JPWO2004065961A1

JPWO2004065961A1 - 酸化度の定量法

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Publication number: JPWO2004065961A1
Application number: JP2005508122A
Authority: JP
Inventors: 喜彦大塚; 順子野崎; 雅一三浦; 明彦由良; 郁之介櫻林
Original assignee: Mitsubishi Kagaku Bio-Clinical Laboratories Inc
Current assignee: Mitsubishi Kagaku Bio-Clinical Laboratories Inc
Priority date: 2003-01-24
Filing date: 2004-01-23
Publication date: 2006-05-18
Anticipated expiration: 2024-01-23
Also published as: JP4384634B2; WO2004065961A1; JP2005106466A

Abstract

酸化測定対象物の測定において新規な観点からのその意義を見出すことにある。つまり、従前の量的判定から質的判定に、測定対象を変更し、その新規な臨床的意義を確立するための手段を提供することにある。詳しくは、本発明は、酸化測定対象物の測定にあたり、測定における組合せを改良し、特にインスリン、レプチン、リポ蛋白質の酸化度を測定するための手段を提供し、その測定により、臨床的意義が確立されたことにより本発明を完成した。

Description

本出願は、参照によりここに援用されるところの、日本特許出願番号２００３−０１６０７４、２００３−０６４８５３、２００３−２９３５８５からの優先権を請求する。

本発明は、生体中の測定対象物（本発明における測定対象物とは、検体中に存在しうる可能性がある物質であり、疾患との何らかの関係が推定される物質を意味し、例えば蛋白質、脂質、糖蛋白質、リポ蛋白質又はこれらの複合体等が挙げられる）の酸化度を特異的に測定することを特徴とする測定方法、該測定法を利用した判定方法、並びに該測定に利用する測定用キットに関する。さらに詳しくは、酸化度の測定対象物を特異的に捕捉する物質が固相に結合されているサンドウィッチ法による測定手段を利用することを特徴とする測定対象物の酸化度の測定法に関する。さらに本発明の測定方法を用いることを特徴とする、生活習慣病の要因である肥満や糖尿病に伴う循環器系疾患の主因疾患（心筋梗塞、狭心症などの冠動脈虚血性疾患、脳梗塞、脳血管痴呆など脳動脈系疾患、糖尿病性腎疾患などの動脈硬化性疾患）のリスク因子の判定及び診断する方法に関するものである。さらには、本発明方法の酸化度の測定キット又は酸化度の測定結果の情報を自然法則を利用した媒体に担持した商業用媒体に関する。

動脈硬化性疾患は狭心症、心筋梗塞、脳梗塞などの主因の疾患である。その原因としては、血清コレステロール特にＬＤＬの増加により動脈硬化内膜下にコレステロール沈着を起こすことによるものと思われている。さらにＳｔｅｉｎｂｅｒｇら（ＳｔｅｉｎｂｅｒｇＤ，ＰａｒｔｈａｓａｒａｔｈｙＳ，ＣａｒｅｗＴＥ，ｅｔａｌ：Ｂｅｙｏｎｄｃｈｏｌｅｓｔｅｒｏｌ．Ｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎｓｏｆｌｏｗ−ｄｅｎｓｉｔｙｌｉｐｏｐｒｏｔｅｉｎｔｈａｔｉｎｃｒｅａｓｅｉｔｓａｔｈｅｒｏｇｅｎｉｃｉｔｙ．：非特許文献１）は酸化ＬＤＬが動脈硬化の成因として重要な役割を果たしているという仮説を提唱し、酸化ＬＤＬが動脈硬化研究において注目されるようになった。
酸化ＬＤＬの種類としては、ホスファチジルコリンが酸化されたもの（特許文献１）、マロンジアルデヒド（ＭＤＡ）（ＫｏｔａｎｉＫ，ＭａｅｋａｗａＭ，ＫａｎｎｏＴ，ｅｔａｌ：Ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎｏｆｉｍｍｎｏｒｅａｃｔｉｖｅｍａｌｏｎａｌｄｅｈｙｄｅ−ｍｏｄｉｆｉｅｄｌｏｗｄｅｎｓｉｔｙｌｉｐｏｐｒｏｔｅｉｎｉｎｈｕｍａｎｓｅｒｕｍ．：非特許文献２）や４−ヒドロキシ−２−ノネナールなどによって酸化修飾されたものがある。
また、生体内には存在するが、酸化変性を受けて機能が変化したと考えられる蛋白質として、インスリンとレプチンが考えられる。インスリンはインスリンレセプターに結合し様々な段階を経て血糖値を下げる働きがある。これらの段階に障害がありインスリン感受性の低下（抵抗性）を示し、２型糖尿病と分類される（非特許文献３）。レプチンは分泌されると摂食を抑制し体脂肪量の増加を抑える働きがある。しかし、肥満者などにおいてその機構が破綻して、血中レプチン濃度が高いにも関わらず作用不全（レプチン抵抗性）が存在する（非特許文献４）。
これらは、分泌する細胞と受容体部分の作用機序に障害がありそれぞれ抵抗性を示すと考えられる。
本法は、その受容体の結合に影響する酸化度合いを測定することによりこれらの抵抗性の指標となりうる。
酸化修飾されたリポ蛋白質等を測定する方法としては、以下の先行技術がある。
特許文献１：酸化のマーカーとしてはホスファチジルコリンを使い、酸化リポ蛋白質に対する抗体を固相に固定化し、これに検体を接触させ酸化リポ蛋白質を測定する方法を開示する。しかし、酸化されたリポ蛋白質量を測定するもので酸化度についての意識はない。
特許文献２：酸化のマーカーとしてＭＤＡを使い、表現上はヒトアポＢ認識抗体を固相化しているが、具体例ではその開示はなく、酸化度を意識した開示は一切ない。
特許文献３：変性リポ蛋白質と、急性相反応物質、血液凝固・線溶系関連蛋白質、又はマクロファージ等の炎症細胞が産生する細菌物質との複合体を、抗４ＨＮＥ抗体を用いて検出する方法を開示するが、酸化度を測定する意義は開示していない。
特許文献４：血液成分と、酸化ＬＤＬを認識する抗体を接触させ、該抗体の試料に対する反応性の測定を開示するが、ＬＤＬの酸化度を意識した開示はない。
特許文献５：抗カルジオリピン抗体、抗リポ蛋白質抗体、又は抗β２−グリコプロテインＩ抗体と、これらの固相化抗体を使用して、血液サンプル中のβ２−グリコプロテインＩと酸化リポ蛋白質との複合体を測定する方法を開示する。そこには酸化リポ蛋白質の酸化度を意識した開示はない。
特許文献６：変性リポ蛋白質の変性部位を露出させる方法を開示する。そこには酸化リポ蛋白質の酸化度を意識した開示はない。
特許文献７：変性又は修飾リポタンパク（ａ）の測定法を示しているが、変性又は修飾を受けたリポタンパク質（ａ）に対する抗体を固相抗体と一次抗体に用いており測定に酸化度を意識した開示はない。
特許文献８：４ＨＮＥモノクローナル抗体の開示をする。
（非特許文献１）Ｎ．Ｅｎｇｌ．Ｊ．Ｍｅｄ．３２０：９１５−９２４，１９８９
（非特許文献２）ＢｉｏｃｈｅｍＢｉｏｐｈｙｓＡｃｔａ１２１５：１１１−１１８，１９９４
（非特許文献３）糖尿病の分類と診断基準に関する委員会報告
（非特許文献４）医学のあゆみ１８４：５５１−５５５，１９９８
（特許文献１）特開平８−３０４３９５
（特許文献２）特開平４−１７３０９６
（特許文献３）特開２００１−３２４５０６
（特許文献４）特開２００２−２１４２３４
（特許文献５）ＷＯ９５／０９３６３
（特許文献６）特開平８−１０１１９５
（特許文献７）特開平９−２９７１３７
（特許文献８）特開平８−１６８３９４

