JPS637778A - 任意メチロトロ−フ性細菌の新菌株 - Google Patents
任意メチロトロ−フ性細菌の新菌株Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明は、任意メチロトローフ性細菌菌種であるメチロ
フィルス・ビスコゲネス(Methylophilus
viscogenes)の新菌株ATCC53412
およびその変異株、ならびにそれを利用したエキソ多糖
の製造方法およびメタノールの醗酵方法に関する。メチ
ロフィルス・ビスコゲネスの菌株ATCC53412は
、リブロース−リン酸経路によりメタノールを同化して
、好気性培養条件下で細胞外ヘテロ多糖ポリ54を形成
することができる。
フィルス・ビスコゲネス(Methylophilus
viscogenes)の新菌株ATCC53412
およびその変異株、ならびにそれを利用したエキソ多糖
の製造方法およびメタノールの醗酵方法に関する。メチ
ロフィルス・ビスコゲネスの菌株ATCC53412は
、リブロース−リン酸経路によりメタノールを同化して
、好気性培養条件下で細胞外ヘテロ多糖ポリ54を形成
することができる。
(従来の技術)
C1化合物からの単細胞タンパク質(SCP)の製造に
ついては、このIO年間に学術的もしくは工業的な実験
室で広く研究されてきた。三菱瓦斯化学■、ヘキスト社
、IC1社などの企業がパイロットプラントでの研究を
行ってきたが、現在ではICI社のみが本格規模のSC
P工場を稼動させている。IC1社のこの製品は「プル
ティーン(Pruteen) Jなる登録商標で呼ばれ
、この製品は絶対メチロトローフ性の細菌であるメチロ
フィルス・メチロトロフス(Methylophilu
s methylotr。
ついては、このIO年間に学術的もしくは工業的な実験
室で広く研究されてきた。三菱瓦斯化学■、ヘキスト社
、IC1社などの企業がパイロットプラントでの研究を
行ってきたが、現在ではICI社のみが本格規模のSC
P工場を稼動させている。IC1社のこの製品は「プル
ティーン(Pruteen) Jなる登録商標で呼ばれ
、この製品は絶対メチロトローフ性の細菌であるメチロ
フィルス・メチロトロフス(Methylophilu
s methylotr。
phus)の醗酵により製造され、これは最終的に分離
・乾燥されて粉末もしくは顆粒状で得ている。
・乾燥されて粉末もしくは顆粒状で得ている。
メチロフィルス・メチロトロフスはホルムアルデヒド固
定のりブロース−リン酸経路(RMP)を利用する絶対
メチロトローフである。メチロフィルス・メチロトロフ
スの菌株AS−1は、1木の8i!鞭毛を持ったゲノム
陰性の非着色桿菌である。
定のりブロース−リン酸経路(RMP)を利用する絶対
メチロトローフである。メチロフィルス・メチロトロフ
スの菌株AS−1は、1木の8i!鞭毛を持ったゲノム
陰性の非着色桿菌である。
SCPの生産において、メタノール供給原料は操業コス
トの最も大きな割合を占めており、従って微生物増殖速
度の増大はsep生産の操業コストに直接影響してくる
。この理由により、ICI社は、組換えDNA技術を応
用してメチロフィルス・メチロトロフスの細菌のゲノム
を変質させることにより菌体収量を増大させている。大
腸苗(Escherichia colt)から得たよ
り効率的なグルタミン酸・デヒロドゲナーゼ窒素同化系
に対する遺伝子をクローニングし、メチロフィルス・メ
チロトロフスの菌株に挿入した。この菌株は、予めDN
A突然変異により遮断されたその効率がより小さいグル
タミン酸・シンターゼ窒素同化系を有していた(J、
Windass et al、、 Nature、 2
87+ 396(1980)に記載〕。
トの最も大きな割合を占めており、従って微生物増殖速
度の増大はsep生産の操業コストに直接影響してくる
。この理由により、ICI社は、組換えDNA技術を応
用してメチロフィルス・メチロトロフスの細菌のゲノム
を変質させることにより菌体収量を増大させている。大
腸苗(Escherichia colt)から得たよ
り効率的なグルタミン酸・デヒロドゲナーゼ窒素同化系
に対する遺伝子をクローニングし、メチロフィルス・メ
チロトロフスの菌株に挿入した。この菌株は、予めDN
A突然変異により遮断されたその効率がより小さいグル
タミン酸・シンターゼ窒素同化系を有していた(J、
Windass et al、、 Nature、 2
87+ 396(1980)に記載〕。
メタノールは一般に単細胞タンパク質製造用の基質とし
て検討されているが、メタノールをSCP製造に適格と
する因子により、これはまたエギソ多糖類のような蓄積
された細胞外代謝産物の製造用の供給原料としても有望
である。メタノールを付加価値のある製品に転化させる
多くの微生物学的方法が発表されているが、それらは−
般にアミノ酸のような低容積/高価格の化合物である。
て検討されているが、メタノールをSCP製造に適格と
する因子により、これはまたエギソ多糖類のような蓄積
された細胞外代謝産物の製造用の供給原料としても有望
である。メタノールを付加価値のある製品に転化させる
多くの微生物学的方法が発表されているが、それらは−
般にアミノ酸のような低容積/高価格の化合物である。
たとえば、J、 Bolbot #よびC,A41th
onyは、Proc、 Soc、 Gen、 Micr
obial、 5+ 43 (1978)において、シ
ュードモナス(Pseudomonas) A M I
