JPS6312961A - トリプシン測定用試薬 - Google Patents
トリプシン測定用試薬Info
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- JPS6312961A JPS6312961A JP15594086A JP15594086A JPS6312961A JP S6312961 A JPS6312961 A JP S6312961A JP 15594086 A JP15594086 A JP 15594086A JP 15594086 A JP15594086 A JP 15594086A JP S6312961 A JPS6312961 A JP S6312961A
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- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
l)産業上の利用分野
本発明はヒト体液中のトリプシンをサンドウィッチ法に
よる酵素免疫学的測定法により測定するための試薬に間
するものである。
よる酵素免疫学的測定法により測定するための試薬に間
するものである。
2)従来の技術
従来、トリプシンの測定は酵素活性に基づく方法により
行われている。しかしながら、血清中でトリプシンはα
、−ブロティナーゼインヒビター、α2−マクログロブ
リン、インターαイーアンチトリプシンなどのトリプシ
ンインヒビターと結合して存在しているため、酵素活性
測定法の応用は困難である。従って、体液中のトリプシ
ン量の測定には、放射性免疫測定法(ラジオイムノアッ
セイ)が用いられていた。
行われている。しかしながら、血清中でトリプシンはα
、−ブロティナーゼインヒビター、α2−マクログロブ
リン、インターαイーアンチトリプシンなどのトリプシ
ンインヒビターと結合して存在しているため、酵素活性
測定法の応用は困難である。従って、体液中のトリプシ
ン量の測定には、放射性免疫測定法(ラジオイムノアッ
セイ)が用いられていた。
3)発明が解決しようとする問題点
体液中のトリプシン量の測定には、放射性免疫測定法が
用いられているが、放射性免疫測定法は放射性物質によ
る環境汚染、人体への影響という虚で一般施設での測定
が制約され、安全な測定系の開発が望まれてきた0本発
明は体液中のトリプシン量を放射性物質を用いないで、
酵素免疫学的な測定をするものである。
用いられているが、放射性免疫測定法は放射性物質によ
る環境汚染、人体への影響という虚で一般施設での測定
が制約され、安全な測定系の開発が望まれてきた0本発
明は体液中のトリプシン量を放射性物質を用いないで、
酵素免疫学的な測定をするものである。
4)問題を解決するための手段
本発明の試薬を用いる酵素免疫学的測定法は、トリプシ
ンと抗トリプシン抗体の抗原抗体反応を利用し、抗原抗
体結合物を生成せしめ、この結合物中の抗体に共有結合
している酵素の活性を測定することにより未知検体中の
抗原量を測定しようとするものである。本発明で用いて
いるサンドウィッチ法は複数の抗原決定基に、複数の抗
体が結合することを利用し、抗体結合不溶性担体−抗原
−酵素標識抗体のサンドウィッチ型結合物を生成させ、
その酵素標識抗体の酵素活性を測定することにより、抗
原量を測定しようとする方法であり、他の免疫学的測定
法に比較し、50〜10,000倍感度が高いという利
点を有している。
ンと抗トリプシン抗体の抗原抗体反応を利用し、抗原抗
体結合物を生成せしめ、この結合物中の抗体に共有結合
している酵素の活性を測定することにより未知検体中の
抗原量を測定しようとするものである。本発明で用いて
いるサンドウィッチ法は複数の抗原決定基に、複数の抗
体が結合することを利用し、抗体結合不溶性担体−抗原
−酵素標識抗体のサンドウィッチ型結合物を生成させ、
その酵素標識抗体の酵素活性を測定することにより、抗
原量を測定しようとする方法であり、他の免疫学的測定
法に比較し、50〜10,000倍感度が高いという利
点を有している。
即ち、精製したヒトトリプシンを家兎に感作して抗ヒト
トリプシン抗体を作成し、次にこの抗体をポリスチレン
ビーズなどの不溶性担体に物理的に吸着させて抗ヒトト
リプシン抗体の結合した不溶性担体を得る。
トリプシン抗体を作成し、次にこの抗体をポリスチレン
ビーズなどの不溶性担体に物理的に吸着させて抗ヒトト
リプシン抗体の結合した不溶性担体を得る。
一方、抗ヒトトリプシン抗体に、標識酵素および使用す
る標識酵素に最適な化合物(例えばβ−ガラクトシダー
