JPWO2015147017A1 - Ｆｇｆ２に対するアプタマー及びその使用 - Google Patents

Abstract

本発明は、ＦＧＦ２に対する阻害活性を有するアプタマー；ＦＧＦ２に対する結合活性又は阻害活性を有するアプタマー及び機能性物質（例えば、親和性物質、標識用物質、酵素、薬物送達媒体、又は薬物など）を含む複合体；ＦＧＦ２に対する結合活性又は阻害活性を有するアプタマー、又は当該アプタマー及び機能性物質を含む複合体を含む医薬、診断薬及び標識剤；などを提供する。

Description

本発明は、ＦＧＦ２に対するアプタマー及びその利用方法などに関する発明である。

塩基性線維芽細胞増殖因子（ＦＧＦ２又はｂＦＧＦ）は種々の細胞から分泌される増殖因子であり、発生段階では細胞増殖や分化に深く関与し、成体では組織修復時や癌組織において高い発現が認められる。

ヒトＦＧＦ２は複数のアイソフォームを有するが、そのうち最も分子量の小さいアイソフォームのみが細胞外に分泌される。このアイソフォームは１５４アミノ酸から構成される約１８ｋＤａのタンパク質で、糖鎖は持たず、等電点は９．４と塩基性に傾いている。読み取り枠の異なるＦＧＦ２の高分子量アイソフォーム（２２、２２．５、２４、３４ｋＤ）の機能はまだ明らかではないが、核内移行シグナルを持ち、核内で機能すると考えられている。

ヒトＦＧＦファミリータンパク質は、ＦＧＦ１からＦＧＦ２３までの２２種類が知られている（ＦＧＦ１５とＦＧＦ１９は同一分子であるため、現在はＦＧＦ１９に統一されている）。系統発生学的解析により、ＦＧＦ２はＦＧＦ１とともにＦＧＦ１サブファミリーに分類される。ＦＧＦ１とのアミノ酸配列の相同性は全ＦＧＦの中で最も高く、その値は５５％である。ＦＧＦの受容体（ＦＧＦＲ）はチロシンキナーゼ型受容体であり、４つのサブタイプに分類される。ＦＧＦＲ１〜３は、それぞれｂとｃのアイソフォームが知られているが、ＦＧＦ２はこのうちのＦＧＦＲ１ｂ、ＦＧＦＲ１ｃ、ＦＧＦＲ２ｃ及びＦＧＦＲ３ｃ、ならびにＦＧＦＲ４と結合して、これらの受容体を２量体化する。

マウス線維芽細胞（ＮＩＨ−３Ｔ３細胞）は細胞膜表面にＦＧＦＲ１を発現している細胞である。このＦＧＦＲ１はヒトＦＧＦ２の結合により活性化されることが知られている。ＦＧＦ２がＦＧＦＲ１に結合すると、ＦＲＳ２（Ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ ｇｒｏｗｔｈ ｆａｃｔｏｒ ｒｅｃｅｐｔｏｒ ｓｕｂｓｔｒａｔｅ ２）、Ｇｒｂ２（ｇｒｏｗｔｈ ｆａｃｔｏｒ ｒｅｃｅｐｔｏｒ−ｂｏｕｎｄ ｐｒｏｔｅｉｎ ２）、ＳＯＳを介してＭＡＰキナーゼ（ｍｉｔｏｇｅｎ−ａｃｔｉｖａｔｅｄ ｐｒｏｔｅｉｎ ｋｉｎａｓｅ）経路やＰＩＫ３（ｐｈｏｓｐｈａｔｉｄｙｌｉｎｏｓｉｔｏｌ ３−ｋｉｎａｓｅ）／ＡＫＴ１（ｐｒｏｔｅｉｎ ｋｉｎａｓｅ Ｂ）経路などが活性化され、最終的にＶＥＧＦ（ｖａｓｃｕｌａｒ ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ ｇｒｏｗｔｈ ｆａｃｔｏｒ ｐｒｅｃｕｒｓｏｒ）−Ａ、ＶＥＧＦ−Ｃ、ＨＧＦ（ｈｅｐａｔｏｃｙｔｅ ｇｒｏｗｔｈ ｆａｃｔｏｒ）、ａｎｇｉｏｐｏｉｅｔｉｎ−２、ＶＥＧＦＲ、ＰＤＧＦＲ−α（ｐｌａｔｅｌｅｔ-ｄｅｒｉｖｅｄ ｇｒｏｗｔｈ ｆａｃｔｏｒ ｂｅｔａ ｒｅｃｅｐｔｏｒ−α）など各種サイトカインや受容体遺伝子が発現誘導される。

ＦＧＦ２はヘパリン結合領域を持ち、他のＦＧＦと同様、ヘパリンやヘパラン硫酸と結合する。細胞から分泌されたＦＧＦ２は一般に細胞外マトリックスのヘパラン硫酸に結合し、濃縮され、プロテアーゼからの保護を受けると考えられている。リガンドとして機能する際は、結合した細胞外マトリックスからの遊離が必要だが、これにはＦＧＦ−ＢＰ（ＦＧＦ−ｂｉｎｄｉｎｇ ｐｒｏｔｅｉｎ）が関与し、ＦＧＦＲへの誘導を補助するとの報告がなされている。

ＦＧＦ２は血管内皮細胞に対する強い増殖、遊走促進作用を持ち、腫瘍組織の血管新生にも深く関与していることがわかっている。例えば腎臓がんなど、血管の多い腫瘍において特にＦＧＦ２の血清濃度が高いことが報告されており、その他前立腺がん、乳がん、肺がん等、様々な腫瘍にも存在する。

血管新生にはＦＧＦ２のほか、ＦＧＦ１、ＶＥＧＦ、ＴＮＦ−α（ｔｕｍｏｒ ｎｅｃｒｏｓｉｓ ｆａｃｔｏｒ−α）、ＰＤＧＦ、ＥＧＦ（ｅｐｉｄｅｒｍａｌ ｇｒｏｗｔｈ ｆａｃｔｏｒ）、ＭＭＰ（ｍａｔｒｉｘ ｍｅｔａｌｌｏｐｅｐｔｉｄａｓｅ）、ａｎｇｉｏｇｅｎｉｎなどの因子が関与している。これらの因子は腫瘍や血管芽細胞、支持細胞などから分泌され、オートクラインやパラクラインの成長因子として血管新生に寄与する。ただしＦＧＦ２は血管内皮細胞だけでなく、平滑筋細胞など、内皮細胞を取り囲む間葉系の細胞にも作用する点が他の因子と異なる。つまりＦＧＦ２は間葉系細胞を刺激してＰＤＧＦやＰＤＧＦＲ、ＶＥＧＦ、ＨＧＦ等の発現を亢進させ、これらの因子が直接的な血管内皮細胞の増殖を促進すると考えられている。

現在、腫瘍組織における異常型血管新生を阻害し、腫瘍組織への栄養供給経路の遮断を目的とした薬の開発が多く試みられている。実際に臨床の場で用いられている薬も存在し、例えばジェネンティック社により開発されたヒト型ＶＥＧＦモノクローナル抗体（アバスチン（登録商標））は、大腸癌及び非小細胞肺癌に対する有効性が認められている。しかしながら、未だ強力な抗腫瘍薬は開発されていない。これらの薬の多くはＶＥＧＦやＰＤＧＦを標的としたものであるが、より上流で機能するＦＧＦ２を標的とすることで、異常血管新生の初期段階をブロックすることが期待される。

また、異常血管新生は腫瘍のほか、歯周病、強皮症、新生血管性緑内障、関節炎等の慢性炎症、乾癬、加齢黄斑変性症などの疾患にも関与している。

一方、ＦＧＦ２の強い血管新生作用を、閉塞性血管障害に対する治療や創傷治癒に用いる試みがなされている。実際に、科研製薬株式会社によるヒトＦＧＦ２製剤（フィブラスト（登録商標）スプレー）は、創傷治癒の促進薬として既に認可、販売されている。

またＦＧＦ２は骨形成促進作用が知られているが、その一方で慢性関節リウマチ患者の関節破壊に関与するなど、骨吸収促進因子としても注目されている。自己免疫性関節炎を特徴とする慢性関節リウマチでは、破骨細胞が増加して骨吸収が亢進し、骨破壊が進行する。
ＦＧＦ２は間葉系細胞を刺激してＰＤＧＦやＰＤＧＦＲ、ＶＥＧＦ、ＨＧＦ等の炎症性サイトカインや増殖因子の発現を亢進させると共に、血管新生を促進し、骨破壊を促す。すなわちＦＧＦ２は、慢性関節リウマチにおける重要な病態に関与する中心的分子であることがわかっている（非特許文献１参照）。

破骨細胞分化抑制因子（Ｏｓｔｅｏｐｒｏｔｅｇｅｒｉｎ；ＯＰＧ）は、破骨細胞誘導因子であるＲＡＮＫＬのデコイ受容体であり、ＲＡＮＫと拮抗して破骨細胞への分化誘導やその機能を抑制することが知られている（非特許文献２参照）。滑膜細胞から産生されるＯＰＧはＦＧＦ２の刺激により抑制されることも知られている（非特許文献３参照）。さらにＦＧＦ２は骨芽細胞のＲＡＮＫＬの高発現を誘導することで骨芽細胞と破骨前駆細胞のカップリングを助長し、結果破骨細胞への分化と活性化を促進する（非特許文献４参照）。
ＦＧＦ２の機能を制御する事ができれば、破骨細胞の活性化を介した関節破壊の治療薬としての効果も十分期待できると考えられ、実際に抗ＦＧＦ２中和抗体をＡＩＡモデルラットの関節に直接投与して症状が緩和することが知られている。しかしながらその発症の抑制効果はわずかであり、特に発症後の投与における治癒効果は確認されていない（非特許文献５）。

ところで、近年、ＲＮＡアプタマーの治療薬、診断薬、試薬への応用が注目されており、いくつかのＲＮＡアプタマーが臨床段階あるいは実用化段階に入っている。２００４年１２月には、世界初のＲＮＡアプタマー医薬であるＭａｃｕｇｅｎが加齢性黄斑変性症の治療薬として米国で承認された。ＲＮＡアプタマーとはタンパク質などの標的物質に特異的に結合するＲＮＡのことで、ＳＥＬＥＸ法（Ｓｙｓｔｅｍａｔｉｃ Ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ ｏｆ Ｌｉｇａｎｄｓ ｂｙ Ｅｘｐｏｎｅｎｔｉａｌ Ｅｎｒｉｃｈｍｅｎｔ）を用いて作製することができる（特許文献１〜３参照）。ＳＥＬＥＸ法とは、１０^１４個程度の異なるヌクレオチド配列を持つＲＮＡのプールから、標的物質に特異的に結合するＲＮＡを選別してくる方法である。使用されるＲＮＡは４０残基程度のランダム配列をプライマー配列で挟み込んだ構造をしている。このＲＮＡプールを標的物質と会合させて、フィルターなどを用いて標的物質に結合したＲＮＡのみを回収する。回収したＲＮＡはＲＴ−ＰＣＲで増幅し、これを次のラウンドの鋳型として用いる。この作業を１０回程度繰り返すことにより、標的物質と特異的に結合するＲＮＡアプタマーを取得することができる場合がある。

特許文献４には、上記ＳＥＬＥＸ法により得られた、ＦＧＦ２に結合するアプタマーが記載されている。しかしながら、当該アプタマーは、本明細書中に具体的に示されるアプタマーとは配列が異なる。また、この文献には、本明細書中に具体的に示されるアプタマーについて何ら示唆されていない。

国際公開第９１／１９８１３号 国際公開第９４／０８０５０号 国際公開第９５／０７３６４号 国際公開第２０１１／０９９５７６号

Ｍａｎａｂｅ Ｎ． ｅｔ ａｌ． Ｒｅｕｍａｔｏｌｏｇｙ． １９９９； ３８； ７１４-７２０ Ｙａｓｕｄａ Ｈ． ｅｔ ａｌ． Ｐｒｏｃ． Ｎａｔｌ． Ａｃａｄ． Ｓｃｉ ＵＳＡ． １９９８；９５；３５９７-３６０２ Ｙａｎｏ Ｋ． ｅｔ ａｌ． Ｊ． Ｂｏｎｅ Ｍｉｎｅｒ Ｍｅｔａｂ． ２００１；１９；３６５-３７２ Ｒｏｃｃｉｓａｎａ ＪＬ ｅｔ ａｌ． Ｊ． Ｂｉｏｌ． Ｃｈｅｍ． ２７９： １０５００-１０５０７ （２００４） Ｙａｍａｓｈｉｔａ Ａ． ｅｔ ａｌ． Ｊ． Ｉｍｍｕｎｏｌ． ２００２；１６８；４５０−４５７