のピルビン酸デヒドロゲナーゼ欠乏変異株がメタノール
での増殖中にアミノ酸であるアラニンとバリンを蓄積で
きることを見出した。Y、 Tan1 らは、Agri
c、Biol、 Chem、、 42.2275 (1
978)に、アルスロバクタ−・グロビフォルミス(A
rthrobactor gl。
onyは、Proc、 Soc、 Gen、 Micr
obial、 5+ 43 (1978)において、シ
ュードモナス(Pseudomonas) A M I
のピルビン酸デヒドロゲナーゼ欠乏変異株がメタノール
での増殖中にアミノ酸であるアラニンとバリンを蓄積で
きることを見出した。Y、 Tan1 らは、Agri
c、Biol、 Chem、、 42.2275 (1
978)に、アルスロバクタ−・グロビフォルミス(A
rthrobactor gl。
biformis)の菌株を使用してメタノールから5
,2g/lまでのし一セリンが生産されることを述べて
いる。しかし、日常消費型の大量化学物質へのメタノー
ルの生転化に関しては現在まで未だに報告がない。
,2g/lまでのし一セリンが生産されることを述べて
いる。しかし、日常消費型の大量化学物質へのメタノー
ルの生転化に関しては現在まで未だに報告がない。
(発明が解決しようとする問題点)
よって、本発明の目的は、C1化合物を蓄積した量の細
胞外代謝産物に生転化させる醗酵方法を提供することで
ある。
胞外代謝産物に生転化させる醗酵方法を提供することで
ある。
本発明の別の目的は、メタノール基質を蓄積した量のエ
キソ多糖に生成比させるための、急速増殖培養基を提供
することである。
キソ多糖に生成比させるための、急速増殖培養基を提供
することである。
本発明のさらに別の目的は、メチロフィルス・ビスコゲ
ネスの菌株ATCC53412もしくはその変異株を特
徴づける菌学的性質を有するメチロトローフ性細菌菌株
を提供することである。
ネスの菌株ATCC53412もしくはその変異株を特
徴づける菌学的性質を有するメチロトローフ性細菌菌株
を提供することである。
本発明のさらに別の目的は、水溶液に凝似望性およびチ
キソトロピー性を付与するのに適した性質を示すペテロ
多糖を提供することである。
キソトロピー性を付与するのに適した性質を示すペテロ
多糖を提供することである。
本発明のその他の目的および利点は、以下の詳細な説明
および実施例から明らかとなろう。
および実施例から明らかとなろう。
(問題点を解決するための手段)
本発明の目的は、下記の菌学的性質:
+8+好気性、ゲノム陰性、桿状、運動性で、極鞭毛を
持った細胞; (blリブロース−リン酸経路によりメタノールを同化
することができるメチロトローフ性;(C+フルクトー
スにより増殖可能;およびfdl約30〜43℃の培地
温度で最適増殖速度:で特徴づけられる新規な細菌菌株
の提供により達成される。
持った細胞; (blリブロース−リン酸経路によりメタノールを同化
することができるメチロトローフ性;(C+フルクトー
スにより増殖可能;およびfdl約30〜43℃の培地
温度で最適増殖速度:で特徴づけられる新規な細菌菌株
の提供により達成される。
別の態様において、本発明は菌株ATCC53412の
菌学的性質を有する細菌培養株を提供し、この培養閑は
メタノールを細胞外に蓄積するヘテロ多糖に好気的に止
転化させることができる。
菌学的性質を有する細菌培養株を提供し、この培養閑は
メタノールを細胞外に蓄積するヘテロ多糖に好気的に止
転化させることができる。
寄託番号ATCC53412の菌株の二次培養株は、米
国メリーランド州ロックビル所在のアメリカン・タイプ
・カルチャー・コレクション(ATCC)の永続的微生
物コレクションから請求により入手することができる。
国メリーランド州ロックビル所在のアメリカン・タイプ
・カルチャー・コレクション(ATCC)の永続的微生
物コレクションから請求により入手することができる。
この微生物の永続的寄託は、特許手続き上のブダペスト
条約の要件に従ってなされた。
条約の要件に従ってなされた。
菌株ATCC53412の菌学的性質を有する細菌菌株
は、メチロフィルス・メチロトローフのような既知のメ
チロトローフ性菌種のいずれにも属さない。分類学的同
定のために、ATCC53412菌株およびその変異株
の菌学的性質を有する細菌菌株を包含するこの新規な任
意メチロトローフ性の菌種は、メチロフィルス・ビスコ
ゲネスと命名された。
は、メチロフィルス・メチロトローフのような既知のメ
チロトローフ性菌種のいずれにも属さない。分類学的同
定のために、ATCC53412菌株およびその変異株
の菌学的性質を有する細菌菌株を包含するこの新規な任
意メチロトローフ性の菌種は、メチロフィルス・ビスコ
ゲネスと命名された。
本明細書で使用した「メチロトローフ」なる用語は、1
もしくは2以上の炭素原子を含有するが、炭素−炭素結
合を含有していない炭素化合物により非独立栄養的に増
殖することのできる微生物を意味する。「独立栄養的」
とは、二酸化炭素基質による増殖を意味する。
もしくは2以上の炭素原子を含有するが、炭素−炭素結
合を含有していない炭素化合物により非独立栄養的に増
殖することのできる微生物を意味する。「独立栄養的」
とは、二酸化炭素基質による増殖を意味する。
本明細書において[任意メチロトローフ」とは、1種も
しくは2種以上の従属栄養基質(例、フルクトース)上
で増殖できるメチロトローフを意味する。
しくは2種以上の従属栄養基質(例、フルクトース)上