解決しようとする課題は、生体内中の測定対象物の測定において、生体内には存在するが酸化変性がおきてあるいは酸化変性の影響により機能又は性質が変化した測定対象物の新規な手段及びその意義を提供することにある。つまり、酸化変性の影響を受けた測定対象物の測定に際し、従前の量的判定から質的判定に、測定対象を変更し、その新規な臨床的意義を提供することにある。
本発明は、酸化によって影響を受けた測定対象物の測定にあたり、測定における組合せを改良し、特に酸化によって影響を受けた測定対象物の酸化度を測定するための手段を提供し、その測定により、新規な臨床的意義が確立されたことにより本発明を完成した。
本発明は、以下からなる。
１、下記（１）〜（３）の工程を含むことを特徴とする検体中の測定対象物の酸化度を測定する方法：
（１）酸化度の測定対象となる測定対象物を固相に捕捉する工程、
（２）「前記（１）の捕捉された測定対象物」と「脂質の酸化により生成する抗原性物質を認識する抗体」を接触反応させる工程、
（３）前記（２）で反応した抗体量によって、測定対象物当りの該抗原性物質量を定量・判定する工程。
２、測定対象物が、以下のいずれか１から選ばれる前項１の測定方法
（１）蛋白質
（２）脂質
（３）糖蛋白質
（４）リポ蛋白質
（５）前記（１）〜（４）の少なくとも１つを含む複合体
３、検体中の酸化度の測定対象となる測定対象物が、酸化により該測定対象物のレセプターとの結合力に変化をもたらすことを特徴とする前項１の測定方法。
４、検体中の酸化度の測定対象物が、以下のいずれか１から選ばれる前項１の測定方法。
（１）低密度リポ蛋白質（ＬＤＬ）
（２）高密度リポ蛋白質（ＨＤＬ）
（３）超低密度リポ蛋白質（ＶＬＤＬ）
（４）リポ蛋白質（ａ）（Ｌｐ（ａ））
（５）インスリン
（６）レプチン
５、脂質の酸化により生成する抗原性物質が、以下のいずれか１から選ばれる前項１〜４のいずれか１に記載の測定方法。
（１）４−ヒドロキシ−２−ノネナール（４ＨＮＥ）
（２）マロンジアルデヒド（ＭＤＡ）
（３）８−イソプロスタン
（４）酸化リン脂質
（５）酸化トリグリセリド
（６）酸化コレステロール
６、検体中の酸化度の測定対象物であるリポ蛋白質中の蛋白質部分が、以下のいずれか１から選ばれる前項１〜５のいずれか１に記載の測定方法。
（１）アポＢ−１００
（２）アポＡ１
（３）アポ（ａ）
７、以下のいずれか１から選ばれる検体中の酸化度の測定対象物であるリポ蛋白質中の蛋白質部分を認識する抗体を使って測定対象物を捕捉する前項１〜６のいずれか１から選ばれる測定方法。
（１）アポＢ−１００に対する抗体
（２）アポＡ１に対する抗体
（３）アポ（ａ）に対する抗体
８、以下のいずれか１から選ばれる検体中の酸化度の測定対象物である蛋白質を認識する抗体を使って測定対象物を捕捉する前項１〜５のいずれか１から選ばれる測定方法。
（１）インスリンに対する抗体
（２）レプチンに対する抗体
９、下記（１）〜（５）の工程を含むことを特徴とする検体中の測定対象物の酸化度を測定する方法：
（１）アポＢ−１００に対する抗体、アポＡ１に対する抗体、又はアポ（ａ）に対する抗体を固相に結合する工程、
（２）前記（１）の固相化抗体と検体を接触させ、検体中の低密度リポ蛋白質（ＬＤＬ）、高密度リポ蛋白質（ＨＤＬ）、超低密度リポ蛋白質（ＶＬＤＬ）、又はリポ蛋白質（ａ）（Ｌｐ（ａ））を捕捉する工程、
（３）前記（２）で捕捉された各リポ蛋白質に対して、４ＨＮＥ、ＭＤＡ、８−イソプロスタン、酸化リン脂質、酸化トリグリセリド又は酸化コレステロールを認識する抗体を接触反応させる工程、
（４）前記（３）で反応した抗体量により、４ＨＮＥ、ＭＤＡ、８−イソプロスタン、酸化リン脂質、酸化トリグリセリド又は酸化コレステロールを定量する工程、
（５）捕捉された各リポ蛋白質当りの４ＨＮＥ、ＭＤＡ、８−イソプロスタン、酸化リン脂質、酸化トリグリセリド又は酸化コレステロール量を求め、これを測定対象物である各リポ蛋白質の酸化度のマーカーとして判定する工程。
１０、下記（１）〜（５）の工程を含むことを特徴とする検体中の測定対象物の酸化度を測定する方法：
（１）インスリン又はレプチンに対する抗体を固相に結合する工程、
（２）前記（１）の固相化抗体と検体を接触させ、検体中のインスリン又はレプチンを捕捉する工程、
（３）前記（２）で捕捉された各蛋白質に対して、４ＨＮＥ又はＭＤＡを認識する抗体を接触反応させる工程、
（４）前記（３）で反応した抗体量により、４ＨＮＥ又はＭＤＡを定量する工程、
（５）捕捉された各蛋白質当りの４ＨＮＥ又はＭＤＡ量を求め、これを測定対象物である各蛋白質の酸化度のマーカーとして判定する工程。
１１、検体が、ヒトまたは動物の以下のいずれか１から選ばれる前項１〜１０のいずれか１に記載の方法。
（１）血液
（２）尿
（３）血漿
（４）血清
（５）髄液
（６）唾液
（７）汗
（８）涙液
（９）腹水若しくは羊水
（１０）精液
（１１）大便
（１２）組織・細胞の抽出液
（１３）酸化された蛋白質、脂質、糖蛋白質、リポ蛋白質又は／及びそれらの複合体を含む可能性のある生体試料
１２、前項１〜１１の何れか一に記載の測定法による、循環器系疾患危険因子又は生活習慣病危険因子の判定方法。
１３、前項１２に記載の循環器系疾患又は生活習慣病が、以下のいずれか１から選ばれる判定方法。
（１）動脈硬化性疾患
（２）虚血性心疾患
（３）脳血管疾患
（４）高血圧症
（５）高脂血症
（６）糖尿病
（７）肥満
１４、下記（１）及び／又は（２）の要素を含むことを特徴とする、検体中の測定対象物の酸化度の測定キット：
（１）酸化度の測定対象となる測定対象物を捕捉する固相、
（２）脂質の酸化により生成する抗原性物質を認識する抗体。
１５、前項１〜１１のいずれか１の測定方法で得られた、酸化度の測定結果の情報を自然法則を利用した媒体に担持した商業用媒体。

（図１）酸化状態（酸化度）の概念を示す図である。
（図２）４ＨＮＥ−ＬＤＬ系での検量線を示す図である。
（図３）ＬＤＬの酸化度を示す図である。
（図４）マクロファージへの酸化ＬＤＬの取り込みを示す図である。
（図５）酸化ＨＤＬの系を示す図である。
（図６）銅イオン酸化ＬＤＬを抗４ＨＮＥ抗体にて検出した図である。
（図７）銅イオン酸化ＬＤＬを抗ＭＤＡ抗体にて検出した図である。
（図８）臨床検体について、酸化ＬＤＬの透析前後での測定結果である。
（図９）酸化Ｌｐ（ａ）の系を示す図である。
（図１０）銅イオン酸化ＬＤＬを抗８−イソプロスタン抗体にて検出した図である。
（図１１）４ＨＮＥ−インスリン系での検量線を示す図である。
（図１２）インスリンの酸化度を示す図である。
（図１３）酸化インスリンとインスリンレセプターの反応性を示す図である。
（図１４）銅イオン酸化インスリンを抗４ＨＮＥ抗体にて検出した図である。
（図１５）銅イオン酸化インスリンを抗ＭＤＡ抗体にて検出した図である。
（図１６）４ＨＮＥ−レプチン系での検量線を示す図である。
（図１７）レプチンの酸化度を示す図である。
（図１８）銅イオン酸化レプチンを抗４ＨＮＥ抗体にて検出した図である。
（図１９）銅イオン酸化レプチンを抗ＭＤＡ抗体にて検出した図である。
（図２０）酸化レプチンとレプチンレセプターの反応性を示す図である。

