KR102546048B1 - 진균 감염 검출용 조성물 및 이를 이용한 검출방법 - Google Patents

진균 감염 검출용 조성물 및 이를 이용한 검출방법 Download PDF

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Abstract

본 발명은 진균 감염 검출용 조성물 및 이를 이용한 검출방법에 관한 것으로, 보다 구체적으로는 인공슬관절치환물주위감염의 원인이 되는 우점종 진균을 검출하기 위한 검출용 조성물 및 이를 이용한 인공슬관절치환물주위감염의 우점종 진균 감염을 검출하는 방법에 관한 것이다.

Description

진균 감염 검출용 조성물 및 이를 이용한 검출방법{COMPOSITION FOR DETECTING FUNGAL INFECTION AND DETECTION METHOD USING THE SAME}
본 발명은 진균 감염 검출용 조성물 및 이를 이용한 검출방법에 관한 것으로, 보다 구체적으로는 인공슬관절치환물주위감염의 원인이 되는 우점종 진균을 검출하기 위한 검출용 조성물 및 이를 이용한 인공슬관절치환물주위감염의 우점종 진균 감염을 검출하는 방법에 관한 것이다.
인공관절 수술은 관절 기능과 전반적인 삶의 질을 향상시키고, 통증을 완화시키는 효과적인 수술법이나, 최근 인공관절 수술을 받는 사람의 수가 증가함에 따라 이에 대한 합병증인 인공치환물주위감염(Periprosthetic Joint Infection, PJI)의 발생률 또한 증가하였다. 인공관절치환술 후에 일어나는 주위감염은 1~2%의 확률로 드물게 발생하지만 심각한 합병증을 나타내고 있고, 심한 경우 재수술이 필요하기 때문에 주의를 기울여야 한다. 주위감염의 약 3분의 2는 미생물에 의해 발생되며, 이러한 병원성 미생물로 인해 수술 직후 4주 이내로 발생하는 초기(early) 감염과 수술 후 3개월부터 3년이내에 발생하는 지연(delay) 감염이 일어난다고 밝혀져 있다. 초기(early) 감염의 경우 감염의 징후가 명백하며 스타필로코커스 아우레우스(Staphylococcus aureus), 스트렙토코시(Streptococci), 엔테로코시(Enterococci)와 같은 병원성이 강한 세균에 의해 대부분 발생한다. 지연(delay) 감염의 경우에는, coagulase-negative staphylococci(CoNS), Cutibacterium species와 같은 낮은 병원성을 가진 세균에 의해 발생하므로, 주위감염의 원인체 병원성 진균의 동정은 감염여부 진단에 필수적이다.
한편, 주위감염 원인체 병원미생물 감염여부 진단용 키트가 개발되어 해외에서는 출시되었지만, 국내를 포함한 아시아 지역에는 높은 수입가를 이유로 사용하지 못하는 한계점이 있다. 따라서 국내에서 주위감염의 원인균 감염여부 진단할 수 있는 방법이 필요하다. 이를 위해서는 주위감염을 일으키는 병원체 자원을 확보하는 기술, 병원체를 분류하고 유전정보 등을 분석하기 위한 기술, 병원체의 유전정보(DNA, RNA)를 분리하여 증폭하거나, 염기서열을 분석하여 병원체 감염여부를 진단하는 분자진단 기술이 필요하다.
현재까지 국내 주위감염 원인균인 진균의 감염여부의 진단법은 활액으로부터 원인균을 분리 및 미생물배양검사 등이 확진을 위한 표준진단검사로 이용되고 있으나 외래에서 빠르고 정확한 진단을 내리기 위해 사용되기에는 양성율이 낮거나 시간이 많이 걸리는 등의 단점이 많다. 따라서 주위감염 원인균 감염여부를 신속하고 정확하게 검출할 수 있는 시스템 개발의 필요성이 제기되고 있는 실정이다.
대한민국 등록특허공보 제10-1521409호
본 발명의 목적은 서열번호 1의 정방향 프라이머 염기서열 및 서열번호 2의 역방향 프라이머 염기서열; 서열번호 4의 정방향 프라이머 염기서열 및 서열번호 5의 역방향 프라이머 염기서열;로 이루어지는 군에서 선택된 1종 이상의 프라이머 세트를 포함하는 진균 감염 검출용 조성물을 제공하는 것이다.
본 발명의 다른 목적은 서열번호 1의 정방향 프라이머 염기서열, 서열번호 2의 역방향 프라이머 염기서열 및 서열번호 3의 프로브 염기서열을 포함하는 조성물; 및 서열번호 4의 정방향 프라이머 염기서열, 서열번호 5의 역방향 프라이머 염기서열 및 서열번호 6의 프로브 염기서열;을 포함하는 조성물로 이루어지는 군에서 선택된 1종 이상의 조성물을 포함하는 진균 감염 검출용 조성물을 제공하는 것이다.
본 발명의 또 다른 목적은 상기 진균 감염 검출용 조성물을 이용하는 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균 검출방법을 제공하는 것이다.
발명이 이루고자 하는 기술적 과제들은 이상에서 언급한 기술적 과제들로 제한되지 않으며, 언급되지 않은 또 다른 기술적 과제들은 본 발명의 기재로부터 당해 분야에서 통상의 지식을 가진 자에게 명확하게 이해될 수 있다.
본 발명은 서열번호 1의 정방향 프라이머 염기서열 및 서열번호 2의 역방향 프라이머 염기서열; 서열번호 4의 정방향 프라이머 염기서열 및 서열번호 5의 역방향 프라이머 염기서열;로 이루어지는 군에서 선택된 1종 이상의 프라이머 세트를 포함하는 진균 감염 검출용 조성물을 제공한다.
본 발명에 있어서, 상기 서열번호 1의 정방향 프라이머 염기서열 및 서열번호 2의 역방향 프라이머 염기서열을 포함하는 진균 감염 검출용 조성물은 서열번호 3의 프로브 염기서열을 더 포함하는 것을 특징으로 한다.
본 발명에 있어서, 상기 서열번호 4의 정방향 프라이머 염기서열 및 서열번호 5의 역방향 프라이머 염기서열을 포함하는 진균 감염 검출용 조성물은 서열번호 6의 프로브 염기서열을 더 포함하는 것을 특징으로 한다.
