JPS6394992A - l−プロプラノロ−ルの生化学的分離法 - Google Patents
l−プロプラノロ−ルの生化学的分離法Info
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- JPS6394992A JPS6394992A JP61242611A JP24261186A JPS6394992A JP S6394992 A JPS6394992 A JP S6394992A JP 61242611 A JP61242611 A JP 61242611A JP 24261186 A JP24261186 A JP 24261186A JP S6394992 A JPS6394992 A JP S6394992A
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明は、微生物の生産するリパーゼを利用して、dl
−プロプラノロールからl−プロプラノロールを選択的
に分離するβ−プロプラノロールの生化学的分離法に関
する。
−プロプラノロールからl−プロプラノロールを選択的
に分離するβ−プロプラノロールの生化学的分離法に関
する。
(従来の技術)
プロプラノロールは、その化学構造上1つの不斉炭素原
子を有する。従って、プロプラノロールには、d−プロ
プラノロールとC−プロプラノロールの立体異性体が存
在する。
子を有する。従って、プロプラノロールには、d−プロ
プラノロールとC−プロプラノロールの立体異性体が存
在する。
プロプラノロールは1通常、ラセミ体で得られ。
不整脈治療薬、抗高血圧薬として実用化されている。し
かし、その薬効は6体と4体とでは大きな差があること
が知られている(Nature、 210.1336
−1338 (1966)、 Arch Pharma
col、、 286 、 319−323(1974)
)。l−プロプラノロールは、di−プロプラノロール
(ラセミ体)と比較しても、イソプレナリンで誘発され
た頻脈に対し、約4〜5倍の有効性がある( Howe
ら、 Nature、 210.1336−1338
(1966) )。l−プロプラノロールは、アドレナ
リン受容体に拮抗的阻害作用をもつため、抗不整脈作用
、降圧作用が強い。このようなことから、dl−プロプ
ラノロールからl−プロプラノロールのみを分離するこ
とが試みられている。
かし、その薬効は6体と4体とでは大きな差があること
が知られている(Nature、 210.1336
−1338 (1966)、 Arch Pharma
col、、 286 、 319−323(1974)
)。l−プロプラノロールは、di−プロプラノロール
(ラセミ体)と比較しても、イソプレナリンで誘発され
た頻脈に対し、約4〜5倍の有効性がある( Howe
ら、 Nature、 210.1336−1338
(1966) )。l−プロプラノロールは、アドレナ
リン受容体に拮抗的阻害作用をもつため、抗不整脈作用
、降圧作用が強い。このようなことから、dl−プロプ
ラノロールからl−プロプラノロールのみを分離するこ
とが試みられている。
dl−プロプラノロールからの2−プロプラノロールの
分離法としては、ジー〇−トルオイル酒石酸を用いた光
学分割法がある( tloweら、 Nature。
分離法としては、ジー〇−トルオイル酒石酸を用いた光
学分割法がある( tloweら、 Nature。
210 、1336−1338 (1966))。しか
し、このような方法は、操作が煩雑であるうえに!−プ
ロプラノロールの回収率が低い。
し、このような方法は、操作が煩雑であるうえに!−プ
ロプラノロールの回収率が低い。
(発明が解決しようとする問題点)
本発明は上記従来の問題点を解決するものであり、その
目的とするところは、dl−フ゛ロフ“ラノロールから
l−プロプラノロールが簡単かつ高収率で得られる!−
プロプラノロールの生化学的分離法を提供することにあ
る。
目的とするところは、dl−フ゛ロフ“ラノロールから
l−プロプラノロールが簡単かつ高収率で得られる!−
プロプラノロールの生化学的分離法を提供することにあ
る。
(問題点を解決するための手段)
本発明は、dJ−プロプラノロールと有機カルボン酸、
特に炭素数4以上の有機カルボン酸とのエステル化反応
