JPS63219398A - 過酸化水素の定量法 - Google Patents
過酸化水素の定量法Info
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- JPS63219398A JPS63219398A JP62053390A JP5339087A JPS63219398A JP S63219398 A JPS63219398 A JP S63219398A JP 62053390 A JP62053390 A JP 62053390A JP 5339087 A JP5339087 A JP 5339087A JP S63219398 A JPS63219398 A JP S63219398A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は過酸化水素、ルミノール、および微生物由来の
ペルオキシダーゼを用いることにより化学発光を生じさ
せるものであり、醇索により検体中の微量成分に特異的
反応を生じさせて過酸化水素を生成させることを特徴と
する検体中の微量成分分析法に関するものである。
ペルオキシダーゼを用いることにより化学発光を生じさ
せるものであり、醇索により検体中の微量成分に特異的
反応を生じさせて過酸化水素を生成させることを特徴と
する検体中の微量成分分析法に関するものである。
ペルオキシダーゼを用いた化学発光は過酸化水素の定量
のみならず過酸化脂質の定量さらに免疫定量法と広く利
用されている。しかし、従来の西洋ワサビ由来のペルオ
キシダーゼを用いた化学発光は反応速度が遅く、その九
め高感度検出装置を必要とした。そこで、西洋ワサビ由
来のペルオキシダーゼにかわりうる、よシ反応速度の迷
いものが強く望まれている。
のみならず過酸化脂質の定量さらに免疫定量法と広く利
用されている。しかし、従来の西洋ワサビ由来のペルオ
キシダーゼを用いた化学発光は反応速度が遅く、その九
め高感度検出装置を必要とした。そこで、西洋ワサビ由
来のペルオキシダーゼにかわりうる、よシ反応速度の迷
いものが強く望まれている。
過酸化水素、るるいは酵素法により生成した過酸化水素
を定量するための従来例として過酸化水素に4−アミノ
アンチピリンおよびフェノールをペルオキシダーゼを触
媒として反応させて赤色キノンを生成させうる方法が周
知でIC1生成した赤色キノンは分光光度計によって、
その吸光度が測定されていた0以上の方法において、検
体に試薬を反応させて得られた発色体を分光光度計によ
り定量しているので、良好な感度を得ることができず、
また赤色キノン等の生成のために反応物を定温保持する
インキユベーシヨンを行わなければならず、このため、
少なからぬ分析時間を必要とする欠点があった。そこで
、過酸化水素を迅速に高感度で定量する方法として化学
発光法が用いられた。これは過酸化水素あるいは生成し
た過酸化水素に発光試薬を加えて発光させ、この発光量
を測定することにより発光量に比例した検体中の微址成
分を分析する方法である。ルミノール系の発光試薬にお
いては、過酸化水素との反応の触媒に、ンエロシアン化
カリウム、K2S204 、 NaCjO、F−塩、ミ
クロペルオキシダーゼ、ペルオキシダーゼ等が使われる
が、パックグラウンド発光の影響を下けるためには、ペ
ルオキシダーゼが好適であり、このときの反応を以下に
示す。
を定量するための従来例として過酸化水素に4−アミノ
アンチピリンおよびフェノールをペルオキシダーゼを触
媒として反応させて赤色キノンを生成させうる方法が周
知でIC1生成した赤色キノンは分光光度計によって、
その吸光度が測定されていた0以上の方法において、検
体に試薬を反応させて得られた発色体を分光光度計によ
り定量しているので、良好な感度を得ることができず、
また赤色キノン等の生成のために反応物を定温保持する
インキユベーシヨンを行わなければならず、このため、
少なからぬ分析時間を必要とする欠点があった。そこで
、過酸化水素を迅速に高感度で定量する方法として化学
発光法が用いられた。これは過酸化水素あるいは生成し
た過酸化水素に発光試薬を加えて発光させ、この発光量
を測定することにより発光量に比例した検体中の微址成
分を分析する方法である。ルミノール系の発光試薬にお
いては、過酸化水素との反応の触媒に、ンエロシアン化
カリウム、K2S204 、 NaCjO、F−塩、ミ
クロペルオキシダーゼ、ペルオキシダーゼ等が使われる
が、パックグラウンド発光の影響を下けるためには、ペ
ルオキシダーゼが好適であり、このときの反応を以下に
示す。
過酸化水素にルミノール(5−アミノ−2,3−ジヒド
ロ7タラノンー1.4−フォノ)およびペルオキシダー
