JPWO2013161896A1 - 薬剤徐放担体 - Google Patents

Abstract

薬剤徐放率が高く、薬剤徐放速度を制御でき、強度が高く取扱が容易であり、さらに生体親和性が高いため肌に優しく、かつ保水性が高く、薬剤を効率的に保持しうる、シルクフィブロイン多孔質体を用いた薬剤徐放担体を提供する。

Description

本発明は、薬剤徐放担体に関する。

従来、患者への薬剤の投与方法としては、経口投与が知られている。しかし、胃腸障害などの副作用や、肝臓をバイパスできず、最初に通過する代謝を回避できないこと、あるいは、治療濃度と毒性濃度間が狭い領域の薬剤の投与制御が困難であることなどの欠点を有している。

これを解決する手段として、経皮適用製剤として薬剤を使用することが試みられている。経皮適用製剤は、薬効成分を安定的に長時間にわたって経皮吸収させるために、薬理学的な活性を有する活性物質を使って皮膚に浸透させるのを制御する。前記活性物質としては、表面活性剤または他の浸透剤を用いることも考えられる。しかし、こうした活性物質の多くは、実際に皮膚組織を損傷し、また好ましくない副作用を生じる可能性がある。

その他、ハップ剤のように、油剤等の基材中に薬剤を混練し、徐放速度を制御している被覆材もあるが、保水性、吸水性が低く、患部が蒸れることで、皮膚に影響があることや、滲出液のある創傷面への適用が難しいといった問題があった。

薬剤の徐放性を制御する他の方法としては、薬効成分を合成高分子、天然高分子のゲル、又は多孔質体などの薬剤担体に保持させることで、薬剤の経皮浸透を制御する方法が提案されている（特許文献１及び２）。

また、担体が分解することで徐放性を有する徐放担体も提案されている（特許文献３〜５）。一方、シルクは、天然高分子の中でも生体親和性が高く、従来から縫合糸などに使用されており、安全性が高いことで知られている。シルクは、セリシン、フィブロインタンパクから形成されており、様々な加工方法が提案されており、例えば、シルクフィブロインを用いたハイドロゲルが提案されている（特許文献６）。

特開平８−１７５９８１号公報 特表２００７−５２０６１４号公報 特開平５−４３４５３号公報 特開平９−１９２２１１号公報 特開平２００４−１２３５７６号公報 特許第３４１２０１４号公報

実施例１で製造される多孔質体の断面の走査型電子顕微鏡写真である。 実施例２で製造される多孔質体の断面の走査型電子顕微鏡写真である。 実施例３で製造される多孔質体の断面の走査型電子顕微鏡写真である。 実施例４で製造される多孔質体の断面の走査型電子顕微鏡写真である。 実施例５で製造される多孔質体の断面の走査型電子顕微鏡写真である。 実施例６で製造される多孔質体の断面の走査型電子顕微鏡写真である。 実施例７で製造される多孔質体の断面の走査型電子顕微鏡写真である。 実施例８で製造される多孔質体の断面の走査型電子顕微鏡写真である。 実施例９で製造される多孔質体の断面の走査型電子顕微鏡写真である。 実施例１０で製造される多孔質体の断面の走査型電子顕微鏡写真である。 実施例１１で製造される多孔質体の断面の走査型電子顕微鏡写真である。 実施例１２で製造される多孔質体の断面の走査型電子顕微鏡写真である。 実施例１３で製造される多孔質体の断面の走査型電子顕微鏡写真である。 実施例１４で製造される多孔質体の断面の走査型電子顕微鏡写真である。 実施例１５で製造される多孔質体の断面の走査型電子顕微鏡写真である。 実施例１６で製造される多孔質体の断面の走査型電子顕微鏡写真である。 実施例１７で製造される多孔質体の断面の走査型電子顕微鏡写真である。 実施例１８で製造される多孔質体の断面の走査型電子顕微鏡写真である。 実施例１９で製造される多孔質体の断面の走査型電子顕微鏡写真である。 実施例２０で製造される多孔質体の断面の走査型電子顕微鏡写真である。 実施例２１で製造される多孔質体の断面の走査型電子顕微鏡写真である。 実施例２２で製造される多孔質体の断面の走査型電子顕微鏡写真である。 実施例２３で製造される多孔質体の断面の走査型電子顕微鏡写真である。 実施例２８における平面培養していた線維芽細胞培養ディッシュにシルクフィブロイン多孔質体を静置した様子を示す図である。 実施例２８におけるシルクフィブロイン多孔質体の表面に線維芽細胞を播種し、細胞を２週間培養した後の様子を示す図である。 実施例２８におけるゼラチンスポンジに線維芽細胞を播種し、細胞を２週間培養した後の様子を示す図である。 実施例２８における癒着性試験結果を示す画像である。 実施例２９〜３２の徐放率を示す図である。 実施例３３の血小板由来成長因子（ＰＤＧＦ）の培養液への徐放率を示す図である。 実施例３４の塩基性線維芽細胞成長因子（ｂ−ＦＧＦ）の培養液への徐放率を示す図である。

しかし、特許文献１及び２に記載されているような合成高分子を薬剤担体とすると、皮膚への親和性が低く、また保水性が低いこと、徐放速度の制御が難しく、徐放効率が低いなどの問題があった。また、天然高分子を薬剤担体とすると、皮膚への親和性が高い点で利点はあるものの、強度が低いといった問題があった。そのため、天然高分子では、架橋剤による架橋体や、強度補強材の使用やガーゼ等で包むことで、強度を確保する必要があった。しかし、強度を確保するために架橋剤を使用した場合、残存する架橋剤が皮膚へ悪影響を与えるという懸念がある。また、強度補強材を使用した場合には、構造が複雑になることや、剥がす際に薬剤担体の一部が皮膚に残ってしまう懸念がある。さらに、ガーゼなどで覆うことで強度を確保する場合には、皮膚に接するのはガーゼなどの従来型の被覆材であり、生体親和性の高く、保水性の高いゲルや多孔質体が皮膚に接触していないために、十分な効果を発揮できない問題があった。

特許文献３〜５に記載されているような徐放担体は、体外では担体が分解され難く、皮膚などへの適用が難しいという問題があった。また、特許文献６に記載されているようなハイドロゲルを薬剤除法担体として適用する場合、薬剤徐放速度を制御できないという問題があった。

そこで、本発明は、薬剤徐放率が高く、薬剤徐放速度を制御でき、強度が高く取扱が容易であり、さらに生体親和性が高いため肌に優しく、かつ保水性が高く、薬剤を効率的に保持しうる薬剤徐放担体を提供することを目的とする。

