JPS63131061A - 組織特異性、不溶性細胞骨格蛋白質の同定方法 - Google Patents
組織特異性、不溶性細胞骨格蛋白質の同定方法Info
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- JPS63131061A JPS63131061A JP7953087A JP7953087A JPS63131061A JP S63131061 A JPS63131061 A JP S63131061A JP 7953087 A JP7953087 A JP 7953087A JP 7953087 A JP7953087 A JP 7953087A JP S63131061 A JPS63131061 A JP S63131061A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、不溶性構造の組織特異性蛋白質をその蛋白質
の組織特異性断片を特徴とする特異的抗体によって同定
する方法に関する。
の組織特異性断片を特徴とする特異的抗体によって同定
する方法に関する。
細胞形質膜と会合する細胞質プラーク組織の蛋白質は、
生化学的緩衝液中にきわめて溶解し難く、また、細胞特
異的な主蛋白質を生じる。この主蛋白質については、髄
膜および骨膜腫のような上皮および上皮腫瘍の組織学的
診断に際して特異性を示すデスモグレイン、プラコグロ
ビンならびにデスモブラキンエおよび■のデスモソーム
ーブラークの構造に関し、とくに詳細に研究されている
。
生化学的緩衝液中にきわめて溶解し難く、また、細胞特
異的な主蛋白質を生じる。この主蛋白質については、髄
膜および骨膜腫のような上皮および上皮腫瘍の組織学的
診断に際して特異性を示すデスモグレイン、プラコグロ
ビンならびにデスモブラキンエおよび■のデスモソーム
ーブラークの構造に関し、とくに詳細に研究されている
。
これらの主蛋白質のフラグメントの体液中への出現は、
上皮および髄膜組織における細胞病変および細胞の崩壊
過程の適当な指標となる。このような蛋白質を同定する
ことは望ましい。
上皮および髄膜組織における細胞病変および細胞の崩壊
過程の適当な指標となる。このような蛋白質を同定する
ことは望ましい。
特異的な抗体を用い、組織学的診断のために中間フィラ
メント蛋白質を同定することは公知である。中間フィラ
メント蛋白質は細胞骨格の構成成分であり、それぞれ組
織の種類により特異性を有する。転移または組織病変の
中間フィラメント蛋白質の同定によって、原発組織ある
いは一次腫瘍の解析が可能になる。
メント蛋白質を同定することは公知である。中間フィラ
メント蛋白質は細胞骨格の構成成分であり、それぞれ組
織の種類により特異性を有する。転移または組織病変の
中間フィラメント蛋白質の同定によって、原発組織ある
いは一次腫瘍の解析が可能になる。
組織学的検討は繁雑であり、その使用は限定される。当
該組織がin v;troで同定可能であるか、検査の
ために入手しやすい組織である場合にのみ、結果を導く
ことができるにすぎない。
該組織がin v;troで同定可能であるか、検査の
ために入手しやすい組織である場合にのみ、結果を導く
ことができるにすぎない。
本発明の課題は、実施が容易で頻繁に利用できて可能な
限り発見の機会を大きくできる、冒頭に述べたような方
法を企図するものである。
限り発見の機会を大きくできる、冒頭に述べたような方
法を企図するものである。
本発明は、抗原を保持し、特徴的な断片に相当するフラ
グメントを溶液に導き、ついで免疫学的に検出または定
石することを特徴とするものである。
グメントを溶液に導き、ついで免疫学的に検出または定
石することを特徴とするものである。
不溶性構造の組織特異性蛋白質は細胞骨格蛋白質でよく
、好ましくは中間フィラメント蛋白質である。中間フィ
ラメント蛋白質の場合は、α−ヘリツクス中央部分また
はその部分に相当するフラグメントを含有する。このよ
うなフラグメントはα−へワックス中央部フラグメント
と呼ばれる。
、好ましくは中間フィラメント蛋白質である。中間フィ
ラメント蛋白質の場合は、α−ヘリツクス中央部分また
はその部分に相当するフラグメントを含有する。このよ
