JPS6356297A - 澱粉糖の製造法 - Google Patents

澱粉糖の製造法

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JPS6356297A
JPS6356297A JP20004686A JP20004686A JPS6356297A JP S6356297 A JPS6356297 A JP S6356297A JP 20004686 A JP20004686 A JP 20004686A JP 20004686 A JP20004686 A JP 20004686A JP S6356297 A JPS6356297 A JP S6356297A
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Takashi Kimura
隆志 木村
Masabumi Ogata
緒方 正文
Masaaki Noguchi
野口 雅章
Teruo Nakakuki
輝夫 中久喜
Masahiro Yoshida
雅浩 吉田
Taizo Miwa
三輪 泰造
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 [産業上の利用分野] 本発明はV粉糖の製造法に関し、詳しくは多孔質キトサ
ンに固定化した各種アミラーゼを充填した反応器に澱粉
液化液を供給して対応するグルコース、マルトース、マ
ルトオリゴ糖等の獣粉糖を製造する方法に関する。
[従来の技術、発明が解決しようとする問題点]固定化
酵素を利用してy粉糖を製造する方法については種々提
案されており、たとえば固定化したグルコアミラーゼを
利用して高濃度のグルコースを製造する方法が特公昭5
7−17517号、特開昭58−60989号などに示
されている。しかし、前者の方法は生産されるグルコー
ス濃度が十分でなく、後者の方法は高濃度のグルコース
は馬鈴薯系8粉を原料として達成されており、一般に高
濃度グルコースの作りにくいコーンスターチ等を原料と
した場合については記載されていない。
また、β−アミラーゼを固定化してマルトースの製造に
利用することは特開昭59−198977号などに示さ
れているが、酵素活性の維持に対してさらに改善するこ
とが望ましい。
さらに、マルトトリオース以上の重合度を有するマルト
オリゴ糖を生成するアミラーゼを固定化してマルトオリ
ゴ糖を製造する方法について本発明者らは既に開発した
(特願昭E10−125093号)。
この技術は工業的にも十分に実施しうるちのであるが、
高価な酵素をより有効に利用することにおいて改善の余
地がある。
[問題点を解決するための手段] 本発明者らは、アミラーゼを固定化する担体について検
討を重ねた結果、多孔質キトサンを用いた場合に従来よ
りも通液速度を大きくすることができ、しかも酵素活性
を安定的に維持しうることを見出し、本発明に到達した
。また、固定化酵素を組合せて複合系とすることにより
目的とする澱粉糖の収率を高めることが出来ることも見
出した。
本発明は第1に、多孔質キトサンに固定化したアミラー
ゼを澱粉液化液に作用させることを特徴とする澱粉糖の
製造法に関するものであり、第2に多孔質キトサンに固
定化したアミラーゼを固定化枝切り酵素と共に澱粉液化
液に作用させることを特徴とする澱粉糖の製造法に関す
るものである。
本発明に用いるアミラーゼとしては各種のものがあり、
グルコアミラーゼはリゾプス属、アスペルギルス属、ム
ロール属、ビリカラリア属、などのカビ起源のものが主
に用いられ、特にリゾプス・デレマー起源のものが好適
である。そのほかエンドマイセス属、トリコデルマ属、
サツカロミ、セス属などの酵母やクロストリジウム・ア
セトブチリカムなどの細菌起源のものが知られている。