本発明は、ＦＧＦ２に対するアプタマー及びその利用方法などを提供することを目的とする。

本発明者は、上記課題を解決するため、鋭意検討した結果、ＦＧＦ２に対する良質なアプタマーを作製することに成功し、もって本発明を完成するに至った。

即ち、本発明は、以下のとおりである。
［１］下式（１）で表わされるヌクレオチド配列（但し、ウラシルはチミンであってもよい）を含むアプタマーであって、以下（ａ）又は（ｂ）のいずれかである、ＦＧＦ２に結合するアプタマー：
Ｎ^１ＧＧＡＮ^２ＡＣＵＡＧＧＧＣＮ^３ＵＵＡＡＮ^４ＧＵＮ^５ＡＣＣＡＧＵＧＵＮ^６（式１）
Ｎ^１及びＮ^６は、それぞれ独立して任意の０から数個の塩基、
Ｎ^２、Ｎ^３、Ｎ^４及びＮ^５は、独立して任意の一個の塩基を表す、
（ａ）該アプタマーに含まれるヌクレオチドにおいて、
（ｉ）各ピリミジンヌクレオチドのリボースの２’位がフッ素原子であり、
（ｉｉ）各プリンヌクレオチドのリボースの２’位がヒドロキシ基である、アプタマー；
（ｂ）該（ａ）のアプタマーにおいて、
（ｉ）各ピリミジンヌクレオチドのリボースの２’位のフッ素原子が、それぞれ独立して、無置換であるか、水素原子、ヒドロキシ基及びメトキシ基からなる群より選ばれる原子又は基で置換されており、
（ｉｉ）各プリンヌクレオチドのリボースの２’位のヒドロキシ基が、それぞれ独立して、無置換であるか、水素原子、メトキシ基及びフッ素原子からなる群より選ばれる原子又は基で置換されている、アプタマー。
［２］Ｎ^１は、Ｇ、ＧＧ、ＡＧ、Ｃ又はギャップ、
Ｎ^２は、Ａ又はＵ、
Ｎ^３は、Ｇ、Ｃ又はＡ、
Ｎ^４は、Ｇ、Ｃ又はＵ、
Ｎ^５は、Ｇ又はＵ、
Ｎ^６は、ＵＵＣＮ^６１又はＡＧＵＣＮ^６２
Ｎ^６１及びＮ^６２は、それぞれ独立して任意の０から数個の塩基である、
［１］記載のアプタマー。
［３］下式（２）又は（３）で表わされるヌクレオチド配列を含む、［１］又は［２］記載のアプタマー：
ＧＧＧＡＡＡＣＵＡＧＧＧＣＧＵＵＡＡＣＧＵＧＡＣＣＡＧＵＧＵＵＵＣＮ^６１（式２）
Ｎ^１ＧＧＡＵＡＣＵＡＧＧＧＣＡＵＵＡＡＵＧＵＵＡＣＣＡＧＵＧＵＡＧＵＣＮ^６２(式３)。
［４］配列番号２又は７で表わされるヌクレオチド配列を含む、［１］〜［３］のいずれかに記載のアプタマー。
［５］配列番号１、３、４、５、６、８、１０又は１１で表わされるヌクレオチド配列を含む、［１］〜［３］のいずれかに記載のアプタマー。
［６］［１］〜［５］のいずれかに記載のアプタマーにおいて、１又は数個のヌクレオチドが置換、欠失、挿入又は付加されたヌクレオチド配列を含むアプタマーであって、
（ａ）該アプタマーに含まれるヌクレオチドにおいて、
（ｉ）各ピリミジンヌクレオチドのリボースの２’位がフッ素原子であり、
（ｉｉ）各プリンヌクレオチドのリボースの２’位がヒドロキシ基である、アプタマー；
（ｂ）該（ａ）のアプタマーにおいて、
（ｉ）各ピリミジンヌクレオチドのリボースの２’位のフッ素原子が、それぞれ独立して、無置換であるか、水素原子、ヒドロキシ基及びメトキシ基からなる群より選ばれる原子又は基で置換されており、
（ｉｉ）各プリンヌクレオチドのリボースの２’位のヒドロキシ基が、それぞれ独立して、無置換であるか、水素原子、メトキシ基及びフッ素原子からなる群より選ばれる原子又は基で置換されている、アプタマー。
［７］ヌクレオチドの長さが４５ヌクレオチド以下である、［１］〜［６］のいずれかに記載のアプタマー。
［８］ＦＧＦ２とＦＧＦ受容体との結合を阻害する、［１］〜［７］のいずれかに記載のアプタマー。
［９］少なくとも１つのヌクレオチドが修飾されている、［１］〜［８］のいずれかに記載のアプタマー。
［１０］［１］〜［９］のいずれかに記載のアプタマー及び機能性物質を含む複合体。
［１１］機能性物質が、親和性物質、標識用物質、酵素、薬物送達媒体又は薬物である、［１０］記載の複合体。
［１２］［１］〜［９］のいずれかに記載のアプタマーあるいは［１０］又は［１１］に記載の複合体を含む、医薬。
［１３］［１］〜［９］のいずれかに記載のアプタマーあるいは［１０］又は［１１］に記載の複合体を含む、血管新生を伴う疾患、骨・軟骨疾患又は疼痛の治療用又は予防用医薬。
［１４］血管新生を伴う疾患、骨・軟骨疾患又は疼痛を治療又は予防する方法であって、有効量の［１］〜［９］のいずれかに記載のアプタマーあるいは［１０］又は［１１］に記載の複合体を、対象に投与することを含む方法。
［１５］血管新生を伴う疾患、骨・軟骨疾患又は疼痛の治療又は予防に用いるための、［１］〜［９］のいずれかに記載のアプタマーあるいは［１０］又は［１１］に記載の複合体。
［１６］血管新生を伴う疾患、骨・軟骨疾患又は疼痛の治療用又は予防用医薬を製造するための、［１］〜［９］のいずれかに記載のアプタマーあるいは［１０］又は［１１］に記載の複合体の使用。

本発明のアプタマー又は複合体は、血管新生を伴う疾患、骨・軟骨疾患又は疼痛の治療薬又は予防薬、あるいは診断薬、試薬として有用であり得る。本発明のアプタマー又は複合体はまた、ＦＧＦ２の精製及び濃縮、ＦＧＦ２の標識、並びにＦＧＦ２の検出及び定量に有用であり得る。

図１は、アプタマーＩＤ１及び２で表わされるアプタマーとヒトＦＧＦ２が結合することを示すセンサーグラムを示す。 図２は、アプタマーＩＤ１で表わされるアプタマーがヒトＦＧＦ２と４つの受容体の結合を阻害するセンサーグラムを示す。 図３は、アプタマーＩＤ３で表わされるアプタマーがヒトＦＧＦ１、ＥＧＦ、ＮＧＦ、ＶＥＧＦに結合しないことを示すセンサーグラムを示す。

一実施態様において、本発明は、
下式（１）
Ｎ^１ＧＧＡＮ^２ＡＣＵＡＧＧＧＣＮ^３ＵＵＡＡＮ^４ＧＵＮ^５ＡＣＣＡＧＵＧＵＮ^６（式１）
Ｎ^１及びＮ^６は、それぞれ独立して任意の０から数個の塩基、
Ｎ^２、Ｎ^３、Ｎ^４及びＮ^５は、独立して任意の一個の塩基を表す、
で表わされるヌクレオチド配列（但し、ウラシルはチミンであってもよい）を含むアプタマーであって、以下（ａ）又は（ｂ）
（ａ）該アプタマーに含まれるヌクレオチドにおいて、
（ｉ）各ピリミジンヌクレオチドのリボースの２’位がフッ素原子であり、
（ｉｉ）各プリンヌクレオチドのリボースの２’位がヒドロキシ基である、アプタマー；あるいは
（ｂ）該（ａ）のアプタマーにおいて、
（ｉ）各ピリミジンヌクレオチドのリボースの２’位のフッ素原子が、それぞれ独立して、無置換であるか、水素原子、ヒドロキシ基及びメトキシ基からなる群より選ばれる原子又は基で置換されており、
（ｉｉ）各プリンヌクレオチドのリボースの２’位のヒドロキシ基が、それぞれ独立して、無置換であるか、水素原子、メトキシ基及びフッ素原子からなる群より選ばれる原子又は基で置換されている、アプタマー
のいずれかである、ＦＧＦ２に結合するアプタマー：
を提供する。

アプタマーとは、所定の標的分子に対する結合活性を有する核酸分子をいう。アプタマーは、所定の標的分子に対して結合することにより、所定の標的分子の活性を阻害し得る。本発明のアプタマーは、ＲＮＡ、ＤＮＡ、修飾核酸又はそれらの混合物であり得る。また本発明のアプタマーは、直鎖状又は環状の形態であり得る。

本発明は、ＦＧＦ２に対して結合活性を有するアプタマーを提供する。一実施態様において、本発明のアプタマーは、ＦＧＦ２に結合し、ＦＧＦ２の活性を阻害し得る。すなわち、本発明のアプタマーは、ＦＧＦ２に対する阻害活性を有し得る。

ＦＧＦ２に対する阻害活性とは、ＦＧＦ２が保有する任意の活性に対する阻害能を意味する。例えば、ＦＧＦ２はＦＧＦ受容体発現細胞に作用して、シグナル伝達を活性化し、各種細胞増殖因子やその受容体の産生を誘導する。従って、ＦＧＦ２に対する阻害活性とは、ＦＧＦ受容体を介した細胞内シグナル伝達を阻害する活性のことであり得る。また、これら各種細胞増殖因子やその受容体の発現は、結果的に細胞の増殖活性や遊走活性の亢進を導くので、ＦＧＦ２の阻害活性とはそれらの活性の阻害を意味する。
よって、本発明のアプタマーがＦＧＦ２に結合し、ＦＧＦ２とＦＧＦ受容体との結合を阻害した場合、ＦＧＦ受容体を介した細胞内シグナル伝達経路の活性化に伴う作用、例えば、細胞死の抑制、細胞増殖、ｏｓｔｅｏｐｒｏｔｅｇｅｒｉｎ（ＯＰＧ）産生の抑制などが阻害され得る。

ＦＧＦ２とは、発生初期や分化、増殖、再生時に強く発現するタンパク質であり、例えば、Ａｃｃｅｓｓｉｏｎ ｃｏｄｅ ＥＡＸ０５２２２やＮＰ００１９９７で表されるアミノ酸配列を持つタンパク質である。ＦＧＦ２は、ｂＦＧＦ（ｂａｓｉｃ ＦＧＦ）、ＦＧＦＢ又はＨＢＧＦ−２と呼ばれることもある。本発明におけるＦＧＦ２は、動物体内で作られる他、マウスなどの哺乳細胞、昆虫細胞、大腸菌などの培養細胞を用いても作製することができ、更に、化学合成によっても作ることができる。培養細胞や化学合成によって作製する場合は、自体公知の方法で容易に変異体を作製することができる。ここでＦＧＦ２の「変異体」とは、公知のＦＧＦ２のアミノ酸配列からアミノ酸が１〜数個置換、欠失、付加等されたものや、公知のＦＧＦ２のアミノ酸配列の一部分のアミノ酸配列からなるものであって、本来ＦＧＦ２が有している活性の少なくとも一つ以上の活性を有しているタンパク質又はペプチドを意味する。アミノ酸が置換、付加される場合、当該アミノ酸は天然のアミノ酸であってもよいし、非天然のアミノ酸であってもよい。本発明におけるＦＧＦ２はこれらの変異体を含む。

ＦＧＦ２受容体とは、ＦＧＦ２が結合する細胞表面タンパク質を意味する。ＦＧＦ２受容体としては、ＦＧＦＲ１ｂ、ＦＧＦＲ１ｃ、ＦＧＦＲ２ｃ、ＦＧＦＲ３ｃ及びＦＧＦＲ４が知られている。本発明におけるＦＧＦ２受容体とは、天然のアミノ酸配列を含むタンパク質であってもよいし、その変異体であってもよい。ここでＦＧＦ２受容体の「変異体」とは、アミノ酸が１〜数個置換、欠失、付加等されたものや、公知のＦＧＦ２受容体のアミノ酸配列の一部分のアミノ酸配列からなるものであって、ＦＧＦ２に対して結合活性を有するタンパク質又はペプチドを意味する。一実施態様において、本発明は、ＦＧＦ２とＦＧＦ２受容体との結合を阻害するアプタマーを提供する。

本発明のアプタマーは、任意の哺乳動物に由来するＦＧＦ２に対する阻害活性を有し得る。このような哺乳動物としては、例えば、霊長類（例、ヒト、サル）、げっ歯類（例、マウス、ラット、モルモット）、並びにペット、家畜及び使役動物（例、イヌ、ネコ、ウマ、ウシ、ヤギ、ヒツジ、ブタ）が挙げられる。

一実施態様において、本発明のアプタマーは、ＦＧＦ２の活性を阻害し得るが、ＦＧＦ１の活性を阻害し得ないという特徴を有し得る。また、一実施態様において、本発明のアプタマーは、ＦＧＦ２とＦＧＦ２受容体との結合は阻害するが、ＦＧＦ１とＦＧＦ１受容体との結合は阻害しないという特徴を有し得る。ＦＧＦ１はＦＧＦファミリータンパク質であり、最もＦＧＦ２に類似している。

上記式（１）中、Ｎ^１及びＮ^６は、それぞれ独立して任意の０から数個の塩基を表し、Ｎ^２、Ｎ^３、Ｎ^４及びＮ^５は、独立して任意の一個の塩基を表す。本明細書において「塩基」とは、核酸を構成するアデニン（Ａ）、グアニン（Ｇ）、シトシン（Ｃ）、ウラシル（Ｕ）又はチミン（Ｔ）のいずれかを意味する。
Ｎ^１の塩基数は、式（１）で表わされるヌクレオチド配列を含むアプタマーがＦＧＦ２に結合する限り特に限定されないが、例えば、０〜約１０個、０〜９個、０〜８個、０〜７個、０〜６個、０〜５個、０〜４個、０〜３個、０〜２個などであってよく、好ましくは０〜２個であり得る。
Ｎ^６の塩基数についてもＮ^１と同様に特に限定されないが、例えば、０〜約１０個、０〜９個、０〜８個、０〜７個、０〜６個、０〜５個、０〜４個、０〜３個などであってよく、好ましくは０〜１０個、３〜９個、又は５〜８個である。

好ましい実施態様において、上記式（１）中、
Ｎ^１は、Ｇ、ＧＧ、ＡＧ、Ｃ又はギャップであり、
Ｎ^２は、Ａ又はＵであり、
Ｎ^３は、Ｇ、Ｃ又はＡであり、
Ｎ^４は、Ｇ、Ｃ又はＵであり、
Ｎ^５は、Ｇ又はＵであり、
Ｎ^６は、ＵＵＣＮ^６１又はＡＧＵＣＮ^６２（式中、Ｎ^６１及びＮ^６２は、それぞれ独立して任意の０から数個の塩基である）である。ここで、Ｎ^１が「ギャップ」であるとは、式（１）中にＮ^１が存在しないこと、すなわちＮ^１が０個の塩基であることを意味する。
Ｎ^６１の塩基数は特に限定されないが、例えば、０〜約１０個、０〜７個、０〜６個、０〜５個、０〜４個などであってよく、好ましくは０〜５個、１〜５個、又は２〜４個であり得る。
Ｎ^６２の塩基数についても特に限定されないが、例えば、０〜約１０個、０〜７個、０〜５個、０〜４個、０〜３個などであってよく、好ましくは０〜５個、０〜４個、又は０〜３個であり得る。
別の好ましい実施態様において、上記式（１）中、
Ｎ^１は、Ｇ、ＧＧ、ＡＧ又はギャップであり、
Ｎ^２は、Ａ又はＵであり、
Ｎ^３は、Ｇ又はＡであり、
Ｎ^４は、Ｃ又はＵであり、
Ｎ^５は、Ｇ又はＵであり、
Ｎ^６は、ＵＵＣＮ^６１又はＡＧＵＣＮ^６２（式中、Ｎ^６１及びＮ^６２は上記と同義である）である。

