JPWO2019189786A1 - 細胞培養用シート並びに三次元組織体及びその製造方法 - Google Patents
細胞培養用シート並びに三次元組織体及びその製造方法 Download PDFInfo
- Publication number
- JPWO2019189786A1 JPWO2019189786A1 JP2020511107A JP2020511107A JPWO2019189786A1 JP WO2019189786 A1 JPWO2019189786 A1 JP WO2019189786A1 JP 2020511107 A JP2020511107 A JP 2020511107A JP 2020511107 A JP2020511107 A JP 2020511107A JP WO2019189786 A1 JPWO2019189786 A1 JP WO2019189786A1
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- extracellular matrix
- sheet
- cells
- cell culture
- elastin
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 title claims abstract description 83
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 title claims description 20
- 210000002744 extracellular matrix Anatomy 0.000 claims abstract description 222
- 102000010834 Extracellular Matrix Proteins Human genes 0.000 claims abstract description 220
- 108010037362 Extracellular Matrix Proteins Proteins 0.000 claims abstract description 220
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 claims description 136
- 102000016942 Elastin Human genes 0.000 claims description 108
- 108010014258 Elastin Proteins 0.000 claims description 108
- 229920002549 elastin Polymers 0.000 claims description 108
- 108010035532 Collagen Proteins 0.000 claims description 80
- 102000008186 Collagen Human genes 0.000 claims description 80
- 229920001436 collagen Polymers 0.000 claims description 80
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 claims description 52
- 238000012258 culturing Methods 0.000 claims description 33
- 210000000329 smooth muscle myocyte Anatomy 0.000 claims description 14
- 238000010030 laminating Methods 0.000 claims description 11
- 238000010899 nucleation Methods 0.000 claims description 6
- 210000002919 epithelial cell Anatomy 0.000 claims description 4
- 230000002792 vascular Effects 0.000 claims description 3
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 32
- 238000000034 method Methods 0.000 description 28
- 238000004132 cross linking Methods 0.000 description 24
- 238000011156 evaluation Methods 0.000 description 23
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 21
- 239000000835 fiber Substances 0.000 description 20
- 210000004204 blood vessel Anatomy 0.000 description 18
- 239000006185 dispersion Substances 0.000 description 15
- 239000000463 material Substances 0.000 description 15
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 15
- 210000003041 ligament Anatomy 0.000 description 13
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 12
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 11
- LOKCTEFSRHRXRJ-UHFFFAOYSA-I dipotassium trisodium dihydrogen phosphate hydrogen phosphate dichloride Chemical compound P(=O)(O)(O)[O-].[K+].P(=O)(O)([O-])[O-].[Na+].[Na+].[Cl-].[K+].[Cl-].[Na+] LOKCTEFSRHRXRJ-UHFFFAOYSA-I 0.000 description 10
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 10
- 239000002953 phosphate buffered saline Substances 0.000 description 10
- 230000008859 change Effects 0.000 description 9
- WZUVPPKBWHMQCE-UHFFFAOYSA-N Haematoxylin Chemical compound C12=CC(O)=C(O)C=C2CC2(O)C1C1=CC=C(O)C(O)=C1OC2 WZUVPPKBWHMQCE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 8
- 210000002950 fibroblast Anatomy 0.000 description 8
- 229920001296 polysiloxane Polymers 0.000 description 7
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 7
- 230000010261 cell growth Effects 0.000 description 6
- 238000010186 staining Methods 0.000 description 6
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 6
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 6
- 241000283690 Bos taurus Species 0.000 description 5
- 238000005452 bending Methods 0.000 description 5
- 239000011248 coating agent Substances 0.000 description 5