β−アミラーゼとしては、大豆、麦芽等の植物起源のも
ののほかにバチルス・ポリミキサ[D、 French
、 Arch、 Biochem、 Biophys、
、 104゜338(1984)l 、バチルス・セレ
ウス[Y、 Takasaki。
Agric、 Biol、 CheL、 40.151
5.1523 (1976) ]。
シュードモナス属細菌[S、 5inkeら、 J、F
erment。
Technol、、 53.693.898 (197
5) ]  、 7.トレプトミセス・ヒゲロスコピカ
ス[Y、 Hidaka  ら。
5tirke、 28.413 (1974)]  、
ストレプトミセス・プレコックス[若生勝雄ら、澱粉化
学、 25.155(1978)]等の微生物起源のも
のがある。
また、マルトトリオース以上の重合度を有するオリゴ糖
を生成するアミラーゼとしては次のものが知られている
マルトトリオース生成アミラーゼ[若生勝雄ら:と粉化
学、其、 175 (1979)、ストレプトミセス・
グリセウス (Streptomyces grise
us )起源の・ もの:高埼義幸:昭和58年度日本
農芸化学大会要旨集、 P16!3 (1983) 、
バチルス (Bac i l 1us)属起源のもの] マルトテトラオース生成アミラーゼ[J、 F。
Robyt and R,J、 Ackerman :
 Arch、 Biochem。
Biophys、、 145.105 (1971) 
、シュードモナス・ストツツェリ (Pseudomo
nas 、5tutzeri )起源のもの] マルトペンタオース生成アミラーゼ[N。
5aito : Arch、 Bioehem、 Bi
ophys、、 155.290(1973)、バチル
ス・リケニホルミス (Bacilluslichen
iformis )起源のもの;小林昭−ら:昭和58
年度日本澱粉学会大会要旨集、P2O3(1983) 
 ;吉儀尚浩ら:昭和58年度日水鳥芸化学大会要旨集
、P2S5 (19B4) ] マルトヘキサオース生成アミラーゼ[K。
Kainu+++aら: FEBS Lett、、 2
8.281 (1972)、エアロバクター°エアロゲ
ネス (Aerobacteraeroganes )
起源のもの ; J、 f;、 Ker+nedy a
ndC,A、 White : 5tirke、31.
93 (1979) ;谷口肇ら : 澱粉化学、29
.107 (1982) ; Y、 Takasaki
: Agric、 Biol、 Chew、、 47.
 2193 (1983)  ]次に、上記アミラーゼ
の担体として用いる多孔賀キトサンとしては自然界に広
く存在し、甲殻類。
節足動物などに多く含まれる天然高分子キチンを脱アセ
チル化して得られるキトサンがあり、特に粒状化、多孔
質化したものや良好な吸看性渣をもたせたものが好まし
い。たとえば商品名:キトパール(富士紡績社製)は好
適なものである。これは天然高分子キチンを脱アセチル
化した後。
ジカルボン酸、ジアルデヒド、ジイソシアネート等で架
橋して耐酸性を付与したものに、さらにスペーサーとし
て脂肪族または芳香族系などの官能基を導入した多孔性
ビーズであり、pH安定性。
耐薬品性、熱安定性にすぐれている。この「キトパール
」は粒径0.1〜3.0mm 、孔径3.0μm以下。
比表面′vi15〜230 m?/gであるが、本発明
ではこの値に制限されるものではない。
各種アミラーゼをキトサンに固定化する方法は任意であ
り、たとえば緩衝液中で両者を接触させる方法を採用す
ることができる。その1例を示すと、「キトパールJ 
100 trrgを0.01〜0.20モル濃度の各種
緩衝液(pH4,0〜8.0)で上のに平衝化した後、
各種アミラーゼ5〜500単位を緩衝液2ni)に溶解
して添加し、十分に混合する。次いで、室温にて0.5
