JPWO2016088274A1 - 高効率エタノール発酵菌 - Google Patents

高効率エタノール発酵菌 Download PDF

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Abstract

外来遺伝子を導入することなく、エタノール産生効率の高い高効率エタノール発酵菌を提供する。高効率エタノール発酵菌は、五炭糖及び六炭糖から効率的にエタノールを産生する発酵菌であって、特許微生物寄託センターに受託番号NITE BP−01962として寄託されている。

Description

リグノセルロース系バイオマスを用いたバイオエタノール生産において、糖化溶液を発酵するための微生物に関する。
特に、リグノセルロース系バイオマスを用いたバイオエタノール生産において、五炭糖(以下、C5糖ということがある。)、及び六炭糖(以下、C6糖ということがある。)から効率的にエタノール生産することができる微生物に関する。
バイオエタノールは、バイオマスから産生される枯渇することのない再生可能資源として期待されている。また、バイオエタノールを燃焼させて発生する二酸化炭素はカーボンニュートラルであることから、バイオエタノールの利用が進むことによって、地球温暖化の主な原因である二酸化炭素の上昇を抑制すると考えられている。
バイオエタノールは、バイオマスを発酵させ、蒸留してエタノールを精製する。バイオエタノールの収率を高めるために糖化溶液から多くのアルコールを生成する必要がある。バイオエタノール生産の過程で一般的に用いられている酵母は、キシロース、アラビノースなどの五炭糖をアルコールに変換できないため、発酵原料としては六炭糖のみが用いられてきた。
原料によって異なるものの典型的なバイオマスには、35〜45%のセルロース、25〜40%のヘミセルロース、15〜30%のリグニンが含まれていると言われている。したがって、六炭糖が重合しているセルロースだけではなく、五炭糖であるキシロース等を主として含有するヘミセルロースを基質として利用することは効率的なエタノール産生につながることになる。
キシロースはグルコースの次にバイオマス中に多く含まれている糖であると言われており、五炭糖を効率的に利用することはバイオエタノール生産において大きな課題となっている。
これまでに、遺伝子組換えによるキシロース利用能の付与や、キシロースを利用してエタノールを産生する微生物の利用等により、キシロースを少しでも利用する技術が開示されている。
特許文献1には、キシローストランスポーター活性を有する遺伝子を宿主細胞に導入することによって、キシロース(C5糖)をキシルロースに変換し、解糖系のペントースリン酸経路に組み入れ、発酵に利用する発明が開示されている。
特許文献2には、アラビノーストランスポーターを付与した酵母によって、アルコールを生成する技術が開示されている。特許文献1と同様にアラビノース(C5糖)をアラビトール、キシルロースを経て解糖系のペントースリン酸経路に組み入れ、発酵に利用するものである。
非特許文献1には、大腸菌由来のキシロース資化遺伝子をザイモモナスに組み込むことにより、キシロース資化能を付与することが開示されている。
非特許文献2には、ピキア属酵母が、キシロースを利用してエタノールを生産することが記載されている。
特開2012-170422号公報 米国特許出願公開第2013/189788号明細書
Zhang, M., et al., Science, 1995. Vol. 267, pp. 240-243. Bicho, P.A., et al., Appl. Environ. Microbiol., 1988, Vol. 54, pp. 50-54.
しかしながら、特許文献1の発明は、Candida guilliermondii由来のキシローストランスポーター活性のあるタンパク質を宿主としてSaccharomyces cerevisiaeに導入している。すなわち外来遺伝子を導入することになる。また、特許文献2の発明もトランスポーター遺伝子は異なるものの、宿主に対して異なる種の遺伝子を導入する発明である。
また、非特許文献1に記載の技術は、キシロース資化遺伝子を導入するものであり、上記特許文献1及び2とは技術思想は異なるが、外来遺伝子を導入することに変わりない。
そのため、上記特許文献1及び2、非特許文献1に記載の発明は、いずれも国連で採択された「生物の多様性に関する条約のバイオセーフティに関するカルタヘナ議定書」を実施するために我が国において施行されているいわゆるカルタヘナ法に則した封じ込め策を講じる必要がある。従って、バイオセーフティを保証するための施設を必要とすることから、当該菌体を利用してエタノールを生産することはコストの面で不利である。