本発明は、生体中の測定対象物の酸化度を測定するものであるが、特にリポ蛋白質、蛋白質、脂質、糖蛋白質又はこれらの複合体の酸化度を測定することを特徴とする。リポ蛋白質の実施例においては、特にＬＤＬをもって示したが、特に限定されず、（１）低密度リポ蛋白質（ＬＤＬ）、（２）高密度リポ蛋白質（ＨＤＬ）、（３）超低密度リポ蛋白質（ＶＬＤＬ）、（４）リポ蛋白（ａ）（Ｌｐ（ａ））等のいわゆるリポ蛋白質と呼ばれるものである。このリポ蛋白質を含有する測定検体は、ヒト又は動物由来の検体であれば特に限定されない。例えば、血液、尿、血漿、血清、髄液、唾液、腹水若しくは羊水、汗、涙液、精液、大便、組織・細胞の抽出液など測定対象物が含まれる可能性のある生体試料であればよい。より具体的には、例えば、血液成分とは、患者からの採血、またはヘパリン等の抗凝固剤を添加して採血して得た血液試料を、遠心分離などの常法に基づき成分分離して得られた血清成分ないし血漿である。また、測定法に起因する非特異的吸着を抑制し、より高精度の測定とするために、この血清成分及び血漿をさらに超遠心分離により分離してリポタンパク質画分としてもよい。
また、蛋白質の実施例においては、特にインスリン、レプチンをもって示したが、特に限定されず、本発明の蛋白質の酸化度の測定対象物として、イムノグロブリン、アルブミン、トランスフェリン、α１アンチトリプシンなどが挙げられるがこれらに限定されるものではない。また、インスリン、レプチンを含有する検体は、上述のように測定対象物を含む可能性のある生体試料であればよい。より具体的には、例えば、血液成分とは、患者からの採血、またはヘパリン等の抗凝固剤を添加して採血して得た血液試料を、遠心分離などの常法に基づき成分分離して得られた血清成分ないし血漿である。
また、本発明の測定対象物として、エリスロポエチンやβ２−グリコプロテインＩ等の糖蛋白質が挙げられ、またリン脂質等の脂質も挙げられる。さらに、上記記載したリポ蛋白質のような蛋白質と脂質の複合体や、蛋白質、脂質、糖蛋白質で構成される複合体等も測定対象物となりえる。これらの検体は上述のように測定対象物を含む可能性のある生体試料であればよい。より具体的には、例えば、血液成分とは、患者からの採血、またはヘパリン等の抗凝固剤を添加して採血して得た血液試料を、遠心分離などの常法に基づき成分分離して得られた血清成分ないし血漿である。また自体公知の方法により精製した物でもよい。
本発明で、測定対象物が酸化によりレセプターとの結合力に変化をもたらすということは、測定対象物が酸化により影響をうけ、レセプターとの結合力又は親和性が上昇若しくは減少することを意味する。
本発明で、酸化とは、測定対象物質が酸化変性の影響を直接的又は間接的に受けて、測定対象物質が酸化されている状態をいう。本発明で酸化は脂質の酸化により生成される物質をマーカーとする。そして脂質の酸化により生成する抗原性物質を認識する抗体を使い測定対象物の酸化度を検定する。脂質の酸化により生成する抗原性物質とは、以下のような物質が代表例として例示されるが限定されない。
（１）４−ヒドロキシ−２−ノネナール（４ＨＮＥ）
（２）マロンジアルデヒド（ＭＤＡ）
（３）８−イソプロスタン
（４）酸化リン脂質
（５）酸化トリグリセリド
（６）酸化コレステロール
リポ蛋白質における酸化においては、分子外の細胞膜やリポ蛋白質または、同分子中の脂質部分の酸化に始まり、生成した脂質過酸化物であるＭＤＡ（マロンジアルデヒド）や４ＨＮＥ（４−ヒドロキシ−２−ノネナール）によって蛋白質は修飾される。本発明ではこのＭＤＡや４ＨＮＥを酸化のマーカーとする。ＬＤＬ、ＶＬＤＬ、ＨＤＬ、Ｌｐ（ａ）の各リポ蛋白質を構成する蛋白質分子中のヒスチジンやリジン残基等が酸化修飾されると、例えば酸化リポ蛋白質である４ＨＮＥ修飾ＬＤＬ（４ＨＮＥ酸化ＬＤＬということもある）又はＭＤＡ修飾ＬＤＬ（ＭＤＡ酸化ＬＤＬということもある）が生成する。また、本発明は、リポ蛋白質分子中の脂質部分が直接酸化を受けることも意味する。
また、インスリン、レプチンのような蛋白質における酸化とは、分子外の酸化に始まり、生成した脂質過酸化物であるＭＤＡや４ＨＮＥによって蛋白質を修飾することを意味する。そして、インスリンやレプチンと反応することで、４ＨＮＥ修飾インスリン（４ＨＮＥ酸化インスリンということもある）又はＭＤＡ修飾インスリン（ＭＤＡ酸化インスリンということもある）が生成する。
また、リン脂質のような脂質における酸化とは、分子内の脂肪酸が酸化されペルオキシ酸を生成し、イソプロスタン化リン脂質などが生成することを意味する。
また、エリスロポエチンのような糖蛋白質における酸化とは、上記記載の蛋白質の酸化のように、分子外の酸化に始まり、生成した脂質過酸化物であるＭＤＡや４ＨＮＥによって蛋白質を修飾することを意味する。そして、エリスロポエチンと反応することで、４ＨＮＥ修飾エリスロポエチン（４ＨＮＥ酸化エリスロポエチンということもある）又はＭＤＡ修飾エリスロポエチン（ＭＤＡ酸化エリスロポエチンということもある）が生成する。
脂質の酸化により生成する抗原性物質を認識する抗体は、以上のような脂質の酸化により生成する抗原性物質に対する抗体を意味し、これらは脂質の酸化により生成する抗原性物質を免疫原として通常のポリクローナル抗体或はモノクローナル抗体の手段をもちいることにより調製する。ポリクローナル抗体が所望であれば、脂質の酸化により生成する抗原性物質を用いて、選択された哺乳動物（例えば、マウス、ウサギ、ヤギ、ヒツジなど）を免疫することにより得ることができる。免疫された動物から得られた血清を回収し、公知の方法によって処理する。ポリクローナル抗体を含有する血清が所望以外の抗原に対する抗体を含んでいる場合には、このポリクローナル抗体は免疫アフィニティークロマトグラフィーによって精製することができる。ポリクローナルな抗血清を生産し、加工処理する方法は、当該分野では公知である。例えばＭａｙｅｒおよびＷａｌｋｅｒ（１９８７）：ＩＭＭＵＮＯＣＨＥＭＩＣＡＬＭＥＴＨＯＤＳＩＮＣＥＬＬＡＮＤＭＯＬＥＣＵＬＡＲＢＩＯＬＯＧＹ（ＡｃａｄｅｍｉｃＰｒｅｓｓ，Ｌｏｎｄｏｎ）を参照することができる。
モノクローナル抗体もまた、当業者により容易に生産することができる。ハイブリドーマによってモノクローナル抗体を調製する一般的な方法は公知である。例えばケーラーとミルシュタインの方法（ＫｏｈｌｅｒａｎｄＭｉｌｓｔｅｉｎ，Ｎａｔｕｒｅ２５６，４９５−４９７，１９７５）にしたがって作製することができる。骨髄腫細胞として、マウス、ラット、ヒトなど由来のものが使用され、例えばマウスミエローマＰ３Ｘ６３−Ａｇ８、Ｐ３Ｘ６３−Ａｇ８−Ｕ１、Ｐ３ＮＳ１−Ａｇ４、ＳＰ２／ｏ−Ａｇ１４、Ｐ３Ｘ６３−Ａｇ８・６５３などの株化骨髄腫細胞が例示される。抗体産生細胞と骨髄腫細胞とを融合させてハイブリドーマを作製する方法は、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）を用いる方法、センダイウイルスを用いる方法、電気融合装置を用いる方法などが例示される。融合操作後の細胞は選択培地で培養して、ハイブリドーマの選択を行う。選択培地は、親細胞株を死滅させ、融合細胞のみが増殖しえる培地であり、通常ヒポキサンチン−アミノプテリン−チミジン（ＨＡＴ）培地が使用される。
他の方法として、腫瘍原性ＤＮＡを用いたＢリンパ球の直接形質転換、あるいはＥｐｓｔｅｉｎ−Ｂａｒｒウイルスを用いたトランスフェクションのような他の方法によってもまた調製することができる。例えば、Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．６０：１１５３．Ｓｃｈｒｅｉｅｒ，Ｍ．ら（１９８０）；Ｖｉｒｏｌｏｇｙ１６２：１６７．Ｈａｍｍｅｒｌｉｎｇら（１９８１）；ＢｒｉｔｉｓｈＭｅｄｉｃａｌＪ．２９５：９４６．Ｋｅｎｎｅｔｔら（１９８０）を参照することができる。また、ヒトの疾患の診断・治療に使用可能なように、これのモノクローナル抗体をヒト化することをも含む。
脂質の酸化により生成する抗原性物質を認識する抗体として、実施例においては、特に４ＨＮＥ抗体、ＭＤＡ抗体をもって示したが、特に限定されず、広く脂質の酸化により生成する抗原性物質を認識する抗体として、例えばヘキサナールなどのアルカナール類やアルケナール類などに対する抗体も挙げられる。
本発明における検体とは、ヒト又は馬、犬、猫等の動物から得られた血液、尿、血漿、血清、髄液、唾液、汗、涙液、腹水若しくは羊水、精液、大便、組織・細胞の抽出液、酸化された蛋白質、脂質、糖蛋白質、リポ蛋白質又は／及びそれらの複合体を含む可能性のある生体試料等が挙げられるが特に限定はされない。
本発明は、上記酸化の程度を測定することを発明の特徴とする。程度とは、測定対象物一分子中の酸化物、特に蛋白質一分子中の酸化物又はリポ蛋白質一分子中の酸化物による変性修飾の多さを意味する。従来の概念では、血中に含まれる酸化蛋白質又は酸化リポ蛋白質の量が多いとき、その一分子あたりの酸化変性修飾の割合が低くとも酸化蛋白質又は酸化リポ蛋白質量は高値と示された。本発明の新規な概念は、リポ蛋白質での例である図１に示すように血中の酸化リポ蛋白質の量は少なくとも、酸化修飾割合の高いリポ蛋白質を酸化状態が高値と示される。つまり、本発明で、例えば酸化ＬＤＬの酸化度を測定するとは、アポＢあたりの酸化修飾割合を測定することに臨床的意義を提供するものである。