ゼを反応させると、励起状態の7ミノ7タル酸を生成し
、これが基底状態に戻るときエネルギーを光(425n
m )として放出する反応機mが考えられている。
ロ7タラノンー1.4−フォノ)およびペルオキシダー
ゼを反応させると、励起状態の7ミノ7タル酸を生成し
、これが基底状態に戻るときエネルギーを光(425n
m )として放出する反応機mが考えられている。
臨床化学分析においては、近年、高感度の点で優れてい
るラジオイムノアッセイ法が導入されてきたが、安全衛
生面での問題点も多く分析手段の大部分のものは酵素を
用いた吸光法によって占められている0発光法には従来
の吸光法に比べて次のような特徴を備えている。
るラジオイムノアッセイ法が導入されてきたが、安全衛
生面での問題点も多く分析手段の大部分のものは酵素を
用いた吸光法によって占められている0発光法には従来
の吸光法に比べて次のような特徴を備えている。
(1)高感度である。(吸光法に比べて10 〜103
倍高感度である。〕 (2)装置が簡単である。(発光分析では分光分析法に
不可欠な光源および分光器の必要がなく・光子量を検出
する装置のみである事から装置そのものが簡単であり従
って廉価である。〕 (3)ダイナミックレンジが広い。(発光量の測定はダ
イナミックレンジが広(10〜10 オーダーで直線
性がなりたつとされている。ン しかしながら、化学発光反応の量子収率は生物発光と比
べて一般に低く、西洋ワサビ由来のペルオキシダーゼを
用いた化学発光でも反応速度は遅く、そのため高感度検
出装ft−必要とした。したがって、装置は簡単である
が極微弱光の検出を要求する場合には高価なものとなっ
た。したがって、安価な検出装me用いた場合には高感
度化もおのずと限界を生ずるという欠点があった。
倍高感度である。〕 (2)装置が簡単である。(発光分析では分光分析法に
不可欠な光源および分光器の必要がなく・光子量を検出
する装置のみである事から装置そのものが簡単であり従
って廉価である。〕 (3)ダイナミックレンジが広い。(発光量の測定はダ
イナミックレンジが広(10〜10 オーダーで直線
性がなりたつとされている。ン しかしながら、化学発光反応の量子収率は生物発光と比
べて一般に低く、西洋ワサビ由来のペルオキシダーゼを
用いた化学発光でも反応速度は遅く、そのため高感度検
出装ft−必要とした。したがって、装置は簡単である
が極微弱光の検出を要求する場合には高価なものとなっ
た。したがって、安価な検出装me用いた場合には高感
度化もおのずと限界を生ずるという欠点があった。
本発明は上記の問題点を解決するために、過酸化水素、
または酵素法により生成した過酸化水素を高感度で定量
することを目的として、化学発光の反応性が高い微生物
由来のペルオキシダーゼによる化学発光を提供すること
にある。
または酵素法により生成した過酸化水素を高感度で定量
することを目的として、化学発光の反応性が高い微生物
由来のペルオキシダーゼによる化学発光を提供すること
にある。
微生物由来のペルオキシダーゼは不完全菌類(Arth
romyc@s ramogua )(微工研: FE
RN BP−838)の培養液から数稽のイオン交換ク
ロマトグラフィーを組み合わせ高度に純化させたもので
、RZ2.05、比活性176 U/5olidダ(4
−アミノアンチピリン−7エノール法)、および担子菌
類(Coprinuscin*r@us )の培養液か
ら高度に純化させたものRZ2.56、比活性113U
/5olid19を用いた(%開昭61−043987
、特開昭6l−104784)。又、西洋ワサビ由来の
ベルオキシダーゼハRZ1.96、比活性329 U/
5olidlQ(シグマ社製)を用いた。
romyc@s ramogua )(微工研: FE
RN BP−838)の培養液から数稽のイオン交換ク
ロマトグラフィーを組み合わせ高度に純化させたもので
、RZ2.05、比活性176 U/5olidダ(4
−アミノアンチピリン−7エノール法)、および担子菌
類(Coprinuscin*r@us )の培養液か
ら高度に純化させたものRZ2.56、比活性113U
/5olid19を用いた(%開昭61−043987
、特開昭6l−104784)。又、西洋ワサビ由来の
ベルオキシダーゼハRZ1.96、比活性329 U/
5olidlQ(シグマ社製)を用いた。
Arthromyc@s rmmosus 由来のペル
オキシダーゼ(以後ARPと略す〕およびCoprin
ua ainer@ua由来のペルオキシダーゼ(以後
CCPと略す)と西洋ワサビ由来のペルオキシダーゼ(
以後HRPと略す〕の発光の反応速度の差を過酸化水素
の検量線で示す。