で増殖できるメチロトローフを意味する。
本明細書で使用した「C8化合物」なる用語は、メタノ
ール、ホルムアルデヒド、ギ酸、ホルムアミド、−酸化
炭素、ジメチルエーテル、メチルアミン、ジメチルアミ
ン、トリメチルアミンおよびトリメチルアミンN−オキ
シドのように、炭素−炭素結合を全く含有しない有機化
合物を意味する。
ール、ホルムアルデヒド、ギ酸、ホルムアミド、−酸化
炭素、ジメチルエーテル、メチルアミン、ジメチルアミ
ン、トリメチルアミンおよびトリメチルアミンN−オキ
シドのように、炭素−炭素結合を全く含有しない有機化
合物を意味する。
本明細書において、「エキソ多糖」とは、キサン(キサ
ンタン・ガム)およびポリ54 (Poly 54)で
例示されるような、醗酵培地中に細胞外代謝産物として
蓄積する多糖を意味する。
ンタン・ガム)およびポリ54 (Poly 54)で
例示されるような、醗酵培地中に細胞外代謝産物として
蓄積する多糖を意味する。
本明細書において、「ヘテロ多糖」とは、少なくとも2
゛種類の異なる単lPi単位、たとえばマンノースおよ
びガラクトース、から構成される多糖を意味する。
゛種類の異なる単lPi単位、たとえばマンノースおよ
びガラクトース、から構成される多糖を意味する。
本明細書で使用した「リブロース−リン酸経路J (
RMP)とは、ホルムアルデヒド3分子が縮合してピル
ビン酸1分子か、またはジヒドロキンアセトンリン酸1
分子のいずれかを生成する生化学回路を意味する。
RMP)とは、ホルムアルデヒド3分子が縮合してピル
ビン酸1分子か、またはジヒドロキンアセトンリン酸1
分子のいずれかを生成する生化学回路を意味する。
リブロース−リン酸経路およびその変形例の解明に関す
る生化学の文献には、J、 Stroem et al
、。
る生化学の文献には、J、 Stroem et al
、。
バイオケミカル・ジャーナル(Biochem、 J、
)+ 144、465 (1974) ; C,A
nthony、サイエンティフィツク・プログレス(S
ci、 Prog、)、 62.167 (1975)
:およびCo1by et al、、バイオケミカル・
ジャーナル(Biochem、 J、)、 148.5
13 (1975)がある。
)+ 144、465 (1974) ; C,A
nthony、サイエンティフィツク・プログレス(S
ci、 Prog、)、 62.167 (1975)
:およびCo1by et al、、バイオケミカル・
ジャーナル(Biochem、 J、)、 148.5
13 (1975)がある。
リブロース−リン酸経路には、6−ホスホグルコン酸デ
ヒドラーゼ/ホスホ−2−ケト−3−デオキシグルコン
酸アルドラーゼ;フルクトースニリン酸アルドラーゼ;
グルコース−6−リン酸デヒドロゲナーゼ;3−へキス
ロースリン酸シンターゼ;ホスホフルクトキナーゼ;ホ
スホグルコイソメラーゼ;ホスホル3−ヘキスロースイ
ソメラーゼ;ホスホリボイソメラーゼ;リブロース−5
−リン酸3−エピメラーゼ;トランスアルドラーゼ;ト
ランスケトラーゼ;セドヘプツロースニリン酸アルドラ
ーゼ;およびセドヘプツロース−1゜7−ジホスフアタ
ーゼを包含する酵素が関与している。
ヒドラーゼ/ホスホ−2−ケト−3−デオキシグルコン
酸アルドラーゼ;フルクトースニリン酸アルドラーゼ;
グルコース−6−リン酸デヒドロゲナーゼ;3−へキス
ロースリン酸シンターゼ;ホスホフルクトキナーゼ;ホ
スホグルコイソメラーゼ;ホスホル3−ヘキスロースイ
ソメラーゼ;ホスホリボイソメラーゼ;リブロース−5
−リン酸3−エピメラーゼ;トランスアルドラーゼ;ト
ランスケトラーゼ;セドヘプツロースニリン酸アルドラ
ーゼ;およびセドヘプツロース−1゜7−ジホスフアタ
ーゼを包含する酵素が関与している。
RMP回路においては、3分子のホルムアルデヒドが3
分子のりブロース5−リン酸と効果的に縮合して3分子
のフルクトース6−リン酸が生成し、次いでこの生成物
からこの回路により3分子のりブロース5−リン酸が再
生されるので、全体としては1分子のジヒドロキシアセ
トンリン酸もしくはピルビン酸が生産される。かかる代
謝産物は、細胞生合成の基質として機能する。
分子のりブロース5−リン酸と効果的に縮合して3分子
のフルクトース6−リン酸が生成し、次いでこの生成物
からこの回路により3分子のりブロース5−リン酸が再
生されるので、全体としては1分子のジヒドロキシアセ
トンリン酸もしくはピルビン酸が生産される。かかる代
謝産物は、細胞生合成の基質として機能する。
この回路の2つの重要な酵素は、ホルムアルデヒドとり
ブロース5−リン酸との縮合、およびこの生成物のフル
クトース6−リン酸への転化の各反応を触媒する酵素で
あるヘキスロースリン酸シンターゼおよびヘキスロース
リン酸イソメラーゼであると考えられる。RMP回路の
2つの認められた変異回路、すなわちジヒドロキシアセ
トンリン酸を生成するフルクトースビスリン酸変異回路
と、ピルビン酸を生成するエントナー・ドゥドロフ変異
回路がある。
ブロース5−リン酸との縮合、およびこの生成物のフル
クトース6−リン酸への転化の各反応を触媒する酵素で
あるヘキスロースリン酸シンターゼおよびヘキスロース
リン酸イソメラーゼであると考えられる。RMP回路の
2つの認められた変異回路、すなわちジヒドロキシアセ
トンリン酸を生成するフルクトースビスリン酸変異回路
と、ピルビン酸を生成するエントナー・ドゥドロフ変異
回路がある。
メチロフィルス・ビスコゲネス !
