JPWO2019009257A1 - マロニル基転移酵素遺伝子の使用 - Google Patents
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Abstract
Description
アントシアニンやフラボンを修飾する酵素遺伝子も多くの植物から得られており、例えば糖転移酵素遺伝子、アシル基転移酵素遺伝子、メチル基転移酵素遺伝子などがある。アントシアニンやフラボンは、これらの酵素によって、種および品種特異的に多様な修飾を受け、この多様性が花色の多様さの一因となっている。例えば、アントシアニン 3−グルコシドの3位のグルコースの6位にマロニル基を転移する活性を有するタンパク質をコードする遺伝子は、キク、ダリア、シネラリアから単離されている(非特許文献3、特許文献1)。アントシアニン 5−グルコシドの5位のグルコースの6位にマロニル基を転移する活性を有するタンパク質をコードする遺伝子は、サルビア、シロイヌナズナから単離されている(非特許文献4、特許文献1)。イソフラボン 7−グルコシドの7位のグルコースの6位にマロニル基を転移する活性を有するタンパク質をコードする遺伝子は、ダイズ、メディカゴなどから単離されている(非特許文献5、6)。フラボノール 7−グルコシドの7位のグルコースの6位にマロニル基を転移する活性を有するタンパク質をコードする遺伝子は、タバコから単離されている(非特許文献7)。
かかる状況の下、本発明が解決しようとする課題は、キクにおいてフラボン 7−グルコシドの7位のグルコースの6位にマロニル基を特異的に転移する活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチドを同定し、これを用いて、7位のグルコースにマロニル基が付加されたフラボンの製造方法を提供することである。さらに、このようなポリヌクレオチドを用いて7位のグルコースにマロニル基が付加されたフラボンを生成し、当該フラボンのコピグメント効果により、改変された花色、好ましくは、既存の品種よりも青い花色を有する植物品種を作出することである。
すなわち、本発明は以下の通りのものである。
[1] 以下の(a)〜(e):
(a)配列番号1の塩基配列からなるポリヌクレオチド;
(b)配列番号1の塩基配列と相補的な塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリジェント条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドであって、フラボン 7−グルコシドの7位のグルコースの6位にマロニル基を特異的に転移する活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド;
(c)配列番号2のアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするポリヌクレオチド;
(d)配列番号2のアミノ酸配列において、1又は数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、フラボン 7−グルコシドの7位のグルコースの6位にマロニル基を特異的に転移する活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド;及び
(e)配列番号2のアミノ酸配列に対して90%以上の同一性を有するアミノ酸配列を有し、かつ、フラボン 7−グルコシドの7位のグルコースの6位にマロニル基を特異的に転移する活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド;
からなる群から選ばれるポリヌクレオチドを宿主植物に導入することを含む、7位のグルコースにマロニル基が付与されたフラボンを生成する遺伝子組換え植物又はその子孫を生産する方法。
[2] 前記フラボンがルテオリン又はアピゲニンである、1に記載の方法。
[3] 前記遺伝子組換え植物が改変された花色を有する、1又は2に記載の方法。
[4] 以下の(a)〜(e):
(a)配列番号1の塩基配列からなるポリヌクレオチド;
(b)配列番号1の塩基配列と相補的な塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリジェント条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドであって、フラボン 7−グルコシドの7位のグルコースの6位にマロニル基を特異的に転移する活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド;
(c)配列番号2のアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするポリヌクレオチド;