うなフラグメントはα−へワックス中央部フラグメント
と呼ばれる。
本川[1書におけるα−ヘリツクス中央部フラグメント
はすべて、抗原を保持し、上述の特性を有する断片を意
味する。
はすべて、抗原を保持し、上述の特性を有する断片を意
味する。
本発明は、細胞生物学における以下の知識を利用するも
のである。
のである。
すなわち、細胞骨格の構成成分として不溶性細胞構成成
分に属する中間フィラメント(IF)蛋白質は、高い安
定性と細胞特異性を有する蛋白質である。その配置は第
1表に示すとおりである。
分に属する中間フィラメント(IF)蛋白質は、高い安
定性と細胞特異性を有する蛋白質である。その配置は第
1表に示すとおりである。
第1表
組織 中間フィラメント蛋白質
筋肉 デスミン
神経 ニューロフィラメント蛋白質(NF−L、
NF−M、NF−H) 間葉 ビメンチン 星細胞 ダリアフィラメント 上皮 シトケラチン 検出方法は、各フィラメント種について、それぞれ2個
の抗体から構築されるサンドイッチ−ELISAによる
。
NF−M、NF−H) 間葉 ビメンチン 星細胞 ダリアフィラメント 上皮 シトケラチン 検出方法は、各フィラメント種について、それぞれ2個
の抗体から構築されるサンドイッチ−ELISAによる
。
ほかに、転位の検出には、ひとつの組織の別個の細胞種
を同定することが望ましい。これは細胞組織からホモゲ
ネートを作成し、このホモゲネートを少なくとも中間フ
ィラメント蛋白質のかなりの部分からα−へワックス中
央部フラグメントが遊離されるまで分解反応に付し、つ
いで可溶性分画を分離し、可溶性分画に含まれる可溶相
中のα−へワックス中央部フラグメントを免疫学的に同
定することにより行われる。
を同定することが望ましい。これは細胞組織からホモゲ
ネートを作成し、このホモゲネートを少なくとも中間フ
ィラメント蛋白質のかなりの部分からα−へワックス中
央部フラグメントが遊離されるまで分解反応に付し、つ
いで可溶性分画を分離し、可溶性分画に含まれる可溶相
中のα−へワックス中央部フラグメントを免疫学的に同
定することにより行われる。
本発明のさらに他の課題は、転位の範囲を確実に予測す
ることである。この課題は細胞ホモゲネートの様々な中
間フィラメント蛋白質を同定し、相Hの量的関係を求め
ることにより達成される。
ることである。この課題は細胞ホモゲネートの様々な中
間フィラメント蛋白質を同定し、相Hの量的関係を求め
ることにより達成される。
多様なシトケラチンが存在しくCK N01〜1つ)
、その発現パターンtま上皮組織によって変動する。し
たがって、シトケラチンの場合は、それぞれの上皮組織
との相関性を、同定されたシトケラチンの相対的割合に
基づいて決定、定量することが望ましい。この相関性に
ついてもα−へワックス中央部フラグメントの豊富な特
性によるものである。
、その発現パターンtま上皮組織によって変動する。し
たがって、シトケラチンの場合は、それぞれの上皮組織
との相関性を、同定されたシトケラチンの相対的割合に
基づいて決定、定量することが望ましい。この相関性に
ついてもα−へワックス中央部フラグメントの豊富な特
性によるものである。
分解に際してα−へワックス中央部分が破壊されすぎて
同定が妨害されないことを保証するためには、0〜40
℃の温度で80〜101!ffi%が生理的食塩溶液に
溶解するまで分解を行うことが推せんされる。プロテア
ーゼ活性の停止には適当な阻害剤を使用する。
同定が妨害されないことを保証するためには、0〜40
℃の温度で80〜101!ffi%が生理的食塩溶液に
溶解するまで分解を行うことが推せんされる。プロテア
ーゼ活性の停止には適当な阻害剤を使用する。
同じ理由から、IF−蛋白質も少なくともα−へワック
ス中央部分の80重量%が無傷に残っている程度まで分
解を行うことが好ましい。
ス中央部分の80重量%が無傷に残っている程度まで分
解を行うことが好ましい。
これらの方法は、転位は一般にリンパ組織にも起こるの
で、寄生組織としてリンパ組織を用いて行うことも好ま
しい。この場合、IF−蛋白質は、原発部位のマーカー
として、異種組織として触さ、たとえば乳房[1織とし
てリンパ小節に検出される。