において、微生物の生産するリパーゼを作用させること
により、6体のみが選択的にエステル化されうる;との
発明者の知見にもとづいて完成された。
特に炭素数4以上の有機カルボン酸とのエステル化反応
において、微生物の生産するリパーゼを作用させること
により、6体のみが選択的にエステル化されうる;との
発明者の知見にもとづいて完成された。
本発明の!−プロプラノロールの生化学的分離法は、リ
パーゼ、リパーゼの固定化物、リパーゼ生産能を有する
微生物、該微生物の固定化物および該微生物の処理物の
固定化物からなる群から選択された少なくとも一種に、
dl−プロプラノロールと、有機カルボン酸もしくは有
機カルボン酸塩とを接触させることを包含し、そのこと
により上記目的が達成される。
パーゼ、リパーゼの固定化物、リパーゼ生産能を有する
微生物、該微生物の固定化物および該微生物の処理物の
固定化物からなる群から選択された少なくとも一種に、
dl−プロプラノロールと、有機カルボン酸もしくは有
機カルボン酸塩とを接触させることを包含し、そのこと
により上記目的が達成される。
dl−プロプラノロールと有機カルボン酸もしくは有機
カルボン酸塩とを、微生物由来のリパーゼを作用させて
接触させることにより、dl−プロプラノロールのうち
のd−プロプラノロールのみが選択的にエステル化され
る。
カルボン酸塩とを、微生物由来のリパーゼを作用させて
接触させることにより、dl−プロプラノロールのうち
のd−プロプラノロールのみが選択的にエステル化され
る。
エステル化反応は、有機溶剤−水の均一系2例えば、酢
酸−酢酸ナトリウム緩衝液(50mM、 pit 7〜
8)やリン酸カリウム緩衝液(50mM、 pit 8
)とアセトンとの8:2の混合系等の反応系で行われ
る。基質となるプロプラノロールと有機カルボン酸の双
方が完全に溶解する濃度範囲で反応に供される。生成し
たd−プロプラノロール有機カルボン酸エステルと、未
反応のl−プロプラノロールとはシリカゲルカラムクロ
マトグラフにより容易に分離できる。それにより、目的
とするl−プロプラノロールが分離され得る。
酸−酢酸ナトリウム緩衝液(50mM、 pit 7〜
8)やリン酸カリウム緩衝液(50mM、 pit 8
)とアセトンとの8:2の混合系等の反応系で行われ
る。基質となるプロプラノロールと有機カルボン酸の双
方が完全に溶解する濃度範囲で反応に供される。生成し
たd−プロプラノロール有機カルボン酸エステルと、未
反応のl−プロプラノロールとはシリカゲルカラムクロ
マトグラフにより容易に分離できる。それにより、目的
とするl−プロプラノロールが分離され得る。
リパーゼには1例えば、ゲオトリカム属、リゾプス属、
アスペルギルス属、ペニシリウム属、ロドトルラ属、ク
ラドスポリウム属、トリコデルマ属、フサリウム属に属
する微生物から生産されたリパーゼが用いられる。
アスペルギルス属、ペニシリウム属、ロドトルラ属、ク
ラドスポリウム属、トリコデルマ属、フサリウム属に属
する微生物から生産されたリパーゼが用いられる。
リパーゼ生産能を有する微生物には2例えば。
ゲオトリカム属、リゾプス属、アスペルギルス属。
ペニシリウム属、ロドトルラ属、クラドスポリウム属、
トリコデルマ属、フサリウム属に属する微生物がある。
トリコデルマ属、フサリウム属に属する微生物がある。
しかし、これに限定されず、dl−プロプラノロールを
有機カルボン酸、特に炭素数4以上の有機カルボン酸を
用いてエステル化するためのリパーゼを生産する微生物
であれば、いかなる微生物も使用可能である。
有機カルボン酸、特に炭素数4以上の有機カルボン酸を
用いてエステル化するためのリパーゼを生産する微生物
であれば、いかなる微生物も使用可能である。
本発明に用いられる微生物の例を下記に示す。
これらの微生物はいずれも公知であり、公的微生物保存
機関連盟の加盟機関1例えば、財団法人発酵研究所(I
FO)を通じて容易に入手することができる。
機関連盟の加盟機関1例えば、財団法人発酵研究所(I
FO)を通じて容易に入手することができる。
(1)ゲオトリカム属
ゲオトリカム・カンディダム AATCC−3461
4(Geotrichu candtdum)(2)リ
ゾプス属 リゾプス・プレマール ATCC−34612