好ましい実施態様において、本発明のアプタマーは、下式（２）又は（３）：
ＧＧＧＡＡＡＣＵＡＧＧＧＣＧＵＵＡＡＣＧＵＧＡＣＣＡＧＵＧＵＵＵＣＮ^６１（式２）
Ｎ^１ＧＧＡＵＡＣＵＡＧＧＧＣＡＵＵＡＡＵＧＵＵＡＣＣＡＧＵＧＵＡＧＵＣＮ^６２(式３)
（式中、Ｎ^１、Ｎ^６１及びＮ^６２は前記と同義である）
で表されるヌクレオチド配列を含み得る。

好ましい実施態様において、本発明のアプタマーは、配列番号１〜１２のいずれかで表わされるヌクレオチド配列を含む。以下に、配列番号１〜１２で表わされるヌクレオチド配列（但し、ウラシルはチミンであってもよい）を示す（以下、Ａ、Ｇ、Ｃ及びＵは、それぞれ、ヌクレオチドの塩基がアデニン、グアニン、シトシン及びウラシルであることを示す）：
配列番号１：
ＧＧＧＡＵＡＣＵＡＧＧＧＣＡＵＵＡＡＵＧＵＵＡＣＣＡＧＵＧＵＡＧＵＣＵＣＧＡ、
配列番号２：
ＧＧＧＡＡＡＣＵＡＧＧＧＣＧＵＵＡＡＣＧＵＧＡＣＣＡＧＵＧＵＵＵＣＵＣＧＡ、
配列番号３：
ＧＧＧＡＵＡＣＵＡＧＧＧＣＡＵＵＡＡＵＧＵＵＡＣＣＡＧＵＧＵＡＧＵＣＣＣ、
配列番号４：
ＧＧＡＵＡＣＵＡＧＧＧＣＡＵＵＡＡＵＧＵＵＡＣＣＡＧＵＧＵＡＧＵＣＣ、
配列番号５：
ＧＧＧＧＡＵＡＣＵＡＧＧＧＣＡＵＵＡＡＵＧＵＵＡＣＣＡＧＵＧＵＡＧＵＣＣＣＣ、
配列番号６：
ＡＧＧＧＡＵＡＣＵＡＧＧＧＣＡＵＵＡＡＵＧＵＵＡＣＣＡＧＵＧＵＡＧＵＣＣＣ、
配列番号７：
ＧＧＧＡＡＡＣＵＡＧＧＧＣＧＵＵＡＡＣＧＵＧＡＣＣＡＧＵＧＵＵＵＣＣＣ、
配列番号８：
ＣＧＧＡＵＡＣＵＡＧＧＧＣＡＵＵＡＡＵＧＵＵＡＣＣＡＧＵＧＵＡＧＵＣＣＧ、
配列番号９：
ＣＣＧＡＵＡＣＵＡＧＧＧＣＡＵＵＡＡＵＧＵＵＡＣＣＡＧＵＧＵＡＧＵＣＧＧ、
配列番号１０：
ＧＧＧＡＵＡＣＵＡＧＧＧＣＧＵＵＡＡＣＧＵＵＡＣＣＡＧＵＧＵＡＧＵＣＣＣ、
配列番号１１：
ＧＧＧＡＵＡＣＵＡＧＧＧＣＣＵＵＡＡＧＧＵＵＡＣＣＡＧＵＧＵＡＧＵＣＣＣ、
配列番号１２：
ＧＧＧＡＵＡＣＵＡＧＧＧＣＡＵＵＵ ＡＵＧＵＵＡＣＣＡＧＵＧＵＡＧＵＣＣＣ。
好ましい一実施態様において、本発明のアプタマーは、配列番号１、３、４、５、６、８、１０又は１１で表わされるヌクレオチド配列を含む。
別の好ましい実施態様において、本発明のアプタマーは、配列番号２又は７で表わされるヌクレオチド配列を含む。
さらに別の好ましい実施態様において、本発明のアプタマーは、配列番号１、３、４、５又は６で表わされるヌクレオチド配列を含む。

一実施態様において、本発明のアプタマーは、上記したいずれかのヌクレオチド配列において、依然としてＦＧＦ２に結合する限り１又は数個のヌクレオチドが置換、欠失、挿入又は付加されたヌクレオチド配列を含んでよく、
（ａ）該アプタマーに含まれるヌクレオチドにおいて、
（ｉ）各ピリミジンヌクレオチドのリボースの２’位がフッ素原子であり、
（ｉｉ）各プリンヌクレオチドのリボースの２’位がヒドロキシ基である、アプタマー；
（ｂ）該（ａ）のアプタマーにおいて、
（ｉ）各ピリミジンヌクレオチドのリボースの２’位のフッ素原子が、それぞれ独立して、無置換であるか、水素原子、ヒドロキシ基及びメトキシ基からなる群より選ばれる原子又は基で置換されており、
（ｉｉ）各プリンヌクレオチドのリボースの２’位のヒドロキシ基が、それぞれ独立して、無置換であるか、水素原子、メトキシ基及びフッ素原子からなる群より選ばれる原子又は基で置換されている、アプタマー
であってよい。ここで、上記置換、欠失、挿入又は付加されるヌクレオチド数は、置換、欠失、挿入又は付加後も依然としてＦＧＦ２に結合する限り特に限定されないが、例えば１〜約１０個、好ましくは１〜６個、より好ましくは１〜５個、さらに好ましくは１〜４個、さらに好ましくは１〜３個、最も好ましくは１個又は２個であり得る。ヌクレオチドが置換、欠失、挿入又は付加される部位も、置換、欠失、挿入又は付加後も依然としてＦＧＦ２に結合する限り特に限定されないが、上記式（１）、（２）及び（３）中、１種のヌクレオチドに特定されている部位においては、１〜３か所、好ましくは１又は２か所、より好ましくは１か所においてヌクレオチドが置換、欠失、挿入又は付加される。一方、式（１）、（２）及び（３）中、複数種のヌクレオチドをとり得る部位においては、より多くのヌクレオチド（例えば、１〜約１０個、好ましくは１〜６個、より好ましくは１〜５個、さらに好ましくは１〜４個）の置換、欠失、挿入又は付加も許容され得る。

本発明のアプタマーの長さは特に限定されず、通常、約１０〜約２００ヌクレオチドであり得るが、例えば、約２０ヌクレオチド以上（例、２５ヌクレオチド以上、３０ヌクレオチド以上、３１ヌクレオチド以上、３２ヌクレオチド以上、３３ヌクレオチド以上）であり、好ましくは２５ヌクレオチド以上であり、より好ましくは３０ヌクレオチド以上であり、さらに好ましくは３３ヌクレオチド以上であり得る。また、例えば、約１００ヌクレオチド以下、通常約８０ヌクレオチド以下、好ましくは約７０ヌクレオチド以下、より好ましくは約６０ヌクレオチド以下、さらに好ましくは約５０ヌクレオチド以下、さらに好ましくは約４５ヌクレオチド以下（例、４４ヌクレオチド以下、４３ヌクレオチド以下、４２ヌクレオチド以下、４１ヌクレオチド以下、４０ヌクレオチド以下）であり得る。総ヌクレオチド数が少なければ、化学合成及び大量生産がより容易であり、かつコスト面でのメリットも大きい。また、化学修飾も容易であり、生体内安定性も高く、毒性も低いと考えられる。
よって本発明のアプタマーの長さとしては、通常約１０〜約２００ヌクレオチドであり得、好ましくは２０〜８０ヌクレオチドであり、より好ましくは２５〜６０ヌクレオチドであり、さらに好ましくは２５〜５０ヌクレオチドであり、最も好ましくは３０〜４５ヌクレオチドである。

本発明のアプタマーはまた、上記式（１）で表わされるヌクレオチド配列を含むアプタマー（アプタマー（Ａ））の複数の連結物、上記式（１）で表わされるヌクレオチド配列において、１又は数個のヌクレオチドが置換、欠失、挿入又は付加されたヌクレオチド配列を含むアプタマー（アプタマー（Ｂ））の複数の連結物、並びに１又は複数のアプタマー（Ａ）と１又は複数のアプタマー（Ｂ）との連結物、からなる群より選ばれる連結物であり得る。これらの連結物も、ＦＧＦ２に結合し得る。
ここで連結はタンデム結合にて行われ得る。また、連結に際し、リンカーを利用してもよい。リンカーとしては、ヌクレオチド鎖（例、１〜約２０ヌクレオチド）、非ヌクレオチド鎖（例、−（ＣＨ_２）_ｎ−リンカー、−（ＣＨ_２ＣＨ_２Ｏ）_ｎ−リンカー、ヘキサエチレングリコールリンカー、ＴＥＧリンカー、ペプチドを含むリンカー、−Ｓ−Ｓ−結合を含むリンカー、−ＣＯＮＨ−結合を含むリンカー、−ＯＰＯ_３−結合を含むリンカー）が挙げられる。上記複数の連結物における複数とは、２以上であれば特に限定されないが、例えば２個、３個又は４個であり得る。

本発明のアプタマーに含まれる各ヌクレオチドはそれぞれ、同一又は異なって、リボース（例、ピリミジンヌクレオチドのリボース、プリンヌクレオチドのリボース）の２’位においてヒドロキシ基を含むヌクレオチド（即ち、天然のリボヌクレオチド）であるか、あるいはリボースの２’位において、ヒドロキシ基が、任意の原子又は基で置換（修飾）されているヌクレオチド（本発明において、「修飾ヌクレオチド」と記載する場合がある）であり得る。

このような任意の原子又は基としては、例えば、水素原子、フッ素原子又は−Ｏ−アルキル基（例、−Ｏ−Ｍｅ基）、−Ｏ−アシル基（例、−Ｏ−ＣＨＯ基）、アミノ基（例、−ＮＨ_２基）で置換されているヌクレオチドが挙げられる。本発明のアプタマーはまた、少なくとも１種（例、１、２、３又は４種）のヌクレオチドが、リボースの２’位において、ヒドロキシ基、又は上述した任意の原子又は基、例えば、水素原子、フッ素原子、ヒドロキシ基及び−Ｏ−Ｍｅ基からなる群より選ばれる少なくとも２種（例、２、３又は４種）の基を含む修飾ヌクレオチドであり得る。

本発明のアプタマーにおいてはまた、全てのピリミジンヌクレオチドが、リボースの２’位がフッ素原子であるヌクレオチドであるか、あるいは該フッ素原子が、同一又は異なって、無置換であるか、上述した任意の原子又は基、好ましくは、水素原子、ヒドロキシ基及びメトキシ基からなる群より選ばれる原子又は基で置換されているヌクレオチドであり得る。特に本発明のアプタマーの製造方法として、後述するＤｕｒａＳｃｒｉｂｅ^ＴＭ Ｔ７ Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ Ｋｉｔ（Ｅｐｉｃｅｎｔｒｅ社製）を用いた製造方法を適用した場合、全てのピリミジンヌクレオチドのリボース２’位がフルオロ化したアプタマーが得られる。フッ素原子がその他の上記原子又は基で置換されている本発明のアプタマーは、後述の方法で製造することができる。

本発明のアプタマーにおいてはまた、全てのプリンヌクレオチドが、リボースの２’位がヒドロキシ基であるヌクレオチドであるか、あるいは該ヒドロキシ基が、同一又は異なって、無置換であるか、上述した任意の原子又は基、好ましくは、水素原子、メトキシ基及びフッ素原子からなる群より選ばれる原子又は基で置換されるヌクレオチドであり得る。ヒドロキシ基がその他の上記原子又は基で置換されている本発明のアプタマーは、後述の方法で製造することができる。

本発明のアプタマーにおいてはまた、全てのピリミジンヌクレオチドが、リボースの２’位のフッ素原子が上述した任意の原子又は基、例えば、水素原子、ヒドロキシ基及び−Ｏ−Ｍｅ基からなる群より選ばれる同一の原子又は基で置換されているヌクレオチドであり得る。
本発明のアプタマーにおいてはまた、全てのプリンヌクレオチドが、リボースの２’位のヒドロキシ基が上述した任意の原子又は基、例えば、水素原子、フッ素原子及び−Ｏ−Ｍｅ基からなる群より選ばれる同一の原子又は基で置換されているヌクレオチドであり得る。

好ましい実施態様において、本発明のアプタマーに含まれる各ピリミジンヌクレオチドはいずれも、リボースの２’位においてフッ素原子を含むヌクレオチドであり、かつ各プリンヌクレオチドはいずれも、リボースの２’位においてヒドロキシ基を含むヌクレオチドである。別の実施態様において、上記各ピリミジンヌクレオチドのリボースの２’位のフッ素原子は、それぞれ独立して水素原子、ヒドロキシ基及びメトキシ基からなる群より選ばれる原子又は基で置換されていてもよく、かつ上記各プリンヌクレオチドのリボースの２’位のヒドロキシ基は、それぞれ独立して水素原子、メトキシ基及びフッ素原子からなる群より選ばれる原子又は基で置換されていてもよい。

尚、本明細書においては、アプタマーを構成するヌクレオチドをＲＮＡと仮定して（すなわち糖基をリボースと仮定して）、ヌクレオチド中の糖基への修飾の態様を説明するが、これは、アプタマーを構成するヌクレオチドからＤＮＡが除外されることを意味するものではなく、適宜ＤＮＡへの修飾として読み替えられる。例えば、アプタマーを構成するヌクレオチドがＤＮＡである場合、リボースの２’位のヒドロキシル基のＸへの置き換えは、デオキシリボースの２’位の水素原子のＸへの置き換えとして読み替えられる。
本発明のアプタマーにおいて、ウラシルをチミンに置換することによって、ＦＧＦ２に対する結合性、ＦＧＦ２とＦＧＦ受容体との結合阻害活性、アプタマーの安定性、薬物送達性、血液中での安定性等を高めることが可能である。