본 발명에 있어서, 상기 서열번호 1의 정방향 프라이머 염기서열 및 서열번호 2의 역방향 프라이머 염기서열을 포함하는 검출용 조성물은 칸디다 파라프실로시스(Candida parapsilosis), 칸디다 트로피칼리스(Candida tropicalis), 칸디다 글라브라타(Candida glabrata) 및 칸디다 알비칸스(Candida albicans)로 이루어지는 군에서 선택된 1종 이상의 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균을 특이적으로 검출하고, 상기 서열번호 4의 정방향 프라이머 염기서열 및 서열번호 5의 역방향 프라이머 염기서열을 포함하는 검출용 조성물은 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균인 아스퍼질러스 푸미가투스(Aspergillus fumigatus)를 특이적으로 검출하는 것을 특징으로 한다.
본 발명은 상기 진균 감염 검출용 조성물에 상기 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균의 핵산 주형을 혼합하는 단계; 및 상기 혼합물을 이용하여 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균 감염을 검출하는 단계;를 포함하는 것을 특징으로 하는 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균 감염 검출방법을 제공한다.
본 발명에 따른 진균 감염 검출용 조성물을 이용하여 인공슬관절치환물주위감염의 원인체 병원미생물인 우점종 진균 5종을 정확하게 동정할 수 있으며, 상기 진균을 정량적으로 검출할 수 있고, 상기 진균의 감염 유무를 확인할 수 있다.
또한, 본 발명에 따른 진균 감염 검출용 조성물을 이용하는 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균 검출방법을 통해 인공슬관절치환물주위감염증을 신속, 정확하게 검출할 수 있다.
본 발명의 효과들은 이상에서 언급한 효과들로 제한되지 않으며, 언급되지 않은 또 다른 효과들은 청구범위의 기재로부터 당업자에게 명확하게 이해될 수 있을 것이다.
도 1은 서열번호 1 내지 3의 프라이머 및 프로브를 디자인하기 위해 인공슬관절치환물주위감염의 우점종 진균 중 칸디다 종의 유전자를 multi-alignment로 비교한 결과를 나타낸 그림이다.
도 2는 서열번호 4 내지 6의 프라이머 및 프로브를 디자인하기 위해 인공슬관절치환물주위감염의 우점종 진균 중 아스퍼질러스 종의 유전자를 multi-alignment로 비교한 결과를 나타낸 그림이다.
도 3은 본 발명에 따른 진균 감염 검출용 조성물을 사용하여 상기 인공슬관절치환물주위감염의 우점종 진균 5종의 유전자를 증폭한 결과를 나타낸 검출곡선 그래프이다.
도 4는 본 발명에 따른 진균 감염 검출용 조성물을 사용하여 칸디다 파라프실로시스(Candida parapsilosis) 합성 유전자를 증폭한 결과를 나타낸 증폭곡선 그래프이다.
도 5는 본 발명에 따른 진균 감염 검출용 조성물을 사용하여 칸디다 트로피칼리스(Candida tropicalis) 합성 유전자를 증폭한 결과를 나타낸 증폭곡선 그래프이다.
도 6은 본 발명에 따른 진균 감염 검출용 조성물을 사용하여 칸디다 글라브라타(Candida glabrata) 합성 유전자를 증폭한 결과를 나타낸 증폭곡선 그래프이다.
도 7은 본 발명에 따른 진균 감염 검출용 조성물을 사용하여 칸디다 알비칸스(Candida albicans) 합성 유전자를 증폭한 결과를 나타낸 증폭곡선 그래프이다.
도 8은 본 발명에 따른 진균 감염 검출용 조성물을 사용하여 아스퍼질러스 푸미가투스(Aspergillus fumigatus) 합성 유전자를 증폭한 결과를 나타낸 증폭곡선 그래프이다.
도 9는 도 4에 따른 칸디다 파라프실로시스(Candida parapsilosis)의 증폭곡선을 Log 값으로 변환한 표준곡선 그래프이다.
도 10은 도 5에 따른 칸디다 트로피칼리스(Candida tropicalis)의 증폭곡선을 Log 값으로 변환한 표준곡선 그래프이다.
도 11은 도 6에 따른 칸디다 글라브라타(Candida glabrata)의 증폭곡선을 Log 값으로 변환한 표준곡선 그래프이다.
도 12는 도 7에 따른 칸디다 알비칸스(Candida albicans)의 증폭곡선을 Log 값으로 변환한 표준곡선 그래프이다.
도 13은 도 8에 따른 아스퍼질러스 푸미가투스(Aspergillus fumigatus)의 증폭곡선을 Log 값으로 변환한 표준곡선 그래프이다.
본 명세서에서 사용되는 용어는 본 발명에서의 기능을 고려하면서 가능한 현재 널리 사용되는 일반적인 용어들을 선택하였으나, 이는 당 분야에 종사하는 기술자의 의도 또는 판례, 새로운 기술의 출현 등에 따라 달라질 수 있다. 또한, 특정한 경우는 출원인이 임의로 선정한 용어도 있으며, 이 경우 해당되는 발명의 설명 부분에서 상세히 그 의미를 기재할 것이다. 따라서 본 발명에서 사용되는 용어는 단순한 용어의 명칭이 아닌, 그 용어가 가지는 의미와 본 발명의 전반에 걸친 내용을 토대로 정의되어야 한다.
다르게 정의되지 않는 한, 기술적이거나 과학적인 용어를 포함해서 여기서 사용되는 모든 용어들은 본 발명이 속하는 기술 분야에서 통상의 지식을 가진 자에 의해 일반적으로 이해되는 것과 동일한 의미를 가지고 있다. 일반적으로 사용되는 사전에 정의되어 있는 것과 같은 용어들은 관련 기술의 문맥상 가지는 의미와 일치하는 의미를 가지는 것으로 해석되어야 하며, 본 출원에서 명백하게 정의하지 않는 한, 이상적이거나 과도하게 형식적인 의미로 해석되지 않는다.