(Rhizopus delemar)(3)アスペル
ギルス属 アスペルギルス・ニガー IFO−4280(A
spergillus niger)(4)ペニシリウ
ム属 ペニシリウム・シクロビウム AATCC−3461
3(Penicilliu cyclopium)(5
)ロドトルラ属 ロドトルラ・ミヌータ・バール・チクセンシスIFO−
0932 (Rhodotorula m1nuta var t
exensis)(6)トリコデルマ属 トリコデルマ・ロンジブラキアタムIFO−4847(
Trichoderma longibrachiat
um)(7)タラトスポリウム属 クラドスポリウム・レジナエ IFO−8588(C
ladosporium resinae)(8)フサ
リウム属 フサリウム・モニリフォルム IFO−6349(F
usarium moniliforme)本発明にお
けるリパーゼまたは微生物は2例えば、液体培地に菌体
を培養した培養物、培養液から分離した菌体、各種の酵
素分離法に基づいて菌体または培養液から分離した精製
リパーゼや粗製リパーゼ、リパーゼ含有抽出液、その濃
縮液などの処理物の状態で用いられる。リパーゼ、al
l。
4(Geotrichu candtdum)(2)リ
ゾプス属 リゾプス・プレマール ATCC−34612
(Rhizopus delemar)(3)アスペル
ギルス属 アスペルギルス・ニガー IFO−4280(A
spergillus niger)(4)ペニシリウ
ム属 ペニシリウム・シクロビウム AATCC−3461
3(Penicilliu cyclopium)(5
)ロドトルラ属 ロドトルラ・ミヌータ・バール・チクセンシスIFO−
0932 (Rhodotorula m1nuta var t
exensis)(6)トリコデルマ属 トリコデルマ・ロンジブラキアタムIFO−4847(
Trichoderma longibrachiat
um)(7)タラトスポリウム属 クラドスポリウム・レジナエ IFO−8588(C
ladosporium resinae)(8)フサ
リウム属 フサリウム・モニリフォルム IFO−6349(F
usarium moniliforme)本発明にお
けるリパーゼまたは微生物は2例えば、液体培地に菌体
を培養した培養物、培養液から分離した菌体、各種の酵
素分離法に基づいて菌体または培養液から分離した精製
リパーゼや粗製リパーゼ、リパーゼ含有抽出液、その濃
縮液などの処理物の状態で用いられる。リパーゼ、al
l。
微生物の処理物が固定化された固定化物も使用可能であ
る。
る。
リパーゼおよび微生物の固定化のための担体には1例え
ば、アルギン酸、カラギーナン、コラーゲン、セルロー
ス、アセチルセルロース、 寒天。
ば、アルギン酸、カラギーナン、コラーゲン、セルロー
ス、アセチルセルロース、 寒天。
セロファン、コロジオンの如き天然物やポリアクリルア
ミド、ポリスチレン、ポリエチレングリコール、ポリプ
ロピレングリコール、ポリウレタン。
ミド、ポリスチレン、ポリエチレングリコール、ポリプ
ロピレングリコール、ポリウレタン。
ポリブタジェンの如き合成高分子などがある。
リパーゼおよび微生物の担体への固定化量は。
担体や菌体の種類、リパーゼの純度などに依存する。し
かし2通常、微生物菌体1g(湿潤基準)に対し、担体
1〜5gが用いられる。また、リパーゼでは、30酵素
単位に対して0.1〜2gの担体を用いるのが適当であ
る。
かし2通常、微生物菌体1g(湿潤基準)に対し、担体
1〜5gが用いられる。また、リパーゼでは、30酵素
単位に対して0.1〜2gの担体を用いるのが適当であ
る。
dj2−プロプラノロールと接触させる有機カルボン酸
および有機カルボン酸塩には、特に炭素数4以上の有機
カルボン酸および有機カルボン酸塩が用いられ1例えば
、吉草酸、酪酸、δ−フェニル吉草酸、γ−フェニル醋
酸、カプロン酸、カプリル酸、コハク酸、スベリン酸、
セバシン酸がある。炭素数が4を下まわると、dl−プ
ロプラノロールと有機カルボン酸および有機カルボン酸
塩とのエステル化反応が充分に進行しない。有機カルボ
ン酸塩には、上記有機カルボン酸のアルカリ金属塩(ナ
トリウム塩、カリウム塩など)やアンモニウム塩が用い
られる。
および有機カルボン酸塩には、特に炭素数4以上の有機