〜24時間放置するか、または0.5〜5.0時間往復
振どう処理(120ストロ一ク/分)した後、ガラスフ
ィルターで更過し、続いて種々の緩衝液50mfで洗浄
する。
このようにして得られる固定化酵素は見かけ上の固定化
率が30%以上であり、固定化酵素の発現活性は担体湿
重量1gあたり40〜2000単位である。なお、見か
け上の固定化率は次式によって算出した値である。
酵素の固定化方法としては、上記方法のはか担体をカラ
ムに充填したのち酵素溶液を下降法または上昇法により
通液する方法も適用できる。
本発明に用いる固定化アミラーゼは担体への固定化が極
めて容易であり、しかも酵素の発現活性も実用に十分耐
えるものである。
次に、第2の本発明で用いる固定化枝切り酵素について
説明する。枝切り酵素としては、バチルス・アシドプル
リティカス、タレブシェラ・ニューモニアなどの微生物
起源のプルラナーゼやシュードモナス・アミロデラモサ
、シトファーガ属微生物等が生産するイソアミラーゼを
用いることができるが、グルコース生成アミラーゼでは
ほとんどがpH4、0〜6.0、マルトオリゴ糖生成ア
ミラーゼではほとんどがpH5,0〜8.5の範囲に至
適pHを有するので、枝切り酵素も同様の安定かっ至適
pH範囲を有するものを用いることが望ましい。
枝切り酵素を固定化する担体については、固定化操作に
より高い発現活性を示すものであれば、どのようなもの
でも良いが、特に次の担体を用いることが好ましい。す
なわち、本発明者らは数多くの担体の中から各種枝切り
酵素を効果的に固定化しうるちのを選択すべく検討した
結果、特に微弱酸性的多孔質吸着樹脂1弱酸性カチオン
樹脂、フェノール未吸着樹脂9粒状多孔質キトサンなど
が好適な担体であることを見出した。より具体的には、
デュオライト系樹脂(ダイヤモンド・ジャムロック社製
)の商品名r S −781J ’。
rS−7B2J 、 rES−771J 、 rc−4
84J 、 rA−7J  、rs−5s7J  、r
A−se2J zや前記のrキトパール」を挙げること
ができる。
なお、枝切り酵素の固定化方法は制限されず。
たとえば前記した方法を適用することができる。
また、ネイティブ波切り酵素および固定化枝切り酵素の
活性測定方法は、基質としてプルラン(ハヤシバラ生物
化学研究所製)またはアミロペクチンを用い、それらの
至適p)Iで反応を行なうこと以外は各種アミラーゼの
場合と同じである。
本発明で使用する原料澱粉としては種々のものが使用で
きるが、通常馬鈴薯澱粉、せ薯V粉。
コーンスターチ、ワキシーコーンスターチ、キャヅサバ
V粉等を用いる。また、反応器に通液する澱粉液化液の
グルコース当量(DE)は通常、1〜35、好ましくは
5〜20の範囲にあるものを用いるのが良い。ここで澱
粉液化液のDEがワキシーコーンスターチの場合1以下
、それ以外の澱粉ではDEが5以下のものは老化が徴し
く、工程上の取扱いに1夫が必要である。一方、DEが
35以上になると、グルコアミラーゼによるグルコース
生成に対しては適合成が促進されてイソマルトース、パ
ノースなどの生成が増大し、グルコースの収量が低下す
る。また、各種マルトオリゴ糖の生成に対してグルコー
ス、マルトース等の低分子糖の生成が増大し、かつマル
トオリゴ糖の収量が低下するので適当でない、なお、各
種澱粉を液化する方法は特に制限はないが、通常は液化
型α−アミラーゼまたは塩酸等の酸で処理する。 次に
、マルトオリゴ糖とはマルトース、マルトトリオース、
マルトテトラオース、マルトペンタオース、マルトヘキ
サオース等を意味する。
本発明者らは、固定化酵素を用いて各種澱粉糖を効率よ
く生成するため条件について種々検討を重ねた結果、次
のような因子等が大きく影響していることが判った。す
なわち、使用する基質の種類、e度およびその供給量、