(d)配列番号2のアミノ酸配列において、1又は数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、フラボン 7−グルコシドの7位のグルコースの6位にマロニル基を特異的に転移する活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド;及び
(e)配列番号2のアミノ酸配列に対して90%以上の同一性を有するアミノ酸配列を有し、かつ、フラボン 7−グルコシドの7位のグルコースの6位にマロニル基を特異的に転移する活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド;
からなる群から選ばれるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする、7位のグルコースにマロニル基が付与されたフラボンを生成する遺伝子組換え植物若しくはその子孫又はそれらの部分若しくは組織。
[5] 前記フラボンがルテオリン又はアピゲニンである、4に記載の遺伝子組換え植物若しくはその子孫又はそれらの部分若しくは組織。
[6] 前記遺伝子組換え植物が改変された花色を有する、4又は5に記載の植物若しくはその子孫又はそれらの部分若しくは組織。
[7] 切花である、4〜6のいずれかに記載の植物の部分。
[8] 7に記載の切花を用いた切花加工品。
[9] 以下の(a)〜(e):
(a)配列番号1の塩基配列からなるポリヌクレオチド;
(b)配列番号1の塩基配列と相補的な塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリジェント条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドであって、フラボン 7−グルコシドの7位のグルコースの6位にマロニル基を特異的に転移する活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド;
(c)配列番号2のアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするポリヌクレオチド;
(d)配列番号2のアミノ酸配列において、1又は数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、フラボン 7−グルコシドの7位のグルコースの6位にマロニル基を特異的に転移する活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド;及び
(e)配列番号2のアミノ酸配列に対して90%以上の同一性を有するアミノ酸配列を有し、かつ、フラボン 7−グルコシドの7位のグルコースの6位にマロニル基を特異的に転移する活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド;
からなる群から選ばれるポリヌクレオチドを非ヒト宿主に導入し、
該非ヒト宿主を培養し又は生育させること、
を含む、7位のグルコースにマロニル基が付加されたフラボンの製造方法。
[10] 前記非ヒト宿主が植物細胞である、9に記載の方法。
[11] 前記フラボンがルテオリン又はアピゲニンである、9又は10に記載の方法。
本明細書では、キク由来のフラボン 7−グルコシドの7位のグルコースの6位にマロニル基を特異的に転移する活性を有するタンパク質をコードする遺伝子について述べているが、本発明で用いられるポリヌクレオチドは、キク由来の遺伝子に限定されるものではなく、フラボン 7−グルコシドの7位のグルコースの6位にマロニル基を特異的に転移する活性を有するタンパク質をコードする遺伝子の起源としては植物でも動物でも微生物であってもよく、フラボン 7−グルコシドの7位のグルコースの6位にマロニル基を特異的に転移する活性を有している限り、起源を問わず、植物における花色の変更に利用可能である。
本発明に係るDNAは、当業者に公知の方法、例えば、ホスホアミダイド法等により化学的に合成する方法、植物の核酸試料を鋳型とし、目的とする遺伝子のヌクレオチド配列に基づいて設計したプライマーを用いる核酸増幅法などによって得ることができる。
あるいは短縮されたアミノ酸配列からなる酵素をコードするDNAを得るには、例えば、目的とするアミノ酸配列より長いアミノ酸配列、例えば、全長アミノ酸配列をコードするDNAを所望の制限酵素により切断し、その結果得られたDNA断片が目的とするアミノ酸配列の全体をコードしていない場合は、不足部分の配列からなるDNA断片を合成し、連結すればよい。
植物細胞内でポリヌクレオチドを構成的に発現させるプロモーターの例としては、カリフラワーモザイクウィルスの35S RNAプロモーター、rd29A遺伝子プロモーター、rbcSプロモーター、mac−1プロモーター等が挙げられる。また、組織特異的な遺伝子発現のためには、その組織で特異的に発現する遺伝子のプロモーターを用いることができる。
発現ベクターの作製は、制限酵素、リガーゼなどを用いて常法に従って行うことができる。
[実施例1:フラボン 7−グルコシドの7位のグルコースの6位にマロニル基を転移する活性を有するタンパク質候補の酵素活性測定実験(大腸菌から粗抽出したタンパク質溶液を用いる場合)]