수치 범위는 상기 범위에 정의된 수치를 포함한다. 본 명세서에 걸쳐 주어진 모든 최대의 수치 제한은 낮은 수치 제한이 명확히 쓰여져 있는 것처럼 모든 더 낮은 수치 제한을 포함한다. 본 명세서에 걸쳐 주어진 모든 최소의 수치 제한은 더 높은 수치 제한이 명확히 쓰여져 있는 것처럼 모든 더 높은 수치 제한을 포함한다. 본 명세서에 걸쳐 주어진 모든 수치 제한은 더 좁은 수치 제한이 명확히 쓰여져 있는 것처럼, 더 넓은 수치 범위 내의 더 좋은 모든 수치 범위를 포함할 것이다.
이하, 본 발명에서 사용되는 용어에 대해 상세히 설명한다.
본 발명에서 사용되는 용어 “프라이머(Primer)”란, 주형 가닥 복사를 위한 시작 지점으로 기능을 하는 짧은 핵산 서열로, 주형과 상호적인 염기쌍을 형성할 수 있는 핵산 서열을 의미한다.
본 발명에서 사용되는 용어 “프로브(Probe)”란, 디옥시리보뉴클레오타이드 및 리보뉴클레오타이드, 올리고디옥시리보뉴클레오타이드를 포함하고, 자연적으로 발생하거나 변형된 모노머 또는 PCR 증폭에 의해 생산되는 것을 의미한다. 상기 프로브는 타겟 유전자의 올리고뉴클레오타이드에 대해 최소한의 부분에 결합할 수 있다. 상기 프로브는 단일 가닥 또는 이중 가닥일 수 있으며, 형광성, 방사성 및 발광성 시스템을 포함할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.
본 발명에서 사용되는 용어 “민감도(sensitivity)”란, 질병이 있는 사람을 질병이 있다고 판단하는 비율을 의미한다.
본 발명에서 사용되는 용어 “특이도(specificity)”란, 정상인 사람을 정상이라고 판단하는 비율을 의미한다.
본 발명에서 사용되는 용어 “실시간 중합효소 연쇄반응(Real-time PCR)”이란, PCR 과정을 형광물질을 이용하여 실시간으로 모니터링하는 PCR 기법의 한 종류이다. 상기 Real-time PCR을 통해 반응을 시작하는 처음부터 반응이 완료되는 끝까지 표준 균주로 추출한 핵산 시료에 존재하는 타겟 유전자의 증폭을 형광물질의 발광(emission)으로 정량 분석이 가능하며, 타겟 유전자의 증폭 유무 및 양상을 실시간으로 분석할 수 있다.
이하, 본 발명에 대해 상세히 설명한다.
인공슬관절치환물주위감염의 우점종 진균 감염 검출용 프라이머
본 발명은 서열번호 1의 정방향 프라이머 염기서열 및 서열번호 2의 역방향 프라이머 염기서열; 서열번호 4의 정방향 프라이머 염기서열 및 서열번호 5의 역방향 프라이머 염기서열;로 이루어지는 군에서 선택된 1종 이상의 프라이머 세트를 포함하는 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균 감염 검출용 조성물을 제공한다.
상기 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균 감염 검출용 조성물은 서열번호 1의 정방향 프라이머 염기서열 및 서열번호 2의 역방향 프라이머 염기서열; 서열번호 4의 정방향 프라이머 염기서열 및 서열번호 5의 역방향 프라이머 염기서열;로 이루어지는 군에서 선택된 1종 이상의 프라이머 세트를 포함할 수 있으며, 인공슬관절치환물주위감염의 원인체인 우점종 진균을 특이적으로 검출하는 프라이머일 수 있다. 보다 상세하게는, 상기 서열번호 1의 정방향 프라이머 염기서열 및 서열번호 2의 역방향 프라이머 염기서열을 포함하는 진균 감염 검출용 조성물은 칸디다 파라프실로시스(Candida parapsilosis), 칸디다 트로피칼리스(Candida tropicalis), 칸디다 글라브라타(Candida glabrata) 및 칸디다 알비칸스(Candida albicans)로 이루어지는 군에서 선택된 1종 이상의 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균을 특이적으로 검출할 수 있으며, 상기 서열번호 4의 정방향 프라이머 염기서열 및 서열번호 5의 역방향 프라이머 염기서열을 포함하는 진균 감염 검출용 조성물은 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균인 아스퍼질러스 푸미가투스(Aspergillus fumigatus)를 특이적으로 검출할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.
본 발명에 따른 상기 서열번호 1의 정방향 프라이머 염기서열 및 서열번호 2의 역방향 프라이머 염기서열을 포함하는 진균 감염 검출용 조성물은 서열번호 3의 프로브 염기서열을 더 포함할 수 있으며, 상기 서열번호 4의 정방향 프라이머 염기서열 및 서열번호 5의 역방향 프라이머 염기서열을 포함하는 진균 감염 검출용 조성물은 서열번호 6의 프로브 염기서열을 더 포함할 수 있다. 상기 서열번호 3 및 6의 프로브 염기서열은 5' 말단 및 3' 말단에 형광물질 또는 소광제를 포함할 수 있으며, 보다 바람직하게는 상기 5' 말단에 형광물질을 포함할 수 있고 상기 3' 말단에 소광제를 포함할 수 있다. 상기 5' 말단에 사용될 수 있는 형광물질의 비제한적인 예시로는 6-FAM (6-Carboxyfluorescein), TET (Tetrachlorofulorescein), VIC, NED, Cy5 등이 있으며, 상기 3' 말단에 사용될 수 있는 소광제의 비제한적인 예시로는 MGBNFQ (molecular grove binding non-fluorescence quencher), TAMRA (5-Carboxy tetramethylrhodamine), QSY 등이 있다. 바람직하게는 상기 서열번호 3의 프로브 염기서열의 5' 말단에 TET (Tetrachlorofulorescein) 형광물질을 사용할 수 있으며, 3' 말단에 TAMRA (5-Carboxytetramethyl rhodamine) 소광제를 사용할 수 있다. 또한, 바람직하게는 상기 서열번호 6의 프로브 염기서열의 5' 말단에 6-FAM (6-Carboxyfluorescein) 형광물질을 사용할 수 있으며, 3' 말단에 TAMRA (5-Carboxytetramethylrhodamine) 소광제를 사용할 수 있다.