カルボン酸および有機カルボン酸塩が用いられ1例えば
、吉草酸、酪酸、δ−フェニル吉草酸、γ−フェニル醋
酸、カプロン酸、カプリル酸、コハク酸、スベリン酸、
セバシン酸がある。炭素数が4を下まわると、dl−プ
ロプラノロールと有機カルボン酸および有機カルボン酸
塩とのエステル化反応が充分に進行しない。有機カルボ
ン酸塩には、上記有機カルボン酸のアルカリ金属塩(ナ
トリウム塩、カリウム塩など)やアンモニウム塩が用い
られる。
有機溶媒には9例えば、アセトン、エタノール。
メタノール、ジメチルホルムアミド、ジメチルスルホキ
シド等の水と均一に混合し得る極性溶媒が用いられる。
シド等の水と均一に混合し得る極性溶媒が用いられる。
これに限定されず、d−プロプラノロールの有機カルボ
ン酸エステルを溶解しかつリパーゼ活性を損なわない有
機溶媒であれば使用可能である。それら有機溶媒の水に
対する混合比は。
ン酸エステルを溶解しかつリパーゼ活性を損なわない有
機溶媒であれば使用可能である。それら有機溶媒の水に
対する混合比は。
最大50%以下であり1.好ましくは、10〜30%の
範囲とされる。混合比は、リパーゼ活性を損なうことな
く、基質d1−プロプラノロールの有機カルボン酸を溶
解する最適使用量であればよい。
範囲とされる。混合比は、リパーゼ活性を損なうことな
く、基質d1−プロプラノロールの有機カルボン酸を溶
解する最適使用量であればよい。
dN−プロプラノロールの水層における濃度には特に限
定はなく9例えば、0.1〜30%というような高濃度
でも使用可能である。反応系内にカゼイン1〜5%を添
加することにより、リパーゼの安定性を増すことができ
る。上記dl−プロプラノロールは1例えば、リパーゼ
300酵素単位に対し、 5〜50mmo1.好まし
くは20〜30mmol、 そして有機カルボン酸も
しくは有機カルボン酸塩は3〜100mmol、好まし
くは20〜5oIIIIlolの範囲で配合される。
定はなく9例えば、0.1〜30%というような高濃度
でも使用可能である。反応系内にカゼイン1〜5%を添
加することにより、リパーゼの安定性を増すことができ
る。上記dl−プロプラノロールは1例えば、リパーゼ
300酵素単位に対し、 5〜50mmo1.好まし
くは20〜30mmol、 そして有機カルボン酸も
しくは有機カルボン酸塩は3〜100mmol、好まし
くは20〜5oIIIIlolの範囲で配合される。
dl−プロプラノロールのエステル化反応における反応
温度は、20〜45℃、好ましくは、25〜35℃に調
整される。20℃を下まわると、エステル化反応が充分
に進行しない。45℃を上まわると、リパーゼの活性が
低下し1反応の進行が妨げられる。
温度は、20〜45℃、好ましくは、25〜35℃に調
整される。20℃を下まわると、エステル化反応が充分
に進行しない。45℃を上まわると、リパーゼの活性が
低下し1反応の進行が妨げられる。
反応時間は、5〜72時間が適当である。しかし。
微生物の量またはリパーゼの量を増加させることにより
1反応時間の短縮が可能である。
1反応時間の短縮が可能である。
(実施例)
以下に本発明を実施例について述べる。
実施±1
アクリルアミド723■およびN−N’ −メチレンビ
スアクリルアミド38nvを、リン酸カリウム緩衝液(
pH7,0,50mM) 2.3艷に溶解した。ゲオ
トリカム・カンディダム(Geotrichum ca
ndidumATCC−34614) 720mg湿潤
微生物菌体を、酢酸−酢酸ナトリウム緩衝液(pH5,
6,50mM) 2−に懸濁させ、上記アクリルアミ
ド溶液と混合した。混合液にN、N−N” ・No −
テトラメチレンジアミン水溶液(0,1g/d)を0.
1−および過硫酸アンモニウム水溶液(50mg/−)
を0.1−加えた後。
スアクリルアミド38nvを、リン酸カリウム緩衝液(
pH7,0,50mM) 2.3艷に溶解した。ゲオ
トリカム・カンディダム(Geotrichum ca
ndidumATCC−34614) 720mg湿潤
微生物菌体を、酢酸−酢酸ナトリウム緩衝液(pH5,
6,50mM) 2−に懸濁させ、上記アクリルアミ
ド溶液と混合した。混合液にN、N−N” ・No −
テトラメチレンジアミン水溶液(0,1g/d)を0.