また、非特許文献2に記載の技術によって、ピキア属酵母を利用することは、野生型のピキア属酵母はキシロース利用性が低く、エタノール産生効率はさほど高くならない。
本発明は、外来遺伝子を導入することなく、エタノール産生効率の高い高効率エタノール発酵菌を得ることを課題とする。
前記課題を解決するために、本発明の高効率エタノール発酵菌は、五炭糖及び六炭糖から効率的にエタノールを産生する発酵菌であって、特許微生物寄託センターに受託番号NITE BP−01962として寄託されていることを特徴とする。
野生型Meyerozyma guilliermondiは、グルコース資化能に加えてキシロース資化能を備えているとはいうものの、バイオエタノール生産に十分なキシロース利用能を備えているわけではない。これに対して、本発明の高効率エタノール発酵菌(以下、BP−01962株ということがある。)は、Meyerozyma guilliermondi N株を親株として菌株育種することによりキシロースの利用効率の高い菌を選抜して得たものである。
この結果、本発明の高効率エタノール発酵菌は、外来遺伝子を導入することなく、親株より高いエタノール産生効率を得ることができる。
本発明の高効率エタノール発酵菌は、Meyerozyma guilliermondii N株をアンモニア処理稲わら由来酵素糖化液に変異剤を加えた培地で馴化培養して、該培地で生育する菌を選抜することによりエタノール発酵性能が向上している。
キシロース資化性とエタノール収率とを示すグラフであり、AはN株、BはBP−01962株を示す。 アンモニア処理稲わら由来酵素糖化液におけるBP−01962株によるグルコース及びキシロースの消化量と、エタノールの生成量との経時変化を示すグラフである。 BP−01962株とN株との希硫酸処理コーンストーバ由来酵素糖化液における糖濃度と発酵収率との関係を示すグラフである。 BP−01962株とN株との希硫酸処理コーンストーバ由来酵素糖化液におけるエタノール生成量の経時変化を示すグラフである。
次に、添付の図面を参照しながら本発明の実施の形態についてさらに詳しく説明する。
子嚢菌系酵母であるMeyerozyma guilliermondiの野生株は、グルコース資化能に加えてキシロース利用能を備えているが、そのキシロース利用能はバイオエタノール生産に十分とは言えない。そこで、本実施形態の高効率エタノール発酵菌は、子嚢菌系酵母であるMeyerozyma guilliermondi N株を親株として、アンモニア処理稲わら由来酵素糖化液に変異剤を加えた培地で馴化培養して、該培地で生育する菌を選抜することにより得られた変異株である。
本実施形態の高効率エタノール発酵菌は、本出願人により独立行政法人製品評価技術基盤機構 特許微生物寄託センター(日本国 〒292−0818 千葉県木更津市かずさ鎌足2−5−8 122号室)に寄託されている。受託日は2014年11月19日、受託番号は、NITE BP−01962である。以下、本実施形態の高効率エタノール発酵菌を、BP−01962株ということがある。
前記アンモニア処理稲わら由来酵素糖化液は、例えば、次のようにして得たものを用いることができる。まず、埼玉県熊谷市産の稲わらを等量の25質量%アンモニア水に30℃の温度で3時間浸漬した後、アンモニアを放散させることにより前処理する。次に、前記前処理が施された稲わらに、pH調整後、糖化酵素(MeijiSeikaファルマ株式会社製、商品名:アクレモニウムセルラーゼ)を添加し50℃の温度に72時間保持して酵素糖化を行い、酵素糖化液を含むスラリーを得る。次に、前記スラリーをフィルタープレスにより固液分離し、回収された液体分を前記アンモニア処理稲わら由来酵素糖化液とする。前記アンモニア処理稲わら由来酵素糖化液は、例えば、3〜15質量%のグルコースと、1〜10質量%のキシロースとを含んでいる。
前記変異剤としては、例えば、N−エチル−N−ニトロソウレア(ENU)、メタンスルホン酸エチル(EMS)等のエチル化剤、5−ブロモ−2´−デオキシウリジン(BrdU)等の塩基類似化合物、ニトロアミン、ニトロソグアニジン等のニトロソ化合物等を用いることができる。
本実施形態の高効率エタノール発酵菌であるBP−01962株は、前記親株を前記アンモニア処理稲わら由来酵素糖化液に変異剤を加えた培地で馴化培養して、該培地で生育する菌の選抜を繰り返すことにより得られた変異株である。従って、BP−01962株は、Meyerozyma guilliermondiの野生株又はN株に比較して、外来遺伝子を導入することなく、キシロース資化性及びエタノール発酵性能が向上している。
次に、Meyerozyma guilliermondi N株とBP−01962株とのキシロース資化性とエタノール収率を比較した。