本発明のアプタマーにおいてはまた、ヌクレオチドにおけるリン酸ジエステル結合の１又は数個、例えば、１〜２個、１〜３個、１〜４個、１〜５個のヌクレオチドが任意の置換基で修飾もしくは置換されていてもよい。例えば、リン酸ジエステル結合がホスホロチオエート結合、ホスホロジチオエート結合、アルキルホスホネート結合、ホスホロアミデート結合等に置換されていてもよい。ここで、例えば「ヌクレオチドがホスホロチオエート結合に置換されている」とは、隣接するヌクレオチド間の結合部位にあるリン酸基が硫黄化されている、すなわち、ホスホジエステル結合がホスホロチオエート結合に改変されていることを示す。

本発明のアプタマーにおいてはまた、アプタマーを安定化し、その活性を向上させる目的で、１又は数個、例えば、１〜２個、１〜３個、１〜４個、１〜５個のヌクレオチドが架橋化核酸Ｂｒｉｄｇｅｄ Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ（ＢＮＡ）又はＬｏｃｋｅｄ Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ（ＬＮＡ）で置換されていてもよい。ここで、「架橋化核酸」とは、核酸の自由度を分子内架橋で拘束することにより、相補配列に対する結合親和性を高め、かつヌクレアーゼ耐性を獲得する構造を持つものをいい、例えば、２’，４’−ＢＮＡ（ＬＮＡ）、２’−Ｏ，４’−Ｃ−ｅｔｈｙｌｅｎｅ−ｂｒｉｄｇｅｄ Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄ（ＥＮＡ）などが挙げられるがこれらに限定されない。

本発明のアプタマーはＦＧＦ２に結合するアプタマーであり、さらに好ましくはＦＧＦ２に結合してＦＧＦ２とＦＧＦ受容体との結合を阻害することができるアプタマーである。ＦＧＦ２とＦＧＦ受容体との結合を本発明のアプタマーが阻害するか否かは、例えば実施例１等の表面プラズモン共鳴法を利用した試験により評価することができる。

本発明のアプタマーは、ＦＧＦ２に対する結合性、安定性、薬物送達性等を高めるため、各ヌクレオチドの糖残基（例、リボース）が修飾されたものであってもよい。糖残基において修飾される部位としては、例えば、糖残基の２’位、３’位及び／又は４’位の酸素原子を他の原子に置き換えたものなどが挙げられる。修飾の種類としては、例えば、フルオロ化、Ｏ−アルキル化（例、Ｏ−メチル化、Ｏ−エチル化）、Ｏ−アリル化、Ｓ−アルキル化（例、Ｓ−メチル化、Ｓ−エチル化）、Ｓ−アリル化、アミノ化（例、−ＮＨ_２）が挙げられる。他にも、４’位の酸素を硫黄に置き換えた４’−ＳＲＮＡ、２’位と４’位とをメチレンを介して架橋したＬＮＡ（Locked Nucleic Acid）、３’位の水酸基をアミノ基に置き換えた３’−Ｎ−ホスホロアミデート核酸などを例として挙げることができる。本発明のアプタマーは、その製造方法からピリミジンヌクレオチドのリボース２’位の酸素原子が一定の修飾をもって製造される場合があり、後述するＤｕｒａＳｃｒｉｂｅ^ＴＭ Ｔ７ Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ Ｋｉｔ（Ｅｐｉｃｅｎｔｒｅ社製）を用いた製造方法を適用した場合、好ましくは全てのピリミジンヌクレオチドのリボース２’位がフルオロ化したアプタマーが製造される。したがって、得られたアプタマーに対しその後このような糖残基の改変を加えることで、塩基配列は同じであるが活性が高められた様々なバリエーションのアプタマーを製造することが可能である。以上のことから、本発明のアプタマーは、好ましくは少なくとも一つのヌクレオチドの糖残基が修飾されたアプタマーであり得る。このような糖残基の改変は、自体公知の方法により行うことができる（例えば、Ｓｐｒｏａｔ ｅｔ ａｌ．，（１９９１），Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄ．Ｒｅｓ．１９，７３３−７３８；Ｃｏｔｔｏｎ ｅｔ ａｌ．，（１９９１），Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄ．Ｒｅｓ．１９，２６２９−２６３５；Ｈｏｂｂｓ ｅｔ ａｌ．，（１９７３），Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ １２，５１３８−５１４５参照）。具体的には、全てのピリミジンヌクレオチドのリボース２’位の水酸基がフルオロ基に置換されたアプタマーをベースに、リボース２’位における水酸基を、水素原子、ヒドロキシル基及びメトキシ基からなる群より選ばれる原子又は基で置換したアプタマーを製造することができる。

本発明のアプタマーはまた、ＦＧＦ２に対する結合性、安定性、薬物送達性等を高めるため、核酸塩基（例、プリン、ピリミジン）が改変（例、化学的置換）されたものであってもよい。このような改変としては、例えば、５位ピリミジン改変、６及び／又は８位プリン改変、環外アミンでの改変、４−チオウリジンでの置換、５−ブロモ又は５−ヨード−ウラシルでの置換が挙げられる。また、ヌクレアーゼ及び加水分解に対して耐性であるように、本発明のアプタマーに含まれるリン酸基が改変されていてもよい。例えば、Ｐ（Ｏ）Ｏ基が、Ｐ（Ｏ）Ｓ（チオエート）、Ｐ（Ｓ）Ｓ（ジチオエート）、Ｐ（Ｏ）Ｎ（Ｒ）Ｒ’（アミデート）、Ｐ（Ｏ）Ｒ、Ｐ（Ｏ）ＯＲ、ＣＯ又はＣＨ_２（ホルムアセタール）又は３’−アミン（−ＮＨ−ＣＨ_２−ＣＨ_２−）で置換されていてもよい〔ここで各々のＲ又はＲ’は独立して、Ｈであるか、あるいは置換されているか、又は置換されていないアルキル（例、メチル、エチル）である〕。
連結基としては、−Ｏ−、−Ｎ−又は−Ｓ−が例示され、これらの連結基を通じて隣接するヌクレオチドに結合し得る。
改変はまた、キャッピングのような３’及び５’の改変を含んでもよい。

改変はさらに、ポリエチレングリコール、アミノ酸、ペプチド、ｉｎｖｅｒｔｅｄ ｄＴ、核酸、ヌクレオシド、Ｍｙｒｉｓｔｏｙｌ、Ｌｉｔｈｏｃｏｌｉｃ−ｏｌｅｙｌ、Ｄｏｃｏｓａｎｙｌ、Ｌａｕｒｏｙｌ、Ｓｔｅａｒｏｙｌ、Ｐａｌｍｉｔｏｙｌ、Ｏｌｅｏｙｌ、Ｌｉｎｏｌｅｏｙｌ、その他脂質、ステロイド、コレステロール、カフェイン、ビタミン、色素、蛍光物質、抗癌剤、毒素、酵素、放射性物質、ビオチンなどを末端に付加することにより行われ得る。このような改変については、例えば、米国特許第５，６６０，９８５号、同第５，７５６，７０３号を参照のこと。

特に、改変がＰＥＧの末端付加によって行われる場合、ＰＥＧの分子量は特に限定されないが、好ましくは１０００〜１０００００、より好ましくは３００００〜９００００である。ＰＥＧは、直鎖状であってもよいし、二つ以上の鎖に分岐したもの（マルチアームＰＥＧ）であってもよい。
このようなＰＥＧとしては特に限定されず、当業者であれば市販あるいは公知のＰＥＧを適宜選択して用いることができる（例えば、ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｐｅｇ−ｄｒｕｇ．ｃｏｍ／ｐｅｇ＿ｐｒｏｄｕｃｔ／ｂｒａｎｃｈｅｄ．ｈｔｍｌを参照のこと）が、本発明のアプタマーに適用するＰＥＧの好適例として具体的には、分子量４００００の２分岐ＧＳ型ＰＥＧ（ＳＵＮＢＲＩＧＨＴ ＧＬ２−４００ＧＳ 日油製）、分子量４００００の２分岐ＴＳ型ＰＥＧ（ＳＵＮＢＲＩＧＨＴ ＧＬ２−４００ＴＳ 日油製）、分子量４００００の４分岐ＴＳ型ＰＥＧ（ＳＵＮＢＲＩＧＨＴ ＧＬ４−４００ＴＳ 日油製）、分子量８００００の２分岐ＴＳ型ＰＥＧ（ＳＵＮＢＲＩＧＨＴ ＧＬ２−８００ＴＳ 日油製）、又は分子量８００００の４分岐ＴＳ型ＰＥＧ（ＳＵＮＢＲＩＧＨＴ ＧＬ４−８００ＴＳ 日油製）などが挙げられる。

この場合、本発明のアプタマーは、ＰＥＧが末端に直接付加されていてもよいが、その末端にＰＥＧと結合可能な基を有するリンカーなどが付加され、それを介してＰＥＧを本発明のアプタマーに付加することがより好ましい。

ＰＥＧと本発明のアプタマーのリンカーとしては特に限定されず、炭素鎖数や官能基などを結合部位やＰＥＧの種類などに応じて適宜選択することができる。このようなリンカーとしては、例えばアミノ基を有するリンカーが挙げられ、具体的には、５’末端に付加する場合は、ｓｓＨ Ｌｉｎｋｅｒ（ＳＡＦＣ）又はＤＭＳ（Ｏ）ＭＴ−ＡＭＩＮＯ−ＭＯＤＩＦＩＥＲ（ＧＬＥＮＲＥＳＥＡＲＣＨ）が、３’末端に付加する場合は、ＴＦＡ Ａｍｉｎｏ Ｃ−６ ｌｃａａ ＣＰＧ（ＣｈｅｍＧｅｎｅｓ）などが例示される。このリンカーを選択した場合、ＰＥＧには、例えばＮ−ｈｙｄｒｏｘｙｓｕｃｃｉｎｉｍｉｄｅの活性基を付加した上で、これをリンカー側のアミノ基と反応させることで、本発明のアプタマーとＰＥＧとをリンカーを介して結合することができる。

なおＰＥＧやリンカーとしては、市販のものを好ましく用いることができる。またＰＥＧ、リンカー及び本発明のアプタマーの結合に関する反応条件などは、当業者であれば適宜設定することが可能である。

本発明のアプタマーは、本明細書中の開示及び当該技術分野における自体公知の方法により化学合成することができる。アプタマーは、リン酸基の負電荷を利用したイオン結合、リボースを利用した疎水結合及び水素結合、核酸塩基を利用した水素結合やスタッキング結合など多様な結合様式により標的物質と結合する。特に、構成ヌクレオチドの数だけ存在するリン酸基の負電荷を利用したイオン結合は強く、タンパク質の表面に存在するリジンやアルギニンの正電荷と結合する。このため、標的物質との直接的な結合に関わっていない核酸塩基は置換することができる。特に、ステム構造の部分は既に塩基対が作られており、また、二重らせん構造の内側を向いているので、核酸塩基は、標的物質と直接結合し難い。従って、塩基対を他の塩基対に置換してもアプタマーの活性は減少しない場合が多い。ループ構造など塩基対を作っていない構造においても、核酸塩基が標的分子との直接的な結合に関与していない場合に、塩基の置換が可能である。リボースの２’位の修飾に関しては、まれにリボースの２’位の官能基が標的分子と直接的に相互作用していることがあるが、多くの場合無関係であり、他の修飾分子に置換可能である。このようにアプタマーは、標的分子との直接的な結合に関与している官能基を置換又は削除しない限り、その活性を保持していることが多い。また、全体の立体構造が大きく変わらないことも重要である。

アプタマーは、ＳＥＬＥＸ法及びその改良法（例えば、Ｅｌｌｉｎｇｔｏｎ ｅｔ ａｌ．，（１９９０），Ｎａｔｕｒｅ，３４６，８１８−８２２；Ｔｕｅｒｋ ｅｔ ａｌ．，（１９９０），Ｓｃｉｅｎｃｅ，２４９，５０５−５１０）を利用することで作製することができる。ＳＥＬＥＸ法ではラウンド数を増やしたり、競合物質を使用したりすることで、標的物質に対してより結合力の強いアプタマーが濃縮され、選別されてくる。よって、ＳＥＬＥＸのラウンド数を調節したり、及び／又は競合状態を変化させたりすることで、結合力が異なるアプタマー、結合形態が異なるアプタマー、結合力や結合形態は同じであるが塩基配列が異なるアプタマーを得ることができる場合がある。また、ＳＥＬＥＸ法にはＰＣＲによる増幅過程が含まれるが、その過程でマンガンイオンを使用するなどして変異を入れることで、より多様性に富んだＳＥＬＥＸを行うことが可能となる。

ＳＥＬＥＸで得られるアプタマーは標的物質に対して親和性が高い核酸であり、そのことは標的物質の活性部位に結合することを意味しない。従って、ＳＥＬＥＸで得られるアプタマーは必ずしも標的物質の機能に作用するとは限らない。ＦＧＦ２は塩基性タンパク質であり、核酸が非特異的に結合しやすいと考えられる。活性部位に結合しないアプタマーはその標的物質の活性に影響を及ぼさない。実際、コントロールで用いたＲＮＡはＦＧＦ２とＦＧＦ２受容体の結合を阻害しなかった。

このようにして選ばれた活性のあるアプタマーは、最適化ＳＥＬＥＸを行うことで、更に高性能化することが可能である。最適化ＳＥＬＥＸとは、ある配列が決まっているアプタマーの一部をランダム配列にしたテンプレートや１０〜３０％程度のランダム配列をドープしたテンプレートを作製して、再度ＳＥＬＥＸを行うものである。

ＳＥＬＥＸで得られるアプタマーは８０ヌクレオチド程度の長さがあり、これをそのまま医薬にすることは難しい。そこで、試行錯誤を繰り返し、容易に化学合成ができる長さ（例えば、化学合成ができるのは約６０ヌクレオチド以下であり、より好ましくは約５０ヌクレオチド程度以下、さらに好ましくは４５ヌクレオチド以下）まで短くすることが好ましい。
ＳＥＬＥＸで得られるアプタマーはそのプライマー設計に依存して、その後の最小化作業のしやすさが変わる。うまくプライマーを設計しないと、ＳＥＬＥＸによって活性のあるアプタマーが選別できたとしても、その後の開発が不可能となる。