オキシダーゼ(以後ARPと略す〕およびCoprin
ua ainer@ua由来のペルオキシダーゼ(以後
CCPと略す)と西洋ワサビ由来のペルオキシダーゼ(
以後HRPと略す〕の発光の反応速度の差を過酸化水素
の検量線で示す。
過酸化水X(100μM 〜0.01μM)50mMピ
ロリン酸緩衝溶液(pH9,0)700μJにARP
(2μjl/1m)、CCP (3p9/rnl )あ
るいはHRP (2,2a9/rd )を含む1mMル
ミノール50mMビロリン酸緩衝溶液100μ!添加し
、ルミネッセンスフォトメーター(スリーエム薬品製、
ルーマ、クパイオカウンターM2O10マルチジェット
)で発光t’を求めた。 ARP 、 CCP 。
ロリン酸緩衝溶液(pH9,0)700μJにARP
(2μjl/1m)、CCP (3p9/rnl )あ
るいはHRP (2,2a9/rd )を含む1mMル
ミノール50mMビロリン酸緩衝溶液100μ!添加し
、ルミネッセンスフォトメーター(スリーエム薬品製、
ルーマ、クパイオカウンターM2O10マルチジェット
)で発光t’を求めた。 ARP 、 CCP 。
HRP量はA40iSあたフのヘム含量で調製した。結
果を図1に示す。微生物由来のペルオキシダーゼである
ARP 、 CCPは良好な検量関係を示し、HRPと
比べて30倍程度の発光量が得られた。又、このHRP
量では良好な検量関係は得られなかった。このように、
微生物由来のペルオキシダーゼは西洋ワサビ由来のペル
オキシダーゼと比べて化学発光の反応速度が速く、過酸
化水素めるhはIe累法により生成した過酸化水素を良
好な感度で定量することが可能となる。
果を図1に示す。微生物由来のペルオキシダーゼである
ARP 、 CCPは良好な検量関係を示し、HRPと
比べて30倍程度の発光量が得られた。又、このHRP
量では良好な検量関係は得られなかった。このように、
微生物由来のペルオキシダーゼは西洋ワサビ由来のペル
オキシダーゼと比べて化学発光の反応速度が速く、過酸
化水素めるhはIe累法により生成した過酸化水素を良
好な感度で定量することが可能となる。
次に、実施例によシ本発明の方法をさらに具体的に説明
する。尚、実施例において、微生物由来のペルオキシダ
ーゼはARPについて述べるが、CCPについても同様
でアフ、さらに微生物由来のペルオキシダーゼがこれら
両者に限られるものではないことは当然である。
する。尚、実施例において、微生物由来のペルオキシダ
ーゼはARPについて述べるが、CCPについても同様
でアフ、さらに微生物由来のペルオキシダーゼがこれら
両者に限られるものではないことは当然である。
実施例1
過酸化水素濃度を一定にして、ペルオキシダーゼ量をか
え発光量の変化を調べた。ARP(2μ欣〜0.01μ
P〜)またはHRP (2,2μ2〜〜0.04μM哨
を含む1mMルミノール50mMピロリン酸緩衝溶液(
pH9,0) 700 fit K 10μM過酸化水
素50mMピロリン酸緩衝溶液100μ!添加し発光量
を求め、全発光量及びIAPペルオキシダーゼ当9の発
光量をプロ、トシた(図29゜高濃度のARPが存在す
る時、反応速度が速いため瞬間の発光をルミネッセンス
フォトメーターで検出できず、全発光蓋は高いが、単位
ARP当りでは発光量が低くなる。しかし、ARP I
kを下げると、全発光量は低下するが、単位ARI’当
シの発光量は一定となる。この時全発光量はARP量と
良好な検量関係を示し、エンディムイムノアッセイに利
用することができるだけでなく、その感度は図2からも
明らかなようにHRPと比べて100倍程度期待できる
。
え発光量の変化を調べた。ARP(2μ欣〜0.01μ
P〜)またはHRP (2,2μ2〜〜0.04μM哨
を含む1mMルミノール50mMピロリン酸緩衝溶液(
pH9,0) 700 fit K 10μM過酸化水
素50mMピロリン酸緩衝溶液100μ!添加し発光量
を求め、全発光量及びIAPペルオキシダーゼ当9の発
光量をプロ、トシた(図29゜高濃度のARPが存在す
る時、反応速度が速いため瞬間の発光をルミネッセンス
フォトメーターで検出できず、全発光蓋は高いが、単位
ARP当りでは発光量が低くなる。しかし、ARP I
kを下げると、全発光量は低下するが、単位ARI’当
シの発光量は一定となる。この時全発光量はARP量と
良好な検量関係を示し、エンディムイムノアッセイに利
用することができるだけでなく、その感度は図2からも
明らかなようにHRPと比べて100倍程度期待できる
。
実施例2
ARP (!: HRPの発光強度の差をスト、7″ト
フロー法で調べた。
フロー法で調べた。
過酸化水素はグルコース、コレステロ−A4C%異的反