で、寄生組織としてリンパ組織を用いて行うことも好ま
しい。この場合、IF−蛋白質は、原発部位のマーカー
として、異種組織として触さ、たとえば乳房[1織とし
てリンパ小節に検出される。
部分的分解は、化学的に、たとえば酸または塩基で実施
することもできる。また、物理的な部分分解、たとえば
加熱や照射によることもできる。
することもできる。また、物理的な部分分解、たとえば
加熱や照射によることもできる。
しかしながら、部分的分解は蛋白分解酵素によって行う
のが好ましい。この方法では問題の蛋白質の分解を、一
方では中央部が可溶化するように、他方では同定に十分
な無傷の中央部が残存するように、比較的容易に調節で
きるからである。
のが好ましい。この方法では問題の蛋白質の分解を、一
方では中央部が可溶化するように、他方では同定に十分
な無傷の中央部が残存するように、比較的容易に調節で
きるからである。
細胞障害後には、不溶性蛋白質および不溶性構造は様々
に蛋白分解酵素で分解される。このような分解反応後に
も、IF−蛋白質からは比較的安定なα−へワックス中
央部を含有し、したがって、体液中から免疫学的方法で
検出、定量することができる。このような病変の検出に
は、血液、血清、脳脊髄液、尿、羊水、穿刺液または他
の体液に溶解して含有される中央部フラグメントを免疫
学的に同定する。
に蛋白分解酵素で分解される。このような分解反応後に
も、IF−蛋白質からは比較的安定なα−へワックス中
央部を含有し、したがって、体液中から免疫学的方法で
検出、定量することができる。このような病変の検出に
は、血液、血清、脳脊髄液、尿、羊水、穿刺液または他
の体液に溶解して含有される中央部フラグメントを免疫
学的に同定する。
体液中では、中間フィラメント蛋白質が、不溶性の形で
混入することも可能性である。したがって、血液、血清
、脳脊髄液、尿、羊水、穿刺液または他の体液中に含有
される蛋白質を、少なくともかなりの部分の存在する可
能性のある不溶性細胞骨格蛋白質からそれぞれのα−へ
ワックス中央部フラグメントを:iimするまで分解反
応に付し、ついで可溶性分画に含有されるα−へワック
ス中央部フラグメントを免疫学的に同定する方法も考慮
される。
混入することも可能性である。したがって、血液、血清
、脳脊髄液、尿、羊水、穿刺液または他の体液中に含有
される蛋白質を、少なくともかなりの部分の存在する可
能性のある不溶性細胞骨格蛋白質からそれぞれのα−へ
ワックス中央部フラグメントを:iimするまで分解反
応に付し、ついで可溶性分画に含有されるα−へワック
ス中央部フラグメントを免疫学的に同定する方法も考慮
される。
本発明によれば、検出および定量結果を、体液の採取後
即座に得ることができる。これは著しい利点である。
即座に得ることができる。これは著しい利点である。
また、本発明によれば、病理的または治療的経過の進行
、たとえば照射および化学療法を組織の障害に応じてコ
ントロールすることが可能になる。
、たとえば照射および化学療法を組織の障害に応じてコ
ントロールすることが可能になる。
11織障害性処置の継続をコントロールするためには、
体液を採取し、障害性処置中および/またはその後に、
頻繁な間隔で測定および定量を実施する。
体液を採取し、障害性処置中および/またはその後に、
頻繁な間隔で測定および定量を実施する。
[l胞障害によって体液中に遊離した細Its骨格蛋白
質フラグメントは相当する抗体産生の原因ともなる。こ
のような抗体の検出により、問題のフラグメントが確認
されれば、固有のill胞障害があることになる。これ
はまた本発明の利点であり、血液、血清、脳脊髄液、尿
、羊水、穿刺液または他の体液中の該当する精製蛋白質
から得られた試験プレパラートを、含有される可能性が
ある抗体に暴露し、この試験物質に結合した抗体を定性
または定石的に測定することを特徴とする方法も本発明
を構成する。
質フラグメントは相当する抗体産生の原因ともなる。こ
のような抗体の検出により、問題のフラグメントが確認
されれば、固有のill胞障害があることになる。これ
はまた本発明の利点であり、血液、血清、脳脊髄液、尿
、羊水、穿刺液または他の体液中の該当する精製蛋白質
から得られた試験プレパラートを、含有される可能性が
