석실험을 수행하였으나, 플라스미드 pTrcSCSFmII를 사용한 실시예 4에서와 동일한 결과를 얻었다. 즉, 플라스미드 pTrcKCSFmII를 사용하였을때에도 1mM IPTG를 이용한 유도발현후 세포의 용해가 매우 심하게 발생하였으며, 배양액을 원심분리하여 재조합 대장균을 회수하여 단백질을 SDS-PAGE로분석하여 보았을 때, hG-CSF에 해당하는 단백질은 확인할 수 없었다. 이상의 결과로, 엠피실린 저항 유전자를 카나마이신 저항 유전자로 치환한 효과는 전혀 없었음을 알 수 있었으며, hG-CSF 단백질의 분비작용이 세포의 용해를유발하기 때문에 이를 해결하기 위한 유전자 조작이 필요함을 알 수 있었다.

실시예 6: 재조합 플라스미드 pTHSCSFmII 및 pTHKCSFmII의 제작

세포의 용해를 유발하지 않는 hG-CSF 단백질의 분비를 가능하게 하기 위하여, 엔도자일라나제 분비 신호서열과 hG-CSF 단백질 사이에 작은 올리고펩타이드를 삽입하는 방법을 이용하였다. 이를 위하여, 플라스미드 pEDSCSFmII를 표적 DNA로 하고, 프라이머 14: 5' CACCATCACCATATCGAAGGCCGTACTCCGTTAGGTCCA 3'(서열번호 15) 및 프라이머 15: 5' GATATGGTGATGGTGATGGTGCGGGCCAGCTGCAGAGGCGG 3'(서열번호 16)를 이용하여 PCR 방법을 수행하였다. 우선, 프라이머 14와 프라이머 2를 이용하여 PCR 반응을 수행하였으며, 이와 동시에 프라이머 15와 프라이머 9를 이용하여 PCR 반응을 수행하였다. 두 PCR 산물을 혼합한 다음, 이에 프라이머 2와 프라이머 9를 더하여 다시 한번 PCR 반응을 수행하고, 그 PCR 산물을 두 개의 제한효소AflIII와BamHI으로 절단하였으며, 이를 제한효소NcoI과BamHI으로 절단된 플라스미드 pTrc99A와 연결한 후, 대장균 XL1-Blue에 도입하여 형질전환하였다. 형질전환된 균주는 엠피실린(50㎍/ℓ)이 첨가된 LB 평판배지에서 선별되었고 이로부터 재조합 플라스미드 pTHSCSFmII를 수득하였다(참조: 도 12). 한편, 도 13은 플라스미드 pTHSCSFmII에 삽입된 유전자 염기서열 및 아미노산 서열을 나타내고, 이탤릭체로 나타낸 부분이 엔도자일라나제 분비 신호서열 부분이며, 굵은 글씨로 나타낸 부분이 삽입된 올리고펩타이드 부분이다.

실시예 5에서와 동일한 방법으로, 엠피실린 저항 유전자(Ap^r)를 카나마이신 저항 유전자(Km^r)로 치환시키기 위하여, 플라스미드 pTHSCSFmII를 제한효소DraI으로 부분 절단하여 엠피실린 저항 유전자를 제거한 다음, 플라스미드 pTrcKCSFmII를 제한효소DraI으로 절단하여 얻은 카나마이신 저항 유전자와 연결한 후, 이를 대장균 XL1-Blue에 도입하여 형질전환하였다. 형질전환된 균주는 카나마이신(50㎍/ℓ)이 첨가된 LB 평판배지에서 선별되었고, 이로부터 재조합 플라스미드 pTHKCSFmII를 수득하였다(참조: 도 14).