米国テキサス州ビションブ所在のメタノール製造工場の
操業部付近で採取した土壌および水の試料を使用して一
連の分離を行った。試料をまずメタノール利用微生物の
存在についてスクリーニングした。
操業部付近で採取した土壌および水の試料を使用して一
連の分離を行った。試料をまずメタノール利用微生物の
存在についてスクリーニングした。
各試料の一部を、メタノール(0,5χv/v)ならび
に適当な栄養培地、たとえば第1表に例示した無機塩1
’i(MS)培地+塩化アンモニウム1g/lを入れた
250 mlの三角フラスコに接種した。このフラスコ
を、30〜55℃の範囲内の各種温度で保温して培養を
行った。増殖の表示となる検出可能な混濁が認められた
ら、各試料を2mlづつ取り出し、これを使用して上と
同様の培地を入れた滅菌フラスコにそれぞれ接種した。
に適当な栄養培地、たとえば第1表に例示した無機塩1
’i(MS)培地+塩化アンモニウム1g/lを入れた
250 mlの三角フラスコに接種した。このフラスコ
を、30〜55℃の範囲内の各種温度で保温して培養を
行った。増殖の表示となる検出可能な混濁が認められた
ら、各試料を2mlづつ取り出し、これを使用して上と
同様の培地を入れた滅菌フラスコにそれぞれ接種した。
最初の各試料について、次代の二次培養液を多数採取し
、次いでこの培養液を平板寒天培地で画線培養して、独
立した微生物mRコロニーを得、これからメタノール同
化微生物の純粋培養菌を得た。このようにしてATCC
398931株を単離し、これを生物学的に純粋な培養
菌として得た。新規苗株ATCC39893の分離およ
び特性に関しては、特願昭61−241201号に説明
されている。
、次いでこの培養液を平板寒天培地で画線培養して、独
立した微生物mRコロニーを得、これからメタノール同
化微生物の純粋培養菌を得た。このようにしてATCC
398931株を単離し、これを生物学的に純粋な培養
菌として得た。新規苗株ATCC39893の分離およ
び特性に関しては、特願昭61−241201号に説明
されている。
本発明のメチロフィルス・ビスコゲネスの菌株^TCC
53412は、上記メチロフィルス・ビスコゲネス菌株
ATCC39893の培養菌から自然突然変異株として
単離された新規微生物である。
53412は、上記メチロフィルス・ビスコゲネス菌株
ATCC39893の培養菌から自然突然変異株として
単離された新規微生物である。
メチロフィルス・ビスコゲネスの各菌株は新規な組合せ
の性質を示し、それによりこれらは他のメチロトローフ
性細菌から区別される。メチロフィルス・ビスコゲネス
の菌株ATCC53412は、C8同化のりブロース−
リン酸経路を利用し、35〜40℃で1.5〜2時間と
いう非常に短い増殖速度倍加時間を有する任意メチロト
ローフである。この増殖速度倍加時間は、上記苗株AT
CC39893の増殖速度の約2倍であり、既知のあら
ゆるメチロトローフ性細菌の増殖速度を上回るものであ
る。
の性質を示し、それによりこれらは他のメチロトローフ
性細菌から区別される。メチロフィルス・ビスコゲネス
の菌株ATCC53412は、C8同化のりブロース−
リン酸経路を利用し、35〜40℃で1.5〜2時間と
いう非常に短い増殖速度倍加時間を有する任意メチロト
ローフである。この増殖速度倍加時間は、上記苗株AT
CC39893の増殖速度の約2倍であり、既知のあら
ゆるメチロトローフ性細菌の増殖速度を上回るものであ
る。
ATCC53412菌株はメタノール、フルクトースお
よびグルコースを基質として増殖する。また、ギ酸もし
くはメタノールの形態の外来エネルギー供給が存在する
場合には、この菌株はより広範囲の従属栄養基質(例、
コハク酸およびピルビン酸)でも増殖しよう。これは、
既知のどの微生物についても報告されたことのない特性
である。同定のために、この現象を示す細菌を、ここに
「潜在的任意メチロトローフ」と呼ぶことにする。
よびグルコースを基質として増殖する。また、ギ酸もし
くはメタノールの形態の外来エネルギー供給が存在する
場合には、この菌株はより広範囲の従属栄養基質(例、
コハク酸およびピルビン酸)でも増殖しよう。これは、
既知のどの微生物についても報告されたことのない特性
である。同定のために、この現象を示す細菌を、ここに
「潜在的任意メチロトローフ」と呼ぶことにする。
ATCC53412菌株の特徴を包含する性質を有する
細菌はさらに、メタノール寒天培地での淡橙色コロニー
の粘液性増殖によっても特徴づけられる。
細菌はさらに、メタノール寒天培地での淡橙色コロニー
の粘液性増殖によっても特徴づけられる。
ATCC53412型菌株のメチロトローフ性細菌の別
の菌学的特徴は、ヘキスロースリン酸シンターゼ/ヘキ
スロースリン酸イソメラーゼi性(J、 P。
の菌学的特徴は、ヘキスロースリン酸シンターゼ/ヘキ
スロースリン酸イソメラーゼi性(J、 P。
Van Dijken et at、、エフ・イー・エ
ム・ニス・マイクロバイオロジカル・レター(FBMS
門1crobiol。
ム・ニス・マイクロバイオロジカル・レター(FBMS
門1crobiol。
Letter)、 4.97 (1978) )が、タ
ンパク質1■につき1分間のNADH生成量で少なくと
も約400ナノモルであることである。
ンパク質1■につき1分間のNADH生成量で少なくと
も約400ナノモルであることである。
任意メチロトローフであるATCC53412型菌株の
顕著な別の特性は、メタノール基質を主転化させて、水
溶液に擬似塑性とチキソトロピー性とを付与するエキソ
多糖を蓄積した量で生成する能力である。ATCC53
412菌株の細菌は、細胞増殖の有無にかかわらず多様
な培養条件下で培地中に多量の蓄積したエキソ多糖を生
成することができる点で特に顕著である。ATCC53
412菌株の細菌は、利用可能な炭素源のうちエキソ多
糖の生合成に利用される割合が大きいという固有の能力
を有している。
顕著な別の特性は、メタノール基質を主転化させて、水
溶液に擬似塑性とチキソトロピー性とを付与するエキソ
多糖を蓄積した量で生成する能力である。ATCC53
412菌株の細菌は、細胞増殖の有無にかかわらず多様
な培養条件下で培地中に多量の蓄積したエキソ多糖を生
成することができる点で特に顕著である。ATCC53
412菌株の細菌は、利用可能な炭素源のうちエキソ多
糖の生合成に利用される割合が大きいという固有の能力
を有している。
メチロフィルス・ビスコゲネスATCC53412型の
菌株は、炭素源、窒素源、塩類、および各種増殖促進物
質を含存する栄養培地中で好気培養することができる。
菌株は、炭素源、窒素源、塩類、および各種増殖促進物
質を含存する栄養培地中で好気培養することができる。
適当な窒素源には、硫酸アンモニウム、塩化アンモニウ
ム、アンモニア、リン酸ニアンモニウム、硝酸アンモニ
ウム、硝酸ナトリウム、尿素、コーン浸出液、カゼイン
、ペプトン、酵母エキス、肉エキスなどがある。
ム、アンモニア、リン酸ニアンモニウム、硝酸アンモニ
ウム、硝酸ナトリウム、尿素、コーン浸出液、カゼイン
、ペプトン、酵母エキス、肉エキスなどがある。
好適な無機塩類としては、カルシウム塩、マグネシウム
塩、カリウム塩、リン酸塩、鉄塩、マンガン塩、亜鉛塩
、銅塩などがある。細菌増殖促進物質としては、大豆タ
ンパク質加水分解吻、酵母エキス、ビタミンおよびアミ
ノ酸が挙げられる。
塩、カリウム塩、リン酸塩、鉄塩、マンガン塩、亜鉛塩
、銅塩などがある。細菌増殖促進物質としては、大豆タ
ンパク質加水分解吻、酵母エキス、ビタミンおよびアミ
ノ酸が挙げられる。
栄養培地中での倣生物の培養は、典型的には振盪培養も
しくは液内培養により35〜40℃の温度および約6.