- 238000000576 coating method Methods 0.000 description 5
- 239000003431 cross linking reagent Substances 0.000 description 5
- 230000008520 organization Effects 0.000 description 5
- 239000000047 product Substances 0.000 description 5
- IAZDPXIOMUYVGZ-UHFFFAOYSA-N Dimethylsulphoxide Chemical compound CS(C)=O IAZDPXIOMUYVGZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 125000003277 amino group Chemical group 0.000 description 4
- 239000012736 aqueous medium Substances 0.000 description 4
- 150000001718 carbodiimides Chemical class 0.000 description 4
- 230000003833 cell viability Effects 0.000 description 4
- 210000004748 cultured cell Anatomy 0.000 description 4
- 238000010586 diagram Methods 0.000 description 4
- 210000002889 endothelial cell Anatomy 0.000 description 4
- YQGOJNYOYNNSMM-UHFFFAOYSA-N eosin Chemical compound [Na+].OC(=O)C1=CC=CC=C1C1=C2C=C(Br)C(=O)C(Br)=C2OC2=C(Br)C(O)=C(Br)C=C21 YQGOJNYOYNNSMM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 238000001000 micrograph Methods 0.000 description 4
- 230000035699 permeability Effects 0.000 description 4
- 238000001179 sorption measurement Methods 0.000 description 4
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 3
- 229920001410 Microfiber Polymers 0.000 description 3
- 239000003125 aqueous solvent Substances 0.000 description 3
- 125000003178 carboxy group Chemical group [H]OC(*)=O 0.000 description 3
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 description 3
- RAXXELZNTBOGNW-UHFFFAOYSA-N imidazole Natural products C1=CNC=N1 RAXXELZNTBOGNW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 239000012528 membrane Substances 0.000 description 3
- 239000003658 microfiber Substances 0.000 description 3
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 3
- 230000003287 optical effect Effects 0.000 description 3
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 3
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 3
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 3
- 239000002904 solvent Substances 0.000 description 3
- 239000010409 thin film Substances 0.000 description 3
- 210000003606 umbilical vein Anatomy 0.000 description 3
- 210000003556 vascular endothelial cell Anatomy 0.000 description 3
- 238000004804 winding Methods 0.000 description 3
- ZAINTDRBUHCDPZ-UHFFFAOYSA-M Alexa Fluor 546 Chemical compound [H+].[Na+].CC1CC(C)(C)NC(C(=C2OC3=C(C4=NC(C)(C)CC(C)C4=CC3=3)S([O-])(=O)=O)S([O-])(=O)=O)=C1C=C2C=3C(C(=C(Cl)C=1Cl)C(O)=O)=C(Cl)C=1SCC(=O)NCCCCCC(=O)ON1C(=O)CCC1=O ZAINTDRBUHCDPZ-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- 102000012422 Collagen Type I Human genes 0.000 description 2
- 108010022452 Collagen Type I Proteins 0.000 description 2
- 108010067787 Proteoglycans Proteins 0.000 description 2
- 102000016611 Proteoglycans Human genes 0.000 description 2
- 230000002411 adverse Effects 0.000 description 2
- 238000010171 animal model Methods 0.000 description 2
- 210000000709 aorta Anatomy 0.000 description 2
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 2
- 210000000988 bone and bone Anatomy 0.000 description 2
- 239000002771 cell marker Substances 0.000 description 2
- 210000003855 cell nucleus Anatomy 0.000 description 2
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 2
- 239000004744 fabric Substances 0.000 description 2
- 239000007850 fluorescent dye Substances 0.000 description 2
- 238000001215 fluorescent labelling Methods 0.000 description 2
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 description 2
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 description 2
- 239000006166 lysate Substances 0.000 description 2
- 238000011160 research Methods 0.000 description 2
- 230000003248 secreting effect Effects 0.000 description 2
- 229920002379 silicone rubber Polymers 0.000 description 2