まず、グルコース97.6g/L、キシロース41.5g/L、酵母エキス10.0g/L、ペプトン20.0g/Lを含みpH4.7の合成培地に、Meyerozyma guilliermondiN株の培養液を培地のOD600が2.0となるように添加し、30℃の温度で168時間培養を行った。そして、所定時間毎に前記培地を採取し、グルコースとキシロースとの濃度をHPLC(東ソー株式会社製、商品名:LC−8020)により、エタノールの濃度をGC−FID(ジーエルサイエンス株式会社製、商品名:GC390B)により、それぞれ測定した。キシロース濃度とエタノール濃度との測定結果を図1Aに示す。
次に、26質量%のアンモニア処理稲わら由来酵素糖化液を培地とし、該培地にBP−01962株のの培養液を培地のOD600が2.0となるように添加し、30℃の温度で168時間培養を行った。前記アンモニア処理稲わら由来酵素糖化液は、グルコース112g/L、キシロース40.6g/Lを含みpH4.5であった。そして、所定時間毎に前記培地を採取し、グルコースとキシロースとの濃度をHPLC(東ソー株式会社製、商品名:LC−8020)により、エタノールの濃度をGC−FID(ジーエルサイエンス株式会社製、商品名:GC390B)により、それぞれ測定した。キシロース濃度とエタノール濃度との測定結果を図1Bに示す。
図1A,1Bから、Meyerozyma guilliermondi N株ではキシロース濃度が殆ど変化せず、エタノール濃度も40g/Lを超えないのに対し、BP−01962株では培養時間が長くなるほどキシロース濃度が低下し、エタノール濃度が40g/Lを超えることがわかる。
従って、BP−01962株によれば、N株よりも優れたキシロース資化性及びエタノール発酵性能を備えていることが明らかである。
次に、26質量%のアンモニア処理稲わら由来酵素糖化液を培地とし、該培地にBP−01962株の培養液を培地のOD600が2.0となるように添加し、30℃の温度で120時間培養を行った。前記アンモニア処理稲わら由来酵素糖化液は、グルコース73.8g/L、キシロース28.3g/Lを含みpH5.8であった。そして、所定時間毎に前記培地を採取し、グルコースとキシロースとの濃度をHPLC(東ソー株式会社製、商品名:LC−8020)により、エタノールの濃度をGC−FID(ジーエルサイエンス株式会社製、商品名:GC390B)により、それぞれ測定した。結果を図2に示す。
図2から、培養開始から120時間後にはグルコース及びキシロースの全量が消化されており、エタノール濃度は培養時間が長くなるほど高くなることがわかる。また、培養開始から48時間後にはグルコース濃度が殆どゼロになっているが、その後もキシロース濃度は低下し、エタノール濃度は増加を続けていることから、BP−01962株はグルコースの全量が消化された後は、キシロースを基質としてエタノール発酵を行っていることが明らかである。
次に、希硫酸処理コーンストーバ由来酵素糖化液を用いて、BP−01962株とN株との発酵収率を比較した。
前記希硫酸処理コーンストーバ由来酵素糖化液は、次のようにして得たものを用いた。まず、米国アイオワ州産のコーンストーバを2倍量の3.7質量%硫酸に170℃の温度で10分間浸漬した後、常温に戻すことにより前処理する。次に、前記前処理が施されたコーンストーバにNaOH水溶液を添加してpH4に調整後、糖化酵素(MeijiSeikaファルマ株式会社製、商品名:アクレモニウムセルラーゼ)を添加し50℃の温度に72時間保持して酵素糖化を行い、酵素糖化液を含むスラリーを得る。次に、前記スラリーを遠心分離により固液分離し、回収された液体分をNaOH水溶液でpH6に調整し、前記希硫酸処理コーンストーバ由来酵素糖化液とした。前記希硫酸処理コーンストーバ由来酵素糖化液は、例えば、3〜15質量%のグルコースと、1〜10質量%のキシロースとを含んでいる。
次に、15質量%の希硫酸処理コーンストーバ由来酵素糖化液を培地とし、該培地にBP−01962株の培養液を培地のOD600が0.5となるように添加し、30℃の温度で100時間培養を行った。前記希硫酸処理コーンストーバ由来酵素糖化液は、グルコース45g/L、キシロース38g/Lを含みpH6であった。そして、前記培養後に前記培地を採取してエタノールの濃度をGC−FID(ジーエルサイエンス株式会社製、商品名:GC390B)により測定し、次式(1)により発酵収率を算出した。結果を図3に示す。
発酵収率=生成エタノール濃度/(グルコース濃度+キシロース濃度)/0.5114 ・・・(1)
(グルコース濃度及びキシロース濃度は培養開始前の初期濃度である)
次に、26質量%の希硫酸処理コーンストーバ由来酵素糖化液を培地とし、該培地にMeyerozyma guilliermondi N株の培養液を培地のOD600が0.5となるように添加し、30℃の温度で100時間培養を行った。前記希硫酸処理コーンストーバ由来酵素糖化液は、グルコース64g/L、キシロース48g/Lを含みpH6であった。そして、前記培養後に前記培地を採取してエタノールの濃度をGC−FID(ジーエルサイエンス株式会社製、商品名:GC390B)により測定し、式(1)により発酵収率を算出した。結果を図3に示す。
