JPWO2012144446A1 - 薬剤送達粒子及びその製造方法 - Google Patents
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Abstract
0.1〜20%の界面活性剤を含む溶液中で中空カプシド又は中空粒子と核酸、ペプチド及び/又は低分子化合物を含む薬剤を混合する工程、及び得られた混合液を−5〜50℃で保持して、前記薬剤を中空カプシド又は中空粒子内に導入する工程を含む薬剤送達粒子の製造方法を提供する。
Description
1−1.概要
本発明の第1の実施形態は、薬剤送達粒子である。本発明の薬剤送達粒子は、薬剤とカプシド又は被膜粒子を構成因子として含み、内包する薬剤の宿主細胞内導入能を有する。
本発明の「薬剤送達粒子」は、カプシド(1)又は被膜粒子(2)とそれに包含される薬剤(3)を構成因子として含む。以下、それぞれについて説明をする。
「カプシド(capsid)」は、ウイルス粒子(virion)において、ウイルス核酸又はコアを取り囲む複数の単位タンパク質(カプソメア:capsomere)からなる外皮(coat)又は殻(shell)である。本明細書では、単に「カプシド」と標記した場合には当該構造体を意味する。また、カプシドにおいて、その内部にウイルス核酸、コア又は他の物質を何も含まないカプシドタンパク質のみから構成されたものを、本明細書では「中空カプシド(empty capsid)」と呼ぶ。これに対して、その内部にウイルス核酸やコアを含むものを、「ヌクレオカプシド(nucleocapsid)」と呼ぶ。
本明細書において「被膜粒子」とは、エンベロープを纏ったカプシドをいう。また、本明細書では、被膜粒子において、エンベロープを纏った中空カプシドを「中空粒子」と呼ぶ。以降、本明細書において、カプシド及び被膜粒子をまとめて「カプシド等」とし、中空カプシド及び中空粒子をまとめて「中空カプシド等」とする。
本明細書において「薬剤」とは、本発明の薬剤送達粒子に内包される送達物質であり、具体的には、核酸、ペプチド、低分子化合物、又はその組合せである。薬剤は、標的細胞及び適用した生体に生物学的、物理学的、又は化学的効果をもたらし得る。生物学的効果には、例えば、標的遺伝子発現の増強若しくは抑制等の遺伝子発現制御、タンパク質の機能制御、免疫賦活若しくは免疫抑制等の免疫系制御、又は細胞若しくは生体の生理機能の制御が挙げられる。物理学的又は化学的効果は、例えば、カプシド等又は薬剤の標識による標的細胞の生体内におけるイメージング化(例えば、FITG、GFP、X線、PET、MRI又はCTイメージング化)又は追跡効果が挙げられる。以下、それぞれの薬剤について説明をする。
本明細書において「核酸」は、天然型核酸、化学修飾核酸、人工核酸、核酸類似体及びそれらの組合せを含む。
本明細書におけるペプチドは、オリゴペプチド、ポリペプチドのいずれも含む。オリゴペプチドの具体例としては、ペプチドホルモンやポリペプチド断片が挙げられる。ポリペプチド具体例としては、抗体、転写因子、シグナル伝達因子、酵素が挙げられる。
本明細書において「低分子化合物」とは、分子量5000以下、好ましくは2000以下、より好ましくは1000以下の化合物であって、前記核酸及びペプチド以外の物質が該当する。例えば、ホルモン(例えば、アンドロゲン、エストロゲン、プロゲステロン、アルドステロン、コルチゾール等のステロイドホルモン)、神経伝達物質(例えば、アドレナリン、エピネフリン、ノルアドレナリン、ドーパミン)、ヒストン脱アセチル化酵素阻害剤、及び免疫抑制剤等の様々な医薬化合物が挙げられる。また、特定の低分子化合物と同等の薬理活性を有する低分子化合物の誘導体、又はその塩も含む。
本発明の薬剤送達粒子によれば、ウイルスベクターのようなウイルス由来の遺伝子を含まないことから適用後の安全性が高く、かつ従来カプシド内への導入が困難であったペプチドや低分子化合物を薬剤として包含することができる。また、薬剤送達粒子を構成するカプシド又はエンベロープの血清型に基づく標的細胞特異的送達活性により、特定の細胞内に薬剤を送達することができる。
2−1.概要
本発明の第2の実施形態は、薬剤送達粒子の製造方法である。