ある抗体に暴露し、この試験物質に結合した抗体を定性
または定石的に測定することを特徴とする方法も本発明
を構成する。
体液に含有される、相当する抗体の信頼性の高い追求は
、検討すべき障害の発見の可能性がきわめて高いもので
ある。
、検討すべき障害の発見の可能性がきわめて高いもので
ある。
α−へラックス中央部フラグメントからの試験プレパラ
ートがとくに好ましい。
ートがとくに好ましい。
一定の標準に基づき定量化を行う場合に必要な標準化は
、精製した細胞骨格蛋白質またはそのフラグメントを用
いて標準を生成する。
、精製した細胞骨格蛋白質またはそのフラグメントを用
いて標準を生成する。
抗原形成細胞骨格蛋白質断片と同一であるかまたはそれ
を短縮したポリペプチド、ならびに合成によりあるいは
原核生物もしくは酵素中で合成もしくは組換えDNAの
発現により製造されるポリペプチドが、標準物質として
使用するのに好ましい。
を短縮したポリペプチド、ならびに合成によりあるいは
原核生物もしくは酵素中で合成もしくは組換えDNAの
発現により製造されるポリペプチドが、標準物質として
使用するのに好ましい。
次に、本発明を以下の実施例によりさらに詳細に説明す
る。
る。
例 1
リンパ組織における転位の検出
a) リンパ組織の湿重量をまず測定する。この組織を
湿重量に対して3倍容のリン酸緩衝食塩溶液(10aH
リン酸ナトリウム、I)+17.4,150mM食塩)
中、ナイフホモゲナイザーを用いて粥状になるまで破砕
する[キネマチイカ(に1neIatiCa社)、ルゼ
ルン(Luzern) /スイスのポリトロンホモゲナ
イザーが推賞できる]。この粥状にした組織に組織の湿
重量に対して1:1000の割合でキモトリプシンを加
える。インキュベーションは30℃で(好ましくは熱板
上、場合によっては水浴中で)行い、60分後に中止す
る。酵素活性の停止には5mHのNGDC(2−ニドo
−4−カルボキシフェニル−N、N−ジフェニルカルバ
メート)を加える。次にホモゲネートを11049(は
重量定数)で30分間遠心分離する。この条件下で、8
0〜95重量%のα−ヘリツクス中央フラグメントが同
定可能な状態でIF、蛋白質から遊離される。
湿重量に対して3倍容のリン酸緩衝食塩溶液(10aH
リン酸ナトリウム、I)+17.4,150mM食塩)
中、ナイフホモゲナイザーを用いて粥状になるまで破砕
する[キネマチイカ(に1neIatiCa社)、ルゼ
ルン(Luzern) /スイスのポリトロンホモゲナ
イザーが推賞できる]。この粥状にした組織に組織の湿
重量に対して1:1000の割合でキモトリプシンを加
える。インキュベーションは30℃で(好ましくは熱板
上、場合によっては水浴中で)行い、60分後に中止す
る。酵素活性の停止には5mHのNGDC(2−ニドo
−4−カルボキシフェニル−N、N−ジフェニルカルバ
メート)を加える。次にホモゲネートを11049(は
重量定数)で30分間遠心分離する。この条件下で、8
0〜95重量%のα−ヘリツクス中央フラグメントが同
定可能な状態でIF、蛋白質から遊離される。
b) ビメンチンの検出およびビメンチン含吊の定量
遠心分離上清について、ビメンチンをサンドイッチ−E
LISAによって免疫学的に測定する。
LISAによって免疫学的に測定する。
この場合、第一のモノクロナール抗体GP−8は、α−
ヘリツクス中央フラグメントの第一のエピトープに結合
する、いわゆる捕捉抗体として作用し、第二のモノクロ
ナール抗mV−100はα−ヘリツクス中央フラグメン
トの、第一のエピトープとは独立で異種の第二のエピト
ープに結合する、いわゆる検出抗体として作用する。抗
体V−100はペルオキシダーゼと連結され、α−ヘリ
ツクス中央フラグメントと結合すると、ペルオキシダー
ゼの酵素活性によって確認される。標準化には既知の精
製α−ヘリツクスビメンチンフラグメントを用い、同一
のサンドイッチ−ELISAにより同一の抗体で試験を
行う。得られたビメンチン値は、測定結果の定量化に際
して係数になる。
ヘリツクス中央フラグメントの第一のエピトープに結合
する、いわゆる捕捉抗体として作用し、第二のモノクロ
ナール抗mV−100はα−ヘリツクス中央フラグメン