固定化担体の種類(物性)、固定化した酵素量、その充
填塔への充@看、反応系の温度、 pH等の条件などで
ある。
これらを系統的に検討した結果、これら因子等の影響は
以下に示す表現および条件の範囲内において効率よくそ
れぞれの澱粉糖を生成することができることを見出した
。すなわち、本発明の方法では、固定化アミラーゼを反
応器に充填し、前述の澱粉液化液を固定化酵素単位活性
あたりの重量基準空塔速度がI X 10−4〜2 X
 101hr−1(10/g)弓の条件で供給すること
によって効率良く各種V粉糖を製造するものである。よ
り好ましくは、グルコアミラーゼに対してはI X 1
0−4〜3 X 1O−3hr−’(IU/g)−’、
β−アミラーゼに対してはlXl0−4〜4 X 1O
−3hr−1(10/g)−’、各種マルトオリゴ糖生
成アミラーゼに対しては3 X 10= 〜2 X 1
O−Ihr−1(IU/g)−’の条件を適用すべきで
ある。ここで、固定化酵素の単位活性あたりの重量基準
空塔速度は次のようにして求めた値である。まず、反応
器に充填するものと同じ固定化アミラーゼ10mg (
wet)を0.5mj)の10mM各種バッフ 7− 
 (pH7,0) (50m、jl!三角フラスコ中)
に加え、十分に馴染ませた後、反応器に供給するものと
同じ基質(澱粉の種類、濃度等も同じ) 5.Owj)
を加えて、反応器と同じ温度で往復振とう機により12
0ストロ一クス/win、。
4cm幅で振とうしながら酵素反応を行い、生成還元動
をSomogy 1−Ne 1son法で測定するか、
高速液体クロマトグラフィーのような分析機器で直接生
成する澱粉糖を測定して発現する活性を測定する(この
発現活性をA  IU/g−担体とする。)。なお、酵
素活性はそれぞれの反応条件で1分間にIgmolのグ
リコシド結合を切断する酵素量を1単位(1国際型位I
U)として表わすことにする。また、反応器に充填する
固定化アミラーゼをB g (wet) 、反応器に供
給する殿粉液化液量を固形分としてCg−固形分/hr
とするとき、単位活性あたりの重量基準空塔速度をC/
 (AXB)hr司(IU/g)川として求める。なお
、DEが大きい場合には原料中に目的とする澱粉糖やそ
れよりも小さい糖を含むので、上記Cの値としてはそれ
らを除いた固形分量を用いるのがより実際的である。単
位活性あたりの重量基準空塔速度が2×10司hr l
 (10/gl ’ 、グルコアミラーゼの場合ニハ3
 X 1O−3hri(IU/g)−’、β−アミラー
ゼの場合には4 X 101hr−’(IU/g)−’
、マルトトリオース以上の重合度を有するマルトオリゴ
糖生成アミラーゼの場合には2 X 1O−1hr−1
(IU/g)川よりも大きいと、すなわち反応器中での
反応時間が短いと加水分解反応が十分におこなわれない
ため、それぞれの澱粉糖の収率が悪くなり好ましくない
。また。
マルトオリゴ糖の生成の場合には単位活性あたりの重量
基準空塔速度がI X 10=hr−1(10/g)川
よりも小さくなると、すなわち反応器中での反応時間が
長くなると、下記の刊行物に明らかにされているように
、生成したマルトオリゴ糖がさらに過分解サレるため、
グルコース、マルトース等の低分子の糖が生成され、製
品の純度が著しく低下するばかりでなく、後に精製分離
を行なう場合の効率ルトオリゴ糖の過分解については、
マルトオリゴ糖生成アミラーゼは、反応初期にはそれぞ
れのオリゴ糖(マルトトリオース、マルトテトラオース
、マルトペンタオース、マルトヘキサオース等)を特異
的に生産するが、反応後期になるにつれて生成物そのも
のを分解することが明らかにされている[ T、 Na
kakuki et al ; Carbohydro
Res、、 128.297 (1984) ] 。