本発明の製造方法は、混合工程(1)及び導入工程(2)を含む。さらに、必要に応じて除去工程(3)を含むことができる。以下、各工程について具体的に説明をする。なお、本製造方法において、一連の工程は、汚染(コンタミ)等を防止するために、無菌条件下で行われることが望ましい。
「混合工程」とは、界面活性剤を含む溶液中で中空カプシド等と薬剤を混合する工程である。
「導入工程」とは、前記混合工程後に得られた混合液を所定の温度で保持して、薬剤を中空カプシド等内に導入する工程をいう。
「除去工程」とは、前記導入工程の後に溶液中の界面活性剤を除去する工程である。本工程は、選択工程であり、必要に応じて行えばよい。
本実施形態の混合工程で使用する中空カプシド等は、ウイルスに感染した宿主細胞から直接調製することができる。また、中空カプシドのみ得ることを目的とする場合、組換えカプシドとして調製することもできる。
中空カプシド等は、通常、ウイルスに感染した宿主細胞内でウイルスが増殖し、娘ウイルス粒子が構築される際に、同時に形成される。したがって、中空粒子等は、ウイルスに感染した宿主細胞の抽出液から、又はウイルス粒子の放出若しくは出芽後の培養液から直接調製することができる。この場合、宿主細胞の抽出液又は培養液には中空カプシド等と共にウイルス粒子も混在している。それ故、宿主細胞の抽出液又は培養液からウイルス粒子を分離し、又は失活させて、中空カプシド等を精製することが好ましい。これらは、公知の方法を利用すればよい。例えば、ウイルス粒子の分離と中空カプシド等の調製方法は、塩化セシウムを用いた密度勾配遠心法、及び特開2007-117003に記載のイオン交換膜を用いる方法が挙げられる。
中空カプシド等のみを調製する場合、所望のウイルスのCap遺伝子を含む発現ベクターを、適当な宿主細胞内で発現させてもよい。例えば、AAVの組換え中空カプシド等を必要とするのであれば、所望の血清型AAVのCap遺伝子(具体的には、例えば、1型であれば、配列番号1で示される塩基配列からなるCap遺伝子、2型であれば、配列番号2で示される塩基配列からなるCap遺伝子、5型であれば、配列番号3で示される塩基配列からなるCap遺伝子、6型であれば、配列番号4で示される塩基配列からなるCap遺伝子、7型であれば、配列番号5で示される塩基配列からなるCap遺伝子、8型であれば、配列番号6で示される塩基配列からなるCap遺伝子又は9型であれば、配列番号7で示される塩基配列からなるCap遺伝子)を含むヌクレオチドを適当な発現ベクターに挿入すれば足りる。Cap遺伝子を宿主細胞内で発現させた後に、その宿主細胞を破砕した細胞抽出液から、又はその宿主細胞の培養液から、組換え中空カプシド等を得ることができる。細胞抽出液や培養液からの回収方法は、当該分野で公知の方法により行えばよい。
細胞破砕物からAAV由来中空カプシドを精製する方法は、当該分野で公知の方法に基づいて精製すればよい。例えば、一般的な方法である、セシウム密度勾配超遠心法によって精製することができる。又はイオン交換クロマトグラフィーを含む各種クロマトグラフィーを用いた精製方法が、例えば、特許第3313117、特表2000−510682、特表平11−511326、特表2001−513644、特表2001−514845号、又は米国特許第6,593,123号等に開示されており、それを利用して精製してもよい。さらに、特開2007-117003に開示された、イオン交換膜を用いて中空カプシドとウイルス粒子とを分離、精製する方法を利用してもよい。
本発明の製造方法によれば、中空カプシド等の初期感染活性を喪失させることなく、簡便かつ効率的に薬剤を中空カプシド等に導入させて、薬剤送達粒子を製造することができる。本製造方法で得られた薬剤送達粒子は、使用する中空カプシド等がウイルスの後期感染活性を喪失しているためウイルスの増殖活性がなく安全性が高い。
3−1.概要
本発明の第3の実施形態は、薬物組成物である。本発明の薬物組成物は、第1実施形態の薬剤送達粒子又は第2実施形態の製造方法で得られる薬剤送達粒子の少なくとも一つを有効成分として含むことを特徴とする。
