KR101930019B1 - 표피 성장 인자 수용체 표면 항원상의 에피토프 및 이의 용도 - Google Patents

표피 성장 인자 수용체 표면 항원상의 에피토프 및 이의 용도 Download PDF

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Abstract

본 발명은 표피 성장 인자 수용체(epidermal growth factor receptor : EGFR) 상의 에피토프 및 이의 용도에 대한 것으로, 본 발명에서 제공되는 에피토프는 고도로 보존되어 있고, 표피 성장 인자(epidermal growth factor : EGF)와의 결합에 밀접한 관련이 있는 영역 내에 위치하고 있으므로, 상기 에피토프를 포함하는 백신조성물 또는 상기 에피토프에 대한 항체를 포함하는 조성물은 EGF와 EGRF의 결합에 의한 신호전달을 효율적으로 차단하여 암 등 다양한 질환의 치료에 매우 유용하게 이용가능하며,
본 발명에 따른 에피토프에 결합하는 항체는 EGF 뿐 아니라 TGF-a, AR, BTC, EPR 및 HB-EGF 등의 다양한 EGFR 리간드의 EGFR과의 결합을 효율적으로 저해할 수 있으므로, EGF 뿐 아니라 다른 EGFR 리간드와의 결합으로 인한 EGFR의 활성화에 따라 발생하는 다양한 질환의 치료에 이용될 수 있다.

Description

표피 성장 인자 수용체 표면 항원상의 에피토프 및 이의 용도{EPITOPES OF EPIDERMAL GROWTH FACTOR RECEPTOR SURFACE ANTIGEN AND USE THEREOF}
본 발명은 표피 성장 인자 수용체(epidermal growth factor receptor, 이하 'EGFR'이라 한다) 상의 에피토프 및 이의 용도에 관한 것으로, 본 발명에서 제공되는 에피토프는 고도로 보존되어 있고, 표피 성장 인자(epidermal growth factor, 이하 'EGF'이라 한다)와의 결합에 밀접한 관련이 있는 영역 내에 위치하고 있으므로, 상기 에피토프를 포함하는 백신 조성물, 또는 상기 에피토프에 대한 항체 및 이를 포함하는 조성물은 EGF와 EGFR의 결합에 의한 신호전달을 효율적으로 차단하여 암 등 다양한 질환의 치료에 매우 유용하게 이용가능하다. 더욱이, 상기 에피토프에 결합하는 항체는 EGF 뿐 아니라 transforming growth factor-a(TGF-a), amphiregulin(AR), betacellulin(BTC), epiregulin(EPR) 및 heparin-binding EGF-like growth factor(HB-EGF) 등의 다양한 EGFR 리간드(ligand)의 EGFR과의 결합을 효율적으로 저해할 수 있으므로, EGFR의 활성화로 인한 다양한 질환의 치료에 이용될 수 있다.
또한 본 발명은 상기 에피토프에 특이적인 항체를 생산하는 방법에 관한 것이다.
암의 면역요법적 치료 방법은 수술, 방사선 치료요법 및 화학 치료요법에 비해 질병의 표적에 대한 특이성을 높여 항암 효과를 상승시키고 부작용은 감소시키는 이점이 있다. 종양 특이적인 단클론 항체는 다양한 암 종에 따라 특이적으로 과발현되는 특정 단백질을 표적으로 하여 항암 효과를 획득함으로 종양 치료에 있어 매우 유용한 치료제로 사용되고 있다.
표피 성장 인자 수용체(epidermal growth factor receptor; EGFR)는 170kDa의 제 1형 막 단백질로서, 다양한 종류의 종양에서 과다 발현되는 것으로 알려져 있다. 이러한 표피 성장 인자 수용체는 오랫동안 연구되었고, 최근 세포외 도메인 (Garrett TP et al. Cell 2002, 110:763-773) 및 세포내 키나제 도메인 (Stamos J et al. J. Biol. Chem. 2002, 277:46265-46272)의 구조 결정 연구가 성공적으로 수행되었다. 이 연구는 수용체와 이의 리간드의 행태에 중대한 정보를 제공했다. 표피 성장 인자 수용체는 세포 표면 관련 분자로서 리간드인 EGF 및 TGF-a(transforming growth factor-a)와의 결합을 통해 활성화된다. 리간드 결합 후, 수용체는 이량체화되어 세포내 티로신 키나제 영역을 인산화시킨다. 이로 인해 하위 시그널 캐스케이드 반응이 활성화되어 정상 세포 성장 및 증식과 종양 세포 성장을 유도한다. 특히 종양 세포가 그 기능을 표피 성장 인자 수용체에 주로 의존한다면, 표피 성장 인자 수용체의 기능 조절에 의한 가능성의 범위로 인해 수용체는 치료의 공통 표적으로 인식되고 있다.
표피 성장 인자 수용체의 과잉발현은, 특정 암인, 폐암, 유방암, 결장암, 위암, 뇌암, 방광암, 두부 및 경부 암, 난소암 및 전립선암에서 관찰되었다. 따라서, 표피 성장 인자 수용체에 대한 항체를 사용하여 표피 성장 인자 수용체에 표피 성장 인자(EGF)가 결합하는 것을 저해하면 암세포의 성장을 억제하여 암을 치료할 수 있으며, 이는 표피 성장 인자 수용체에 대한 단일클론 항체를 이용하여 이미 실험적으로 증명되었다.
한편, EGF와 결합하는 EGFR 각 도메인의 위치를 규명하고자 하는 시도도 있어 왔지만(S. Yokoyama et al., Cell, 2002, 110:775-787), 직접적으로 해당 EGFR 도메인을 에피토프로 하는 항체를 제작하여 실제 EGF에 의한 EGFR 신호전달 경로의 활성화를 저해할 수 있는지에 대한 결과는 확인되지 않았다.
현재, 임상 분야에서 전이성 대장암의 치료에 사용되고 있는 세툭시맵(Cetuximab)(C225 항체, 제품명: Erbitux; ImClone사, 미국)은 키메라 항체로서, 마우스의 가변 영역과 인간 항체의 IgG1 불변 영역을 결합한 것(마우스 아미노산 서열 약 30% 포함)으로 시험관내에서 EGF에 의한 종양 세포 성장 및 EGFR의 인산화를 억제하며 누드 마우스에서 인간 종양이 형성되는 것을 억제한다. 또한, 상기 항체는 특정 화학치료제와 상승 작용하여 이종이식편 마우스 모델에서 인간 종양을 근절시키는 것으로 밝혀졌다. 하지만, 세툭시맵은 환자에게 면역 반응을 유발(~10%)하는 문제점이 있으며, 단일요법(stand alone therapy)으로는 만족할만한 치료효과를 거두지 못해 다른 화학요법제와의 병용요법(combination therapy)으로만 사용이 가능하다.
전이성 대장암의 치료에 사용되고 있는 또 다른 항체인 파니투무맵(panitumumab)(제품명: Vectibix; Amgen사, 미국)은 완전 인간 항체로 시험관내에서 EGF에 의한 종양 세포 성장 및 표피 성장 인자 수용체의 인산화를 억제하며 누드 마우스에서 인간 종양이 형성되는 것을 억제한다. 또한, 상기 항체는 특정 화학치료제와 상승 작용하여 이종이식편 마우스 모델에서 인간 종양을 근절시키는 것으로 밝혀졌다. 세툭시맵 대비 차별성은 완전 인간 항체이며, 항원 결합능이 10배 더 강화되었으며, IgG2 유형의 항체로서 세툭시맵의 면역 반응 유발 문제를 감소시켰다는데 있다. 그러나, 결합능을 강화시켜 부작용을 줄이고 효능을 늘리고자 하였지만 IgG2가 갖는 한계로 인해 단지 EGF와 EGFR의 결합에 의한 신호전달 억제 효능만을 나타내므로, 기존 세툭시맵이 갖는 신호전이 억제와 ADCC(Antibody-Dependent Cell Cytotoxicity) 효능 중 ADCC 효능이 없어 임상에서 총 효능은 세툭시맵과 유사한 것으로 보고되고 있다.
또한, Merck Serono와 Takeda Pharmaceuticals가 공동 개발 중인 마투즈맵(matuzumab, mAb425) 역시 아직까지는 단일요법으로는 만족할만한 치료효과를 거두지 못하고 있다.
무엇보다 EGFR을 표적으로 하는 기존의 항체 치료제는 모두 K-ras 변이형 대장암에는 처방할 수 없도록 되어 있다. 2009년 보고된 자료를 살펴보면 두 항체가 치료 효과를 보이는 환자 비율은 전체에서 21% 정도이고 나머지 79 %는 치료 효과가 나타나지 않았다. 효과가 나타나지 않는 환자군 중 K-ras 변이형을 갖는 환자는 43% 즉 전체에서 약 30% 정도가 이러한 K-ras 변이형 대장암 군이며, 기존 항체 치료제인 세툭시맵과 파니투무맵은 약 1.5% 정도의 K-ras 변이형에만 효과를 보이고 있다.