1−および過硫酸アンモニウム水溶液(50mg/−)
を0.1−加えた後。
窒素ガス雰囲気下、0℃で5分間さらに室温下で1時間
放置し、微生物菌体の固定化物を得た。この固定化物を
21璽×2ml×2Hの立方体に切断した。
放置し、微生物菌体の固定化物を得た。この固定化物を
21璽×2ml×2Hの立方体に切断した。
リン酸カリウム緩衝液(pH8,0,50mM)とアセ
トンとの混合液(8:2体積比)20−にdl−塩酸プ
ロプラノロール200■を溶解し、さらにδ−フェニル
吉草酸500 mgを溶解した。この溶液に上記の固定
化物を加え、30℃で、 120s trokes /
分の振盪下、18時間反応させた。
トンとの混合液(8:2体積比)20−にdl−塩酸プ
ロプラノロール200■を溶解し、さらにδ−フェニル
吉草酸500 mgを溶解した。この溶液に上記の固定
化物を加え、30℃で、 120s trokes /
分の振盪下、18時間反応させた。
反応終了後9反応液を2N−KOHでpH9に調整した
後、エーテル2Mで抽出した。エーテル層を飽和食塩水
、水の順で洗浄した後、さらに無水硫酸ナトリウムで洗
浄した。エーテルを除去し、残留オイルをシリカゲルカ
ラム(ワコゲルc−200)に充填して、ヘキサン−エ
ーテル(5:1体積比)の混合溶液で展開した。d−プ
ロプラノロールのδ−フェニル吉草酸エステルを溶出し
た後、展開溶剤を塩化メチレンに切りかえ、目的物のl
−プロプラノロールを溶出した。溶出液に、塩化水素ガ
スを水冷下で吹き込み1次いで、塩化メチレンを除去し
たところ、l−プロプラノロール塩酸塩が得られた(収
率70.0%、 〔α) f!’= −22,7° (
C;1.0% C,1I50H) ’)。l−プロプラ
ノロール塩酸塩の収率は9次式により算出した。
後、エーテル2Mで抽出した。エーテル層を飽和食塩水
、水の順で洗浄した後、さらに無水硫酸ナトリウムで洗
浄した。エーテルを除去し、残留オイルをシリカゲルカ
ラム(ワコゲルc−200)に充填して、ヘキサン−エ
ーテル(5:1体積比)の混合溶液で展開した。d−プ
ロプラノロールのδ−フェニル吉草酸エステルを溶出し
た後、展開溶剤を塩化メチレンに切りかえ、目的物のl
−プロプラノロールを溶出した。溶出液に、塩化水素ガ
スを水冷下で吹き込み1次いで、塩化メチレンを除去し
たところ、l−プロプラノロール塩酸塩が得られた(収
率70.0%、 〔α) f!’= −22,7° (
C;1.0% C,1I50H) ’)。l−プロプラ
ノロール塩酸塩の収率は9次式により算出した。
l−プロプラノロール塩酸塩の収率(%)次新l生影
微生物として、フサリウム・モニリフォルム(Fusa
rium moniliforme IFO−6349
)を用いたこと以外は、実施例1と同様にして2−プロ
プラノロールの分離を行った。その結果、収率64.0
%で旋光度CCr〕B’= 22.6@(c ; 1.
0%C2H50)l) 0)l−プロプラノロール塩酸
塩が得られた。
rium moniliforme IFO−6349
)を用いたこと以外は、実施例1と同様にして2−プロ
プラノロールの分離を行った。その結果、収率64.0
%で旋光度CCr〕B’= 22.6@(c ; 1.
0%C2H50)l) 0)l−プロプラノロール塩酸
塩が得られた。
1隻皿主
微生物として、リゾプス・プレマール(Phizopu
sdelemar ATCC−34612)を用いたこ
と以外は、実施例1と同様にしてl−プロプラノロール
の分離を行った。その結果、収率73.0%で旋光度〔
α〕6S=−22.6” (c ; 1.0% CzH
sOH)の!−プロプラノロール塩酸塩が得られた。
sdelemar ATCC−34612)を用いたこ
と以外は、実施例1と同様にしてl−プロプラノロール
の分離を行った。その結果、収率73.0%で旋光度〔
α〕6S=−22.6” (c ; 1.0% CzH
sOH)の!−プロプラノロール塩酸塩が得られた。
尖立炭土
微生物として、アスペルギラス・ニガー(Asperg
illus niger IFO−4280)を用いた
こと以外は、実施例1と同様にして!−プロプラノロー
ルの分離を行った。その結果、収率74.0%で旋光度