본 발명에 따른 상기 프라이머 및 프로브는 인공슬관절치환물주위감염의 원인체인 우점종 진균 5종의 유전자를 비교하여 불일치가 거의 없는 서열을 중심으로 디자인될 수 있으며, 상기 우점종 진균의 특이적 검출에 영향을 주지 않는 범위 내에서 변형될 수 있다. 상기 비교에 사용되는 유전자는 상기 우점종 진균의 18s rRNA 유전자일 수 있으며, 상기 변형은 상기 프라이머 서열의 부가, 결실 또는 치환을 의미할 수 있다.
인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균 감염 검출방법
본 발명은 서열번호 1의 정방향 프라이머 염기서열 및 서열번호 2의 역방향 프라이머 염기서열; 서열번호 4의 정방향 프라이머 염기서열 및 서열번호 5의 역방향 프라이머 염기서열;로 이루어지는 군에서 선택된 1종 이상의 프라이머 세트를 포함하는 진균 감염 검출용 조성물에 상기 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균의 핵산 주형을 혼합하는 단계; 및 상기 혼합물을 이용하여 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균 감염을 검출하는 단계;를 포함하는 것을 특징으로 하는 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균 감염 검출방법을 제공한다.
상기 서열번호 1의 정방향 프라이머 염기서열 및 서열번호 2의 역방향 프라이머 염기서열을 포함하는 진균 감염 검출용 조성물은 칸디다 파라프실로시스(Candida parapsilosis), 칸디다 트로피칼리스(Candida tropicalis), 칸디다 글라브라타(Candida glabrata) 및 칸디다 알비칸스(Candida albicans)로 이루어지는 군에서 선택된 1종 이상의 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균을 특이적으로 검출할 수 있으며, 상기 서열번호 4의 정방향 프라이머 염기서열 및 서열번호 5의 역방향 프라이머 염기서열을 포함하는 진균 감염 검출용 조성물은 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균인 아스퍼질러스 푸미가투스(Aspergillus fumigatus)를 특이적으로 검출할 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.
상기 서열번호 1의 정방향 프라이머 염기서열 및 서열번호 2의 역방향 프라이머 염기서열을 포함하는 진균 감염 검출용 조성물은 서열번호 3의 프로브 염기서열을 더 포함할 수 있으며, 상기 서열번호 4의 정방향 프라이머 염기서열 및 서열번호 5의 역방향 프라이머 염기서열을 포함하는 진균 감염 검출용 조성물은 서열번호 6의 프로브 염기서열을 더 포함할 수 있다.
상기 검출방법은 실시간 중합효소 연쇄반응(Real-time PCR), DNA 시퀀싱(DNA sequencing), 마이크로어레이(Microarray)에 의한 혼성화, PCR-RFLP(Restriction fragment length polymorphism) 분석, RAPD(Randomly amplified polymorphic DNA), DAF(DNA amplification fingerprinting), AP-PCR(Arbitrarily primed PCR), STS(Sequence tagged site), EST(Expressed sequence tag), SCAR(Sequence Characterized Amplified Regions), ISSR(Inter-Simple Sequence Repeat), AFLP(Amplified Fragment Length Polymorphism), CAPS(Cleaved Amplified Polymorphic Sequences), PCR-SSCP(Single-Strand Conformation Polymorphism), 노던 하이브리다이제이션(Northern hybridization), 서던 하이브리다이제이션(Southern hybridization) 및 웨스턴 하이브리다이제이션(Western hybridization) 등과 같은 당업계에 공지된 다양한 DNA 다형성 분석을 이용하여 수행될 수 있으며, 바람직하게는 실시간 중합효소 연쇄반응(Real-time PCR)을 이용하여 수행될 수 있으나, 이에 제한되는 것은 아니다.
상기 Real-time PCR을 이용한 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균 감염 검출방법은 서열번호 1의 정방향 프라이머 염기서열, 서열번호 2의 역방향 프라이머 염기서열 및 서열번호 3의 프로브 염기서열을 포함하는 진균 감염 검출용 조성물에 상기 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균의 핵산 주형을 혼합하여 PCR 조성물을 제조하는 단계; 및 상기 혼합물을 이용하여 Real-time PCR을 수행하여 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균 감염을 검출하는 단계;를 포함할 수 있다.
상기 PCR 조성물은 전체 PCR 조성물 20 중량부에 대해 상기 서열번호 1의 정방향 프라이머 0.1 내지 2 중량부; 상기 서열번호 2의 역방향 프라이머 0.1 내지 2 중량부; 상기 서열번호 3의 프로브 0.1 내지 2 중량부; 및 주형 DNA 1 내지 3 중량부;를 포함할 수 있으며, 바람직하게는 전체 PCR 조성물 20 중량부에 대해 상기 서열번호 1의 정방향 프라이머 0.5 내지 1.5 중량부; 상기 서열번호 2의 역방향 프라이머 0.5 내지 1.5 중량부; 상기 서열번호 3의 프로브 0.5 내지 1.5 중량부; 및 주형 DNA 1.5 내지 2.5 중량부;를 포함할 수 있다.
상기 서열번호 1의 정방향 프라이머는 2 내지 6 μM의 농도로 사용될 수 있으며, 바람직하게는 3 내지 5 μM의 농도로 사용될 수 있다. 마찬가지로, 상기 서열번호 2의 역방향 프라이머는 2 내지 6 μM의 농도로 사용될 수 있으며, 바람직하게는 3 내지 5 μM의 농도로 사용될 수 있다. 상기 서열번호 3의 프로브는 0.1 내지 4 μM의 농도로 사용될 수 있으며, 바람직하게는 1 내지 2 μM의 농도로 사용될 수 있다.
또한, 상기 Real-time PCR을 이용한 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균 감염 검출방법은 서열번호 4의 정방향 프라이머 염기서열, 서열번호 5의 역방향 프라이머 염기서열 및 서열번호 6의 프로브 염기서열을 포함하는 진균 감염 검출용 조성물에 상기 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균의 핵산 주형을 혼합하여 PCR 조성물을 제조하는 단계; 및 상기 혼합물을 이용하여 Real-time PCR을 수행하여 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균 감염을 검출하는 단계;를 포함할 수 있다.