本明細書において「薬物組成物」は、有効成分である薬剤送達粒子に含まれる薬剤の作用によって、それを適用した生物又はその細胞に何らかの生理的作用を付与することを目的とする組成物である。そのような生理作用には、例えば、疾患若しくは病害抵抗性、薬物抵抗性若しくは感受性、生理活性の増強若しくは抑制、及び/又は新規形質が挙げられる。適用する生物が動物、特にヒトであって、有効成分の作用によって疾患の予防、診断、及び/又は治療を目的とする場合、本明細書では、特に「医薬組成物」という。本明細書において「予防」とは疾患又は病害の罹患を防ぐことをいう。「治療」とは、罹患した疾患又は病害及び/又はそれに伴う症状を緩和又は除去することをいう。
本実施形態の薬剤送達粒子は、第1の実施形態の薬剤送達粒子又は第2の実施形態の製造法で得られる薬剤送達粒子である。一の薬物組成物中に含まれる薬剤送達粒子は、異なる二以上のものであってもよい。この場合、薬剤送達粒子は、カプシド等が互いに異なるウイルス由来であってもよいし、及び/又は薬物が互いに異なる種類であってもよい。例えば、標的細胞の異なる薬剤送達粒子を含んでいてもよい。
「担体」とは、薬物組成物の製剤化や生体への適用を容易にし、また薬剤送達粒子に包含される薬剤の効果を維持するために、その作用を阻害又は抑制しない範囲で添加される物質をいう。
本発明の薬物組成物は、有効成分である薬剤送達粒子の作用を阻害又は抑制しない範囲で、薬剤送達粒子に包含される薬剤と同一又は異なる薬理作用を有する他の薬剤を一以上含むことができる。例えば、被験者の場合、治療対象疾患に対して併発する可能性の高い他の疾患が存在する場合、他の疾患に対する治療剤を含んでいてもよい。また、被検体が植物の場合、例えば、殺虫剤、殺菌剤、肥料を含んでいてもよい。
薬物組成物の剤形は、適用方法及び/又は処方条件によって異なる。
本発明の薬物組成物を製剤化するには、原則として当該分野で公知の方法を利用することができる。例えば、Remington’s Pharmaceutical Sciences(Merck Publishing Co.,Easton,Pa.)に記載の方法を用いればよい。
薬物組成物の有効成分である薬剤送達粒子は、ウイルスの標的細胞特異的な感染活性を利用したものである。それ故、薬物組成物の適用方法は、薬物組成物に含まれる薬剤送達粒子がその標的細胞に接触し得る方法であれば、当該分野で公知の単位形態で適用することができる。
(目的)
既存の内在性E1遺伝子領域を含むHEK293細胞に、さらにE1遺伝子領域発現プラスミドを導入した場合、その導入量による、AAVの産生量の変化を検証した。
225cm2フラスコ16個を用いて、フラスコあたり2×107個の293細胞を10%FBS+/DMEM/F12培地で5%CO2下37℃にて培養した。培養48時間後にリン酸カルシウム法にて、AAVのITR(Inverted Terminal Repeat)とLacZ遺伝子を含むAAVベクタープラスミドをフラスコあたり23μg、2型AAVのrep遺伝子及び8型AAVのcap遺伝子をクローニングしたAAVヘルパープラスミドをフラスコあたり23μg、2型アデノウイルスのE2A遺伝子領域、E4orf6遺伝子、VA-RNAをコードする遺伝子をクローニングしたアデノウイルスヘルパープラスミドをフラスコあたり23μg、及びE1遺伝子領域発現プラスミド(pE1Δ55)をフラスコあたり0、2.3、6.9又は23μgで導入し(各n=4)、AAV粒子を細胞内で複製させた。pE1Δ55を0、2.3、6.9μgで用いた場合には、プラスミド内の総量が同一となる様にコントロールプラスミド(pCMV)にて調製した。なお、pE1Δ55は、E1B遺伝子領域よりE1B55k遺伝子のみを欠失したE1遺伝子領域発現プラスミドである。6時間後に10%FBS+/DMEM/F12培地で培地交換を行なった。72時間後に細胞を回収し、細胞ペレットの凍結融解を6回繰り返し、毎回ボルテックス操作にてよく混和した。DNaseI処理にて残存するプラスミドを消化後、Q-PCR法にてAAVのコピー数(g.c.)を定量化した。
図1に結果を示す。この図で示すように、HEK293細胞に、E1遺伝子領域発現プラスミドを導入した場合、導入する発現プラスミドの量依存的に、AAV産生量が向上することが明らかとなった。
(目的)