応を生じさせるグルコースオキシダーゼ、コレステロー
ルオキシダーゼ(東洋紡社製)’に用いて発生きせた。
応を生じさせるグルコースオキシダーゼ、コレステロー
ルオキシダーゼ(東洋紡社製)’に用いて発生きせた。
10mMグルコース溶液60μノに50 mM IJン
酸緩衝溶液(声7. O) 1ゴ加え、グル:F X
オキ’/f−セ溶液(2,6In97M ) 200
pl添加し、37℃で5分間反応を行い、反応液1dを
50mMピロリン酸緩衝溶液(pH9,0)9mに加え
て反応を終結させた。又コレステロール1i(100t
n/yd) 240 filに0.05 % Trit
on X −100を含む10mMリン酸緩衝溶液(P
l’17.O)2ml!加え、コレステロールオキシダ
ーゼ溶!(2,3η/m)400μl添加し室温で10
分間反応を行い、反応溶液2プを50mMピロリン酸緩
衝溶液(pf(9,0)8′ILIK加えて反応を終結
させた。以上のようにして、酵素反応で生じ九過酸化水
素とARP(50μμl)あるいはHRP (55Al
l/TRI )を含む1mMルミノール50 mM k
’ロリン酸緩衝溶液を用いて、スト、ブトフローフォト
メーター(ユニオン技研社製、RA−401〕で発光強
度を調べた。グルコース、コレステロールそれぞれの結
果を図3、図4に示す。
酸緩衝溶液(声7. O) 1ゴ加え、グル:F X
オキ’/f−セ溶液(2,6In97M ) 200
pl添加し、37℃で5分間反応を行い、反応液1dを
50mMピロリン酸緩衝溶液(pH9,0)9mに加え
て反応を終結させた。又コレステロール1i(100t
n/yd) 240 filに0.05 % Trit
on X −100を含む10mMリン酸緩衝溶液(P
l’17.O)2ml!加え、コレステロールオキシダ
ーゼ溶!(2,3η/m)400μl添加し室温で10
分間反応を行い、反応溶液2プを50mMピロリン酸緩
衝溶液(pf(9,0)8′ILIK加えて反応を終結
させた。以上のようにして、酵素反応で生じ九過酸化水
素とARP(50μμl)あるいはHRP (55Al
l/TRI )を含む1mMルミノール50 mM k
’ロリン酸緩衝溶液を用いて、スト、ブトフローフォト
メーター(ユニオン技研社製、RA−401〕で発光強
度を調べた。グルコース、コレステロールそれぞれの結
果を図3、図4に示す。
結果から明らかなように%ARP K HRPに比べて
発光強度が高く、実にグルコースの場合365倍、コレ
ステロールの場合でも49倍でめった。このように微生
物由来のペルオキシダーゼが西洋ワサビ由来のペルオキ
シダーゼと比べて、いかに反応速度が速いかがわかる。
発光強度が高く、実にグルコースの場合365倍、コレ
ステロールの場合でも49倍でめった。このように微生
物由来のペルオキシダーゼが西洋ワサビ由来のペルオキ
シダーゼと比べて、いかに反応速度が速いかがわかる。
実施例3
種々の濃度のグルコース溶液60μlに50 mM I
Jン酸緩衝#液(−17,0) 1 m加え、グルコー
スオキシ/ −−k” 浴液(2,6m91rtr&
) 200 μi 添加し、37℃で5分間反応を行
い、反応溶液ittを5゜flIMピロリン酸緩衝溶液
(pi(9,0)9t/に加えて反応を終結させた。こ
の反応液700μ7KARP(2μF/1)11)ある
いはHRP (2,2μP/ゴ)を含む1娼ルミノ一ル
50mMピロリン酸緩衝溶液100μ!添加し、ルミネ
ッセンスフォトメーターで発光量を求め、検talヲ得
りC図5 ) 、 M’jLARP ハHRP 、!−
比ヘテ28倍の発光蓋が得られた。このようにARPは
高感度分析に適することが示唆される。
Jン酸緩衝#液(−17,0) 1 m加え、グルコー
スオキシ/ −−k” 浴液(2,6m91rtr&
) 200 μi 添加し、37℃で5分間反応を行
い、反応溶液ittを5゜flIMピロリン酸緩衝溶液
(pi(9,0)9t/に加えて反応を終結させた。こ
の反応液700μ7KARP(2μF/1)11)ある
いはHRP (2,2μP/ゴ)を含む1娼ルミノ一ル
50mMピロリン酸緩衝溶液100μ!添加し、ルミネ
ッセンスフォトメーターで発光量を求め、検talヲ得
りC図5 ) 、 M’jLARP ハHRP 、!−
比ヘテ28倍の発光蓋が得られた。このようにARPは
高感度分析に適することが示唆される。
実施例4
種々の限度のコレステロール溶液120μノに0、05
96 Trlton X −100を含む10−リン酸
緩衝浴i(P#17.0)1−加工、コレヌテロールオ
キシダーゼ溶液(c)、2rIVuり 200 al
添加し37℃で15分間反応を行い、反応液1 ”L