本発明者らは、前記課題を達成するために鋭意研究を重ねた結果、下記の発明により当該課題を解決できることを見出した。
すなわち、本発明の要旨は、以下の通りである。

１．シルクフィブロイン多孔質体を用いた薬剤徐放担体。
２．前記シルクフィブロイン多孔質体が水溶性高分子で処理されたものである前記１に記載の薬剤徐放担体。
３．前記水溶性高分子が、多糖類及びポリアミノ酸から選ばれる少なくとも一種を含む材料である前記２に記載の薬剤徐放担体。
４．前記多糖類が、ヘパリン及びコンドロイチン硫酸から選ばれる少なくとも一種を含む前記３に記載の薬剤徐放担体。
５．担持させる薬剤が、成長因子を含む前記１〜４のいずれかに記載の薬剤徐放担体。
６．前記成長因子が、線維芽細胞成長因子（ＦＧＦ）、血小板由来成長因子（ＰＤＧＦ）、及び上皮成長因子（ＥＧＦ）から選ばれる少なくとも一種である前記５に記載の薬剤徐放担体。
７．前記多孔質体の引張り強度が、０．１〜４００ｋＰａである前記１〜６のいずれかに記載の薬剤徐放担体。

本発明によれば、薬剤徐放率が高く、薬剤徐放速度を制御でき、強度が高く取扱が容易であり、さらに生体親和性が高いため肌に優しく、かつ保水性が高く、薬剤を効率的に保持しうる薬剤徐放担体を提供することができる。

〔薬剤徐放担体〕
本発明の薬剤徐放担体は、シルクフィブロイン多孔質体を用いることを特徴とする。
ここで、シルクフィブロイン多孔質体とは、シルクフィブロインを含む、好ましくは、１〜３００μｍの平均細孔径を有する多孔質体をいう。

本発明の薬剤徐放担体を構成するシルクフィブロイン多孔質体は、優れた徐放性を有しており、処理を施さずにそのまま使用することもできるが、徐放速度を制御するため表面処理をして使用することが好ましい。表面処理方法としては、特に限定されないが、γ線や電子線、プラズマ処理などの物理的処理が挙げられる。
また、オゾン、塩酸などの酸化剤処理；水酸化ナトリウム水溶液などによるアルカリ処理；アルデヒド基やエポキシ基などの反応性基を有する試薬を使用した化学修飾処理；水溶性高分子や低分子材料を用いた処理などが挙げられる。これらの中でも、シルクフィブロイン多孔質体の性質を保つために、マイルドな条件で処理できる方法が望ましく、水溶性高分子で処理することが好ましい。

前記水溶性高分子としては、生体への安全性が高い材料が好ましく、具体的には、多糖類やポリアミノ酸が好ましい。多糖類としては、デンプン、セルロース、キチン、キトサン、アガロース、カラギーナン、ヘパリン、コンドロイチン硫酸、ヒアルロン酸、ペクチンなどが好ましく挙げられる。また、これら多糖類を化学修飾した、カルボキシメチルセルロースなども使用できる。
また、ポリアミノ酸としては、ポリリジン、ポリアルギン酸、ポリアスパラギン酸、ポリグルタミン酸などが好ましく挙げられる。本発明においては、これらの多糖類やポリアミノ酸を単独で、又は複数種を組み合わせて用いることができる。

本発明においては、表面処理等を施したシルクフィブロイン多孔質体を用いることにより、高い薬剤徐放率を維持しつつ、徐放速度を容易に制御することが可能となる。また、水溶性高分子として前記の多糖類又はポリアミノ酸などの濃度が高い材料を用いることで、より早い徐放速度を有する薬剤徐放担体が得られる。
これらの多糖類又はポリアミノ酸は、例えば水、緩衝液、生理食塩水などに溶解させて用いることが好ましく、その場合の濃度は、０．０５〜５０Ｕ／ｍｌが好ましく、０．１〜４５Ｕ／ｍｌであることがより好ましく、０．２〜３５Ｕ／ｍｌであることがさらに好ましい。濃度が前記範囲内であると、濃度が高くなるにつれて、より早い徐放速度が効率的に得られる。また、該濃度を調整することで徐放速度の制御も容易に可能となる。

シルクフィブロイン多孔質体の引張り強度は、０．１ｋＰａ〜４００ｋＰａであることが好ましい。０．１ｋＰａ以上であれば、十分な強度があり、薬剤徐放担体として取扱いが容易になり、薬剤徐放担体の皮膚への残りが少なくなる。一方、４００ｋＰａ以下であれば、皮膚への密着性が保たれる。以上の観点から、引張り強度は１ｋＰａ〜３００ｋＰａであることがより好ましく、５ｋＰａ〜２００ｋＰａであることがさらに好ましい。

本発明の薬剤徐放担体は、吸水した水分を保持する保水率が高いことが好ましい。保水率が高いことで、吸収した滲出液が流出しにくくなる。より具体的には、下記の方法で算出される保水率が８５〜１００％であることが好ましい。保水率が８５％以上であれば、滲出液は保持されて、流れ出すことはない。以上の点から、シルクフィブロイン多孔質体の保水率は、８７〜１００％がより好ましく、９０〜１００％がより好ましい。
（保水率の算出方法）
保水率は次のように算出して得られる値である。多孔質体を６０×３０×２０ｍｍに成形して測定試料とし、純水中に十分浸漬した試料の重さを測定する（Ｗｃ）。これを再度純水中に十分浸漬し、表面を純水で濡らしたガラス製の平板（松浪ガラス製ＭＳＡコートマイクロスライドガラス、７６×５２ｍｍ）を４５度傾けて設置し、その上に一番広い面（６０×３０ｍｍ面）を下にして長尺方向を上下になるように載せて、１０分間静置する。その後、試料の重さを測定し（Ｗｄ）、試料の重さ（Ｗｃ）及び（Ｗｄ）を用いて下記の式で算出された値を保水率とする。
保水率（％）＝１００−（Ｗｃ−Ｗｄ）×１００／（Ｗｃ）

多孔質体の吸水速度は０．１〜１０００μｌ／ｓであることが好ましく、１〜１００μｌ／ｓであることがより好ましく、さらに好ましくは２０〜３０μｌ／ｓである。吸水速度が０．１μｌ／ｓ以上であれば、滲出液を速やかに吸収できるので、薬剤徐放担体の外に漏らすことが少ない。吸水速度が１０００μｌ／ｓ以下であれば、薬剤徐放担体が滲出液を過剰に吸収するのを防ぎ、接触部の湿潤状態を保つことができる。
また、蒸発速度は０．０１〜０．２ｇ／ｍ²／ｓであることが好ましく、０．０３〜０．１５ｇ／ｍ²／ｓであることがより好ましく、さらに好ましくは０．０６〜０．１ｇ／ｍ²／ｓである。蒸発速度が０．０１以上であれば、薬剤徐放担体が継続的に滲出液を吸収できる状態に保つことができる。一方、蒸発速度が０．２ｇ／ｍ²／ｓ以下であれば、本発明の薬剤徐放担体を効率的に湿潤状態に保つことができる。ここで、吸水速度及び蒸発速度は以下のようにして得られる値である。多孔質層の吸水速度及び蒸発速度が前記範囲内であると、優れた本発明の効果が得られる。