<大腸菌発現用ベクターの作製>
非特許文献8に記載された機能未同定のDm3MaT3をフラボン 7−グルコシドの7位のグルコースの6位にマロニル基を転移する活性を有するタンパク質候補とし、pET32a(Novagen社)を用いて、製造者に推奨されているプロトコールに従って、Dm3MaT3の完全長を含む大腸菌発現用ベクター(pET32a−Dm3MaT3)を作製した。
<マロニル転移酵素の大腸菌での発現>
pET32a−Dm3MaT3を、One Shot BL21(DE3)(invitorgen)を用いて、製造者に推奨されているプロトコールに従い、大腸菌株BL21へ導入し、形質転換大腸菌を取得した。この大腸菌をOvernight Express Autoinduction System1(Novagen社)を用いて、製造者に推奨されているプロトコールに従い、培養した。調製した培養液2mlで、形質転換大腸菌をOD600値が0.5になるまで37℃で培養した(約4時間)。この大腸菌液を前培養液として、50mlの培養液に加え、25℃で一晩本培養した。
一晩本培養した大腸菌液を遠心分離(3000rpm、4℃、15分間)し、集菌した菌体を5mlのソニックバッファー(組成;TrisHCl(pH7.0):2.5mM、ジチオスレイトール(DTT):1mM、アミジノファニルメタンスルフォニルフルオライド塩酸(APMSF):10μM)に懸濁し、超音波処理により大腸菌を粉砕した後、遠心分離(15000rpm、4℃、10分間)して、上清を回収した。その上清を、Dm3MaT3を発現させた大腸菌から粗抽出したタンパク質溶液とした。遠心分離には、Avanti HP−26XP(ローター:JA−2)を使用した(BECKMAN COULTER社)。
50μlのDm3MaT3を発現させた大腸菌から粗抽出したタンパク質溶液、5μlの1mg/mlのマロニル−CoA、5μlの1M KPB(pH7.0)、5μlの500μg/mlのルテオリン 7−グルコシド(0.1%TFAを含む50%アセトニトリル水溶液に溶解)を混合し、水で100μlになるように氷上で調整した反応液を30℃で20分間保持した。その後、100μlの停止バッファー(0.1%TFAを含む90%アセトニトリル水溶液)を加えて反応を停止させ、反応液を高速液体クロマトグラフィー(Prominence(島津製作所))にて分析した。検出器は島津PDA SPD−M20Aを用い330nmでフラボンを検出した。カラムはShim−Pack ODS 150mm*4.6mm(島津製作所)を用いた。溶出には、A液(0.1%TFA水溶液)とB液(0.1%TFAを含む90%メタノール水溶液)を用いた。両者の8:2の混合液から0:10の混合液までの16分間の直線濃度勾配とそれにつづく6分間0:10の混合液による溶出を行なった。流速は0.6ml/分とした。コントロールとして、インサートを挿入しないpET32aベクターを導入した大腸菌から粗抽出したタンパク質溶液を用いて同様の実験を行った。
キクは、フラボン 7−グルコシドの7位のグルコースの6位にマロニル基を転移する活性以外に、アントシアニンの3位のグルコースの6位にマロニル基を転移する活性を有する(非特許文献8参照)。Dm3MaT3を、アントシアニンの3位のグルコースの6位にマロニル基を転移する活性を有するタンパク質をコードする遺伝子、及び3位のグルコースの6位がマロニル化されたアントシアニンの3位のグルコースの3位にマロニル基を転移する活性を有するタンパク質をコードする遺伝子としてすでに報告されているキク由来アントシアニジン3−O−グルコシド−6”−O−マロニル基転移酵素(Dm3MaT1)、及びキク由来アントシアニジン3−O−グルコシド−3”,6”−O−ジマロニル基転移酵素(Dm3MaT2)と差別化するため、Dm3MaT1、2についても同様に大腸菌発現用ベクターを作製し、大腸菌から粗抽出したタンパク質溶液を用いて酵素活性測定実験を行った。さらに、シアニジン 3−グルコシドを基質とした酵素反応も行い、Dm3MaT3の結果と比較した。その場合、反応液を高速液体クロマトグラフィー(Prominence(島津製作所))にて分析をするときには、検出器は島津PDA SPD−M20Aを用い520nmでアントシアニンを検出した。カラムはShodex RSpak DE−413L(Shodex)を用いた。溶出には、A液(0.1%TFA水溶液)とB液(0.1%TFAを含む90%アセトニトリル水溶液)を用いた。両者の8:2の混合液から0:10の混合液までの15分間の直線濃度勾配とそれにつづく5分間0:10の混合液による溶出を行なった。流速は0.6ml/分とした。
その結果、Dm3MaT3とルテオリン 7−グルコシドを酵素反応させると、基質として加えたルテオリン 7−グルコシド以外に、ルテオリン 7−マロニルグルコシドのピークが検出された。Dm3MaT1、2とルテオリン 7−グルコシドを酵素反応させた場合には、ルテオリン 7−マロニルグルコシドのピークは検出されなかった(図1参照)。