따라서, EGF와 EGFR의 결합을 보다 효율적으로 저해하여 기존의 EGFR 항체의 문제점 및 한계를 극복할 수 있는 차별성과 우수성을 가지는 새로운 항-EGFR 항체에 대한 수요는 지속적으로 증가하고 있는 상황이다.
발명의 요약
상기와 같은 문제를 해결하고자 본 발명은 RGDSFTH(서열번호 2)의 아미노산 서열, 또는 이를 포함하는 EGFR 상의 에피토프를 제공하며, 특히 RGDSFTHTP(서열번호 3)의 아미노산 서열을 가지는 에피토프를 제공하는 것을 목적으로 한다.
본 발명은 또한 상기 에피토프를 생산하는 방법 및 상기 에피토프를 포함하는 암 백신용 조성물 또는 암 백신, 상기 에피토프를 이용하여 상기 에피토프에 특이적으로 결합하는 특성을 가지는 항체를 생산하는 방법 및 그러한 방법으로 생산된 항체를 포함하는 암의 예방 및/또는 치료용 조성물 또는 치료제를 제공하는 것을 목적으로 한다.
본 발명은 추가적으로 상기 에피토프 또는 상기 에피토프를 인코딩하는 폴리뉴클레오티드 서열 및 이를 포함하는 암 진단용 조성물 및 키트를 제공하는 것을 또 다른 목적으로 한다.
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도 1은 GC1118 항체와 EGFR의 결합 특성을 3차원적으로 나타내는 도면.
도 2는 EGF와 EGFR의 결합 특성을 3차원적으로 나타내는 도면.
도 3은 EGF가 결합된 EGFR에 GC1118 항체의 결합특성을 overlap 시켜 3차원적으로 나타내는 도면.
도 4는 세툭시맵(A) 또는 마투주맵(B)과 EGFR의 결합 특성을 3차원적으로 나타내는 도면.
도 5는 EGFR 변이체 유전자 합성 및 효모 세포 형질전환 과정을 나타내는 도면.
도 6은 각 EGFR 변이체가 제대로 합성되었음을 DNA 염기서열로부터 결정된 아미노산 서열을 이용하여 확인하였음을 나타내는 도면.
도 7은 각 EGFR 변이체의 발현율을 나타내는 도면.
도 8은 각 EGFR 돌연변이체에 대한 항체들의 결합능을 나타내는 도면.
(A) GC1118
(B) cetuximab (대조군)
도 9는 GC1118과 EGFR 리간드들의 경쟁적 결합능을 나타내는 도면.
(A) GC1118
(B) cetuximab (대조군)
도 10은 GC1118에 의한 세포증식 유도 억제효과를 나타내는 도면.
발명의 상세한 설명 및 바람직한 구현예
이하, 본 발명을 보다 상세히 설명한다.
본 발명에서는 RGDSFTH(서열번호 2)의 아미노산 서열, 또는 이를 포함하는 아미노산 서열, 특히 RGDSFTHTP(서열번호 3)로 표시되는 아미노산 서열이 EGFR의 아미노산 서열 중에서 EGF와의 결합에 필수적으로 작용한다는 점을 규명하였으며, 그러한 아미노산 서열을 에피토프로 가지는 항체가 EGF와 EGFR의 결합을 매우 효율적으로 저해하여 그로 인한 신호전달을 차단함으로써 암 치료에 탁월한 효능을 보임을 확인함으로써 본 발명을 완성하였다.
상기 서열번호 2로 표시되는 RGDSFTH의 아미노산 서열은 서열번호 1로 표시되는 EGFR의 세포외 도메인(Extracellular Domain)의 아미노산 서열의 353 내지 359 번째의 아미노산 잔기에 해당되며, 서열번호 3으로 표시되는 RGDSFTHTP의 아미노산 서열은 서열번호 1로 표시되는 EGFR의 세포외 도메인의 353 내지 361 번째의 아미노산 잔기에 해당된다.
본 발명에서 제공되는 아미노산 서열 내에 존재하는 아미노산 잔기는 그들의 공지된 3-문자 또는 1-문자 약어에 의해 표시된다. 또한, 본 발명에서의 “xA”는 서열번호 1로 표시되는 EGFR 서열의 A 번째 아미노산 x를 의미하며, “xAz”는 A번째 아미노산 x가 z로 치환된 것을 의미한다. 예를 들어, R353은 서열번호 1의 아미노산 서열의 353번째 아미노산 잔기인 아르기닌(Arginine, Arg)을 의미하며, R353G는 서열번호 1의 아미노산 서열의 353번째 아미노산 잔기인 아르기닌이 글라이신(Glycine, Gly)으로 치환된 것을 의미한다.
서열번호 2의 아미노산 서열, 서열번호 2의 아미노산 서열을 포함하는 아미노산 서열 또는 서열번호 3의 아미노산 서열을 가지는 에피토프는 그 3차원 구조를 유지하거나, 암 백신 등의 조성물로 이용시 효율을 제고하기 위하여 담체(carrier)와 결합된 형태로 이용가능하다. 본 발명에 따른 담체는 생체에 적합하며 본 발명에서 목적하는 효과를 거둘 수 있는 것이라면 모두 사용가능한데, 펩타이드, 혈청 알부민, 면역 글로불린, 헤모시아닌 및 다당체 등에서 선택됨이 바람직하지만, 이에 한정되는 것은 아니다.
서열번호 2의 아미노산 서열, 서열번호 2의 아미노산 서열을 포함하는 아미노산 서열 또는 서열번호 3의 아미노산 서열을 가지는 에피토프 자체 또는 담체와 결합된 형태의 복합체는 암 백신 조성물로 이용가능하다. 이때 상기 백신 조성물에는 약학적으로 허용가능한 면역보조제(adjuvant) 또는 부형제가 추가적으로 포함될 수 있다. 면역보조제로는 체내에 주입시 항체 형성을 증진시키는 역할을 하여 본 발명의 목적을 달성할 수 있는 것이라면 어떤 것이라도 사용가능하며, 특히 알루미늄염(Al(OH)3, ALPO4), 스쿠알렌(squalene), 소르비탄 (sorbitane), 폴리소르베이트 80(polysorbate 80), CpG, 리포좀, 콜레스테롤, MPL(monophosphoryl lipid A) 및 GLA(glucopyranosyl lipid A)에서 선택된 하나 이상이 바람직하지만, 이에 한정되는 것은 아니다.
본 발명에서 제공되는 서열번호 2의 아미노산 서열, 서열번호 2의 아미노산 서열을 포함하는 아미노산 서열 또는 서열번호 3의 아미노산 서열을 가지는 에피토프를 인코딩하는 폴리뉴클레오티드는 그 자체로 유전자 암 백신 형태로 이용가능하다. 이때, 상기 폴리뉴클레오티드는 전달체 없이 그 자체로 이용할 수도 있으나, 바이러스성 또는 비바이러스성 전달체에 담지되어 체내로 전달될 수 있다. 바이러스성 또는 비바이러스성 전달체는 본 발명이 속하는 기술분야에서 통상적으로 이용가능하다고 알려진 것이면 어떤 것이라도 이용가능하다. 구체적으로 바이러스성 전달체는 아데노바이러스(adenovirus), 아데노-연관 바이러스(adeno-associated virus), 렌티바이러스(lentivirus), 레트로바이러스(retrovirus) 등이 바람직하며, 비바이러스성 벡터로는 양이온성 폴리머, 비이온성 폴리머, 리포좀, 지질, 인지질, 친수성 폴리머, 소수성 폴리머 및 이들 중에서 선택된 하나 이상의 복합체 등이 이용가능하지만, 이에 한정되는 것은 아니다.
본 발명은 서열번호 2의 아미노산 서열, 서열번호 2의 아미노산 서열을 포함하는 아미노산 서열 또는 서열번호 3의 아미노산 서열을 가지는 에피토프를 인코딩하는 폴리뉴클레오티드를 포함하는 재조합 벡터, 이를 포함하는 숙주세포, 그리고 상기 재조합 벡터 또는 숙주세포를 이용하여 본 발명에 따른 서열번호 2의 아미노산 서열, 서열번호 2의 아미노산 서열을 포함하는 아미노산 서열 또는 서열번호 3의 아미노산 서열을 가지는 에피토프를 생산하는 방법을 제공한다.