- 239000004945 silicone rubber Substances 0.000 description 2
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 2
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 2
- HNONEKILPDHFOL-UHFFFAOYSA-M tolonium chloride Chemical compound [Cl-].C1=C(C)C(N)=CC2=[S+]C3=CC(N(C)C)=CC=C3N=C21 HNONEKILPDHFOL-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- 238000002834 transmittance Methods 0.000 description 2
- 230000035899 viability Effects 0.000 description 2
- NHJVRSWLHSJWIN-UHFFFAOYSA-N 2,4,6-trinitrobenzenesulfonic acid Chemical compound OS(=O)(=O)C1=C([N+]([O-])=O)C=C([N+]([O-])=O)C=C1[N+]([O-])=O NHJVRSWLHSJWIN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 102000007469 Actins Human genes 0.000 description 1
- 108010085238 Actins Proteins 0.000 description 1
- HJCMDXDYPOUFDY-WHFBIAKZSA-N Ala-Gln Chemical compound C[C@H](N)C(=O)N[C@H](C(O)=O)CCC(N)=O HJCMDXDYPOUFDY-WHFBIAKZSA-N 0.000 description 1
- 206010003210 Arteriosclerosis Diseases 0.000 description 1
- 101001065614 Bos taurus Lumican Proteins 0.000 description 1
- 108091016585 CD44 antigen Proteins 0.000 description 1
- 241000283707 Capra Species 0.000 description 1
- 241000282693 Cercopithecidae Species 0.000 description 1
- 108010059480 Chondroitin Sulfate Proteoglycans Proteins 0.000 description 1
- 102000005598 Chondroitin Sulfate Proteoglycans Human genes 0.000 description 1
- 102000000503 Collagen Type II Human genes 0.000 description 1
- 108010041390 Collagen Type II Proteins 0.000 description 1
- 102000001187 Collagen Type III Human genes 0.000 description 1
- 108010069502 Collagen Type III Proteins 0.000 description 1
- 102000004266 Collagen Type IV Human genes 0.000 description 1
- 108010042086 Collagen Type IV Proteins 0.000 description 1
- 239000006144 Dulbecco’s modified Eagle's medium Substances 0.000 description 1
- 238000002965 ELISA Methods 0.000 description 1
- 241000282326 Felis catus Species 0.000 description 1
- 108010067306 Fibronectins Proteins 0.000 description 1
- 102000016359 Fibronectins Human genes 0.000 description 1
- 238000005033 Fourier transform infrared spectroscopy Methods 0.000 description 1
- SXRSQZLOMIGNAQ-UHFFFAOYSA-N Glutaraldehyde Chemical compound O=CCCCC=O SXRSQZLOMIGNAQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 102000008055 Heparan Sulfate Proteoglycans Human genes 0.000 description 1
- 229920002971 Heparan sulfate Polymers 0.000 description 1
- VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N Hydrochloric acid Chemical compound Cl VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 102000007547 Laminin Human genes 0.000 description 1
- 108010085895 Laminin Proteins 0.000 description 1
- 206010028980 Neoplasm Diseases 0.000 description 1
- 102100037369 Nidogen-1 Human genes 0.000 description 1
- 241000283973 Oryctolagus cuniculus Species 0.000 description 1
- 229930040373 Paraformaldehyde Natural products 0.000 description 1
- 102100024616 Platelet endothelial cell adhesion molecule Human genes 0.000 description 1
- 239000006146 Roswell Park Memorial Institute medium Substances 0.000 description 1
- 108090000054 Syndecan-2 Proteins 0.000 description 1
- 102000007000 Tenascin Human genes 0.000 description 1
- 108010008125 Tenascin Proteins 0.000 description 1
- GLNADSQYFUSGOU-GPTZEZBUSA-J Trypan blue Chemical compound [Na+].[Na+].[Na+].[Na+].C1=C(S([O-])(=O)=O)C=C2C=C(S([O-])(=O)=O)C(/N=N/C3=CC=C(C=C3C)C=3C=C(C(=CC=3)\N=N\C=3C(=CC4=CC(=CC(N)=C4C=3O)S([O-])(=O)=O)S([O-])(=O)=O)C)=C(O)C2=C1N GLNADSQYFUSGOU-GPTZEZBUSA-J 0.000 description 1
- 102000004142 Trypsin Human genes 0.000 description 1
- 108090000631 Trypsin Proteins 0.000 description 1
- 102100035140 Vitronectin Human genes 0.000 description 1
- 108010031318 Vitronectin Proteins 0.000 description 1