（吸水速度の算出方法）
シルクフィブロイン多孔質体に純水を１００μｌ滴下し、吸収されるまでの時間を測定した。吸水速度は、測定した時間を用いて、下記の式より算出した値である。測定は５回行い、その平均値を吸水速度とした。
吸水速度（μｌ／ｓ）＝純水滴下量／吸水に要した時間

本発明の薬剤徐放担体の形状に制限はなく、所望に応じて適宜選択すればよく、使用しやすさの観点からシート状であることが好ましい。また、その大きさは任意に設定することができ、シートの厚さは、薬剤の投与量に応じて任意の厚さを設定することができる。

本発明の薬剤徐放担体に含ませることのできる薬剤は、特に限定されるものではなく、例えば、動物体内において、特定の細胞の増殖や分化を促進する内因性のタンパク質、すなわち、上皮成長因子（ＥＧＦ）、インスリン様成長因子（ＩＧＦ）、トランスフォーミング成長因子（ＴＧＦ）、神経成長因子（ＮＧＦ）、血管内皮細胞成長因子（ＶＥＧＦ）、血小板由来成長因子（ＰＤＧＦ）、塩基性線維芽細胞成長因子（ｂ−ＦＧＦ）や酸性線維芽細胞成長因子（ａ−ＦＧＦ）などの線維芽細胞成長因子（ＦＧＦ）、肝細胞成長因子（ＨＧＦ）などの成長因子のほか、塩酸ジフェンヒドラジン、クロルフェニラミン、ジフェニルイミダゾールなどの抗ヒスタミン剤；ハイドロコーチゾン、プレドニゾロン、パラメタゾン、ベクロメタゾンプロピオナート、フルメタゾン、ベータメタゾン、プロピオン酸ベクロメタゾン、デキサイタゾン、トリアムシノロン、トリアムシノロンアセトニド、フルオシノロン、フルオシノロンアセトニド、フルオシノロンアセトニドアセテート、プロピオン酸クロベタゾールなどのコルチコステロイド類；アセトアミノフェン、メフェナム酸、フルフェナミン酸、インドメタシン、ジクロフェナック、アルクロフェナック、オキシフェンブタゾン、フェニルブタゾン、イブプロフェン、フルルビブロフェン、サリチル酸、サリチル酸メチル、Ｌ−メントール、カンファーなどの鎮痛消炎剤；ペニシリン、オキシテトラサイクリン、硫酸フラジオマイシン、エリスロマイシン、クロラムフェニコール、セファレキシン、テトラサイクリンなどの抗生物質；ビタミンＡ、エルゴカルシフェロール、コレカルシフェロール、オクトチアミン、リボフラビン酪酸エステルなどのビタミン剤；ベンゾカイン、リドカイン、アミノ安息香酸エチルなどの麻酔剤などが好ましく挙げられる。これらの薬剤は、単独で又は複数種を組み合わせて用いることができる。

また、前記の薬剤に加えて、必要に応じて、吸収助剤、例えば、ミリスチン酸イソプロピル、パルミチン酸イソプロピル、Ｎ−メチルピロリドン、Ｎ−エチルピロリドン、Ｎ，Ｎ−ジエチル−ｍ−トリアミド、Ｎ，Ｎ−ジエチルアセトアミド、ヒアルロン酸、サリチル酸、クロタミトン、ジエチルセバケート、ラウリルアルコール、ジメチルスルホキシド、デシメチルスルホキシドなどを配合することができる。これらの吸収助剤を配合することにより、皮膚自身による障壁膜に対して薬剤吸収を促進するとともに、血液中への浸透を促進する機能を薬剤に付与することができる。

前記薬剤の添加量としては、選択する薬剤により適宜決定されるものであるが、目安としては、薬剤徐放担体に対して約１μｇ〜３００ｍｇ／１２ｃｍ²（厚さ２ｍｍ）の薬剤が吸収されるように添加される。
前記の薬剤は、シルクフィブロイン多孔質体に含浸もしくは塗布することで、保持させることができる。また、これらの薬剤は１種又は２種以上を組み合わせて使用することができる。

前記薬剤の配合において、溶媒を用いることができる。ここで用いられる溶媒としては、人体に有害でないものであり、かつ用いる薬剤に対して化学的に不活性なものであることが好ましく、使用する薬剤を溶解または分散できるものであれば特に規定はない。具体的には、水、多価アルコールを単独で、又は２種以上を組み合わせた混合系の溶媒を用いることができる。人体への安全性の観点からは水が最も好ましい。多価アルコールとしては、例えば、グリセリン、プロピレングリコール、ソルビットなどが好ましく挙げられる。
また、薬剤を溶剤に溶解する上においての溶解性を向上させるために、水溶性ポリマーを加えることができる。水溶性ポリマーとしては、例えば、ゼラチン、アルギン酸ナトリウム、トラガントゴム、デンプン類、メチルセルロース、エチルセルロース、ヒドロキシエチルセルロース、カルボキシメチルセルロース、ポリビニルピロリドン、ポリビニルアルコール、ポリアクリル酸ナトリウムなどが好ましく挙げられる。

本発明の薬剤徐放担体は、前記のようにシート状であることが好ましく、その使用形態としては、例えばシート状のシルクフィブロイン多孔質体を、ドレッシングフィルムや、包帯、粘着テープなどで固定する形態が好ましく挙げられる。ドレッシングフィルムなどを使用することで、シルクフィブロイン多孔質体に圧力が加わる場合や、接触した場合に、体液への接触や漏出などを防ぐことができ、湿潤療法に適した環境を提供することができる。また、消化管内や体内での薬剤徐放担体としても使用できる。

薬剤徐放担体から薬剤を徐放させるには、該薬剤徐放担体、すなわちシルクフィブロイン多孔質体を湿潤状態としておくことが好ましい。滲出液のある創傷面で湿潤療法を行うような場合には、滲出液を介して、徐放された薬剤を患部へ浸透させることができる。滲出液のない場合には、生理食塩水などにより、湿潤状態にして使用することができる。

〔シルクフィブロイン多孔質体の製造方法〕
次に、シルクフィブロイン多孔質体の製造方法について説明する。
本発明で用いられるシルクフィブロイン多孔質体は、例えば、シルクフィブロイン水溶液に特定の添加剤を加えて、該水溶液を凍結させ、次いで融解させることにより製造することができる。
ここで用いられるシルクフィブロインは、家蚕、野蚕、天蚕などの蚕から産生されるものであればいずれでもよく、その製造方法も特に制限されるものではない。シルクフィブロインは溶解性が悪く、直接水には溶解することが困難である。シルクフィブロイン水溶液を得るには、公知のいかなる手法を用いてもよいが、高濃度の臭化リチウム水溶液にシルクフィブロインを溶解後、透析による脱塩、風乾による濃縮を経る手法が簡便であり好ましい。