상기 PCR 조성물은 전체 PCR 조성물 20 중량부에 대해 상기 서열번호 4의 정방향 프라이머 0.1 내지 2 중량부; 상기 서열번호 5의 역방향 프라이머 0.1 내지 2 중량부; 상기 서열번호 6의 프로브 0.1 내지 2 중량부; 및 주형 DNA 1 내지 3 중량부;를 포함할 수 있으며, 바람직하게는 전체 PCR 조성물 20 중량부에 대해 상기 서열번호 4의 정방향 프라이머 0.5 내지 1.5 중량부; 상기 서열번호 5의 역방향 프라이머 0.5 내지 1.5 중량부; 상기 서열번호 6의 프로브 0.5 내지 1.5 중량부; 및 주형 DNA 1.5 내지 2.5 중량부;를 포함할 수 있다.
상기 서열번호 4의 정방향 프라이머는 2 내지 6 μM의 농도로 사용될 수 있으며, 바람직하게는 3 내지 5 μM의 농도로 사용될 수 있다. 마찬가지로, 상기 서열번호 5의 역방향 프라이머는 2 내지 6 μM의 농도로 사용될 수 있으며, 바람직하게는 3 내지 5 μM의 농도로 사용될 수 있다. 상기 서열번호 6의 프로브는 0.1 내지 4 μM의 농도로 사용될 수 있으며, 바람직하게는 1 내지 2 μM의 농도로 사용될 수 있다.
또한, 상기 Real-time PCR을 이용한 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균 감염 검출방법은 서열번호 1의 정방향 프라이머 염기서열, 서열번호 2의 역방향 프라이머 염기서열, 서열번호 3의 프로브 염기서열, 서열번호 4의 정방향 프라이머 염기서열, 서열번호 5의 역방향 프라이머 염기서열 및 서열번호 6의 프로브 염기서열을 포함하는 진균 감염 검출용 조성물에 상기 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균의 핵산 주형을 혼합하여 PCR 조성물을 제조하는 단계; 및 상기 혼합물을 이용하여 Real-time PCR을 수행하여 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균 감염을 검출하는 단계;를 포함할 수 있다.
상기 PCR 조성물은 전체 PCR 조성물 20 중량부에 대해 상기 서열번호 1의 정방향 프라이머 0.1 내지 2 중량부; 상기 서열번호 2의 역방향 프라이머 0.1 내지 2 중량부; 상기 서열번호 3의 프로브 0.1 내지 2 중량부; 상기 서열번호 4의 정방향 프라이머 0.1 내지 2 중량부; 상기 서열번호 5의 역방향 프라이머 0.1 내지 2 중량부; 상기 서열번호 6의 프로브 0.1 내지 2 중량부; 및 주형 DNA 1 내지 3 중량부;를 포함할 수 있으며, 바람직하게는 전체 PCR 조성물 20 중량부에 대해 상기 서열번호 1의 정방향 프라이머 0.5 내지 1.5 중량부; 상기 서열번호 2의 역방향 프라이머 0.5 내지 1.5 중량부; 상기 서열번호 3의 프로브 0.5 내지 1.5 중량부; 상기 서열번호 4의 정방향 프라이머 0.5 내지 1.5 중량부; 상기 서열번호 5의 역방향 프라이머 0.5 내지 1.5 중량부; 상기 서열번호 6의 프로브 0.5 내지 1.5 중량부; 및 주형 DNA 1.5 내지 2.5 중량부;를 포함할 수 있다.
상기 서열번호 1 및 4의 정방향 프라이머는 2 내지 6 μM의 농도로 사용될 수 있으며, 바람직하게는 3 내지 5 μM의 농도로 사용될 수 있다. 마찬가지로, 상기 서열번호 2 및 5의 역방향 프라이머는 2 내지 6 μM의 농도로 사용될 수 있으며, 바람직하게는 3 내지 5 μM의 농도로 사용될 수 있다. 상기 서열번호 3 및 6의 프로브는 0.1 내지 4 μM의 농도로 사용될 수 있으며, 바람직하게는 1 내지 2 μM의 농도로 사용될 수 있다.
상기 PCR 조성물을 이용하여 실시간 중합효소 연쇄반응(Real-time PCR)은 90 내지 100℃의 온도에서 10 내지 20초 동안 변성(Denaturation)하는 단계; 53 내지 62℃의 온도에서 20 내지 40초 동안 어닐링(Annealing)하는 단계; 및 67 내지 77℃의 온도에서 20 내지 40초 동안 신장(Elongation)하는 단계를 반복하여 타겟 유전자를 증폭할 수 있으며, 바람직하게는 93 내지 97℃의 온도에서 10 내지 20초 동안 변성(Denaturation)하는 단계; 56 내지 60℃의 온도에서 20 내지 40초 동안 어닐링(Annealing)하는 단계; 및 70 내지 74℃의 온도에서 20 내지 40초 동안 신장(Elongation)하는 단계를 반복하여 타겟 유전자를 증폭할 수 있다. 상기 반복은 35 내지 45 사이클 만큼 반복될 수 있으며, 상기 반복 횟수를 35 사이클 미만으로 실시할 경우에는 타겟 유전자가 충분히 증폭되지 않아서 타겟 유전자가 검출되지 않을 수 있고, 상기 반복 횟수를 45 사이클을 초과하여 실시할 경우 검출 시간이 너무 오래 걸리는 문제점이 있을 수 있다.
이하, 본 발명의 실시예를 상세히 기술하나, 하기 실시예에 의해 본 발명이 한정되지 아니함은 자명하다.
실시예 1. 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균 감염 검출용 프라이머 제작
인공슬관절치환물주위감염을 일으키는 원인체 진균 내 18s rRNA에 존재하는 타겟 부위를 특이적으로 검출할 수 있는 프라이머 세트를 제작하기 위해 실시예 1을 실시하였다.