トの、第一のエピトープとは独立で異種の第二のエピト
ープに結合する、いわゆる検出抗体として作用する。抗
体V−100はペルオキシダーゼと連結され、α−ヘリ
ツクス中央フラグメントと結合すると、ペルオキシダー
ゼの酵素活性によって確認される。標準化には既知の精
製α−ヘリツクスビメンチンフラグメントを用い、同一
のサンドイッチ−ELISAにより同一の抗体で試験を
行う。得られたビメンチン値は、測定結果の定量化に際
して係数になる。
C)シトケラチンの検出およびシトケラチン含量の定量
遠心分離した上清について、シトケラチンの存在もサン
ドイッチ−ELISAで免疫学的に定量する。この場合
、第一のモノクロナール抗体PAN−CIはすべてのシ
トケラチンの第一のエピトープに結合し、いわゆる捕捉
抗体として作用する。いわゆる検出抗体としては、それ
ぞれ単独の19種の公知のシトケラチンに特異的に付着
する19種のモノクロナール抗体C−401からC−4
19までを準備する。検出抗体は、検出抗体V−100
と同様に酵素で標識する。検出と標準化はb)に記載し
たと同様に実施するが、19種の可能性あるシトケラチ
ンに特異的に適用し、したがって、個々のシトケラチン
の相対比を計算できる。
ドイッチ−ELISAで免疫学的に定量する。この場合
、第一のモノクロナール抗体PAN−CIはすべてのシ
トケラチンの第一のエピトープに結合し、いわゆる捕捉
抗体として作用する。いわゆる検出抗体としては、それ
ぞれ単独の19種の公知のシトケラチンに特異的に付着
する19種のモノクロナール抗体C−401からC−4
19までを準備する。検出抗体は、検出抗体V−100
と同様に酵素で標識する。検出と標準化はb)に記載し
たと同様に実施するが、19種の可能性あるシトケラチ
ンに特異的に適用し、したがって、個々のシトケラチン
の相対比を計算できる。
シトケラチン1k15、随7.1k18、随14、随1
7およびNα19のみでほぼ全量を占め、場合によりシ
トケラチンNn15および随18が補足的に確認される
場合は、乳癌の転移が推定される。
7およびNα19のみでほぼ全量を占め、場合によりシ
トケラチンNn15および随18が補足的に確認される
場合は、乳癌の転移が推定される。
例 2
例1において乳癌の転位が認められた場合の転位の精密
な同定 例1のb)およびC)の試験により、腋窩リンパ小節に
乳癌の転移が認められた場合には例1のa)工程におけ
るホモゲネートについて、ニストロジエンおよびプロゲ
ステロンに対する受容体含量を測定する。この受容体含
量は、例1の工程C)で得られたα−ヘリツクスシトケ
ラチンフラグメントの含量に関係する。得られた数値は
、そのホルモン受容体を有する転移[l砲の存在程度を
示す尺度となる。このような数値は公知の方法ではこれ
まで得られなかったものである。これは適切な化学療法
を導入するための指標となる。
な同定 例1のb)およびC)の試験により、腋窩リンパ小節に
乳癌の転移が認められた場合には例1のa)工程におけ
るホモゲネートについて、ニストロジエンおよびプロゲ
ステロンに対する受容体含量を測定する。この受容体含
量は、例1の工程C)で得られたα−ヘリツクスシトケ
ラチンフラグメントの含量に関係する。得られた数値は
、そのホルモン受容体を有する転移[l砲の存在程度を
示す尺度となる。このような数値は公知の方法ではこれ
まで得られなかったものである。これは適切な化学療法
を導入するための指標となる。
鼠ユ
骨盤突起生検標本における転移の検出
リンパ小節に代えて骨盤突起生検標本を用いるほかは例
1と同様にして検出を行う。
1と同様にして検出を行う。
匠A
内障眼穿刺液における転位の検出
リンパ小節に代えて内障眼穿刺液を用いるほかは例1と
同様にして検出を行う。
同様にして検出を行う。
匠二
鑑別診断のための上皮組織における病変の検出患者血液
の血清1mlについて、シトケラチンの存在をサンドイ
ッチ−ELISAにより免疫学的に測定する。この場合
、すべての血清中に存在するシトケラチンフラグメント
複合体に見出される第一のエピトープに対して結合する
第一のモノクロナール抗体PAN−CIをいわゆる捕捉
抗体として用いる。さらに、いわゆる検出抗体として、