’ t 50mMピロリン酸緩衝溶液(PH9,0)4
tdに加えて反応を終結させた。この反応溶液700μ
ノにARP (2μm!/Ml )あるいは)iRP
(2,2μ2/E/ンを含む1mMルミノール50mM
ビロリン酸緩衝溶液1001AI添加し、ルミネッセン
スフォトメーターで発光量を求め、検量線を得九(図6
)、結果ARPはHRPと比べて134倍の発光量が得
られた。
96 Trlton X −100を含む10−リン酸
緩衝浴i(P#17.0)1−加工、コレヌテロールオ
キシダーゼ溶液(c)、2rIVuり 200 al
添加し37℃で15分間反応を行い、反応液1 ”L
’ t 50mMピロリン酸緩衝溶液(PH9,0)4
tdに加えて反応を終結させた。この反応溶液700μ
ノにARP (2μm!/Ml )あるいは)iRP
(2,2μ2/E/ンを含む1mMルミノール50mM
ビロリン酸緩衝溶液1001AI添加し、ルミネッセン
スフォトメーターで発光量を求め、検量線を得九(図6
)、結果ARPはHRPと比べて134倍の発光量が得
られた。
以上のように、微生物由来のペルオキシダーゼを化学発
光に利用すると、従来の西洋ワサビ由来のペルオキシダ
ーゼよシも発光強度か100倍以上強くなるので、高感
度のルミネッセンスフォトメーターを使わなくても十分
に高感度分析が可能となった。
光に利用すると、従来の西洋ワサビ由来のペルオキシダ
ーゼよシも発光強度か100倍以上強くなるので、高感
度のルミネッセンスフォトメーターを使わなくても十分
に高感度分析が可能となった。
第1図は微生物由来および西洋ワサビ由来のベルオキシ
ダーゼによる発光の反応速度の差を表わす検量Mt−示
す図でるり、 第2図は過酸化水素濃度を一定にして、ベルオキシ〆−
セの量を変えた時の発光蓋の変化を示す図であり、 第3図はグルコースから過酸化水kft鈍生させたとき
の微生物由来および西洋ワサビ由来のベルオ中シ〆一−
41#lCよる発光強度の差を示す図でめり、第4図は
コレステロールから過酸化水素を発生させ九ときの微生
物由来および西洋ワサビ由来のベルオ中シ〆−ゼによる
発光強度の差を示す図でToり、 第5図は各グルコース濃度より過酸化水素を発光させた
ときのルミネッセンスフォトメーターによる検量IfM
を示す図であり、 第6図は各コレステロール濃度よシ過酸化水素を発生さ
せたときのルミネッセンスフォトメーターによる検量線
を示す図である。
ダーゼによる発光の反応速度の差を表わす検量Mt−示
す図でるり、 第2図は過酸化水素濃度を一定にして、ベルオキシ〆−
セの量を変えた時の発光蓋の変化を示す図であり、 第3図はグルコースから過酸化水kft鈍生させたとき
の微生物由来および西洋ワサビ由来のベルオ中シ〆一−
41#lCよる発光強度の差を示す図でめり、第4図は
コレステロールから過酸化水素を発生させ九ときの微生
物由来および西洋ワサビ由来のベルオ中シ〆−ゼによる
発光強度の差を示す図でToり、 第5図は各グルコース濃度より過酸化水素を発光させた
ときのルミネッセンスフォトメーターによる検量IfM
を示す図であり、 第6図は各コレステロール濃度よシ過酸化水素を発生さ
せたときのルミネッセンスフォトメーターによる検量線
を示す図である。
Claims (4)
- (1)過酸化水素の定量において、微生物由来のペルオ
キシダーゼおよび水素供与体からなる測定試薬を使用す
ることを特徴とする過酸化水素の定量法。 - (2)ペルオキシダーゼがアリスロマイセス・ラモス(
Arythromyces ramosus)由来のペ
ルオキシダーゼである特許請求の範囲第1項記載の定量
法。 - (3)ペルオキシダーゼがコプリヌス(Coprinu
s)属由来のペルオキシダーゼであ る特許請求の範囲第1項に記載の定量法。 - (4)水素供与体が発光試薬である特許請求の範囲第1
項ないし第3項記載の定量法。
Priority Applications (4)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP62053390A JP2528457B2 (ja) | 1987-03-09 | 1987-03-09 | 過酸化水素の定量法 |
EP88103705A EP0282024B1 (en) | 1987-03-09 | 1988-03-09 | An assay method for detecting hydrogen peroxide |
DE88103705T DE3886072T2 (de) | 1987-03-09 | 1988-03-09 | Bestimmungsverfahren zum Nachweis von Wasserstoffperoxid. |