인공슬관절치환물주위감염을 일으키는 원인체인 우점종 진균 5종 중 칸디다 4종의 18s rRNA 서열을 GeneBank(www.ncbi.nlm.nih.gov)으로부터 취합한 뒤, multi-alignment를 이용해 서열을 비교하였다. 상기 칸디다 4종은 칸디다 파라프실로시스(Candida parapsilosis), 칸디다 트로피칼리스(Candida tropicalis), 칸디다 글라브라타(Candida glabrata) 및 칸디다 알비칸스(Candida albicans)를 의미한다. 상기 칸디다 4종의 서열을 비교한 결과, 불일치가 거의 없는 서열에서 서열번호 1 및 2의 프라이머 염기서열을 디자인하였다. 상기 칸디다 4종의 multi-alignment 결과는 도 1에 나타내었으며, 상기 서열번호 1 및 2의 프라이머 염기서열은 표 1에 나타내었다.
인공슬관절치환물주위감염을 일으키는 원인체인 우점종 진균 5종 중 아스퍼질러스 1종의 18s rRNA 서열을 GeneBank(www.ncbi.nlm.nih.gov)으로부터 취합한 뒤, multi-alignment를 이용해 서열을 비교하였다. 상기 아스퍼질러스 1종은 아스퍼질러스 푸미가투스(Aspergillus fumigatus)를 의미한다. 상기 아스퍼질러스 1종의 서열을 비교한 결과, 불일치가 거의 없는 서열에서 서열번호 4 및 5의 프라이머 염기서열을 디자인하였다. 상기 아스퍼질러스 1종의 multi-alignment 결과는 도 2에 나타내었으며, 상기 서열번호 4 및 5의 프라이머 염기서열은 표 1에 나타내었다.
실시예 2. 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균 감염 검출용 프로브 제작
실시예 2에서는 상기 실시예 1에서 제작한 프라이머를 사용하여 TaqMan probe 실시간 중합효소 연쇄반응(Real-time PCR)을 수행하기 위해 프로브(probe)를 제작하였다. 상기 실시예 1과 동일한 방법으로 상기 칸디다 4종의 18s rRNA 서열을 multi-alignment하여 비교하였으며, 불일치가 거의 없는 서열에서 서열번호 3의 프로브 염기서열을 디자인하였다. 상기 서열번호 3의 프로브 염기서열의 5' 말단에는 TET (Tetrachlorofulorescein) 형광물질을 표지하여 사용하였고, 3' 말단에는 TAMRA (5-Carboxytetramethylrhodamine) 소광제를 표지하여 사용하였다. 상기 칸디다 4종의 multi-alignment 결과는 도 1에 나타내었으며, 상기 서열번호 3의 프라이머 염기서열은 표 1에 나타내었다.
상기 실시예 1과 동일한 방법으로 상기 아스퍼질러스 1종의 18s rRNA 서열을 multi-alignment하여 비교하였으며, 불일치가 거의 없는 서열에서 서열번호 6의 프로브 염기서열을 디자인하였다. 상기 서열번호 6의 프로브 염기서열의 5' 말단에는 6-FAM (6-Carboxyfluorescein) 형광물질을 표지하여 사용하였고, 3' 말단에는 TAMRA (5-Carboxytetramethylrhodamine) 소광제를 표지하여 사용하였다. 상기 아스퍼질러스 1종의 multi-alignment 결과는 도 2에 나타내었으며, 상기 서열번호 6의 프라이머 염기서열은 표 1에 나타내었다.
Figure 112022142180914-pat00001
본 실시예 1 및 2에서 제작한 상기 서열번호 1의 정방향 프라이머 염기서열, 서열번호 2의 역방향 프라이머 염기서열 및 서열번호 3의 프로브 염기서열을 포함하는 프라이머 세트는 상기 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균 중 칸디다 4종을 검출할 수 있으며, 상기 서열번호 4의 정방향 프라이머 염기서열, 서열번호 5의 역방향 프라이머 염기서열 및 서열번호 6의 프로브 염기서열을 포함하는 프라이머 세트는 상기 서열번호 1의 정방향 프라이머 염기서열, 서열번호 2의 역방향 프라이머 염기서열 및 서열번호 3의 프로브 염기서열을 포함하는 프라이머 세트는 아스퍼질러스(Aspergillus) 종을 검출할 수 있다. 상기 칸디다 4종은 칸디다 파라프실로시스(Candida parapsilosis), 칸디다 트로피칼리스(Candida tropicalis) 및 칸디다 글라브라타(Candida glabrata), 칸디다 알비칸스(Candida albicans)를 의미한다.
실시예 3. 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균 감염 검출용 프라이머 및 프로브를 이용한 우점종 진균 검출시험
상기 실시예 1 및 2에서 제작한 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균 감염 검출용 프라이머 및 프로브를 이용하여 상기 우점종 진균을 검출하기 위해 실시예 3을 실시하였다. 상기 실시예 3에서 사용된 우점종 진균의 표준 균주는 칸디다 파라프실로시스(KCTC7653 Candida parapsilosis), 칸디다 트로피칼리스(KCTC7212 Candida tropicalis), 칸디다 글라브라타(KCTC7219 Candida glabrata), 칸디다 알비칸스(ATCC 10231 Candida albicans) 및 아스퍼질러스 푸미가투스(KCTC6145 Aspergillus fumigatus)를 사용하였다.
상기 우점종 진균 5종을 Sabouraud's Dextrose Agar(SDA) media에서 배양하였으며, 상기 배양액 1 mL에서 Qiagen 사의 Puregene Blood Kit(Cat. No. / ID: 158567)를 이용하여 DNA를 추출하였다. 상기 추출한 DNA를 주형으로 하고, 상기 실시예 1 및 2에서 제작한 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균 감염 검출용 프라이머 및 프로브를 이용하여 TaqMan Probe 실시간 중합효소 연쇄반응(Real-time PCR)을 실시하였다. 상기 Real-time PCR은 Biorad 사의 CFX-96 장비를 이용하여 수행하였다. 상기 Real-time PCR의 실험 조건을 최적화하기 위해 예비 실험을 진행하였으며, 그 결과 최적화된 Real-time PCR의 실험 조건을 설정하였고, 상기 최적 조건을 표 2 내지 4에 기재하였다. 하기 표 2에는 정방향 및 역방향 프라이머와 프로브의 최적화된 농도를 기재하였으며, 하기 표 3에는 상기 우점종 진균의 Real-time PCR 조성물의 구체적인 조성을 기재하였고, 하기 표 4에는 상기 Real-time PCR의 변성(Denaturation), 어닐링(Annealing) 및 신장(Elongation)의 실험 조건(온도 및 시간)을 기재하였다.