それぞれ第二のエピトープに結合し、既知の19種のシ
トケラチンそれぞれに特異的に付着するモノクロナール
抗体C−401〜G−419を準備する。第二のエピト
ープはいずれも第一のエピトープとは独立、異種である
。検出抗体はペルオキシダーゼで酵素的に標識される。
の血清1mlについて、シトケラチンの存在をサンドイ
ッチ−ELISAにより免疫学的に測定する。この場合
、すべての血清中に存在するシトケラチンフラグメント
複合体に見出される第一のエピトープに対して結合する
第一のモノクロナール抗体PAN−CIをいわゆる捕捉
抗体として用いる。さらに、いわゆる検出抗体として、
それぞれ第二のエピトープに結合し、既知の19種のシ
トケラチンそれぞれに特異的に付着するモノクロナール
抗体C−401〜G−419を準備する。第二のエピト
ープはいずれも第一のエピトープとは独立、異種である
。検出抗体はペルオキシダーゼで酵素的に標識される。
標準化には、19種の各シトケラチンの精製α−へリッ
ク中央フィラメントを同一のサンドイッチ−ELISA
により同一の抗体で試験を行う。
ク中央フィラメントを同一のサンドイッチ−ELISA
により同一の抗体で試験を行う。
この、ようにして得られた19種のシトケラチン値は、
測定結果の定量化に際しての標準値として利用される。
測定結果の定量化に際しての標準値として利用される。
この方法により、個々のシトケラチンの相対金回が明ら
かになる。障害上皮組織に十分な特異性があり、障害の
程度が推測できる。
かになる。障害上皮組織に十分な特異性があり、障害の
程度が推測できる。
シトケラチン8および18のみが確認されたときは、肝
ll1ll!、腎上皮ないし膵臓小細胞の病変およびこ
の種の細胞の転移!!!瘍が推測され、病変部位として
他の組織は考えにくい。
ll1ll!、腎上皮ないし膵臓小細胞の病変およびこ
の種の細胞の転移!!!瘍が推測され、病変部位として
他の組織は考えにくい。
λl
内部上皮組織の病変の検出
捕捉抗体をPAN−CI、検出抗体をシトケラチンNQ
8、社18および騎19に付着するC−408、D−4
18およびC−419に限定するほかは例6と同様に操
作する。シトケラチンに8、社18およびN1119が
比率の高い構成成分として検出された場合は、腸管の上
皮の範囲における病変が推測され、病変部位として他の
臓器は考えにくい。
8、社18および騎19に付着するC−408、D−4
18およびC−419に限定するほかは例6と同様に操
作する。シトケラチンに8、社18およびN1119が
比率の高い構成成分として検出された場合は、腸管の上
皮の範囲における病変が推測され、病変部位として他の
臓器は考えにくい。
[
妊娠時における神経系欠陥の疑いに際しての早期診断
羊水穿刺液10M1を遠心分離する。沈澱物をその湿重
量に対して3倍容のリン酸!1vN食塩溶液(10mM
リン酸ナトリウム、pH7,4,150mM食塩)中、
ナイフホモゲナイザーを用いて粥状になるまで破砕する
。このホモゲネートに、組織湿重量に対して1:100
0の割合でキモトリプシンを加える。インキュベーショ
ンは水浴中30℃で実施し、60分後に停止する。酵素
活性の停止は5IIHの2−二トロー4−カルボキシフ
ェニル−N、N−ジフェニルカルバメート(NGDC)
によって生じる。ついでホモゲメートを30分間、10
49(9−重力定数)で遠心分離する。
量に対して3倍容のリン酸!1vN食塩溶液(10mM
リン酸ナトリウム、pH7,4,150mM食塩)中、
ナイフホモゲナイザーを用いて粥状になるまで破砕する
。このホモゲネートに、組織湿重量に対して1:100
0の割合でキモトリプシンを加える。インキュベーショ
ンは水浴中30℃で実施し、60分後に停止する。酵素
活性の停止は5IIHの2−二トロー4−カルボキシフ
ェニル−N、N−ジフェニルカルバメート(NGDC)
によって生じる。ついでホモゲメートを30分間、10
49(9−重力定数)で遠心分離する。
この条件下で、80〜95重量%のα−へリック中央フ
ィラメントが同定可能な状態にIF−蛋白質から遊離さ
れる。
ィラメントが同定可能な状態にIF−蛋白質から遊離さ
れる。
得られた遠心分離上清を2つに分け、それぞれ神経フィ