本発明において測定対象物、特に蛋白質、リポ蛋白質、糖蛋白質、脂質又はこれらの複合体の酸化度を測定するために、好適な手段は、ＲＩＡ法、ＥＬＩＳＡ法、イムノブロット法等が例示されるが、特にサンドイッチＥＬＩＳＡ法が好適である。そして、本発明は、測定対象物を固相に捕捉する方法として、固相に測定対象物例えばリポ蛋白質の蛋白質成分、例えばＬＤＬであればアポＢ、ＨＤＬであればアポＡ１、Ｌｐ（ａ）であればアポ（ａ）等に対する抗体を固定化することである。また、インスリンの場合では抗インスリン抗体、レプチンの場合では抗レプチン抗体を固定化することである。各抗体は自体公知であり、ポリクローナル抗体及びモノクローナル抗体が公知の手法で調製、利用される。抗体の抗原認識部位は特に制限されないが、抗体が検体の蛋白質と接触する際に、相互認識が可能な部位であれば良い。好適な抗体として、本発明ではＬＤＬの場合、市販のａｎｔｉ−ＨｕｍａｎＡｐｏｌｉｐｏｐｒｏｔｅｉｎＢａｎｔｉｂｏｄｙ（ＡｍｅｒｉｃａｎＲｅｓｅａｒｃｈＰｒｏｄｕｃｔｓ社）を使用した。また、インスリン又はレプチンの場合も、市販の抗体を使用し、インスリンはａｎｔｉ−Ｉｎｓｕｌｉｎ（医学生物学研究所社）を、レプチンはａｎｔｉ−ＨｕｍａｎＬｅｐｔｉｎａｎｔｉｂｏｄｙ（Ｒ＆ＤＳＹＳＴＥＭＳ社）を使用した。
また、上記示した測定対象物の固相に捕捉するその他の方法としては、例えば、各種受容体タンパク質／そのリガンド等、ビオチン結合タンパク質／アビジンおよびストレプトアビジン、群特異的吸着体／そのリガンド等、マルトース結合タンパク質／マルトース、Ｇタンパク質／グアニンヌクレオチド、ポリヒスチジンペプチド／ニッケルあるいはコバルト等の金属イオン、ＤＮＡ結合タンパク質／ＤＮＡ、あるいはＡＴＰ結合タンパク質／ＡＴＰ等が挙げられる。しかし、測定対象物が固相に捕捉できれば特に限定されない。また、これらの捕捉方法は、自体公知の方法によってなし得ることができる。
（抗体等の固定化条件）
測定対象物質の捕捉のために抗体を使用する場合、抗体は上記抗体調製法と同様に処理可能である。抗体作製動物としてマウス、モルモット、ウサギ、ヒツジ、ヤギについての検討をおこなったが、アポＢ−１００に対する抗体はヤギ、インスリンに対する抗体はモルモット、レプチンに対する抗体はマウスが最適であった。さらに、固相への抗体等の固定化法は、公知手法で検討したが、炭酸緩衝液を用いた方法が最適であった。その固定化条件は、例えばｐＨ９．６に調整された緩衝液に０．２５〜１０μｇ／ｍｌの終濃度に抗体を添加し、これをマイクロプレートに適量加え、１〜１０℃、特に好ましくは２〜６℃で、１０〜３０時間、特に好ましくは１５〜２５時間静置し固定化させる。固相は、当該公知のプレートやビーズを用いうる。また、その材料は、プラスチック等が検討されたが、Ｎｕｎｃ−Ｉｍｍｕｎｏ^ＴＭＭｏｄｕｌｅｓ（Ｎｕｎｃ社）が好適であった。固相への抗体の固定化量は、２．６〜１０６ｎｇ／ｍｍ^２、より好ましくは２１〜１０６ｎｇ／ｍｍ^２である。または、測定対象となる蛋白質又はリポ蛋白質、糖蛋白質、脂質又はこれらの複合体を特異的に認識する抗体等が固相されている既存のプレートでも良い。
（ブロッキング緩衝液）
非特異反応をおさえるためのブロッキング緩衝液は、たとえばｐＨ７．４のリン酸緩衝液（ＰＢＳ）に種々の蛋白質を加えることでおこなう。蛋白質としては、牛血清アルブミン、オヴァアルブミン、スキムミルクなどがあるが、特に好ましくは牛血清アルブミンであり、その添加量は緩衝液濃度として０．５〜５％Ｗ／Ｖ、より好ましくは０．５〜２％Ｗ／Ｖである。
本発明の実施例では、牛血清アルブミンと同等の結果が得られたので、ブロックエース（大日本製薬株式会社）溶液を２５％で利用した。ブロッキング剤による固相の処理は、抗体の固定化後に行う。固相が十分に浸漬される状態であれば特に制限はない。処理温度は、２５〜４５℃、特に好ましくは３０〜４０℃で、処理時間は１〜６時間、特に好ましくは２〜５時間である。ブロッキング処理後は、界面活性剤含有ＰＢＳ溶液等の洗浄用緩衝液で十分に洗浄する。
（“固相−測定対象物を特異的に認識する抗体等−検体”の反応）
測定にあたって、検体である血漿、血清およびリポタンパク質画分は、至適な濃度に調整する。本発明にあっては、あらかじめ非特異反応を抑える為にγグロブリンを０．０１〜２．５％Ｗ／Ｖ、特に好ましくは０．５〜２．５％Ｗ／Ｖを含んだリン酸緩衝液（ＰＢＳ）、トリス塩酸緩衝液等を添加する。所望により、牛血清アルブミンを添加（緩衝液中に約０．５〜５％Ｗ／Ｖ、特に好ましくは約０．５〜２％Ｗ／Ｖ）することも可能である。さらに所望により、界面活性剤としてトリトンＸ−１００、ＮＰ−４０、Ｔｗｅｅｎ２０などの添加が可能であり、特に好ましくはＴｗｅｅｎ２０が使用される。その添加量は緩衝液濃度として０．０２〜２．５％Ｗ／Ｖ、特に好ましくは０．０５〜１％Ｗ／Ｖである。また、レプチンにあっては、あらかじめ非特異反応を抑える為にイムノグロブリンを０．０１〜２．５％Ｗ／Ｖ、特に好ましくは０．０１〜０．０５％Ｗ／Ｖを含んだリン酸緩衝液（ＰＢＳ）、トリス塩酸緩衝液等を添加する。所望により、牛血清アルブミンを添加（緩衝液中に約０．５〜５％Ｗ／Ｖ、特に好ましくは約０．５〜２％Ｗ／Ｖ）することも可能である。
次に検体を添加するが、検体はそのまま或いは数倍希釈で十分である。これは、従来法の希釈倍率（一般的には約１０００倍）に比較して大きな差異である。その理由は、従来法は酸化修飾物の抗体が固相に固定化された系で、酸化蛋白質又は酸化リポ蛋白質が固相抗体に捕捉されることが目的であり、非特異反応が生じない程度に希釈する必要がある。本発明は酸化度合いの程度を知ることが目的であり、一定量の抗体等の固相化担体に一定量の蛋白質又はリポ蛋白質等の測定対象物が捕捉されることが重要である。ゆえに微量の酸化蛋白質又は酸化リポ蛋白質等の測定対象物を検出するために、希釈倍率をできるだけ小さくすることで微量の酸化蛋白質又は酸化リポ蛋白質等の測定対象物の捕捉を可能とする。希釈媒体としては、特に限定されるものではないが、例えば、リン酸緩衝液（ＰＢＳ）、トリス塩酸緩衝液等を用いることができる。所望により、牛血清アルブミンを添加（緩衝液中に約０．５〜５％Ｗ／Ｖ、特に好ましくは約０．５〜２％Ｗ／Ｖ）することも可能である。さらに所望により、界面活性剤としてトリトンＸ−１００、ＮＰ−４０、Ｔｗｅｅｎ２０などの添加が可能であり、特に好ましくはＴｗｅｅｎ２０が使用される。その添加量は緩衝液濃度として０．０２〜２．５％Ｗ／Ｖ、特に好ましくは０．０５〜１％Ｗ／Ｖである。また、インスリン、レプチン等の測定対象物の検体もそのまま或いは数倍希釈で十分である。希釈媒体としては、特に限定されるものではないが、例えば、リン酸緩衝液（ＰＢＳ）、トリス塩酸緩衝液等を用いることができる。所望により、牛血清アルブミンを添加（緩衝液中に約０．５〜５％Ｗ／Ｖ、特に好ましくは約０．５〜２％Ｗ／Ｖ）することも可能である。
抗体等の固定化固相と検体の接触は、自体公知の方法に準ずれば十分である。例えば、４〜３０℃、より好ましくは約２５℃の下、１〜２４時間、より好ましくは１〜３時間程度振とう反応させることが望ましい。反応完了後は所望により界面活性剤含有ＰＢＳ溶液等の洗浄用緩衝液で十分に洗浄する。かくして、固相−測定対象物（蛋白質又はリポ蛋白質等）に対する抗体等−検体の反応が完了する。この反応により、検体中の測定対象物量（蛋白質量、リポ蛋白質量、脂質量、糖蛋白質量、又はこれらの複合体量）が特定される。
（脂質の酸化物に対する抗体）
本発明では、ついでサンドイッチ法により、検体での検出を行う。つまり、上記で捕捉された蛋白質又はリポ蛋白質等の測定対象物について、脂質の酸化物例えばＭＤＡ（マロンジアルデヒド）や４ＨＮＥ（４−ヒドロキ−２−ノネナール）によって修飾された酸化修飾物量を測定するのである。脂質の酸化物に対する抗体は、既に市販されている、或いは公知の各酸化物に対する抗体、或は自体公知の方法で調製された抗体を使用する。たとえば、抗４ＨＮＥ抗体と抗ＭＤＡ抗体は日本油脂株式会社から販売されている。抗体は、各処方に応じて１００〜５０，０００倍、好ましくは１００〜２０，０００倍に希釈され、適量（１００μｌ）が各プレートに添加される。反応時間は３０分〜２時間、好ましくは１時間程度である。反応完了後、洗浄し、”固相−測定対象物（蛋白質若しくはリポ蛋白質等）抗体等−検体中の測定対象物（蛋白質若しくはリポ蛋白質等）−脂質の酸化物に対する抗体”を得る。これにより、検体中の測定対象物（蛋白質又はリポ蛋白質等）当りの酸化度を検定するための反応系が完成する。
ついで、この反応産物を数値化するために、自体公知の標識化を行う。標識には酵素、ＲＩ、蛍光等が利用でき、特に限定されない。酵素としては、アルカリホスファターゼ標識抗マウスＩｇＧ抗体（ＢＩＯＳＯＵＲＣＥ社）、ペルオキシダーゼ標識抗マウスＩｇＧ抗体（ＢＩＯＳＯＵＲＣＥ社）などが利用できる。推奨処方により、反応を完成させた後、各酵素に応じた基質を添加し、その反応量から酸化測定対象物（酸化蛋白質又は酸化リポ蛋白質等）の酸化量が特定される。かくして、検体中の測定対象物（蛋白質又はリポ蛋白質等）についてその酸化量が特定されうることから、測定対象物（蛋白質又はリポ蛋白質等）当たりの酸化度が判定可能となる。
図２は、合成した４ＨＮＥ修飾リポ蛋白質について修飾量に応じた検量線を示しており、図１１は、合成した４ＨＮＥ修飾インスリンについて修飾量に応じた検量線を示しており、図１６は、合成した４ＨＮＥ修飾レプチンについて修飾量に応じた検量線を示している。上記検量線は酸化度の同定が可能であることを示す。同様にＭＤＡ修飾リポ蛋白質でも同様の検量線が可能である。