- 239000002313 adhesive film Substances 0.000 description 1
- 238000007605 air drying Methods 0.000 description 1
- 150000001299 aldehydes Chemical class 0.000 description 1
- 208000011775 arteriosclerosis disease Diseases 0.000 description 1
- 210000001367 artery Anatomy 0.000 description 1
- 239000002473 artificial blood Substances 0.000 description 1
- 238000003556 assay Methods 0.000 description 1
- 239000000560 biocompatible material Substances 0.000 description 1
- 239000012620 biological material Substances 0.000 description 1
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 1
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 1
- 210000004556 brain Anatomy 0.000 description 1
- 201000011510 cancer Diseases 0.000 description 1
- 210000001054 cardiac fibroblast Anatomy 0.000 description 1
- 230000021164 cell adhesion Effects 0.000 description 1
- 238000010382 chemical cross-linking Methods 0.000 description 1
- 238000007385 chemical modification Methods 0.000 description 1
- 210000001612 chondrocyte Anatomy 0.000 description 1
- 238000010367 cloning Methods 0.000 description 1
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 1
- 238000012790 confirmation Methods 0.000 description 1
- 238000001816 cooling Methods 0.000 description 1
- 210000004443 dendritic cell Anatomy 0.000 description 1
- 108010040063 dermatan sulfate proteoglycan Proteins 0.000 description 1
- 238000013461 design Methods 0.000 description 1
- VEVRNHHLCPGNDU-MUGJNUQGSA-O desmosine Chemical compound OC(=O)[C@@H](N)CCCC[N+]1=CC(CC[C@H](N)C(O)=O)=C(CCC[C@H](N)C(O)=O)C(CC[C@H](N)C(O)=O)=C1 VEVRNHHLCPGNDU-MUGJNUQGSA-O 0.000 description 1
- 238000011161 development Methods 0.000 description 1
- 238000009826 distribution Methods 0.000 description 1
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 1
- 210000004177 elastic tissue Anatomy 0.000 description 1
- 229920001971 elastomer Polymers 0.000 description 1
- 210000001671 embryonic stem cell Anatomy 0.000 description 1
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 1
- 238000006911 enzymatic reaction Methods 0.000 description 1
- 150000002118 epoxides Chemical class 0.000 description 1
- 108060002895 fibrillin Proteins 0.000 description 1
- 102000013370 fibrillin Human genes 0.000 description 1
- 239000010408 film Substances 0.000 description 1
- 238000013467 fragmentation Methods 0.000 description 1
- 238000006062 fragmentation reaction Methods 0.000 description 1
- 238000007710 freezing Methods 0.000 description 1
- 230000008014 freezing Effects 0.000 description 1
- 210000004602 germ cell Anatomy 0.000 description 1
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 1
- 230000012010 growth Effects 0.000 description 1
- 206010073071 hepatocellular carcinoma Diseases 0.000 description 1
- 210000003494 hepatocyte Anatomy 0.000 description 1
- XMBWDFGMSWQBCA-UHFFFAOYSA-N hydrogen iodide Chemical compound I XMBWDFGMSWQBCA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000007062 hydrolysis Effects 0.000 description 1
- 238000006460 hydrolysis reaction Methods 0.000 description 1
- 210000002865 immune cell Anatomy 0.000 description 1
- 238000003018 immunoassay Methods 0.000 description 1
- 239000012535 impurity Substances 0.000 description 1
- 210000004263 induced pluripotent stem cell Anatomy 0.000 description 1
- 230000003993 interaction Effects 0.000 description 1
- 210000004153 islets of langerhan Anatomy 0.000 description 1
- RGXCTRIQQODGIZ-UHFFFAOYSA-O isodesmosine Chemical compound OC(=O)C(N)CCCC[N+]1=CC(CCC(N)C(O)=O)=CC(CCC(N)C(O)=O)=C1CCCC(N)C(O)=O RGXCTRIQQODGIZ-UHFFFAOYSA-O 0.000 description 1
- 238000003475 lamination Methods 0.000 description 1
- 230000007774 longterm Effects 0.000 description 1