ゼおよびm−マレイミドベンゾイル−N−ヒドロキシサ
クシンイミドエステル、またはパーオキシダーゼおよび
ゲルタールアルデヒドなど)を加えて反応させ、酵素標
識抗ヒトトリプシン抗体を得る。
る標識酵素に最適な化合物(例えばβ−ガラクトシダー
ゼおよびm−マレイミドベンゾイル−N−ヒドロキシサ
クシンイミドエステル、またはパーオキシダーゼおよび
ゲルタールアルデヒドなど)を加えて反応させ、酵素標
識抗ヒトトリプシン抗体を得る。
このようにして得られた抗ヒトトリプシン抗体結合不溶
性担体と酵素標識抗ヒトトリプシン抗体を用い患者血清
で測定したところ、血清中トリプシン量は、急性膵炎、
膵癌で特異的に上昇することが判明した。従って本発明
は膵疾患の診断に有用である。
性担体と酵素標識抗ヒトトリプシン抗体を用い患者血清
で測定したところ、血清中トリプシン量は、急性膵炎、
膵癌で特異的に上昇することが判明した。従って本発明
は膵疾患の診断に有用である。
次に実施例をあげて更に詳細に説明する。
5)実施例
実施例1
抗ヒトトリプシン抗体の製造
家兎1匹に対して、ヒトトリプシン1.5mgを含む水
溶液11とFreundのコンプリードアシュバンド1
1を混合して作成した乳剤を背中の皮下及び四肢の爪の
間に注射して免疫した。第1回目の免疫から2週間後に
第1回目と同様の乳剤を家兎の皮下に注射した。同様な
免疫操作を4回繰り返した後、家兎の爪動脈より血液を
採取し、37℃で30分間の加温後、毎分3000回転
で15分間遠心を行い、血清を得た。この血清に対して
56℃で30分間の熱処理を行い補体を非動化した後、
20mMリン酸緩衝液(pH8,0) [緩衝液l]
を血清と同量加えて、血清と同容量の飽和硫酸アンモニ
ウムを加えて33%飽和とし、そこで析出する沈殿を毎
分12,000回転で15分間の遠心により集め、少量
の緩衝液1に溶解後、緩衝液1を用いて透析を行った。
溶液11とFreundのコンプリードアシュバンド1
1を混合して作成した乳剤を背中の皮下及び四肢の爪の
間に注射して免疫した。第1回目の免疫から2週間後に
第1回目と同様の乳剤を家兎の皮下に注射した。同様な
免疫操作を4回繰り返した後、家兎の爪動脈より血液を
採取し、37℃で30分間の加温後、毎分3000回転
で15分間遠心を行い、血清を得た。この血清に対して
56℃で30分間の熱処理を行い補体を非動化した後、
20mMリン酸緩衝液(pH8,0) [緩衝液l]
を血清と同量加えて、血清と同容量の飽和硫酸アンモニ
ウムを加えて33%飽和とし、そこで析出する沈殿を毎
分12,000回転で15分間の遠心により集め、少量
の緩衝液1に溶解後、緩衝液1を用いて透析を行った。
ここで得られた画分を緩衝液1で緩衝化されたDEAE
−セルロースカラム(2,5X 15ca)に添加し、
吸着しないで緩衝液1にて流出する両分を集め20mg
/m Iのタンパク濃度になるよう緩衝液1で希釈し、
これを抗ヒトトリプシン抗体溶液とした。
−セルロースカラム(2,5X 15ca)に添加し、
吸着しないで緩衝液1にて流出する両分を集め20mg
/m Iのタンパク濃度になるよう緩衝液1で希釈し、
これを抗ヒトトリプシン抗体溶液とした。
実施例2
抗体結合ポリスチレンビーズの製造
実施例1の抗ヒトトリプシン抗体溶液21に50m1塩
化ナトリウムを含むO,1Mリン酸緩衝液(pH7,0
) [緩衝液2] 400n+Iを加えた液に、充
分洗浄したポリスチレンビーズ(直径約6.5+aa+
) 1,000〜to、ooo個を加え30℃で2時
間振盪した。抗体溶液を除いた後、0.1%牛血清アル
ブミンを含むlll液液2緩衝液3]でビーズを洗浄後
、m電液3を加え、30℃で2時間振盪した。更にビー
ズを緩衝液3で洗浄後、チメロサール濃度が0.01%
になるように加えた。
化ナトリウムを含むO,1Mリン酸緩衝液(pH7,0
) [緩衝液2] 400n+Iを加えた液に、充
分洗浄したポリスチレンビーズ(直径約6.5+aa+
) 1,000〜to、ooo個を加え30℃で2時
間振盪した。抗体溶液を除いた後、0.1%牛血清アル
ブミンを含むlll液液2緩衝液3]でビーズを洗浄後
、m電液3を加え、30℃で2時間振盪した。更にビー
ズを緩衝液3で洗浄後、チメロサール濃度が0.01%
になるように加えた。
実施例3
酵素標識抗体液の製造
西洋ワサビから精製されたパーオキシダーゼ(POD)
20mgを1.25%グルタルアルデヒドを含む0.1
Mリン酸緩衝液(pH,7,5) 0.3s+lに溶解
し、室温で18時間反応させグルタルアルデヒド化PO
D溶液を得た。グルタルアルデヒド化POD溶液を0.