シルクフィブロイン多孔質体の製造方法において、シルクフィブロインの濃度は、後述する添加剤等を添加したシルクフィブロイン水溶液中で０．１〜４０質量％であることが好ましく、０．５〜２０質量％であることがより好ましく、１．０〜１２質量％であることがさらに好ましい。この範囲内に設定することで、十分な強度を持った多孔質体を効率的に製造することができる。

前記添加剤としては、例えば、有機溶媒、脂肪族カルボン酸、アミノ酸などが好ましく挙げられる。添加剤としては、特に制限はないが、水溶性のものが好ましく、水への溶解度が高いものがより好ましい。また、シルクフィブロイン多孔質体の製造において用いられる脂肪族カルボン酸としては、ｐＫａが、５．０以下のものが好ましく、３．０〜５．０のものがより好ましく、３．５〜５．０のものがさらに好ましい。

前記有機溶媒としては、例えば、メタノール、エタノール、イソプロパノール、ブタノール、ｔ−ブタノール、グリセロール、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）、ジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）、ピリジン、アセトニトリル、アセトンなどが好ましく挙げられる。これらの有機溶媒は、単独あるいは２種以上組み合わせて使用することができる。
前記脂肪族カルボン酸としては、例えば、炭素数１〜６の飽和又は不飽和のモノカルボン酸、ジカルボン酸、トリカルボン酸を好ましく用いることができ、より具体的には、蟻酸、酢酸、プロピオン酸、酪酸、コハク酸、乳酸、アクリル酸、２−ブテン酸、３−ブテン酸などが好ましく挙げられる。これらの脂肪族カルボン酸は、単独あるいは２種以上組み合わせて使用することができる。

前記アミノ酸としては、例えば、バリン、ロイシン、イソロイシン、グリシン、アラニン、セリン、スレオニン、メチオニンなどのモノアミノカルボン酸；アスパラギン酸、グルタミン酸などのモノアミノジカルボン酸（酸性アミノ酸）などの脂肪族アミノ酸；フェニルアラニンなどの芳香族アミノ酸；ヒドロキシプロリンなどの複素環を有するアミノ酸などが好ましく挙げられ、なかでも形状の調整が容易な観点から、酸性アミノ酸や、ヒドロキシプロリン、セリン、スレオニンなどのオキシアミノ酸が好ましい。同様な観点から、酸性アミノ酸の中でもモノアミノカルボン酸がより好ましく、アスパラギン酸やグルタミン酸が特に好ましく、オキシアミノ酸の中でもヒドロキシプロリンが好ましい。これらのアミノ酸は、いずれか１種を単独で、あるいは２種以上組み合わせて使用することができる。
なお、アミノ酸には、Ｌ型とＤ型の光学異性体があるが、Ｌ型とＤ型を用いた場合に、得られるシルクフィブロイン多孔質体の構造や機械特性に違いが見られないため、どちらのアミノ酸を用いてもよい。

シルクフィブロイン水溶液中の添加剤の含有量は、シルクフィブロイン水溶液の全量に対して、０．１〜１８質量％であることが好ましく、０．１〜５．０質量％であることがより好ましく、０．２〜４．０質量％であることがさらに好ましい。この範囲内に設定することで、十分な強度を持ったシルクフィブロイン多孔質体を製造することができる。また、１８．０質量％以下であれば、シルクフィブロイン水溶液に前記添加剤を添加したシルクフィブロイン水溶液を静置する際、該水溶液がゲル化しにくく、安定して良質なシルクフィブロイン多孔質体が得られる。

次に、前記添加剤が加えられたシルクフィブロイン水溶液を型あるいは容器に流し込み、低温恒温槽中に入れて凍結させ、次いで融解する工程を経て、シルクフィブロイン多孔質体を製造する。凍結温度は、添加剤を含有させたシルクフィブロイン水溶液が凍結する温度であれば特に制限されないが、−１０〜−３０℃程度が好ましい。また、凍結時間は、十分に凍結し、かつ凍結状態を一定時間保持できるよう、所定の凍結温度で４時間以上であることが好ましい。
なお、凍結の方法としては、シルクフィブロイン水溶液を一気に凍結温度まで下げて凍結してもよいが、一旦、−５℃程度に２時間程度保持して過冷却状態とし、その後、凍結温度まで下げて凍結することが、力学的強度の高いシルクフィブロイン多孔質体を得る上で好ましい。−５℃から凍結温度までにかける時間を調整することで、シルクフィブロイン多孔質体の構造や強度をある程度制御することが可能である。

その後、凍結したシルクフィブロイン水溶液を、融解することによってシルクフィブロイン多孔質体が得られる。融解の方法は特に制限はないが、自然融解のほか、恒温槽内に保持する方法などが好ましく挙げられる。

得られたシルクフィブロイン多孔質体には前記の添加剤が含まれる。用途に応じて、添加剤を除去する必要がある場合には、適当な方法でシルクフィブロイン多孔質体から添加剤を除去すればよい。例えば、シルクフィブロイン多孔質体を、純水中に浸漬して、添加剤を除去する方法が最も簡便な方法として挙げられる。あるいは、シルクフィブロイン多孔質体を凍結乾燥することによって、添加剤と水分を同時に除去することも可能である。

このシルクフィブロイン多孔質体は、該多孔質体作製時の型や容器を適宜選択することにより、シート状、ブロック状、管状、球状など、目的に応じた形状とすることができる。本発明においては、前記のようにシート状であることが好ましい。
型や容器としては、シルクフィブロイン水溶液が流出しない形状・形態のものであれば制限はなく、その素材としては、鉄、ステンレス、アルミニウム、金、銀、銅などの熱伝導率が高い素材を用いることが、均一な構造のシルクフィブロイン多孔質体を得る観点から好ましい。また、型や容器の壁の厚さは、その機能と凍結の際の膨張などによる変形などを防止する観点から、０．５ｍｍ以上であることが好ましく、取り扱いが容易で、冷却効率的な観点から、１〜３ｍｍであることがより好ましい。

また、ここで用いられる型や容器は、その内側のシルクフィブロイン水溶液と接する内壁面に、シート層を設けることができる。これにより、シルクフィブロイン多孔質体の表面にフィルム層を配置することができる。すなわち、多孔質層とフィルム層とを有するシルクフィブロイン多孔質体を得ることができる。ここで、多孔質層は、多数の細孔が存在するスポンジ状の多孔質構造を有する層であり、フィルム層は細孔を実質的に有さない層である。