E1遺伝子領域及びBcl-xL遺伝子を安定的に発現する293細胞を構築し、Bcl-xL遺伝子の発現増強による、AAVの産生量を検証した。
まず、E1遺伝子領域及びBcl-xL遺伝子を安定的に発現する293細胞株を構築した。E1遺伝子領域発現プラスミドpE1Δ55、Bcl-xL遺伝子発現プラスミド、及びネオマイシン発現プラスミドを20:20:1の比率にて293細胞に導入し、ネオマイシン耐性の細胞株のクローンを10個単離して増殖させた。このうち、最も増殖率の高いクローンを選択してライン化し、「HEK293EB細胞株」(本明細書では、しばしば「293EB細胞株」と略す)とした。
結果を図2に示す。この図で示すように、293細胞と比較して、E1遺伝子領域及びBcl-xL遺伝子を安定的に発現する293EB細胞ではAAV産生量が2.1倍に増加することが明らかとなった。
(目的)
細胞破砕物からAAVやAAV由来中空カプシドを精製する場合、従来法では密度勾配超遠心やイオン交換精製で行っていたが、不純物の混入が多く、精製効率が十分とは言い難かった。
1.4×108個の293EB細胞を、225cm2フラスコ28本(又は6320cm2の10段フラスコ1個)を用いて10%FBS+/DMEM/F12培地で5%CO2下37℃にて培養した。培養48時間後に、AAVのITR(Inverted Terminal Repeat)を含むルシフェラーゼ遺伝子を挿入したAAVベクタープラスミド、AAVの2型rep及び9型cap遺伝子をクローニングしたAAVヘルパープラスミド、及び2型アデノウイルスのE2A、E4、VA-RNA遺伝子をクローニングしたアデノウイルスヘルパープラスミドをそれぞれ650μgずつリン酸カルシウム法で293EB細胞に導入し、AAV粒子及びAAV中空カプシドを該細胞内で複製させた。6時間後に10%FBS+/DMEM/F12培地で培地交換を行なった。72時間後に細胞を遠心にて回収し、細胞ペレットを30mLのTBSバッファにて懸濁した。このサンプルの凍結融解を4〜6回繰り返し、毎回ボルテックス操作にて十分に混合した。
表1に結果を示す。この表では、ルシフェラーゼ活性をRLU(relative light unit)で示している。この結果から、いずれの条件でも未処理と比較して、可溶性タンパク質を30%以上多く除去できることが明らかとなった。一方、55℃で20分以上処理した場合には、遺伝子発現が低減することがわかった。各条件を比較すると、50℃では60分以下、55℃では20分よりも短い時間が適当であることが示された。
(目的)
本発明の薬剤送達粒子の製造方法による薬剤送達方法の製造の実施とその細胞内送達能の効果を検証した。
(1)中空カプシドの製造
4×108個の293EB細胞を、225cm2フラスコ28本(又は6320cm2の10段フラスコ1個)を用いて、10%FBS+/DMEM/F12培地で、5%CO2下37℃にて培養した。培養48時間後に、AAVのITRを含むeGFP遺伝子を挿入したAAVベクタープラスミド、9型AAVのrep及びcap遺伝子をクローニングしたAAVヘルパープラスミド、及び2型アデノウイルスのE2A、E4、VA RNA遺伝子をクローニングしたアデノウイルスヘルパープラスミドをそれぞれ650μgずつリン酸カルシウム法にて293EB細胞に導入し、AAV粒子及びAAV中空カプシドを該細胞内で複製させた。72時間後に細胞を遠心にて回収し、細胞ペレットを30mLのTBSバッファにて懸濁した。このサンプルの凍結融解を4〜6回繰り返し、毎回ボルテックス操作にて十分に混合した。
1.50g/mL塩化セシウム溶液上に1.25g/mL塩化セシウム溶液を重層し、さらにこの上に前記(1)で回収した上清を重層した。16℃で25,000×g、3時間超遠心後、塩化セシウム層を遠心チューブ下方から0.5mLずつ回収した。各分画の屈折率(RI:refractive index:)を測定し、RIが1.365〜.368の画分を回収した後、サンプルの約100倍量のMHNバッファ(3.33mM MES、3.33mM HEPES(pH6.5)、3.33mM NaOAc)に対し、30分間透析した。得られたサンプルの約5倍量のMHNバッファでサンプルを希釈した。