15M塩化ナトリウムで緩衝化されたセファデックスG
−25カラム(1,5X60cm)に添加し、遊離のグ
ルタルアルデヒドを除去した。前記精製グルタルアルデ
ヒド化POD溶液に実施例1の抗体ioIIIgを溶解
し、更に1M炭酸緩衝液(pH9,5) 0゜21を加
え、4℃で24時間反応後、0.2M L−リジンを加
え、室温で2時間反応させた。前記反応液を0.154
M塩化ナトリウムを含む10mMリン酸緩衝液(ρ87
.2)により緩衝化されたセファデックスG−200カ
ラム(1,5X70c++)に添加し、p。
20mgを1.25%グルタルアルデヒドを含む0.1
Mリン酸緩衝液(pH,7,5) 0.3s+lに溶解
し、室温で18時間反応させグルタルアルデヒド化PO
D溶液を得た。グルタルアルデヒド化POD溶液を0.
15M塩化ナトリウムで緩衝化されたセファデックスG
−25カラム(1,5X60cm)に添加し、遊離のグ
ルタルアルデヒドを除去した。前記精製グルタルアルデ
ヒド化POD溶液に実施例1の抗体ioIIIgを溶解
し、更に1M炭酸緩衝液(pH9,5) 0゜21を加
え、4℃で24時間反応後、0.2M L−リジンを加
え、室温で2時間反応させた。前記反応液を0.154
M塩化ナトリウムを含む10mMリン酸緩衝液(ρ87
.2)により緩衝化されたセファデックスG−200カ
ラム(1,5X70c++)に添加し、p。
D標識抗体液を得た。POD活性を有する抗体画分を集
め終濃度0.01%になるように、チメロサールを加え
、4℃にて保存した。
め終濃度0.01%になるように、チメロサールを加え
、4℃にて保存した。
実験例1
未知検体20 あるいは濃度既知標準ヒトトリプシン
溶液(0,18,8,37,5,75,150,300
,600ng/ml ) 20 に、0.1%牛血清
アルブミン、0.5%ゼラチン、3mM塩化ナトリウム
、0.01%チメロサールを含む15■Hリン酸緩衝液
(pH7,0) 200を加えて、前記実施例2で得
られた抗体結合ポリスチレンビーズを各々1個加え、3
7℃で2時間反応した後゛、0.15M塩化ナトリウム
、0.05%ツイーン20を含む10mMリン酸緩衝液
(p!l 6.8) [緩衝液A]21にて2回洗浄
した0次に前記実施例3で得られた酵素標識抗体液の約
400倍希釈液200を加え、室温にて一夜放置した後
、緩衝液A2m1にて2回洗浄した。抗体結合ポリスチ
レンビーズを別の試験管に移し、0.3%オルトフェニ
レンジアミンニ塩酸塩、0.02%過酸化水素および0
.01%チメロサールを含む0.1Mクエン酸−リン酸
緩衝液(pH6,0) 200 を加えて37℃で
15分間反応を行い、IN塩酸21を加えた後、492
nmで吸光度を測定した。未知検体中のトリプシン濃度
は、片対数グラフ用紙にて濃度既知標準ヒトトリプシン
溶液より作成した検量線より算出した。第1図は本法に
よる標準ヒトトリプシンの標準曲線を示す。
溶液(0,18,8,37,5,75,150,300
,600ng/ml ) 20 に、0.1%牛血清
アルブミン、0.5%ゼラチン、3mM塩化ナトリウム
、0.01%チメロサールを含む15■Hリン酸緩衝液
(pH7,0) 200を加えて、前記実施例2で得
られた抗体結合ポリスチレンビーズを各々1個加え、3
7℃で2時間反応した後゛、0.15M塩化ナトリウム
、0.05%ツイーン20を含む10mMリン酸緩衝液
(p!l 6.8) [緩衝液A]21にて2回洗浄
した0次に前記実施例3で得られた酵素標識抗体液の約
400倍希釈液200を加え、室温にて一夜放置した後
、緩衝液A2m1にて2回洗浄した。抗体結合ポリスチ
レンビーズを別の試験管に移し、0.3%オルトフェニ
レンジアミンニ塩酸塩、0.02%過酸化水素および0
.01%チメロサールを含む0.1Mクエン酸−リン酸
緩衝液(pH6,0) 200 を加えて37℃で
15分間反応を行い、IN塩酸21を加えた後、492
nmで吸光度を測定した。未知検体中のトリプシン濃度
は、片対数グラフ用紙にて濃度既知標準ヒトトリプシン