US07/166,102 US5084381A (en) | 1987-03-09 | 1988-03-09 | Assay method for detecting hydrogen peroxide |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP62053390A JP2528457B2 (ja) | 1987-03-09 | 1987-03-09 | 過酸化水素の定量法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS63219398A true JPS63219398A (ja) | 1988-09-13 |
JP2528457B2 JP2528457B2 (ja) | 1996-08-28 |
Family
ID=12941498
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP62053390A Expired - Lifetime JP2528457B2 (ja) | 1987-03-09 | 1987-03-09 | 過酸化水素の定量法 |
Country Status (4)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US5084381A (ja) |
EP (1) | EP0282024B1 (ja) |
JP (1) | JP2528457B2 (ja) |
DE (1) | DE3886072T2 (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2010281652A (ja) * | 2009-06-04 | 2010-12-16 | Kikkoman Corp | ペルオキシダーゼ化学発光測定試薬 |
Families Citing this family (8)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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WO1992016648A1 (en) * | 1991-03-18 | 1992-10-01 | Environmental Test Systems, Inc. | Chemiluminescent test for microorganisms |
US5472381A (en) * | 1991-12-31 | 1995-12-05 | Ayre, Jr.; Fred P. | Method and arrangement for applying and securing edges of improved bowling lane surfaces |
WO1997041442A1 (en) * | 1996-05-01 | 1997-11-06 | Behringwerke Aktiengesellschaft | Chemiluminescent compositions and their use in the detection of hydrogen peroxide |
WO2001055446A1 (en) * | 2000-01-28 | 2001-08-02 | Brij Pal Giri | Novel stabilized formulations for chemiluminescent assays |
AU2006259307B2 (en) * | 2005-06-17 | 2012-12-20 | Mannkind Corporation | Epitope analogues |
AU2008222860B2 (en) * | 2007-03-05 | 2013-10-31 | Advanced Liquid Logic, Inc. | Hydrogen peroxide droplet-based assays |
US8748191B2 (en) * | 2010-08-02 | 2014-06-10 | Ecolab Usa Inc. | Stop-flow analytical systems and methods |
CN104792771B (zh) * | 2015-04-13 | 2017-06-06 | 天津大学 | 鲁米诺‑过氧化氢‑溴酚红‑hrp‑bsa化学发光体系检测hrp的方法 |