본 발명에서 “재조합 벡터”란 적당한 숙주세포에서 목적 단백질을 발현할 수 있는 발현 벡터로서, 유전자 삽입물이 발현되도록 작동가능하게 연결된 필수적인 조절 요소를 포함하는 유전자 작제물을 말한다. 본 발명에서 “작동가능하게 연결된 (operably linked)”은 일반적 기능을 수행하도록 핵산 발현조절 서열과 목적하는 단백질을 코딩하는 핵산 서열이 기능적으로 연결되어 있는 것을 말한다. 재조합 벡터와의 작동적 연결은 본 발명이 속하는 기술분야에서 잘 알려진 유전자 재조합 기술을 이용하여 수행될 수 있으며, 부위-특이적 DNA 절단 및 연결은 본 발명이 속하는 기술 분야에서 일반적으로 알려진 효소 등을 사용하여 용이하게 수행할 수 있다
본 발명에서 사용될 수 있는 적합한 발현 벡터는 프로모터, 개시코돈, 종결코돈, 폴리아데닐화 시그널 및 인핸서 같은 발현 조절 엘리먼트 외에도 막 표적화 또는 분비를 위한 시그널 서열을 포함할 수 있다. 개시 코돈 및 종결 코돈은 일반적으로 면역원성 표적 단백질을 코딩하는 뉴클레오타이드 서열의 일부로 간주되며, 유전자 작제물이 투여되었을 때 개체에서 반드시 작용을 나타내야 하며 코딩 서열과 인프레임(in frame)에 있어야 한다. 일반 프로모터는 구성적 또는 유도성일 수 있다. 원핵 세포에는 lac, tac, T3 및 T7 프로모터가 있으나 이로 제한되지는 않는다. 진핵세포에는 원숭이 바이러스 40(SV40), 마우스 유방 종양 바이러스(MMTV) 프로모터, 사람 면역 결핍 바이러스(HIV), 예를 들면 HIV의 긴 말단 반복부(LTR) 프로모터, 몰로니 바이러스, 시토메갈로바이러스(CMV), 엡스타인 바 바이러스(EBV), 로우스 사코마 바이러스(RSV) 프로모터 뿐만 아니라, β-액틴 프로모터, 사람 헤로글로빈, 사람 근육 크레아틴, 사람 메탈로티오네인 유래의 프로모터가 있으나 이에 제한되지는 않는다.
상기 발현 벡터는 벡터를 함유하는 숙주 세포를 선택하기 위한 선택 마커(selection marker)를 포함할 수 있다. 선택 마커는 벡터로 형질전환된 세포를 선별하기 위한 것으로, 약물 내성, 영양 요구성, 세포 독성제에 대한 내성 또는 표면 단백질의 발현과 같은 선택가능 표현형을 부여하는 마커들이 사용될 수 있다. 선택제(selective agent)가 처리된 환경에서 선별 마커를 발현하는 세포만 생존하므로 형질전환된 세포가 선별 가능하다. 또한, 벡터는 복제가능한 발현벡터인 경우, 복제가 개시되는 특정 핵산 서열인 복제원점(replication origin)을 포함할 수 있다. 재조합 발현 벡터로는 플라스미드, 바이러스, 코즈미드 등 다양한 형태의 벡터가 사용될 수 있다. 재조합 벡터의 종류는 원핵세포 및 진핵세포와 같은 각종 숙주세포에서 원하는 유전자를 발현하고 원하는 단백질을 생산하는 기능을 하는 한 특별히 한정되지는 않지만, 강력한 활성을 나타내는 프로모터와 강한 발현력을 보유하면서 자연 상태와 유사한 형태의 외래 단백질을 대량으로 생산할 수 있는 벡터가 바람직하다.
특히 본 발명에 따른 서열번호 2의 아미노산 서열, 서열번호 2의 아미노산 서열을 포함하는 아미노산 서열 또는 서열번호 3의 아미노산 서열을 가지는 에피토프를 발현시키기 위해 다양한 발현 숙주/벡터 조합이 이용될 수 있다. 진핵숙주에 적합한 발현 벡터로는 SV40, 소 유두종바이러스, 아데노바이러스, 아데노-연관 바이러스(adeno-associated virus), 시토메갈로바이러스, 렌티바이러스 및 레트로바이러스로부터 유래된 발현 조절 서열 등이 사용될 수 있지만 이에 한정되는 것은 아니다. 세균 숙주에 사용할 수 있는 발현 벡터에는 pET, pRSET, pBluescript, pGEX2T, pUC벡터, col E1, pCR1, pBR322, pMB9 및 이들의 유도체와 같이 대장균(Escherichia coli)에서 얻어지는 세균성 플라스미드, RP4와 같이 보다 넓은 숙주 범위를 갖는 플라스미드, gt10과 gt11, NM989와 같은 매우 다양한 파지 람다(phage lambda) 유도체로 예시될 수 있는 파지 DNA, 및 M13과 필라멘트성 단일가닥의 DNA 파지와 같은 기타 다른 DNA 파지가 포함된다. 곤충 세포에 유용한 벡터는 pVL941이다.
상기 재조합 벡터는 숙주세포에 삽입되어 형질전환체를 형성하는데, 적합한 숙주세포는 대장균, 바실러스 서브틸리스(Bacillus subtilis), 스트렙토마이세스 속(Streptomyces sp.), 슈도모나스 속(Pseudomonas sp.), 프로테우스 미라빌리스(Proteus mirabilis) 또는 스타필로코쿠스 속(Staphylococcus sp.)과 같은 원핵 세포, 아스페르길러스 속(Aspergillus sp.)과 같은 진균, 피치아 파스토리스(Pichia pastoris), 사카로마이세스 세레비지애(Saccharomyces cerevisiae), 쉬조사카로마세스 속(Schizosaccharomyces sp.) 및 뉴로스포라 크라사(Neurospora crassa)와 같은 효모, 그 밖의 하등진핵 세포, 및 곤충으로부터의 세포와 같은 고등 진핵생물의 세포와 같은 진핵 세포일 수 있다. 또한 상기 숙주세포는 바람직하게는 식물, 포유동물로부터 유래할 수 있는데, 원숭이 신장 세포7(COS7 : monkey kidney cells) 세포, NSO 세포, SP2/0, 차이니즈 햄스터 난소(CHO : chinese hamster ovary) 세포, W138, 어린 햄스터 신장(BHK : baby hamster kidney)세포, MDCK, 골수종 세포주, HuT 78 세포 및 HEK293 세포 등이 이용가능하며, 이에 한정되지 않는다. 특히 바람직하게는 CHO 세포이다.
본 발명에서 숙주세포로의 “형질 전환”은 핵산을 유기체, 세포, 조직 또는 기관에 도입하는 어떤 방법도 포함되며 당 분야에서 공지된 바와 같이 숙주 세포에 따라 적합한 표준 기술을 선택하여 수행될 수 있다. 이러한 방법에는 전기충격유전자전달법(electroporation), 원형질 융합, 인산 칼슘(CaPO4) 침전, 염화 칼슘(CaCl2) 침전, 실리콘 카바이드 섬유를 이용한 교반, 아그로 박테리아 매개된 형질전환, PEG, 덱스트란 설페이트, 리포펙타민 및 건조/억제 매개된 형질전환 방법 등이 포함되나 이에 제한되지 않는다. 재조합 벡터가 발현되는 형질전환체를 영양배지에서 배양함으로써 본 발명에 따른 서열번호 2의 아미노산 서열, 서열번호 2의 아미노산 서열을 포함하는 아미노산 서열 또는 서열번호 3의 아미노산 서열을 가지는 에피토프를 대량으로 생산할 수 있으며, 배지와 배양조건은 숙주 세포에 따라 관용되는 것을 적당히 선택 이용할 수 있다. 배양시 세포의 생육과 단백질의 대량 생산에 적합하도록 온도, 배지의 pH 및 배양시간 등의 조건들을 적절하게 조절할 수 있다. 상기와 같이 재조합적으로 서열번호 2의 아미노산 서열, 서열번호 2의 아미노산 서열을 포함하는 아미노산 서열 또는 서열번호 3의 아미노산 서열을 가지는 에피토프는 배지 또는 세포 분해물로부터 회수될 수 있으며, 통상적인 생화학 분리 기술에 의해서 분리, 정제가 가능하다(Sambrook et al ., Molecular Cloning : A laborarory Manual , 2 nd Ed ., Cold Spring Harbor Laboratory Press(1989); Deuscher, M., Guide to Protein Purification Methods Enzymology, Vol. 182. Academic Press. Inc., San Diego, CA(1990)). 이에는 전기영동, 원심분리, 겔여과, 침전, 투석, 크로마토그래피(이온교환 크로마토그래피, 친화성 크로마토그래피, 면역흡착 크로마토그래피, 크기 배제 크로마토그래피 등), 등전점 포커싱 및 이의 다양한 변화 및 복합 방법 등이 이용가능하지만 이에 한정되지 않는다.