7〜7.1のpHで好気的に行われる。
しくは液内培養により35〜40℃の温度および約6.
7〜7.1のpHで好気的に行われる。
本明細書で使用した「変異株」とは、親菌株から誘導さ
れた菌株であって、親菌株とは表現型および/または遺
伝子型が異なり、エキソ多糖を生合成することができる
というメチロトローフ性視苗株の能力を示すメチロフィ
ルス・ビスコゲネスの菌株を意味する。
れた菌株であって、親菌株とは表現型および/または遺
伝子型が異なり、エキソ多糖を生合成することができる
というメチロトローフ性視苗株の能力を示すメチロフィ
ルス・ビスコゲネスの菌株を意味する。
工土ヱ芝糖豊生皇
前述した培養条件を採用すると、本発明のメチロフィル
ス・ビスコゲネスの菌株はエキソ多糖ヲ高濃度かつ高い
炭素源利用率で生産し、蓄積する。
ス・ビスコゲネスの菌株はエキソ多糖ヲ高濃度かつ高い
炭素源利用率で生産し、蓄積する。
菌株ATCC53412は、メタノールを増殖炭素源と
して使用した場合、培地11に対してで約10g/lま
での量でエキソ多糖を生産することができる。
して使用した場合、培地11に対してで約10g/lま
での量でエキソ多糖を生産することができる。
エキソ多糖の収率は、メタノールの使用量に基づいて通
常は約30〜60%の範囲内となろう。
常は約30〜60%の範囲内となろう。
よって、別の態様において、本発明は、増殖炭素源(例
、C0化合物もしくはフルクトース)を含有する栄養培
地中でATCC53412型のメチロフィルス・ビスコ
ゲネス閏株を好気培養して、ヘテロ多糖を蓄積する量の
細胞外生産物として生成させることからなる、ヘテロ多
糖の製造方法を提供する。
、C0化合物もしくはフルクトース)を含有する栄養培
地中でATCC53412型のメチロフィルス・ビスコ
ゲネス閏株を好気培養して、ヘテロ多糖を蓄積する量の
細胞外生産物として生成させることからなる、ヘテロ多
糖の製造方法を提供する。
さらに別の態様において、本発明は、増殖炭素源として
メタノールを含有する栄養培地中でメチロフィルス・ビ
スコゲネスの菌株ATCC53412もしくはその変異
株を好気培養して、蓄積量の細胞外生産物としてヘテロ
多糖ポリ54を生成させ、この生産物を培地から回収す
ることからなる、ヘテロ多糖の製造方法を提供する。
メタノールを含有する栄養培地中でメチロフィルス・ビ
スコゲネスの菌株ATCC53412もしくはその変異
株を好気培養して、蓄積量の細胞外生産物としてヘテロ
多糖ポリ54を生成させ、この生産物を培地から回収す
ることからなる、ヘテロ多糖の製造方法を提供する。
醗酵操作の完了後、全菌体を遠心分離、限外口過もしく
は加熱滅菌などの慣用手段によりブロスから取り除く、
残った上清液からヘテロ多糖は凍結乾燥、もしくは水溶
性有機溶剤(例、アセトン、メタノール、エタノールな
ど)による沈殿などの適宜手段により回収される。ヘテ
ロ多糖の沈殿は、溶液をカルシウム塩で処理することに
よっても行うことができる。
は加熱滅菌などの慣用手段によりブロスから取り除く、
残った上清液からヘテロ多糖は凍結乾燥、もしくは水溶
性有機溶剤(例、アセトン、メタノール、エタノールな
ど)による沈殿などの適宜手段により回収される。ヘテ
ロ多糖の沈殿は、溶液をカルシウム塩で処理することに
よっても行うことができる。
得られた粗製のヘテロ多糖の精製は、これを水に再溶解
させ、この水溶液を次いで透析および凍結乾燥して、精
製生成物とすることにより実施できる。
させ、この水溶液を次いで透析および凍結乾燥して、精
製生成物とすることにより実施できる。
こうして得られた新規生成物であるヘテロ多糖ポリ54
の平均分子量は、約aoo、ooo〜1,500,00
0の範囲内である。
の平均分子量は、約aoo、ooo〜1,500,00
0の範囲内である。
ヘテロ多糖ポリ54の粘度は、ブルックフィールドRV
T粘度計のスピンドル寛4により25℃で測定して、1
2 rpmでの0.5%粘度が2100 cpsである
。
T粘度計のスピンドル寛4により25℃で測定して、1
2 rpmでの0.5%粘度が2100 cpsである
。
ヘテロ多糖ポリ54の水溶液は無色透明で、擬似塑性お
よびチキソトロピー性の粘度特性を示す。この水溶液の
粘度特性は、約130℃までの温度、および約12まで
OpH値で安定である。
よびチキソトロピー性の粘度特性を示す。この水溶液の
粘度特性は、約130℃までの温度、および約12まで
OpH値で安定である。
低セン断速度条件下で、ヘテロ多糖ポリ54は、−般に
市販のキサンタン・ガムの約2〜30倍という見掛は粘
度を示す、ヘテロ多糖ポリ54および市販のキサンタン
・ガム(例、ケルザン、 Kelzan)のセン断条件
下での粘度特性の比較データは、特開昭61−2412
01号に示されている。
市販のキサンタン・ガムの約2〜30倍という見掛は粘
度を示す、ヘテロ多糖ポリ54および市販のキサンタン
・ガム(例、ケルザン、 Kelzan)のセン断条件
下での粘度特性の比較データは、特開昭61−2412
01号に示されている。
ヘテロ多糖ポリ54のその他の物理化学的および構造上
の特徴は次の通りである。
の特徴は次の通りである。
A、枦の (モル%)
グルコース lO
ガラクトース 7〜10
マンノース 1〜3
グリクロン 1〜3
グリクロン酸(glycuronic acid)成分
は、グルクロン酸および/またはガラクツロン酸および
/またはマンヌロン酸を含む。
は、グルクロン酸および/またはガラクツロン酸および
/またはマンヌロン酸を含む。
ヘテロ多糖ポリ54は、ピルビン酸もしくはタンパク賞
含有量を示さず、4単糖単位あたり約1個のアセチル基
を含有し、約1〜3重量%の窒素を含有する。
含有量を示さず、4単糖単位あたり約1個のアセチル基
を含有し、約1〜3重量%の窒素を含有する。
B、メ1」」Lゼ幻−゛
C39,2
H6,1
043、I
N 2.1?