(α) 轟’= 22.6’ (c ; 1.0%
C211SOH) (7) A −プロプラノロール塩
酸塩が得られた。
illus niger IFO−4280)を用いた
こと以外は、実施例1と同様にして!−プロプラノロー
ルの分離を行った。その結果、収率74.0%で旋光度
(α) 轟’= 22.6’ (c ; 1.0%
C211SOH) (7) A −プロプラノロール塩
酸塩が得られた。
1旌±1
微生物として、ペニシリウム・シクロビウム(Peni
cillium cyclopium ATCC−34
613)を用いたこと以外は、実施例1と同様にしてl
−プロプラノロールの分離を行った。その結果、収率8
1.0%で旋光度〔α) fi’=−22,6° (c
; 1.0%C2H1OH)のl−プロプラノロー
ル塩酸塩が得られた。
cillium cyclopium ATCC−34
613)を用いたこと以外は、実施例1と同様にしてl
−プロプラノロールの分離を行った。その結果、収率8
1.0%で旋光度〔α) fi’=−22,6° (c
; 1.0%C2H1OH)のl−プロプラノロー
ル塩酸塩が得られた。
去旌1−
微生物として、ロドトルラ・ミヌータ・バール・チクセ
ンシス(Rhodotorula m1nuta va
r texensisIFO−0932)を用いたこと
以外は、実施例1と同様にしてl−プロプラノロールの
分離を行った。
ンシス(Rhodotorula m1nuta va
r texensisIFO−0932)を用いたこと
以外は、実施例1と同様にしてl−プロプラノロールの
分離を行った。
その結果、収率71.0%で旋光度〔α〕西5=−22
,6゜(c ; 1.0% CJSOH)のl−プロ
プラノロール塩酸塩が得られた。
,6゜(c ; 1.0% CJSOH)のl−プロ
プラノロール塩酸塩が得られた。
尖旌尉工
微生物として、トリコデルマ・ロンジブラキアタム(T
richoderma longibrachiatu
m IFO−4847)を用いたこと以外は、実施例1
と同様にしてl−プロプラノロールの分離を行った。そ
の結果、収率81.0%で旋光度〔α) g5=−22
,6° (c;1.0% CJsOH)のl−プロプラ
ノロール塩酸塩が得られた。
richoderma longibrachiatu
m IFO−4847)を用いたこと以外は、実施例1
と同様にしてl−プロプラノロールの分離を行った。そ
の結果、収率81.0%で旋光度〔α) g5=−22
,6° (c;1.0% CJsOH)のl−プロプラ
ノロール塩酸塩が得られた。
尖脂■工
微生物として、クラドスポリウム・レジナエ(Clad
osporium resinae IFO−8588
)を用いたこと以外は、実施例1と同様にしてl−プロ
プラノロールの分離を行った。その結果、収率68.0
%で旋光度〔α) 、i’=−22,6°(c;1.0
%C2H5OH)のl−プロプラノロール塩酸塩が得ら
れた。
osporium resinae IFO−8588
)を用いたこと以外は、実施例1と同様にしてl−プロ
プラノロールの分離を行った。その結果、収率68.0
%で旋光度〔α) 、i’=−22,6°(c;1.0
%C2H5OH)のl−プロプラノロール塩酸塩が得ら
れた。
尖ル斑度
δ−フェニル吉草酸に代えて吉草酸を用いたこと以外は
、実施例1と同様にしてl−プロプラノロールの分離を
行った。その結果、収率72.0%で旋光度((r)
i!S= 22.7°(c;1.0% CzHsOH
)のl−プロプラノロール塩酸塩が得られた。
、実施例1と同様にしてl−プロプラノロールの分離を
行った。その結果、収率72.0%で旋光度((r)
i!S= 22.7°(c;1.0% CzHsOH
)のl−プロプラノロール塩酸塩が得られた。
実星炎則
δ−フェニル吉草酸に代えて酪酸を用いたこと以外は、
実施例1と同様にして!−プロプラノロールの分離を行
った。その結果、収率72.0%で旋光度〔α) I!
’=−22,7° (c;1.0% CJsOH)のl
−プロプラノロール塩酸塩が得られた。
実施例1と同様にして!−プロプラノロールの分離を行
った。その結果、収率72.0%で旋光度〔α) I!