イオン交換膜として基材表面にスルホン酸基を保持する陽イオン交換膜ムスタングS(ポール コーポレーション)を使用した。FPLCシステムとして、AKTA explorer 100(GEヘルスケア)を用い、精製操作を行った。MHNバッファでムスタングSアクロディスクを平衡化した後、流速3mL/分でサンプルをムスタングSアクロディスクに中空カプシドを吸着させ、AAV粒子を分離、除去した。10CVのMHNバッファでムスタングSアクロディスクを洗浄し、0〜100%B(2M NaCl)/50CVの濃度勾配条件下にてピークの画分に含まれる中空カプシドを溶出し、画分量1mLで回収した。電子顕微鏡により、中心に黒い部分があるウイルスゲノムが入っていない中空カプシドであることを確認した。
最終濃度0.5%のTriton X-100(Wako)の存在下で、(1)〜(3)で調製した9型AAV(AAV9)の中空カプシド4μgを、最終濃度10μMの3’-カルボキシフルオレセイン標識化モルフォリノオリゴ(Gene Tools社)(以下、「フルオレセイン-PMO」とする)を薬剤として混合した後、PBSにて総量を20μLとした。その後、軽く撹拌して氷上で30分間静置した。
ヒト横紋筋肉種細胞(RD)株(財団法人ヒューマンサイエンス振興財団、ヒューマンサイエンス研究資源バンクより入手;JCRB9072)に(4)で調製したAAV9/PMOを投与して混合し、薬剤の細胞内への取り込みと局在を評価した。具体的には、1.0×104個のRD細胞を7μLのAAV9/PMOと混合し、5% CO2、37℃の培養条件下で培養した。培地は、ペニシリン(100IU/mL)及びストレプトマイシン(100μg/mL)含有DMEM/F12(1:1)培地を用い、血清は終濃度10%とした。また、対照用として、フルオレセイン-PMOのみを1.0×104個のRD細胞と混合したサンプル、及び従来技術のPMO用トランスフェクション試薬エンドポーター(Gene Tools社)を用いて、フルオレセイン-PMOをRD細胞に導入したサンプルを調製した。この際、エンドポーターの投与量は、100μLのウェルの培地あたり0.6μLとし、終濃度は6μMとした。
図3に結果を示す。A〜Cは、投与24時間後の蛍光図である。Aはフルオレセイン-PMOのみで処理したRD細胞を、Bはエンドポーターで処理したRD細胞を、CはPAAV9/PMOで処理したRD細胞を、それぞれ示す。またD及びEは、それぞれエンドポーターで処理したRD細胞とPAAV9/PMOで処理したRD細胞の処理120時間後のRD細胞の形態を示す。
(目的)
実施例4では、中空カプシド等内に導入する薬剤として低分子化合物である3’-カルボキシフルオレセインで標識化した核酸類似体のモルフォリノオリゴを本発明の製造方法によって導入した。そこで、本実施例では、薬剤を他の核酸又はペプチドにした場合であっても、本発明の製造方法によって実施例4と同様に中空カプシド等内に導入でき、かつ製造されたその薬剤送達粒子が細胞内に導入され得ることを検証した。
(1)中空カプシドの製造から分離及び精製
AAV中空カプシドの製造から分離及び精製までは、実施例4に記載の方法と同様であることから、その記載は省略する。
(i)FITC-siRNA
モルフォリノオリゴ以外の他の核酸としてFITC標識化したsiRNA(FITC-siRNA)を用いた。FITC-siRNAは、siRNAコントロール配列のセンス鎖であるsiCont-s(Sigma Genosys)の5’末端にFITC標識したもの(5'-Fluorescein (5,6-FAM) UUCUCCGAACGUCACGUUU-3';配列番号8)と、同コントロール配列のアンチセンス鎖であり、5'-ACGUGACACGUUCGGAGAAUU-3'(配列番号9)で示す塩基配列を有するsiCont-as (Sigma Genosys)からなるsiRNAを使用した。当該FITC-siRNAの合成は、Sigma genosysに合成委託した。
ペプチドとしてAlexa488標識されたウシ血清アルブミン(BSA)(Alexa488-BSA; Molecular Probes, A13100)及び抗ラット Alexa-IgG (Molecular Probes, A21208)を使用した。