本平均値;灰分補正済
以下の実施例は本発明をさらに例示するためのものであ
る。使用した要素および具体的成分は代表例として示し
たものであって、本発明の範囲内で以上の説明に基づい
て各種の変更をなすことができる。
る。使用した要素および具体的成分は代表例として示し
たものであって、本発明の範囲内で以上の説明に基づい
て各種の変更をなすことができる。
メタノール同化細菌の増殖に対しては、無機塩類培地(
MS)(第1表)を使用した。この培地に、l g/
1の硝酸カリウムを補給して硝酸無機塩類培地(NMS
)とするか、または1g/lの塩化アンモニウムを補給
してアンモニウム無機塩類培地(、へMS)とした。炭
素源のメタノールは0.2〜0.5χ(v/ν)の濃度
で使用するのが好ましい。
MS)(第1表)を使用した。この培地に、l g/
1の硝酸カリウムを補給して硝酸無機塩類培地(NMS
)とするか、または1g/lの塩化アンモニウムを補給
してアンモニウム無機塩類培地(、へMS)とした。炭
素源のメタノールは0.2〜0.5χ(v/ν)の濃度
で使用するのが好ましい。
固体培地に対しては、滅菌の前に17g#!のジフコ社
製細菌用寒天(バタトアガー)を基本の無機塩類培地(
リン酸塩は存在させず)に添加する。
製細菌用寒天(バタトアガー)を基本の無機塩類培地(
リン酸塩は存在させず)に添加する。
次いで、滅菌した無機塩類培地に冷却後に滅菌リン酸塩
溶液を無菌添加する。
溶液を無菌添加する。
醗酵操作は、ニュー・プランズウィソク・マイクロファ
ーム醗酵装置(容1141 )を使用して行う。使用容
積は101とし、醗酵装置の滅菌後にメタノールを無菌
添加する。2127m1nの空気供給速度で、20Or
pmの攪拌速度を恒常的に使用する。
ーム醗酵装置(容1141 )を使用して行う。使用容
積は101とし、醗酵装置の滅菌後にメタノールを無菌
添加する。2127m1nの空気供給速度で、20Or
pmの攪拌速度を恒常的に使用する。
この醗酵装置は、pHおよび溶解酸素制御手段を備えて
いる。
いる。
ヘキスロースリン酸シンターゼの触媒作用の生成物であ
るヘキスロース6−リン酸の分析法がないので、ヘキス
ロースリン酸シンターゼ/ヘキスロースリン酸イソメラ
ーゼを同時に分析する。ヘキスロースリン酸イソメラー
ゼにより、ヘキスロース6−リン酸はグルコース6−リ
ン酸に転化され、このグルコース6−リン酸はグルコー
ス6−リン酸デヒドロゲナーゼを使用し、同時に起こる
NADP″還元を340 nmで追跡することにより測
定することができる。この酵素分析溶液は次の成分を含
有する (最終濃度)ニリン酸緩衝液50 mM、 p
H7,2;塩化マグネシウム2.5mM;グルコース6
−リン酸デヒドロゲナーゼ0.7車位;ホスホグルコイ
ソメラーゼ0.75jR位;ホスホリボースイソメラー
ゼ1.75華位;リボース5−リン!25111M ;
NAOP’ 0.25 mM ;ならびにホルムア
ルデヒド5mM。
るヘキスロース6−リン酸の分析法がないので、ヘキス
ロースリン酸シンターゼ/ヘキスロースリン酸イソメラ
ーゼを同時に分析する。ヘキスロースリン酸イソメラー
ゼにより、ヘキスロース6−リン酸はグルコース6−リ
ン酸に転化され、このグルコース6−リン酸はグルコー
ス6−リン酸デヒドロゲナーゼを使用し、同時に起こる
NADP″還元を340 nmで追跡することにより測
定することができる。この酵素分析溶液は次の成分を含
有する (最終濃度)ニリン酸緩衝液50 mM、 p
H7,2;塩化マグネシウム2.5mM;グルコース6
−リン酸デヒドロゲナーゼ0.7車位;ホスホグルコイ
ソメラーゼ0.75jR位;ホスホリボースイソメラー
ゼ1.75華位;リボース5−リン!25111M ;
NAOP’ 0.25 mM ;ならびにホルムア
ルデヒド5mM。
少しでもヒドロキシピルビン酸レダクターゼが存在する
ことは、微生物においてセリン経路のホルムアルデヒド
同化が起こったことを示す。この酵素:よ、次の成分を
含有する(最終濃度)酵素分析z液により測定できるニ
リン酸カリウム1恥pl+ 6.3 ;ヒドロキンピル
ビン酸リチウム0.01 M;およびN、1nll 2
mM 、 NADIIの消失を340 nmで測定す
る。
ことは、微生物においてセリン経路のホルムアルデヒド
同化が起こったことを示す。この酵素:よ、次の成分を
含有する(最終濃度)酵素分析z液により測定できるニ
リン酸カリウム1恥pl+ 6.3 ;ヒドロキンピル
ビン酸リチウム0.01 M;およびN、1nll 2
mM 、 NADIIの消失を340 nmで測定す
る。
グリセロールおよびジヒドロキシアセトンの測定は、グ
リセロールデヒドロゲナーゼ/ジヒドロキシアセトンレ
ダクターゼ(グリセロール:NAD’2−オキシドレダ
クターゼ、 EC1,1,1,6)により行われる。こ
の酵素は、エンテロバクタ−・アエロゲネス(Ente
robacter aerogenes)から誘導され
、シグマ・バイオケミカルズ社より入手できる。
リセロールデヒドロゲナーゼ/ジヒドロキシアセトンレ
ダクターゼ(グリセロール:NAD’2−オキシドレダ
クターゼ、 EC1,1,1,6)により行われる。こ
の酵素は、エンテロバクタ−・アエロゲネス(Ente
robacter aerogenes)から誘導され
、シグマ・バイオケミカルズ社より入手できる。
グリセロールの測定に対しては、反応混合物(1,0m
l)は、50μmolのトリス−11cl纒衝液(シグ
マ・バイオケミカルズ社)+ pl(9,7;0.2
μmolのMAD“ ;1単位の酵素;および15μm
olのグリセロール(もしくは試験溶液/醗酵ブロス、
20〜50μm)を含有する。分析は、基質の添加によ
り開始され、その後、ペックマン25型UV分光光度計
により340 nmでの吸光度の増大を監視する。
l)は、50μmolのトリス−11cl纒衝液(シグ
マ・バイオケミカルズ社)+ pl(9,7;0.2
μmolのMAD“ ;1単位の酵素;および15μm
olのグリセロール(もしくは試験溶液/醗酵ブロス、
20〜50μm)を含有する。分析は、基質の添加によ
り開始され、その後、ペックマン25型UV分光光度計
により340 nmでの吸光度の増大を監視する。