ラメントおよびダリアフィラメントの含量をサンドイッ
チ−ELISAにより免疫学的に検討する。この場合、
2種のフィラメント種に対し、それぞれ第一のモノクロ
ナール抗体N F−8ないしはGL−8が、いわゆる捕
捉抗体として作用し、それぞれフィラメント蛋白質、α
−ヘリツクス中央フラグメントの第一のエピトープに結
合する。一方、第二のモノクロナール抗体NF−100
ないしはGL−100はいわゆる検出抗体として作用し
、付着したフィラメントのα−へリツクス中央部分の第
二のエピトープに結合する。第二のエピトープは第一の
エピトープとは独立、異種である。
ラメントおよびダリアフィラメントの含量をサンドイッ
チ−ELISAにより免疫学的に検討する。この場合、
2種のフィラメント種に対し、それぞれ第一のモノクロ
ナール抗体N F−8ないしはGL−8が、いわゆる捕
捉抗体として作用し、それぞれフィラメント蛋白質、α
−ヘリツクス中央フラグメントの第一のエピトープに結
合する。一方、第二のモノクロナール抗体NF−100
ないしはGL−100はいわゆる検出抗体として作用し
、付着したフィラメントのα−へリツクス中央部分の第
二のエピトープに結合する。第二のエピトープは第一の
エピトープとは独立、異種である。
検出抗体NF−100またはGL−100はペルオキシ
ダーゼと連結し、α−ヘリツクス中央フラグメントに結
合するとペルオキシダーゼの酵素活性によって確認され
る。標準は例5に記載したと同様にして行われる。
ダーゼと連結し、α−ヘリツクス中央フラグメントに結
合するとペルオキシダーゼの酵素活性によって確認され
る。標準は例5に記載したと同様にして行われる。
羊水サンプル中のグリアないしは神経フィラメント断片
の出現は神経系欠陥を示し、従来使用されていた公知方
法に比べて、信頼性が高く、迅速な、出産前診断試験が
提供される。
の出現は神経系欠陥を示し、従来使用されていた公知方
法に比べて、信頼性が高く、迅速な、出産前診断試験が
提供される。
例8〜10
単独のシトケラチンを付着する単独の捕捉抗体に代えて
、単独のシトケラチンの組合せを3!l!識するような
捕捉抗体を用いて例5〜7と同様に実施する。たとえば
、C−501とC−504の組合せはシトケラチンN[
lXを認識し、C−501とC−503の組合せはシト
ケラチン(X+1)を認識する。
、単独のシトケラチンの組合せを3!l!識するような
捕捉抗体を用いて例5〜7と同様に実施する。たとえば
、C−501とC−504の組合せはシトケラチンN[
lXを認識し、C−501とC−503の組合せはシト
ケラチン(X+1)を認識する。
例11〜20
標準化のペプチドとして働く標準物質として、α−へリ
ツクス中央フラグメントからの抗原形成断片と同一であ
り、特定の構造および欠失構造のcDNs配列データに
基づいて遺伝子工学的に得られた標準物質を用いるほか
は例1から10までにおける記載と同様に実施する。
ツクス中央フラグメントからの抗原形成断片と同一であ
り、特定の構造および欠失構造のcDNs配列データに
基づいて遺伝子工学的に得られた標準物質を用いるほか
は例1から10までにおける記載と同様に実施する。
例21
上皮組織病変の検出(鑑別診断)
患者血液の血清1mlについて、シトケラチンに対する
抗体の存在をサンドイッチ−ELISAにより免疫学的
に調べる。この場合は、19個の各区画に19種の異な
るシトケラチン(CK Nn1〜19)の精製α−ヘ
リツクス中央フラグメントをとったミクロ滴定板を用い
る。それに体液の蛋白質を注ぐ。ついでプレパラートを
注意深く洗浄する。
抗体の存在をサンドイッチ−ELISAにより免疫学的
に調べる。この場合は、19個の各区画に19種の異な
るシトケラチン(CK Nn1〜19)の精製α−ヘ
リツクス中央フラグメントをとったミクロ滴定板を用い
る。それに体液の蛋白質を注ぐ。ついでプレパラートを
注意深く洗浄する。
プレパラートにより特異的に吸着された患者血液からの
抗体を、それぞれペルオキシダーゼで酵素的に411!
識された、IQMまたはIQGに対する特異的抗体で免
疫学的に同定する。標準には、ヒト血液からの精VIo
GまたはIQMを使用する。
抗体を、それぞれペルオキシダーゼで酵素的に411!