’=−22,7° (c;1.0% CJsOH)のl
−プロプラノロール塩酸塩が得られた。
爽施炎旦
δ−フェニル吉草酸に代えてγ−フェニル酪酸を用いた
こと以外は、実施例1と同様にしてl−プロプラノロー
ルの分離を行った。その結果、収率91.0%で旋光度
(α) P= 22.6’ (c ; 1.0%
C2H50H)のl−プロプラノロール塩酸塩が得られ
た。
こと以外は、実施例1と同様にしてl−プロプラノロー
ルの分離を行った。その結果、収率91.0%で旋光度
(α) P= 22.6’ (c ; 1.0%
C2H50H)のl−プロプラノロール塩酸塩が得られ
た。
ス屓1泪ユ
δ−フェニル吉草酸に代えてカプロン酸を用いたこと以
外は、実施例1と同様にしてl−プロプラノロールの分
離を行った。その結果、収率65.0%で旋光度〔α)
P= −21,0’ (c : 1.0% C1H5
OH)のl−プロプラノロール塩酸塩が得られた。
外は、実施例1と同様にしてl−プロプラノロールの分
離を行った。その結果、収率65.0%で旋光度〔α)
P= −21,0’ (c : 1.0% C1H5
OH)のl−プロプラノロール塩酸塩が得られた。
尖施炭旦
δ−フェニル吉草酸に代えてカプリル酸を用いたこと以
外は、実施例1と同様にしてl−プロプラノロールの分
離を行った。その結果、収率57.0%で旋光度〔α〕
占’−−22,4” (c ; 1.0% CJsol
l)のl−プロプラノロール塩酸塩が得られた。
外は、実施例1と同様にしてl−プロプラノロールの分
離を行った。その結果、収率57.0%で旋光度〔α〕
占’−−22,4” (c ; 1.0% CJsol
l)のl−プロプラノロール塩酸塩が得られた。
実施U
δ−フェニル吉草酸に代えてコハク酸を用いたこと以外
は、実施例1と同様にしてl−プロプラノロールの分離
を行った。その結果、収率70.0%で旋光度〔α〕乙
5=−18,4°(c;1.0% C2H50H)のl
−プロプラノロール塩酸塩が得られた。
は、実施例1と同様にしてl−プロプラノロールの分離
を行った。その結果、収率70.0%で旋光度〔α〕乙
5=−18,4°(c;1.0% C2H50H)のl
−プロプラノロール塩酸塩が得られた。
去上±旦
δ−フェニル吉草酸に代えてスベリン酸を用いたこと以
外は、実施例1と同様にしてl−プロプラノロールの分
離を行った。その結果、収率52.0%で旋光度(α)
P= 19.2°(c;1.0% C1H5OHI
)のl−プロプラノロール塩酸塩が得られた。
外は、実施例1と同様にしてl−プロプラノロールの分
離を行った。その結果、収率52.0%で旋光度(α)
P= 19.2°(c;1.0% C1H5OHI
)のl−プロプラノロール塩酸塩が得られた。
災施■用
δ−フェニル吉草酸に代えてセバシン酸を用いたこと以
外は、実施例1と同様にしてl−プロプラノロールの分
離を行った。その結果、収率30.0%で旋光度((’
r) P= 20.3 ” (C; 1.O%CJs
OH)の!−プロプラノロール塩酸塩が得られた。
外は、実施例1と同様にしてl−プロプラノロールの分
離を行った。その結果、収率30.0%で旋光度((’
r) P= 20.3 ” (C; 1.O%CJs
OH)の!−プロプラノロール塩酸塩が得られた。
実m匠
アセトンに代えてメタノールを用いたこと以外は、実施
例1と同様にしてl−プロプラノロールの分離を行った
。その結果、収率20.0%で旋光度(α) P=
22.7” (c ; 1.0% CJsOtl)のl
−プロプラノロール塩酸塩が得られた。
例1と同様にしてl−プロプラノロールの分離を行った
。その結果、収率20.0%で旋光度(α) P=
22.7” (c ; 1.0% CJsOtl)のl
−プロプラノロール塩酸塩が得られた。
実施■用
アセトンに代えてジメチルホルムアミドを用いたこと以
外は、実施例1と同様にしてl−プロプラノロールの分
離を行った。その結果、収率65.0%で旋光度〔α)
M’=−22,6°(c;1.0% CJ、OH)の
l−プロプラノロール塩酸塩が得られた。
外は、実施例1と同様にしてl−プロプラノロールの分
離を行った。その結果、収率65.0%で旋光度〔α)
M’=−22,6°(c;1.0% CJ、OH)の
l−プロプラノロール塩酸塩が得られた。
1上1
アセトンに代えてジメチルスルホキシドを用いたこと以
外は、実施例1と同様にしてl−プロプラノロールの分
離を行った。その結果、収率20.0%で旋光度〔α)
l’−−22,5’ (c ; 1.0% CzHs
OII)のl−プロプラノロール塩酸塩が得られた。
外は、実施例1と同様にしてl−プロプラノロールの分
離を行った。その結果、収率20.0%で旋光度〔α)
l’−−22,5’ (c ; 1.0% CzHs
OII)のl−プロプラノロール塩酸塩が得られた。
(発明の効果)
本発明によれば、このように、dffi−プロプラノロ
ールからl−プロプラノロールが容易に分離される。l
−プロプラノロールの回収率も高い。
ールからl−プロプラノロールが容易に分離される。l
−プロプラノロールの回収率も高い。
得られたl−プロプラノロールは、dl−プロプラノロ