본 발명은 서열번호 2의 아미노산 서열, 서열번호 2의 아미노산 서열을 포함하는 아미노산 서열 또는 서열번호 3의 아미노산 서열을 가지는 에피토프를 미생물 또는 바이러스 표면에 발현하는 방법을 제공한다. 이때 유도하는 프로모터 또는 신호 단백질을 코딩하는 서열을 포함함을 특징으로 하는 재조합 벡터 및 상기 재조합 벡터를 포함하는 다양한 미생물 또는 바이러스가 사용될 수 있으며, 특히 적합한 미생물 또는 바이러스는 재조합 대장균, 재조합 효모 및 재조합 박테리오 파지 등이 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다. 상기 미생물 또는 바이러스 표면에 상기 서열번호 2 또는 서열번호 3에 따른 에피토프를 발현시키기 위해서는 본 발명이 속하는 기술분야에 잘 알려진 디스플레이(display) 기술이 이용될 수 있으며, 특히 미생물 세포 또는 바이러스 표면에 발현되도록 유도하는 프로모터 또는 신호 단백질을 인코딩하는 서열에 서열번호 2의 아미노산 서열, 서열번호 2의 아미노산 서열을 포함하는 아미노산 서열 또는 서열번호 3의 아미노산 서열을 가지는 에피토프를 인코딩하는 폴리뉴클레오티드 서열을 결합시켜 발현하거나, 원래 표면에 발현되는 단백질을 인코딩하는 유전자 부위의 일부를 결손시키고 이에 서열번호 2의 아미노산 서열, 서열번호 2의 아미노산 서열을 포함하는 아미노산 서열 또는 서열번호 3의 아미노산 서열을 가지는 에피토프를 인코딩하는 폴리뉴클레오티드 서열을 삽입하는 방법 등이 이용가능하지만 이에 한정되는 것은 아니다. 이러한 방법으로 미생물 또는 바이러스 표면에 발현된 서열번호 2의 아미노산 서열, 서열번호 2의 아미노산 서열을 포함하는 아미노산 서열 또는 서열번호 3의 아미노산 서열을 가지는 에피토프는 그 자체로 분리, 정제되어 본 발명에 따른 특정한 용도로 사용할 수 있으며, 표면에 발현된 상태로 서열번호 2의 아미노산 서열, 서열번호 2의 아미노산 서열을 포함하는 아미노산 서열 또는 서열번호 3의 아미노산 서열을 가지는 에피토프에 특이적으로 결합하는 항체를 선별하여 수득하는 용도로도 이용가능하다.
본 발명은 또한 서열번호 2의 아미노산 서열, 서열번호 2의 아미노산 서열을 포함하는 아미노산 서열 또는 서열번호 3의 아미노산 서열을 가지는 에피토프, 상기 에피토프를 포함하는 복합체 또는 상기 에피토프를 인코딩하는 폴리뉴클레오티드를 이용한 서열번호 2의 아미노산 서열, 서열번호 2의 아미노산 서열을 포함하는 아미노산 서열 또는 서열번호 3의 아미노산 서열을 가지는 에피토프에 특이적으로 결합하는 항체, 또는 그러한 항체의 단편을 생산하는 방법을 제공한다. 이러한 항체는 다클론 항체(polyclonal antibody) 또는 단클론 항체(monoclonal antibody) 일 수 있으며, 상기 항체의 단편도 서열번호 2의 아미노산 서열, 서열번호 2의 아미노산 서열을 포함하는 아미노산 서열 또는 서열번호 3의 아미노산 서열을 가지는 에피토프에 결합하는 특성을 보유하는 한, 본 발명의 권리범위에 포함된다. 특히 본 발명에서의 항체 또는 항체의 단편은 서열번호 2의 아미노산 서열, 서열번호 2의 아미노산 서열을 포함하는 아미노산 서열 또는 서열번호 3의 아미노산 서열을 가지는 에피토프에 대한 결합 기능을 보유한 단쇄 항체, 디아바디, 트리아바디, 테트라바디, Fab 단편, F(ab’)2 단편, Fd, scFv, 도메인 항체, 이중특이항체들, 미니바디, 스캡, IgD 항체, IgE 항체, IgM 항체, IgG1 항체, IgG2 항체, IgG3 항체, IgG4 항체, 항체 불변영역의 유도체들, 단백질 스캐폴드(protein scaffolds)에 기초한 인공항체 등이 모두 포함되나, 이에 한정되는 것은 아니다. 또한 본 발명의 항체의 특성이 유지되는 한, 가변영역 내에서의 변이가 일어난 항체도 본 발명의 권리범위에 포함된다. 그러한 예로서 가변영역에서의 아미노산의 보존적 치환(conservative substitution)을 들 수 있다. 보존적 치환은 원래의 아미노산 서열과 유사한 특성을 가지는 다른 아미노산 잔기로의 치환을 의미하는데, 예를 들어 라이신, 아르기닌, 히스티딘은 염기 곁사슬을 가지고 있어 유사한 특성을 가지고, 아스파라틱산과 글루타믹산은 산 곁사슬을 가진다는 점에서 유사한 특성을 가진다. 또한, 글라이신, 아스파라긴, 글루타민, 세린, 트레오닌, 티로신, 시스테인, 트립토판은 비전하 극성 곁사슬을 가진다는 점에서 특성이 유사하며, 알라닌, 발린, 루신, 트레오닌, 아이소류신, 프롤린, 페닐알라닌, 메티오닌은 비극성 곁사슬을 가지고 있다는 점에서, 티로신, 페닐알라닌, 트립토판, 히스티딘은 방향족 곁사슬을 가지고 있다는 점에서 유사한 특성을 가진다. 따라서, 상기와 같이 유사한 특성을 가지는 그룹 내에서의 아미노산 치환이 일어나더라도 별다른 특성 변화를 보이지 않을 것이라는 점은 통상의 기술자에게는 자명한 것이므로, 본 발명에 따른 항체의 특성이 유지되는 한, 가변영역 내에서의 보존적 치환에 의한 변이가 일어난 항체를 생산하는 방법도 본 발명의 권리범위에 포함된다.
본 발명에 따른 서열번호 2의 아미노산 서열, 서열번호 2의 아미노산 서열을 포함하는 아미노산 서열 또는 서열번호 3의 아미노산 서열을 가지는 에피토프에 결합하는 항체는 본 발명이 속하는 기술분야에 잘 알려져 있는 방법을 이용하여 제조할 수 있다. 구체적으로는 서열번호 2의 아미노산 서열, 서열번호 2의 아미노산 서열을 포함하는 아미노산 서열 또는 서열번호 3의 아미노산 서열을 가지는 에피토프, 상기 에피토프를 포함하는 복합체 또는 상기 에피토프를 인코딩하는 폴리뉴클레오티드를 동물에 접종하고, 접종된 동물로부터 서열번호 2의 아미노산 서열, 서열번호 2의 아미노산 서열을 포함하는 아미노산 서열 또는 서열번호 3의 아미노산 서열을 가지는 에피토프에 특이적으로 결합하는 항체를 생산하여, 선별함으로써 수득할 수 있다.
이때, 상기 동물은 인간 유래 서열과 동일한 항체를 생산할 수 있도록 형질전환된 동물, 특히 형질전환된 쥐인 것이 바람직한데, 형질전환된 쥐를 이용한 면역원성이 저하된 소위 인간항체(fully human antibody)는 미국등록특허 제5,569,825호, 미국등록특허 제5,633,425호, 미국등록특허 제7,501,552호등에 기재된 방법을 이용하여 제조할 수 있다. 만약 상기 동물이 인간 유래 서열과 동일한 항체를 생산할 수 있도록 형질전환된 것이 아니라면, 상기 동물로부터 수득된 항체를 이용하여 미국등록특허 제5,225,539호, 미국등록특허 제5,859,205호, 미국등록특허 제6,632,927호, 미국등록특허 제 5,693,762호, 미국등록특허 제6,054,297호, 미국등록특허 제6,407,213호, 국제공개특허 제1998/52976호에 기재된 방법과 같이 추가적으로 인간화(humanization) 단계 또는 탈면역화(deimmunization) 단계를 수행하여, 체내 치료용으로 적합하도록 할 수 있다. 구체적으로 상기 인간화 또는 탈면역화는 인간 항체의 FR(framework)에 동물로부터 생산된 항체의 CDR 서열을 이식(grafting)하는 CDR-이식(CDR grafting) 단계 및 추가적으로 친화도(affinity)를 높이거나, 면역원성(immunogenecity)을 저하시키기 위해, 하나 이상의 아미노산 서열을 치환, 삽입, 결실하는 CDR-워킹(CDR-walking) 단계를 포함할 수 있다.