溶液より作成した検量線より算出した。第1図は本法に
よる標準ヒトトリプシンの標準曲線を示す。
第1表は本法による血清測定の同時再現性を示す。
第1表 トリプシンの酵素免疫学的測定法における同時
再現性 6)発明の効果 各種疾患患者血清中のトリプシンの酵素免疫的測定法に
よる測定結果 各種疾患患者血清中のトリプシン測定の結果第2図に示
す0図中の0内の数字は症例数をす。この結果より明ら
かなごとく、血清中トリシン量は急性膵炎、膵癌で特異
的に上昇してい
再現性 6)発明の効果 各種疾患患者血清中のトリプシンの酵素免疫的測定法に
よる測定結果 各種疾患患者血清中のトリプシン測定の結果第2図に示
す0図中の0内の数字は症例数をす。この結果より明ら
かなごとく、血清中トリシン量は急性膵炎、膵癌で特異
的に上昇してい
第1図は本発明の実施例1における濃度既知率ヒトトリ
プシン量を横軸に対数でとり、吸光を縦軸にとったグラ
フを示すものである。第2は本発明の試薬を用いて各種
疾患患者血清中のリブシン量を示すグラフである。
プシン量を横軸に対数でとり、吸光を縦軸にとったグラ
フを示すものである。第2は本発明の試薬を用いて各種
疾患患者血清中のリブシン量を示すグラフである。
Claims (1)
- 精製したヒトトリプシンを抗原として得られる抗トリプ
シン抗体を精製し、抗トリプシン抗体を酵素と共有結合
により結合させた酵素標識抗体と、抗トリプシン抗体を
物理的吸着により不溶性担体に結合させた抗トリプシン
抗体結合担体とからなるヒト体液中のトリプシン測定用
試薬。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP15594086A JPS6312961A (ja) | 1986-07-04 | 1986-07-04 | トリプシン測定用試薬 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP15594086A JPS6312961A (ja) | 1986-07-04 | 1986-07-04 | トリプシン測定用試薬 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS6312961A true JPS6312961A (ja) | 1988-01-20 |
Family
ID=15616844
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP15594086A Pending JPS6312961A (ja) | 1986-07-04 | 1986-07-04 | トリプシン測定用試薬 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS6312961A (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0597699A2 (en) * | 1992-11-10 | 1994-05-18 | Tosoh Corporation | Protein secreted by cancer cells |
-
1986
- 1986-07-04 JP JP15594086A patent/JPS6312961A/ja active Pending
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0597699A2 (en) * | 1992-11-10 | 1994-05-18 | Tosoh Corporation | Protein secreted by cancer cells |
EP0597699A3 (en) * | 1992-11-10 | 1994-09-28 | Tosoh Corp | Protein secreted by cancer cells. |
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