AAV中空カプシド7.8μg (0.65mg/mL)を12μLとPBSを4μL混合し、界面活性剤として0.5% Pluronic F-68(PEGのコポリマーである高分子非イオン性界面活性剤)を1μL加えた溶液に、100μMのFITC-siRNAを3μL、50μMのAlexa488-BSAを1μL又は13μMのAlexa-IgGを加え、PBSで20μLにメスアップしたものを、30分間、室温に静置した。その後、PBSで200μLにメスアップした後、70%エタノールで滅菌した限外濾過カラムを用いて30μLまで濃縮し、さらに同一操作を反復して、フリーのsiRNA、BSA又はIgGを除去した。
基本的な方法は、実施例4に記載の方法と同じである。10% Fetal Bovine Serum (CCB, Lot8D0264)及び1% ペニシリン-ストレプトマイシン (Sigma P4458)を添加したDMEM/F12(1:1)培地(Gibco,#11320)で培養したヒト横紋筋肉腫RD細胞株(財団法人ヒューマンサイエンス振興財団、ヒューマンサイエンス研究資源バンクより入手、JCRB9072)を10,000 cells/wellとなるように96wellプレートに播種し、37℃、5% CO2下で一晩培養した。その後、前記濃縮後の30μL溶液のうち1/5量(6μL)を培養液に添加し、さらに同条件で20時間培養した。
図6に結果を示す。この結果から、本発明の製造方法によって、モルフォリノオリゴ以外の酸FITC標識された核酸であるsiRNAであっても、またAlexaで標識されたペプチド(BSA及びIgG)であっても中空カプシド等内に導入でき、さらにその薬剤送達粒子が細胞内に導入され得ることが確認された。特に、FITC-siRNAでは、導入されたFITC-siRNAが核に送達されていることも示された。
(目的)
薬剤を効率的に中空カプシド等内に導入するための界面活性剤の濃度条件について検証した。
薬剤送達粒子の調製の基本的な手順は、前記実施例4(4)に記載の方法に従った。ただし、界面活性剤にはTween20を用い、その濃度は、0、0.5、0.75、1、3及び10%とし、また薬剤にはFITC標識化PMO(以下、「FITC-PMO」とする)を用いた。さらに、AAV中空カプシド、及びTween20を混合後、4℃で30分間静置した。
結果を図4に示す。取り込み率は、濃度依存的に上昇し、10%では半数以上の割合で効果的に取り込みが可能なことが明らかとなった。
(目的)
本発明の薬剤送達粒子に用いる中空カプシド等が標的細胞特異的送達活性を有することを検証した。
Alexa Fluor 568 Protein Labeling Kit(Molecular Probes)を用いて、AAV9由来中空カプシドを蛍光標識した。具体的な標識方法については、添付のプロトコルに従った。続いて、ヒト線維芽細胞(WI-38)株にMyoD発現アデノウイルスベクター(MOI=10)を感染させて筋分化誘導した細胞と、誘導処理しない細胞のそれぞれに、前記蛍光標識したAAV9中空カプシドを投与した。MyoD発現アデノウイルスベクターでの感染から4日後、AAV9中空カプシド投与から16時間後に細胞における蛍光を観察した。なお、AAV9の標的細胞は筋細胞である。
図5に結果を示す。Aは筋分化非誘導処理のWI-38株を、Bは筋分化誘導処理後のWI-38株を、それぞれ示す。未分化のWI-38細胞では、わずかな蛍光しか観察されなかった(図5A)が、筋分化したWI-38細胞では細胞質や核膜周囲に強い蛍光が観察された(図5B)。すなわち、蛍光標識したAAV9中空カプシドは、筋分化細胞に親和性が高く、細胞内では核膜周囲に集積していることが確認された。この結果は、中空カプシド等が標的細胞特異性な送達活性を有していることを示している。
Claims (24)
- 薬剤を含むカプシド又は被膜粒子からなる薬剤送達粒子の製造方法であって、
(a)0.1〜20%の界面活性剤を含む溶液中で中空カプシド又は中空粒子と薬剤を混合する工程、及び
(b)前記混合工程後の混合液を−5〜50℃で保持して、薬剤を中空カプシド又は中空粒子内に導入する工程
を含む前記製造方法。 - 前記導入工程において混合液を5分〜120分保持する、請求項1に記載の製造方法。