型や容器の内壁面に設けるシート層の特性により、フィルム層の構造や厚さを制御することができる。
シート層に用いるシートとしては、ポリテトラフルオロエチレン（ＰＴＦＥ）、テトラフルオロエチレン・ヘキサフルオロプロピレン共重合体（ＦＥＰ）やテトラフルオロエチレン・パーフルオロアルキルビニルエーテル共重合体（ＰＦＡ）などのフッ素樹脂からなるシート、あるいはポリエチレンテレフタレート（ＰＥＴ）やポリプロピレン（ＰＰ）などからなる離型処理されたシートなどが好ましく挙げられる。これらのシートを用いた場合、細孔が少なく平滑なフィルム層を得ることができる。また、フィルム層を設けたくない場合は、ろ紙などといった表面が粗いシートを設けることもできる。これらのシートの採用については、シルクフィブロイン多孔質体の用途に応じて、適宜選択すればよい。また、シートは、熱伝導を阻害しにくい厚さ１ｍｍ以下のものを用いることが好ましい。

シルクフィブロイン多孔質体は、前記の融解する工程に次いで、切削工程を経て得られる。本発明の体外用薬剤徐放担体として好適なシート形状において、多孔質層のみからなる多孔質体とする場合には、容器の材質を選択するほかに、フィルム層を切除することで、表面構造を選択することができる。これにより、多孔質層のみからなる多孔質体からなるシートを得ることができる。具体的には、例えば、テフロン（登録商標）シートなどのシートをその内壁面に設けたブロック状の型あるいは容器を用い、該型あるいは容器から取り出してから、側面の四面のフィルム層を取り除き、多孔質層の部分を切削することで得られる。また、一面のみにテフロン（登録商標）シートなどのシートをその内壁面に設け、その他の面の内壁面にろ紙を設けた型あるいは容器を用い、一面のみにフィルム層を有する多孔質体を得ることもできる。

前記のシート層を設けることにより、シルクフィブロイン多孔質体が前記のフィルム層を有する場合、細孔を経由して液状の薬剤が移動する速度、及び蒸発や拡散する速度が遅くなるため、液透過性が低くなる。よって、フィルム層を有するシルクフィブロイン多孔質体の使用の態様としては、皮膚に多孔質層が接し、皮膚とは反対側の対向面にフィルム層を有する態様が好ましく挙げられる。このような体外用薬剤徐放担体を使用すると、液状の薬剤を効率よく保持することができ、該薬剤の蒸発や拡散を抑える効果があるためである。
なお、フィルム層の細孔の数は制御することができ、必要に応じて少量の細孔を有するフィルム層とすることもできる。また、フィルム層は、細孔が極めて少ないために、多孔質層に比べて表面が平滑となる。そのため、該フィルム層を皮膚側として使用し、液透過性を制御することで薬剤の徐放速度を制御することもできる。

このように、本発明の薬剤徐放担体は、その製造方法によって多孔質層のみからなる構成、多孔質層とフィルム層とを有する構成、また該フィルム層が様々な性状を有することで、様々な構成を有するシルクフィブロイン多孔質体が得られるので、多様な用途に容易に対応することが可能である。

以下に、本発明を実施例によりさらに具体的に説明するが、本発明は、これらの実施例によってなんら限定されるものではない。

実施例１
（シルクフィブロイン水溶液の調製）
シルクフィブロイン水溶液は、シルクフィブロイン粉末（ＫＢセーレン社製、商品名：「フィブロインＩＭ」）を９Ｍ臭化リチウム水溶液に溶解し、遠心分離で不溶物を除去した後、超純水に対して透析を繰り返すことによって得た。得られたシルクフィブロイン水溶液を透析チューブ中で風乾し濃縮した。この濃縮液に添加剤として蟻酸水溶液を添加し、シルクフィブロイン濃度が５質量％、蟻酸濃度が２質量％であるシルクフィブロイン水溶液を調製した。
（シルクフィブロイン多孔質体の製造）
このシルクフィブロイン水溶液をアルミニウム板で作製した型（内側サイズ；８０ｍｍ×４０ｍｍ×４ｍｍ）に流し込み、低温恒温槽（ＥＹＥＬＡ社製、ＮＣＢ−３３００）に入れて凍結保存した。
（凍結条件）
凍結は、予め低温恒温槽を−５℃に冷却しておいて、該低温恒温槽中にシルクフィブロイン水溶液を入れた型を投入して２時間保持し、その後−２０℃に冷却後、そのままの温度で５時間保持した。
凍結した試料を自然解凍で室温に戻してから、型から取り出し、超純水に浸漬し、超純水を１日２回、３日間交換することによって、使用した蟻酸を除去した。

（力学特性の測定方法）
得られたシルクフィブロイン多孔質体の力学的特性を、ＩＮＳＴＲＯＮ社製マイクロテスター５５４８型を用いて評価した。作製したシルクフィブロイン多孔質体から４０ｍｍ×４ｍｍ×４ｍｍの試験片を切り出し、この試験片を２ｍｍ／ｍｉｎの条件で引っ張った際の最大破断強度（引張り強度）と最大ひずみ（伸び）を測定した。また、強度とひずみをグラフ化した時の傾きから弾性率を求めた。その結果を第１表に示す。なお、測定結果は、作製した多孔質体から５点の試験片を作製し、さらに異なる日に作製した多孔質体から５点の試験片を切り出し、それら１０点について測定を行った平均値を示した。

また、得られたシルクフィブロイン多孔質体の構造を、走査型電子顕微鏡を用いて観察した。走査型電子顕微鏡は、Ｐｈｉｌｉｐｓ社製ＸＬ３０−ＦＥＧを使用して、低真空無蒸着モード、加速電圧１０ｋＶで測定を行った。なお、シルクフィブロイン多孔質体の構造は、多孔質体の表面ではなく、多孔質体を切断して露出させた内部を観察した。得られた多孔質体の断面の走査型電子顕微鏡写真を図１に示す。

実施例２〜２３
実施例１において、蟻酸に代えて、それぞれ表１に記載される添加剤を用いたこと以外は実施例１同様にして、シルクフィブロイン多孔質体を得た。また、実施例１０〜１２においては、添加剤の濃度を１質量％とした（表２参照）。得られたシルクフィブロイン多孔質体の力学的特性、保水率、及び吸水速度の評価結果を表１及び表２に示す。また、得られた多孔質体の断面の走査型電子顕微鏡写真を、それぞれ図２〜２３に示す。保水率、及び吸水速度は、前述のようにして測定した値である。

比較例１
市販のポリウレタンスポンジ（住友スリーエム社製）を用い、測定用サンプル（６０ｍｍ×３０ｍｍ×２０ｍｍ）に切り出し、保水率を測定し、その結果を表１に示す。