アプタマーは化学合成が可能であるので改変が容易である。アプタマーはＭＦＯＬＤプログラムを用いて二次構造を予測したり、Ｘ線解析やＮＭＲ解析によって立体構造を予測したりすることで、どのヌクレオチドを置換又は欠損することが可能か、また、どこに新たなヌクレオチドを挿入可能かある程度予測することができる。予測された新しい配列のアプタマーは容易に化学合成することができ、そのアプタマーが活性を保持しているかどうかを既存のアッセイ系により確認することができる。

得られたアプタマーの標的物質との結合に重要な部分が、上記のような試行錯誤を繰り返すことにより特定できた場合、その配列の両端に新しい配列を付加しても、多くの場合活性は変化しない。そして、新しい配列の長さは特に限定されるものではない。

さらに、既に述べたように、修飾に関しても配列と同様に高度に設計又は改変可能である。

以上のように、アプタマーは高度に設計又は改変可能である。本発明はまた、所定の配列（例、ステム部分、インターナルループ部分、ヘアピンループ部分及び一本鎖部分から選ばれる部分に対応する配列：以下、必要に応じて固定配列と省略する）を含むアプタマーを高度に設計又は改変可能である、アプタマーの製造方法を提供する。

例えば、このようなアプタマーの製造方法は、下記：

〔上記において、（Ｎ）ａはａ個のＮからなるヌクレオチド鎖を示し、（Ｎ）ｂは、ｂ個のＮからなるヌクレオチド鎖を示し、Ｎはそれぞれ、同一又は異なって、Ａ、Ｇ、Ｃ、Ｕ及びＴ（好ましくは、Ａ、Ｇ、Ｃ及びＵ）からなる群より選ばれるヌクレオチドである。ａ、ｂはそれぞれ、同一又は異なって、任意の数であり得るが、例えば１〜約１００、好ましくは１〜約５０、より好ましくは１〜約３０、さらにより好ましくは１〜約２０又は１〜約１０であり得る〕で表されるヌクレオチド配列からなる単一種の核酸分子又は複数種の核酸分子（例、ａ、ｂの数等が異なる核酸分子のライブラリー）、及びプライマー用配列（ｉ）、（ｉｉ）にそれぞれ対応するプライマー対を用いて、固定配列を含むアプタマーを製造することを含む。

本発明のアプタマーとして好ましくは、以下（ａ’）、（ｂ’）又は（ｃ’）のいずれかである、ＦＧＦ２に結合し、ＦＧＦ２とＦＧＦ受容体との結合を阻害するアプタマー：（ａ’）配列番号１〜７のいずれか（或いは、配列番号２もしくは７、又は、配列番号１及び３〜６のいずれか）で表わされるヌクレオチド配列（但し、ウラシルはチミンであってもよい）を含むアプタマーであって、該アプタマーに含まれるヌクレオチドにおいて、
（ｉ）各ピリミジンヌクレオチドのリボースの２’位がフッ素原子であり、
（ｉｉ）各プリンヌクレオチドのリボースの２’位がヒドロキシ基である、アプタマー；（ｂ’）配列番号１〜７のいずれか（あるいは、配列番号２もしくは７、又は配列番号１及び３〜６のいずれか）で表わされるヌクレオチド配列（但し、ウラシルはチミンであってもよい）において、１〜５個（あるいは、１〜４個、又は１〜３個）のヌクレオチドが置換、欠失、挿入又は付加されたヌクレオチド配列を含むアプタマーであって、該アプタマーに含まれるヌクレオチドにおいて、
（ｉ）各ピリミジンヌクレオチドのリボースの２’位フッ素原子であり、
（ｉｉ）各プリンヌクレオチドのリボースの２’位がヒドロキシ基である、アプタマー；又は
（ｃ’）該（ａ’）又は（ｂ’）のアプタマーにおいて、
（ｉ）各ピリミジンヌクレオチドのリボースの２’位のフッ素原子が、それぞれ独立して、無置換であるか、水素原子、ヒドロキシ基及びメトキシ基からなる群より選ばれる原子又は基で置換されており、
（ｉｉ）各プリンヌクレオチドのリボースの２’位のヒドロキシ基が、それぞれ独立して、無置換であるか、水素原子、メトキシ基及びフッ素原子からなる群より選ばれる原子又は基で置換されている、アプタマー、
であり、さらに好ましくは、上記アプタマーのうちヌクレオチド長が３０〜４５ヌクレオチドであるアプタマーである。

本発明はまた、本発明のアプタマー及びそれに結合した機能性物質を含む複合体を提供する。本発明の複合体におけるアプタマーと機能性物質との間の結合は、共有結合、又は非共有結合であり得る。本発明の複合体は、本発明のアプタマーと１以上（例、２又は３個）の同種又は異種の機能性物質とが結合したものであり得る。機能性物質は、本発明のアプタマーに何らかの機能を新たに付加するもの、あるいは本発明のアプタマーが保持し得る何らかの特性を変化（例、向上）させ得るものである限り特に限定されない。機能性物質としては、例えば、タンパク質、ペプチド、アミノ酸、脂質、糖質、単糖、ポリヌクレオチド、ヌクレオチドが挙げられる。機能性物質としてはまた、例えば、親和性物質（例、ビオチン、ストレプトアビジン、標的相補配列に対して親和性を有するポリヌクレオチド、抗体、グルタチオンセファロース、ヒスチジン）、標識用物質（例、蛍光物質、発光物質、放射性同位体）、酵素（例、西洋ワサビペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ）、薬物送達媒体（例、リポソーム、ミクロスフェア、ペプチド、ポリエチレングリコール類）、薬物（例、カリケアマイシンやデュオカルマイシンなどミサイル療法に使用されているもの、シクロフォスファミド、メルファラン、イホスファミド又はトロホスファミドなどのナイトロジェンマスタード類似体、チオテパなどのエチレンイミン類、カルムスチンなどのニトロソ尿素、テモゾロミド又はダカルバジンなどのアルキル化剤、メトトレキセート又はラルチトレキセドなどの葉酸類似代謝拮抗剤、チオグアニン、クラドリビン又はフルダラビンなどのプリン類似体、フルオロウラシル、テガフール又はゲムシタビンなどのピリミジン類似体、ビンブラスチン、ビンクリスチン又はビンオレルビンなどのビンカアルカロイド及びその類似体、エトポシド、タキサン、ドセタキセル又はパクリタキセルなどのポドフィロトキシン誘導体、ドキソルビシン、エピルビシン、イダルビシン及びミトキサントロンなどのアントラサイクリン類及び類似体、ブレオマイシン及びミトマイシンなどの他の細胞毒性抗生物質、シスプラチン、カルボプラチン及びオキザリプラチンなどの白金化合物、ペントスタチン、ミルテフォシン、エストラムスチン、トポテカン、イリノテカン及びビカルタミド）、毒素（例、リシン毒素、リア毒素及びベロ毒素）が挙げられる。これらの機能性分子は最終的に取り除かれる場合がある。更に、トロンビンやマトリックスメタロプロテアーゼ（ＭＭＰ）、ＦａｃｔｏｒＸなどの酵素が認識して切断することができるペプチド、ヌクレアーゼや制限酵素が切断できるポリヌクレオチドであってもよい。

本発明のアプタマー又は複合体は、例えば、医薬又は診断薬、検査薬、試薬として使用され得る。特に、加齢黄斑変性症などの血管新生を伴う疾患、骨粗鬆症、関節リウマチ、変形性関節症、骨折などの骨・軟骨疾患、疼痛の治療用又は予防用の医薬、あるいは診断薬、検査薬、試薬として有用である。

本発明の医薬は、医薬上許容される担体が配合されたものであり得る。医薬上許容される担体としては、例えば、ショ糖、デンプン、マンニット、ソルビット、乳糖、グルコース、セルロース、タルク、リン酸カルシウム、炭酸カルシウム等の賦形剤、セルロース、メチルセルロース、ヒドロキシプロピルセルロース、ポリプロピルピロリドン、ゼラチン、アラビアゴム、ポリエチレングリコール、ショ糖、デンプン等の結合剤、デンプン、カルボキシメチルセルロース、ヒドロキシプロピルスターチ、ナトリウム−グリコール−スターチ、炭酸水素ナトリウム、リン酸カルシウム、クエン酸カルシウム等の崩壊剤、ステアリン酸マグネシウム、エアロジル、タルク、ラウリル硫酸ナトリウム等の滑剤、クエン酸、メントール、グリシルリシン・アンモニウム塩、グリシン、オレンジ粉等の芳香剤、安息香酸ナトリウム、亜硫酸水素ナトリウム、メチルパラベン、プロピルパラベン等の保存剤、クエン酸、クエン酸ナトリウム、酢酸等の安定剤、メチルセルロース、ポリビニルピロリドン、ステアリン酸アルミニウム等の懸濁剤、界面活性剤等の分散剤、水、生理食塩水、オレンジジュース等の希釈剤、カカオ脂、ポリエチレングリコール、白灯油等のベースワックスなどが挙げられるが、それらに限定されるものではない。

経口投与に好適な製剤は、水、生理食塩水、オレンジジュースのような希釈液に有効量のリガンドを溶解させた液剤、有効量のリガンドを固体や顆粒として含んでいるカプセル剤、サッシェ剤又は錠剤、適当な分散媒中に有効量の有効成分を懸濁させた懸濁液剤、有効量の有効成分を溶解させた溶液を適当な分散媒中に分散させ乳化させた乳剤等である。

また、本発明の医薬は必要により、味のマスキング、腸溶性あるいは持続性などの目的のため、自体公知の方法でコーティングすることができる。コーティングに用いられるコーティング剤としては、例えば、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、エチルセルロース、ヒドロキシメチルセルロース、ヒドロキシプロピルセルロース、ポリオキシエチレングリコール、ツイーン８０、プルロニックＦ６８、セルロースアセテートフタレート、ヒドロキシプロピルメチルセルロースフタレート、ヒドロキシメチルセルロースアセテートサクシネート、オイドラギット（ローム社製、ドイツ，メタアクリル酸・アクリル酸共重合体）及び色素（例、ベンガラ、二酸化チタンなど）などが用いられる。当該医薬は、速放性製剤、徐放性製剤のいずれであってもよい。徐放性製剤の基材としては、例えば、リポソーム、アテロコラーゲン、ゼラチン、ヒドロキシアパタイト、ＰＬＧＡなどが挙げられる。

非経口的な投与（例えば、静脈内投与、皮下投与、筋肉内投与、局所投与、腹腔内投与、経鼻投与、経肺投与など）に好適な製剤としては、水性及び非水性の等張な無菌の注射液剤があり、これには抗酸化剤、緩衝液、制菌剤、等張化剤等が含まれていてもよい。また、水性及び非水性の無菌の懸濁液剤が挙げられ、これには懸濁剤、可溶化剤、増粘剤、安定化剤、防腐剤等が含まれていてもよい。当該製剤は、アンプルやバイアルのように単位投与量あるいは複数回投与量ずつ容器に封入することができる。また、有効成分及び医薬上許容される担体を凍結乾燥し、使用直前に適当な無菌の溶媒に溶解又は懸濁すればよい状態で保存することもできる。更に注射液剤以外にも、吸入剤、軟膏剤も可能である。吸入剤の場合、凍結乾燥状態の有効成分を微細化し適当な吸入デバイスを用いて吸入投与する。吸入剤には、更に必要に応じて従来使用されている界面活性剤、油、調味料、シクロデキストリン又はその誘導体等を適宜配合することができる。

ここで界面活性剤としては、例えばオレイン酸、レシチン、ジエチレングリコールジオレエート、テトラヒドロフルフリルオレエート、エチルオレエート、イソプロピルミリステート、グリセリルトリオレエート、グリセリルモノラウレート、グリセリルモノオレエート、グリセリルモノステアレート、グリセリルモノリシノエート、セチルアルコール、ステアリルアルコール、ポリエチレングリコール４００、セチルピリジニウムクロリド、ソルビタントリオレエート（商品名Ｓｐａｎ（スパン）８５）、ソルビタンモノオレエート（商品名Ｓｐａｎ（スパン）８０）、ソルビタンモノラウエート（商品名Ｓｐａｎ（スパン）２０）、ポリオキシエチレン硬化ヒマシ油（商品名ＨＣＯ−６０）、ポリオキシエチレン（２０）ソルビタンモノラウレート（商品名Ｔｗｅｅｎ（ツイーン）２０）、ポリオキシエチレン（２０）ソルビタンモノオレエート（商品名Ｔｗｅｅｎ（ツイーン）８０）、天然資源由来のレシチン（商品名Ｅｐｉｃｌｏｎ（エピクロン））、オレイルポリオキシエチレン（２）エーテル（商品名Ｂｒｉｊ（ブリジ）９２）、ステアリルポリオキシエチレン（２）エーテル（商品名Ｂｒｉｊ（ブリジ）７２）、ラウリルポリオキシエチレン（４）エーテル（商品名Ｂｒｉｊ（ブリジ）３０）、オレイルポリオキシエチレン（２）エーテル（商品名Ｇｅｎａｐｏｌ（ゲナポル）０−０２０）、オキシエチレンとオキシプロピレンとのブロック共重合体（商品名Ｓｙｎｐｅｒｏｎｉｃ（シンペロニック））等が挙げられる。Ｓｐａｎ（スパン）、Ｔｗｅｅｎ（ツイーン）、Ｅｐｉｃｌｏｎ（エピクロン）、Ｂｒｉｊ（ブリジ）、Ｇｅｎａｐｏｌ（ゲナポル）及びＳｙｎｐｅｒｏｎｉｃ（シンペロニック）は商標である。
油としては、例えばトウモロコシ油、オリーブ油、綿実油、ヒマワリ油等が挙げられる。また、軟膏剤の場合、適当な医薬上許容される基剤（黄色ワセリン、白色ワセリン、パラフィン、プラスチベース、シリコーン、白色軟膏、ミツロウ、豚油、植物油、親水軟膏、親水ワセリン、精製ラノリン、加水ラノリン、吸水軟膏、親水プラスチベース、マクロゴール軟膏等）を用い、有効成分と混合し製剤化し使用する。