- (c)前記導入工程後に溶液中の界面活性剤を除去する工程をさらに含む、請求項1又は2に記載の製造方法。
- 界面活性剤がTriton X-100、Triton X-114、NP-40、Brij-35、Brij-58、Tween-20、Tween-80、オクチル-β-グルコシド、OTG、SDS、CHAPS、CHAPSO、及びPEGとPPGのコポリマーからなる群から選択される一以上の界面活性剤である、請求項1〜3のいずれか一項に記載の製造方法。
- 薬剤が核酸、ペプチド及び/又は低分子化合物である、請求項1〜4のいずれか一項に記載の製造方法。
- 核酸が機能性核酸、mRNA、mRNA断片、及び任意の遺伝子又はその断片を含むベクターからなる群から選択される一以上の核酸である、請求項1〜5のいずれか一項に記載の製造方法。
- 機能性核酸がsiRNA、miRNA、shRNA、核酸アプタマー、アンチセンスDNA、U1アダプター、リボザイム、モレキュラー・ビーコン及びリボスイッチからなる群から選択される一以上の核酸である、請求項6に記載の製造方法。
- ベクターがプラスミド、コスミド及び人工染色体からなる群から選択される、請求項6に記載の製造方法。
- 中空カプシド又は中空粒子が修飾されている、請求項1〜8のいずれか一項に記載の製造方法。
- 中空カプシド又は中空粒子が特定の細胞に対する初期感染活性を有する、請求項1〜9のいずれか一項に記載の製造方法。
- 中空カプシドがアデノウイルス又はアデノ随伴ウイルス由来である、請求項1〜10のいずれか一項に記載の製造方法。
- カプシド又は被膜粒子内に薬剤を含んでなる薬剤送達粒子であって、前記薬剤が該カプシド又は被膜粒子が由来するウイルス自身の遺伝子を含まない外因性の核酸、ペプチド及び/又は低分子化合物である前記薬剤送達粒子。
- 前記外因性の核酸が機能性核酸、mRNA、mRNA断片、及び任意の遺伝子又はその断片を含むベクターからなる群から選択される一以上の核酸である、請求項12に記載の薬剤送達粒子。
- 機能性核酸が、siRNA、miRNA、shRNA、核酸アプタマー、アンチセンスDNA、U1アダプター、リボザイム、モレキュラー・ビーコン及びリボスイッチからなる群から選択される一以上の核酸である、請求項13に記載の薬剤送達粒子。
- ベクターがプラスミド、コスミド及び人工染色体からなる群から選択される、請求項13に記載の薬剤送達粒子。
- カプシド又は被膜粒子が修飾されている、請求項12〜15のいずれか一項に記載の薬剤送達粒子。
- カプシドがアデノウイルス又はアデノ随伴ウイルス由来である、請求項11〜16のいずれか一項に記載の薬剤送達粒子。
- カプシド又は被膜粒子が特定の細胞に対する初期感染活性を有する、請求項11〜17のいずれか一項に記載の薬剤送達粒子。
- 請求項1〜11のいずれか一項に記載の製造方法で得られる薬剤送達粒子及び/又は請求項12〜18のいずれか一項に記載の薬剤送達粒子の少なくとも一つを有効成分として含む薬物組成物。
- 疾患若しくは病害の予防又は治療用である、請求項19に記載の薬物組成物。
- 中空カプシド若しくは被覆粒子又はウイルス粒子を生産した宿主細胞の培養液及び/又は該宿主細胞の抽出液を加熱する工程を含む中空カプシド若しくは被覆粒子又はウイルス粒子の精製方法であって、
加熱温度が45℃以上55℃よりも低い場合には加熱時間が10分〜90分であり、又は
加熱温度が55℃以上60℃以下の場合には加熱時間が3分〜30分である
前記精製方法。 - アデノ随伴ウイルス産生能増強細胞株の製造方法であって、
HEK293細胞株にアデノウイルス由来のE1A遺伝子領域、E1B19遺伝子、E2A遺伝子領域、E4orf6遺伝子及びVA RNAをコードする遺伝子を導入する工程、
を含む前記製造方法。 - 導入した前記全遺伝子を安定的に発現する細胞株を選択する工程をさらに含む、請求項22に記載の製造方法。
- ヒト由来のBcl-xL遺伝子を導入する工程、
導入したBcl-xL遺伝子を安定的に発現する細胞株を選択する工程、
をさらに含む、請求項22又は23に記載の製造方法。
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