ジヒドロキシアセトンの測定に対しては、反応混合物(
1,0ml)は、50μmolのリンt1211 jJ
: ?Pi 。
1,0ml)は、50μmolのリンt1211 jJ
: ?Pi 。
pH6,0;0.5 μmolのNADH: 1単位の
酵素:および15μmo! のジヒドロキシアセトン(
もしくは試験溶液/醗酵プロス、20〜50μm)を含
有する。
酵素:および15μmo! のジヒドロキシアセトン(
もしくは試験溶液/醗酵プロス、20〜50μm)を含
有する。
分析は、基質の添加により開始され、その後340nm
での吸光度の減少を監視する。
での吸光度の減少を監視する。
生成したエキソ多I唐(例、ヘテロ多糖ポリ54)は、
メチロフィルス・ビスコゲネスの菌株の培養作業が完了
してから回収する。醗酵装置がらプロスを取り出し、全
菌体を遠心分M (13,000x gで10分間)に
より取り除く。生成したエキソ多糖を通常はイソプロパ
ツールの添加により溶液から析出させて単離する。
メチロフィルス・ビスコゲネスの菌株の培養作業が完了
してから回収する。醗酵装置がらプロスを取り出し、全
菌体を遠心分M (13,000x gで10分間)に
より取り除く。生成したエキソ多糖を通常はイソプロパ
ツールの添加により溶液から析出させて単離する。
エキソ多糖類の水溶液のレオロジー特性の測定を、ウェ
ルズ(Wel Is) / 7’ルツクフイールド・コ
ーン/プレート・ディジタル式粘度計、あるいは同軸シ
リンダ・センサ・システムを取りつけたレオマット (
Rheomat) 30型粘度計により行う。
ルズ(Wel Is) / 7’ルツクフイールド・コ
ーン/プレート・ディジタル式粘度計、あるいは同軸シ
リンダ・センサ・システムを取りつけたレオマット (
Rheomat) 30型粘度計により行う。
エキソ多糖の単季唐含有量の分析は、加水分解−気液ク
ロマトグラフィー法により行う。この分析法は、エキソ
多糖をトリフルオロ酢酸水溶液中で加水分解させ、次い
でホウ水素化ナトリウムにより還元し、無水酢酸でアセ
チル化する操作を包含する。生成した単糖のポリ酢酸エ
ステル誘導体を次いでガスクロマトグラフィーにより、
標準試料と対比させて分析する。
ロマトグラフィー法により行う。この分析法は、エキソ
多糖をトリフルオロ酢酸水溶液中で加水分解させ、次い
でホウ水素化ナトリウムにより還元し、無水酢酸でアセ
チル化する操作を包含する。生成した単糖のポリ酢酸エ
ステル誘導体を次いでガスクロマトグラフィーにより、
標準試料と対比させて分析する。
実施例1
本実施例は、メチロフィルス・ビスコゲネスの菌株AT
CC39893の培養菌から変異菌株を単離する方法を
説明する。
CC39893の培養菌から変異菌株を単離する方法を
説明する。
ATCC39893のリファンピシン耐性菌株の日常的
な継代培養中に、増殖培地に自然変異株が形成した。こ
の変異株はメタノール/アンモニウム無機塩寒天プレー
ト上でのコロニー形態が普通とは違っていたために検出
された。
な継代培養中に、増殖培地に自然変異株が形成した。こ
の変異株はメタノール/アンモニウム無機塩寒天プレー
ト上でのコロニー形態が普通とは違っていたために検出
された。
このプレート上で増殖させたATCC39893のコロ
ニーは小さく、九個で、淡橙色で、本質的に非粘液性で
あった。変異株の方のコロニーは、より大きく (直径
約4u)、色がオフホワイトないし透明であり、本質的
に非常に粘液性であった。
ニーは小さく、九個で、淡橙色で、本質的に非粘液性で
あった。変異株の方のコロニーは、より大きく (直径
約4u)、色がオフホワイトないし透明であり、本質的
に非常に粘液性であった。
この新菌株(ATCC53412)は、リファンピシン
耐性を示し、ATCC39893菌株と同様の培養学的
および生化学的特性を示し、さらにATCC39893
菌株との染色体DNA : DNAハイブリッド形成を
行うことから、ATCC39893の変異株であると決
定された。
耐性を示し、ATCC39893菌株と同様の培養学的
および生化学的特性を示し、さらにATCC39893
菌株との染色体DNA : DNAハイブリッド形成を
行うことから、ATCC39893の変異株であると決
定された。
自然突然変異の産物であると考えられるこの変異株AT
CC53412は、ヘテロ多糖ポリ54に相当するエキ
ソ多糖を構成的に合成することができる。
CC53412は、ヘテロ多糖ポリ54に相当するエキ
ソ多糖を構成的に合成することができる。
菌株ATCC53412は、ATCC39893の2〜
3倍の最適増殖速度を存する。
3倍の最適増殖速度を存する。
λ隻舅主
本実施例は、メチロフィルス・ビスコゲネスの菌株の培
養によるM積した量のエキソ多糖代謝産物の生産を例示
する。
養によるM積した量のエキソ多糖代謝産物の生産を例示
する。
ATCC53412菌株の接種液500 mlを、MS
培地、1g/lの塩化アンモニウムおよび増殖炭素源と
して0.5%(v/v)のメタノールを使用して増殖さ
せる。フラスコは37℃で2日間インキュベーションす
る。こうして得られた培養液を使用して、MS培地10
1 、塩化アンモニウムIg/j!、およびメタノール
0.5%(v/v)を入れた容量141の二ニー・プラ
ンズウィノク・マイクロファーム酩酊装置を接種する。
培地、1g/lの塩化アンモニウムおよび増殖炭素源と
して0.5%(v/v)のメタノールを使用して増殖さ
せる。フラスコは37℃で2日間インキュベーションす
る。こうして得られた培養液を使用して、MS培地10
1 、塩化アンモニウムIg/j!、およびメタノール
0.5%(v/v)を入れた容量141の二ニー・プラ
ンズウィノク・マイクロファーム酩酊装置を接種する。
最初の醗酵条件は次の通りである:37°C,攪!牢2
00 rpm、空気流量21 /min、およびpH7
,0゜pHは醗酵中はぼ7.0に制御する。醗酵培地中
の炭素が消耗してきたらメタノールを断続的に追加して
、0.59A(v/v)の濃度を保持する。メタノール
の濃度は気液クロマトグラフィーにより測定する。24
〜36時間の醗酵後、撹拌速度を40Orpmに増す。
00 rpm、空気流量21 /min、およびpH7
,0゜pHは醗酵中はぼ7.0に制御する。醗酵培地中