- 210000005073 lymphatic endothelial cell Anatomy 0.000 description 1
- 210000001365 lymphatic vessel Anatomy 0.000 description 1
- 239000011159 matrix material Substances 0.000 description 1
- 230000001404 mediated effect Effects 0.000 description 1
- WSFSSNUMVMOOMR-NJFSPNSNSA-N methanone Chemical compound O=[14CH2] WSFSSNUMVMOOMR-NJFSPNSNSA-N 0.000 description 1
- 239000007758 minimum essential medium Substances 0.000 description 1
- 230000000877 morphologic effect Effects 0.000 description 1
- 210000003205 muscle Anatomy 0.000 description 1
- 210000000663 muscle cell Anatomy 0.000 description 1
- 230000002107 myocardial effect Effects 0.000 description 1
- 210000005036 nerve Anatomy 0.000 description 1
- 210000002569 neuron Anatomy 0.000 description 1
- 108010008217 nidogen Proteins 0.000 description 1
- 210000000963 osteoblast Anatomy 0.000 description 1
- 229920002866 paraformaldehyde Polymers 0.000 description 1
- 229920000747 poly(lactic acid) Polymers 0.000 description 1
- 239000004626 polylactic acid Substances 0.000 description 1
- 239000011148 porous material Substances 0.000 description 1
- 230000008569 process Effects 0.000 description 1
- 238000004080 punching Methods 0.000 description 1
- 150000003222 pyridines Chemical class 0.000 description 1
- 238000011002 quantification Methods 0.000 description 1
- 230000005855 radiation Effects 0.000 description 1
- 210000001732 sebaceous gland Anatomy 0.000 description 1
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 description 1
- 239000012679 serum free medium Substances 0.000 description 1
- 210000003491 skin Anatomy 0.000 description 1
- 210000002460 smooth muscle Anatomy 0.000 description 1
- 230000008477 smooth muscle tissue growth Effects 0.000 description 1
- 210000001082 somatic cell Anatomy 0.000 description 1
- 208000035736 spondylodysplastic type Ehlers-Danlos syndrome Diseases 0.000 description 1
- 239000012128 staining reagent Substances 0.000 description 1
- 210000000130 stem cell Anatomy 0.000 description 1
- BDHFUVZGWQCTTF-UHFFFAOYSA-M sulfonate Chemical compound [O-]S(=O)=O BDHFUVZGWQCTTF-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 1
- 210000000106 sweat gland Anatomy 0.000 description 1
- 238000010257 thawing Methods 0.000 description 1
- 230000009772 tissue formation Effects 0.000 description 1
- 238000013334 tissue model Methods 0.000 description 1
- 239000012588 trypsin Substances 0.000 description 1
- 210000001835 viscera Anatomy 0.000 description 1
- 230000000007 visual effect Effects 0.000 description 1
- 238000003260 vortexing Methods 0.000 description 1
Images
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M3/00—Tissue, human, animal or plant cell, or virus culture apparatus
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
- C12M3/00—Tissue, human, animal or plant cell, or virus culture apparatus
- C12M3/04—Tissue, human, animal or plant cell, or virus culture apparatus with means providing thin layers
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Zoology (AREA)
- Virology (AREA)
- Sustainable Development (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Materials For Medical Uses (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
Abstract
Description
本実施形態に係る細胞培養用シートは、細胞外マトリックス成分を含む。細胞培養用シートは、その上で細胞培養(細胞生育)可能なシートである。細胞培養用シートは、細胞培養用の足場材として利用することができる。また、細胞培養用シートは、細胞外マトリックス成分を含んでいるため、三次元組織体(詳細は後述する)の構成成分として、好適に利用することができる。
本実施形態に係る三次元組織体は、細胞外マトリックス成分を含む複数の細胞外マトリックス(ECM)層と、ECM層の間に存在する細胞と、を含む。ECM層の厚さは5μm以上であることが好ましい。ECM層としては、上述の細胞培養用シートを用いることができる。
本実施形態に係る三次元組織体の製造方法は、細胞外マトリックス成分を含む細胞培養用シート(細胞外マトリックス(ECM)層)上に細胞を播種することを含む。本実施形態に係る三次元組織体の製造方法は、細胞培養用シート上に播種された細胞上に、細胞外マトリックス成分を含む、細胞培養用シートを更に積層することを含んでいてよく、細胞培養用シート上に播種された前記細胞を培養することを含んでいてよい。
本実施形態に係る細胞培養用シートは、その上で細胞培養可能であり、かつ、水の透過性に優れていることから、細胞培養用の足場材として好適に利用することができる。