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JPS5425892A (en) * | 1977-07-29 | 1979-02-27 | Wako Pure Chem Ind Ltd | Quantitative determination of hydrogen peroxide |
JPS6033479B2 (ja) * | 1980-07-30 | 1985-08-02 | 協和醗酵工業株式会社 | 過酸化水素の定量方法 |
JPS5937946B2 (ja) * | 1980-10-21 | 1984-09-12 | アロカ株式会社 | 検体中の微量成分分析装置 |
JPS5783287A (en) * | 1980-11-14 | 1982-05-25 | Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd | Elimination of hydrogen peroxide |
JPS5861446A (ja) * | 1981-10-07 | 1983-04-12 | Fuji Photo Film Co Ltd | 過酸化水素の定量方法 |
JPS59205999A (ja) * | 1983-05-10 | 1984-11-21 | Wako Pure Chem Ind Ltd | 還元型補酵素の定量方法 |
JPS6143987A (ja) * | 1984-08-07 | 1986-03-03 | Suntory Ltd | ペルオキシダ−ゼ及びその製造法 |
JPS61104784A (ja) * | 1984-10-26 | 1986-05-23 | Suntory Ltd | ペルオキシダ−ゼの製造法 |
JPS61128887A (ja) * | 1984-11-28 | 1986-06-16 | Takara Shuzo Co Ltd | ペルオキシダ−ゼの製造法 |
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JPS61254189A (ja) * | 1985-05-02 | 1986-11-11 | Nissin Food Prod Co Ltd | パ−オキシダ−ゼの製造法 |
CA1307480C (en) * | 1985-07-10 | 1992-09-15 | Nanibhushan Dattagupta | Prolonged chemiluminescence |
AU603342B2 (en) * | 1985-10-15 | 1990-11-15 | Minnesota Mining And Manufacturing Company | Chemiluminescent methods and kit |
-
1987
- 1987-03-09 JP JP62053390A patent/JP2528457B2/ja not_active Expired - Lifetime
-
1988
- 1988-03-09 DE DE88103705T patent/DE3886072T2/de not_active Expired - Fee Related
- 1988-03-09 EP EP88103705A patent/EP0282024B1/en not_active Expired - Lifetime
- 1988-03-09 US US07/166,102 patent/US5084381A/en not_active Expired - Fee Related
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Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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JP2010281652A (ja) * | 2009-06-04 | 2010-12-16 | Kikkoman Corp | ペルオキシダーゼ化学発光測定試薬 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
US5084381A (en) | 1992-01-28 |
EP0282024A1 (en) | 1988-09-14 |
JP2528457B2 (ja) | 1996-08-28 |
EP0282024B1 (en) | 1993-12-08 |
DE3886072D1 (de) | 1994-01-20 |
DE3886072T2 (de) | 1994-05-05 |
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