以下で、本発明を実施例を用いて説明するが本発明はこれらに限定されるものではない。

（リポ蛋白質標準溶液の調製）
健常者より採血を行い、血清から超遠心法にて得られたＬＤＬ画分を用いて標準溶液の作製を行った。
超遠心分離用試験管（１〜４ｍｌ容）に、血清３ｍｌを入れ、０．２７ｍｍｏｌ／ｌのＥＤＴＡ−２Ｎａを含む０．１９６ｍｏｌ／ｌのＮａＣｌ（比重１．００６ｇ／ｍｌ）を１ｍｌ重層した。試験管を、１５０，０００Ｇにて１５℃で６時間遠心し、白いクリーム状（ＶＬＤＬ）の上層１ｍｌを捨て、下層３ｍｌを回収した。これに、臭化ナトリウム（５０％Ｗ／Ｖ）に０．２７ｍｍｏｌ／ｌのＥＤＴＡ−２Ｎａを含む０．１９６ｍｏｌ／ｌのＮａＣｌ（比重１．００６ｇ／ｍｌ）比重液を加え比重１．２３４ｇ／ｍｌに調整した溶液を１ｍｌ加えて、転倒混和し、全体を比重１．０６３ｇ／ｍｌとした。これを、１５０，０００Ｇによって、１５℃で１４時間遠心分離を行った。上層の橙色バンド（ＬＤＬ）のみ（５００〜１０００μｌ）を注意深く回収し、０．３ｍｍｏｌ／ｌのＥＤＴＡ−２Ｎａを含む０．１５ｍｏｌ／ｌのＮａＣｌ溶液によって４℃、１２〜１８時間透析した。透析終了後、リポ蛋白質量の測定を行った。
リポ蛋白質量１５０μｇに対して、１００ｎｍｏｌの４ＨＮＥを添加し３７℃にて２時間反応させた（酸化修飾処理）。反応完了後、上記超遠心分離後と同様に、０．３ｍｍｏｌ／ｌのＥＤＴＡ−２Ｎａを含む０．１５ｍｏｌ／ｌのＮａＣｌ溶液によって４℃、１２〜１８時間透析した。透析終了後、これを標準溶液とした。

（測定系の構築）
１）（固相化抗ヒトアポＢ抗体の調製）
５０ｍＭ炭酸塩緩衝液（ｐＨ９．６）によって１０μｇ／ｍｌ濃度に希釈した抗ヒトアポＢ抗体（ＡｍｅｒｉｃａｎＲｅｓｅａｒｃｈＰｒｏｄｕｃｔｓ社）を、ＥＬＩＳＡマイクロプレートに１００μｌずつ加え、４℃で一晩放置し吸着させた。
２）（洗浄）
０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０含有ＰＢＳ溶液（以下、洗浄用緩衝液）で３回洗浄を行った。
３）（ブロッキング処理）
２５％ブロックエース溶液（大日本製薬株式会社）を、マイクロプレートに３００μｌずつ加え、３７℃で４時間ブロッキングを行い、その後、洗浄用緩衝液によって３回洗浄を行った。
４）（検体と固相抗体の接触）
２．５％γグロブリン、０．１％Ｔｗｅｅｎ２０および１％牛血清アルブミン含有ＰＢＳ溶液５０μｌをマイクロプレートに入れ、標準溶液もしくは検体試料（血清）を５０μｌずつ加えた。これを室温で２時間振とう反応させ、その後、洗浄用緩衝液で３回洗浄を行った。
５）（酸化物質抗体による修飾）
抗４ＨＮＥモノクローナル抗体（日本油脂株式会社）を、１０％ブロックエース溶液（以下、抗体用希釈溶液）によって２０，０００倍に希釈した。これを、マイクロプレートに１００μｌずつ加え、室温で１時間振とう反応させた。その後、洗浄用緩衝液で３回洗浄を行った。
６）（標識化）
ＤＡＫＯＥｎＶｉｓｉｏｎ＋^ＴＭｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ，Ｍｏｕｓｅ（ＤＡＫＯ社）を、抗体用希釈溶液によって５０倍に希釈した。これを、マイクロプレートに１００μｌずつ加え、室温で１時間振とう反応させた。その後、洗浄用緩衝液で３回洗浄を行った。
７）（測定）
ＴＭＢＭｉｃｒｏｗｅｌｌＰｅｒｏｘｉｄａｓｅＳｕｂｓｔｒａｔｅ（ＫＰＬ社）を、マイクロプレートに１００μｌずつ加えて発色させ、１０〜３０分後に１Ｍリン酸１００μｌを加えて反応を停止させた。そして、４５０ｎｍによって吸光度を測定した。
８）（検量線）
以上の系を使い、合成した４ＨＮＥ酸化リポ蛋白質を標準品とした典型的な検量線を得た（図２）。図２は横軸にリポ蛋白質（ＬＤＬ）の４ＨＮＥ酸化量（図中、４ＨＮＥ−ＬＤＬと表示）、縦軸に４５０ｎｍの吸光度を示した。
これにより、リポ蛋白質の酸化度の測定が可能であることが確認できた。

（アポＢあたりのＬＤＬ酸化状態の検定）
リポ蛋白質（ＬＤＬ）の蛋白質量５μｇ、１０μｇ、５０μｇ、１５０μｇに対して、２．５、５、１０ｎｍｏｌの４ＨＮＥを添加し、３７℃にて２時間反応させた。反応後、前記超遠心分離後と同様に、０．３ｍｍｏｌ／ｌのＥＤＴＡ−２Ｎａを含む０．１５ｍｏｌ／ｌのＮａＣｌ溶液によって、４℃、１２〜１８時間透析した。これを実施例２に基づいた方法によって測定を行ったところ、リポ蛋白質当たりの酸化修飾が、添加４ＨＮＥ濃度に応じて変化することが示された。同一４ＨＮＥ濃度で比較すると、ＬＤＬが少なくなるにつれ、より高いＬＤＬの酸化が確認され、本法が、酸化度を測定する効率的な方法であることを確認した。図３は、横軸にリポ蛋白質量（１５０μｇ、５０μｇ、１０μｇ、５μｇ）縦軸に４５０ｎｍの吸光度（酸化状態）を示した。結果は、ＬＤＬあたりの酸化度を吸光度で示している。各４ＨＮＥ量（図の下から２．５ｎｍｏｌ、５ｎｍｏｌ、１０ｎｍｏｌ）において酸化度の変異が確認された。