ECM成分として、以下の材料を準備した。
エラスチンA(ウシ靭帯由来エラスチン、Elastin Products Company製、商品名:Elastin E60)
エラスチンB(ウシ血管由来エラスチン、Elastin Products Company製、商品名:Bovine AorticElastin SB87)
コラーゲン(ブタ皮膚由来I型コラーゲン、日本ハム株式会社製、凍結乾燥品)
断片化エラスチン(エラスチンマイクロファイバー、以下「EMF」ともいう。)の分散液を以下の方法により製造した。
エラスチンBをMilliQに1質量%の濃度となるように加えた後、ホモジナイザーを用いて5分間ホモジナイズすることにより、断片化エラスチンBを含む分散液を得た。
コラーゲン(凍結乾燥体)を70体積%エタノール溶液に1質量%の濃度となるように加えた後、ホモジナイザーを用いて5分間ホモジナイズした。得られた分散液を100%エタノールによる遠心置換を2回行い、断片化コラーゲンを含む分散液を得た。
シートの作製には、ECM成分を含む分散液として、断片化繊維を含む分散液、又は、断片化エラスチン(靭帯由来)及びコラーゲン(非断片化繊維)の混合物を含む分散液を用いた。断片化エラスチン及びコラーゲンの混合物(質量比1:1)を含む分散液は、断片化エラスチンを含む分散液と、コラーゲン(非断片化繊維)の溶解液とを、質量比1:1となるように混合することにより、調製した。尚、「非断片化繊維」とは、上述した断片化処理を行わないという点においての記述であって、コラーゲン繊維が一切溶解しないか、または分散せずにコラーゲン繊維の塊として存在することを意味するものではない。
1:シリコーン枠内に、ECM成分を含む分散液を、滴下量250μl/cm2で、滴下する(図1(A)参照)。
2:37℃での乾燥により、滴下した分散液の溶媒を揮発させる(図1(B)参照)。
表1に、ECM成分量2.5mg/cm2、5mg/m2又は10mg/cm2に調整した各種シートの厚さの測定結果を示す。シートの厚さは、デジタルノギス(MITUTOYO製、Absolute digimatic)を用いて測定した。断片化エラスチン(血管由来)については、ECM成分量1mg/cm2であるシートの厚さも測定した。
まず、得られた各種シート上で、動脈由来平滑筋細胞(AO−SMC)が生育可能であるかを評価した。断片化エラスチン(靭帯由来)を含むシート(ECM成分量:2.5mg/cm2)又は断片化エラスチン(靭帯由来)及びコラーゲンの混合物(Mix)を含むシート上に、AO−SMCを、2×104cells又は1×104cells播種した。CO2インキュベーターにより37℃で1日間培養後、10%ホルムアルデヒドで固定後、各種染色試薬(蛍光標識試薬)で染色した。培養は、6mm(直径)の円形シートを用いた。培地として、平滑筋細胞用培地(Lonza CC-3182 smooth muscle growth medium 2)を用いた。
図7は、三次元組織体の製造方法の概略図を示す。3つの断片化エラスチン(EMF)(ECM成分量:2.5mg/cm2)を含むシート(EMF sheet)を準備し、これらのシート上に、細胞(AO−SMC)を、1×105cellsで播種した。細胞を平滑筋細胞用培地で、37℃で1日間、CO2インキュベーターで培養した。培養後、EMFを含むシートを積層させた。積層後、遠心(条件:1000rpm、5分間)してから、平滑筋細胞用培地で、2日間培養した。培養後に、得られた試料を顕微鏡観察に供した。図8は、HE染色した試料の顕微鏡観察結果を示す。
ECM成分を含むシート(図9(A)参照)の屈曲性及び加工性を評価した。屈曲性及び加工性の評価では、EMF(血管由来)を含むシート(ECM成分量:5mg/cm2)を用いた。図9(B)に示すとおり、EMFを含むシートは、屈曲可能であった。図9(C)に示すとおり、EMFを含むシートは、パンチによる加工が可能であった。以上より、EMFを含むシートが、耐屈曲性及び加工性に優れることが示された。
ECM成分を含むシートの透明性を目視及び顕微鏡並びに紫外可視赤外分光光度計(V−670 日本分光社製)を用いて取得した透過率のパラメータにより評価した。透明性の評価では、EMF(ウシ靭帯由来)を含むシート(ECM成分量:2.5mg/cm2、又はECM成分量:5mg/cm2)、及びCMFを含むシート(ECM成分量:5mg/cm2)を用いた。
EMFを含むシートと、EMF及びコラーゲンの混合物(Mix)を含むシートの水の接触角の測定を行った。結果を図11に示す。図11中、縦軸は接触角を示し、横軸は時間(単位:秒(s))を示す。なお、水の接触角は、協和界面科学株式会社製のDrop Master(商品名)により測定した。
図12は、EMFを含むシート(ECM成分量:5mg/cm2)及びCMFを含むシート(ECM成分量:5mg/cm2)のSEM写真である。図12(A)は、靭帯由来のEMFを含むシートの写真であり、図12(B)は、血管由来のEMFを含むシートの写真であり、図12(C)は、CMFを含むシートの写真である。
3つの断片化エラスチン(EMF)(ECM成分量:1mg/cm2)を含むシート(EMFシート)を準備し、各シート上に、ヒト皮膚由来線維芽細胞(NHDF)を、2×105cellsで播種した。図14(A)は、EMFシートを示す写真である。EMFシート上のNHDFを37℃で2日間、CO2インキュベーター内で培養した。培養後、EMFを含むシートを積層させた。図14(B)は、EMFシートを積層したときの写真である。積層後、遠心(条件:1100rpm、5分間)してから、2日間培養した。培養後に、クローニングリングで、得られた三次元組織体を囲み、測定用試料とした。得られた試料は、固定化してから顕微鏡観察に供した。図15は、ヘマトキシリン及びエオシン(HE)により染色した試料の顕微鏡観察結果を示す。
3つの断片化エラスチン(EMF)(ECM成分量:2mg/cm2)を含むシート(EMFシート)を準備し、各シート上に、NHDFを、1×105cellsで播種した。次いで、EMFシート上のNHDFを37℃で2日間、4日間、又は6日間CO2インキュベーター内で培養した。培養後に得られた試料は、10%パラホルムアルデヒド水溶液(p−PFA)を用いて固定化した後に、共焦点顕微鏡で観察した。図16に測定した試料の上面図及び側面図並びに3Dイメージを示す。図16では、EMFを含むシート上に細胞が存在している。
断片化エラスチン(EMF)、コラーゲン(SC)、又は断片化コラーゲン(CMF)を含むシートを準備した。これらのシートを減圧下、200℃、12時間の条件で加熱することにより、熱架橋を行った。図18に得られた熱架橋前後のシートの写真を示す。熱架橋を行ったことによる外観上の変化はなかった。
サイズ1cm×1cm、厚さ20μmの正方形状の断片化エラスチン(EMF)、断片化コラーゲン(CMF)、コラーゲン(CS)、又はEMF及びCSを1:1の質量比で含むシート(Mixシート)と、これらのシートそれぞれを上記同様の方法で熱架橋したシートを評価用シートとして準備した。熱架橋されていない評価用シート(no treatment)と、熱架橋された評価用シート(Cross−linked)の引張強度(tensile strength、単位:MPa)を測定した。引張強度は、室温で、小型卓上試験機(島津製作所製、EzTest/CE、負荷容量:500N)を用いて、小型平面掴み具により0.5mmの間隔をあけて評価用シートの両端を固定し、試験速度1mm/minで測定した。引張強度の測定結果を図21(A)に示す。破断するまでに評価用シートが伸びた割合を示す延伸比(Strech ratio)を図21(B)に示す。引張強度及び延伸比は、機械特性評価用のシートを図20で示す方向に引っ張ることにより評価した。
断片化していないコラーゲン(SC)を含むシート(2mg/cm2)の顕微鏡観察結果を図25に示す。断面観察に厚さを測定した結果、SCを含むシートの厚さは約5μmであり、断片化したコラーゲンを含むシートの厚さよりも明らかに薄かった。
基材上に、EMFシート、CSシート、又はEMF及びCSを1:1の質量比で含む混合物(Mix)を含むシートを作製し、37℃、24時間の条件でインキュベーションした。図26は、EMFシート、CSシート、又はEMF及びCSを1:1の質量比で含む混合物(Mix)を含むシートの写真及びエラスチカ・ワンギーソン染色による観察結果を示す顕微鏡写真である。各シートにおいて、エラスチカ・ワンギーソン染色により、エラスチン及び/又はコラーゲンを示す染色が確認された。
Claims (12)