吸入剤は常法に従って製造することができる。すなわち、上記本発明のアプタマー又は複合体を粉末又は液状にして、吸入噴射剤及び／又は担体中に配合し、適当な吸入容器に充填することにより製造することができる。また上記本発明のアプタマー又は複合体が粉末の場合は通常の機械的粉末吸入器を、液状の場合はネブライザー等の吸入器をそれぞれ使用することもできる。ここで噴射剤としては従来公知のものを広く使用でき、フロン−１１、フロン−１２、フロン−２１、フロン−２２、フロン−１１３、フロン−１１４、フロン−１２３、フロン−１４２ｃ、フロン−１３４ａ、フロン−２２７、フロン−Ｃ３１８、１，１，１，２−テトラフルオロエタン等のフロン系化合物、プロパン、イソブタン、ｎ−ブタン等の炭化水素類、ジエチルエーテル等のエーテル類、窒素ガス、炭酸ガス等の圧縮ガス等を例示できる。

本発明の医薬を上記疾患の予防及び治療用医薬として用いる場合、本発明の医薬は病変部位に直接投与するだけでなく、上記した他の方法によっても投与することができる。
本発明のアプタマーは１本鎖の核酸であるため、相補配列を含むヌクレオチドの投与による解毒も可能であり、投与後の動態制御が困難な中和抗体より安全性の高い医薬品となる可能性が高い。これは、抗体医薬治療などで起こりうる、体内における抗体の長い滞留時間に起因する感染症の問題を鑑みても極めて有利な点と言える。特に本発明の医薬を上記疾患の予防又は治療用医薬として用いる場合、疾患の重篤性と副作用のリスクとを考えると、体内動態を制御しやすいアプタマーを利用する方がより高い安全性を有する医薬を得られることは明白である。

本発明の医薬の投与量は、有効成分の種類・活性、病気の重篤度、投与対象となる動物種、投与対象の薬物受容性、体重、年齢等によって異なるが、通常、成人１日あたり有効成分量として約０．０００１〜約１００ｍｇ／ｋｇ、例えば約０．０００１〜約１０ｍｇ／ｋｇ、好ましくは約０．００５〜約１ｍｇ／ｋｇであり得る。

また本発明のアプタマー又は複合体は、薬物送達剤、インビボイメージング用プローブ、ＦＧＦ２の血中濃度測定用プローブ、組織染色用プローブ、ＥＬＩＳＡ用プローブ、ＦＧＦ２の分離精製用リガンドとしても使用され得る。

本発明はまた、本発明のアプタマー又は複合体が固定化された固相担体を提供する。固相担体としては、例えば、基板、樹脂、プレート（例、マルチウェルプレート）、フィルター、カートリッジ、カラム、多孔質材が挙げられる。基板は、ＤＮＡチップやプロテインチップなどに使われているものなどであり得、例えば、ニッケル−ＰＴＦＥ（ポリテトラフルオロエチレン）基板やガラス基板、アパタイト基板、シリコーン基板、アルミナ基板などで、これらの基板にポリマーなどのコーティングを施したものが挙げられる。樹脂としては、例えば、アガロース粒子、シリカ粒子、アクリルアミドとＮ，Ｎ’−メチレンビスアクリルアミドの共重合体、ポリスチレン架橋ジビニルベンゼン粒子、デキストランをエピクロロヒドリンで架橋した粒子、セルロースファイバー、アリルデキストランとＮ，Ｎ’−メチレンビスアクリルアミドの架橋ポリマー、単分散系合成ポリマー、単分散系親水性ポリマー、セファロース、トヨパールなどが挙げられ、また、これらの樹脂に各種官能基を結合させた樹脂も含まれる。本発明の固相担体は、例えば、ＦＧＦ２の精製、及びＦＧＦ２の検出、定量に有用であり得る。

本発明のアプタマー又は複合体は、自体公知の方法により固相担体に固定できる。例えば、親和性物質（例、上述したもの）や所定の官能基を本発明のアプタマー又は複合体に導入し、次いで当該親和性物質や所定の官能基を利用して固相担体に固定化する方法が挙げられる。本発明はまた、本発明のアプタマー又は複合体を固相担体に固定する方法、及びそうして得られる固相担体を提供する。所定の官能基は、カップリング反応に供することが可能な官能基であり得、例えば、アミノ基、チオール基、ヒドロキシ基、カルボキシル基が挙げられる。本発明はまた、このような官能基が導入されたアプタマーを提供する。

本発明はまた、ＦＧＦ２の精製及び濃縮方法を提供する。特に本発明の精製方法はＦＧＦ２を他のＦＧＦファミリータンパク質から分離することが可能である。本発明の精製及び濃縮方法は、本発明の固相担体にＦＧＦ２を吸着させ、吸着したＦＧＦ２を溶出液により溶出させることを含み得る。本発明の固相担体へのＦＧＦ２の吸着は自体公知の方法により行うことができる。例えば、ＦＧＦ２を含有する試料（例、細菌又は細胞の培養物又は培養上清、血液）を、本発明の固相担体又はその含有物に導入する。ＦＧＦ２の溶出は、中性溶液等の溶出液を用いて行うことができる。中性溶出液は特に限定されるものではないが、例えばｐＨ約６〜約９、好ましくは約６．５〜約８．５、より好ましくは約７〜約８であり得る。中性溶液はまた、例えば、カリウム塩（例、ＫＣｌ）、マグネシウム塩（例、ＭｇＣｌ_２）、界面活性剤（例、Ｔｗｅｅｎ（ツイーン）２０、Ｔｒｉｔｏｎ、ＮＰ４０）、グリセリンを含むものであり得る。
本発明の精製及び濃縮方法はさらに、ＦＧＦ２の吸着後、洗浄液を用いて当該固相担体を洗浄することを含み得る。洗浄液としては、例えば、尿素、キレート剤（例、ＥＤＴＡ）、Ｔｒｉｓ、酸、アルカリ、Ｔｒａｎｓｆｅｒ ＲＮＡ、ＤＮＡ、Ｔｗｅｅｎ（ツイーン）２０などの表面活性剤、ＮａＣｌなどの塩を含むものなどが挙げられる。本発明の精製及び濃縮方法はさらに、当該固相担体を加熱処理することを含み得る。かかる工程により、当該固相担体の再生、滅菌が可能である。

本発明のアプタマー又は複合体は、検出用プローブ、特にＦＧＦ２の検出用プローブとして利用することができる。アプタマーの標識方法としては特に限定されず、自体公知の方法が適用可能である。このような方法としては、例えば放射性同位元素による標識、蛍光色素や蛍光蛋白質による標識などが挙げられる。

本発明はまた、ＦＧＦ２の検出及び定量方法を提供する。特に本発明はＦＧＦ２を他のＦＧＦファミリータンパク質と区別して検出及び定量することができる。本発明の検出及び定量方法は、本発明のアプタマーを利用して（例、本発明の複合体及び固相担体の使用により）ＦＧＦ２を測定することを含み得る。ＦＧＦ２の検出及び定量方法は、抗体の代わりに本発明のアプタマーを用いること以外は、免疫学的方法と同様の方法により行われ得る。従って、抗体の代わりに本発明のアプタマーを用いることにより、酵素免疫測定法（ＥＩＡ）（例、直接競合ＥＬＩＳＡ、間接競合ＥＬＩＳＡ、サンドイッチＥＬＩＳＡ）、放射免疫測定法（ＲＩＡ）、蛍光免疫測定法（ＦＩＡ）、ウエスタンブロット法、免疫組織化学的染色法、セルソーティング法等の方法と同様の方法により、検出及び定量を行うことができる。このような方法は、例えば、生体又は生物学的サンプルにおけるＦＧＦ２量の測定、ＦＧＦ２が関連する疾患の診断に有用であり得る。

本明細書中で挙げられた特許及び特許出願明細書を含む全ての刊行物に記載された内容は、本明細書での引用により、その全てが明示されたと同程度に本明細書に組み込まれるものである。

以下は、本発明の実施のための特定の実施形態の例である。実施例は、説明のみを目的として提供し、本発明の範囲を制限することを決して意図しない。

実施例１：ＦＧＦ２に特異的に結合するＲＮＡアプタマーの作製
従来のＳＥＬＥＸ法では約３０ｍｅｒ〜４０ｍｅｒのランダム配列の両末端に２０ｍｅｒ前後のプライマーを付けたライブラリーが使用された。その場合、取得されるアプタマーの全長は約８０〜１００ｍｅｒであり、その後短鎖化の作業が必要であった。しかし、短鎖化は必ずしも簡単ではなく、活性が大きく低下してしまうことがしばしばであった。そこで、ＮＯＸＸＯＮ社によって開発されたＴａｉｌｏｒｅｄ−ＳＥＬＥＸ法を参考にして（Ｖａｔｅｒ ｅｔ ａｌ．Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ． ３１， ２００３，ｅｌ３０； Ｊａｒｏｓｃｈ ｅｔ ａｌ． Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ． ３４， ２００６， ｅ８６）、プライマー配列が入らない３０ｍｅｒ程度の長さのＲＮＡプールを用いたＳＥＬＥＸを実施した。
使用したＤＮＡ鋳型とプライマー配列は以下の通りである。
ＤＮＡ鋳型：
５’−ＴＣＧＡＧ−３０Ｎ−ＴＣＣＣＴＡＴＡＧＴＧＡＧＴＣＧＴＡＴＴＡＧＣＡＧＣＴＣＣＡＣＡＧＧＣＴＴ−３’（配列番号１３）
Ｆｏｒｗａｒｄ ｌｉｇａｔｅ：
５’−ＵＡＡＵＡＣＧＡＣＵＣＡＣＵＡＵＡ−３’（配列番号１４）
Ｆｏｒｗａｒｄ ｐｒｉｍｅｒ：
５’−ＡＡＧＣＣＴＧＴＧＧＡＧＣＴＧＣＴＡＡＴＡＣＧＡＣＴＣＡＣＴＡＴＡＧＧＧＡ−３’（配列番号１５）
Ｆｏｒｗａｒｄ ｂｒｉｄｇｅ：
５’−ＴＣＣＣＴＡＴＡＧＴＧＡＧＴＣＧＴＡＴＴＡ−ＮＨ２−３’（配列番号１６）
Ｒｅｖｅｒｓｅ ｂｒｉｄｇｅ：
５’−ＴＣＴＴＧＴＴＣＡＧＣＴＴＡＧＴＴＣＴＣＴＣＧＡＧ−３’（配列番号１７）
Ｒｅｖｅｒｓｅ ｌｉｇａｔｅ：
５’−ｐ−ＧＡＧＡＡＣＴＡＡＧＣＴＧＡＡＣＡＡＧＡ−ＮＨ２−３’（配列番号１８）

標的物質としてヒトＦＧＦ２（Ｐｅｐｒｏｔｅｃｈ社製）を用いた。ＦＧＦ２はアミノカップリングによってアガロース樹脂（ＮＨＳ−ａｃｔｉｖａｔｅｄ Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ，ＧＥヘルスケア社製）に固定化した。アミノカップリングはＧＥヘルスケア社の仕様書に沿って行った。固定化量は、固定化前のＦＧＦ２溶液と固定化直後の上清をＳＤＳ−ＰＡＧＥにより調べることで確認した。ＳＤＳ−ＰＡＧＥの結果、上清からはＦＧＦ２のバンドは検出されず、使用したＦＧＦ２のほぼ全てがカップリングされたことが確認された。約２９０ｐｍｏｌのＦＧＦ２が約５μＬの樹脂に固定化されたことになる。

最初のラウンドで用いたＲＮＡ（３０Ｎ−ＲＮＡ）は、化学合成によって得られたＤＮＡ鋳型をＦｏｒｗａｒｄ ｐｒｉｍｅｒを用いて２本鎖にし、ＤｕｒａＳｃｒｉｂｅ（商標）Ｔ７ Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ Ｋｉｔ（Ｅｐｉｃｅｎｔｒｅ社製）を用いて転写して得た。この方法によって得られたＲＮＡはピリミジンヌクレオチドのリボースの２’位がフルオロ化されたものである。２ラウンド以後はＤＮＡを２本鎖にした後、制限酵素で３’側のプライマー配列を切断してから転写した。

ＦＧＦ２が固定化された樹脂にＲＮＡプールを加え、１時間室温で保持した。その後、ＦＧＦ２に結合しないＲＮＡを取り除くために、溶液Ａで樹脂を洗浄した。ここで溶液Ａは１４５ｍＭ塩化ナトリウム、５．４ｍＭ塩化カリウム、１．８ｍＭ塩化カルシウム、０．８ｍＭ塩化マグネシウム、２０ｍＭトリス（ｐＨ７．６）、０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０の混合溶液である。ＦＧＦ２に結合したＲＮＡは、溶出液を加えて９５℃、１０分で回収した。溶出液として７Ｍ Ｕｒｅａ、３ｍＭ ＥＤＴＡと０．１Ｍ トリスを混合しｐＨ６．６に調製したものを用いた。回収されたＲＮＡはＲＴ−ＰＣＲで増幅し、ＤｕｒａＳｃｒｉｂｅ（商標）Ｔ７ Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ Ｋｉｔで転写して次のラウンドのプールとして用いた。以上を１ラウンドとし、同様の作業を７ラウンド行った。ＳＥＬＥＸ終了後、ＰＣＲ産物をｐＧＥＭ−Ｔ Ｅａｓｙベクター（Ｐｒｏｍｅｇａ社製）にクローニングし、大腸菌株ＤＨ５α（Ｔｏｙｏｂｏ社製）にトランスフォーメーションした。シングルコロニーからプラスミドを抽出後、ＤＮＡシーケンサー（３１３０ｘｌ Ｇｅｎｅｔｉｃ Ａｎａｌｙｚｅｒ、ＡＢＩ社製）で塩基配列を調べた。

ＳＥＬＥＸを７ラウンド行った後に配列を調べたところ、８９クローンの内、７９クローンは収束しており、１１種類に分類できた。残り１０クローンはシングル配列であった。

収束した配列のうち、配列番号１及び２で表わされる核酸のＦＧＦ２に対する結合活性を表面プラズモン共鳴法により評価した。以下に、配列番号１及び２で表されるヌクレオチド配列をリボースの２’位の修飾と共にアプタマーＩＤ１及び２として示す。各ヌクレオチドにおける括弧はリボースの２’位の修飾を示し、Ｆはフッ素原子を示す。具体的には、Ｃ（Ｆ）はリボースの２’位がフッ素原子で置換されたシチジンを示し、Ｕ（Ｆ）はリボースの２’位がフッ素原子で置換されたウリジンを示す。また各配列の先頭が５’末端であり、後尾が３’末端である。
アプタマーＩＤ１：
ＧＧＧＡＵ（Ｆ）ＡＣ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）ＡＧＧＧＣ（Ｆ）ＡＵ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）ＡＡＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）ＡＣ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）ＡＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）ＡＧＵ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）ＧＡ
アプタマーＩＤ２：
ＧＧＧＡＡＡＣ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）ＡＧＧＧＣ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）ＡＡＣ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）ＧＡＣ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）ＡＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）ＧＡ