また、グルコアミラーゼの場合は、単位活性あたりの重
量基準空塔速度がl X 1O−3hr−’(IU/g
)−1あたりからパノース、イソマルトース等を生成す
る逆反応が進行し、目的とするグルコースの収率が低下
し、効率的でなくなる。
一方、現実的にみて、単位活性あたりの重量基準空塔速
度がI X 101hr−1(IU/g)用具下になる
と、反応器中での滞留時間が長くなり、反応器の大きさ
も過大となり、経済的にも有効性のないものとなると共
に、原料澱粉液化液の名化による目的澱粉糖の低下を来
たし、また運転上のトラブルの原因ともなりかねない。
本発明によれば、固定化アミラーゼの使用によって固定
化しない元のアミラーゼよりも反応条件の拡大が期待で
きる。たとえばキトサンに固定化した固定化マルトテト
ラオース生成アミラーゼの場合には、温度安定性が10
”0種度高温側に広がると共にpH安定性も広範囲にわ
たり改善される。また、至適温度は固定化により10−
15℃上昇し、至適pH曲線も酸性側に広がることを見
出しており、固定化酵素の酵素化学的性質は可成り改善
され、元の酵素を用いる場合よりも極めて有利な条件で
反応を行なうことができる。
本発明の方法により、たとえばマルトオリゴ糖を製造す
る場合、マルトオリゴ幻の目的とする純度に応じて様々
な製造方式゛をとり得る。たとえば純度20〜60%程
度のマルトオリゴ糖は、40%(w/w)の澱粉液化液
を前述の固定化マルトオリゴ糖アミラーゼを充填した反
応器に前述の条件で供給することによって得られる。ま
た、さらに高純度(60〜100%)のマルトオリゴ糖
は、上記反応器から得られた生成物をさらに精製分離す
ることにより得られる。この場合の精製分離手段は特に
制限はなく種々の方法をとりうるが、たとえば限外濾過
、ゲルが過、カチオン交換樹脂カラムクロマトグラフィ
ー、カーボンカラムクロマトグラフィー等の手段が有効
である。また、上記精製分離を行なった際に得られる未
分解物の一部または全部を固定化マルトオリゴ糖生成酵
素を充填した反応器へ再循環させて供給原料の一部とす
ることによって原料澱粉液化液あたりのマルトオリゴ糖
収量を増大させることができる。さらに、該未分解物の
一部または全部をそのままリミットデキストリンとして
利用することもできる。
次に固定化アミラーゼと共に固定化枝切り酵素を併用す
る第2の発明について説明する。
固定化アミラーゼと併用する固定化枝切り酵素性ベース
で前者lに対して後者0.1〜5、好ましくは0.2〜
2の範囲とする。固定化枝切り酵素の比率を上限以上と
しても、相応する効果が奏されない上に、反応器の大き
さが比例的に大きくなるので経済的に好ましくない。こ
こで、枝切り酵素を併用した場合の単位活性あたりの%
”(I基準空塔速度は、前述の式において発現活性(A
IU/g)としては枝切り酵素の発現活性は考慮せずに
使用するアミラーゼの発現活性だけを考慮して求めれば
よい。
両酵素を併用する複合酵素系の場合、反応器の形態と充
填方法は種々の態様が考えられる。たとえば、2種の固
定化酵素を別々の容器に充填する方法、2種の固定化酵
素を混合してから同じ容器に充填する方法、さらには2
種のネイティブ酵素を一定の比率で混合した後、同時に
固定化し、容器に充填する方法等がある。
[発明の効果] 本発明の方法によれば、グルコース、マルトース、マル
トトリオース以上の重合度゛を有するマルトオリゴ糖を
製造するにあたり、固定化酵素単位活性あたりの重量基
準空塔速度を従来よりも大きくでき、しかも酵素活性は
長時間にわたり安定に保持される。そのため、目的とす
る澱粉糖を効率よく、かつ高収率にて製造することがで
きる。とりわけ、アミラーゼと共に枝切り酵素を用いて
固定化複合酵素系とした場合、目的物質の収率は格段と
向上する。