また、Dm3MaT3とシアニジン3−グルコシドを酵素反応させると、基質として加えたシアニジン 3−グルコシド以外に、シアニジン 3−マロニルグルコシドのピークが検出された。しかし、Dm3MaT1とシアニジン 3−グルコシドを反応させた場合と比較して、Dm3MaT3の場合では、シアニジン 3−グルコシドの消費量は明らかに少なかった(図2参照)。
これらの結果より、Dm3MaT3は、Dm3MaT1、2と異なり、アントシアニン3−グルコシドの3位のグルコースの6位にマロニル基を転移する活性を有するタンパク質をコードする遺伝子、3位のグルコースの6位がマロニル化されたアントシアニンの3位のグルコースの3位にマロニル基を転移する活性を有するタンパク質をコードする遺伝子ではなく、フラボン 7−グルコシドの7位のグルコースの6位にマロニル基を転移する活性を有するタンパク質をコードする遺伝子である可能性が示された。
<マロニル基転移酵素の大腸菌での発現とタンパク質精製>
実施例1で記載したpET32a−Dm3MaT3を導入した大腸菌株BL21をOvernight Express Autoinduction System1(Novagen社)を用いて、製造者に推奨されているプロトコールに従い、培養した。調製した培養液8mlで、形質転換大腸菌をOD600値が0.5になるまで37℃で培養した(約4時間)。この大腸菌液を前培養液として、200mlの培養液に加え、25℃で一晩本培養した。
一晩本培養した大腸菌液を遠心分離(1000×g、4℃、10分間)し、集菌した菌体を20mlの抽出液(組成;緩衝液(KCl:300mM、KH2PO4:50mM、イミダゾール:5mM)(pH8.0)、アミジノファニルメタンスルフォニルフルオライド塩酸(APMSF):10μM)に懸濁し、超音波処理により大腸菌を粉砕した後、遠心分離(1400×g、4℃、20分)して、上清を回収した。その上清を0.45μmフィルターに通し、Profinia(Bio−Rad)を用いて、製造者に推奨されているプロトコールに従って、His−Tag精製した。得られた精製タンパク質溶液を、centrifugal Filters(Ultracel−10K)(Amicon Ultra社)を用いて、遠心分離(7500×g、4℃、15分間)し、その濃縮されたタンパク質溶液を「Dm3MaT3タンパク質溶液」とした。遠心分離には、Avanti HP−26XP(ローター:JA−2)を使用した(BECKMAN COULTER社)。
30μlのDm3MaT3タンパク質溶液(10μg)、5μlの1mg/mlのマロニル−CoA、5μlの1M KPB(pH7.0)、5μlの500μg/mlのルテオリン 7−グルコシド(0.1%TFAを含む50%アセトニトリル水溶液に溶解)を混合し、水で100μlになるように氷上で調整した反応液を30℃で20分間保持した。その後、100μlの停止バッファー(0.1%TFAを含む90%アセトニトリル水溶液)を加えて反応を停止させ、反応液を高速液体クロマトグラフィー(Prominence(島津製作所))にて分析した。検出器は島津PDA SPD−M20Aを用い330nmでフラボンを検出した。カラムはShim−Pack ODS 150mm*4.6mm(島津製作所)を用いた。溶出には、A液(0.1%TFA水溶液)とB液(0.1%TFAを含む90%メタノール水溶液)を用いた。両者の8:2の混合液から0:10の混合液までの16分間の直線濃度勾配とそれにつづく6分間0:10の混合液による溶出を行なった。流速は0.6ml/分とした。
本発明のDm3MaT3遺伝子が、植物内でフラボン 7−グルコシドの7位のグルコースの6位にマロニル基を転移する活性を有するタンパク質をコードすることを確かめるため、Dm3MaT3を植物で発現させるためのバイナリーベクターpSPB7136を構築し(図8参照)、バラ(オーシャンソング)へ導入した。pSPB7136では、基本骨格としてpBINPLUS(Van Engel et al., Transgenic Research 4, 288)を、Dm3MaT3遺伝子を発現させるプロモーターとしてEl235Sプロモーター(Mitsuhara et al., (1996) Plant Cell Physiol. 37, p49)を、ターミネーターとしてHSPターミネーター(Plant Cell Physiol (2010) 51, 328-332)を使用した。