測定にはＢＩＡｃｏｒｅ社製のＢＩＡｃｏｒｅ２０００を使用し、センサーチップとしてアミノ基と反応するＣＭ４を用いた。ヒトＦＧＦ２は固定化溶液（１０ｍＭ酢酸ナトリウム、ｐＨ６）に溶解し２５〜４０μｇ／ｍＬとした。タンパク質側のアミノ基とチップ側のカルボキシル基の反応にはＥｔｈｙｌ−３−ｃａｒｂｏｄｉｉｍｉｄｅ ｈｙｄｒｏｃｈｌｏｒｉｄｅとＮ−ｈｙｄｒｏｘｙｓｕｃｃｉｎｉｍｉｄｅを用いた。反応後、ｅｔｈａｎｏｌａｍｉｎｅ−ＨＣｌによるブロッキングを行った。ＦＧＦ２の固定化量は２５００〜４０００ＲＵとした。アナライト用のアプタマーは０．１５μＭ〜０．５μＭに調製した。ランニングバッファーには溶液Ａを用いた。再生用液として２Ｍ ＮａＣｌを用いた。ＦＧＦ２はフローセルＦ_Ｃ２に固定化し、Ｆ_Ｃ１の結果を引くことで最終的なセンサーグラムとした。

２配列の結合を測定したところ、顕著にＦＧＦ２に結合することが分かった。アプタマーＩＤ１及び２で表わされるアプタマーとヒトＦＧＦ２との結合の様子を示すセンサーグラムを図１に示す。以上より、これらの核酸はＦＧＦ２に結合するアプタマーであることが示された。

収束が見られた１１クローンの内１０クローンを選び、表面プラズモン共鳴法でＦＧＦ２とＦＧＦ受容体の結合を阻害するかどうかを調べた。測定にはＢＩＡｃｏｒｅ社製のＢＩＡｃｏｒｅ２０００を使用した。ＢＩＡｃｏｒｅ社のプロトコールに従って、ＣＭ５センサーチップにＰｒｏｔｅｉｎ Ａ（ＰＩＥＲＣＥ社製）を固定化した。そこに、ＩｇＧのＦｃ部分が融合したヒトＦＧＦＲ１α（ＩＩＩｃ）、Ｒ２α（ＩＩＩｃ）、Ｒ３（ＩＩＩｃ）、Ｒ４（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ社製）をそれぞれ約１，０００ＲＵ固定化した。アナライトとしてＦＧＦ２（０．１μＭ）、ヘパリン（０．１μＭ）（Ｐｆｉｚｅｒ社製）とアプタマー（０．１５μＭ）を混合したものを流した。阻害試験前にＦＧＦ２とヘパリンの混合体が４種類の受容体と結合することを確認した。試験の結果、アプタマーＩＤ１及び２で表わされるアプタマーは強い阻害活性を示した。アプタマーＩＤ１で表されるアプタマーがＦＧＦ２とＦＧＦＲ１α（ＩＩＩｃ）、２α（ＩＩＩｃ）、３（ＩＩＩｃ）、４の結合を阻害していることを示すセンサーグラムを図２に示す。

また、４種類の受容体に対してそれぞれの阻害率を求めた。阻害率はＦＧＦ２とヘパリン混合体の最大結合量を０、インジュクションバッファーのみの時の結合量を１００とした。ここでの結合量はセンサーグラムのピークトップのＲＵ値を意味する。阻害率を計算したところ、アプタマーＩＤ１及び２で表わされるアプタマーはいずれの受容体に対しても５０％以上の高い値であった。他のアプタマーの阻害率は５０％以下であった。表１にその結果を示す。

実施例２：配列番号１及び２で表わされるアプタマーの短鎖化
配列番号１及び２で表わされるアプタマーの短鎖化を行った。ＭＦＯＬＤプログラム（Ｚｕｋｅｒ，Ｎｕｃｌｅｉｃ Ａｃｉｄｓ Ｒｅｓ．３１，３４０６−３４１５，２００３）を用いてＲＮＡの２次構造を予測し、その構造を参考に短鎖化した。短鎖化体は、目的の配列のＤＮＡを化学合成により作製し、ＤｕｒａＳｃｒｉｂｅ Ｔ７ Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ Ｋｉｔを用いて転写することで得られた。以下に、実際に作製した短鎖化体のヌクレオチド配列（配列番号３及び７）をリボースの２’位の修飾と共にアプタマーＩＤ３及び７として示す。

アプタマーＩＤ３：配列番号１で表わされるアプタマー改変体で３６ヌクレオチドの長さのアプタマー
ＧＧＧＡＵ（Ｆ）ＡＣ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）ＡＧＧＧＣ（Ｆ）ＡＵ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）ＡＡＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）ＡＣ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）ＡＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）ＡＧＵ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）
アプタマーＩＤ７：配列番号２で表わされるアプタマー改変体で３５ヌクレオチドの長さのアプタマー
ＧＧＧＡＡＡＣ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）ＡＧＧＧＣ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）ＡＡＣ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）ＧＡＣ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）ＡＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）

これらの核酸がＦＧＦ２に対する結合活性を有しているかどうか、実施例１と同様の表面プラズモン共鳴法により調べた。表２にその結果を示す。アプタマーＩＤ３及び７で表わされるアプタマーは顕著にＦＧＦ２に結合することが分かった。また、実施例１と同様に表面プラズモン共鳴法によりＦＧＦ２とＦＧＦ２受容体の結合阻害活性を有しているかどうかを調べたところ、アプタマーＩＤ３及び７で表されるアプタマーが高い阻害を有していることがわかった。

実施例３：アプタマーＩＤ３で表わされるアプタマーの特異性
アプタマーＩＤ３で表わされるＦＧＦ２アプタマーが同じＦＧＦファミリーのＦＧＦ１、又はいくつかの成長因子ＥＧＦ、β―ＮＧＦ、ＶＥＧＦに結合するかどうか表面プラズモン共鳴法で調べた。測定にはＢＩＡｃｏｒｅ社製のＢＩＡｃｏｒｅ２０００を用いた。センサーチップにはストレプトアビジンが固定化されているＳＡチップを用いた。これに、５末端にビオチンが付加したアプタマーＩＤ３で表わされるアプタマーを約５００ＲＵ程度結合させた。ビオチン付きアプタマーは化学合成によって作製した。リガンドとなるタンパク質はＲ＆Ｄ社製のＦＧＦ１、ＥＧＦ、β―ＮＧＦ、ＶＥＧＦを用いた。ランニングバッファーは実施例１で使用した溶液Ａに最終濃度０．３Ｍになるように塩化ナトリウムを添加したものを用いた。その結果、アプタマーＩＤ３で表わされるアプタマーはＦＧＦ２とは結合するが、他のタンパク質とは結合しないことがわかった。そのセンサーグラムを図３に示す。
以上より、アプタマーＩＤ３で表わされるアプタマーはＦＧＦ２に特異的に結合することが判明した。

実施例４：短鎖化したアプタマーの改変及び修飾
ＦＧＦ２に対する結合性、安定性、薬物送達性などを高めるため、配列番号３で表わされるアプタマーを基にして、アプタマーＩＤ３（１）−３（４０）、アプタマーＩＤ４及び４（１）―４（４）、アプタマーＩＤ５並びにアプタマーＩＤ６で表わされる核酸を化学合成した。ここで、アプタマーＩＤ４で表わされるアプタマーはアプタマーＩＤ３（１９）で表わされるアプタマーの５’末端のＧ（Ｍ）及び３’末端のＣ（Ｍ）をそれぞれ一つ削ったものであった。アプタマーＩＤ５で表わされるアプタマーはアプタマーＩＤ３（１９）で表わされるアプタマーの５’末端にＧ（Ｍ）及び３’末端にＣ（Ｍ）をそれぞれ一つ追加したものであった。また、アプタマーＩＤ６で表わされるアプタマーはアプタマーＩＤ３（１９）で表わされるアプタマーの５’末端にＡ（Ｍ）だけを追加したものであった。これらの核酸は化学合成により作製した。作製したアプタマーがＦＧＦ２とＦＧＦ受容体の結合を阻害するかどうか実施例１と同様に調べた。ここでは、アプタマー、ＦＧＦ２、ヘパリンの濃度をすべて０．１μＭとした。実験の結果、測定した全てのアプタマーがＦＧＦ２とＦＧＦＲ１α（ＩＩＩｃ）受容体の結合を強く阻害することがわかった。表３にその結果を示す。

以上より、上述のアプタマーＩＤで表わされるアプタマー全てがＦＧＦ２とＦＧＦ受容体との結合に対して高い阻害活性を有していることが示された。

以下にそれぞれの配列を示す。大文字はＲＮＡ、小文字はＤＮＡ、ｉｄＴはｉｎｖｅｒｔｅｄ ｄＴを示す。なお、各ヌクレオチドにおける括弧は、その２’位の修飾を示し、Ｆはフッ素原子、ＭはＯ−メチル基を示す。ｓはホスホロチオエート結合を示す。Ｃ６は−（ＣＨ_２）_６−リンカー、ｓｓＨはｓｓＨ Ｌｉｎｋｅｒ（−ＣＨ_２−ＣＨ_２−Ｏ−ＣＯ−ＮＨ−（ＣＨ_２）_６−）を示す。ＰＥＧ４０ＴＳ２は分子量４００００の２分岐ＴＳ型ポリエチレングリコール（ＳＵＮＢＲＩＧＨＴ ＧＬ２−４００ＴＳ 日油社製）、ＰＥＧ８０ＴＳ４は分子量８００００の４分岐ＴＳ型（ＳＵＮＢＲＩＧＨＴ ＧＬ４−８００ＴＳ 日油社製）、Ｙ−ＮＨＳ−４０Ｋは分子量４００００のＹ−Ｓｈａｐｅ ＰＥＧ ＮＨＳ Ｅｓｙｅｒ(Ｙ−ＮＨＳ−４０Ｋ ＪｅｎＫｅｍ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ＵＳＡ社製)、ＭＥ−１００ＴＳは分子量１００００のＴＳ型（ＳＵＮＢＲＩＧＨＴ ＭＥ−１００ＴＳ 日油社製）、ＰＴＥ−１００ＣＳは分子量１００００の４分岐型（ＳＵＮＢＲＩＧＨＴ ＰＴＥ−１００ＣＳ 日油社製）である。なお、リンカー部分や修飾部分を含まないアプタマーＩＤ３（１）−（４０）のヌクレオチド配列はいずれも配列番号３で表され、同様に、アプタマーＩＤ４及び４（１）−（４）、アプタマーＩＤ５及び６のヌクレオチド配列はそれぞれ配列番号４〜６で表される。