図１から、実施例１で得られたシルクフィブロイン多孔質体を構成する多孔質層は、比較的薄い壁と数十μｍの細孔を有しており、図２〜２３から、各々実施例２〜２３で得られたシルクフィブロイン多孔質体についても、実施例１で得られた多孔質体と同じ構造を有していることが確認された。
表１の結果から、実施例１〜２３で得られたシルクフィブロイン多孔質体の保水率は９７％〜９９％と高い範囲にあり、比較例１のものと比べて高く、吸収した滲出液が流出しにくく、保持する性能を有することが確認された。また、表２の結果から、実施例１〜２３で得られたシルクフィブロイン多孔質体の吸水速度は２０〜４０（μＬ／ｓ）の範囲にあり、比較例１のものと比べて小さく、滲出液を薬剤徐放担体の外に漏らすことが少なく、滲出液を過剰に吸収するのを防ぎ、接触部の湿潤状態を保つ性能を有することが確認された。

実施例２４〜２６
シルクフィブロイン多孔質体の安全性に関する非臨床試験の一環として、ヒトパッチ試験（皮膚感作性パッチ試験）を行った。このヒトパッチ試験（皮膚感作性パッチ試験）は、シルクフィブロイン多孔質体の人体皮膚に対する、刺激性、あるいはアレルギー性の接触皮膚炎を誘起するかどうかを判断するものである。

実施例２４〜２６で用いるシルクフィブロイン多孔質体は、実施例１において、アルミニウム板で作製した型の内側サイズを２６４ｍｍ×２０５ｍｍ×１ｍｍとし、添加剤を蟻酸から各々アスパラギン酸（実施例１２と同じ）、乳酸（実施例６と同じ）、及びコハク酸（実施例５と同じ）に代えたこと以外は、実施例１と同様にして得られたシルクフィブロイン多孔質体とした。これらのシルクフィブロイン多孔質体シートを試験に供するために、１０ｍｍ×１０ｍｍ×１ｍｍ厚に切断し、各々実施例２５〜２７のパッチとした。

ヒトパッチ試験（皮膚感作性パッチ試験）は、試験開始時において、健康な１８歳から６５歳の日本人女性５０名を対象に行った。前記のサイズのパッチを、２０ｍｍ×２０ｍｍの低刺激性テープで背中に固定し、各々のパッチは最低１５ｍｍ離して固定した。また、比較のために、１０ｍｍ×１０ｍｍの綿の不織布を、２０ｍｍ×２０ｍｍの低刺激性テープで固定した。固定したパッチを、添付から４８時間後に取り除き、皮膚反応を観察した。さらに、同じ場所にパッチを貼付し、４８時間後の観察を行った。合計９回の貼付と観察を繰り返した。また、その２週間後に、同じ場所にパッチを貼って観察することを４８時間置きに４回繰り返した。
その結果、試験途中で、実施例２４及び２５において、二人の被験者が一度ずつ非常に軽度な紅斑を示したが、試験中に紅斑も消失する結果となり、シート状のシルクフィブロイン多孔質体は、非常に低刺激性であり、アレルギー感作性もないことが分かった。
また、実施例２６においては、試験途中で、一人の被験者が一度非常に軽度な紅斑を示したが、試験中に紅斑も消失する結果となり、シート状のシルクフィブロイン多孔質体は、非常に低刺激性であり、アレルギー感作性もないことが分かった。

実施例２７
アルミニウム板で作製した型のサイズを１３０ｍｍ×８０ｍｍ×１２ｍｍ（内側サイズ）としたこと以外、実施例６と同様にして、シルクフィブロイン多孔質体を製造した。
シルクフィブロイン多孔質体の安全性に関する非臨床試験の一環として、皮膚一次刺激性試験及び皮膚感作性試験を行った。なお、本試験は、「申請資料の信頼性の基準」（薬事法施行規則第４３号）を基準として、「医療用具の製造（輸入）承認申請に必要な生物学的安全性試験の基本的考え方について」（２００３年２月１３日付医薬審発第０２１３００１号）と、「生物学的安全性試験の基本的考え方に関する参考資料について」（２００３年３月１９日付医療機器審査Ｎｏ．３６）に従い行った。

（皮膚一次刺激性試験）
前記のようにして得られたシルクフィブロイン多孔質体を５ｍｍ×５ｍｍ×５ｍｍのサイズに切り出して試験片とした（多孔質層のみからなるフィブロイン多孔質体）。
次に、シルクフィブロイン多孔質体の生理食塩液抽出液及びゴマ油液抽出物をウサギに塗布し、局所刺激性（組織障害及び炎症誘起性）の有無について検討した。具体的には、前記の試験片に生理食塩液又はゴマ油を加え、オートクレーブ内で１２０℃、１時間の条件で抽出し、各試験液とした。また、抽出溶媒（生理食塩液又はゴマ油液）のみを同様な条件で処理し、対象液とした。投与は、１溶媒あたり雄ウサギ６匹を用い、１匹につき、試験液及び対象液をそれぞれ背部の無傷皮膚、擦過傷皮膚に０．５ｍＬずつ投与した。
生理食塩水液抽出による試験液では、６例中３例で投与後１時間からごく軽度または軽微な紅斑が認められた。この紅斑は対象液である生理食塩液でもみられ、対象液と同等であった。なお、一次刺激性指数は０．３であり、「無視できる程度の刺激性」と判断された。
ゴマ油液による抽出液では、６例中４例で投与後１時間からごく軽度な紅斑が認められた。この紅斑は対象液であるゴマ油液でもみられ、対象液と同等であった。なお、一次刺激性指数は０．１であり、「無視できる程度の刺激性」と判断された。

（皮膚感作性試験）
Ｍａｘｉｍｉｚａｔｉｏｎ Ｔｅｓｔ法により、本実施例２７により製造されたシルクフィブロイン多孔質体のメタノール抽出液について、雄性モルモット１０匹を用いて、モルモット皮膚に対する感作性の有無を検討した。
皮膚感作性試験前に、適切な抽出溶媒を決めるために、アセトンとメタノールを用いて抽出率を算出した。その結果、アセトンよりもメタノールの方が高い抽出率を示したために、皮膚感作性試験に用いる抽出溶媒をメタノールとした。
本実施例２７により製造されたシルクフィブロイン多孔質体から切り出された前記試験片に、メタノール１０ｍＬを加え、室温で恒温浸とう培養機を用いて抽出した。抽出は２４時間以上行った。対照群として、オリーブ油で感作する陰性対照群、及び１−クロロ−２，４−ジニトロベンゼンで感作する陽性対照群を設けた。各対照群の動物数はそれぞれ５匹とした。
試験液投与群及び陰性対照群とも、抽出液の６．２５、１２．５、２５、５０、及び１００質量％液、ならびにアセトンで惹起した結果、惹起後２４、４８及び７２時間のいずれの観察時期においても皮膚反応は見られなかった。
一方、陽性対照群では、０．１質量％の１−クロロ−２，４−ジニトロベンゼンの惹起により、５例全例で惹起後、２４，４８及び７２時間後に明らかな陽性反応が認められた。
この試験結果から、本実施例２７により製造されたシルクフィブロイン多孔質体には、皮膚感作性を示す物質は存在しないと判断された。
このように、本実施例２７により製造されたシルクフィブロイン多孔質体は、「無視できる程度の皮膚刺激性」と「皮膚感作性を示す物質は存在しない」ことにより、安全性が高く、本発明の薬剤徐放担体として好適に使用できることが確認された。