（酸化度の高いＬＤＬのマクロファージへの取り込み）
ヒト健常者のマクロファージを使い４ＨＮＥ修飾による酸化度の違いによる酸化ＬＤＬのマクロファージへの取り込み量を検定した（図４）。
実験は、実施例３に準じてＬＤＬ（１５０μｇ）を４ＨＮＥ（無添加、１０ｎｍｏｌ、１００ｎｍｏｌ）で酸化修飾した。この酸化ＬＤＬ（１０μｌ）を用い、マクロファージ（１ｘ１０^６ｃｅｌｌｓ／ｄｉｓｈ）と接触させ、２時間培養（Ｍａｃｒｏｐｈａｇｅ−ＳＦＭＭｅｄｉｕｍ培地、培養条件３７℃、５％ＣＯ_２）した。培養後、マクロファージへの酸化ＬＤＬの取り込み量をＦＩＴＣ標識抗アポＢ抗体によって検定した。標識物質のみ添加（図中、ＦＩＴＣ−ＢＫと表示）、４ＨＮＥ無添加ＬＤＬ（図中、ＢＫと表示）、１０ｎｍｏｌの４ＨＮＥによる酸化ＬＤＬ（図中、１０ｎｍｏｌ：４ＨＮＥ−ＬＤＬと表示）、１００ｎｍｏｌの４ＨＮＥによる酸化ＬＤＬ（図中、１００ｎｍｏｌ：４ＨＮＥ−ＬＤＬと表示）の結果、１００ｎｍｏｌで酸化したＬＤＬはあきらかに１０ｎｍｏｌで酸化したものよりマクロファージ内への取り込みが優位であった。また、１０ｎｍｏｌで酸化したＬＤＬは、ブランク（無添加）に対してマクロファージ内への取り込みが優位であった。この結果、ＬＤＬの酸化度合いによって、マクロファージへのＬＤＬの取り込みが促進され、結果泡沫細胞の形成を促していくこととなり循環器系疾患への大きな関与が明確となった。かくして、本発明の酸化リポ蛋白質の酸化度を測定することの新規な意義が証明された。

（抗体を変更させたリポ蛋白質の酸化度の測定）
図５は、酸化ＨＤＬについて、実施例２の系での測定結果を示す。固相には、抗アポＡ１抗体が固定化され、検体（血清）との接触後、抗４ＨＮＥ抗体でサンドイッチさせ、標識化後吸光度を測定した結果である。横軸は、ｓｅｒｕｍ（血清）のみ、１０ｎｍｏｌの４ＨＮＥによる酸化修飾血清（図中、１０ｎｍｏｌ４ＨＮＥ−ｓｅｒｕｍ）、１００ｎｍｏｌの４ＨＮＥによる酸化修飾血清（図中、１００ｎｍｏｌ４ＨＮＥ−ｓｅｒｕｍ）、縦軸は４５０ｎｍの吸光度である。酸化方法は、リポ蛋白質（ＬＤＬ）の代わりに血清を用いる以外は実施例３に準じた。この結果、ＨＤＬについても、本発明の系を使い、その酸化度が判定できることを示した。
図６は、ＬＤＬを銅イオン共存下で酸化処理し、実施例２の系で測定した結果を示す。銅イオンは２５μＭ添加し、反応条件は、弱い酸化状態として４℃と強い酸化状態として３７℃で、７２時間処理した。その後の透析は、実施例３に準じた。図の横軸は、ＬＤＬのみ（ＬＤＬ−ＢＫ）、４℃で処理（ＬＤＬ−Ｃｕ−４℃）及び３７℃で処理（ＬＤＬ−Ｃｕ−３７℃）を表し、縦軸は４５０ｎｍの吸光度を表す。この結果、銅酸化による酸化状態の変化においても酸化度合いを判定できることを示した。
図７は、上記で用いた銅酸化サンプルを用い、酸化修飾のマーカーをＭＤＡにしておこなったものである。実験法は、抗４ＮＨＥ抗体の代わりに抗ＭＤＡ抗体を用いる以外は、実施例２に準じた。図の横軸は、ＬＤＬのみ（ＬＤＬ−ＢＫ）、４℃で処理（ＬＤＬ−Ｃｕ−４℃）及び３７℃で処理（ＬＤＬ−Ｃｕ−３７℃）を表し、縦軸は４５０ｎｍ吸光度を表す。この結果、ＭＤＡが酸化修飾した場合も、その酸化度を本発明により、検定できることを確認した。

（臨床例）
実施例２の測定法により測定した酸化ＬＤＬ値（酸化度）の結果を図８に示した。患者の透析前後のＬＤＬ酸化度は測定の結果、透析後に酸化度が上昇していることが確認された。縦軸の酸化リポ蛋白質（Ｕ／ｍｇ）は、検量線より得られた各患者の酸化リポ蛋白質濃度（Ｕ／ｍｌ）を各アポＢ濃度（ｍｇ／ｄｌ）で補正して得られた値である。

（抗体を変更させたリポ蛋白質の酸化度の測定）
図９は、酸化Ｌｐ（ａ）について、実施例２の系に準じた方法での測定結果を示す。固相には、抗アポ（ａ）抗体が固定化され、検体（血清）との接触後、抗４ＨＮＥ抗体でサンドイッチさせ、標識化後吸光度を測定した結果である。横軸は、ｓｅｒｕｍ（血清）のみ、１０ｎｍｏｌの４ＨＮＥによる酸化修飾血清（図中、１０ｎｍｏｌ４ＨＮＥ−ｓｅｒｕｍ）、１００ｎｍｏｌの４ＨＮＥによる酸化修飾血清（図中、１００ｎｍｏｌ４ＨＮＥ−ｓｅｒｕｍ）、２００ｎｍｏｌの４ＨＮＥによる酸化修飾血清（図中、２００ｎｍｏｌ４ＨＮＥ−ｓｅｒｕｍ）、縦軸は４５０ｎｍの吸光度である。酸化方法は、リポ蛋白質（ＬＤＬ）の代わりに血清を用いる以外は実施例３に準じた。この結果、Ｌｐ（ａ）についても、本発明に係る測定法を使い、その酸化度が判定できることを示した。

（抗体を変更させたリポ蛋白質の酸化度の測定）
図１０は、ＬＤＬを銅イオン共存下で酸化処理し、酸化修飾のマーカーを８−イソプロスタンにしておこなったものである。実験法は、抗４ＮＨＥ抗体の代わりに抗８−イソプロスタン抗体を用いる以外は実施例２の系に準じておこなったものである。銅イオンは５０μＭ添加し、反応条件は、弱い酸化状態として４℃と強い酸化状態として３７℃で、４８時間処理した。その後の透析は、実施例３に準じた。図の横軸は、ＬＤＬのみ（ＬＤＬ−ＢＫ）、４℃で処理（ＬＤＬ−Ｃｕ−４℃）及び３７℃で処理（ＬＤＬ−Ｃｕ−３７℃）を表し、縦軸は４５０ｎｍの吸光度を表す。この結果、８−イソプロスタンが酸化変性修飾した場合も、その酸化度を本発明により、検定できることを確認した。

（インスリン標準溶液の調製）
インスリン（ＳＩＧＭＡ社）質量１００μｇに対して、１、５、１０、２０、５０、１００ｎｍｏｌの４ＨＮＥを添加し３７℃にて２時間反応させた（酸化修飾処理）。反応完了後、ＰＢＳ溶液によって４℃、１２〜１８時間透析した。透析終了後、これを標準溶液とした。

（酸化インスリン測定系の構築）
１）（検体と固相抗体の接触）
抗インスリン抗体が結合しているマイクロプレート（医学生物学研究所社）に標準溶液もしくは検体試料を１００μｌずつ加えた。これを室温で２時間振とう反応させ、その後、洗浄用緩衝液で６回洗浄を行った。
２）（酸化物質抗体による修飾）
抗４ＨＮＥモノクローナル抗体（日本油脂株式会社）をビオチン標識し、この抗体を抗体用希釈溶液によって５，０００倍に希釈した。これを、マイクロプレートに１００μｌずつ加え、室温で９０分振とう反応させた。その後、洗浄用緩衝液で６回洗浄を行った。
３）（標識化）
Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−ｈｏｒｓｅｒａｄｉｓｈｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ（ＡｍｅｒｓｈａｍＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ社）を、抗体用希釈溶液によって５０００倍に希釈した。これを、マイクロプレートに１００μｌずつ加え、室温で１時間振とう反応させた。その後、洗浄用緩衝液で６回洗浄を行った。
４）（測定）
ＴＭＢＭｉｃｒｏｗｅｌｌＰｅｒｏｘｉｄａｓｅＳｕｂｓｔｒａｔｅ（ＫＰＬ社）を、マイクロプレートに１００μｌずつ加えて発色させ、１０〜３０分後に１Ｍリン酸１００μｌを加えて反応を停止させた。そして、４５０ｎｍによって吸光度を測定した。
５）（検量線）
以上の系を使い、合成した４ＨＮＥ酸化インスリンを標準品とした典型的な検量線を得た（図１１）。図１１は横軸にインスリンの４ＨＮＥ酸化量（図中、４ＨＮＥ−Ｉｎｓｕｌｉｎと表示）、縦軸に４５０ｎｍの吸光度を示した。
これにより、インスリン酸化度の測定が可能であることが確認できた。