- 細胞外マトリックス成分を含む、細胞培養用シート。
- 前記細胞外マトリックス成分が、断片化細胞外マトリックスを含む、請求項1に記載の細胞培養用シート。
- 前記シートの厚さが5μm以上である、請求項1又は2に記載の細胞培養用シート。
- 前記細胞外マトリックス成分が天然由来である、請求項1〜3のいずれか一項に記載の細胞培養用シート。
- 前記細胞外マトリックス成分が、エラスチン、コラーゲン、断片化エラスチン及び断片化コラーゲンからなる群より選択される少なくとも1種を含む、請求項1〜4のいずれか一項に記載の細胞培養用シート。
- 前記細胞外マトリックス成分が、エラスチン及び断片化エラスチンからなる群より選択される少なくとも1種のエラスチン成分を含み、かつ、前記エラスチン成分の含有量が、前記細胞外マトリックス成分全量に対して、50質量%以上である、請求項1〜5のいずれか一項に記載の細胞培養用シート。
- 前記細胞外マトリックス成分の少なくとも一部が架橋されている、請求項1〜6のいずれか一項に記載の細胞培養用シート。
- 細胞外マトリックス成分を含む複数の細胞外マトリックス層と、前記細胞外マトリックス層の間に存在する細胞と、を含み、
前記細胞外マトリックス層の厚さが5μm以上である、三次元組織体。 - 前記細胞が、血管上皮細胞及び平滑筋細胞からなる群より選択される少なくとも1種を含む、請求項8に記載の三次元組織体。
- 細胞外マトリックス成分を含む、細胞培養用シート上に細胞を播種することを含む、三次元組織体の製造方法。
- 前記細胞培養用シート上に播種された細胞上に、細胞外マトリックス成分を含む、細胞培養用シートを更に積層することを含む、請求項10に記載の三次元組織体の製造方法。
- 前記細胞培養用シート上に播種された前記細胞を培養することを含む、請求項10又は11に記載の三次元組織体の製造方法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2024028641A JP2024051114A (ja) | 2018-03-29 | 2024-02-28 | 細胞培養用シート並びに三次元組織体及びその製造方法 |
Applications Claiming Priority (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2018064524 | 2018-03-29 | ||
JP2018064524 | 2018-03-29 | ||
PCT/JP2019/014062 WO2019189786A1 (ja) | 2018-03-29 | 2019-03-29 | 細胞培養用シート並びに三次元組織体及びその製造方法 |
Related Child Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2024028641A Division JP2024051114A (ja) | 2018-03-29 | 2024-02-28 | 細胞培養用シート並びに三次元組織体及びその製造方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPWO2019189786A1 true JPWO2019189786A1 (ja) | 2021-03-25 |
Family
ID=68058507
Family Applications (2)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2020511107A Pending JPWO2019189786A1 (ja) | 2018-03-29 | 2019-03-29 | 細胞培養用シート並びに三次元組織体及びその製造方法 |
JP2024028641A Pending JP2024051114A (ja) | 2018-03-29 | 2024-02-28 | 細胞培養用シート並びに三次元組織体及びその製造方法 |
Family Applications After (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2024028641A Pending JP2024051114A (ja) | 2018-03-29 | 2024-02-28 | 細胞培養用シート並びに三次元組織体及びその製造方法 |
Country Status (2)
Country | Link |
---|---|
JP (2) | JPWO2019189786A1 (ja) |
WO (1) | WO2019189786A1 (ja) |
Families Citing this family (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN115298304A (zh) * | 2020-03-05 | 2022-11-04 | 国立大学法人大阪大学 | 控制三维组织体的杨氏模量的方法、三维组织体的制造方法以及三维组织体 |
WO2023286611A1 (ja) * | 2021-07-12 | 2023-01-19 | 凸版印刷株式会社 | 断片化細胞外マトリックス成分の製造方法 |
WO2023017800A1 (ja) * | 2021-08-11 | 2023-02-16 | 凸版印刷株式会社 | 立体的細胞組織の製造方法及び立体的細胞組織 |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2007228921A (ja) * | 2006-03-02 | 2007-09-13 | Osaka Univ | 三次元組織の製造方法およびそれに用いる細胞外マトリックスの製造方法。 |
WO2011155565A1 (ja) * | 2010-06-10 | 2011-12-15 | 国立大学法人九州工業大学 | 可逆的な性質を示す温度応答性シートとそれを用いた細胞シートの製造方法 |
WO2015053367A1 (ja) * | 2013-10-10 | 2015-04-16 | 国立大学法人大阪大学 | 三次元組織体及びその製造方法 |
JP2017070761A (ja) * | 2006-10-06 | 2017-04-13 | アントフロゲネシス コーポレーション | ヒト胎盤コラーゲン組成物、並びにそれらの製造方法及び使用方法 |
-
2019
- 2019-03-29 WO PCT/JP2019/014062 patent/WO2019189786A1/ja active Application Filing
- 2019-03-29 JP JP2020511107A patent/JPWO2019189786A1/ja active Pending
-
2024
- 2024-02-28 JP JP2024028641A patent/JP2024051114A/ja active Pending
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2007228921A (ja) * | 2006-03-02 | 2007-09-13 | Osaka Univ | 三次元組織の製造方法およびそれに用いる細胞外マトリックスの製造方法。 |
JP2017070761A (ja) * | 2006-10-06 | 2017-04-13 | アントフロゲネシス コーポレーション | ヒト胎盤コラーゲン組成物、並びにそれらの製造方法及び使用方法 |
WO2011155565A1 (ja) * | 2010-06-10 | 2011-12-15 | 国立大学法人九州工業大学 | 可逆的な性質を示す温度応答性シートとそれを用いた細胞シートの製造方法 |
WO2015053367A1 (ja) * | 2013-10-10 | 2015-04-16 | 国立大学法人大阪大学 | 三次元組織体及びその製造方法 |
Non-Patent Citations (6)
Title |
---|
"コラーゲンマイクロファイバーによる高濃度細胞外マトリックスと毛細血管網を有する三次元間質組織体の構築", 高分子学会予稿集, vol. Vol.66, No.2, 2Q10, JPN6019030650, 2017, ISSN: 0005091850 * |
"コラーゲンマイクロファイバーを用いたiPS 細胞由来心筋細胞線維化モデルの構築", 高分子学会予稿集, vol. Vol.66, No.2, 3N03, JPN7019002507, 2017, ISSN: 0005091853 * |