実施例２８
シルクフィブロイン多孔質体の細胞に対する有害性の無いことを確認するために、あらかじめ平面培養していた線維芽細胞培養ディッシュに実施例２で得られたシルクフィブロイン多孔質体を静置した。シルクフィブロイン多孔質体自身またはシルクフィブロイン多孔質体から溶出する成分が細胞に対して毒性がある場合、シルクフィブロイン多孔質体を中心とした線維芽細胞の脱離、もしくは培養された細胞全体の脱落が生じるはずである。しかしながら、図２４に示されるように、シルクフィブロイン多孔質体の表面自身に細胞毒性を持つことが無く、静置されたシルクフィブロイン多孔質体の周囲にまで細胞が遊走、接近し、阻止円を作る様な現象は認められなかった。なお、図２４中の上部（濃色部分）がシルクフィブロイン多孔質体側である。

毒性の無いことを確認した上で、次にシルクフィブロイン多孔質体の表面に線維芽細胞を播種し、常法に従って細胞を２週間培養した。シルクフィブロイン多孔質体の表面に播種された線維芽細胞は、一定期間後にディッシュまで遊走し、ディッシュ表面が線維芽細胞で培養されたことを確認してから、シルクフィブロイン多孔質体を取り出して組織染色を行った。
先の検討の様に毒性を持たないシルクフィブロイン多孔質体は、細胞親和性に優れ、該シルクフィブロイン多孔質体の細孔中やその表面に細胞が遊走・伸展・増殖することが予想されたが、図２５に示されるように、該シルクフィブロイン多孔質体の表面には線維芽細胞の接着とそれに伴う増殖、多孔質体の孔中への遊走と増殖は認められなかった。図２５中、色の濃い部分が線維芽細胞である。

そこで、シルクフィブロイン多孔質体と同等の空隙率を持つブタコラーゲンから精製して得た止血材料であるゼラチンスポンジ（アステラス製薬（株）製、スポンゼル）に対しても同様の比較実験を行った。その結果、図２６に示されるように、細胞親和性は極めて高く、空隙内に細胞が遊走伸展して、増殖していた。この場合、ゼラチンスポンジは創傷面の止血、欠損部位への充填には用いることはできるが、その細胞接着性から創傷部周囲との癒着を避けることができないことが分かった。

一方、シルクフィブロイン多孔質体は細胞毒性が無く、同時に組織親和性に富んでいるにも拘らず細胞接着性に乏しいために、周囲組織との相互作用を持つこと無く損傷部位の組織修復に伴った周囲健常組織との相互作用（癒着）を防止できる。このことから、シルクフィブロイン多孔質体は優れた癒着防止材としての機能をも果たすことが分かる。なお、ゼラチンフィルムと称される癒着防止フィルムが市販されているが、該ゼラチンフィルムは細胞接着性が高いため、ゼラチンフィルム自身が介在して両側組織を癒着に導いてしまう。

これらの結果を踏まえ、マウス皮下に、本発明で用いられるシルクフィブロイン多孔質体をシルクスポンジディスク化したものを植埋し、異物ならびに癒着性試験について検討した。図２７に示されるように、本発明で用いられるシルクフィブロイン多孔質体は、動物実験において、植埋部位の片側側への接着を認めるが、両側粘膜への接着（癒着）を認めず、優れた癒着防止効果を示した。

さらに、シルクフィブロイン多孔質体を用いた薬剤徐放担体からの薬剤徐放性を検討した。
実施例２９
シルクフィブロイン多孔質体の濃度を３質量％とし、ギ酸を酢酸にかえた以外は、実施例１と同様に作製したシルクフィブロイン多孔質体（直径１ｍｍ、厚さ２ｍｍの円筒形サンプル）をリン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）中に約１時間浸漬し、２５℃の室温で風乾した。その後、該リン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）に５００ｎｇの上皮成長因子（ＥＧＦ）（和光純薬工業（株）製）を含む水溶液をシルクフィブロイン多孔質体に含浸させ飽和させた。なお、シルクフィブロイン多孔質体片に５００ｎｇの成長因子を含むように調整した。該シルクフィブロイン多孔質体を、１２穴培養プレート（日本ベクトンディキンソン（株）製）に、成長因子が含浸したシルクフィブロイン多孔質体を静置し、ダルベッコ改変イーグル（ＤＭＥ）培地（（株）ギブコ製）を１ｍＬ添加し、湿度環境（条件：３７℃、９５％以上、５％ＣＯ₂）で静置した。２４、４８、９６時間後に経時的に培地を採取し、以降測定まで−８０℃で保管した。

上皮成長因子（ＥＧＦ）の測定は以下のようにして行った。
ヒトＥＧＦ測定ＥＩＡキット（Ｒ＆Ｄ（株））を用いた。すなわち、抗ＥＧＦ抗体固定化９６穴マイクロプレートに、得られた培地を０．１ｍＬ添加し、２時間３７℃で反応させた。その後、界面活性剤を含有したリン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）を用いて各穴を５回洗浄した後に、ペルオキシダーゼ標識抗ＥＧＦ二次抗体を添加し、室温で１時間反応させた。同様に５回洗浄した後に、発色試薬を添加し室温で２０分間反応させた。反応停止薬を添加すると共に得られた発色を、マイクロプレートリーダーを用いて４５０ｎｍで測定した。同様に作成した検量線より、徐放量（Ｗ１）を算出した。得られた徐放量（Ｗ１）を用いて下記の式から算出した上皮成長因子（ＥＧＦ）の徐放率の結果を図２８に示した。
（ＥＧＦ徐放率（％））＝（培養液中のＥＧＦ徐放量（Ｗ１））/５００ｎｇ×１００

実施例３０
実施例２９において、予め０．３Ｕ／ｍＬのヘパリン（持田製薬（株）製）のリン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）水溶液中に約１時間浸漬後、２５℃の室温において風乾して使用した以外は、実施例２９と同様にしてシルクフィブロイン多孔質体を作製した。得られたシルクフィブロイン多孔質体について、実施例２９と同様にして評価を行った。その結果を図２８に示す。

実施例３１
ヘパリン濃度を３Ｕ／ｍＬにかえた以外は、実施例３０と同様にしてシルクフィブロイン多孔質体を作製し、評価を行った。その結果を図２８に示す。

実施例３２
ヘパリン濃度を３０Ｕ／ｍＬにかえた以外は、実施例３０と同様にしてシルクフィブロイン多孔質体を作製し、評価を行った。その結果を図２８に示す。
図２８に示されるように、実施例２９〜３２の結果から、予めヘパリンのリン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）水溶液によりシルクフィブロイン多孔質体を表面処理した場合、ヘパリンの濃度に依存して、上皮成長因子（ＥＧＦ）の徐放速度（徐放時間）を制御できたことが確認された。より具体的には、ヘパリンの濃度が高くなるほど、若干頭打ちとなる傾向は見られるものの、徐放速度（徐放時間）は早くなる傾向があることが確認された。また、徐放率は９８％以上であった。