（インスリン酸化状態の検定）
インスリン（ＳＩＧＭＡ社）１００μｇに対して、０．１、１、１０ｎｍｏｌの４ＨＮＥを添加し、３７℃にて２時間反応させた。反応後、ＰＢＳ溶液によって、４℃、１２〜１８時間透析した。これを実施例１０に基づいた方法によって測定を行ったところ、インスリン当りの酸化修飾が、添加４ＨＮＥ濃度に応じて変化することが示された。図１２は、横軸は、インスリンのみ（図中、Ｉｎｓｕｌｉｎ）、０．１ｎｍｏｌの４ＨＮＥによる酸化修飾インスリン（図中、０．１ｎｍｏｌ４ＨＮＥ−Ｉｎｓｕｌｉｎ）、１ｎｍｏｌの４ＨＮＥによる酸化修飾インスリン（図中、１ｎｍｏｌ４ＨＮＥ−Ｉｎｓｕｌｉｎ）、１０ｎｍｏｌの４ＨＮＥによる酸化修飾インスリン（図中、１０ｎｍｏｌ４ＨＮＥ−Ｉｎｓｕｌｉｎ）、縦軸は４５０ｎｍの吸光度である。各４ＨＮＥ量において酸化度の変異が確認された。

（酸化度の異なるインスリンとインスリンレセプターとの反応性）
ヒト健常者の赤血球を使い４ＨＮＥ修飾による酸化度の違いによる酸化インスリンと赤血球上のインスリンレセプターとの反応性を検定した（図１３）。
実験は、実施例１１に準じてインスリン（５０μｇ）を４ＨＮＥ（無添加、１０ｎｍｏｌ、２０ｎｍｏｌ、５０ｎｍｏｌ）で酸化修飾した。この酸化インスリン（２０μｌ）を用い、赤血球（１ｘ１０^６ｃｅｌｌｓ／ｔｕｂｅ）と接触させ、１５℃で２．５時間反応させた。反応後、赤血球上インスリンレセプターと酸化インスリンの反応（結合）性をヨウ素標識抗ヒトインスリン抗体（^１２５Ｉ−Ｉｎｓｕｌｉｎ抗体）によって検定した。横軸は、インスリンのみ（図中、Ｉｎｓｕｌｉｎ）、１０ｎｍｏｌの４ＨＮＥによる酸化修飾インスリン（図中、１０ｎｍｏｌ４ＨＮＥ−Ｉｎｓｕｌｉｎ）、２０ｎｍｏｌの４ＨＮＥによる酸化修飾インスリン（図中、２０ｎｍｏｌ４ＨＮＥ−Ｉｎｓｕｌｉｎ）、５０ｎｍｏｌの４ＨＮＥによる酸化修飾インスリン（図中、５０ｎｍｏｌ４ＨＮＥ−Ｉｎｓｕｌｉｎ）、縦軸はインスリンレセプターとの結合率（％）である。この結果、インスリンのみのインスリンレセプターへの結合率に対して、４ＨＮＥによる酸化修飾量が増加するに従って、酸化修飾インスリンとインスリンレセプターの反応性は低下する傾向が認められた。よって、インスリンの酸化度合いによって、インスリンレセプターとの反応性が抑制され、結果インスリン抵抗性の形成を促していくこととなり、糖尿病、循環器系疾患への大きな関与が明確となった。かくして、本発明の酸化インスリンの酸化度を測定することの新規な意義が証明された。

（抗体を変更させたインスリンの酸化度の測定）
図１４は、ヒト血清を銅イオン共存下で酸化処理し、実施例１０の系で測定した結果を示す。銅イオンは５０μＭ添加し、反応条件は、弱い酸化状態として４℃と強い酸化状態として３７℃で、４８時間処理した。その後の透析は、実施例１１に準じた。図の横軸は、血清のみ（ｓｅｒｕｍ−ＢＫ）、４℃で処理（ｓｅｒｕｍ−Ｃｕ−４℃）及び３７℃で処理（ｓｅｒｕｍ−Ｃｕ−３７℃）を表し、縦軸は４５０ｎｍの吸光度を表す。この結果、銅酸化による酸化状態の変化においてもインスリンの酸化度合いを判定できることを示した。
図１５は、上記で用いた銅酸化サンプルを用い、酸化修飾のマーカーをＭＤＡにしておこなったものである。実験法は、抗４ＮＨＥ抗体ビオチン標識の代わりに抗ＭＤＡ抗体ビオチン標識とＤＡＫＯＥｎＶｉｓｉｏｎ＋^ＴＭｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ，Ｍｏｕｓｅ（ＤＡＫＯ社）を用いる以外は、実施例１０に準じた。図の横軸は、血清のみ（ｓｅｒｕｍ−ＢＫ）、４℃で処理（ｓｅｒｕｍ−Ｃｕ−４℃）及び３７℃で処理（ｓｅｒｕｍ−Ｃｕ−３７℃）を表し、縦軸は４５０ｎｍ吸光度を表す。この結果、ＭＤＡが酸化修飾した場合も、その酸化度を本発明により、検定できることを確認した。

（レプチン標準溶液の調製）
レプチン（Ｒ＆ＤＳＹＳＴＥＭＳ社）１０μｇに対して、５、１０、２０、５０、１００ｎｍｏｌの４ＨＮＥを添加し、３７℃にて２時間反応させた（酸化修飾処理）。反応完了後、ＰＢＳ溶液によって４℃、１２〜１８時間透析した。透析終了後、これを標準溶液とした。

（酸化レプチン測定系の構築）
１）（検体と固相抗体の接触）
抗レプチン抗体が結合しているマイクロプレート（Ｒ＆ＤＳＹＳＴＥＭＳ社）にイムノグロブリン溶液５０μｌをマイクロプレートに入れ、標準溶液もしくは検体試料を５０μｌずつ加えた。これを室温で２時間振とう反応させ、その後、洗浄用緩衝液で６回洗浄を行った。
２）（酸化物質抗体による修飾）
抗４ＨＮＥモノクローナル抗体（日本油脂株式会社）をビオチン標識し、この抗体を抗体用希釈溶液によって５，０００倍に希釈した。これを、マイクロプレートに１００μｌずつ加え、室温で９０分振とう反応させた。その後、洗浄用緩衝液で６回洗浄を行った。
３）（標識化）
Ｓｔｒｅｐｔａｖｉｄｉｎ−ｈｏｒｓｅｒａｄｉｓｈｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ（ＡｍｅｒｓｈａｍＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ社）を、抗体用希釈溶液によって５０００倍に希釈した。これを、マイクロプレートに１００μｌずつ加え、室温で１時間振とう反応させた。その後、洗浄用緩衝液で６回洗浄を行った。
４）（測定）
ＴＭＢＭｉｃｒｏｗｅｌｌＰｅｒｏｘｉｄａｓｅＳｕｂｓｔｒａｔｅ（ＫＰＬ社）を、マイクロプレートに１００μｌずつ加えて発色させ、１０〜３０分後に１Ｍリン酸１００μｌを加えて反応を停止させた。そして、４５０ｎｍによって吸光度を測定した。
５）（検量線）
以上の系を使い、合成した４ＨＮＥ酸化レプチンを標準品とした典型的な検量線を得た（図１６）。図１６は横軸にレプチンの４ＨＮＥ酸化量（図中、４ＨＮＥ−Ｌｅｐｔｉｎと表示）、縦軸に４５０ｎｍの吸光度を示した。
これにより、レプチン酸化度の測定が可能であることが確認できた。

（レプチン酸化状態の検定）
レプチン（Ｒ＆ＤＳＹＳＴＥＭＳ社）１０μｇに対して、１０、５０、１００ｎｍｏｌの４ＨＮＥを添加し、３７℃にて２時間反応させた。反応後、ＰＢＳ溶液によって、４℃、１２〜１８時間透析した。これを実施例１５に基づいた方法によって測定を行ったところ、レプチン当たりの酸化修飾が、添加４ＨＮＥ濃度に応じて変化することが示された。図１７は、横軸は、レプチンのみ（図中、Ｌｅｐｔｉｎ）、１０ｎｍｏｌの４ＨＮＥによる酸化修飾レプチン（図中、１０ｎｍｏｌ４ＨＮＥ−Ｌｅｐｔｉｎ）、５０ｎｍｏｌの４ＨＮＥによる酸化修飾レプチン（図中、５０ｎｍｏｌ４ＨＮＥ−Ｌｅｐｔｉｎ）、１００ｎｍｏｌの４ＨＮＥによる酸化修飾レプチン（図中、１００ｎｍｏｌ４ＨＮＥ−Ｌｅｐｔｉｎ）、縦軸は４５０ｎｍの吸光度である。各４ＨＮＥ量において酸化度の変異が確認された。

（抗体を変更させたレプチンの酸化度の測定）
図１８は、ヒト血清を銅イオン共存下で酸化処理し、実施例１５の系で測定した結果を示す。銅イオンは５０μＭ添加し、反応条件は、弱い酸化状態として４℃と強い酸化状態として３７℃で、４８時間処理した。その後の透析は、実施例１６に準じた。図の横軸は、血清のみ（ｓｅｒｕｍ−ＢＫ）、４℃で処理（ｓｅｒｕｍ−Ｃｕ−４℃）及び３７℃で処理（ｓｅｒｕｍ−Ｃｕ−３７℃）を表し、縦軸は４５０ｎｍの吸光度を表す。この結果、銅酸化による酸化状態の変化においてもレプチンの酸化度合いを判定できることを示した。
図１９は、上記で用いた銅酸化サンプルを用い、酸化修飾のマーカーをＭＤＡにしておこなったものである。実験法は、抗４ＮＨＥ抗体ビオチン標識の代わりに抗ＭＤＡ抗体ビオチン標識を用いる以外は、実施例１５に準じた。図の横軸は、血清のみ（ｓｅｒｕｍ−ＢＫ）、４℃で処理（ｓｅｒｕｍ−Ｃｕ−４℃）及び３７℃で処理（ｓｅｒｕｍ−Ｃｕ−３７℃）を表し、縦軸は４５０ｎｍ吸光度を表す。この結果、ＭＤＡが酸化修飾した場合も、その酸化度を本発明により、検定できることを確認した。