만약 서열번호 2의 아미노산 서열, 서열번호 2의 아미노산 서열을 포함하는 아미노산 서열 또는 서열번호 3의 아미노산 서열을 가지는 에피토프, 상기 에피토프를 포함하는 복합체 또는 상기 에피토프를 인코딩하는 폴리뉴클레오티드가 아닌 EGFR 전체를 면역원으로 이용하는 경우에는 EGFR에 대한 결합능을 가지는 항체를 우선적으로 선별하는 단계 및 1 차로 선별된 항체 중에서 서열번호 2의 아미노산 서열, 서열번호 2의 아미노산 서열을 포함하는 아미노산 서열 또는 서열번호 3의 아미노산 서열을 가지는 에피토프를 특이적으로 인식하는 항체를 선별하는 방법을 이용할 수도 있다. 이때, 서열번호 2의 아미노산 서열, 서열번호 2의 아미노산 서열을 포함하는 아미노산 서열 또는 서열번호 3의 아미노산 서열을 가지는 에피토프의 중요한 결합부위에 돌연변이를 유발하여, 1 차로 선별된 EGFR에 결합하는 항체들 중에서 서열번호 2의 아미노산 서열, 서열번호 2의 아미노산 서열을 포함하는 아미노산 서열 또는 서열번호 3의 아미노산 서열을 가지는 에피토프의 중요한 결합부위에 돌연변이가 일어난 EGFR에 결합능이 결여되거나 저하된 항체를 선별하는 방법도 이용가능하다.
또한 본 발명이 속하는 기술분야에서 잘 알려진 디스플레이(display) 기술을 이용하여 서열번호 2 또는 서열번호 3에 따른 에피토프에 결합하는 인간 항체를 생산, 선별할 수 있다. 상기 디스플레이 기술은 파지 디스플레이(phage display), 이스트 디스플레이(yeast display), 박테리아 디스플레이(bacteria display), 또는 리보좀 디스플레이(ribosome display) 중에서 선택된 어느 하나인 것이 바람직하지만, 이에 한정되는 것은 아니다. 라이브러리의 제조 및 디스플레이는 미국등록특허 제5,733,743호, 미국등록특허 제7,063,943호, 미국등록특허 제6,172,197호 미국등록특허 제6,348,315호, 미국등록특허 제6,589,741호 등에 기재된 바에 따라 용이하게 실시할 수 있다. 특히 상기 디스플레이에 사용되는 라이브러리(library)는 인간 유래 항체의 서열을 갖도록 설계된 것이 바람직하다. 구체적으로 상기 방법은 서열번호 2의 아미노산 서열, 서열번호 2의 아미노산 서열을 포함하는 아미노산 서열 또는 서열번호 3의 아미노산 서열을 가지는 에피토프 또는 상기 에피토프를 포함하는 복합체를 이용하여 서열번호 2의 아미노산 서열, 서열번호 2의 아미노산 서열을 포함하는 아미노산 서열 또는 서열번호 3의 아미노산 서열을 가지는 에피토프에 특이적으로 결합하는 항체만을 선별(panning)하는 단계를 포함하는 것을 특징으로 한다.
마지막으로 본 발명은 서열번호 2의 아미노산 서열, 서열번호 2의 아미노산 서열을 포함하는 아미노산 서열 또는 서열번호 3의 아미노산 서열을 가지는 에피토프, 상기 에피토프를 포함하는 복합체 또는 상기 에피토프를 인코딩하는 폴리뉴클레오티드를 포함하는 암 백신용 조성물을 제공한다.
이하, 실시예를 통하여 본 발명을 보다 상세히 설명하고자 한다. 이들 실시예는 오로지 본 발명을 보다 구체적으로 설명하기 위한 것으로, 본 발명의 요지에 따라 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되지 않는다는 것은 당해 기술분야에서 통상의 지식을 가진 자에게 있어 자명한 것이다.
실시예 1 : EGFR과 GC1118의 Fab과의 결합구조 규명
본 연구진에서 개발한 GC1118(KR 10-2011-0034914A 참조)의 Fab(fragment antigen binding)와 EGFR의 결합 구조 규명을 위해 EGFR/GC1118 Fab 결합체 결정의 X선 회절 데이터는 BL26B2 beamline(Spring-8 institution, 일본)을 이용하여 획득하였고, HKL2000 software(HKL Research Inc., 미국)를 통해 indexing 및 scaling 한 후 molecular replacement (MR) 방법을 통해 EGFR/GC1118 결합체의 초기 전자밀도 지도를 얻었다. MR 방법을 이용하기 위해서는 EGFR과 표적 항체의 결합체와 비슷한 구조를 가진 단백질의 3차원 구조 데이터가 필요한데, EGFR/GC1118 결합체 구조의 경우, EGFR/세툭시맵 결합체 구조를 이용하였다(PDB ID : 1YY9). EGFR/GC1118 결합체의 초기 위상정보는 Molrep program(http://www.ysbl.york.ac.uk/~alexei/molrep.html)을 이용하여 획득하였고, 획득한 초기 위상정보를 토대로 Coot(Crystallographic Object-Oriented Toolkit, http://www.biop.ox.ac.uk/coot/)을 이용해 model building 작업을 수행하였으며 Refmac5(http://www.ccp4.ac.uk/html/refmac5.html)와 PHENIX(Python-based Hierarchical ENvironment for Integrated Xtallography, http:// www.phenix-online.org/) software를 이용하여 refinement 작업을 완료하였다.
그 결과, GC1118의 EGFR 상의 에피토프는 EGFR 3번 도메인에 위치하고 있는 것으로 나타났으며, 특히 상기 에피토프는 3번 도메인의 짧은 loop 부분으로 아미노산 서열 353번부터 361번까지 9개의 아미노산으로 이루어진 부분이다. 이 부분은 외부로 돌출되어 있는 부분으로 항체의 CDR에 의해 둘러싸여 있으며, 특히 GC1118과 EGFR간의 결합에 가장 핵심적인 역할을 하는 아미노산 잔기는 EGF 수용체의 F357과 H359이다. 이 두 아미노산 잔기는 GC1118 항체의 CDR 부분의 아미노산에 의해 둘러싸여 있으며 이 아미노산들과 소수성 결합과 수소결합을 이루어 GC1118과의 결합을 단단하게 유지시켜 주고 있다. 또한 R353은 GC1118항체 중쇄 가변영역(VH)과의 이온결합을 통해 추가적으로 항체와의 결합에 기여하고 있다(도 1 참조).
한편, EGF가 결합하는 부분은 EGFR의 1번 도메인과 3번 도메인 사이인데 EGF는 먼저 EGFR의 1번 도메인에 결합하여(도 2 참조) EGFR 도메인의 구조적인 변화를 유도한 후 3번 도메인에 결합하게 된다(도 3 참조). 이 때 EGF와 결합에 관여하는 핵심적인 EGFR 아미노산 잔기는 3번 도메인의 D355(Ferguson et al ., Molecular Cell, 2003, 11:507-517)인데, 이 아미노산 잔기는 GC1118의 에피토프인 R353, F357, H359를 포함하는 루프 내에 위치하고 있다. 즉, GC1118이 결합하는 EGFR 상의 에피토프는 EGF가 결합하는 부위와 동일한 영역 내에 존재하고 있으므로, GC1118의 에피토프에 결합하는 항체는 EGF가 EGFR의 3번 도메인에 결합하는 것을 직접적으로 저해할 수 있다. 이는 EGF와 결합된 EGFR 구조와 비교해보면 더욱 확실해지는데, EGF가 결합하여 활성화된 EGFR의 구조와 GC1118을 overlap 시켜보면, GC1118의 VH 부분과 EGF가 서로 overlap되고 있음을 확인할 수 있다(도 3 참조).
현재 사용되고 있는 세툭시맵의 EGFR과의 결합형태와 비교하여 보면, 세툭시맵도 EGFR의 3번 도메인에 위치하는 에피토프를 가지고 있지만, 세툭시맵의 결합 부위는 3번 도메인의 표면에 넓게 위치하고 있어 그 에피토프의 일부만 EGF의 결합에 간접적인 영향을 주고 있다(도 4(A) 참조). 또 다른 항체인 마투주맵 역시 EGFR의 3번 도메인에 위치하는 에피토프를 가지고 있지만, 마투주맵의 에피토프는 본 발명에 따른 에피토프와는 상이한 영역에 위치하고 있으며, EGF가 결합하는 영역이 아닌 곳에 위치하여 직접적으로 EGF의 결합을 방해할 수 없다(도 4(B) 참조).
실시예 2 : 효모 세포 표면 발현법을 이용한 GC1118의 EGFR 상 에피토프 검증
구조 모델을 통하여 밝혀진 GC1118에 대한 EGFR의 epitope (R353, F357, H359번 아미노산)를 검증하고자 해당 아미노산 잔기를 결합 반응성이 없는 글라이신(glycine)으로 치환된 변이체를 제작한 후 효모 세포 표면에 발현시켰다. 이후 Flow cytometry(BD FACSCalibur™, 미국)를 사용하여 GC1118과 효모 세포 표면에 발현시킨 EGFR 변이체와의 결합을 확인하였고, 그 결과 모든 EGFR 변이체에서 GC1118과의 결합력이 감소되었음을 확인하였다.
2.1 표피 성장 인자 수용체(EGFR) 변이체 제작
인간 EGFR 세포외 도메인(extracellular domain)을 인코딩하는 유전자 서열을 주형으로 overlapping PCR 방법을 사용하여 EGFR 아미노산 서열(서열번호 1 참조)의 R353, F357, H359 중 하나 이상을 글라이신으로 치환한 표 1에 기재된 변이체를 제작하였다.