実施例３３
実施例２９において、予め３０Ｕ／ｍＬのヘパリン（持田製薬（株）製）のリン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）水溶液中に約１時間浸漬後、２５℃の室温において風乾して使用した以外は、実施例２９と同様にしてシルクフィブロイン多孔質体を作製した。得られたシルクフィブロイン多孔質体（直径１ｍｍ、厚さ２ｍｍの円筒形サンプル）に、リン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）中に５００ｎｇの血小板由来成長因子（ＰＤＧＦ）（Ｓｉｇｍａ／Ａｌｄｒｉｃｈ Ｊａｐａｎ（株）製）を含む水溶液を含浸させ飽和させた。なお、シルクフィブロイン多孔質体片に５００ｎｇの成長因子を含むように調整した。該シルクフィブロイン多孔質体を、１２穴培養プレート（日本ベクトンディキンソン（株）製）に、成長因子が含浸したフィブロイン多孔質体を静置し、ダルベッコ改変イーグル（ＤＭＥ）培地（（株）ギブコ製）を１ｍＬ添加し、湿度環境（条件：３７℃、９５％以上、５％ＣＯ₂）で静置した。６、１２、４８、９６時間後に経時的に培地を採取し、以降、測定まで−８０℃で保管した。

血小板由来成長因子（ＰＤＧＦ）の測定は以下のようにして行った。
ヒトＰＤＧＦ−ＢＢ測定ＥＩＡキット（Ｒ＆Ｄ（株）製）を用いた。すなわち、抗ＰＤＧＦ抗体固定化９６穴マイクロプレートに、得られた培地を０．１ｍＬ添加し、２時間３７℃で反応させた。その後界面活性剤を含有したリン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）を用いて各穴を５回洗浄した後に、ペルオキシダーゼ標識抗ＰＤＧＦ二次抗体を添加し、室温で１時間反応させた。同様に５回洗浄した後に、発色試薬を添加し室温で２０分間反応させた。反応停止薬を添加すると共に得られた発色を、マイクロプレートリーダーを用いて４５０ｎｍで測定した。同様に作成した検量線より、ＰＤＧＦ徐放量（Ｗ２）を算出した。下記の式から算出した徐放率の結果を、血小板由来成長因子（ＰＤＧＦ）の培養液への徐放率として図２９に示した。
（ＰＤＧＦ徐放率（％））＝（培養液中のＰＤＧＦ徐放量（Ｗ２））/５００ｎｇ×１００
９６時間後までに９０．６％の血小板由来成長因子（ＰＤＧＦ）の徐放率があり、４日間に渡って血小板由来成長因子（ＰＤＧＦ）の放出が認められた。

実施例３４
実施例２９において、予め３Ｕ／ｍＬのヘパリン（持田製薬（株）製）のリン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）水溶液中に約１時間浸漬後、２５℃の室温で風乾して使用した以外は、実施例２９と同様にしてシルクフィブロイン多孔質体を作製した。得られたシルクフィブロイン多孔質体（直径１ｍｍ、厚さ２ｍｍの円筒形サンプル）に、リン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）中に５００ｎｇの塩基性線維芽細胞成長因子（ｂ−ＦＧＦ）（科研製薬（株）製）を含む水溶液を含浸させ飽和させた。なお、シルクフィブロイン多孔質体片に５００ｎｇの成長因子を含むように調整した。該シルクフィブロイン多孔質体を、１２穴培養プレート（日本ベクトンディキンソン（株）製）に、成長因子が含浸したフィブロイン多孔質体を静置し、ダルベッコ改変イーグル（ＤＭＥ）培地（（株）ギブコ製）を１ｍＬ添加し、湿度環境（条件：３７℃、９５％以上、５％ＣＯ₂）で静置した。９６時間後に経時的に培地を採取し、以降、測定まで−８０℃で保管した。

塩基性線維芽細胞成長因子（ｂ−ＦＧＦ）の測定は以下のようにして行った。
ヒトｂ−ＦＧＦ測定ＥＩＡキット（Ｒ＆Ｄ（株）製）を用いた。すなわち、抗ｂ−ＦＧＦ抗体固定化９６穴マイクロプレートに、得られた培地を０．１ｍＬ添加し、２時間３７℃で反応させた。その後界面活性剤を含有したリン酸緩衝食塩水（ＰＢＳ）を用いて各穴を５回洗浄した後に、ペルオキシダーゼ標識抗ｂ−ＦＧＦ二次抗体を添加し、室温で１時間反応させた。同様に５回洗浄した後に、発色試薬を添加し室温で２０分間反応させた。反応停止薬を添加すると共に得られた発色を、マイクロプレートリーダーを用いて４５０ｎｍで測定した。同様に作成した検量線より、ｂ−ＦＧＦ徐放量（Ｗ３）を算出した。下記の式から算出した徐放率の結果を、塩基性線維芽細胞成長因子（ｂ−ＦＧＦ）の培養液への徐放率として図３０に示した。
（ｂ−ＦＧＦ徐放率（％））＝（培養液中のｂ−ＦＧＦ徐放量（Ｗ３））/５００ｎｇ×１００
９６時間後に塩基性線維芽細胞成長因子（ｂ−ＦＧＦ）の徐放量が約７５％になり、高い徐放率を示した。

本発明によれば、薬剤徐放率が高く、薬剤徐放速度を制御でき、強度が高く取扱が容易であり、さらに生体親和性が高いため肌に優しく、かつ保水性が高く、薬剤を効率的に保持しうる薬剤徐放担体を提供することができる。

Claims (7)

1. シルクフィブロイン多孔質体を用いた薬剤徐放担体。
2. 前記シルクフィブロイン多孔質体が、水溶性高分子で処理されたものである請求項１に記載の薬剤徐放担体。
3. 前記水溶性高分子が、多糖類及びポリアミノ酸から選ばれる少なくとも一種を含む材料である請求項２に記載の薬剤徐放担体。
4. 前記多糖類が、ヘパリン及びコンドロイチン硫酸から選ばれる少なくとも一種を含む請求項３に記載の薬剤徐放担体。
5. 担持させる薬剤が、成長因子を含む請求項１〜４のいずれかに記載の薬剤徐放担体。
6. 前記成長因子が、線維芽細胞成長因子（ＦＧＦ）、血小板由来成長因子（ＰＤＧＦ）、及び上皮成長因子（ＥＧＦ）から選ばれる少なくとも一種である請求項５に記載の薬剤徐放担体。
7. 前記多孔質体の引張り強度が、０．１〜４００ｋＰａである請求項１〜６のいずれかに記載の薬剤徐放担体。