Figure 112022142180914-pat00002
Figure 112022142180914-pat00003
Figure 112022142180914-pat00004
상기 표 2 내지 4에 따른 Real-time PCR 최적 조건으로 실험을 진행한 결과, 상기 실시예 1 내지 2에서 제조한 프라이머와 프로브를 이용하여 상기 우점종 진균 5종을 검출하였으며, 상기 우점종 진균 5종을 검출한 Real-time PCR 결과를 도 3에 나타내었다.
상기 도 3에서 증폭된 유전자가 주형으로 사용한 우점종 진균 중 칸디다 종의 표준 균주 4종이 맞는지를 확인하기 위하여 시퀀싱을 진행하였다. 상기 시퀀싱에 사용한 프라이머는 2가지로, 상기 서열번호 1의 정방향 프라이머 염기서열과 상기 칸디다 4종의 상용화된 시퀀싱 프라이머(ITS)를 사용하였다. 상기 2개의 프라이머를 사용하여 시퀀싱한 결과, 2개의 프라이머 모두에서 상기 우점종 진균 중 칸디다 4종의 서열이 시퀀싱되었으며, 이는 상기 실시예 1 내지 2에서 제작한 프라이머와 프로브가 우점종 진균 중 칸디다 4종을 정확하게 증폭한 것을 의미한다. 상기 2개의 프라이머를 사용한 시퀀싱 결과를 표 5에 기재하였다.
또한, 상기 도 3에서 증폭된 유전자가 주형으로 사용한 우점종 진균 중 아스퍼질러스 종의 표준 균주 1종이 맞는지를 확인하기 위하여 시퀀싱을 진행하였다. 상기 시퀀싱에 사용한 프라이머는 2가지로, 상기 서열번호 4의 정방향 프라이머 염기서열과 상기 아스퍼질러스 종의 상용화된 시퀀싱 프라이머(ITS)를 사용하였다. 상기 2개의 프라이머를 사용하여 시퀀싱한 결과, 2개의 프라이머 모두에서 상기 우점종 진균 중 아스퍼질러스 푸미가투스(Aspergillus fumigatus)의 서열이 시퀀싱되었으며, 이는 상기 실시예 1 내지 2에서 제작한 프라이머와 프로브가 우점종 진균 중 아스퍼질러스 푸미가투스(Aspergillus fumigatus)를 정확하게 증폭한 것을 의미한다. 상기 2개의 프라이머를 사용한 시퀀싱 결과를 표 6에 기재하였다.
Figure 112022142180914-pat00005
Figure 112022142180914-pat00006
실험예 1. 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균 감염 검출용 프라이머 및 프로브의 진균 민감도 검출 시험
1-1. 우점종 진균 5종의 유전자 합성
상기 실시예 1 내지 2에서 제작한 프라이머와 프로브를 이용하여 인공슬관절치환물주위감염 원인 세균인 우점종 진균 5종의 민감도를 평가하기 위해 실험예 1을 실시하였다. 상기 실험예 1을 실시하기 위해, 상기 우점종 진균 5종의 검출용 유전자를 합성하였으며, 상기 검출용 유전자로는 진균의 18s rRNA 유전자의 일부로 설정하여 합성하였다. 상기 합성한 유전자의 서열을 표 7에 기재하였다. 상기 합성된 유전자는 Thermo fisher scientific 사의 나노드랍(Nanodrop)을 이용하여 흡광도를 측정하였으며, 상기 흡광도를 기준으로 웹 기반 유전자 카피(copy) 수를 계산하는 프로그램인 DNA Copy Number and Dilution Calculator를 이용하여 상기 합성된 유전자를 정량하였다.
1-2. 민감도 검출
상기 실험예 1-1에 따른 정량 프로그램을 이용하여 상기 표 7의 합성 유전자를 각각 109, 108, 107, 106, 105, 104, 103, 102 또는 101 copies/μL이 되도록 준비하였다. 상기 실험예 1-2에서 실시한 Real-time PCR 조성물 및 조건은 상기 표 2 내지 4와 동일하게 실시하였으며, 주형 DNA는 상기 준비한 농도별 합성 유전자를 각각 사용하였다. 상기 실험예 2의 Real-time PCR을 실시한 증폭곡선을 도 4 내지 8에 나타내었으며, 표준곡선은 도 9 내지 13에 나타내었다.
상기 도 4 내지 8에 기재한 증폭곡선을 통해 상기 실시예 1 내지 2에서 제작한 프라이머와 프로브에 의해 상기 실험예 1-1에서 합성한 우점종 진균 5종이 잘 증폭되는 것을 확인하였고, 이를 통해 도 9 내지 13에 기재한 표준곡선을 구축하였다. 상기 실험예 1-2의 결과로 농도별로 희석한 유전자의 Real-time PCR 결과는 일정한 간격을 두면서 S자 곡선을 나타내는 것을 상기 증폭곡선을 통해 확인하였다. 상기 증폭곡선의 값을 log 값으로 변환하여 직선 그래프인 표준곡선을 도출하였으며, 상기 표준곡선은 CFX-96 프로그램인 BioRadCFXManager를 이용하여 상기 증폭곡선에서 얻은 Ct 값과 Standard column에 입력한 정량 값을 바탕으로 도출하였다. 상기 표준곡선을 기준으로 동일한 시료의 Real-time PCR 결과인 Ct 값에서 검출하고자 하는 DNA의 양을 계산하여 정량 분석을 실시하였다. 상기 실험예 1에서 실시한 각 균주별 Real-time PCR의 Ct 값, 검출 민감도를 표 8에 기재하였으며, 상기 각 균주별의 최소 검출한계(Limited of Detection, LoD) 결과를 표 9에 기재하였다. 상기 최소 검출한계는 상기 실험예 1의 결과에서 95% 이상의 양성을 보이는 구간을 최소 검출한계로 판정하였다.