[표 1]
Figure 112016083479316-pct00018
2.1.1 EGFR 변이체 합성을 위한 PCR 반응
인간 EGFR 유전자 서열을 주형으로 AccuPowerTM TLA PCR PreMix(Bioneer, 한국)와 EGFR 유전자 변이를 유도하도록 디자인된 프라이머 세트(표 2)를 사용하여 PCR 반응을 시켜 각각의 변이체를 공통으로 포함하는 유전자 조각 2개를 합성하였다(약 1150 bp, 720 bp). 합성된 2개의 유전자를 1% 아가로스 겔에서 전기영동을 하여 분리한 후 각 DNA를 퀴아젠 키트(Qiagen 28706, 독일)로 정제하였다. 이어서 정제된 두개의 유전자 세트를 하나의 주형으로 사용하고 서열번호 4 내지 19의 서열을 가지는 프라이머(표 2 참조)를 이용하여 위와 같은 방법으로 overlapping PCR 반응을 시켜 최종 EGFR 변이체 유전자를 합성하였다(도 5 참조). 합성된 유전자는 제한효소 NheI/MluI(New England BioLabs, 미국)을 사용하여 절단하였다. 표 2의 프라이머 명 뒤의 For는 정방향 프라이머를, Rev는 역방향 프라이머를 의미한다.
[표 2]
Figure 112014092989826-pct00012
Figure 112014092989826-pct00013
2.1.2 EGFR 변이체의 라이게이션 및 형질전환
효모 표면 발현 벡터 pCTCON(Boder, E.T. et al. Nat Biotechnol. 1997, 15(6):553-7)을 제한효소 NheI/MluI을 사용하여 절단하고, 1% 아가로스 겔 전기영동과 퀴아젠 키트로 정제하였다. 실시예 2.1.1에서 준비된 EGFR 변이체 DNA와 pCTCON을 혼합하고 T4 DNA 라이게이즈(New England BioLabs, 미국)를 첨가하여 25℃에서 2시간 동안 반응시켰다. 상기 라이게이션 혼합물(ligation mixture)을 대장균 XL1-blue 세포(Stratagene, 미국)에 Gene Pulser(Bio-Rad, 미국)를 이용한 전기천공법(electroporation)으로 형질전환시켜 총 2 mL의 배지에서 1시간 키운 후, 카베니실린(carbenicillin)(Sigma, 미국)이 포함된 LB-아가(agar) 플레이트에 스프레딩하였다. 이후 37℃에서 하루밤 동안 배양하였다.
2.1.3 EGFR 변이체의 염기서열 분석
상기 실시예 2.1.2에서 배양된 콜로니를 50 ㎍/mL의 카베니실린이 들어있는 LB 배지 2 mL에서 밤새 배양한 다음, 퀴아젠 플라스미드 미니 키트(Qiagen 27106, 독일)를 이용하여 재조합 플라스미드를 분리하여 플라스미드에 삽입된 EGFR 변이체의 DNA 염기서열을 확인하였다. 염기서열 결정에 사용된 시퀀싱 프라이머는 서열번호 20~22로 표시되는 서열을 가지는 것을 사용하였고(표 3 참조), 염기서열 결정은 공지의 방법에 따라 Genotech사(대전, 대한민국)에 의뢰하여 분석하였다. 대조군으로, human EGFR의 염기서열을 사용하였다. EGFR 변이체의 DNA 염기서열을 결정한 후, 결정된 DNA 염기서열을 아미노산 서열로 번역하는 웹 기반의 프로그램(www.expasy.org: DNA to Protein translate tool)을 이용하여 아미노산 서열로 번역하였다. 번역 결과는 도 6에 나타내었으며, 표 1에 기재된 모든 EGFR 변이체 유전자가 pCTCON 벡터에 올바로 삽입되었음을 확인하였다.
[표 3]
Figure 112014092989826-pct00014
2.2 EGFR 변이체의 효모 세포 표면 발현 및 항체와의 결합 분석
2.2.1 EGFR 변이체의 효모세포 표면 발현 과정
실시예 2.1에서 확인된 pCTCON-EGFR을 Bio-Rad사의 Gene Pulser를 이용한 전기천공법(electroporation)으로 EBY100(Saccharomycescerevisiae)효모 균주에 형질전환하였다. 형질전환된 콜로니를 선별배지인 SD-CAA(20g/L glucose, 6.7g/L yeast nitrogen base without amino acids, 5.4g/L Na2HPO4, 8.6g/L NaH2PO4H2O, 5g/L casaminoacids)에서 30℃로 20시간 동안 액상 배양하였다. 이후 EGFR 변이체의 효모 표면 발현은 선별배지인 SG-CAA(20g/L galactose, 6.7g/L yeast nitrogen base without amino acids, 5.4g/L Na2HPO4, 8.6g/L NaH2PO4H2O, 5g/L casaminoacids)에서 30℃로 20시간 동안 액상 배양함으로써 유도하였다.
2.2.2 EGFR 변이체의 효모세포 표면 발현 확인
EGFR 변이체의 효모세포 표면 발현 유무는 BD FACS CaliburTM (Becto Dickinson)를 이용하여 확인하였다. 약 1x107개의 발현된 효모를 0.1ml의 PBSB(phosphate buffered saline, pH 7.4, 1mg/ml BSA)에서 anti-c-myc 9E10 mAb(1:100 희석)와 반응시키고(25℃, 30분), PBSB로 세척하였다. 다시 2차로 R-phycoerythrin conjugated goat anti-mouse IgG(1:25 희석)와 얼음에서 15분간 반응시키고 PBSB로 세척한 후 BD FACS CaliburTM를 이용하여 분석하였다. 분석 결과 EGFR 변이체가 효모세포 표면에 잘 발현되어 있음을 확인하였다(도 7 참조).
2.2.3 Flow cytometry를 이용한 EGFR 변이체와 GC1118 간의 결합 분석
효모세포 표면에 발현된 EGFR 변이체와 GC1118간의 결합을 BD FACS CaliburTM(BectonDickinson)를 이용하여 확인하였다. 대조군 항체로 세툭시맵(Cetuximab)를 사용하였다. 약 1x107개의 발현된 효모를 0.1ml의 PBSB(phosphate buffered saline, pH 7.4, 1mg/ml BSA)에서 각 항체 1ug 과 반응시키고(25℃, 30분), PBSB로 세척하였다. 다시 2차로 FITC conjugated anti-human IgG(1:50 희석)와 얼음에서 15분간 반응시키고 PBSB로 세척한 후 BD FACS CaliburTM를 이용하여 Mean fluoroscence intensity를 측정하였다. 측정 결과는 표 4 와 도 8에 나타내었다. 표 4에서 알 수 있듯이 구조를 통해 밝혀낸 본 발명의 에피토프인 R353, F357, H359를 글라이신으로 치환한 변이체에서 GC1118의 결합이 저해되어 이 부위가 GC1118의 에피토프임이 증명되었다.
[표 4]
Figure 112014092989826-pct00015
실시예 3 : EGFR에 대한 GC1118과 ligands의 경쟁적 결합 분석
GC1118과 표 5에 기재된 6 종의 EGFR 리간드가 EGFR에 대한 결합 부위가 동일하거나 유사한지를 알아보기 위해 경쟁적 결합 실험을 하였다. 비교군 항체로 세툭시맵을 사용하였다. 먼저 2 ㎍/ml로 EGFR이 코팅된 플레이트에 일정 농도의 항체(1.5 nM)와 다양한 농도의 리간드를 동시에 반응시킨다. 이때 리간드의 농도는 항체 : 리간드의 몰비가 1:1, 1:10, 1:102, 1:103, 1:104, 1:105이 되도록 하였다. 상온에서 30분간 반응 후 PBST(phosphate buffered saline, pH 7.4, 0.05% Tween20)로 5회 세척하였다. 이후, 2차로 anti-human IgG (Fc specific) Peroxidase conjugated(Sigma A0170, 미국)를 상온에서 30분간 반응시키고, PBST로 5회 세척한 후, TMB(3,3’, 5,5’-Tetramethylbenzidine) MICROWELL PEROXIDASE SUBSTRATE(KPL 50-76-03, 미국) 용액 100 μL씩을 각 웰에 첨가하고, 405 nm에서 O.D 값을 측정하였다. 리간드 농도를 높임에 따라 GC1118의 EGFR에 대한 결합력이 감소한다면 두 반응물(항체, 리간드)이 경쟁한다는 것이고 이것은 두 반응물의 EGFR에 대한 에피토프가 일치하거나 매우 근접하게 있다는 것을 뜻한다. 항체와 ligand의 경쟁 여부는 도 9와 표 6에 나타내었다. 그 결과 GC1118이 세툭시맵에 비해 EGF, TGF-a, BTC, EPR, HB-EGF의 결합을 저해하는 능력이 우수함을 알 수 있다.