ールに比べて著しく高い抗不整脈作用、降圧作用を示し
、不整脈治療薬、抗高血圧薬として有用である。
ールに比べて著しく高い抗不整脈作用、降圧作用を示し
、不整脈治療薬、抗高血圧薬として有用である。
以上
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、リパーゼ、リパーゼの固定化物、リパーゼ生産能を
有する微生物、該微生物の固定化物および該微生物の処
理物の固定化物からなる群から選択された少なくとも一
種に、dl−プロプラノロールと、有機カルボン酸もし
くは有機カルボン酸塩とを有機溶媒−水混合系中で接触
させることを包含するl−プロプラノロールの生化学的
分離法。 2、前記リパーゼが、ゲオトリカム属、リゾプス属、ア
スペルギルス属、ペニシリウム属、ロドトルラ属、クラ
ドスポリウム属、トリコデルマ属およびフサリウム属の
うちの少なくとも一つの属に属する微生物から生産され
たリパーゼである特許請求の範囲第1項に記載のl−プ
ロプラノロールの生化学的分離法。 3、前記微生物が、ゲオトリカム属、リゾプス属、アス
ペルギルス属、ペニシリウム属、ロドトルラ属、クラド
スポリウム属、トリコデルマ属およびフサリウム属のう
ちの少なくとも一つの属に属する微生物である特許請求
の範囲第1項に記載のl−プロプラノロールの生化学的
分離法。 4、前記有機カルボン酸が、炭素数4以上の有機カルボ
ン酸である特許請求の範囲第1項に記載のl−プロプラ
ノロールの生化学的分離法。 5、前記有機カルボン酸が、吉草酸、酪酸、δ−フェニ
ル吉草酸、T−フェニル酪酸、カプロン酸、カプリル酸
、コハク酸、スベリン酸およびセバシン酸のうちの少な
くとも一種である特許請求の範囲第1項に記載のl−プ
ロプラノロールの生化学的分離法。 6、前記有機カルボン酸塩が、ナトリウム、カリウムな
どのアルカリ金属塩および/またはアンモニウム塩であ
る特許請求の範囲第1項に記載のl−プロプラノロール
の生化学的分離法。 7、前記有機溶媒が、アセトン、メタノール、エタノー
ル、ジメチルホルムアミド、ジメチルスルホキシド、ア
セトニトリルからなる群から選択された少なくとも一種
である特許請求の範囲第1項に記載のl−プロプラノロ
ールの生化学的分離法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP61242611A JPS6394992A (ja) | 1986-10-13 | 1986-10-13 | l−プロプラノロ−ルの生化学的分離法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP61242611A JPS6394992A (ja) | 1986-10-13 | 1986-10-13 | l−プロプラノロ−ルの生化学的分離法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS6394992A true JPS6394992A (ja) | 1988-04-26 |
Family
ID=17091627
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP61242611A Pending JPS6394992A (ja) | 1986-10-13 | 1986-10-13 | l−プロプラノロ−ルの生化学的分離法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS6394992A (ja) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103184160A (zh) * | 2011-12-30 | 2013-07-03 | 丰益(上海)生物技术研发中心有限公司 | 一种产耐有机溶剂脂肪酶的菌株、耐有机溶剂脂肪酶及其制备方法 |
CN103865941A (zh) * | 2012-12-11 | 2014-06-18 | 丰益(上海)生物技术研发中心有限公司 | 一种来源于枝孢霉的脂肪酶、其编码基因序列及其用途 |
-
1986
- 1986-10-13 JP JP61242611A patent/JPS6394992A/ja active Pending
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103184160A (zh) * | 2011-12-30 | 2013-07-03 | 丰益(上海)生物技术研发中心有限公司 | 一种产耐有机溶剂脂肪酶的菌株、耐有机溶剂脂肪酶及其制备方法 |
CN103865941A (zh) * | 2012-12-11 | 2014-06-18 | 丰益(上海)生物技术研发中心有限公司 | 一种来源于枝孢霉的脂肪酶、其编码基因序列及其用途 |
CN103865941B (zh) * | 2012-12-11 | 2018-02-16 | 丰益(上海)生物技术研发中心有限公司 | 一种来源于枝孢霉的脂肪酶、其编码基因序列及其用途 |
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