실시예 7: 재조합 플라스미드 pTHKCSFmII를 함유한 재조합 대장균에서 hG-CSF 융합단백질의 분비

플라스미드 pTHKCSFmII을 이용한 hG-CSF 융합단백질의 분비발현여부를 조사하기 위하여, 플라스미드 pTHKCSFmII를 대장균 BL21(DE3), HB101, MC4100, W3110 및 XL1-Blue에 도입하여 형질전환하고, 각각의 재조합 균주를 두가지 온도(37 및 30℃) 조건 하에 LB배지 50㎖에서 배양한 후, 실시예 2에서와 동일한 방법으로 hG-CSF 융합단백질의 분비발현여부를 조사하였다. 1mM IPTG로 유도발현하고 4시간 후 배양액을 1㎖씩 분주하고, 이로부터 균체를 수득하며, 전체단백질을 SDS-PAGE로 분석한 결과, 모든 재조합 대장균으로부터 hG-CSF 융합단백질이 분비됨을 확인할 수 있었다(참조: 도 15). 도 15에서, 레인 M은 단백질 표준 분자량(94, 67, 43, 30,20 및 14.4kDa); 레인 1은 형질전환되지 않은 대장균 MC4100의 총 단백질; 및, 레인 2 와 3는 유도 발현 후 4시간이 경과한 다음에 플라스미드 pTHKCSFmII로 형질전환된 대장균 MC4100의 전체단백질을 각각 나타내며, 화살표(←)는 20 kDa 크기를 가진 hG-CSF 단백질을 나타낸다. 각 대장균에서 분비된 hG-CSF 융합단백질의 양과 분비효율을 표 1에서 나타내었다.

재조합 대장균에서 hG-CSF의 생산량 및 분비효율 비교

숙주세포	전체단백질 중 hG-CSF의 함량 (%)	hG-CSF의 분비효율 (%)
배양온도	30℃	37℃	30℃	37℃
대장균 BL21(DE3)	22.7	22.1	>98	>98
대장균 HB101	13.5	12.8	81	75
대장균 MC4100	22.1	20.8	>98	>98
대장균 W3110	10.5	10.0	77	66
대장균 XL1-Blue	9.4	8.8	56	51

분비된 hG-CSF 융합단백질에서 엔도자일라나제 분비 신호서열이 올바르게 제거되었는지를 확인하기 위하여, SDS-PAGE로부터 hG-CSF 융합단백질을 분리하고, 이의 N-말단 아미노산 염기서열을 분석한 결과, N'-알라닌-글리신-플롤린-히스티딘-히스티딘-히스티딘-히스티딘-히스티딘-히스티딘-히스티딘-이소류신-글루탐산-글리신-아르기닌-트레오닌-C'의 염기서열을 확인하였는 바, 이는 hG-CSF 융합단백질의 N-말단 아미노산 서열과 정확하게 일치하는 것이므로, hG-CSF 융합단백질이 대장균에서 성공적으로 분비됨을 알 수 있었다. 두가지 배양온도 중, 37℃에서 배양하였을 때보다 30℃에서 배양하였을 때에, 높은 분비효율 및 높은 hG-CSF 융합단백질의함량을 나타내었으며, 5가지 재조합 대장균주 중에서 BL21(DE3)와 MC4100이 가장 높은 단백질 생성율을 나타내었다. 이에, 전기 재조합 플라스미드 pTHKCSFmII로 형질전환된 대장균 MC4100을 대장균 MC4100/pTHKCSFmII(Escherichia coliMC4100/pTHKCSFmII)라 명명하고, 이를 2000년 3월 13일 국제기탁기관인 한국과학기술연구원 부설 생명공학연구소 유전자은행(KCTC)에 기탁번호 KCTC 0754BP로 기탁하였다.

전기 형질전환된 대장균 MC4100/pTHKCSFmII(KCTC 0754BP)에서 합성된 hG-CSF 융합단백질이 세포내막(inner membrane)을 통과하여 주변세포질(periplasm)로 분비되는 과정에서 엔도자일라나제 분비 신호서열은 제거되고, 올리고펩타이드와 hG-CSF의 융합단백질이 분비발현되었다. 이 hG-CSF 융합 단백질은 N-말단의 6개 히스티딘 아미노산 서열로 인하여, 니켈칼럼을 사용하여 용이하게 수득할 수 있으며, 분리된 단백질에 팩터 Xa(Factor Xa)를 처리하면 상기 아미노산 서열의 C-말단 부분에서 절단되므로 완전한 hG-CSF 단백질을 제조할 수 있다.