[표 5]
Figure 112016083479316-pct00019
[표 6]
Figure 112014092989826-pct00017
실시예 4. 표피 성장 인자 수용체 리간드에 의한 세포증식 유도 억제 효과
본 발명의 GC1118과 세툭시맵의 표피 성장 인자 수용체 리간드에 의해 유도된 암세포 증식 억제능을 비교하기 위하여, 대장암 세포주인 LS174T 세포주 (ATCC, CL-188)를 96웰 마이크로 플레이트 (Nunc 사)에 세포수 3,000이 되도록 깔아 주었다. 1일이 경과한 후 배양 배지를 제거한 다음, GC1118과 비교 항체로서 세툭시맵을 소혈청이 포함되지 않은 배양 배지에 각각 0.1, 1, 10㎍/ml 농도로 처리하였다. 항체 처리와 동시에 EGFR 리간드를 종류별로 농도 (EGF ; 50ng/ml, TGF-a ; 100ng/ml, amphiregulin ; 100ng/ml, epiregulin ; 300ng/ml, HB-EGF ; 50ng/ml, b-cellulin ; 100ng/ml)에 따라 처리한 다음 3일 동안 37℃ CO2 배양기에서 배양하였다. 3일 후 암세포 증식 정도를 측정하기 위하여 MTS 용액(CellTiter 96 Aqueous One solution Reagent, Promega)을 96웰 플레이트에서 배양된 암세포에 40 l 씩 첨가한 후 37℃ CO2 배양기에서 3시간 반응 후 490 nm에서 O.D 값을 측정 하였다.
그 결과 GC1118이 세툭시맵과 비교하여 EGF, TGF-a, HB-EGF, BTC 등에 의해 유도되는 암세포 증식을 훨씬 더 효과적으로 억제하였으며 이 결과는 실시예 3의 결과와 일치함을 알 수 있다.
이와 같은 결과로부터 본 발명에 따른 에피토프를 가지는 항체는 세툭시맵과 차별되는 에피토프를 갖고 있어 리간드 결합 억제능이 우수하므로 세포 증식 억제 효능도 더 뛰어나며(도 10 참조), 특히 본 발명에 따른 에피토프에 결합하는 항체는 EGF 뿐 아니라 TGF-a, AR, BTC, EPR 및 HB-EGF 등의 다양한 EGFR 리간드의 EGFR과의 결합을 효율적으로 저해할 수 있으므로, EGF 뿐 아니라 다른 EGFR 리간드와의 결합으로 인한 EGFR의 활성화에 따라 발생하는 암 등 다양한 질환의 치료에 이용될 수 있다.
본 발명에 따른 EGFR 상의 에피토프는 고도로 보존되어 있고, EGF와의 결합에 밀접한 관련이 있는 영역 내에 위치하고 있으므로, 상기 에피토프에 대한 항체를 포함하는 조성물 또는 상기 에피토프를 포함하는 백신조성물은 EGF와 EGRF의 결합에 의한 신호전달을 효율적으로 차단하여 암 등 다양한 질환의 치료에 매우 유용하게 이용가능하다.
<110> Green Cross Corporation Mogam Biotechnology Research Institute <120> Epitope and it's use of Epidermal Growth Factor Receptor <130> PP-1202 <150> 61/616,073 <151> 2012-03-27 <160> 22 <170> KopatentIn 2.0 <210> 1 <211> 621 <212> PRT <213> human <400> 1 Leu Glu Glu Lys Lys Val Cys Gln Gly Thr Ser Asn Lys Leu Thr Gln 1 5 10 15 Leu Gly Thr Phe Glu Asp His Phe Leu Ser Leu Gln Arg Met Phe Asn 20 25 30 Asn Cys Glu Val Val Leu Gly Asn Leu Glu Ile Thr Tyr Val Gln Arg 35 40 45 Asn Tyr Asp Leu Ser Phe Leu Lys Thr Ile Gln Glu Val Ala Gly Tyr 50 55 60 Val Leu Ile Ala Leu Asn Thr Val Glu Arg Ile Pro Leu Glu Asn Leu 65 70 75 80 Gln Ile Ile Arg Gly Asn Met Tyr Tyr Glu Asn Ser Tyr Ala Leu Ala 85 90 95 Val Leu Ser Asn Tyr Asp Ala Asn Lys Thr Gly Leu Lys Glu Leu Pro 100 105 110 Met Arg Asn Leu Gln Glu Ile Leu His Gly Ala Val Arg Phe Ser Asn 115 120 125 Asn Pro Ala Leu Cys Asn Val Glu Ser Ile Gln Trp Arg Asp Ile Val 130 135 140 Ser Ser Asp Phe Leu Ser Asn Met Ser Met Asp Phe Gln Asn His Leu 145 150 155 160 Gly Ser Cys Gln Lys Cys Asp Pro Ser Cys Pro Asn Gly Ser Cys Trp 165 170 175 Gly Ala Gly Glu Glu Asn Cys Gln Lys Leu Thr Lys Ile Ile Cys Ala 180 185 190 Gln Gln Cys Ser Gly Arg Cys Arg Gly Lys Ser Pro Ser Asp Cys Cys 195 200 205 His Asn Gln Cys Ala Ala Gly Cys Thr Gly Pro Arg Glu Ser Asp Cys 210 215 220 Leu Val Cys Arg Lys Phe Arg Asp Glu Ala Thr Cys Lys Asp Thr Cys 225 230 235 240 Pro Pro Leu Met Leu Tyr Asn Pro Thr Thr Tyr Gln Met Asp Val Asn 245 250 255 Pro Glu Gly Lys Tyr Ser Phe Gly Ala Thr Cys Val Lys Lys Cys Pro 260 265 270 Arg Asn Tyr Val Val Thr Asp His Gly Ser Cys Val Arg Ala Cys Gly 275 280 285 Ala Asp Ser Tyr Glu Met Glu Glu Asp Gly Val Arg Lys Cys Lys Lys 290 295 300 Cys Glu Gly Pro Cys Arg Lys Val Cys Asn Gly Ile Gly Ile Gly Glu 305 310 315 320 Phe Lys Asp Ser Leu Ser Ile Asn Ala Thr Asn Ile Lys His Phe Lys 325 330 335 Asn Cys Thr Ser Ile Ser Gly Asp Leu His Ile Leu Pro Val Ala Phe 340 345 350 Arg Gly Asp Ser Phe Thr His Thr Pro Pro Leu Asp Pro Gln Glu Leu 355 360 365 Asp Ile Leu Lys Thr Val Lys Glu Ile Thr Gly Phe Leu Leu Ile Gln 370 375 380 Ala Trp Pro Glu Asn Arg Thr Asp Leu His Ala Phe Glu Asn Leu Glu 385 390 395 400 Ile Ile Arg Gly Arg Thr Lys Gln His Gly Gln Phe Ser Leu Ala Val 405 410 415 Val Ser Leu Asn Ile Thr Ser Leu Gly Leu Arg Ser Leu Lys Glu Ile 420 425 430 Ser Asp Gly Asp Val Ile Ile Ser Gly Asn Lys Asn Leu Cys Tyr Ala 435 440 445 Asn Thr Ile Asn Trp Lys Lys Leu Phe Gly Thr Ser Gly Gln Lys Thr 450 455 460 Lys Ile Ile Ser Asn Arg Gly Glu Asn Ser Cys Lys Ala Thr Gly Gln 465 470 475 480 Val Cys His Ala Leu Cys Ser Pro Glu Gly Cys Trp Gly Pro Glu Pro 485 490 495 Arg Asp Cys Val Ser Cys Arg Asn Val Ser Arg Gly Arg Glu Cys Val 500 505 510 Asp Lys Cys Asn Leu Leu Glu Gly Glu Pro Arg Glu Phe Val Glu Asn 515 520 525 Ser Glu Cys Ile Gln Cys His Pro Glu Cys Leu Pro Gln Ala Met Asn 530 535 540 Ile Thr Cys Thr Gly Arg Gly Pro Asp Asn Cys Ile Gln Cys Ala His 545 550 555 560 Tyr Ile Asp Gly Pro His Cys Val Lys Thr Cys Pro Ala Gly Val Met 565 570 575 Gly Glu Asn Asn Thr Leu Val Trp Lys Tyr Ala Asp Ala Gly His Val 580 585 590 Cys His Leu Cys His Pro Asn Cys Thr Tyr Gly Cys Thr Gly Pro Gly 595 600 605 Leu Glu Gly Cys Pro Thr Asn Gly Pro Lys Ile Pro Ser 610 615 620 <210> 2 <211> 7 <212> PRT <213> human <400> 2 Arg Gly Asp Ser Phe Thr His 1 5 <210> 3 <211> 9 <212> PRT <213> human <400> 3 Arg Gly Asp Ser Phe Thr His Thr Pro 1 5 <210> 4 <211> 29 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> pCTCON-For <400> 4 cggctagcct ggaggaaaag aaagtttgc 29 <210> 5 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> pCTCON-Rev <400> 5 cgacgcgttg gacgggatct taggccc 27 <210> 6 <211> 33 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> R353G-For <400> 6 ctgccggtgg catttggcgg tgactccttc aca 