また、原料澱粉としてコーンスターチを使用した場合で
もネイティブ酵素と同程度に高濃度の澱粉a(特にグル
コース)を得ることができる。
[実施例] 次に、本発明を実施例により詳しく説明する。
実施例1 担体として多孔質キトサン(商品名:キトパールBOW
 3505.  富士紡績■製)を用い、リゾプス・デ
レマー起源のグルコアミラーゼ(新日本化学■製)を固
定化した。すなわち、担体のキトサンを20mN酢酸緩
衝液(pJ(5,5)で十分に平衝化した後、100t
j)容の三角フラスコに湿重量で10gの担体を秤量し
、これにグルコアミラーゼを担体1gあたり1050単
位(液i10mJ)添加した。次いで、室温で1時間往
復振とぅ(120ストロ一ク/分)して固定化した。さ
らに20mM酢酸緩衝液(pns、o)で蛋白質が溶出
しなくなるまで十分に洗浄し、固定化グルコアミラーゼ
標品を得た。この標品にっいて前述した方法により発現
活性を測定したところ4351U/g−担体であった。
この固定化グルコアミラーゼ10a+j)をガラスカラ
ム(直径10mm 、長さ20mg+)に充填し、基質
として30%(w/w) (7) コー ンスターチ液
化液(DE= 11゜pH5,5)を用イテ温度50’
C、空塔速度0.25.0.5および1.0hr−1(
単位活性あたりの重量基準空塔速度はそれぞれ2.48
X 10−4 、4.95X 10−4$ ヨび9.8
9X 1O−4hr−1(10/g)−’) (7)各
条件で連続的に通液した。なお、空塔速度は下記の式に
より計算した。結果を第1表に示す。
比較例1 担体として多孔性弱塩基性アニオン交換樹脂デュオライ
トA−7(ダイヤモンドジャムロック社製)を使用し、
特開昭58−f!0989号の実施例1に記載の方法で
固定化したこと以外は実施例1と同様に行なった。なお
、固定化酵素の発現活性は157 Iυ/g−担体であ
った。この固定化酵素を用いて実施例1と同様に実験を
行なった(単位活性あたりの重量基準空塔速度はそれぞ
れ8.85X to−4。
1.37X 101および2.74X 1O−3hr−
’(IU/g)−’) 、結果を第1表に示す。
0.25      95.2     94.20.
5      9B、7     93.81・0  
    95.2     87.4実施例2 担体として多孔質キトサン(商品名:キトパールBCI
II 3505.  富士紡績■製)を用い、β−アミ
ラーゼ(大豆起源、長瀬産業■製)を常法により固定化
した。得られた固定化β−アミラーゼの発現活性は23
010/g−担体であった。
この固定化β−アミラーゼをガラスカラム(直径27■
、長さ130 m+o)に充填し、基質として25%(
v/+1) ノ’13粉液化液(DE= 7 、 pH
6,0)を用いて温度50℃、空塔速度0.2 、0.
5 、1.0および1.5hri  (単位活性あたり
の重量基準空塔速度はそれぞれ3.09X 10−4.
7.73X 10−4.1.55X 10−3オよび2
.32X 1O−3hr−1(IU/g)川)の各条件
で連続的に通液した。結果を第2表に示す、また、空塔
速度1.5hr−1で連続通液したときの反応液中のマ
ルトース含量の経時変化を第1図に示す。
比較例2 担体としてデュオライト系吸着樹脂S −781(ダイ
ヤモンドジャムロック社製)を使用し、実施例2と同様
にしてβ−アミラーゼの固定化を行なった。固定化β−
アミラーゼの発現活性はIHIU/g−担体であった。
この固定化酵素10aj)を実施例2と同様にガラスカ
ラムに充填し、基質として25%(w/w)のy粉液化
液(DE= 7 、 pH8,0)を用イテ温度50°
C9空塔速度0.2 、0.5 、1.0および1.5
hr−’  (単位活性あたりの重量基準空塔速度はそ
れぞれ3.59X10−4.8.98X10−4.1.