識された、IQMまたはIQGに対する特異的抗体で免
疫学的に同定する。標準には、ヒト血液からの精VIo
GまたはIQMを使用する。
例21および23
患者血液の血清に代えて他の体液を加えるほかは、例2
1と同様に実施する。すなわち、例22では尿を、 例23では間接穿刺液 を使用する。
1と同様に実施する。すなわち、例22では尿を、 例23では間接穿刺液 を使用する。
Claims (10)
- (1)不溶性構造の組織特異性蛋白質を、その蛋白質の
組織特異性断片を抗原として産生する抗体を用いて同定
する方法において、その抗原を保持し、その特徴的断片
に対応するフラグメントを溶液に導き、ついで免疫学的
に検出および定量することを特徴とする方法。 - (2)組織特異性蛋白質は細胞骨格蛋白質である特許請
求の範囲第1項に記載の方法。 - (3)細胞骨格蛋白質は中間フイラメント蛋白質であり
、フラグメントはそのα−ヘリツク中央部フラグメント
またはその部分を含有することを特徴とする特許請求の
範囲第2項に記載の方法。 - (4)細胞組織からホモゲネートを生成させこのホモゲ
ネートを少なくとも中間フイラメントのかなりの部分か
らα−ヘリツクス中央部フラグメントが遊離されるまで
分解反応に付し、可溶性分画を分離し、可溶性分画に含
有される溶液相中のα−ヘリツクス中央部フラグメント
を免疫学的に同定することを特徴とする特許請求の範囲
第3項に記載の方法。 - (5)細胞ホモゲネートの各種中間フイラメント蛋白質
を同定し、相互の量的関係を定めることを特徴とする特
許請求の範囲第4項に記載の方法。 - (6)血液、血清、脳脊髄液、尿、羊水、穿刺液または
その他の体液中に溶解して含まれるα−ヘリツク中央部
フラグメントを免疫学的に同定することを特徴とする特
許請求の範囲第3項に記載の方法。 - (7)血液、血清、脳脊髄液、尿、羊水、穿刺液または
その他の体液中に溶解して含まれる蛋白質を少なくとも
かなりの部分の不溶性細胞骨格蛋白質からそれぞれのα
−ヘリツクス中央部フラグメントが遊離するまで分解反
応に付し、可溶性分画を分離し、可溶性分画に含有され
るα−ヘリツクス中央部フラグメントを免疫学的に同定
することを特徴とする特許請求の範囲第6項に記載の方
法。 - (8)血液、血清、脳脊髄液、尿、羊水、穿刺液または
その他の体液中の該当する精製蛋白質またはそのフラグ
メントから得られた試験プレパラートを、含有される可
能性がある抗体に暴露し、この試験物質に結合した抗体
を定性および定量的に測定することを特徴とする特許請
求の範囲第1項に記載の方法。 - (9)一定の標準に基づいた定量化を実施するに際し、
精製した細胞骨格蛋白質またはそのフラグメントから標
準を形成することを特徴とする特許請求の範囲第1項に
記載の方法。 - (10)標準物質ポリペプチドとして、抗原を形成する
細胞骨格蛋白質の断片と同一もしくはそれを短縮化した
ポリペプチド、合成によりあるいは原核生物もしくは酵
素中での合成もしくは組換えDNAの発現により製造さ
れたポリペプチドを使用することを特徴とする特許請求
の範囲第9項に記載の方法。
Applications Claiming Priority (4)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
LU86652A LU86652A1 (de) | 1986-11-10 | 1986-11-10 | Verfahren zum auffinden von gewebslaesionen |
LU86652 | 1986-11-10 | ||
LU86655 | 1986-11-10 | ||
LU86654 | 1986-11-10 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS63131061A true JPS63131061A (ja) | 1988-06-03 |
Family
ID=19730807
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP7953087A Pending JPS63131061A (ja) | 1986-11-10 | 1987-03-31 | 組織特異性、不溶性細胞骨格蛋白質の同定方法 |
Country Status (2)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS63131061A (ja) |
LU (1) | LU86652A1 (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2006522336A (ja) * | 2003-03-31 | 2006-09-28 | ユニバーシティ オブ フロリダ | 血液試料からの神経損傷の評価 |
-
1986
- 1986-11-10 LU LU86652A patent/LU86652A1/de unknown
-
1987
- 1987-03-31 JP JP7953087A patent/JPS63131061A/ja active Pending
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2006522336A (ja) * | 2003-03-31 | 2006-09-28 | ユニバーシティ オブ フロリダ | 血液試料からの神経損傷の評価 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
LU86652A1 (de) | 1988-06-13 |
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