pSPB7136を導入した遺伝子組換えバラの若い葉を用いて、Dm3MaT3遺伝子の発現解析を行った。トータルRNA単離はPlant RNAeasy Kit(QIAGEN社)を用いて、製造者に推奨されているプロトコールに従って取得し、cDNA合成はGeneRacer Kit(invitrogen社)を用いて、製造者に推奨されているプロトコールに従って行った。逆転写PCR反応は、cDNAを鋳型として、AmpliTaq Gold DNA Polymerase(Thermo Fisher Scientific社)を用いて、製造者に推奨されているプロトコールに従い、20μlで行った(94℃で5分間保持し、94℃で30秒、55℃で30秒、72℃で1分30秒間保持のサイクルを30サイクル繰り返した後、72℃7分、4℃で保持した)。その際、Dm3MaT3の完全長cDNAが特異的に増幅するようなプライマー(フォワードプライマー:ATGGCTTCTCTTCCCATCTTG、リバースプライマー:TTAAAGGTATGCTTTTAGTCC)を設計し、利用した。反応産物をアガロースゲル電気泳動で解析したところ、完全長cDNAに相当する1365bpのバンドが検出されたことから、バラにおいてDm3MaT3遺伝子が転写されていることが確認された。
完全長cDNADm3MaT3の転写産物が合成されたバラ系統の花弁から粗酵素液を調製し、フラボン 7−グルコシドの7位のグルコースの6位にマロニル基を転移する活性の有無を評価した。2.5gの花弁サンプルを液体窒素で冷やしながら乳鉢ですりつぶし、30mlの抽出バッファー(組成;TrisHCl(pH7.5):100mM、ポリビニルピロリドン K−30:10mg/ml、1−チオグリセロール:1mg/ml、アミジノファニルメタンスルフォニルフルオライド塩酸(APMSF):10μM)に溶かした。得られたタンパク質溶液を遠心分離(10000rpm、4℃、10分間)し、回収した上清に35%の飽和濃度となるように硫酸アンモニウムを加えた。4℃で1時間撹拌した後、遠心分離(10000rpm、4℃、10分間)して上清を回収した。得られた上清に硫酸アンモニウムを飽和濃度70%となるように添加し、4℃で3時間撹拌した後、遠心分離(10000rpm、4℃、10分間)して沈澱を得た。この沈澱を1mlの溶出バッファー(組成;TrisHCl(pH7.5):20mM、DTT:1mM、アミジノファニルメタンスルフォニルフルオライド塩酸(APMSF):10μM)に溶かし、NAP−5Colums Sephadex G−25 DNA Grade(GE Healthcare社)を用いてカラム精製を行って、硫酸アンモニウムを取り除いた。この液を「花弁粗酵素液」とした。遠心分離には、Avanti HP−26XP(ローター:JA−2)を使用した(BECKMAN COULTER社)。
20μlの花弁粗酵素液、5μlの1mg/mlのマロニル−CoA、5μlの1M KPB(pH7.0)、2.5μlの1mMのアピゲニン(0.1%TFAを含む50%アセトニトリル水溶液に溶解)を混合し、水で100μlになるように氷上で調整した反応液を30℃で20分間保持した。その後、100μlの停止バッファー(0.1%TFAを含む90%アセトニトリル水溶液)を加えて反応を停止させ、反応液を高速液体クロマトグラフィー(Prominence(島津製作所))にて分析した。検出器は島津PDA SPD−M20Aを用い330nmでフラボンを検出した。カラムはShim−Pack ODS 150mm*4.6mm(島津製作所)を用いた。溶出には、A液(0.1%TFA水溶液)とB液(0.1%TFAを含む90%アセトニトリル水溶液)を用いた。両者の9:1の混合液から8:2の混合液までの20分間の直線濃度勾配、8:2の混合液から2:8の混合液までの15分間の直線濃度勾配、2:8の混合液から0:10の混合液までの5分間の直線濃度勾配とそれにつづく1分間0:10の混合液による溶出を行なった。流速は0.6ml/分とした。対照として、非遺伝子組換えバラについても同様にして、花弁から粗酵素液を調製し、酵素活性測定実験を行った。
非遺伝子組換えバラの花弁粗酵素液を用いた酵素反応液中においては、アピゲニン化合物のうちアピゲニンが71.24%、アピゲニン 7−グルコシドが28.76%を占めており、アピゲニン 7−マロニルグルコシドは検出されなかった。Dm3MaT3遺伝子を導入した遺伝子組換えバラの花弁粗酵素液を用いた酵素反応液中においては、アピゲニン 7−マロニルグルコシドのピークが2.04%を占め、残りの97.96%は、対照の非遺伝子組換えバラの花弁粗酵素液を用いた酵素反応液にも含まれるアピゲニン、アピゲニン 7−グルコシドであった。このことから、遺伝子組換えバラの花弁において、フラボン7−グルコシドの7位のグルコースにマロニル基を転移する活性を有するDm3MaT3が発現していることが確認された。
Claims (11)
- 以下の(a)〜(e):
(a)配列番号1の塩基配列からなるポリヌクレオチド;
(b)配列番号1の塩基配列と相補的な塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリジェント条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドであって、フラボン 7−グルコシドの7位のグルコースの6位にマロニル基を特異的に転移する活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド;
(c)配列番号2のアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするポリヌクレオチド;