Figure 112022142180914-pat00007
Figure 112022142180914-pat00008
Figure 112022142180914-pat00009
본 실험예 1의 결과, 인공슬관절치환물주위감염 원인체인 우점종 진균 중 칸디다 파라프실로시스(Candida parapsilosis)의 경우 기울기 값은-3.323, R2 값은 0.998, 증폭 효율은 99.9%로 확인되었고(도 4 및 9 참조), 칸디다 트로피칼리스(Candida tropicalis)의 경우 기울기 값은 -3.554, R2 값은 0.993, 증폭 효율은 91.1%로 확인되었고(도 5 및 10 참조), 칸디다 글라브라타(Candida glabrata)의 경우 기울기 값은 -3.281, R2 값은 0.999, 증폭 효율은 101.7%로 확인되었고(도 6 및 11 참조), 칸디다 알비칸스(Candida albicans)의 경우 기울기 값은 -3.349, R2 값은 0.998, 증폭 효율은 98.9%로 확인되었고(도 7 및 12 참조), 아스퍼질러스 푸미가투스 (Aspergillus fumigatus)의 경우 기울기 값은 -3.558, R2 값은 0.998, 증폭 효율은 91.0%로 확인되었다(도 8 및 13 참조).
본 실험예 1의 결과, 인공슬관절치환물주위감염 원인체인 우점종 진균 중 칸디다 파라프실로시스(Candida parapsilosis)의 경우 최소검출한계가 101 copies/μl로 반응당 13.2 카피(13.2 copy/rxn)로 확인되었고, 칸디다 트로피칼리스(Candida tropicalis)의 경우 최소검출한계가 101 copies/μl로 반응당 18.0 카피(18.0 copy/rxn)로 확인되었고, 칸디다 글라브라타(Candida glabrata)의 경우 최소검출한계가 101 copies/μl로 반응당 12.7 카피(12.7 copy/rxn)로 확인되었고, 칸디다 알비칸스(Candida albicans)의 경우 최소검출한계가 101 copies/ul로 반응당 12.4 카피(12.4 copy/rxn)로 확인되었고, 아스퍼질러스 푸미가투스(Aspergillus fumigatus)의 경우 최소검출한계가 101 copies/μl로 반응당 10.9 카피(10.9 copy/rxn)로 확인되었다.
실험예 2. 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균 감염 검출용 프라이머 및 프로브의 진균 특이도 검출 시험
상기 실시예 1 내지 2에서 제작한 프라이머와 프로브를 이용하여 인공슬관절치환물주위감염 원인 세균인 우점종 진균 5종의 특이도를 평가하기 위해 실험예 2를 실시하였다. 상기 실험예 1과 동일한 방법으로 상기 우점종 진균 5종의 검출용 유전자를 합성하였으며, 상기 실험예 2에서 실시한 Real-time PCR 조성물 및 조건은 상기 표 2 내지 4와 동일하게 실시하였으며, 주형 DNA는 상기 준비한 우점종 진균 5종의 합성 유전자를 사용하였다.
본 실험예 2의 결과, Real-time PCR의 Ct 값을 기준으로 검출 대상이 되는 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균 5종의 검출을 위해 합성한 유전자의 존재 여부를 음성 또는 양성으로 판정하였으며, 상기 우점종 진균 5종 모두 양성으로 판정하였다.
이상 설명으로부터, 본 발명에 속하는 기술 분야의 당업자는 본 발명의 그 기술적 사상이나 필수적 특징을 변경하지 않고서 다른 구체적인 형태로 실시될 수 있다는 것을 이해할 수 있을 것이다. 이와 관련하여, 이상에서 기술한 실시예들은 모든 면에서 예시적인 것이며, 한정적인 것이 아닌 것으로서 이해해야만 한다.

Claims (5)

  1. 서열번호 1의 정방향 프라이머 염기서열, 서열번호 2의 역방향 프라이머 염기서열, 서열번호 3의 프로브 염기서열, 서열번호 4의 정방향 프라이머 염기서열, 서열번호 5의 역방향 프라이머 염기서열 및 서열번호 6의 프로브 염기서열을 포함하는 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균 감염 검출용 조성물.
  2. 삭제
  3. 삭제
  4. 제1항에 있어서,
    상기 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균은
    칸디다 파라프실로시스(Candida parapsilosis), 칸디다 트로피칼리스(Candida tropicalis), 칸디다 글라브라타(Candida glabrata), 칸디다 알비칸스(Candida albicans) 및 아스퍼질러스 푸미가투스(Aspergillus fumigatus)인 것을 특징으로 하는 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균 감염 검출용 조성물.
  5. 제1항에 따른 진균 감염 검출용 조성물에 제4항에 따른 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균의 핵산 주형을 혼합하는 단계; 및
    상기 혼합물을 이용하여 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균 감염을 검출하는 단계;를 포함하는 것을 특징으로 하는 인공슬관절치환물주위감염 우점종 진균 감염 검출방법.
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Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR20150007054A (ko) * 2013-07-10 2015-01-20 솔젠트 (주) 중합효소연쇄반응 및 실시간중합효소연쇄반응을 이용한 세포치료제 또는 생물학적 의약품에 오염되는 진균을 검출하는 방법 및 이 방법에 사용하기 위한 키트
KR101521409B1 (ko) 2015-01-15 2015-05-18 경북대학교 산학협력단 진균성 및 아메바성 각막염의 원인체를 동시에 검출할 수 있는 다중 중합효소 연쇄반응 프라이머 세트 및 이를 이용한 각막염 유발균 검출 방법
KR20200009054A (ko) * 2017-05-17 2020-01-29 마이크로바이오 피티와이 엘티디 바이오마커 및 그의 용도

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR20150007054A (ko) * 2013-07-10 2015-01-20 솔젠트 (주) 중합효소연쇄반응 및 실시간중합효소연쇄반응을 이용한 세포치료제 또는 생물학적 의약품에 오염되는 진균을 검출하는 방법 및 이 방법에 사용하기 위한 키트
KR101521409B1 (ko) 2015-01-15 2015-05-18 경북대학교 산학협력단 진균성 및 아메바성 각막염의 원인체를 동시에 검출할 수 있는 다중 중합효소 연쇄반응 프라이머 세트 및 이를 이용한 각막염 유발균 검출 방법
KR20200009054A (ko) * 2017-05-17 2020-01-29 마이크로바이오 피티와이 엘티디 바이오마커 및 그의 용도

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