アプタマーＩＤ３（１）
ＧＧＧＡＵ（Ｆ）ＡＣ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）ＡＧＧＧＣ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）ＡＣ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）ＡＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）ＡＧＵ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）
アプタマーＩＤ３（２）
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アプタマーＩＤ３（３）
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アプタマーＩＤ３（４）
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アプタマーＩＤ３（５）
ＧＧＧＡＵ（Ｆ）ＡＣ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）ＧＧＧＣ（Ｆ）ＡＵ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）ＡＡＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）ＡＣ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）ＡＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）ＡＧＵ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）
アプタマーＩＤ３（６）
ＧＧＧＡＵ（Ｆ）ＡＣ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）ＡＧＧＧＣ（Ｆ）ＡＵ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）ＡＡＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）ＡＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）ＡＧＵ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）
アプタマーＩＤ３（７）
ＧＧＧＡＵ（Ｆ）ＡＣ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）ＡＧＧＧＣ（Ｆ）ＡＵ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）ＡＡＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）ＡＣ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）Ａ（Ｍ）ＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）ＡＧＵ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）
アプタマーＩＤ３（８）
Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）ＡＣ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）ＧＣ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）Ａ（Ｍ）ＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）ＡＧＵ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）Ｃ（Ｆ））Ｃ（Ｆ）−ｉｄＴ
アプタマーＩＤ３（９）
ＧＧＧＡＵ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）ＡＧＧＧＣ（Ｆ）ＡＵ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）ＡＡＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）ＡＣ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）ＡＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）ＡＧＵ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）
アプタマーＩＤ３（１０）
ＧＧＧＡＵ（Ｆ）ＡＣ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）ＡＧＧＧＣ（Ｆ）ＡＵ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）ＡＡＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）ＡＣ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）ＡＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）ＡＧ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）
アプタマーＩＤ３（１１）
ＧＧＧＡＵ（Ｆ）ＡＣ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）ＡＧＧＧＣ（Ｆ）ＡＵ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）ＡＡＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）ＡＣ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）ＡＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ａ（Ｍ）ＧＵ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）
アプタマーＩＤ３（１２）
Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）ＡＣ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）ＧＣ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）Ａ（Ｍ）ＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）ＡＧＵ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）−ｉｄＴ
アプタマーＩＤ３（１３）
Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）ＡＣ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）ＧＣ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）Ａ（Ｍ）ＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）ＡＧＵ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）
アプタマーＩＤ３（１４）
Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）ＡＣ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）ＧＣ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）Ａ（Ｍ）ＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）ＡＧＵ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）
アプタマーＩＤ３（１５）
Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）ＡＣ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）ＧＣ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）ＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）ＡＧＵ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）
アプタマーＩＤ３（１６）
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アプタマーＩＤ３（１７）
Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）ＡＣ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）ＧＣ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）Ａ（Ｍ）ＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）ＡＧＵ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）Ｃ（Ｆ）
アプタマーＩＤ３（１８）
Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）ＧＣ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）ＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）
アプタマーＩＤ３（１９）
Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）ＧＣ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）ＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）−ｉｄＴ
アプタマーＩＤ３（２０）
ｉｄＴ−Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）ＧＣ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）ＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）
アプタマーＩＤ３（２１）
ＧＬ２−４００ＴＳ−Ｃ６−Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）ＧＣ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）ＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）−ｉｄＴ
アプタマーＩＤ３（２２）
ｉｄＴ−Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）ＧＣ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）ＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）−Ｃ６−ＧＬ２−４００ＴＳ
アプタマーＩＤ３（２３）
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アプタマーＩＤ３（２４）
Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）ＧＣ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）ｇＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）
アプタマーＩＤ３（２５）
Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｆ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）ＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）
アプタマーＩＤ３（２６）
Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）ＧＣ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）
アプタマーＩＤ３（２７）
Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）ＧＣ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）ＧＵ（Ｆ）Ｇ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）
アプタマーＩＤ３（２８）
Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）ｓＧＣ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）ＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）
アプタマーＩＤ３（２９）
Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）ＧｓＣ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）ＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）
アプタマーＩＤ３（３０）
Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）ＧＣ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）ｓＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）
アプタマーＩＤ３（３１）
Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）ＧＣ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）ＧｓＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）
アプタマーＩＤ３（３２）
Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）ＧＣ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）ＧＵ（Ｆ）ｓＧＵ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）
アプタマーＩＤ３（３３）
Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）ＧＣ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）ＧＵ（Ｆ）ＧｓＵ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）
アプタマーＩＤ３（３４）
Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｆ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）Ｇ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）−ｉｄＴ
アプタマーＩＤ３（３５）
Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｆ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）−ｉｄＴ
アプタマーＩＤ３（３６）
ＧＬ４−８００ＴＳ−Ｃ６−Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）ＧＣ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）ＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）−ｉｄＴ
アプタマーＩＤ３（３７）
Ｙ−ＮＨＳ−４０Ｋ−ｓｓＨ−Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）ＧＣ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）ＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）−ｉｄＴ
アプタマーＩＤ３（３８）
ＭＥ−１００ＴＳ−Ｃ６−Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）ＧＣ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）ＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）−ｉｄＴ
アプタマーＩＤ３（３９）
ＰＴＥ−１００ＣＳ−Ｃ６−Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）ＧＣ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）ＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）−ｉｄＴ
アプタマーＩＤ３（４０）
ＧＬ２−４００ＴＳ−ｓｓＨ−Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）ＧＣ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）ＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）−ｉｄＴ
アプタマーＩＤ４：アプタマーＩＤ３（１９）で表わされるアプタマーの改変体で３４ヌクレオチドの長さのアプタマー
Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）ＧＣ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）ＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）−ｉｄＴ
アプタマーＩＤ４（１）
Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｆ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）ＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）−ｉｄＴ
アプタマーＩＤ４（２）
Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｆ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）−ｉｄＴ
アプタマーＩＤ４（３）
Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｆ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）ＧＵ（Ｆ）ｓＧＵ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）−ｉｄＴ
アプタマーＩＤ４（４）
Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｆ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｆ）Ｕ（Ｆ）ＧｓＵ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）−ｉｄＴ
アプタマーＩＤ５：アプタマーＩＤ３（１９）で表わされるアプタマーの改変体で３８ヌクレオチドの長さのアプタマー
Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）ＧＣ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）ＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）−ｉｄＴ
アプタマーＩＤ６：アプタマーＩＤ３（１９）で表わされるアプタマーの改変体で３７ヌクレオチドの長さのアプタマー
Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）ＧＣ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）ＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）−ｉｄＴ

実施例５：ヒト臍帯静脈血管内皮細胞を用いたアプタマーのＦＧＦ２依存的細胞増殖阻害活性評価
ヒト臍帯静脈血管内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）を９６ウェル平底プレートに１ウェル当たり５ｘ１０^３個播種し、２％ウシ胎児血清と成長因子を含んだ内皮細胞専用培地ＥＧＭ−２ ＢｕｌｌｅｔＫｉｔ（ＣＣ−３１６２ Ｌｏｎｚａ社製）で一晩培養した。その後、培地を捨て、ＰＢＳバッファーで２回洗浄後、２％ウシ胎児血清を含んだ内皮細胞専用培地に溶解したアプタマーＩＤ３（２１）で表わされるアプタマー（５、２．５、１、０．５ｎＭ）とＦＧＦ２（最終濃度０．５ｎＭ）の混合液を添加した。７２時間後にＣｅｌｌ Ｃｏｕｎｔｉｎｇ Ｋｉｔ−８を用いて生細胞数を調べた。吸光度測定にはマイクロプレートリーダー（４５０ｎｍ）を使用した。１サンプルはｎ＝３で測定した。ポジティブコントロールとして抗ＦＧＦ２抗体Ａｎｔｉ−ＦＧＦ， ｂａｓｉｃ（Ａｂ−３） Ｍｏｕｓｅ ｍＡｂ（３Ｈ３）（Ｃａｌｂｉｏｃｈｅｍ社製）を用いた。ＦＧＦ２のみの添加で細胞を３日間培養して得られた１ウェルあたりのＯＤ値を阻害活性０％、ＦＧＦ２無添加で３日間培養して得られた１ウェルあたりのＯＤ値を阻害活性１００％として、ＦＧＦ２とアプタマーの混合液を添加した場合に得られた１ウェルあたりのＯＤ値から、アプタマーの阻害活性を求めた。その結果、アプタマーＩＤ３（２１）で表わされるアプタマーがＦＧＦ２に対して高い阻害活性を有していることが示された。ＩＣ５０値は約１．０ｎＭであった。結果を表４に示す。

以上より、アプタマーＩＤ３（２１）で表わされるアプタマーは血管新生を阻害することが示唆された。

上記と同様な方法で、９６ウェル平底プレートをコラーゲンコートされたものに変更して各種アプタマーの活性評価を行った。添加したＦＧＦ２濃度は０．５８ｎＭであった。その結果を表５に示す。ネガティブコントロールＲＮＡとしては、ＰＥＧが付加されていないＭａｃｕｇｅｎ（登録商標）配列であって、５’末端にＣ６修飾、３’末端にｉｄＴ修飾したものを使用した。

以上のことから、上記アプタマーＩＤで示されるアプタマーも同様に血管新生を阻害することが示唆された。

実施例６：ヒト臍帯静脈血管内皮細胞を用いたアプタマーのＦＧＦ２依存的細胞増殖阻害活性評価２
実施例５と同様な方法で、アプタマーＩＤ８から１２で表されるアプタマーの阻害活性を測定した。その結果を表６に示す。
アプタマーＩＤ８〜１２のヌクレオチド配列はそれぞれ配列番号８〜１２で表される。

アプタマーＩＤ８
ＮＨ２−Ｃ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）ＧＣ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）ＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）−ｉｄＴ
アプタマーＩＤ９
ＮＨ２−Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）ＧＣ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）ＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）−ｉｄＴ
アプタマーＩＤ１０
Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）ＧＣ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）ＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）
アプタマーＩＤ１１
Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）ＧＣ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）ＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）
アプタマーＩＤ１２
Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）ＧＣ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｆ）Ｕ（Ｍ）Ａ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ａ（Ｍ）ＧＵ（Ｆ）ＧＵ（Ｆ）Ａ（Ｍ）Ｇ（Ｍ）Ｕ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）Ｃ（Ｍ）

実施例７：血管新生マウスモデル試験
ヒトＦＧＦ−２（Ｒ＆Ｄ社製）を含む０．７６％（最終濃度）のクエン酸ナトリウム含有マトリゲル（ＢＤマトリゲル^ＴＭ）を８週令のＣ５７ＢＬ／６Ｊマウス（♀）の皮下に麻酔下で注入した。７日後にマトリゲルを摘出し、血管新生の度合いをマトリゲル中のヘモグロビン量で評価した。ヘモグロビン量はＤｒａｂｋｉｎ Ｒｅａｇｅｎｔ Ｋｉｔを用いてシアンメトヘモグロビン法で定量した。アプタマーは１ｍＭ塩化マグネシウムを含んだリン酸緩衝液に溶解し、マトリゲル皮下投与直後から、一日１回腹腔内に投与した。投与群を表７に、結果を表８に示す。アプタマー１ｍｇ／ｋｇ群で顕著な血管新生阻害が観察された。以上より、本発明のアプタマーがモデル動物においても強い血管新生阻害活性を示すことが確認された。

本出願は、日本で出願された特願２０１４−６０９６６（出願日：２０１４年３月２４日）を基礎としており、その内容は本明細書に全て包含されるものである。

本発明のアプタマー又は複合体は、血管新生を伴う疾患、骨・軟骨疾患又は疼痛などの疾患に対する医薬、あるいは診断薬、試薬として有用であり得る。本発明のアプタマー又は複合体はまた、ＦＧＦ２の精製及び濃縮、ＦＧＦ２の標識、並びにＦＧＦ２の検出及び定量に有用であり得る。

Claims (16)

1. 下式（１）で表わされるヌクレオチド配列（但し、ウラシルはチミンであってもよい）を含むアプタマーであって、以下（ａ）又は（ｂ）のいずれかである、ＦＧＦ２に結合するアプタマー：
   Ｎ^１ＧＧＡＮ^２ＡＣＵＡＧＧＧＣＮ^３ＵＵＡＡＮ^４ＧＵＮ^５ＡＣＣＡＧＵＧＵＮ^６（式１）
   Ｎ^１及びＮ^６は、それぞれ独立して任意の０から数個の塩基、
   Ｎ^２、Ｎ^３、Ｎ^４及びＮ^５は、独立して任意の一個の塩基を表す、
   （ａ）該アプタマーに含まれるヌクレオチドにおいて、
   （ｉ）各ピリミジンヌクレオチドのリボースの２’位がフッ素原子であり、
   （ｉｉ）各プリンヌクレオチドのリボースの２’位がヒドロキシ基である、アプタマー；
   （ｂ）該（ａ）のアプタマーにおいて、
   （ｉ）各ピリミジンヌクレオチドのリボースの２’位のフッ素原子が、それぞれ独立して、無置換であるか、水素原子、ヒドロキシ基及びメトキシ基からなる群より選ばれる原子又は基で置換されており、
   （ｉｉ）各プリンヌクレオチドのリボースの２’位のヒドロキシ基が、それぞれ独立して、無置換であるか、水素原子、メトキシ基及びフッ素原子からなる群より選ばれる原子又は基で置換されている、アプタマー。
2. Ｎ^１は、Ｇ、ＧＧ、ＡＧ、Ｃ又はギャップ、
   Ｎ^２は、Ａ又はＵ、
   Ｎ^３は、Ｇ、Ｃ又はＡ、
   Ｎ^４は、Ｇ、Ｃ又はＵ、
   Ｎ^５は、Ｇ又はＵ、
   Ｎ^６は、ＵＵＣＮ^６１又はＡＧＵＣＮ^６２
   Ｎ^６１及びＮ^６２は、それぞれ独立して任意の０から数個の塩基である、
   請求項１記載のアプタマー。
3. 下式（２）又は（３）で表わされるヌクレオチド配列を含む、請求項１又は２記載のアプタマー：
   ＧＧＧＡＡＡＣＵＡＧＧＧＣＧＵＵＡＡＣＧＵＧＡＣＣＡＧＵＧＵＵＵＣＮ^６１（式２）
   Ｎ^１ＧＧＡＵＡＣＵＡＧＧＧＣＡＵＵＡＡＵＧＵＵＡＣＣＡＧＵＧＵＡＧＵＣＮ^６２(式３)。
4. 配列番号２又は７で表わされるヌクレオチド配列を含む、請求項１〜３のいずれか一項に記載のアプタマー。
5. 配列番号１、３、４、５、６、８、１０又は１１で表わされるヌクレオチド配列を含む、請求項１〜３のいずれか一項に記載のアプタマー。
6. 請求項１〜５のいずれか一項に記載のアプタマーにおいて、１又は数個のヌクレオチドが置換、欠失、挿入又は付加されたヌクレオチド配列を含むアプタマーであって、
   （ａ）該アプタマーに含まれるヌクレオチドにおいて、
   （ｉ）各ピリミジンヌクレオチドのリボースの２’位がフッ素原子であり、
   （ｉｉ）各プリンヌクレオチドのリボースの２’位がヒドロキシ基である、アプタマー；
   （ｂ）該（ａ）のアプタマーにおいて、
   （ｉ）各ピリミジンヌクレオチドのリボースの２’位のフッ素原子が、それぞれ独立して、無置換であるか、水素原子、ヒドロキシ基及びメトキシ基からなる群より選ばれる原子又は基で置換されており、
   （ｉｉ）各プリンヌクレオチドのリボースの２’位のヒドロキシ基が、それぞれ独立して、無置換であるか、水素原子、メトキシ基及びフッ素原子からなる群より選ばれる原子又は基で置換されている、アプタマー。
7. ヌクレオチドの長さが４５ヌクレオチド以下である、請求項１〜６のいずれか一項に記載のアプタマー。
8. ＦＧＦ２とＦＧＦ受容体との結合を阻害する、請求項１〜７のいずれか一項に記載のアプタマー。
9. 少なくとも１つのヌクレオチドが修飾されている、請求項１〜８のいずれか一項に記載のアプタマー。
10. 請求項１〜９のいずれか一項に記載のアプタマー及び機能性物質を含む複合体。
11. 機能性物質が、親和性物質、標識用物質、酵素、薬物送達媒体又は薬物である、請求項１０記載の複合体。
12. 請求項１〜９のいずれか一項に記載のアプタマーあるいは請求項１０又は１１に記載の複合体を含む、医薬。
13. 請求項１〜９のいずれか一項に記載のアプタマーあるいは請求項１０又は１１に記載の複合体を含む、血管新生を伴う疾患、骨・軟骨疾患又は疼痛の治療用又は予防用医薬。
14. 血管新生を伴う疾患、骨・軟骨疾患又は疼痛を治療又は予防する方法であって、有効量の請求項１〜９のいずれか一項に記載のアプタマーあるいは請求項１０又は１１に記載の複合体を、対象に投与することを含む方法。
15. 血管新生を伴う疾患、骨・軟骨疾患又は疼痛の治療又は予防に用いるための、請求項１〜９のいずれか一項に記載のアプタマーあるいは請求項１０又は１１に記載の複合体。
16. 血管新生を伴う疾患、骨・軟骨疾患又は疼痛の治療用又は予防用医薬を製造するための、請求項１〜９のいずれか一項に記載のアプタマーあるいは請求項１０又は１１に記載の複合体の使用。