（酸化度の異なるレプチンとレプチンレセプターとの反応性）
ヒトレプチンレセプターを用いて、４ＨＮＥ修飾による酸化度の違いによる酸化レプチンとレプチンレセプターとの反応性を検定した（図２０）。
実験は、ＲｅｃｏｍｂｉｎａｎｔＨｕｍａｎＬｅｐｔｉｎＲ／ＦｃＣｈｉｍｅｒａ（Ｒ＆ＤＳＹＳＴＥＭＳ社）１０μｇ／ｍｌを公知手法に従ってマイクロプレートに結合させ、実験に用いた。酸化レプチンは、実施例１７で作製したものを用い、固相化したレプチンレセプターと接触させ、室温で２時間振とう反応させた。反応後、レプチンレセプターと酸化レプチンの反応（結合）性を抗レプチン抗体によって検定した。図の横軸は、血清のみ（ｓｅｒｕｍ−ＢＫ）、４℃で処理（ｓｅｒｕｍ−Ｃｕ−４℃）及び３７℃で処理（ｓｅｒｕｍ−Ｃｕ−３７℃）を表し、縦軸はレプチンレセプターとの結合率（％）である。この結果、血清中のレプチンとレプチンレセプターへの結合率に対して、酸化状態が強くなるのに従って、酸化修飾レプチンとレプチンレセプターの反応性は低下する傾向が認められた。よって、レプチンの酸化度合いによって、レプチンレセプターとの反応性が抑制され、結果レプチン抵抗性の形成を促していくこととなり、肥満、糖尿病への大きな関与が明確となった。かくして、本発明の酸化レプチンの酸化度を測定することの新規な意義が証明された。
上記結果により、本発明による測定対象物の酸化度の測定方法は、生活習慣病又は循環器系疾患の危険因子の新規判定方法、測定法に使用する試薬を構成してなる試薬キットの提供を可能にした。さらには、本発明方法の酸化度の測定キット又は酸化度の測定結果の情報を自然法則を利用した媒体に担持した商業用媒体の提供も可能にした。

本発明は、測定対象物の酸化度という新概念を臨床検査の場に提供するものである。この測定法により、糖尿病、肥満などの生活習慣病又は動脈硬化症などの循環器系疾患のリスクファクターについての新規な臨床検査手技を提供する。
また、以上のような測定法に使用する試薬を構成してなる試薬キットの提供は、新規な臨床診断手段を提供する。さらには、本発明方法の酸化度の測定キット又は酸化度の測定結果の情報を自然法則を利用した媒体に担持した商業用媒体を提供する。

Claims

下記（１）〜（３）の工程を含むことを特徴とする検体中の測定対象物の酸化度を測定する方法：
（１）酸化度の測定対象となる測定対象物を固相に捕捉する工程、
（２）「前記（１）の捕捉された測定対象物」と「脂質の酸化により生成する抗原性物質を認識する抗体」を接触反応させる工程、
（３）前記（２）で反応した抗体量によって、測定対象物当りの該抗原性物質量を定量・判定する工程。
測定対象物が、以下のいずれか１から選ばれる請求項１の測定方法。
（１）蛋白質
（２）脂質
（３）糖蛋白質
（４）リポ蛋白質
（５）前記（１）〜（４）の少なくとも１つを含む複合体
検体中の酸化度の測定対象となる測定対象物が、酸化により該測定対象物のレセプターとの結合力に変化をもたらすことを特徴とする請求項１の測定方法。
検体中の酸化度の測定対象物が、以下のいずれか１から選ばれる請求項１の測定方法。
（１）低密度リポ蛋白質（ＬＤＬ）
（２）高密度リポ蛋白質（ＨＤＬ）
（３）超低密度リポ蛋白質（ＶＬＤＬ）
（４）リポ蛋白質（ａ）（Ｌｐ（ａ））
（５）インスリン
（６）レプチン
脂質の酸化により生成する抗原性物質が、以下のいずれか１から選ばれる請求項１〜４のいずれか１に記載の測定方法。
（１）４−ヒドロキシ−２−ノネナール（４ＨＮＥ）
（２）マロンジアルデヒド（ＭＤＡ）
（３）８−イソプロスタン
（４）酸化リン脂質
（５）酸化トリグリセリド
（６）酸化コレステロール
検体中の酸化度の測定対象物であるリポ蛋白質中の蛋白質部分が、以下のいずれか１から選ばれる請求項１〜５のいずれか１に記載の測定方法。
（１）アポＢ−１００
（２）アポＡ１
（３）アポ（ａ）
以下のいずれか１から選ばれる検体中の酸化度の測定対象物であるリポ蛋白質中の蛋白質部分を認識する抗体を使って測定対象物を捕捉する請求項１〜６のいずれか１から選ばれる測定方法。
（１）アポＢ−１００に対する抗体
（２）アポＡ１に対する抗体
（３）アポ（ａ）に対する抗体
以下のいずれか１から選ばれる検体中の酸化度の測定対象物である蛋白質を認識する抗体を使って測定対象物を捕捉する請求項１〜５のいずれか１から選ばれる測定方法。
（１）インスリンに対する抗体
（２）レプチンに対する抗体
下記（１）〜（５）の工程を含むことを特徴とする検体中の測定対象物の酸化度を測定する方法：
（１）アポＢ−１００に対する抗体、アポＡ１に対する抗体、又はアポ（ａ）に対する抗体を固相に結合する工程、
（２）前記（１）の固相化抗体と検体を接触させ、検体中の低密度リポ蛋白質（ＬＤＬ）、高密度リポ蛋白質（ＨＤＬ）、超低密度リポ蛋白質（ＶＬＤＬ）、又はリポ蛋白質（ａ）（Ｌｐ（ａ））を捕捉する工程、
（３）前記（２）で捕捉された各リポ蛋白質に対して、４ＨＮＥ、ＭＤＡ、８−イソプロスタン、酸化リン脂質、酸化トリグリセリド又は酸化コレステロールを認識する抗体を接触反応させる工程、
（４）前記（３）で反応した抗体量により、４ＨＮＥ、ＭＤＡ、８−イソプロスタン、酸化リン脂質、酸化トリグリセリド又は酸化コレステロールを定量する工程、
（５）捕捉された各リポ蛋白質当りの４ＨＮＥ、ＭＤＡ、８−イソプロスタン、酸化リン脂質、酸化トリグリセリド又は酸化コレステロール量を求め、これを測定対象物である各リポ蛋白質の酸化度のマーカーとして判定する工程。
下記（１）〜（５）の工程を含むことを特徴とする検体中の測定対象物の酸化度を測定する方法：
（１）インスリン又はレプチンに対する抗体を固相に結合する工程、
（２）前記（１）の固相化抗体と検体を接触させ、検体中のインスリン又はレプチンを捕捉する工程、
（３）前記（２）で捕捉された各蛋白質に対して、４ＨＮＥ又はＭＤＡを認識する抗体を接触反応させる工程、
（４）前記（３）で反応した抗体量により、４ＨＮＥ又はＭＤＡを定量する工程、
（５）捕捉された各蛋白質当りの４ＨＮＥ又はＭＤＡ量を求め、これを測定対象物である各蛋白質の酸化度のマーカーとして判定する工程。
検体が、ヒトまたは動物の以下のいずれか１から選ばれる請求項１〜１０のいずれか１に記載の方法。
（１）血液
（２）尿
（３）血漿
（４）血清
（５）髄液
（６）唾液
（７）汗
（８）涙液
（９）腹水若しくは羊水
（１０）精液
（１１）大便
（１２）組織・細胞の抽出液
（１３）酸化された蛋白質、脂質、糖蛋白質、リポ蛋白質又は／及びそれらの複合体を含む可能性のある生体試料
請求項１〜１１の何れか一に記載の測定法による、循環器系疾患危険因子又は生活習慣病危険因子の判定方法。
請求項１２に記載の循環器系疾患又は生活習慣病が、以下のいずれか１から選ばれる判定方法。
（１）動脈硬化性疾患
（２）虚血性心疾患
（３）脳血管疾患
（４）高血圧症
（５）高脂血症
（６）糖尿病
（７）肥満
下記（１）及び／又は（２）の要素を含むことを特徴とする、検体中の測定対象物の酸化度の測定キット：
（１）酸化度の測定対象となる測定対象物を捕捉する固相、
（２）脂質の酸化により生成する抗原性物質を認識する抗体。
請求項１〜１１のいずれか１の測定方法で得られた、酸化度の測定結果の情報を自然法則を利用した媒体に担持した商業用媒体。