図3から、BP−01962株は、N株よりも低濃度の前記希硫酸処理コーンストーバ由来酵素糖化液に対して、N株よりも優れたエタノール発酵性能を備えていることが明らかである。
次に、20質量%の希硫酸処理コーンストーバ由来酵素糖化液を培地とし、該培地にBP−01962株とN株との培養液を培地のOD600が2.0となるようにそれぞれ添加し、30℃の温度で120時間培養を行った。前記希硫酸処理コーンストーバ由来酵素糖化液は、グルコース58.8g/L、キシロース33.8g/Lを含みpH6であった。そして、所定時間毎に前記培地を採取してエタノールの濃度をGC−FID(ジーエルサイエンス株式会社製、商品名:GC390B)により測定した。結果を図4に示す。
図4から、BP−01962株は、同濃度の前記希硫酸処理コーンストーバ由来酵素糖化液においても、N株より優れたエタノール発酵性能を備えていることが明らかである。
また、BP−01962株は、実験室レベルの規模である1Lから、5000Lに変更して発酵を行った場合でも、菌体増殖、グルコース資化、キシロース資化、エタノール産生量のいずれにおいてもほぼ同等の結果を得ることができた。従って、BP−01962株は、工業生産的にも有用な菌株である。
符号なし。
【0003】
ローストランスポーター活性のあるタンパク質を宿主としてSaccharomyces cerevisiaeに導入している。すなわち外来遺伝子を導入することになる。また、特許文献2の発明もトランスポーター遺伝子は異なるものの、宿主に対して異なる種の遺伝子を導入する発明である。
[0015]
また、非特許文献1に記載の技術は、キシロース資化遺伝子を導入するものであり、上記特許文献1及び2とは技術思想は異なるが、外来遺伝子を導入することに変わりない。
[0016]
そのため、上記特許文献1及び2、非特許文献1に記載の発明は、いずれも国連で採択された「生物の多様性に関する条約のバイオセーフティに関するカルタヘナ議定書」を実施するために我が国において施行されているいわゆるカルタヘナ法に則した封じ込め策を講じる必要がある。従って、バイオセーフティを保証するための施設を必要とすることから、当該菌体を利用してエタノールを生産することはコストの面で不利である。
[0017]
また、非特許文献2に記載の技術によって、ピキア属酵母を利用することは、野生型のピキア属酵母はキシロース利用性が低く、エタノール産生効率はさほど高くならない。
[0018]
本発明は、外来遺伝子を導入することなく、エタノール産生効率の高い高効率エタノール発酵菌を得ることを課題とする。
課題を解決するための手段
[0019]
前記課題を解決するために、本発明の高効率エタノール発酵菌は、五炭糖及び六炭糖から効率的にエタノールを産生する発酵菌であって、Meyerozyma guilliermondii N株を、アンモニア処理稲わら由来酵素糖化液に変異剤を加えた培地で馴化培養して、該培地で生育する菌を選抜することにより、Meyerozyma guilliermondii N株に比較してキシロース資化性及びエタノール発酵性能が向上している菌であり、特許微生物寄託センターに受託番号NITE BP−01962として寄託されていることを特徴とする。
[0020]
野生型Meyerozyma guilliermondiは、グルコース資化能に加えてキシロース資化能を備えているとはいうものの、バイオエタノール生産に十分なキシロース利用能を備えているわけではない。これに対して、本発明の高効率エタノール発酵菌(以下、BP−01962株ということがある。)は、Meyerozyma guilliermondi N株を親株として菌株育種することによりキシロース

Claims (2)

  1. 五炭糖及び六炭糖から効率的にエタノールを産生する発酵菌であって、
    特許微生物寄託センターに受託番号NITE BP−01962として寄託されていることを特徴とする高効率エタノール発酵菌。
  2. 請求項1に記載の高効率エタノール発酵菌において、Meyerozyma guilliermondii N株を、アンモニア処理稲わら由来酵素糖化液に変異剤を加えた培地で馴化培養して、該培地で生育する菌を選抜することによりエタノール発酵性能が向上していることを特徴とする高効率エタノール発酵菌。
JP2016562190A 2014-12-05 2014-12-05 高効率エタノール発酵菌 Active JP6145582B2 (ja)

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