(d)配列番号2のアミノ酸配列において、1又は数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、フラボン 7−グルコシドの7位のグルコースの6位にマロニル基を特異的に転移する活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド;及び
(e)配列番号2のアミノ酸配列に対して90%以上の同一性を有するアミノ酸配列を有し、かつ、フラボン 7−グルコシドの7位のグルコースの6位にマロニル基を特異的に転移する活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド;
からなる群から選ばれるポリヌクレオチドを宿主植物に導入することを含む、7位のグルコースにマロニル基が付与されたフラボンを生成する遺伝子組換え植物又はその子孫を生産する方法。 - 前記フラボンがルテオリン又はアピゲニンである、請求項1に記載の方法。
- 前記遺伝子組換え植物が改変された花色を有する、請求項1又は2に記載の方法。
- 以下の(a)〜(e):
(a)配列番号1の塩基配列からなるポリヌクレオチド;
(b)配列番号1の塩基配列と相補的な塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリジェント条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドであって、フラボン 7−グルコシドの7位のグルコースの6位にマロニル基を特異的に転移する活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド;
(c)配列番号2のアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするポリヌクレオチド;
(d)配列番号2のアミノ酸配列において、1又は数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、フラボン 7−グルコシドの7位のグルコースの6位にマロニル基を特異的に転移する活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド;及び
(e)配列番号2のアミノ酸配列に対して90%以上の同一性を有するアミノ酸配列を有し、かつ、フラボン 7−グルコシドの7位のグルコースの6位にマロニル基を特異的に転移する活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド;
からなる群から選ばれるポリヌクレオチドを含むことを特徴とする、7位のグルコースにマロニル基が付与されたフラボンを生成する遺伝子組換え植物若しくはその子孫又はそれらの部分若しくは組織。 - 前記フラボンがルテオリン又はアピゲニンである、請求項4に記載の遺伝子組換え植物若しくはその子孫又はそれらの部分若しくは組織。
- 前記遺伝子組換え植物が改変された花色を有する、請求項4又は5に記載の植物若しくはその子孫又はそれらの部分若しくは組織。
- 切花である、請求項4〜6のいずれか1項に記載の植物の部分。
- 請求項7に記載の切花を用いた切花加工品。
- 以下の(a)〜(e):
(a)配列番号1の塩基配列からなるポリヌクレオチド;
(b)配列番号1の塩基配列と相補的な塩基配列からなるポリヌクレオチドとストリジェント条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチドであって、フラボン 7−グルコシドの7位のグルコースの6位にマロニル基を特異的に転移する活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド;
(c)配列番号2のアミノ酸配列からなるタンパク質をコードするポリヌクレオチド;
(d)配列番号2のアミノ酸配列において、1又は数個のアミノ酸が欠失、置換、挿入、及び/又は付加されたアミノ酸配列からなり、かつ、フラボン 7−グルコシドの7位のグルコースの6位にマロニル基を特異的に転移する活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド;及び
(e)配列番号2のアミノ酸配列に対して90%以上の同一性を有するアミノ酸配列を有し、かつ、フラボン 7−グルコシドの7位のグルコースの6位にマロニル基を特異的に転移する活性を有するタンパク質をコードするポリヌクレオチド;
からなる群から選ばれるポリヌクレオチドを非ヒト宿主に導入し、
該非ヒト宿主を培養し又は生育させること、
を含む、7位のグルコースにマロニル基が付加されたフラボンの製造方法。 - 前記非ヒト宿主が植物細胞である、請求項9に記載の方法。
- 前記フラボンがルテオリン又はアピゲニンである、請求項9又は10に記載の方法。
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