80XlO−3および2.70X 1O−3hr ’ 
(10/g)川)の各条件で連続通液した。結果を第2
表に示す。
0.2      52.5     52.40.5
      52.5     44.81.0   
   52.3     37.51.5      
52.1     30.3第2表および第1図から明
らかなように本発明によれば従来の固定化酵素を用いた
場合よりも速い空塔速度で高いマルトース生成量が得ら
れ、しかも30日後でも活性の低下はほとんど認められ
ず、半減期は1年以上であった。
実施例3 酵素としてマルトテトラオース生成アミラーゼ(シュー
ドモナス・ストッツェリ起源、比活性80.810/a
g・タンパク)、を用い固定化用担体としてキトサンビ
ーズ(商品名:キトパールEC:W 3505.富士紡
績社製)を使用して固定化酵素を得た。すなわち、担体
20gを50mM Tris−HCJバッファー(pH
7,0)で充分に平衝化した後、100III!の同一
バッファーに溶解した20,000 IUの酵素を添加
し、室温で1時間往復振とう(300mj?容三角フ歩
容三角フラスコ中ローク/分、4c+o幅)しながら酵
素を担体に固定化した0次いで、濾紙テ’I濾過した後
、1hM Tris−HCi’バッファー(pH7,0
)で蛋白質が溶出しなくなるまで十分に洗浄し、発現活
性が35010/g−担体の固定化マルトテトラオース
生成酵素を得た。
次に直径27mm、長さ130 mmのガラスカラムに
マルトテトラオース生成固定化酵素1OIIFを充填し
た・基質として26.2%(w/w)の澱粉液化液(D
E=7 、 pH7,2)を用い、温度45°C9空塔
速度2.0゜5.0および10.0hrl (単位活性
あたりの重量基準空塔速度はそれぞれ2.42X 10
−3 、6.05X 10−3および1.21X 1O
−2hrl(IU/g)−’) (7)各条件で連続通
液した。その結果を第3表に示す、また空塔速度2.0
hriの条件で連続通液したときの反応液中のマルトテ
トラオース含量の経時的変化を第2図に示す。
比較例3 担体としてデュオライト系吸着樹脂S−761を用いて
実施例3と同様な方法で得た固定化マルトテトラオース
生成アミラーゼ10g(発現活性215 IU/g)を
反応器に充填し、これに原料として26.2%(w/w
)の澱粉液化液(DE= 7 、 pH7,2)を24
mI!/hr、温度45°C1空塔速度2.0.5.0
および10hrl (単位活性あたりの重量基準空塔速
度はそれぞれ3.48X 10−3.8.71X 10
−”および1.74X10−2hr−’(10/g)川
)の条件で連続通液した。ソノ量の経時変化を第2図に
示す。
2.0      44.5     42.65.0
      44. l      37.210.0
      41.7     31.5以上のように
、本発明によれば、従来の固定化酵素を用いた場合より
も高純度のマルトテトラオースが得られる。
比較例4 実施例3と同様な方法で得た固定化マルトテトラオース
生成アミラーゼ(ただし、発現活性27310/g) 
8.8 gを反応器に充填し、これに10%(w/w)
の澱粉液化液(DE= 8.0.  pl(= e、s
 )を用いて温度40℃、流速1 、1m1)/hrの
条件(単位活性あたりの重量基準空塔速度は(8,83
X 1O−5hr 1(10/g)川)で連続通液して
反応生成物を得た。この生成物の組成を第4表に示す。
比較例5 実施例3と同様な方法で得た固定化マルトテトラオース
生成アミラーゼ(ただし発現活性46.710/g) 
6.8 gを反応器に充填し、これに30%(w/w)
のS粉液化液(DE=8.0. pH8,8)を用いて
温度40℃、流速210m1)/hrの条件(単位活性
あたりの重量基準空塔速度は2.29X 10− ’h
r ’ (IU/g)−’)で連続通液して反応生成物
を得た。この生成物の組成を第4表に示す。
Gl 〜G3 ”+   85.0  、  17.3
G4      ”2    11.0       
 11.OG5     −3   、   4.0 
        ?8.7◆1 グルコース、マルトー
スおよびマルトトリオース 中2 マルトテトラオース 弓 マルトペンタオース以上の成分 以北のように、単位活性あたりの重量基準空塔速度がI
 X 1O−4hri(10/gl’よりも小さい場合
および2 X iO−1hr−’ (IU/g)−’よ
りも大きい場合はいずれもマルトテトラオースの収率が
小さくなっていることが判る。
実施例4 枝切り酵素であるプルラナーゼ(クレブシェラ・ニュー
モニア起源、比活性501U/mg−蛋白質。