33 <210> 7 <211> 33 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> R353G-Rev <400> 7 tgtgaaggag tcaccgccaa atgccaccgg cag 33 <210> 8 <211> 33 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> F357G-For <400> 8 tttaggggtg actccggcac acatactcct cct 33 <210> 9 <211> 33 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> F357G-Rev <400> 9 aggaggagta tgtgtgccgg agtcacccct aaa 33 <210> 10 <211> 33 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> H359G-For <400> 10 ggtgactcct tcacaggcac tcctcctctg gac 33 <210> 11 <211> 33 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> H359G-Rev <400> 11 gtccagagga ggagtgcctg tgaaggagtc acc 33 <210> 12 <211> 45 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> R353G,F357G-For <400> 12 ctgccggtgg catttggcgg tgactccggg acacatactc ctcct 45 <210> 13 <211> 45 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> R353G,F357G-Rev <400> 13 aggaggagta tgtgtcccgg agtcaccgcc aaatgccacc ggcag 45 <210> 14 <211> 39 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> F357G,H359G-For <400> 14 tttaggggtg actccggcac agggactcct cctctggac 39 <210> 15 <211> 39 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> F357G,H359G-Rev <400> 15 gtccagagga ggagtccctg tgccggagtc acccctaaa 39 <210> 16 <211> 51 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> R353G,H359G-For <400> 16 ctgccggtgg catttggcgg tgactccttc acaggtactc ctcctctgga c 51 <210> 17 <211> 51 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> R353G,H359G-Rev <400> 17 gtccagagga ggagtacctg tgaaggagtc accgccaaat gccaccggca g 51 <210> 18 <211> 51 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> R353G,F357G,H359G-For <400> 18 ctgccggtgg catttggcgg tgactccgga acaggtactc ctcctctgga c 51 <210> 19 <211> 51 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> R353G,F357G,H359G-Rev <400> 19 gtccagagga ggagtacctg ttccggagtc accgccaaat gccaccggca g 51 <210> 20 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> seq-F1 <400> 20 atgaaggttt tgattgtctt gttgg 25 <210> 21 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> seq-F1 <400> 21 ccagtgactg ctgccacaac cagtg 25 <210> 22 <211> 25 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> seq-F1 <400> 22 cgtcggcctg aacataacat ccttg 25

Claims (29)

  1. RGDSFTH(서열번호 2) 또는 RGDSFTHTP(서열번호 3)로 표시되는 아미노산 서열로 이루어지는 EGFR 상의 에피토프.
  2. 삭제
  3. 제1항에 따른 에피토프와 담체(carrier)가 결합된 복합체.
  4. 제3항에 있어서, 상기 담체가 펩타이드, 혈청 알부민, 면역 글로불린, 헤모시아닌 및 다당체로 이루어진 군에서 선택된 하나 이상임을 특징으로 하는 복합체.
  5. 제1항에 따른 에피토프를 인코딩하는 폴리뉴클레오티드.
  6. 제5항에 따른 폴리뉴클레오티드를 포함하는 재조합 벡터.
  7. 제6항에 있어서, 상기 재조합 벡터가 미생물 세포 또는 바이러스 표면에 에피토프가 발현되도록 유도하는 프로모터 또는 신호 단백질을 코딩하는 서열을 포함함을 특징으로 하는 재조합 벡터.
  8. 제6항 또는 제7항에 따른 재조합 벡터로 형질전환된 재조합 미생물.
  9. 제8항에 있어서, 상기 형질전환된 재조합 미생물이 재조합 대장균 또는 재조합 효모임을 특징으로 하는 재조합 미생물
  10. 제8항의 재조합 미생물을 배양하는 단계를 포함하는 서열번호 2 또는 서열번호 3의 아미노산 서열로 이루어지는 에피토프를 생산하는 방법.
  11. 제1항에 따른 에피토프, 상기 에피토프를 포함하는 복합체, 또는 상기 에피토프를 인코딩하는 폴리뉴클레오티드를 포함하는 암 백신 조성물.
  12. 제11항에 있어서, 상기 암 백신 조성물이 체내에 주입시 항체 형성을 증진시키는 역할을 하는 약학적으로 허용가능한 면역보조제(adjuvant)를 추가로 포함함을 특징으로 하는 암 백신 조성물.
  13. 제12항에 있어서, 상기 면역보조제가 알루미늄염(Al(OH)3, ALPO4), 스쿠알렌(squalene), 소르비탄(sorbitane), 폴리소르베이트 80(polysorbate 80), CpG, 리포좀, 콜레스테롤, MPL(monophosphoryl lipid A) 및 GLA(glucopyranosyl lipid A)로 이루어진 군에서 선택된 하나 이상임을 특징으로 하는 암 백신 조성물.
  14. 제11항에 있어서, 상기 폴리뉴클레오티드가 약학적으로 허용가능한 전달체에 포함된 형태임을 특징으로 하는 암 백신 조성물.
  15. 제14항에 있어서, 상기 약학적으로 허용가능한 전달체가 바이러스성 전달체 또는 비바이러스성 전달체임을 특징으로 하는 암 백신 조성물.
  16. 서열번호 2 또는 서열번호 3의 아미노산 서열로 이루어지는 에피토프, 상기 에피토프를 포함하는 복합체, 또는 상기 에피토프를 인코딩하는 폴리뉴클레오티드를 이용한 상기 에피토프에 특이적으로 결합하는 항체, 또는 그러한 항체의 단편을 인체 외에서 생산하는 방법.
  17. 제16항에 있어서, 상기 항체가 다클론 항체(polyclonal antibody), 또는 단클론 항체(monoclonal antibody) 임을 특징으로 하는 방법.
  18. 제16항에 있어서, 상기 방법이 서열번호 2 또는 서열번호 3의 아미노산 서열로 이루어지는 에피토프, 상기 에피토프를 포함하는 복합체, 또는 상기 에피토프를 인코딩하는 폴리뉴클레오티드를 인간이 아닌 동물에 접종하고, 접종된 동물로부터 상기 에피토프에 특이적으로 결합하는 항체를 선별하여 생산함을 특징으로 하는 방법.
  19. 제18항에 있어서, 상기 방법이 인간화(humanization) 단계 또는 탈면역화(deimmunization) 단계를 추가적으로 포함함을 특징으로 하는 방법.
  20. 제19항에 있어서, 상기 인간화 단계가 인간 항체의 FR(framework)에 동물로부터 생산된 항체의 CDR 서열을 이식(grafting)하는 단계를 포함하는 것을 특징으로 하는 방법.
  21. 제20항에 있어서, 상기 방법이 친화도(affinity)를 높이거나, 면역원성(immunogenecity)을 저하시키기 위해, 하나 이상의 아미노산 서열을 치환, 삽입, 결실하는 단계를 추가적으로 포함하는 것을 특징으로 하는 방법.
  22. 제18항에 있어서, 상기 동물이 인간 유래 서열과 동일한 항체를 생산할 수 있도록 형질전환된 동물임을 특징으로 하는 방법.
  23. 제22항에 있어서, 상기 형질전환된 동물이 형질전환된 쥐임을 특징으로 하는 방법.
  24. 제16항에 있어서, 상기 방법이 디스플레이(display) 기술을 이용함을 특징으로 하는 방법.
  25. 제24항에 있어서, 상기 디스플레이 기술이 파지 디스플레이(phage display), 박테리아 디스플레이(bacteria display) 또는 리보좀 디스플레이(ribosome display)임을 특징으로 하는 방법.
  26. 제24항에 있어서, 상기 디스플레이에 사용되는 라이브러리(library)가 인간 유래 항체의 서열을 갖도록 설계된 것임을 특징으로 하는 방법.
  27. 제24항 내지 제26항 중 어느 한 항에 있어서, 상기 방법이 서열번호 2 또는 서열번호 3의 아미노산 서열로 이루어지는 에피토프, 또는 상기 에피토프를 포함하는 복합체를 이용하여 상기 에피토프에 특이적으로 결합하는 항체만을 선별(panning)하는 단계를 포함하는 것을 특징으로 하는 방법.
  28. 제1항에 따른 에피토프, 상기 에피토프를 포함하는 복합체, 또는 상기 에피토프를 인코딩하는 폴리뉴클레오티드를 포함하는 암 진단용 조성물.
  29. 제1항에 따른 에피토프, 상기 에피토프를 포함하는 복합체, 또는 상기 에피토프를 인코딩하는 폴리뉴클레오티드를 포함하는 암 진단용 키트.
KR1020147027485A 2012-03-27 2013-03-27 표피 성장 인자 수용체 표면 항원상의 에피토프 및 이의 용도 KR101930019B1 (ko)

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