이상으로 본 발명 내용의 특정한 부분을 상세히 기술하였는 바, 당업계의 통상의 지식을 가진 자에게 있어서, 이러한 구체적 기술은 단지 바람직한 실시태양일 뿐이며, 이에 의해 본 발명의 범위가 제한되는 것이 아닌 점은 명백할 것이다. 따라서, 본 발명의 실질적인 범위는 첨부된 청구항들과 그것들의 등가물에 의하여 정의된다고 할 것이다.

이상에서 상세히 설명하고 입증하였듯이, 본 발명은 인체에서 유래한 과립성 백혈구의 콜로니 자극인자(hG-CSF) 융합단백질을 분비하는 대장균 및 이를 위한 플라스미드 벡터와 전기 균주로부터 분비되는 전기 단백질로부터 순수한 hG-CSF 단백질을 제조하는 방법을 제공한다. 본 발명에 의하면, 종래의 기술에 의하여 hG-CSF 단백질이 세포질 내에 응집하도록 생산되는 대장균에서 hG-CSF 단백질을 정제하는데 요구되는 세포질내 불용성 응집체를 가용화 및 재생하는 복잡한 공정이 요구되지 않고, 대량의 hG-CSF 융합단백질을 주변 세포질로 효율적으로 분비하게 하며, 비교적 간단한 공정을 통하여 전기 hG-CSF 융합단백질로부터 순수한 hG-CSF 단백질을 제조할 수 있으므로, 이들을 유효성분으로 하는 항암 보조치료제의 개발에 널리 이용할 수 있을 것이다.

Claims (9)

1. 카나마이신 저항유전자, 엔도자일라나제 분비신호서열, 연속된 6개의 히스티딘 잔기가 포함된 13개 아미노산으로 구성된 올리고펩타이드를 암호화하는 염기서열, 인체에서 유래한 과립성 백혈구의 콜로니 자극인자(hG-CSF)의 유전자 및 프로모터를 포함하는 플라스미드 벡터.
2. 제 1항에 있어서,

   올리고펩타이드의 C-말단은 이소류신-글루탐산-글리신-아르기닌(Ile-

   Glu-Gly-Arg)의 아미노산 서열을 갖는 것을 특징으로 하는

   플라스미드 벡터.
3. 카나마이신 저항유전자, 고초균(Bacillussp.)에서 유래된 엔도자일라나제 분비신호서열, 서열번호 1의 올리고펩타이드를 암호화하는 염기서열, N-말단을 암호화 하는 유전자의 서열로서 서열번호 26의 유전자 서열을 포함하는 변형된 인체에서 유래한 과립성 백혈구의 콜로니 자극인자(hG-CSF)의 유전자 및 Trc 프로모터를 포함하며, 도 14에 도시된 바와 같은 플라스미드 벡터 pTHKCSFmII.
4. 제 3항의 플라스미드 벡터 pTHKCSFmII로 형질전환된 대장균(E. coli).
5. 제 4항에 있어서,

   대장균 XL1-Blue(E. coliXL1-Blue), 대장균 MC4100, 대장균

   BL21(DE3), 대장균 HB101 및 대장균 W3110로 구성된 그룹으로부터

   선택되는 1종인 것을 특징으로 하는

   형질전환된 대장균.
6. 제 1항의 플라스미드 벡터 pTHKCSFmII로 형질전환된 대장균 MC4100/pTHKCSFmII(KCTC 0754BP).
7. 제 1항의 플라스미드 벡터로 형질전환된 미생물을 배양하여 그 배양액으로부터 인체에서 유래한 과립성 백혈구의 콜로니 자극인자(hG-CSF) 융합단백질을 수득하고, 이에 단백질 분해효소를 처리하여 인체 과립성 백혈구의 콜로니 자극인자를 수득하는 단계를 포함하는 인체 과립성 백혈구의 콜로니 자극인자의 제조방법.
8. 제 7항에 있어서,

   니켈칼럼(Ni-column)을 사용하여 인체에서 유래한 과립성 백혈구의

   콜로니 자극인자(hG-CSF) 융합단백질을 수득하는 것을 특징으로 하는

   인체 과립성 백혈구의 콜로니 자극인자의 제조방법.
9. 제 7항에 있어서,

   단백질 분해효소는 팩터 Xa(Factor Xa)인 것을 특징으로 하는

   인체 과립성 백혈구의 콜로니 자극인자의 제조방법.