天野製薬株式会社製)を用いてpH8,0のリン酢バッ
ファーを使用したこと以外は実施例1と同様の方法でキ
トパールBOW 3505に固定化した。得られた固定
化プルラナーゼの発現活性は129 IU/g −担体
であった。
次に、直径10mm 、長さ200mβのガラスカラム
2本を用いて固定化グルコアミラーゼ4vl!と」二連
の方法で得られた固定化プルラナーゼ9.OmJ(発現
活性比は約3=1)を混合して充填した。
一方、基質として30%(W/胃)のコーンスターチ液
化液(DE= 11. pH5,5)を用い、温度50
℃、空塔速度0.25.0.5および1.0hr−1(
単位活性あたりの重量基準空塔速度はそれぞれ2.48
X 101.4.95XIO−3および9.89X 1
01hr−’(IU/g)−’)の条件で連続通液した
。得られた結果を第5表に示す。
第  5  表 0.25   95.8  95.2 0.5   97.3  98.7 1.0   9G、1  95.2 表に示すごとく、単独固定化酵素系よりも複合固定化酵
素系の方が反応生成物中のグルコース濃度が約1%上昇
した。
実施例5 実施例2と同様にして得た固定化β−アミラーゼ10m
βと実施例4と同様にして得た固定化プルラナーゼ10
mi!を混合(発現活性比はβ−アミラーゼ:プルラナ
ーゼ=2.1  : 1.0 ) L、てそれぞれ充填
した。基質として25.0%(w/りの澱粉液化液(D
E= 7 、 pH6,0)を用いて温度50°C9流
速15mj)/hr  (単位活性あたりの重量基準空
塔速度は2.32X 1(13hr−1(IU/g)川
)の条件で連わ’を通液した。運転日数0.15.30
El後のカラム流出液の膠1組成を第6表に示す。表に
示すごとく、複合固定化酵素系の方がβ−アミラーゼの
みの単一酵素系よりもマルトース純度が約10〜12%
上昇し、また30日経過後でも活性の低下はほとんどみ
られなかった。
第  6  表 0  53.0%  64.2% 15  51.8%  B4.2% 30  50.1%  64.0% 実施例6 実施例3と同様にして得た固定化マルトテトラオース生
成酵素10m!!と実施例3と同様にして得た固定化プ
ルラナーゼ5mj?を混合(発現活性比。
β−アミラーゼ:プルラナーゼ=4.1)’l、てそれ
ぞれ充填した。基質として26.2%(w/w)の澱粉
液化液(DE= 7 、 pH7,2)を用いて温度4
0℃、流速24j?/hr (単位活性あたりの重量基
準空塔速度は4.08X 1O−3hr−’(IU/g
)−’)の条件で連続通液した。運転日数0.15.3
0日後のカラム流出液の糖組成を第7表に示す。表に示
すごとく、複合固定化酵素系の方が固定化マルトテトラ
オース生成酵素のみの単一酵素系よりもマルトテトラオ
ース純度が約5%上昇し、また30日経過後でも活性の
低下はほとんどみられなかった。
第  7  表 0  45.2%  50.5% 15  44.0%  48.3% 30  42.9%  46.2%
【図面の簡単な説明】
第1図は実施例2における反応液中のマルトース含量の
経時変化を示し、第2図は実施例3および比較例3にお
ける反応液中のマルトテトラオース含量の経時変化を示
す。

Claims (7)

    【特許請求の範囲】
  1. (1)多孔質キトサンに固定化したアミラーゼを澱粉液
    化液に作用させることを特徴とする澱粉糖の製造法。
  2. (2)アミラーゼがグルコアミラーゼ、β−アミラーゼ
    およびマルトオリゴ糖生成アミラーゼのいずれかである
    特許請求の範囲第1項記載の方法。
  3. (3)澱粉がコーンスターチである特許請求の範囲第1
    項または第2項記載の方法。
  4. (4)多孔質キトサンに固定化したアミラーゼを固定化
    枝切り酵素と共に澱粉液化液に作用させることを特徴と
    する澱粉糖の製造法。
  5. (5)アミラーゼがグルコアミラーゼ、β−アミラーゼ
    およびマルトオリゴ糖生成アミラーゼのいずれかである
    特許請求の範囲第4項記載の方法。
  6. (6)澱粉がコーンスターチである特許請求の範囲第4
    項または第5項記載の方法。
  7. (7)枝切り酵素がバチルス・アシドプルリティカスま
    たはクレブシェラ・ニューモニア起源のプルラナーゼも
    しくはシュードモナス・アミロデラモサまたはシトファ
    ーガ属微生物起源のイソアミラーゼである特許請求の範
    囲第4〜6項のいずれかに記載の方法。
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