"コラーゲンマイクロファイバーを用いた三次元がん−間質組織体の構築", 高分子学会予稿集, vol. Vol.66, No.1, 2Pb096, JPN6019030646, 2017, ISSN: 0005091851 * |
"コラーゲンマイクロファイバーを用いた沈殿培養による高密度ECM を有する3D-結合組織の構築", 高分子学会予稿集, vol. Vol.66, No.2, 3N02, JPN6019030653, ISSN: 0005091852 * |
ACTA BIOMATERIALIA, vol. 52, JPN6019023007, 2017, pages 33 - 40, ISSN: 0005091854 * |
BIOMATERIALS, vol. 30, JPN6019023005, 2009, pages 6213 - 6220, ISSN: 0005091849 * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JP2024051114A (ja) | 2024-04-10 |
WO2019189786A1 (ja) | 2019-10-03 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Asakawa et al. | Pre-vascularization of in vitro three-dimensional tissues created by cell sheet engineering | |
Huang et al. | Engineering three-dimensional cell mechanical microenvironment with hydrogels | |
JP6712016B2 (ja) | 三次元組織体及びその製造方法、並びに、三次元組織体の形成剤 | |
Gil et al. | Helicoidal multi-lamellar features of RGD-functionalized silk biomaterials for corneal tissue engineering | |
JP2024051114A (ja) | 細胞培養用シート並びに三次元組織体及びその製造方法 | |
JP7340194B2 (ja) | 細胞外マトリックス含有組成物、三次元組織体形成用仮足場材及び三次元組織体形成剤並びに三次元組織体から細胞を回収する方法 | |
Uchida et al. | Nanometer‐sized extracellular matrix coating on polymer‐based scaffold for tissue engineering applications | |
JP6903299B2 (ja) | 細胞外マトリックス含有組成物及びその製造方法、並びに三次元組織体、三次元組織体形成剤 | |
Jahnavi et al. | Engineering of a polymer layered bio-hybrid heart valve scaffold | |
JPWO2020203579A1 (ja) | 三次元組織体及びその製造方法並びに細胞含有組成物の製造方法 | |
Sarigil et al. | Scaffold‐free biofabrication of adipocyte structures with magnetic levitation | |
Twal et al. | Cellularized microcarriers as adhesive building blocks for fabrication of tubular tissue constructs | |
CN113677700A (zh) | 细胞结构体及细胞结构体的制造方法 | |
US20110033927A1 (en) | Methods of generating small-diameter tissue engineered blood vessels | |
JPWO2005014774A1 (ja) | 動物細胞の培養担体と、該培養担体を用いた動物細胞の培養方法および移植方法 | |
Ichanti et al. | Characterization of tissue engineered endothelial cell networks in composite collagen-agarose hydrogels | |
Çelebi-Saltik et al. | Stem cell-based small-diameter vascular grafts in dynamic culture | |
Dadwal et al. | Tissue-engineered 3D cancer-in-bone modeling: silk and PUR protocols | |
Tresoldi et al. | Shear-resistant hydrogels to control permeability of porous tubular scaffolds in vascular tissue engineering | |
Loy et al. | Rotation‐based technique for the rapid densification of tubular collagen gel scaffolds | |
WO2021177407A1 (ja) | 三次元組織体のヤング率を制御する方法、三次元組織体の製造方法、及び三次元組織体 | |
Grenier et al. | Interactions of coronary artery smooth muscle cells with 3D porous polyurethane scaffolds | |
US20200190456A1 (en) | Native Extracellular Matrix-Derived Membrane Inserts for Organs-On-Chips, Multilayer Microfluidics Microdevices, Bioreactors, Tissue Culture Inserts, and Two-dimensional and Three-dimensional Cell Culture Systems | |
JP6425420B2 (ja) | 細胞培養チャンバーとその製造方法、細胞培養チャンバーを利用した細胞培養方法および細胞培養キット | |
Yao et al. | Regulating coupling efficiency of REDV by controlling silk fibroin structure for vascularization |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
A621 | Written request for application examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621 Effective date: 20220202 |
|
A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20230124 |
|
A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20230316 |
|
A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20230627 |
|
A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20230828 |
|
A02 | Decision of refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A02 Effective date: 20231128 |
|
A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20240228 |
|
A911 | Transfer to examiner for re-examination before appeal (zenchi) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A911 Effective date: 20240304 |