の炭素が消耗してきたらメタノールを断続的に追加して
、0.59A(v/v)の濃度を保持する。メタノール
の濃度は気液クロマトグラフィーにより測定する。24
〜36時間の醗酵後、撹拌速度を40Orpmに増す。
メタノールが培養液により利用されなくなったら(通常
5〜7日後)、醗酵を終了させる。次いで、得られた非
常に粘稠な醗酵ブロスをイソプロパツールで希釈して(
アルコール:ブロス−2:1)、エキソ多糖の析出を助
長する。得られた析出物を口側した後、100%イソプ
ロパツールで、次いで70%イソプロパツールで洗浄す
る。析出したエキソ多糖をその後、強制空気Wi環式乾
燥器により55℃で乾燥する。乾燥したエキソ多糖を次
いでウィリーミルにより粉砕して粉末状とする。かくし
て得られたエキソ多糖生成物の物理化学的性質ハ、ヘテ
ロ多糖ポリ54について上に述べたモノと一敗している
。
5〜7日後)、醗酵を終了させる。次いで、得られた非
常に粘稠な醗酵ブロスをイソプロパツールで希釈して(
アルコール:ブロス−2:1)、エキソ多糖の析出を助
長する。得られた析出物を口側した後、100%イソプ
ロパツールで、次いで70%イソプロパツールで洗浄す
る。析出したエキソ多糖をその後、強制空気Wi環式乾
燥器により55℃で乾燥する。乾燥したエキソ多糖を次
いでウィリーミルにより粉砕して粉末状とする。かくし
て得られたエキソ多糖生成物の物理化学的性質ハ、ヘテ
ロ多糖ポリ54について上に述べたモノと一敗している
。
芽−」−一表
Mg5Ot・7H201g
CaCIg 0.2 gNa2
HPO40,33g KIbPOt O,26gFeE
DTA 5.OtagNa2Mo
Oe ・2Hx0 2.OmgCuClz ・
2HzQ 1.(l l1gFe5On
・7Hz0 500 μgZnSOn ・
IH*0 400 IgMnCIg ’
4Hz0 20 μg83B0.
15 μgCoC1g ’ 6L0
50 IgMnCIg・6H1010μg
HPO40,33g KIbPOt O,26gFeE
DTA 5.OtagNa2Mo
Oe ・2Hx0 2.OmgCuClz ・
2HzQ 1.(l l1gFe5On
・7Hz0 500 μgZnSOn ・
IH*0 400 IgMnCIg ’
4Hz0 20 μg83B0.
15 μgCoC1g ’ 6L0
50 IgMnCIg・6H1010μg
Claims (8)
- (1)メチロフィルス・ビスコゲネス(Methylo
philus viscogenes)の菌株ATCC
53412を特徴づける菌学的性質を有する生物学的に
純粋な培養菌。 - (2)メチロフィルス・ビスコゲネスの菌株ATCC5
3412の分類学的性質を示し、メタノールを細胞外ヘ
テロ多糖に好気醗酵することのできる培養菌。 - (3)前記細胞外ヘテロ多糖が、ヘテロ多糖ポリ54で
ある、特許請求の範囲第2項記載の培養菌。 - (4)メチロフィルス・ビスコゲネスの菌株ATCC5
3412。 - (5)増殖炭素源を含有する栄養培地中でメチロフィル
ス・ビスコゲネスの菌株ATCC53412もしくはそ
の変異株を好気条件下に培養することからなる、エキソ
多糖の製造方法。 - (6)増殖炭素源がC_1化合物である、特許請求の範
囲第5項記載の方法。 - (7)増殖炭素源としてメタノールを含有する栄養培地
中で、メチロフィルス・ビスコゲネスの菌株ATCC5
3412もしくはその変異株を好気培養して、蓄積量の
細胞外ヘテロ多糖生成物を生産することからなる醗酵方
法。 - (8)増殖炭素源としてメタノールを含有する栄養培地
中で、メチロフィルス・ビスコゲネスの菌株ATCC5
3412を好気培養して、蓄積量の細胞外ヘテロ多糖ポ
リ54を生産することからなる、特許請求の範囲第7項
記載の醗酵方法。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US87873086A | 1986-06-28 | 1986-06-28 | |
US878730 | 1986-06-28 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS637778A true JPS637778A (ja) | 1988-01-13 |
Family
ID=25372706
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP62155271A Pending JPS637778A (ja) | 1986-06-28 | 1987-06-22 | 任意メチロトロ−フ性細菌の新菌株 |
Country Status (3)
Country | Link |
---|---|
EP (1) | EP0251727A1 (ja) |
JP (1) | JPS637778A (ja) |
KR (1) | KR880000576A (ja) |
Family Cites Families (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
KR890001287B1 (ko) * | 1985-09-09 | 1989-04-28 | 셀진 코오포레이션 | 발효방법 및 이에 따라 생산된 탈아세틸화된 헤테로폴리사카라이드 |
-
1987
- 1987-06-22 JP JP62155271A patent/JPS637778A/ja active Pending
- 1987-06-26 EP EP87305704A patent/EP0251727A1/en not_active Withdrawn
- 1987-06-27 KR KR1019870006641A patent/KR880000576A/ko not_active Application Discontinuation
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
EP0251727A1 (en) | 1988-01-07 |
KR880000576A (ko) | 1988-03-26 |
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